RO128587A2 - Vitroplantule de dud inoculate cu endomicorize de tip vezicular-arbuscular destinate cultivării solurilor contaminate cu plumb şi procedeu de obţinere - Google Patents

Vitroplantule de dud inoculate cu endomicorize de tip vezicular-arbuscular destinate cultivării solurilor contaminate cu plumb şi procedeu de obţinere Download PDF

Info

Publication number
RO128587A2
RO128587A2 ROA201100916A RO201100916A RO128587A2 RO 128587 A2 RO128587 A2 RO 128587A2 RO A201100916 A ROA201100916 A RO A201100916A RO 201100916 A RO201100916 A RO 201100916A RO 128587 A2 RO128587 A2 RO 128587A2
Authority
RO
Romania
Prior art keywords
mulberry
vesicular
arbuscular
vitroplantules
dose
Prior art date
Application number
ROA201100916A
Other languages
English (en)
Other versions
RO128587B1 (ro
Inventor
Cristiana Diaconescu
Doina Tănase
Maria Ichim
Laura Urdeş
Georgeta Diniţă
Răzvan Popa
Adriana Vişan
Liviu-Ionel Ichim
Ramona Enache
Original Assignee
Universitatea De Ştiinţe Agronomice Şi Medicină Veterinară Din Bucureşti
Bioing S.A.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Universitatea De Ştiinţe Agronomice Şi Medicină Veterinară Din Bucureşti, Bioing S.A. filed Critical Universitatea De Ştiinţe Agronomice Şi Medicină Veterinară Din Bucureşti
Priority to ROA201100916A priority Critical patent/RO128587B1/ro
Publication of RO128587A2 publication Critical patent/RO128587A2/ro
Publication of RO128587B1 publication Critical patent/RO128587B1/ro

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Prezenta invenţie se referă la un material săditor, constând din vitroplantule de dud colonizate cu endomicorize de tip vezicular-arbuscular, la minimum 15% din masa radiculară, care păstrează caracteristicile genetice ale formelor parentale, dar prezintă parametri bioproductivi superiori şi toleranţă fiziologică pe solurile contaminate cu plumb. Invenţia se referă, de asemenea, la un procedeu de obţinere a materialului săditor constând din multiplicareaa explantelor nodale rezultate din lăstarii stimulaţi ai mugurilor dorminzi, utilizând mediul de cultură MS, hormonii de multiplicare BAP şi KIN, hormonul de înrădăcinare IBA, după care vitroplantulele sunt inoculate cu inocul brut, provenit din biomasa radiculară a porumbului sau a plantelor de ceapă, sau cu biofertilizanţi comerciali, colonizarea este controlată şi vitroplantulele colonizate sunt selectate din câmpul de replicare.

