RU2084531C1 - Штамм микромицета fusarium moniliforme - продуцент фитогормонов гиббереллинов а4, а7 - Google Patents

Штамм микромицета fusarium moniliforme - продуцент фитогормонов гиббереллинов а4, а7 Download PDF

Info

Publication number
RU2084531C1
RU2084531C1 RU9595116634A RU95116634A RU2084531C1 RU 2084531 C1 RU2084531 C1 RU 2084531C1 RU 9595116634 A RU9595116634 A RU 9595116634A RU 95116634 A RU95116634 A RU 95116634A RU 2084531 C1 RU2084531 C1 RU 2084531C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
gibberellin
fusarium moniliforme
micromycetes
producer
Prior art date
Application number
RU9595116634A
Other languages
English (en)
Other versions
RU95116634A (ru
Inventor
Г.С. Муромцев
Л.М. Краснопольская
Original Assignee
Фонд им.Е.Н.Мишустина
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Фонд им.Е.Н.Мишустина filed Critical Фонд им.Е.Н.Мишустина
Priority to RU9595116634A priority Critical patent/RU2084531C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2084531C1 publication Critical patent/RU2084531C1/ru
Publication of RU95116634A publication Critical patent/RU95116634A/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Область применения: биотехнология, микробиологическое производство регуляторов роста растений и касается нового штамма для производства гибереллинов A4, A7. Сущность изобретения: штамм микромицета Fusarium moniliforme выделен из моноспорового изолята штамма, отобранного из пораженного растения риса, путем регенерации протопластов. Штамм депонирован в ВКПМ под N F-446. Штамм синтезирует 400 - 700 мг гиббереллина A7 и 20 - 80 мг A4 в 1 л кукльтуральной жидкости за 8 - 10 дней глубинного культивирования.

