RU2158502C2 - Способ селекции гаплоидов и двойных гаплоидов растений - Google Patents
Способ селекции гаплоидов и двойных гаплоидов растений Download PDFInfo
- Publication number
- RU2158502C2 RU2158502C2 RU94023241/13A RU94023241A RU2158502C2 RU 2158502 C2 RU2158502 C2 RU 2158502C2 RU 94023241/13 A RU94023241/13 A RU 94023241/13A RU 94023241 A RU94023241 A RU 94023241A RU 2158502 C2 RU2158502 C2 RU 2158502C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- plants
- gene
- haploids
- stage
- marker
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
- C12N15/8201—Methods for introducing genetic material into plant cells, e.g. DNA, RNA, stable or transient incorporation, tissue culture methods adapted for transformation
- C12N15/8209—Selection, visualisation of transformants, reporter constructs, e.g. antibiotic resistance markers
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01H—NEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
- A01H1/00—Processes for modifying genotypes ; Plants characterised by associated natural traits
- A01H1/04—Processes of selection involving genotypic or phenotypic markers; Methods of using phenotypic markers for selection
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
- C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
- C12N15/8261—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
- C12N15/8287—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for fertility modification, e.g. apomixis
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S47/00—Plant husbandry
- Y10S47/01—Methods of plant-breeding and including chromosome multiplication
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Botany (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
Способ может быть использован для выращивания растений, являющихся гаплоидами и двойными гаплоидами. Применение в качестве маркера в селекции доминантного селектируемого, доминантного скринируемого или доминантного условно летального трансгена индукции неопределенного гаметофита позволяет создать надежную маркерную систему, лишенную недостатков традиционных систем. 15 з.п. ф-лы, 2 ил.
Description
Предметом настоящего изобретения является выращивание растений. В частности, предметом изобретения является получение гаплоидов и двойных гаплоидов (в виде растений или семян), предпочтительно индуцированных геном индукции гаплоидов, и их селекция и/или скрининг.
Когда у материнского родителя присутствует мутантный ген "неопределенного гаметофита" (ig), это приводит к получению потомства с высокой долей дефектных семян и сильно увеличенной частотой гаплоидов как по материнской, так и по отцовской линии. Соотношение материнского и отцовского типов составляет 1:2. Было показано, что при скрещивании растений кукурузы с igig женскими типами при четырехкратном стандартном инбридинге частота андрогенеза составляет от 0,5 до 2% с одним андрогенетическим растением на 10 диплоидов. Однако влияние отцовского донора намного сильнее, чем представлялось до сих пор. Так, было показано, что средняя величина частоты андрогенеза из-за ig составляла менее 0,03%, для некоторых генотипов достигая 1,5%. Недавно удалось подтвердить, что наличие гена ig в генотипе раннеспелой кукурузы, например инбредной линии Co220, приводит к образованию гаплоидов, сохраняя такой же или более высокий уровень индукции гаплоидов. Однако использование этого способа для крупномасштабного получения гаплоидов в практической селекции растений требует наличия эффективной системы маркирования, которая позволяет различать гаплоиды и спонтанно удвоенные гаплоиды отцовского происхождения с одной стороны, и полученные половым путем диплоиды и материнские гаплоиды и двойные гаплоиды, с другой стороны.
Наиболее удобной маркерной системой, используемой до настоящего времени, по крайней мере для кукурузы, является Маркерная линия с Пурпурным Эмбрионом (ПЭМ) с генотипом 
созданная изначально для выявления материнских гаплоидов, но используемая также и для выявления ig-индуцируемых гаплоидов. Основным геном в этой системе является 
которая в сочетании с доминантными генами 
обуславливающими пигментацию, вызывает красную или пурпурную пигментацию алейрона, главным образом, верхней части зерна, и глубокую пурпурную пигментацию зародыша. Любая линия кукурузы с бесцветными зернами может являться родительским донором гаплоидов, при условии, что она не является гомозиготой RR, и потеря окраски происходит не из-за доминантного ингибитора пигментации. Для выявления материнских гаплоидов линию ПЕМ используют в качестве опылителя, а для выявления ig-индуцированных андрогенетических гаплоидов линию ПЕМ-ig используют в качестве зернового родителя в скрещиваниях с донорной линией или селекционной линией. В обеих системах искомые гаплоиды имеют белый зародыш и окрашенный алейрон. Несмотря на то, что ПЭМ система обеспечивает эффективную селекцию материнских гаплоидов в сухих зернах, высока доля дефективных и мелких зерен в igig женских наборах зерновой селекции андрогенетических гаплоидов.
В данном изобретении предлагают маркерную систему, лишенную вышеуказанных недостатков, для использования в селекции гаплоидов.
Согласно данному изобретению в качестве маркера в селекции гаплоидов либо двойных гаплоидов предложено использование по меньшей мере одного из следующих генов: доминантный селектируемый маркерный ген, доминантный скринируемый маркерный ген или доминантный условно летальный ген.
Под "доминантным условно летальным геном" понимают любой ген, продукт которого способен вызывать конверсию нелетального или неингибирующего фактора в летальный либо ингибирующий фактор. В предпочтительном случае таким фактором является химическое соединение, например нафтилацетамид, хлорат либо индол-3-ацетамид, а летальный ген при этом может кодировать нитратредуктазу (NR) либо индолацетамидгидролазу (laaH).
Под "доминантным селектируемым маркерным геном" понимают любой ген, продукт которого способен вызывать конверсию токсичного, ингибирующего либо еще какого-нибудь фактора, нарушающего метаболизм, в менее токсичную, менее ингибирующую или менее разрушительную для метаболизма форму. Желательно, чтобы указанный генный продукт был способен делать фактор в значительной степени нетоксичным или неингибирующим, не опасным для метаболизма. Очень удачно, если фактор является гербицидом или антибиотиком. В этих случаях селектируемый маркерный ген может кодировать фермент, инактивирующий гербицид, который способен, например, придавать устойчивость либо выносливость к гербициду ткани, его содержащей. Таким образом селектируемый маркерный ген может кодировать фосфинотрицинацетилтрансферазу (PAT), глифосатоксидоредуктазу (GOX), либо EPSPS, то есть придавать выносливость либо устойчивость, например, к глуфосинату или глифосату (глуфосинат производится фирмой Hoechst AG под торговым наименованием "BASTA").
