PL243656B1 - Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury - Google Patents

Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury Download PDF

Info

Publication number
PL243656B1
PL243656B1 PL425775A PL42577518A PL243656B1 PL 243656 B1 PL243656 B1 PL 243656B1 PL 425775 A PL425775 A PL 425775A PL 42577518 A PL42577518 A PL 42577518A PL 243656 B1 PL243656 B1 PL 243656B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
leu
lipopeptides
linear
activated carbon
surfactin
Prior art date
Application number
PL425775A
Other languages
English (en)
Other versions
PL425775A1 (pl
Inventor
Marek Kułażyński
Marcin ŁUKASZEWICZ
Marcin Łukaszewicz
Hanna FAŁTYNOWICZ
Hanna Fałtynowicz
Original Assignee
Boruta Zachem Biochemia Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Boruta Zachem Biochemia Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia filed Critical Boruta Zachem Biochemia Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia
Priority to PL425775A priority Critical patent/PL243656B1/pl
Priority to PCT/IB2019/054480 priority patent/WO2019229690A2/en
Priority to BR112020023776-0A priority patent/BR112020023776A2/pt
Priority to CN201980036100.0A priority patent/CN112262151B/zh
Priority to EP19746144.5A priority patent/EP3802561A2/en
Priority to JP2020566585A priority patent/JP7058767B2/ja
Priority to CA3105671A priority patent/CA3105671A1/en
Priority to US17/059,403 priority patent/US11884745B2/en
Priority to KR1020207036988A priority patent/KR20210018852A/ko
Publication of PL425775A1 publication Critical patent/PL425775A1/pl
Publication of PL243656B1 publication Critical patent/PL243656B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/12General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by hydrolysis, i.e. solvolysis in general
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K7/00Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/04Linear peptides containing only normal peptide links
    • C07K7/06Linear peptides containing only normal peptide links having 5 to 11 amino acids
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D15/00Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
    • B01D15/08Selective adsorption, e.g. chromatography
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
  • External Artificial Organs (AREA)