Description

VITROPLANTULE DE DUD INOCULATE CU ENDOMICORIZE DE TIP VEZICULAR-ARBUSCULAR DESTINATE CULTIVĂRII SOLURILOR CONTAMINATE CU PLUMB ȘI PROCEDEU DE OBȚINERE
AUTORI: Diaconescu Cristiana, Tanase Doina, Ichim Maria, Urdes Laura, Dinita Georgeta, Popa Razvan, Visan Adriana, Ichim Liviu-Ionel, Enache Ramona
Domeniul tehnic la care se refera invenția: Agricultura
Invenția se referă la obținerea unui nou material săditor de dud prin metode biotehnologice, acesta urmând a fi utilizat pentru cultivare pe solurilor contaminate cu plumb și pentru practicarea sericiculturii, respectiv pentru obținere gogoșilor de mătase de la specia Bombyx mori L. destinate industriei textile.
Stadiul actual al tehnicii:
Plantele de dud aparținând genului Morus sunt considerate plante cu importanță economică pentru sericicultură, frunza de dud constituind unica sursă de hrană a viermilor de mătase din specia Bombyx mori. Din punct de vedere botanic plantele de dud aparțin diferitelor specii din genul Morus, fiind plante unisexuat dioice, înmulțite pe cale vegetativă sau sexuată.
Valorificând totipotența celulelor și țesuturilor meristematice ale plantelor de dud în scopul clonării in vitro s-au obținut rezultate pozitive men ionate zn lucrări internaționale și naționale.
Pentru îmbunătățirea parametrilor bioproductivi ai vitroplantulelor de dud s-a luat in considerare biofertilizarea acestora cu endomicorize de tip vezicular arbuscular, rezultatele experimentale fiind extrem de încurajatoare pentru cultura dudului in România și care permit utilizarea pentru prima dată in țara noastră a acestui tip de material săditor.
Asociațiile de tip vezicular arbuscular sunt cele mai răspândite tipuri de micorize prezente in sistemele agricole, ceea ce explică interesul crescut in manipularea lor pentru a fi incorporate în practicile de producție.
Inocularea cu endomicorize vezicular-arbusculare constituie o metodă de cultivare cu efecte benefice in scopul reducerii aplicării de fertilizând chimici și de pesticide, ca
O 1 1 - O O 9 1 6 - t 9 -09' 2011 element cheie in abordările durabile din agricultură și horticultură;se știe că micorizele sunt capabile să colonizeze diferite habitate, succesul lor ecologic reflectând un grad ridicat de diversitate a capacităților genetice și fiziologice ale fungilor endofiti. Aproape 6.000 de specii de fungi dintre Zygo-, Asco- si Basidiomicete au fost identificate ca micorizale, iar odată cu dezvoltarea tehnicilor moleculare noi specii micorizale și noi tipuri de asociații sunt descrise pe baza amprentării ADN.
Efectul major al simbiozelor micorizale asupra plantelor gazdă constă în creșterea aportului de elemente minerale, în special al celor care în stare ionică prezintă o mobilitate redusă sau care sunt prezente in concentrații suboptimale (fosfor, amoniu, zinc,cupru, inclusiv contaminanti precum plumbul). Micorizele ajută plantele gazdă să reziste la stresul abiotic prin ameliorarea deficienței nutrienților, contribuie la creșterea toleranței la secetă, salinitate și la poluare, inclusiv cu metale grele precum plumbul.
Importanța cercetărilor care fac obiectul invenției:
Potențialul biosintetic al rădăcinilor de la dud este puțin studiat pe plan mondial, fapt ce evidențiază importanța cercetărilor inițiate pe plan național privind stabilirea de clone in condiții “in vitro” și experimentarea biofertilizarii cu endorize vezicii lararbuseulare a vitroplantulelor și a plantulelor de dud.
Combinarea efectului fungilor de micorize privind ecosistemul plantă sol. la vitroplantele de dud creează premiza utilizării cu succes a acestora in fitoremediere, adică în procesul de detoxifierea a mediului poluat cu ajutorul acestor plante, abordare biotehnologică de mare perspectivă.
Obiectivele invenției:
Principalul obiectiv al invenției a constat în obținerea unui nou material săditor de dud. printr-un procedeu biotehnologic, sub formă de vitroplantule de dud inoculate cu endomicorize de tip vezicular arbuscular destinate solurilor contaminate cu plumb.
Avantajele invenției:
-Noul tip de material săditor de dud prezintă o rezistență sporită la agenții patogeni specifici;
-Sistemul radicular al acestui material săditor permite o mobilizare și o absorbție mai bună a macro și micro elementelor din sol, inclusiv a unor metale grele imobilizate in particulelor de sol, realizând astfel și decontaminarea solurilor la nivele optime de (λ’2 0 1 1 - 0 0 9 1 6 -1 9 -D9- 2011 conținut.
-Noul tip de material săditor de dud permite valorificarea terenurilor contaminate cu metale grele(zinc, cupru, plumb) necesare agriculturii, respectiv sericiculturii.
-Cercetările recente au abordat aspecte privind înființarea unor plantații de dud cu destinație sericicola pe terenurile contaminate cu plumb, ce permit valorificarea economica a acestora prin includerea in circuitul agricol;
-Cercetările efectuate de către autorii invenției au condus la obținerea unui material săditor de dud cu toleranță fiziologică totală pe solurile contaminate cu plumb.
Etapele invenției:
Realizarea invenției consta în parcurgerea următoarelor etape de execuție:
Λ Realizarea vitroplantulelor de dud ;