Под "доминантным скринируемым маркерным геном" понимают любой ген, продукт которого способен придавать содержащей его ткани фенотипически проявляющуюся характеристику. Желательно, чтобы указанный продукт был способен действовать на субстрат, который вследствие такого воздействия превращался бы в хромофор, флюорофор либо другое легко идентифицируемое соединение, прямым или косвенным образом. Очень удачно, если селектируемый маркерный ген кодирует бета-глюкуронидазу, которая способна расщеплять нетоксичные глюкуронид-флюоресцеиновые красители, освобождая таким образом эти красители, которые могут быть обнаружены и определены количественно, если это необходимо или желательно.
Такие доминантные гены могут быть использованы в селекции индуцированных гаплоидов, такими генами могут быть, например, гены индукции гаплоидов, придающие "неопределенный гаметофит" (ig). Желательно, чтобы растение являлось кукурузой, однако могут быть использованы и другие растения, особенно культурные, содержащие гены индукции гаплоидов.
Изобретение включает в себя способ селекции гаплоидов и двойных гаплоидов растений, в котором линию, несущую ген индукции гаплоидов, и гомозиготную по маркерному трансгену используют для скрещивания с линией-производителем. При этом маркерным геном может служить доминантный условно летальный трансген, продукт которого способен обеспечивать конверсию нелетальных или неингибирующих факторов в летальные или ингибирующие факторы или доминантный селектируемый маркерный трансген, продукт которого способен обеспечить конверсию токсичного, ингибирующего или иным образом нарушающего метаболизм фактора в менее токсичный, ингибирующий в меньшей степени или нарушающий в меньшей степени фактор, или доминантный скринируемый маркерный трансген, продукт которого способен давать ткань, обладающую определенными фенотипическими характеристиками. При селекции гаплоидных и двойных гаплоидных андрогенетических растений линию, гомозиготную по маркерному трансгену и несущую признак индукции гаплоидов, используют в качестве женского родителя при скрещивании с линией-производителем. Этот способ включает следующие стадии:
а) трансформации растения, гетерозиготного по гену индукции гаплоидов, маркерным геном;
б) самоопыления растений, отобранных на стадии а);
в) удаления мужских стерильных растений из популяции растений, полученных на стадии б);
г) самоопыления растений, оставшихся после стадии в);
д) выбраковывания растений, полученных на стадии г), которые являются гомозиготными по доминантному гену индукции гаплоидов;
е) отбора потомства, оставшегося после стадии д), содержащего маркерный ген;
ж) самоопыления растений, выбранных на стадии е);
з) отбора потомства, полученного на стадии ж), которое является гомозиготным по доминантному маркерному гену;
и) скрещивания растений, полученных на стадии з), и отбора растений, которые являются гомозиготными по маркерному гену и гомозиготными по рецессивному гену индукции гаплоидов;
к) опыления растений, полученных на стадии и), диплоидными растениями; и
л) обнаружения или отбора гаплоидов и двойных гаплоидов андрогенетических растений, полученных на этапе к).
а) трансформации растения, гетерозиготного по гену индукции гаплоидов, маркерным геном;
б) самоопыления растений, отобранных на стадии а);
в) удаления мужских стерильных растений из популяции растений, полученных на стадии б);
г) самоопыления растений, оставшихся после стадии в);
д) выбраковывания растений, полученных на стадии г), которые являются гомозиготными по доминантному гену индукции гаплоидов;
е) отбора потомства, оставшегося после стадии д), содержащего маркерный ген;
ж) самоопыления растений, выбранных на стадии е);
з) отбора потомства, полученного на стадии ж), которое является гомозиготным по доминантному маркерному гену;
и) скрещивания растений, полученных на стадии з), и отбора растений, которые являются гомозиготными по маркерному гену и гомозиготными по рецессивному гену индукции гаплоидов;
к) опыления растений, полученных на стадии и), диплоидными растениями; и
л) обнаружения или отбора гаплоидов и двойных гаплоидов андрогенетических растений, полученных на этапе к).
При селекции гаплоидных и двойных гаплоидных гиногенетических растений линию, гомозиготную по маркерному трансгену и несущую признак индукции гаплоидов, используют в качестве линии-опылителя при скрещивании с линией-производителем. Этот способ включает следующие стадии:
а) скрещивания отобранного, полученного в результате инбридинга генотипа, способного индуцировать гиногенетические гаплоиды (линия-индуктор), в качестве женского родителя, с генотипом, гомозиготным по маркерному трансгену в качестве опыляющего растения, или же трансформации указанного отобранного генотипа маркерным геном и отбора стабильных трансформантов;
б) обратного скрещивания растений, полученных на стадии а), с линией-индуктором;
в) удаления растений, утративших маркерный ген, из потомства, полученного на стадии б);
г) самоопыления некоторого числа растений, оставшихся после стадии в);
д) удаления растений, утративших маркерный ген, из потомства, полученного на стадии г);
е) скрещивания некоторого числа растений, которые не являются индукторами или маркерными растениями, в качестве материнских родителей, с соответствующим количеством растений, оставшихся после стадии д), в качестве опыляющих растений, и получение самоопыленных семян всех опыляющих родителей;
ж) использования самоопыленных растений, полученных на этапе е) для скрининга опыляющих родителей на гомозиготность по маркерному гену, а также как на способность к индукции гиногенетических гаплоидов;
з) использования оставшихся самоопыленных семян, полученных от опыляющих родителей на стадии е), у которых гомозиготность по маркерному гену сочетается с удовлетворительной способностью к индукции гиногенетических гаплоидов, в качестве линии-опылителя, в скрещивании с линией- производителем;
и) обнаружения или отбора гиногенетических гаплоидов и двойных гаплоидов из растений, полученных на стадии з).