Abstract

Przedmiotem zgłoszenia jest sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury. Sposób ten charakteryzuje się tym, że wydzielanie lipopeptydów odbywa się na drodze sorpcji połączonej z reakcjami chemicznymi, które są katalizowane na powierzchni węgla aktywnego.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury.
Biosurfaktanty są związkami powierzchniowo czynnymi produkowanymi przez mikroorganizmy lub otrzymywanymi na drodze biotransformacji. Przy zachowaniu doskonałej zdolności do obniżania napięcia powierzchniowego na granicy faz, są biodegradowalne i mniej toksyczne oraz bardziej odporne na skrajne warunki środowiska niż ich syntetyczne odpowiedniki.
Lipopeptydy są grupą biosurfaktantów, których cząsteczki zbudowane są z cyklicznego peptydu oraz przyłączonej do niego za pomocą estrowego wiązania laktonowego reszty β-hydroksykwasu tłuszczowego. Najlepiej poznanym lipopeptydem jest surfaktyna, produkowana przez różne szczepy z rodzaju Bacillu s. Występuje ona w postaci szeregu homologów, które różnią się długością łańcucha węglowego - 12-17 at. C jak opisano w publikacji P. Biniarz i M. Łukaszewicz, “Direct quantification of lipopeptide biosurfactants in biological samples via HPLC and UPLC-MS requires sample modification with an organic solvent,” Appl. Microbiol. Biotechnol., vol. 101, 15 no. 11, pp. 4747-4759, 2017, a nawet 18 at. C, jak podano w publikacji S. Dufour, M. Deleu, K. Nott, B. Wathelet, et al., Hemolytic activity of new linear surfactin analogs in relation to their physico-chemical properties. Biochim. Biophys. Acta Gen. Subj. 2005, 1726, 87-95, lub składem bądź sekwencją aminokwasów w pierścieniu peptydowym.
Surfaktyna może ulegać hydrolizie pod wpływem różnych czynników, co prowadzi do powstania nowych biosurfaktantów o innych właściwościach. Hydrolizie ulega wiązanie laktonowe, bądź jedno z wiązań peptydowych, wskutek czego następuje otwarcie cyklicznego peptydu i powstają liniowe analogi surfaktyny.
Znane są przypadki hydrolizy zachodzące na drodze zasadowej, gdzie następuje zmydlenie wiązania estrowego, pod wpływem działania wodorotlenku sodu (NaOH) w metanolu, co opisano w zgłoszeniu patentowym US20060166869, lub pod wpływem działania metanolami sodu w metanolu jak opisano w publikacji T. Imura, S. Ikeda, K. Aburai, T. Taira i D. Kitamoto, “Interdigitated Lamella and Bicontinuous Cubic Phases Formation from Natural Cyclic Surfactin and Its Linear Derivative,” J. Oleo Sci., vol. 62, no. 7, pp. 499-503, 2013, bądź wodnego roztworu wodorotlenku sodu lub amonu, jak podano w patencie JPH0892279.
Znane są przypadki hydrolizy zachodzące na drodze kwasowej, co opisano w patencie JPH0892279. Ma ona miejsce na skutek działania kwasem solnym na cykliczną surfaktynę.
Znana jest również hydroliza enzymatyczna, którą indukują enzymy wydzielane przez mikroorganizmy. Szczep Streptomyces sp. Mg1 produkuje enzym - hydrolazę surfaktyny, który również prowadzi do hydrolizy wiązania laktonowego, co opisano w publikacji B. C. Hoefler, K. V. Gorzelnik, J, Y. Yang, N. Hendricks, P. C. Dorrestein i P. D. Straight, “Enzymatic resistance to the lipopeptide surfactin as identified through imaging mass spectrometry of bacterial competition,” Proc. Natl. Acad. Sci., vol. 109, no. 32, pp. 13082-13087, 2012. Z kolei V8 endoproteaza, pozyskana ze Staphylococcus aureus, powoduje hydrolizę wiązania peptydowego pomiędzy kwasem glutaminowym (L-Glu1) i leucyną (L-Leu2), co opisano w publikacji I. Grangemard, J. Wallach i F. Peypoux, “Evidence of surfactin hydrolysis by a bacterial endoprotease,” Biotechnol. Lett., vol. 21, no. 3, pp. 241-244, 1999). Znane są również przypadki enzymatycznej hydrolizy innych związków z grupy lipopeptydów, np. antybiotyku daptomycyny. W publikacji V. M. D’Costa et al, “Inactivation of the lipopeptide antibiotic daptomycin by hydrolytic mechanisms,” Antimicrob. Agents Chemother., vol. 56, no. 2, pp. 757-764, 2012 przedstawiono badania jego podatności na biodegradację przez 60 odpornych na daptomycynę promieniowców (Actinomycetales), z których 44% powodowało hydrolizę daptomycyny, a 29% jej deacylację.
Liniowe lipopeptydy mogą być również wytwarzane bezpośrednio przez mikroorganizmy. Trzy lipopeptydy wytwarzane przez szczep Bacillus subtilis KCTC 12411 BP są tematem zgłoszenia patentowego KR20180003520A H.J. Shin, F.S. Tareq, H.S. Lee, J.S. Lee Y.J. Lee, M.A. Lee „Gageostatins lipotetrapeptides produced from a marine-derived Bacillus subtilis having antimicrobial activity”. Posiadają one identyczny skład aminokwasów w części peptydowej jak surfaktyna, ale o odmiennej konfiguracji chiralnej (LLLDLLL w porównaniu do LLDLLDL w surfaktynie). Istnieje również możliwość modyfikacji genetycznej mikroorganizmów produkujących w stanie naturalnym lipopeptydy cykliczne. Nie otrzymano jednak w ten sposób liniowych analogów surfaktyny, a jedynie lipopeptydy o krótszych sekwencjach aminokwasów (De Ferra, F., Rodriguez, F., Tortora, O., Tosi, C., Grandi, G., Engineering of peptide synthetases. Key role of the thioesterase-like domain for efficient production of recombinant