Description

Предлагаемое изобретение относится к биотехнологии, в частности, к микробиологическому производству регуляторов роста растений и может быть использовано для получения фитогормонов гиббереллинов A4/A7 (ГА4 и УА7).
До настоящего времени в сельском хозяйстве широкое применение имел только ГА3 (гибберелловая кислота). Однако среди других гиббереллинов несомненный интерес для практики могут представлять ГА4 и ГА7. Среди последних наибольший интерес представляет ГА7, спектр действия которого намного шире, а физиологическая активность во многих случаях выше по сравнению с таковой ГА3 и ГА4. ГА7 высокоактивный эндогенный регулятор роста растений, играющий важную роль в гормональной регуляции роста и развития растений, применяемый в различных научно-исследовательских работах. Эти факторы, позволяют предположить, что гиббереллин А7 может найти широкое применение в сельском хозяйстве.
В мире производство ГА7 единственный способ его высокоэффективного, рентабельного производства.
Основой микробиологического способа получения является штамм продуцент. Известны продуценты гиббереллина А3 грибы вида Gibberella fujikuroi (Saw.) Wr. ), несовершенная стадия Fusarium moliforme (Sheld.) (Муромцев Г.С. Агнистикова В. Н. М. Наука, 1973; Kumor P.K.R. Lonsane B.K. Adv. Appl. Microbiol, 1989 Y. 34, P. 29 139), гиббереллина А4 грибы рода Sphaceloma (Rademacher W. Graebe J.G. Biochem. Biophys. Res. Commun, 1979, Y, 91, N. 1, P. 35 40; Kademacher W. Ph 1992, Y, 31, N. 12, P. 4155 - 4157). Продуцент гиббереллина А7 (микроорганизм, образующий в качестве основного метаболита гиббереллиновой природы гиббереллин А7 не известен, поэтому используют смеси ГА4/ГА7, в которых соотношение А47 сильно варьирует.
В связи с этим создание штаммов-продуцентов, синтезирующих преимущественно ГА7 является актуальным.
Техническим эффектом предполагаемого изобретения является штамм-продуцент ГА7, образующий ГА7 в качестве основного метаболита гиббереллиновой природы и характеризующийся высоким выходом фитогормона.
Технический эффект достигается за счет использования штамма гриба Fusarium moniliforme (Sheld.) F-446, выделенного из моноспорового изолята штамма, отобранного их пораженного растения риса, путем генерации протопластов. Получение штамма включало обработку протопластов УФ-светом.
Штамм депонирован во Всесоюзной коллекции промышленных микроорганизмов под N F-446 от 16.04.1990 г.
Штамм синтезирует 400 700 мг ГА7 в 1 л культуральной жидкости за 8 10 дней глубинного культивирования и 20 80 мг ГА4.
Заявленный штамм является первым полученным макропродуцентом ГА7, способным к преимущественному образования ГА7 и образующий ГА3 лишь в следовых количествах и ГА4 в незначительных количествах.
Культурально-морфологическая характеристика штамма гриба Fusarium moniliforme P-446
1. Рост на плотных средах
Штамм формирует колонии войлочного или ватного типа с хорошо развитым окрашивающимся с возрастом воздушным мицелием. Не образует экстрацеллюлярный пигмент и макроконидии.
На сусло-агаре культура быстрорастущая. Гриб образует субстратный и воздушный мицелий. Воздушный мицелий белый, пушистый. Колонии тяжистые, плотные, белые. Гриб образует микроконидии размером 4 18 х 5 4 мкм.
На картофельно-глюкозном (сахарозном) агаре воздушный мицелий развит от слабого до умеренного, плотный, прижатый к субстрату, белый. Субстрат не окрашен. Микроконидии одноклетные или с одной перегородкой, овальной формы. Спороношение не обильное. Микроконидии единичные с 2 3 перегородками, удлиненно-овальной формы.
На среде Ролен-Тома воздушный мицелий умеренно развитый, плотный, прижатый. От белого до слабо-фиолетового оттенков. Субстрат не окрашен. Единичные микроконидии, овальные, одноклетные. Макроконидии не отмечаются.
2. Физиолого-биохимические свойства
Строгий аэроб. Максимум роста на агаровых средах при 28oC. утилизирует источники: углерода глюкоза, сахароза, растворимый крахмал, растительные масла; азота сульфат аммония, нитрат аммония, мочевина. Периодически пересеваемая культура. Штамм хранится на косяках с КСА (КГА) в холодильнике при 4oC без пересевов в течение 1 2 месяцев. При ограничении доступа воздуха (пробки, залитые парафином) в течение 8-10 месяцев. Диссоциации при хранении не отмечается.