а) скрещивания отобранного, полученного в результате инбридинга генотипа, способного индуцировать гиногенетические гаплоиды (линия-индуктор), в качестве женского родителя, с генотипом, гомозиготным по маркерному трансгену в качестве опыляющего растения, или же трансформации указанного отобранного генотипа маркерным геном и отбора стабильных трансформантов;
б) обратного скрещивания растений, полученных на стадии а), с линией-индуктором;
в) удаления растений, утративших маркерный ген, из потомства, полученного на стадии б);
г) самоопыления некоторого числа растений, оставшихся после стадии в);
д) удаления растений, утративших маркерный ген, из потомства, полученного на стадии г);
е) скрещивания некоторого числа растений, которые не являются индукторами или маркерными растениями, в качестве материнских родителей, с соответствующим количеством растений, оставшихся после стадии д), в качестве опыляющих растений, и получение самоопыленных семян всех опыляющих родителей;
ж) использования самоопыленных растений, полученных на этапе е) для скрининга опыляющих родителей на гомозиготность по маркерному гену, а также как на способность к индукции гиногенетических гаплоидов;
з) использования оставшихся самоопыленных семян, полученных от опыляющих родителей на стадии е), у которых гомозиготность по маркерному гену сочетается с удовлетворительной способностью к индукции гиногенетических гаплоидов, в качестве линии-опылителя, в скрещивании с линией- производителем;
и) обнаружения или отбора гиногенетических гаплоидов и двойных гаплоидов из растений, полученных на стадии з).
В предпочтительном варианте осуществления изобретения линия-опылитель имеет генотип, способный к индукции гиногенетических гаплоидов с частотой более чем 0,1%, в более предпочтительном частота составляет около 0,5%.
В качестве растения можно использовать кукурузу.
Ген индукции гаплоидов может быть геном "неопределенного гаметофита" (ig). Предпочтительно в качестве маркерного гена следует применять условно летальный ген, который обеспечивает чувствительность к химическому соединению или селектируемый маркерный ген, который обеспечивает устойчивость либо выносливость к гербициду или антибиотику, или скринируемый ген, кодирующий белок, способный расщеплять хромогенный или флуорогенный субстрат.
Далее изобретение сопровождает ряд примеров, которые описывают получение и селекцию гаплоидных растений кукурузы, а фиг. 1 и 2 иллюстрируют генотипы, полученные вследствие применения схем скрещивания, описанных в примерах 1 и 2 соответственно.
Пример 1. Использование гена IaaH в селекции андрогенетических гаплоидов и двойных гаплоидов кукурузы
Наиболее удобным условно летальным геном для использования в селекции гаплоидов кукурузы является ген, кодирующий индолацетамид гидролазу (IaaH). Ген IaaH является доминантным бактериальным геном, определяющим заключительную стадию в биосинтезе бактериального ауксина, и отвечающим за превращение индолацетамида (ИАМ) в индолилуксусную кислоту (ИУК). Растения табака, несущие ген IaaH, являются фенотипически нормальными. Однако, если такие растения обрабатывают нафтилацетамидом (НАМ), это вещество превращается продуктом гена IaaH в нафтилуксусную кислоту (НУК), что приводит к резкой задержке роста таких обработанных растений.
Наиболее удобным условно летальным геном для использования в селекции гаплоидов кукурузы является ген, кодирующий индолацетамид гидролазу (IaaH). Ген IaaH является доминантным бактериальным геном, определяющим заключительную стадию в биосинтезе бактериального ауксина, и отвечающим за превращение индолацетамида (ИАМ) в индолилуксусную кислоту (ИУК). Растения табака, несущие ген IaaH, являются фенотипически нормальными. Однако, если такие растения обрабатывают нафтилацетамидом (НАМ), это вещество превращается продуктом гена IaaH в нафтилуксусную кислоту (НУК), что приводит к резкой задержке роста таких обработанных растений.
Для того, чтобы ген IaaH мог быть использован в качестве маркера в ig-индуцированном получении андрогенетических гаплоидов, линия, несущая ig-ген, должна быть гомозиготной по IaaH. Возможная индуцирующая гаплоидность линия кукурузы, гомозиготная по IaaH, может быть получена следующим образом.
1. Вводят ig-ген в раннеспелый, не требовательный к уходу генотип с высоким уровнем индукции гаплоидов.
2. Трансформируют Igig генотипы геном IaaH хорошо известными специалистам способами и отбирают хорошо развивающиеся трансформанты.
3. Самоопыляют трансформированное растение для получения расщепляющегося S1 потомства (см. фиг. 1).
4. Удаляют во время цветения стерильные мужские растения (гомозиготные по igig-гену) из полученной популяции.
5. Самоопыляют оставшиеся растения.
6. Отбраковывают во время сбора урожая растения, имеющие початки только с нормальными семенами. Это растения, гаплоидные по IgIg.
7. Высевают по 20 семян каждого из оставленных потомков и опрыскивают проростки НАМ, что позволяет идентифицировать потомков, не имеющих IaaH гена (на них НАМ не действует). Эти растения выбраковывают. Оставшееся потомство (IgigIaaHIaaH и IgigIaaH генотипы, встречающиеся в соотношении 1:2) идентифицируют, и семена высевают вновь.
8. Выращивают растения, полученные на стадии 7.
9. После сбора урожая с растений, полученных на стадии 8, высевают по 20-30 семян с каждого растения и опрыскивают НАМ. Потомство, которое отличается НАМ-индуцированным замедлением роста, является гетерозиготным по IaaH, его выбраковывают. Потомки, характеризующиеся единообразным замедлением роста, происходят от искомого генотипа IgigIaaHIaaH (в рамке на фиг.1), их вновь высевают, используя оставшиеся семена.
10. Отобранные и вновь посеянные потомки делятся в соотношении 1:2:1 на IgIg, Igig и igig. igig растения характеризуются мужской стерильностью и их используют для репродукции индуцирующей гаплоиды линии. С этой целью проводят скрещивания между группой растений со стерильной пыльцой igig и сестринскими растениями с фертильной пыльцой. Скрещивания могут быть двух типов:
100% IgigIaaHIaaH, все растения имеют фертильную пыльцу и их выбраковывают
11. Посредством повторных скрещиваний по типу (б) между неограниченным количеством растений с генотипом igigIaaHIaaH может быть обеспечен высокий уровень получения андрогенетических гаплоидов.