PL 243656 Β1 peptides. J. Biol. Chem. 1997, 272, 25304-25309; Stachelhaus, T., Schneider, A., Marahiel, M., Rational design of peptide antibiotics by targeted replacement of bacterial and fungal domains. Science 1995,269, 69-72).
W przypadku hydrolizy enzymatycznej wiązania peptydowego jej wydajność wynosiła max. 14%, natomiast hydroliza enzymatyczna wiązania laktonowego pozwoliła na uzyskanie 95% konwersji surfaktyny cyklicznej do liniowej. Zasadowa hydroliza chemiczna wiązania laktonowego prowadziła do otrzymania końcowego produktu z 97% wydajnością, zaś hydroliza kwasowa - tylko z 56% wydajnością. Hydroliza chemiczna wymaga jednak użycia toksycznych (metanol) i korozyjnych (NaOH, NH3 H2O lub HCI) związków, co czyni ten proces mało przyjaznym środowisku.
Celem rozwiązania według wynalazku jest uzyskanie produktu o wysokiej czystości. Zanieczyszczenia cyklicznymi formami lipopeptydów są minimalne przy jednoczesnym ograniczeniu stosowania nieprzyjaznych środowisku związków chemicznych podczas hydrolizy.
Istota sposobu według wynalazku polega na tym, że wydzielanie lipopeptydów odbywa się z roztworów zawierających wodę na drodze sorpcji, a w przypadku cyklicznych lipopeptydów, w których pierścień peptydowy jest zamknięty poprzez wiązanie laktonowe, dodatkowo sorpcja połączona jest z reakcjami hydrolizy zachodzącymi na powierzchni węgla aktywnego, prowadzącymi do linearyzacji na skutek rozerwania wiązania laktonowego.
Korzystnie, gdy proces adsorpcji i/lub desorpcji na węglu aktywnym prowadzi się przy użyciu mikrofal, pola magnetycznego lub prądu elektrycznego.
Korzystnie, gdy proces prowadzony jest w przepływie lub układzie stacjonarnym.
Korzystnie, gdy węgiel aktywny jest w postaci ziarnistej, sypkiej lub monolitycznych kształtek.
Korzystnie, gdy węgiel aktywny charakteryzuje się powierzchnią powyżej 600 m2/g, a pH jego wodnej zawiesiny jest powyżej 6.
Korzystnie, gdy liniowe lipopeptydy rozdziela się przy użyciu znanych metod.
Korzystnie, gdy struktury liniowych lipopeptydów otrzymanych według sposobu przyjmują formuły chemiczne w postaci:
rL /¾ ,R ^CH iII
OHO gdzie:
R1 - grupa alkilowa o liczbie at. C > 4 oraz konfiguracji liniowej, izo- lub anteizo-;
R2 - peptyd zakończony C-końcem o dowolnej sekwencji aminokwasów i długości od 4 do 12 aminokwasów.
Zaletą rozwiązania jest prowadzenie hydrolizy surfaktyny na węglu aktywnym jako katalizatorze procesu niezagrażającym środowisku. Ponadto, węgiel aktywny jest łatwo dostępnym produktem naturalnym. Może być stosowany jako katalizator wielokrotnego użycia, zaś po zużyciu w prosty i tani sposób poddany regeneracji, np. na drodze termicznej obróbki. Istotną zaletą jest prowadzenie hydrolizy przy minimalizacji stosowania nieprzyjaznych środowisku związków chemicznych takich jak metanol, zasady lub kwasy. Hydroliza w tym przypadku prowadzona jest w roztworze wodnym. Ponadto w ten sposób można uzyskać produkt o wysokiej czystości, w bardzo niewielkim stopniu zanieczyszczony cyklicznymi formami surfaktyny. Uzyskiwane produkty z wydajnością nawet 95% są w pełni biodegradowalne.
Przykład 1
Z roztworu pofermentacyjnego zawierającego mieszaninę lipopeptydów, z dominującym udziałem surfaktyny, wydziela się znanym sposobem surfaktynę. Otrzymany wodny roztwór surfaktyny o stężeniu 0,8 mg/ml wprowadza się w ilości 100 ml do kolby stożkowej o poj. 250 ml. Następnie wprowadza się 1 gram węgla aktywnego o uziarnieniu od 0,2 do 1 mm i o powierzchni porów wynoszącej 650 m2/g oraz charakteryzującego się pH jego wodnej zawiesiny wynoszącym 8,5. Zawiesina jest mieszana przy pomocy wytrząsarki przez 72 godziny w temperaturze 20°C. Po tym czasie roztwór jest oddzielany od węgla aktywnego przez sączenie i wirowanie. Na węglu aktywnym pozostaje zaadsorbowana surfaktyna w ilości 5% początkowo wprowadzonej do roztworu. Pozostała część surfaktyny reaguje na powierzchni węgla aktywnego tworząc hydrolizat surfaktyny o linearnej strukturze przedstawionej wzorami (I) i (II).
PL 243656 Β1
OH
H3C^CH2-)-----CH—CH2-C—L-Glu —L-Leu —D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu(I) ? 8-11ii
O h3C\OH
CH-(-CH2—)----CH—CH2-C-L-Glu-L-Leu—D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu (II) / ' 6-9 32
H3C
Fig. 1 Wzory liniowych analogów surfaktyny, o sekwencji aminokwasów L-Glu-L-Leu-D-Leu-L-Val-L-Asp-D-Leu-L-Leu, w których reszta β-hydroksykwasu tłuszczowego zbudowana jest z 12-15 at. C i ma konfigurację liniową (I) lub izo- (II).
Przykład 2
Jak w przykładzie 1 z tym, że stężenie wodnego roztworu surfaktyny wynosi 2 mg/ml. Następnie wprowadza się 3 gramy węgla aktywnego o uziarnieniu od 0,1 do 0,2 mm i o powierzchni wewnętrznej wynoszącej 750 m2/g oraz charakteryzującego się pH jego wodnej zawiesiny wynoszącym 9. Zawiesina jest mieszana przy pomocy wytrząsarki przez 72 godziny w temperaturze 25°C. Po tym czasie roztwór jest oddzielany od węgla aktywnego za pomocą sączenia i wirowania. Na węglu aktywnym pozostaje zaadsorbowana surfaktyna w ilości 3% początkowo wprowadzonej do roztworu. Pozostała część surfaktyny reaguje na powierzchni węgla tworząc hydrolizat surfaktyny o linearnej strukturze. Mieszanina linearnych produktów jest rozdzielana przy pomocy preparatywnej chromatografii cieczowej na analogi różniące się długością łańcucha alkilowego, których strukturę przedstawia wzór (III).