Λ Obținerea inocului endomicorizal de tip vezicular arbuscular sub formă de inocul brut provenit din biomasa radiculara a plantelor de Zea mays sau Alluium cepa. sau sub forma de inocul comercial;
Λ Realizarea de vitroplantule de dud inoculate cu endomicorize de tip vezicular arbuscular si repicarea acestora;
Λ Controlul colonizării prin metoda de colorare cu Tryphan blue , selecția vitroplantulelor de dud inoculate cu endomicirize vezicular arbusculare din cîmpul de repicare și suprainocularea materialului săditor de dud necolonizat,.
Prezentarea detaliată a modului de realizare a invenției:
Realizare vitroplantulelor de dud cuprinde parcurgerea unui procedeu de lucru laborios.
Biotehnologiile de multiplicare a plantelor de dud fac referire la obținerea de vitroplantule prin culturi de țesuturi, meristeme și in ultima perioadă de timp prin culturi de celule.Formule nutritive pentru mediile de cultură au fost standardizate ,fiind stabilite pe baza unor testări privind tipul și concentrațiile diferitelor substanțe constitutive în funcție de procesul morfogenetic ce urmează să fie indus.
Pentru multiplicare in vitro a plantelor de dud este utilizat mediul bazai Murashige Skoog (1962), bogat in azot, care s-a dovedit a asigura la nivel optim elementele nutritive pentru dezvoltarea explantelor cultivate. Acest mediu bazai constituie formula nutritivă (χ-2 0 1 1 - 0 0 9 1 θ-1 9 -09- 2011 optimă pentru inițierea culturilor de meristeme și de apexuri.
Multiplicare in vitro a plantelor de dud se face având drept sursă de explante lăstari vegetativi obținuți din muguri dorminzi de iarnă , stimulați să intre in vegetație.
Procedeul de lucru parcurge următoarele etape:
-Obținerea sursei de explante se realizează prin forțarea lăstarilor lignificați recoltați în perioada noiembrie-decembrie din colecția sau plantația de dud, perioadă de repaos vegetativ. Forțarea se realizează prin simularea condițiilor de dezmugurire, prin amplasarea acestor lăstari în vase cu apă de robinet si asigurarea unei temperaturi ambientale de 24-25°C. După 60 de zile din mugurii dorminzi se vor dezvolta apical lăstarii erbacei care vor constitui sursa de explante ;
-Sterilizarea materialului vegetal constă într-o operație de spălare cu apă normală de robinet (presterilizare) a lăstarilor ,necesară pentru eliminarea mecanică a unor contaminanți; Lăstarii erbacei sunt tăiați în bucăți de cea. l,5-2,0cm fiecare conținând un mugure axilar care va deveni un explant nodal,rezultînd totdodată și explante apicale. Sterilizarea efectivă se realizează cu HgCL2 in concentrație de 0,03 % timp de 30 de minute , explantele nodale fiind amestecate în continuu în această soluție , după care sunt spălate cu apă distilată timp de 10 min a câte 3 reprize. Sterilizarea poate fi realizată și prin utilizarea unei soluții de 3-5 % de hipoclorit de potasiu (produsul comercial Domestos).
-Inițierea culturii primare (inocularea) are loc în condiții aseptice la hota de flux laminat. Mediul de cultură utilizat este de tip Murashige - Skoog cu 0,8 % agar, distrubuit în vase de cultură tip “baby food mediul de cultură fiind suplimentat cu hormoni de multiplicare ( benzinaminopurina BAP si kinetina KIN) în următoarea combinație de dozaj:
lmg/1 BAP + 1 mg/1 KIN pentru soiurile de dud ce emit ușor rădăcini advemtive mg/l BAP + 2 mg/1 KIN pentru soiurile de dud reticente Vasele de cultură precum și mediul de cultură sunt sterilizate prin autoclavare realizată la 121 °C și la o presiune de 1,1-1,2 atm ^2011-0091^-1 9 -09- 2011 înainte de autoclavare mediului bazai trebuie să i se corecteze pH-ul la valori de 5.65,8.
După inoculare (așezarea explantelor nodale in vasele de cultură sterilizate pe mediul de cultură cu respectarea polarității normale) vasele de cultură sunt sterilizate prin flacără și opturate cu rola parafilm, fiind trecute în camera de creștere.
-Incubația culturii inițiale-multiplicarea constă în transferarea în camera de incubare (de creștere) a vaselor de cultură pentru o perioadă de 15 zile la o temperatură de 2528°C, iluminată arificial, cu o fotoperioadă de 16 : 8, la o intensitate de 3000 lux, utilizînd un temporizator; incubația culturii durează 15-21 zile.
-Subcultivarea : este necesară pentru obținerea clonelor de la același apex in condițiile utilizării apexurilor caulinare și constă în transferarea de la cultura inițială a unor explante în vase de cultură cu mediu proaspăt.
-înrădăcinarea și regenerarea plantelor autonome se realizează atunci când lăstarii dezvoltați în vasele de cultură ating lungimea de 2,5-3,0 cm și are drept scop obținerea radicelelor prin schimbarea mediului de cultură la care formula rămâne neschimbată (cu excepția agarului care nu se mai adaugă),mediul de cultura fiind lichid. Menținerea vitroplantulelor în mediul de cultură lichid se realizează prin utilizarea unor punți mici de hîrtie de filtru. înrădăcinarea fiind asigurată prin suplimentarea mediului de cultură cu hormonul IBA (acidul indolilbutiric) în concentrație de 1 mg /1. Condițiile de mediu, de temperatură și lumină se păstrează la aceeași parametri. Primele proimordii radiculare apar la un interval de 10-15 zile de la trecerea pe mediul de cultură lichid.