100% IgigIaaHIaaH, все растения имеют фертильную пыльцу и их выбраковывают
11. Посредством повторных скрещиваний по типу (б) между неограниченным количеством растений с генотипом igigIaaHIaaH может быть обеспечен высокий уровень получения андрогенетических гаплоидов.
12. Когда igigIaaHIaaH растения опыляют нормальной диплоидной популяцией или линией кукурузы, все диплоидные половые потомки имеют генотип IgigIaaH, а все материнские гаплоиды либо двойные гаплоиды имеют генотипы IgIaaH и igigIaaHIaaH соответственно. Все такие растения чувствительны к обработкам НАМ и поэтому могут быть исключены. Только потомки, не чувствительные к обработке НАМ, являются искомыми андрогенетическими гаплоидами и спонтанными двойными гаплоидами, имеющими генотипы Ig и Igig соответственно.
Пример 2. Использование констуитивно экспрессируемого гена нитратредуктазы (Nia) в селекции андрогенетических гаплоидов и двойных гаплоидов кукурузы
Нитратредуктаза (NR), которая катализирует первую стадию пути ассимиляции азота путем превращения нитрата в нитрит, обладает хлоратной токсичностью. Nia ген кодирует апофермент NR, и растения табака, трансгенные по констуитивно экспрессируемому Nia гену, являются фенотипически нормальными. Однако эти растения погибают при выращивании их на среде, содержащей в качестве единственного источника азота аммоний, и при обработке хлоратом.
Нитратредуктаза (NR), которая катализирует первую стадию пути ассимиляции азота путем превращения нитрата в нитрит, обладает хлоратной токсичностью. Nia ген кодирует апофермент NR, и растения табака, трансгенные по констуитивно экспрессируемому Nia гену, являются фенотипически нормальными. Однако эти растения погибают при выращивании их на среде, содержащей в качестве единственного источника азота аммоний, и при обработке хлоратом.
В данном примере повторяют схему примера 1, за исключением того, что Igig генотипы на стадии 2 трансформируют не геном IaaH, а геном Nia, а селекцию на стадиях 7, 9 и 12 проводят путем обработки хлоратом растений, растущих на среде, содержащей в качестве единственного источника азота аммоний.
Пример 3. Использование доминантного условно летального гена в качестве маркера в селекции гиногенетических гаплоидов и двойных гаплоидов кукурузы
В примерах 1 и 2 описывают способы получения андрогенетических ig-индуцированных гаплоидов, в которых ig-линию, трансформированную геном IaaH или Nia, используют в качестве материнских растений в скрещиваниях с селекционной линией. В данном случае повторяют примеры 1 и 2, за исключением того, что геном IaaH или Nia трансформируют линию-опылитель, индуцирующую гаплоиды, и используют ее в качестве опылителя в скрещиваниях с селекционной линией.
В примерах 1 и 2 описывают способы получения андрогенетических ig-индуцированных гаплоидов, в которых ig-линию, трансформированную геном IaaH или Nia, используют в качестве материнских растений в скрещиваниях с селекционной линией. В данном случае повторяют примеры 1 и 2, за исключением того, что геном IaaH или Nia трансформируют линию-опылитель, индуцирующую гаплоиды, и используют ее в качестве опылителя в скрещиваниях с селекционной линией.
Пример 4. Использование гена PAT в селекции андрогенетических гаплоидов и двойных гаплоидов кукурузы
Удобным геном для использования в качестве маркера в селекции гаплоидов кукурузы является ген, кодирующий фосфинотрицинацетилтрансферазу (Pat). Ген Pat является доминантным бактериальным геном, отвечающим за разложение фосфинотрицина. Растения кукурузы, несущие ген Pat, фенотипически нормальны и при обработке глуфосинатом сохраняют свою жизнеспособность в отличие от обработанных растений, не имеющих данного гена.
Удобным геном для использования в качестве маркера в селекции гаплоидов кукурузы является ген, кодирующий фосфинотрицинацетилтрансферазу (Pat). Ген Pat является доминантным бактериальным геном, отвечающим за разложение фосфинотрицина. Растения кукурузы, несущие ген Pat, фенотипически нормальны и при обработке глуфосинатом сохраняют свою жизнеспособность в отличие от обработанных растений, не имеющих данного гена.
Для того, чтобы ген Pat мог быть использован в качестве маркера при получении ig-индуцированных андрогенетических гаплоидов, линия, несущая ген ig, должна быть гомозиготной по PAT. Удовлетворяющая этому требованию, индуцирующая гаплоиды линия кукурузы, гомозиготная по гену Pat, может быть получена по следующей схеме.
1. Вводят ген ig в раннеспелый, не требовательный к уходу генотип с высоким уровнем индукции гаплоидов.
2. Способами, хорошо известными специалистам, трансформируют Igig генотипы геном Pat и отбирают жизнеспособные трансформанты.
3. Самоопыляют трансформированное растение для получения расщепляющегося потомства S1 (см. фиг.2). Проверяют устойчивость потомства S1 к глуфосинату способом "кисть или краска", хорошо известным специалистам. Выбраковывают чувствительные растения (сегреганты, нестабильные трансформанты или слабые экспрессоры гена Pat).
4. Во время цветения выбраковывают мужские стерильные растения (гомозиготные по igig гену) из всей популяции.
5. Самоопыляют все оставшиеся растения.
6. В ходе сбора урожая выбраковывают растения, имеющие початки только с нормальными семенами. Они являются гомозиготами по IgIg.
7. Высевают все семена с каждого потомка, сохранившегося по п. 6, когда посеянные растения достигают стадии от 4 до 6 настоящих листьев, опрыскивают их раствором глуфосината в концентрации примерно 1,5 грамма на литр. Спустя некоторое время все растения, лишенные Pat гена, погибают в силу их чувствительности к этому гербициду. Оставшиеся гибриды (имеющие генотипы IgigPatPat и IgigPat-, встречающиеся в соотношении 1:2, сохраняют.
8. Выращивают растения, полученные на стадии 7.
9. После сбора урожая с растений, полученных на стадии 8, высевают по 20-30 семян с растения и проводят опрыскивание их глуфосинатом. Потомство, различающееся по чувствительности к гербициду, является гетерозиготным по гену Pat, и его выбраковывают. Потомство, проявляющее стабильную устойчивость к гербициду, происходит от искомого генотипа IgigPatPat (в рамке на фиг.2) и его сохраняют.