OH
R----CH—CH2-C—L-Glu—L-Leu —D-Leu-L-Val-L-Asp-D-Leu-L-Leu
2 1
R1 - łańcuch alkilowy o Lat. C wynoszącej 9-12
Fig. 2 Wzór liniowego analogu surfaktyny, o sekwencji aminokwasów L-Glu-L-Leu-D-Leu-L-Val-L-Asp-D-Leu-L-Leu, w którym reszta β-hydroksykwasu tłuszczowego zbudowana jest z 12-15 at. C i ma konfigurację liniową, izo- lub anteizo-.
Przykład 3
Jak w przykładzie 1 z tym, że roztwór surfaktyny podaje się na kolumnę. Kolumnę wypełnia się 20 gramami węgla aktywnego w formie monolitycznej kształtki o wymiarach oczek 0,5 x 0,5 mm i o grubości ścianki 0,5 mm oraz powierzchni porów wynoszącej 750 m2/g oraz charakteryzującej się pH jej wodnej zawiesiny wynoszącym 9. W temperaturze 25°C, przy użyciu pompy perystaltycznej wprowadzane jest od góry 2000 ml/h wodnego roztworu surfaktyny o stężeniu 2 mg/ml. Roztwór po przejściu przez złoże węgla aktywnego kierowany jest do zbiornika manipulacyjnego, z którego pobierany jest przez pompę w celu prowadzenia procesu w układzie przepływowym. Proces prowadzony jest przez 48 godzin. Na węglu aktywnym pozostaje zaadsorbowana surfaktyna w ilości 10% wprowadzonej początkowo do roztworu. Pozostała część surfaktyny reaguje na powierzchni węgla aktywnego tworząc hydrolizaty surfaktyny o linearnej strukturze, przedstawione wzorami (IV)—(VI), które pozostają w roztworze cyrkulacyjnym. Węgiel może być kilkukrotnie używany w procesie. Regeneracja węgla może być realizowana w kolumnie lub poza nią.
PL 243656 Β1
OH
H3C-^CH2—----CH—CH2-C-L-Giu -L-Leu —D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu (IV) 3-5 $11
O h3c xOH
-CH—CH2-C-L-Glu -L-Leu-D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu 3 2 1AA ch-^ch2·
CH?-C—L-Glu -L-Leu —D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu (VI) 21
II O
Fig. 3 Wzory liniowych analogów surfaktyny, o sekwencji aminokwasów L-Glu-L-Leu- D-Leu-L-Val-L-Asp-D-Leu-L-Leu, w których reszta β-hydroksykwasu tłuszczowego zbudowana jest z 7-9 at. C i ma konfigurację liniową (IV), izo- (V) lub anteizo- (VI).
Przykład 4
Jak w przykładzie 1 z tym, że roztwór surfaktyny podaje się na kolumnę. Kolumnę wypełnia się 20 gramami węgla aktywnego w formie monolitycznej kształtki o wymiarach oczek 0,5 x 0,5 mm i o grubości ścianki 0,5 mm oraz powierzchni wewnętrznej wynoszącej 750 m2/g oraz charakteryzującej się pH jej wodnej zawiesiny wynoszącym 9. Kształtka jest podłączona do prądu elektrycznego w czasie przepływu roztworu. W temperaturze 25°C, przy użyciu pompy perystaltycznej wprowadzane jest od góry 2000 ml/h wodnego roztworu surfaktyny o stężeniu 2 mg/ml. Roztwór przejściu przez złoże węgla aktywnego kierowany jest do zbiornika manipulacyjnego, z którego pobierany jest przez pompę w celu prowadzenia procesu w układzie przepływowym. Proces prowadzony jest przez 48 godzin. Na węglu aktywnym pozostaje zaadsorbowana surfaktyna w ilości 15% wprowadzonej początkowo do roztworu. Pozostała część surfaktyny reaguje na powierzchni węgla aktywnego tworząc hydrolizat surfaktyny o linearnej strukturze, przedstawionej wzorem (VII)—(IX), który pozostaje w roztworze cyrkulacyjnym. Węgiel może być kilkukrotnie używany w procesie.
OH
H3C-^CH2—)----CH—CH2-C-L-Glu-L-Leu—D-Leu-L-Ala-L-Asp-D-Leu-L-Leu (VII) ' 3-5 3 2 u
O ^sQ OH
CH2-C-L-GIu -L-Leu-D-Leu -L-Ala-L-Asp-D-Leu -L-Leu 2 i
II
O (VIII)
OH
CH—CH2-C-L-Glu—L-Leu—D-Leu -L-Ala-L-Asp-D-Leu -L-Leu 3 2 1
II (IX)
PL 243656 Β1
Fig. 4 Wzory liniowych analogów surfaktyny, o sekwencji aminokwasów L-Glu-L-Leu-D-Leu-L-Ala-L-Asp-D-Leu-L-Leu, w których reszta β-hydroksykwasu tłuszczowego zbudowana jest z 7-9 at. C i ma konfigurację liniową (VII), izo- (VIII) lub anteizo- (IX).
Przykład 5
Jak w przykładzie 4 z tą różnicą, że kolumna jest umieszczona w reaktorze mikrofalowym.
Przykład 6
Jak w przykładzie 4 z tą różnicą, że kolumna jest umieszczona w polu magnetycznym.
Przykład 7
Lipopeptydy otrzymane sposobem jak w przykładach od 1 do 6 zanalizowane zostały za pomocą chromatografii cieczowej i spektrometrii mas. Struktury liniowych analogów surfaktyny otrzymanych przedstawionym sposobem przyjmują następującą postać:
OH O
R1 - grupa alkilowa o liczbie at. C > 4 oraz konfiguracji liniowej, izo- lub anteizo-;
R2 - heptapeptyd zakończony C-końcem o sekwencji chiralnej LLDLLDL i sekwencji aminokwasów, przedstawionych w Tab. 1
Tab. 1 Sekwencja aminokwasów w grupie R2 (heptapeptyd) liniowych analogów surfaktyny
Numer aminokwasu
Nr sekwencji 1 2 3 4 5 6 7
1 Glu Leu Leu Val Asp Leu Leu
2 Glu Leu Val Asp Leu Val
3 Glu Leu Leu Val Asp Leu Ile
4 Glu Leu Leu Leu Asp Leu Ile
5 Glu Leu Leu Leu Asp Leu Val
6 Glu Leu Leu Ala Asp Leu Leu
7 Glu Leu Leu Leu Asp Leu Leu
8 Glu Leu Leu Ile Asp Leu Leu
9 Glu Leu Leu Ile Asp Leu Ile
10 Glu Ile Leu Ile Asp Leu Ile
11 Glu Val Leu Val Asp Leu Val
12 Glu Ile Leu Val Asp Leu Val
13 Glu Ile Leu Val Asp Leu Ile
14 Gin Leu Leu Val Asp Leu Leu
15 Gin Leu Leu Val Asp Leu Val
16 Gin Leu Leu Val Asp Leu Ile
17 Gin Leu Leu Ala Asp Leu Leu
18 Gin Leu Leu Ala Asp Leu Val
19 Gin Leu Leu Ala Asp Leu Ile
PL 243656 Β1