3. Погруженное культивирование
В погруженной культуре гриб растет равномерно, кашеобразно. Культуральная жидкость грязно-серого цвета.
Анализы HPLC (высокоэффективная хроматография) и ГХ-МС (газовая хромато-масс спектрометрия) показывает, что основным метаболитом штамма F-446 является ГА7. Гиббериллин А4 присутствует в культуральной жидкости штамма F-446 в качестве минорного метаболита (5-15%), гиббереллин А3 менее 3%
Для получения ГА7 штамм F-446 выращивали на скошенном картофельно-сахарном агаре или агаризованном солодовом сусле (7oB) в течение 20-24 дней при 28oC. Мицелиальную суспензию гриба в стерильной воде вносили в модифицированную жидкую посевную среду следующего состава (в масс.):
сахароза 3;
(NH4)2SO4 0,05;
CaCO3 0,7;
кукурузная или соевая мука 0,5;
pH перед стерилизацией 5,0-5,5.
Режим стерилизации 0,5 доб.атм. в течение 20 минут. Жидкий посевной материал выращивали в течение 46-48 часов в колбах на ротационной качалке 240 об/мин при 28oC. Затем его использовали для инокуляции колб с ферментационной средой в количестве 1/10 объема среды. Ферментационные среды содержали в качестве источника углерода растительное масло (6,0-8,0%), источника азота NH4NO3 (1,0%) или пептон (1,0%).
Солевая основа ферментационных сред (в масс.):
KH2PO4 0,1%
MgSO4 0,02%
pH нейтральный. Возможно добавление в среду кукурузного или дрожжевого автолизата (0,1) и 1 мл раствора смеси микроэлементов.
Ферментацию проводили на ротационной качалке 240 об/мин, в течение 8-10 дней при 28oC. Количество инокулюма 5-10% Содержание ГА7 в культуральной жидкости определяли с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии и ГХ-МС.
Пример 1.
Гриб Fusarium moniliform F-446 выращивали на скошенном картофельно-глюкозном агаре в течение 14 суток. В качестве посевной использовали среду с сахаром и кукурузной мукой (См. выше), pH перед стерилизацией 5,5, после стерилизации 6,0, режим стерилизации 0,5 доб. атм. в течение 20 минут. Выращивание посевного материала проводили на ротационной качалке 240 об/мин, при 28oC, в колбах на 500 мл.
Длительность культивирования гриба в посевной среде 46 часов, в ферментационной 10 суток (в тех же условиях).
Состав ферментационной среды (в масс.):
масло растительное 8
NH4NO3 0,1
дрожжевой автолизат (Serva) 0,1
KH2PO4 0,1
MgSO4 0,02
K2SO4 0,02
pH перед стерилизацией 5,8
В результате получена культуральная жидкость, содержащая 976 мг/л гиббереллинов, из которых 75% приходилось на долю А7, 13% на долю А4 и 3,6% на долю А3.
Пример 2.
Условия культивирования гриба Fusarium moniliforme F-446 по описанию, приведенному в примере 1. Для засева колб с ферментационной средой использовали 10-дневную культуру, выращенную на скошенном картофельно-глюкозном агаре. Длительность процесса ферментации 8 дней. Ферментационная среда содержала кукурузный экстракт в количестве 0,1 масс. Содержание ГА7 в культуральной жидкости составило 450 мг/л, ГА4 56 мг/л, ГА3 7 мг/л.
Пример 3.
Гриб Fusarium moniliforme F-446 выращивали в приведенных выше условиях на скошенном агаризованном солодовом сусле. Возраст культуры на твердой среде 10 дней, возраст посевного материала 48 часов. Длительность ферментации 10 дней.
Ферментационная среда содержала масло растительное и NH4NO3 и дрожжевой автолизат в количестве, соответствующем примеру 1.
Получена культуральная жидкость с содержанием ГА7 510 мг/л. Содержание ГА4 28 мг/л, ГА3 15 мг/л.
Пример 4.
Гриб Fusarium moniliforme F-446 выращивали на скошенном картофельно-сахарозном агаре в течение 7 суток. Выращивание посевного материала проводили на ротационной качалке в колбах на 500 мл (жидкая среда с сахарозой и кукурузной мукой) 48 часов при 27oC.
Ферментацию проводили в 100 л ферментере на среде с подсолнечным маслом (60 г/л), кукурузным экстрактом (35 г/л) и ацетатом аммония (0,57 г/л). Объем среды 50 л, объем жидкого посевного материала 3 л, продолжительность ферментации 7 суток.
Содержание ГА7 в культуральной жидкости составило 60% ГА4 25,6% ГА3 6,4%
Tаким образом, предлагаемый штамм гриба Fusarium moniliforme F-446, являющийся продуцентом фитогормона гиббереллина А4/A7, характеризуется преимущественным образованием ГА7.