10. Потомство, полученное по п. 9, делится в соотношении 1:2:1 по генам IgIg, Igig и igig. Растения, имеющие генотип igig, проявляют мужскую стерильность и их используют для репродукции индуцирующей гаплоиды линии.
С этой целью проводят скрещивания между группой igig растений со стерильной пыльцой и сестринскими растениями с фертильной пыльцой. Скрещивания могут быть двух типов:
100% IgigPatPat, все растения с фертильной пыльцой, их выбраковывают.
100% IgigPatPat, все растения с фертильной пыльцой, их выбраковывают.
11. Посредством повторных скрещиваний по типу (б) получают неограниченное количество растений с генотипом igigPatPat, необходимых для высокоэффективного производства андрогенетических гаплоидов.
12. При опылении растений igigPatPat нормальной диплоидной популяцией или линией кукурузы все диплоидные, полученные половым путем потомки имеют генотип IgigPat, а все материнские гаплоиды либо двойные гаплоиды имеют фенотипы igPat и igigPatPat соответственно. Такие растения устойчивы к обработке глуфосинатом и могут таким образом быть идентифицированы и выбракованы. Только те гибриды, которые проявляют чувствительность к обработке гербицидом, являются искомыми андрогенетическими гаплоидами и спонтанными двойными гаплоидами, имеющими генотипы Ig и IgIg соответственно. Для того, чтобы выявить гербицид-чувствительные гаплоидные растения, а также двойные гаплоиды, гербицидом следует обрабатывать каждое отдельное растение, нанося его предпочтительно на кончики листьев, путем либо опрыскивания, либо намазывания в концентрации примерно 1,5 грамма глуфосината на литр. Чувствительные растения легко идентифицировать спустя несколько дней после обработки по некрозам и последующему усыханию верхушек листьев. Растения, повреждения которых локализованы только на верхушках листьев, развиваются дальше и являются фертильными, если происходит удвоение хромосом.
Пример 5. Использование констуитивно экспрессируемого гена Бета-глюкуронидазы в скрининге андрогенетических гаплоидов и двойных гаплоидов кукурузы
Повторяют пример 4, за исключением того, что Pat ген заменен геном, кодирующим бета-глюкоронидазу (GUS), которая способна расщеплять глюкуронид, в состав которого входит регулятор роста растений или другой компонент, который при отщеплении от глюкуронида становится хромогенным, флуорогенным, либо еще как-либо легко обнаруживаемым для специалиста соединением.
Повторяют пример 4, за исключением того, что Pat ген заменен геном, кодирующим бета-глюкоронидазу (GUS), которая способна расщеплять глюкуронид, в состав которого входит регулятор роста растений или другой компонент, который при отщеплении от глюкуронида становится хромогенным, флуорогенным, либо еще как-либо легко обнаруживаемым для специалиста соединением.
1. Ген GUS лучше всего экспрессировать с помощью эмбрион-специфического промотора, так как следует избегать экспрессии гена GUS в эндосперме. Это существенно в силу того, что андрогенетический гаплоид или двойной гаплоид может с определенной частотой развиваться в ассоциации с эндоспермом, который происходит от одного из женских биполярных ядер в овуле. Экспрессия GUS эндоспермом может, таким образом, маскировать неэкспрессирующий андрогенетический гаплоидный или двойной гаплоидный эмбрион и продуцировать ложный позитивный уровень GUS.
2. Igig генотипы на стадии 2 примера 4 трансформируют геном бета-глюкуронидазы вместо гена Pat, проводят скрининг на семенах по п.п. 7, 9 и 12 посредством нанесения небольшого надреза в перикарпе семени, чтобы дать возможность глюкуронидному субстрату диффундировать в эмбрион. В случае, когда глюкуронид содержит компонент, способный к флуоресценции, он отщепляется бета-глюкуронидазой от глюкуронида диплоидных эмбрионов и может быть идентифицирован по его флуоресценции из-за экспрессии интродуцированного GUS гена. Напротив, андрогенетические гаплоидные эмбрионы не имеют GUS и не будут флуоресцировать. В любом случае различия между разными типами клеток легко установить с помощью известных методов, включая авторадиографию и спектроскопию.
Пример 6. Использование доминантного селектируемого или скринируемого гена в качестве маркера в селекции гиногенетических гаплоидов и двойных гаплоидов кукурузы
В примерах 4 и 5 описывают способы получения андрогенетических ig-индуцируемых гаплоидов, в которых ig-линию, трансформированную Pat или GUS геном, используют в качестве материнских растений в скрещиваниях с селекционной линией. В данном случае повторяют примеры 4 и 5, за исключением того, что индуцирующую гаплоиды линию-опылитель трансформируют Pat или GUS геном и используют в качестве опылителя в скрещиваниях с селекционной линией.
В примерах 4 и 5 описывают способы получения андрогенетических ig-индуцируемых гаплоидов, в которых ig-линию, трансформированную Pat или GUS геном, используют в качестве материнских растений в скрещиваниях с селекционной линией. В данном случае повторяют примеры 4 и 5, за исключением того, что индуцирующую гаплоиды линию-опылитель трансформируют Pat или GUS геном и используют в качестве опылителя в скрещиваниях с селекционной линией.
Следует отметить, что изобретение не ограничено селекцией гаплоидов кукурузы (андрогенетических или гиногенетических), как описано выше, оно также может быть использовано в селекции гаплоидов у других растений, особенно культурных растений, содержащих гены индукции гаплоидов. Кроме того, любой удобный доминантный селектируемый или скринируемый ген может заменить гены Pat или GUS соответственно, и подобным же образом гены IaaH и Nia могут быть заменены любым удобным доминантным условно летальным геном.
Следует также отметить, что доминантные гены могут быть использованы в селекции гаплоидов на специфических стадиях развития. В этом отношении особенно существенно то, что указанные гены находятся под контролем промотора, функционирующего в эмбрионе, что обеспечивает возможность проводить селекцию гаплоидов на уровне зерен, а не целых растений (как описано ранее).