Claims (7)

1. Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury z cyklicznej na liniową znamienny tym, że wydzielanie lipopeptydów odbywa się z roztworów zawierających wodę na drodze sorpcji, a w przypadku cyklicznych lipopeptydów, w których pierścień peptydowy jest zamknięty poprzez wiązanie laktonowe, dodatkowo sorpcja połączona jest z reakcjami hydrolizy zachodzącymi na powierzchni węgla aktywnego, prowadzącymi do linearyzacji na skutek rozerwania wiązania laktonowego.
2. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że proces adsorpcji i/lub desorpcji na węglu aktywnym prowadzi się przy użyciu mikrofal, pola magnetycznego lub prądu elektrycznego.
3. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że proces prowadzony jest w przepływie lub układzie stacjonarnym.
4. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że węgiel aktywny jest w postaci ziarnistej, sypkiej lub monolitycznych kształtek.
5. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że węgiel aktywny charakteryzuje się powierzchnią powyżej 600 m2/g, a pH jego wodnej zawiesiny jest powyżej 6.
6. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że liniowe lipopeptydy rozdziela się przy użyciu znanych metod.
7. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że struktury liniowych lipopeptydów otrzymanych według sposobu przyjmują formuły chemiczne w postaci:
i2
RL /CH2 R ^CH iII
OHO gdzie:
R1 - grupa alkilowa o liczbie at. C > 4 oraz konfiguracji liniowej, izo- lub anteizo-;
R2 - peptyd zakończony C-końcem o dowolnej sekwencji aminokwasów, i długości od 4 do 12 aminokwasów.
PL425775A 2018-05-30 2018-05-30 Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury PL243656B1 (pl)