Claims (1)

  1. Штамм микромицета Fusarium moniliforme ВКПМ F-446 продуцент фитогормонов гиббереллинов A4, A7.
RU9595116634A 1995-09-27 1995-09-27 Штамм микромицета fusarium moniliforme - продуцент фитогормонов гиббереллинов а4, а7 RU2084531C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU9595116634A RU2084531C1 (ru) 1995-09-27 1995-09-27 Штамм микромицета fusarium moniliforme - продуцент фитогормонов гиббереллинов а4, а7

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU9595116634A RU2084531C1 (ru) 1995-09-27 1995-09-27 Штамм микромицета fusarium moniliforme - продуцент фитогормонов гиббереллинов а4, а7

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2084531C1 true RU2084531C1 (ru) 1997-07-20
RU95116634A RU95116634A (ru) 1997-09-10

Family

ID=20172416

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU9595116634A RU2084531C1 (ru) 1995-09-27 1995-09-27 Штамм микромицета fusarium moniliforme - продуцент фитогормонов гиббереллинов а4, а7

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2084531C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107177659A (zh) * 2017-05-08 2017-09-19 浙江钱江生物化学股份有限公司 一种发酵法生产赤霉素a7的方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Авторское свидетельство СССР N 257403, кл. C 12 P 27/00, 1969. 2. DE, патент N 1668286, кл. C 12 P 27/00, 1969. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107177659A (zh) * 2017-05-08 2017-09-19 浙江钱江生物化学股份有限公司 一种发酵法生产赤霉素a7的方法
CN107177659B (zh) * 2017-05-08 2021-01-29 浙江钱江生物化学股份有限公司 一种发酵法生产赤霉素a7的方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Harper et al. An experimental analysis of the coprophilous fungus succession
Lee et al. Production of red pigments by Monascus purpureus in submerged culture
Hasan Gibberellin and auxin-indole production by plant root-fungi and their biosynthesis under salinity-calcium interaction
KR960016874B1 (ko) 미생물에 의한 트랜스-4-히드록시-l-프롤린의 제조방법
US5212078A (en) Process for producing a lactone
RU2084531C1 (ru) Штамм микромицета fusarium moniliforme - продуцент фитогормонов гиббереллинов а4, а7
CN1111605C (zh) 发酵生产维生素b6
Rosfarizan et al. Isolation of a kojic acid‐producing fungus capable of using starch as a carbon source
DE2915108C2 (de) Verfahren zur Epoxydation von C↓2↓-C↓4↓-n-Alkenen, Butadien oder deren Gemischen
US3880717A (en) Method of cultivating microorganisms
RU2220590C1 (ru) Способ получения кормового белкового продукта на основе зернового сырья
Lee et al. Rapid growth of a thermotolerant yeast on palm oil
JPH0449396B2 (ru)
RU2096461C1 (ru) Штамм дрожжей yarrowia lipolytica - продуцент лимонной кислоты и способ получения лимонной кислоты
RU2085078C1 (ru) Штамм микромицета cersospora sp.- продуцент фитогормона абсцизовой кислоты
JP2802588B2 (ja) 微生物の生物学的に純粋な培養物、並びにそれを用いるジオール製造方法および環状エーテル製造方法
RU2001949C1 (ru) Штамм гриба TRICHODERMA REESEI - продуцент целлюлолитических ферментов
Aoyagi et al. Preparation of mixed alginate elicitors with high activity for the efficient production of 5′-phosphodiesterase by Catharanthus roseus cells
Tittabutr et al. Cassava as a cheap source of carbon for rhizobial inoculant production using an amylase-producing fungus and a glycerol-producing yeast
Cappellini et al. Sporulation of Gibberella zeae. II. The effects of pH on macroconidium production
JP3512899B2 (ja) ハタケシメジの人工栽培方法
RU2126831C1 (ru) Штамм гриба pleurotus ostreatus - продуцент белковой биомассы
SU1643608A1 (ru) Штамм гриба АLLеSснеRIа теRRеSтRIS - продуцент целлюлаз
JPH05111388A (ja) シス−4−ヒドロキシ−l−プロリンの製造法
RU2092548C1 (ru) Штамм гриба pleurotus ostreatus - продуцент белковой биомассы