Claims (16)
1. Способ селекции гаплоидов и двойных гаплоидов растений, отличающийся тем, что линию, несущую ген индукции гаплоидов и гомозиготную по маркерному трансгену, используют для скрещивания с линией-производителем.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что маркерный ген является доминантным условно летальным трансгеном, продукт которого способен обеспечивать конверсию нелетальных или неингибирующих факторов в летальные или ингибирующие факторы.
3. Способ по п.1, отличающийся тем, что маркерный ген является доминантным селектируемым маркерным трансгеном, продукт которого способен обеспечить конверсию токсичного, ингибирующего или иным образом нарушающего метаболизм фактора в менее токсичный, ингибирующий в меньшей степени или нарушающий в меньшей степени фактор, или доминантным скринируемым маркерным трансгеном, продукт которого способен давать ткань, обладающую определенными фенотипическими характеристиками.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что при селекции гаплоидных и двойных гаплоидных андрогенетических растений линию, гомозиготную по маркерному трансгену и несущую признак индукции гаплоидов, используют в качестве женского родителя при скрещивании с линией-производителем.
5. Способ по п.4, отличающийся тем, что включает следующие стадии: а) трансформации растения, гетерозиготного по гену индукции гаплоидов, маркерным геном; б) самоопыления растений, отобранных на стадии а); в) удаления мужских стерильных растений из популяции растений, полученных на стадии б); г) самоопыления растений, оставшихся после стадии в); д) выбраковывания растений, полученных на стадии г); которые являются гомозиготными по доминантному гену индукции гаплоидов; е) отбора потомства, оставшегося после стадии д), содержащего маркерный ген; ж) самоопыления растений, выбранных на стадии е); з) отбора потомства, полученного на стадии ж), которое является гомозиготным по доминантному маркерному гену; и) скрещивания растений, полученных на стадии з), и отбора растений, которые являются гомозиготными по маркерному гену и гомозиготным по рецессивному гену индукции гаплоидов; к) опыления растения, полученных на стадии и), диплоидными растениями; и л) обнаружения или отбора гаплоидов и двойных гаплоидов андрогенетических растений, полученных на этапе к).
6. Способ по п. 1, отличающийся тем, что при селекции гаплоидных и двойных гаплоидных гиногенетических растений линию, гомозиготную по маркерному трансгену и несущую призрак индукции гаплоидов, используют в качестве линии-опылителя при скрещивании с линией-производителем.
7. Способ по п.4, отличающийся тем, что включает следующие стадии: а) скрещивания отобранного, полученного в результате инбридинга генотипа, способного индуцировать гиногенетические гаплоиды (линия-индуктор), в качестве женского родителя, с генотипом, гомозиготным по маркерному трансгену в качестве опыляющего растения, или же трансформации указанного отобранного генотипа маркерным геном и отбора стабильных трансформантов; б) обратного скрещивания растений, полученных на стадии а), с линией-индуктором; в) удаления растений, утративших маркерный ген, из потомства, полученного на стадии б); г) самоопыления некоторого числа растений, оставшихся после стадии в); д) удаления растений, утративших маркерный ген, из потомства, полученного на стадии г); е) скрещивания некоторого числа растений, которые не являются индукторами или маркерными растениями, в качестве материнских родителей, с соответствующим количеством растений, оставшихся после стадии д), в качестве опыляющих растений, и получение самоопыленных семян всех опыляющих родителей; ж) использование самоопыленных растений, полученных на этапе е), для скрининга опыляющих родителей на гомозиготность по маркерному гену, а также на способность к индукции гиногенетических гаплоидов; з) использования оставшихся самоопыленных семян, полученных от опыляющих родителей на стадии е), у которых гомозиготность по маркерному гену сочетается с удовлетворительной способностью к индукции гиногенетических гаплоидов, в качестве линии-опылителя, в скрещивании с линией-производителем; и) обнаружения или отбора гиногенетических гаплоидов и двойных гаплоидов из растений, полученных на стадии з).
8. Способ по п.7, отличающийся тем, что линия-опылитель имеет генотип, способный к индукции гиногенетических гаплоидов с частотой более чем 0,1%.
9. Способ по п.8, отличающийся тем, что частота составляет около 0,5%.
10. Способ по пп.1 - 7, отличающийся тем, что в качестве растения используют кукурузу.
11. Способ по п.10, отличающийся тем, что ген индукции гаплоидов является геном "неопределенного гаметофита" (ig).
12. Способ по любому из пп.1 - 11, отличающийся тем, что маркерный ген является условно летальным геном, который обеспечивает чувствительность к химическому соединению.
13. Способ по любому из пп.1 - 11, отличающийся тем, что маркерный ген является селектируемым маркерным геном, который обеспечивает устойчивость либо выносливость к гербициду или антибиотику, или скринируемым геном, кодирующим белок, способный расщеплять хромогенный или флуорогенный субстрат.
14. Способ по п.13, отличающийся тем, что гербицид выбран из группы, состоящей из глуфозината и глифозата.
15. Способ по п.12, отличающийся тем, что химическое соединение выбрано из группы, состоящей их хлората, нафтилацетамида и индол-3-ацетамида.
16. Способ по п.12, отличающийся тем, что летальный ген кодирует индолацетамидгидролазу (IaaH) либо нитратредуктазу (NR), селектируемый ген кодирует фосфинотрицинацетилтрансферазу (PAT), глифозатоксидоредуктазу (GOX) либо EPSPS, а скринируемый ген кодирует бета-глюкуронидазу.
Приоритет по пунктам:
06.07.1993 - по пп.1, 2, 4 - 12 и 15 - 16;
04.07.1994 - по пп.3 и 13 и 14.