-Aclimatizarea este stadiul in care plantele sunt transferate în vase de cultură cu apă de robinet după ce în prealabil au fost bine spălate de resturile mediului de cultură; Acest stadiu ex situ este necesar pentru fortificarea sistemului radicular și adaptarea sistemului foliar al plantulelor la un conținut de umiditate scăzut al mediului ambiant, pentru depășirea așa numitului ”șoc de aclimatizare ‘. După o perioadă de 15 zile plantulele sunt transferate în ghivece care conțin un substrat de cultură solid format din pământ de țelină, mraniță și nisip în proporție de 1:1:1 cu un pH de 5,8; Substratul solid folosit pentru transferul vitroplantulelor trebuie autoclavat (tratament profilactic). în condiții de microclimat optim vitroplantulele de dud se vor lignifica ,în vederea repicării. după o
-“2 0 1 1 - 0 0 9 1 6 -1 9 -09- 2011 /
perioadă minimă de 90 de zile.
Obținerea inoculilor endomicorizali de tip vezicular-arbuscular se realizează procedînd astfel pentru inoculul brut:
Din parcelele cultivate cu porumb sau ceapă, se recoltează biomasa radiculară a plantelor, pe o adîncime a solului de 20 - 30 cm. urmînd a fi condiționată prin mărunțirea materialului vegetal, cu ajutorul unei mori cu ciocănele, inclusiv a particulelor de sol aderente , urmată de omogenizarea cu ajutorul unui melc transportor. Perioada optimă pentru recoltarea biomasei radiculare este în fenofaza de postrecoltare a producției principale. Inoculul brut astfel obținut se păstrează în condiții de depozitare cu umiditate relativă a aerului de maximum 60% , fără pericol de mucegai sau de rozătoare. Forma de prezentare poate fi vrac sau în saci de 50 kg.
Utilizarea biomasei radiculare de porumb sau ceapă asigură un inocul brut de endomicorize de tip vezicular- arbuscular sigur , dar pentru siguranță , înainte de utilizare, se procedează la controlul acestuia , prin metoda de colorare Trypan blue.
Biofertilizarea vitroplantulelor de dud cu endomicorize se poate realiza și prin folosirea unor biofertilizanți comerciali,specializați pentru tipul vezicular-arbuscular.
Realizarea vitroplantulelor de dud inoculate cu endomicorize de tip vezicular - arbuscular și repicarea acestora cuprinde lucrările de obținere a substratului de repicare format din pămînt de țelină , mraniță și nisip, în proporții egale, ce se sterilizează prin autoclavare la temperatura de 110°C , timp de 60 de minute. După răcire substratul de repicare este amestecat cu inoculul brut în doză de 50 grame/ 1000 grame amestec de substrat sau în doză de 30 mg inocul comercial/ 1000 grame de substrat. Biofertilizanții comerciali conțin flora activă și linii selectate ale fungiilor de Glomus mosseae, G. fasciculatum si Sclerocystis sp.
Substratul de repicare inoculat se pune în cutii de repicare sau se modelează în brazde de repicare,cu o înălțime mimimă de 40 cm. Plantulele de dud se repică în substratul biofertilizat, asigurînd o densitate de 100 plantule / mp., perioada de inoculare fiind de 45 -50 zile,. Lucrările de îngrijire executate în această perioadă sunt plivitul, respectiv prășitul și udarea sau irigarea. Perioada de repicare poate fi prelungită pentru întreaga perioada de vegetație, dacă se utilizează inaculul comercial.
Controlul colonizării și selecția vitroplantulelor de dud inoculate se realizează /-2011-00916-1 9 -09- 2011 prin aplicarea metodei de colorare cu Trypan blue.
Controlul și selecția vitroplantulelor de dud inoculate prin această metodă se aplică prin control randomizat pe diagonala cîmpului de repicare la un număr minim de plante/ 1000 vitroplantule.
Vitroplantulele de dud necolonizate se vor suprainocula prin administrarea inocului brut sau comercial în dozele menționate, în zona radiculară a fiecărei plantule,toate plantele urmînd a fi udate zilnic, timp de 7 zile, apoi udările următoare devenind săptămînale . Suprainocularea se poate repeta de cel mult 3 ori,.la sfirșitui perioadei de vegetație, existența unui număr de 10% de plante de dud necolonizate fiind în limite normale.
Caracteristicile genetice ale plantulelor de dud colonizate sunt identice cu formele parentale, iar conținutul de proteină a crescut, fiind de peste 28,5% comparativ cu o medie de 26,5%} la vitroplantulele fără endomicorize. Vitroplantulele de dud colonizate cu endomicorize au prezentat o rată de supraviețuire de 100°% pe substrat contaminat cu plumb, manifestînd o toleranță fiziologică totală.
Modul de aplicare industrială a invenției:
Biotehnologiile utilizate pot fi aplicate în toate laboratoarele și centrele de biotehnologii la scară industrială. Rezultatele cercetărilor care au permis obținerea noului tip de material săditor de dud s-au testat în condiții de producție industrială obtinîndu-se un număr de peste 10.000 vitroplantule de dud inoculate cu endomicorize de tip vezicular arbuscular, pe durata unei luni normale de lucru. Toate terenurile contaminate cu plumb pot fi cultivate cu noul tip de material săditor de dud pentru practicarea sericiculturii, activitate agricolă nealimentară.
(ξ- 2 Ο 1 1 - 0 0 9 1 6 -1 9 -09- 2011
QJ
VITROPLANTULE DE DUD INOCULATE CU ENDOMICORIZE DE TIP VEZICULAR-ARBUSCULAR DESTINATE CULTIVĂRII SOLURILOR CONTAMINATE CU PLUMB ȘI PROCEDEU DE OBȚINERE
AUTORI: Diaconescu Cristiana, Tanase Doina, Ichim Maria, Urdes Laura, Dinita
Georgeta, Popa Razvan, Visan Adriana, Ichim Liviu-Ionel, Enache Ramona