Priority Applications (9)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL425775A PL243656B1 (pl) 2018-05-30 2018-05-30 Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury
PCT/IB2019/054480 WO2019229690A2 (en) 2018-05-30 2019-05-30 Method of removing lipopeptides from solutions and changing their structure
BR112020023776-0A BR112020023776A2 (pt) 2018-05-30 2019-05-30 método de remoção de lipopeptídeos a partir de soluções e mudança da sua estrutura
CN201980036100.0A CN112262151B (zh) 2018-05-30 2019-05-30 去除溶液中的脂肽以及改变脂肽结构的方法
EP19746144.5A EP3802561A2 (en) 2018-05-30 2019-05-30 Method of removing lipopeptides from solutions and changing their structure
JP2020566585A JP7058767B2 (ja) 2018-05-30 2019-05-30 溶液からリポペプチドを除去しかつそれらの構造を変更する方法
CA3105671A CA3105671A1 (en) 2018-05-30 2019-05-30 Method of removing lipopeptides from solutions and changing their structure
US17/059,403 US11884745B2 (en) 2018-05-30 2019-05-30 Method of removing lipopeptides from solutions and changing their structure
KR1020207036988A KR20210018852A (ko) 2018-05-30 2019-05-30 용액으로부터 리포펩타이드를 수거하고 이들의 구조를 변형시키는 방법

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL425775A PL243656B1 (pl) 2018-05-30 2018-05-30 Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL425775A1 PL425775A1 (pl) 2019-12-02
PL243656B1 true PL243656B1 (pl) 2023-09-25

Family

ID=68655145

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL425775A PL243656B1 (pl) 2018-05-30 2018-05-30 Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury

Country Status (9)

Country Link
US (1) US11884745B2 (pl)
EP (1) EP3802561A2 (pl)
JP (1) JP7058767B2 (pl)
KR (1) KR20210018852A (pl)
CN (1) CN112262151B (pl)
BR (1) BR112020023776A2 (pl)
CA (1) CA3105671A1 (pl)
PL (1) PL243656B1 (pl)
WO (1) WO2019229690A2 (pl)