06.07.1993 - по пп.1, 2, 4 - 12 и 15 - 16;
04.07.1994 - по пп.3 и 13 и 14.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| GB9313975.6 | 1993-07-06 | ||
| GB939313975A GB9313975D0 (en) | 1993-07-06 | 1993-07-06 | Improvements in or relating to organic compounds |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU94023241A RU94023241A (ru) | 1996-09-10 |
| RU2158502C2 true RU2158502C2 (ru) | 2000-11-10 |
Family
ID=10738383
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU94023241/13A RU2158502C2 (ru) | 1993-07-06 | 1994-07-04 | Способ селекции гаплоидов и двойных гаплоидов растений |
Country Status (13)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5639951A (ru) |
| EP (1) | EP0636310A1 (ru) |
| JP (1) | JPH07143829A (ru) |
| AU (1) | AU684076B2 (ru) |
| CA (1) | CA2127298A1 (ru) |
| CZ (1) | CZ290289B6 (ru) |
| GB (1) | GB9313975D0 (ru) |
| HU (1) | HU219135B (ru) |
| IL (1) | IL110208A0 (ru) |
| PL (1) | PL304110A1 (ru) |
| RU (1) | RU2158502C2 (ru) |
| SK (1) | SK79294A3 (ru) |
| ZA (1) | ZA944890B (ru) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2571927C2 (ru) * | 2009-10-06 | 2015-12-27 | Те Риджентс Оф Те Юниверсити Оф Калифорния | Создание гаплоидных растений и усовершенствование селекции растений |
Families Citing this family (34)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB9416763D0 (en) * | 1994-08-18 | 1994-10-12 | S & S Seeds Bv | Organic compounds |
| US5749169A (en) * | 1995-06-07 | 1998-05-12 | Pioneer Hi-Bred International, Inc. | Use of the indeterminate gametophyte gene for maize improvement |
| CN1219885C (zh) | 1998-12-22 | 2005-09-21 | 加拿大国家研究委员会 | 转基因植物及其生产方法 |
| GB2355459B (en) | 1999-11-29 | 2001-09-26 | Isis Innovation | A dominant conditional lethal genetic system |
| US6646264B1 (en) * | 2000-10-30 | 2003-11-11 | Monsanto Technology Llc | Methods and devices for analyzing agricultural products |
| WO2002052926A2 (en) * | 2001-01-05 | 2002-07-11 | Northwest Plant Breeding Co. | Methods for generating doubled haploid maize plants |
| US20020188965A1 (en) * | 2001-04-20 | 2002-12-12 | Zou-Yu Zhao | Methods of transforming plants |
| PT1499545E (pt) | 2002-04-04 | 2008-03-20 | Monsanto Technology Llc | Sistema automatizado de triagem, pesagem e recolha de matéria particulada |
| US20040210959A1 (en) * | 2003-03-19 | 2004-10-21 | Monsanto Technology Llc | A Novel Method for Production of Transformed Dihaploid Corn Plants |
| GB2404382B (en) | 2003-07-28 | 2008-01-30 | Oxitec Ltd | Pest control |
| CA2539935C (en) | 2003-09-23 | 2015-11-17 | Monsanto Technology Llc | High throughput automated seed analysis system |
| US7703238B2 (en) | 2004-08-26 | 2010-04-27 | Monsanto Technology Llc | Methods of seed breeding using high throughput nondestructive seed sampling |
| US7832143B2 (en) | 2004-08-26 | 2010-11-16 | Monsanto Technology Llc | High throughput methods for sampling seeds |
| EP1819212B1 (en) | 2004-08-26 | 2013-10-23 | Monsanto Technology, LLC | Automated testing of seeds |
| ATE516344T1 (de) * | 2005-05-24 | 2011-07-15 | Ca Nat Research Council | Verfahren zur herstellung von aus mikrosporen abgeleiteter doppelhaploider apiaceae |
| US8859846B2 (en) | 2005-09-21 | 2014-10-14 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Doubling of chromosomes in haploid embryos |
| GB2443186A (en) | 2006-10-25 | 2008-04-30 | Oxitec Ltd | Expression system for mediating alternative splicing |
| US7998669B2 (en) | 2006-03-02 | 2011-08-16 | Monsanto Technology Llc | Automated contamination-free seed sampler and methods of sampling, testing and bulking seeds |
| US8028469B2 (en) | 2006-03-02 | 2011-10-04 | Monsanto Technology Llc | Automated high-throughput seed sampler and methods of sampling, testing and bulking seeds |
| US20070214515A1 (en) * | 2006-03-09 | 2007-09-13 | E.I.Du Pont De Nemours And Company | Polynucleotide encoding a maize herbicide resistance gene and methods for use |
| RU2009102660A (ru) | 2006-06-28 | 2010-08-10 | Монсанто Текнолоджи Ллс (Us) | Установка и способ сортировки мелких предметов |
| BRPI0806864A2 (pt) | 2007-02-02 | 2014-04-29 | Pioneer Hi Bred Int | Método de seleção de embriões haplóides, método de desenvolvimento de uma linhagem indutora haplóide de milho transformada, método de produção de embriões haplóides e embriões diplóides não-viáveis em uma planta, método de seleção de embriões haplóides, linhagens indutoras haplóides de milho transgênico |
| BRPI0811990A2 (pt) | 2007-05-31 | 2014-09-23 | Monsanto Technology Llc | Separador de semente |
| AR069385A1 (es) | 2007-11-20 | 2010-01-20 | Monsanto Technology Llc | Sistema de obtencion de imagenes automatizadas para usar en la determinacion y/o cuantificacion de la presencia o infestacion de plagas en productos agricolas |
| US9842252B2 (en) | 2009-05-29 | 2017-12-12 | Monsanto Technology Llc | Systems and methods for use in characterizing agricultural products |
| US8916383B2 (en) | 2009-08-12 | 2014-12-23 | Pioneer Hi Bred International Inc | Apparatus and methods to gain access to and extract intact immature embryos from developing maize kernels or specific internal tissue or structures from one or more seeds |
| US8735690B2 (en) | 2010-06-04 | 2014-05-27 | The Regents Of The University Of California | Maize variety and method of production |
| GB2500113A (en) | 2012-03-05 | 2013-09-11 | Oxitec Ltd | Arthropod male germline gene expression system |