Claims (1)

  1. REVENDICĂRI A Produs sub forma unui nou material săditor de dud , reprezentat de vitroplantule de dud colonizate cu endomicorize vezicular-arbusculare la un număr minim de 15% din biomasa radiculară, cu caracteristici genetice identice ale formelor parentale,dar cu parametri bioproductivi superiori și toleranță fiziologică pe solurile contaminate cu plumb.
    A Procedeul de obținere conform invenției constă în multiplicarea in vitro a explantelor nodale rezultate din lăstarii stimulați ai mugurilor dorminzi, utilizînd mediul de cultură MS, hormonii de multiplicare BAP în doză de lmg/1 și KIN în doză de l-2mg/l, hormonul de înrădăcinare IBA în doză de lmg/1, inocularea vitoplantulelor cu inocul brut provenit din biomasa radiculară a porumbului sau a plantelor de ceapă,în doza de 5Og/IOOOg substrat sau a unor biofertilizanți comerciali în doză de 30mg/1000g substrat, contolul colonizării prin metoda Trypan blue și selecția vitroplantulelor colonizate din cîmpul de repicare.
ROA201100916A 2011-09-19 2011-09-19 Vitroplantule de dud - morus sp. inoculate cu endomicorize de tip vezicular-arbuscular destinate cultivării solurilor contaminate cu plumb şi procedeu de obţinere RO128587B1 (ro)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA201100916A RO128587B1 (ro) 2011-09-19 2011-09-19 Vitroplantule de dud - morus sp. inoculate cu endomicorize de tip vezicular-arbuscular destinate cultivării solurilor contaminate cu plumb şi procedeu de obţinere