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2545750B2 (ja) 1994-09-21 1996-10-23 工業技術院長 直鎖状サーファクチン
PT1107981E (pt) * 1998-08-20 2005-05-31 Lilly Co Eli Sintese de analogos peptidicos ciclicos de anel modificado
CA2491001A1 (en) 2002-06-28 2004-01-08 Faculte Universitaire Des Sciences Agronomiques De Gembloux Novel use of lipopeptide preparations
CN102276685A (zh) * 2011-08-11 2011-12-14 华东理工大学 一种脂肽的水解方法
CN102659932B (zh) * 2012-05-04 2016-01-13 华东师范大学 一种脂肽及其衍生物、及其制备方法和应用
CN105112476B (zh) * 2015-04-15 2020-04-03 南京工业大学 一种发酵生产脂肽类生物表面活性剂的方法
KR20180003520A (ko) 2017-12-27 2018-01-09 한국해양과학기술원 해양 유래 바실러스 서브틸리스가 생산하는 선형의 신규 항균 지질펩타이드, 가거스타틴

Also Published As

Publication number Publication date
CN112262151A (zh) 2021-01-22
CN112262151B (zh) 2024-07-05
WO2019229690A2 (en) 2019-12-05
BR112020023776A2 (pt) 2021-03-23
PL425775A1 (pl) 2019-12-02
JP7058767B2 (ja) 2022-04-22
CA3105671A1 (en) 2019-12-05
US11884745B2 (en) 2024-01-30
JP2021526141A (ja) 2021-09-30
KR20210018852A (ko) 2021-02-18
WO2019229690A3 (en) 2020-03-05
US20210214393A1 (en) 2021-07-15
EP3802561A2 (en) 2021-04-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Mnif et al. Review lipopeptides biosurfactants: mean classes and new insights for industrial, biomedical, and environmental applications
Geissler et al. Lipopeptide biosurfactants from Bacillus species
JP3123078B2 (ja) 環状リポペプチド物質の脱アシル化法
Valivety et al. Chemo‐enzymatic synthesis of amino acid‐based surfactants
Oku et al. Unnarmicins A and C, new antibacterial depsipeptides produced by marine bacterium Photobacterium sp. MBIC06485
RU2117672C1 (ru) Липопептиды, способ получения, лекарственное средство и штамм actinoplanes sp. dsm 7358 в качестве продуцента липопептидов
Yonezawa et al. New diketopiperazine derivatives isolated from sea urchin-derived bacillus sp.
Théatre et al. Bacillus sp.: A remarkable source of bioactive lipopeptides
Hamdache et al. Comparative genome analysis of Bacillus spp. and its relationship with bioactive nonribosomal peptide production
Röhrich et al. Hypopulvins, novel peptaibiotics from the polyporicolous fungus Hypocrea pulvinata, are produced during infection of its natural hosts
Hirano et al. Design and synthesis of diketopiperazine and acyclic analogs related to the caprazamycins and liposidomycins as potential antibacterial agents
Buchardt et al. Phosphinic Peptide Matrix Metalloproteinase‐9 Inhibitors by Solid‐Phase Synthesis Using a Building Block Approach
PL243656B1 (pl) Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury
He et al. Circulocins, new antibacterial lipopeptides from Bacillus circulans, J2154
Hirota-Takahata et al. Pedopeptins, novel inhibitors of LPS: Taxonomy of producing organism, fermentation, isolation, physicochemical properties and structural elucidation
CA2720173A1 (en) Highly bridged peptides from actinomadura namibiensis
Mohammadipanah et al. Persipeptides A and B, two cyclic peptides from Streptomyces sp. UTMC 1154
RU2778683C2 (ru) Способ удаления липопептидов из растворов и изменение их структуры
KR101370632B1 (ko) 항균 활성을 포함한 다양한 생리 활성을 가지는 신규의 화합물, 이 화합물을 생성하는 해양 미생물
EP3000821B1 (en) Pseudofactin derivatives, a method of synthesizing pseudofactin derivatives and their use
Brückner et al. Sequences of acretocins, peptaibiotics Containing the rare 1-aminocyclopropanecarboxylic acid, from Acremonium crotocinigenum CBS 217.70
CN1373770A (zh) 假单胞菌素前药
KR101093079B1 (ko) 유류분해능을 갖고 생물계면활성제를 생산하는 바실러스 서브틸리스 제이케이-1의 배양방법
Ju-Soon et al. Production and characterization of lipopeptide biosurfactant from Bacillus subtilis A8-8
CA2112522A1 (en) Tan-1511, its derivatives, production and use thereof