| GB201303932D0 (en) | 2013-03-05 | 2013-04-17 | Oxitec Ltd | Muscle actin promoter |
| CN103430826B (zh) * | 2013-08-09 | 2015-04-08 | 北京市农林科学院 | 五位一体品种选育方法 |
| GB2526867A (en) | 2014-06-05 | 2015-12-09 | Oxitec Ltd | Gene expression system |
| WO2018029534A1 (en) | 2016-08-12 | 2018-02-15 | Oxitec Ltd. | A self-limiting, sex-specific gene and methods of using |
| CN106359073A (zh) * | 2016-08-23 | 2017-02-01 | 吉林省农业科学院 | 孤雄诱导基因表达盒和孤雄诱导表达载体及其应用 |
| EP3606324A1 (en) | 2017-04-07 | 2020-02-12 | Limagrain Europe | Method for sorting corn kernels of a batch of corn kernels |
Family Cites Families (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4425737A (en) * | 1981-10-14 | 1984-01-17 | Agrigenetics Research Associates Limited | Methods for mutant selection in cereal crops |
| US4517763A (en) * | 1983-05-11 | 1985-05-21 | University Of Guelph | Hybridization process utilizing a combination of cytoplasmic male sterility and herbicide tolerance |
| US5180873A (en) * | 1985-04-16 | 1993-01-19 | Dna Plant Technology Corporation | Transformation of plants to introduce closely linked markers |
| NZ221375A (en) * | 1987-07-30 | 1990-09-26 | Nz Scientific & Ind Res | Hybrid seed production using a phytotoxic chemical to eliminate undesirable seeds |
| US5084082A (en) * | 1988-09-22 | 1992-01-28 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Soybean plants with dominant selectable trait for herbicide resistance |
| GB9014090D0 (en) * | 1990-06-25 | 1990-08-15 | Zaadunie Bv | Improvements in or relating to organic compounds |
-
1993
- 1993-07-06 GB GB939313975A patent/GB9313975D0/en active Pending
-
1994
- 1994-07-01 EP EP94810390A patent/EP0636310A1/en not_active Withdrawn
- 1994-07-01 US US08/269,701 patent/US5639951A/en not_active Expired - Fee Related
- 1994-07-01 CZ CZ19941611A patent/CZ290289B6/cs not_active IP Right Cessation
- 1994-07-01 SK SK792-94A patent/SK79294A3/sk unknown
- 1994-07-04 AU AU66134/94A patent/AU684076B2/en not_active Ceased
- 1994-07-04 RU RU94023241/13A patent/RU2158502C2/ru not_active IP Right Cessation
- 1994-07-04 CA CA002127298A patent/CA2127298A1/en not_active Abandoned
- 1994-07-04 PL PL94304110A patent/PL304110A1/xx unknown
- 1994-07-04 IL IL11020894A patent/IL110208A0/xx unknown
- 1994-07-05 JP JP6153336A patent/JPH07143829A/ja active Pending
- 1994-07-05 HU HU9402021A patent/HU219135B/hu not_active IP Right Cessation
- 1994-07-06 ZA ZA944890A patent/ZA944890B/xx unknown
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Муромцев Г.С. и др. Основы сельскохозяйственной биотехнологии. - М.: Агропромиздат, 1990. * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2571927C2 (ru) * | 2009-10-06 | 2015-12-27 | Те Риджентс Оф Те Юниверсити Оф Калифорния | Создание гаплоидных растений и усовершенствование селекции растений |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU94023241A (ru) | 1996-09-10 |
| PL304110A1 (en) | 1995-01-09 |
| AU6613494A (en) | 1995-01-19 |
| US5639951A (en) | 1997-06-17 |
| GB9313975D0 (en) | 1993-08-18 |
| CZ290289B6 (cs) | 2002-07-17 |
| CZ161194A3 (en) | 1995-07-12 |
| SK79294A3 (en) | 1995-01-12 |
| ZA944890B (en) | 1996-01-06 |
| CA2127298A1 (en) | 1995-01-07 |
| EP0636310A1 (en) | 1995-02-01 |
| IL110208A0 (en) | 1994-10-21 |
| HUT68797A (en) | 1995-07-28 |
| JPH07143829A (ja) | 1995-06-06 |
| HU9402021D0 (en) | 1994-09-28 |
| HU219135B (hu) | 2001-02-28 |
| AU684076B2 (en) | 1997-12-04 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2158502C2 (ru) | Способ селекции гаплоидов и двойных гаплоидов растений | |
| Kuckuck et al. | Fundamentals of plant breeding | |
| Fehr | Principles of cultivar development: theory and technique | |
| Poehlman | Breeding field crops | |
| JP2023153180A (ja) | トバモウイルスであるトマト褐色縮葉フルーツウイルス（ｔｂｒｆｖ）に対するソヌラム・リコペルシカム植物における耐性 | |
| US20200029524A1 (en) | Tomato variety nun 09247 tof | |
| Molenaar et al. | Production of doubled haploid lines for hybrid breeding in maize | |
| CN110381733A (zh) | 生产具有改进的种子萌发特性的种子的方法 | |
| Cengiz et al. | Development of doubled haploid maize lines by using in vivo haploid technique | |
| Ma et al. | Agronomic performance of lines derived from anther culture, maize pollination and single-seed descent in a spring wheat cross | |
| US20230276763A1 (en) | Resistance in plants of solanum lycopersicum to the tobrfv | |
| Kaur et al. | Inheritance of alloplasmic fertility restoration in eggplant (Solanum melongena L.) | |
| Degefa | Plant breeding methods: In brief for student | |
| CA2449434A1 (en) | Method of producing field corn seed and plants | |
| US20230389497A1 (en) | Methods for cereal crop hybrid test cross evaluation | |
| DeVerna et al. | Genetics of Lycopersicon | |
| US20180317417A1 (en) | Spinach variety nun 06202 sps | |
| Bome et al. | Theoretical and Applied Aspects of Mutations Induction for Improving Agricultural Plants | |
| US12016285B2 (en) | Higher-yielding proso | |
| US10779494B2 (en) | Carrot variety NUN 89853 CAC | |
| Bliss | Plant breeding, crop cultivars, and the nature of genetic variability | |
| Austin et al. | Induction and Characterization of Mutations Related to Dwarf Habit in Hardy Hibiscus (Muenchhusia section) | |
| Ortiz et al. | Dedication: Stanley J. Peloquin potato geneticist and cytogeneticist | |
| CA3091666A1 (en) | Tomato variety nun 09247 tof | |
| KR20240057449A (ko) | 열대 뿌리혹 선충 저항성 당근 식물 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20030705 |