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA201100916A RO128587B1 (ro) 2011-09-19 2011-09-19 Vitroplantule de dud - morus sp. inoculate cu endomicorize de tip vezicular-arbuscular destinate cultivării solurilor contaminate cu plumb şi procedeu de obţinere

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RO128587A2 true RO128587A2 (ro) 2013-07-30
RO128587B1 RO128587B1 (ro) 2016-02-26

Family

ID=48868826

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ROA201100916A RO128587B1 (ro) 2011-09-19 2011-09-19 Vitroplantule de dud - morus sp. inoculate cu endomicorize de tip vezicular-arbuscular destinate cultivării solurilor contaminate cu plumb şi procedeu de obţinere

Country Status (1)

Country Link
RO (1) RO128587B1 (ro)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104255249A (zh) * 2014-09-17 2015-01-07 酒泉下河清生态农业有限公司 一种蛋白桑树的种植方法

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104255249A (zh) * 2014-09-17 2015-01-07 酒泉下河清生态农业有限公司 一种蛋白桑树的种植方法

Also Published As

Publication number Publication date
RO128587B1 (ro) 2016-02-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Huang et al. Mycorrhizal roles in plant growth, gas exchange, root morphology, and nutrient uptake of walnuts.
CN107711290B (zh) 菌根食用菌共生苗的培养基及其同步培养方法
CN102204473A (zh) 以含猕猴桃枝条/枝干成分的培养基栽培可食性菌类的方法
Wen et al. Efficient protocols for the micropropagation of tree peony (Paeonia suffruticosa ‘Jin Pao Hong’, P. suffruticosa ‘Wu Long Peng Sheng’, and P.× lemoinei ‘High Noon’) and application of arbuscular mycorrhizal fungi to improve plantlet establishment
CN103858771B (zh) 一种玉米转基因组培苗的移栽方法
CN105104076A (zh) 一种加速工厂化茶苗生长的方法
ES2364684B1 (es) Procedimiento de obtención de un agente micorrizógeno.
Yadav et al. A reliable protocol for micropropagation of Gloriosa superba L.(Colchicaceae)
CN110771425A (zh) 一种羊肚菌工厂立体栽培方法
RO128587A2 (ro) Vitroplantule de dud inoculate cu endomicorize de tip vezicular-arbuscular destinate cultivării solurilor contaminate cu plumb şi procedeu de obţinere
Emara et al. Role of mycorrhiza as biofertilization of banana grand naine on nursery stage
Ridgway et al. Optimising the medium for producing arbuscular mycorrhizal spores and the effect of inoculation on grapevine growth
CN102613075A (zh) 濒危蕨类植物水蕨的繁育方法
ES2706099B2 (es) Nueva cepa de Trichoderma aggressivum fsp europaeum, composiciones y aplicaciones de la misma
Khalil et al. Effects of different nutrient solution formulations supplemented with willow bark or juvenile branches decoction on growth of Coleus plants
Parya Effect of integrated plant nutrient system for gerbera flower production under protected cultivation
RU2206976C2 (ru) Способ размножения оздоровлённых растений картофеля
CN108464207A (zh) 一种提高水稻组培苗移栽成活率的培养方法
JP6384087B2 (ja) 植物の栽培方法
Manuel et al. Preliminary evaluation of the potential of macromycetes as mediators in bio-hardening of orchid plantlets
Lal et al. Clonal propagation and hardening of epiphytic orchids (Aerides multiflora and Rhyncostylis retusa) for sustainable conservation and utilization
CN108371101A (zh) 一种马铃薯仔薯的诱导繁殖培养基及应用方法
Zaprianova et al. Micropropagation of Angelonia angustifolia from stem explants
Machado et al. Mycorrhizal synthesis between Lactarius deliciosus and Arbutus unedo under nursery conditions
JP2011168532A (ja) 植物芽発酵液と枯草菌からなる植物栽培用組成物、および植物栽培方法