PL243656B1 - Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury - Google Patents
Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury Download PDFInfo
- Publication number
- PL243656B1 PL243656B1 PL425775A PL42577518A PL243656B1 PL 243656 B1 PL243656 B1 PL 243656B1 PL 425775 A PL425775 A PL 425775A PL 42577518 A PL42577518 A PL 42577518A PL 243656 B1 PL243656 B1 PL 243656B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- leu
- lipopeptides
- linear
- activated carbon
- surfactin
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 30
- 108010028921 Lipopeptides Proteins 0.000 title claims abstract description 26
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 54
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 claims abstract description 7
- 230000028327 secretion Effects 0.000 claims abstract 2
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 claims description 14
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 claims description 13
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 12
- 125000004122 cyclic group Chemical group 0.000 claims description 9
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 claims description 6
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 claims description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 5
- 101800001415 Bri23 peptide Proteins 0.000 claims description 2
- 101800000655 C-terminal peptide Proteins 0.000 claims description 2
- 102400000107 C-terminal peptide Human genes 0.000 claims description 2
- 238000003795 desorption Methods 0.000 claims description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 125000003275 alpha amino acid group Chemical group 0.000 claims 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 abstract description 2
- NJGWOFRZMQRKHT-WGVNQGGSSA-N surfactin C Chemical group CC(C)CCCCCCCCC[C@@H]1CC(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)O1 NJGWOFRZMQRKHT-WGVNQGGSSA-N 0.000 description 40
- AFWTZXXDGQBIKW-UHFFFAOYSA-N C14 surfactin Natural products CCCCCCCCCCCC1CC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(C(C)C)C(=O)NC(CC(O)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)O1 AFWTZXXDGQBIKW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 32
- NJGWOFRZMQRKHT-UHFFFAOYSA-N surfactin Natural products CC(C)CCCCCCCCCC1CC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(C(C)C)C(=O)NC(CC(O)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)O1 NJGWOFRZMQRKHT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 32
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 21
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 10
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 10
- MWMJCGBSIORNCD-AVGNSLFASA-N Glu-Leu-Leu Chemical compound [H]N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(O)=O MWMJCGBSIORNCD-AVGNSLFASA-N 0.000 description 8
- CGHXMODRYJISSK-NHCYSSNCSA-N Leu-Val-Asp Chemical compound CC(C)C[C@H](N)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)N[C@H](C(O)=O)CC(O)=O CGHXMODRYJISSK-NHCYSSNCSA-N 0.000 description 5
- 108010013198 Daptomycin Proteins 0.000 description 4
- WHUUTDBJXJRKMK-UHFFFAOYSA-N Glutamic acid Natural products OC(=O)C(N)CCC(O)=O WHUUTDBJXJRKMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- WHUUTDBJXJRKMK-VKHMYHEASA-N L-glutamic acid Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(O)=O WHUUTDBJXJRKMK-VKHMYHEASA-N 0.000 description 4
- 235000001014 amino acid Nutrition 0.000 description 4
- 239000003876 biosurfactant Substances 0.000 description 4
- DOAKLVKFURWEDJ-QCMAZARJSA-N daptomycin Chemical compound C([C@H]1C(=O)O[C@H](C)[C@@H](C(NCC(=O)N[C@@H](CCCN)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@H](C)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)NCC(=O)N[C@H](CO)C(=O)N[C@H](C(=O)N1)[C@H](C)CC(O)=O)=O)NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@@H](CC(N)=O)NC(=O)[C@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)NC(=O)CCCCCCCCC)C(=O)C1=CC=CC=C1N DOAKLVKFURWEDJ-QCMAZARJSA-N 0.000 description 4
- 229960005484 daptomycin Drugs 0.000 description 4
- 230000007071 enzymatic hydrolysis Effects 0.000 description 4
- 238000006047 enzymatic hydrolysis reaction Methods 0.000 description 4
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 4
- 239000000047 product Substances 0.000 description 4
- UJGRZQYSNYTCAX-SRVKXCTJSA-N Asp-Leu-Leu Chemical compound CC(C)C[C@@H](C(O)=O)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@@H](N)CC(O)=O UJGRZQYSNYTCAX-SRVKXCTJSA-N 0.000 description 3
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- DLCOFDAHNMMQPP-SRVKXCTJSA-N Leu-Asp-Leu Chemical compound CC(C)C[C@H](N)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(O)=O DLCOFDAHNMMQPP-SRVKXCTJSA-N 0.000 description 3
- TZVUSFMQWPWHON-NHCYSSNCSA-N Val-Asp-Leu Chemical compound CC(C)C[C@@H](C(=O)O)NC(=O)[C@H](CC(=O)O)NC(=O)[C@H](C(C)C)N TZVUSFMQWPWHON-NHCYSSNCSA-N 0.000 description 3
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 3
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 3
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 3
- 239000003245 coal Substances 0.000 description 3
- VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N Ammonium hydroxide Chemical compound [NH4+].[OH-] VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QNMKWNONJGKJJC-NHCYSSNCSA-N Asp-Leu-Val Chemical compound [H]N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(O)=O QNMKWNONJGKJJC-NHCYSSNCSA-N 0.000 description 2
- 244000063299 Bacillus subtilis Species 0.000 description 2
- 235000014469 Bacillus subtilis Nutrition 0.000 description 2
- 108010069514 Cyclic Peptides Proteins 0.000 description 2
- 102000001189 Cyclic Peptides Human genes 0.000 description 2
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 2
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 2
- ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N L-leucine Chemical compound CC(C)C[C@H](N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N 0.000 description 2
- 101710118538 Protease Proteins 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000003054 catalyst Substances 0.000 description 2
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 2
- 230000007073 chemical hydrolysis Effects 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 2
- 230000002572 peristaltic effect Effects 0.000 description 2
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 2
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 241000186361 Actinobacteria <class> Species 0.000 description 1
- 241000203809 Actinomycetales Species 0.000 description 1
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 description 1
- GJBUAAAIZSRCDC-GVXVVHGQSA-N Glu-Leu-Val Chemical compound [H]N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(O)=O GJBUAAAIZSRCDC-GVXVVHGQSA-N 0.000 description 1
- VIPDPMHGICREIS-GVXVVHGQSA-N Glu-Val-Leu Chemical compound [H]N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(O)=O VIPDPMHGICREIS-GVXVVHGQSA-N 0.000 description 1
- 101001018097 Homo sapiens L-selectin Proteins 0.000 description 1
- 241001562081 Ikeda Species 0.000 description 1
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 1
- 102100033467 L-selectin Human genes 0.000 description 1
- 241000446313 Lamella Species 0.000 description 1
- ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N Leucine Natural products CC(C)CC(N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000056222 Peptide Synthases Human genes 0.000 description 1
- 108700018928 Peptide Synthases Proteins 0.000 description 1
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 description 1
- 241000187180 Streptomyces sp. Species 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 238000005903 acid hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 239000000908 ammonium hydroxide Substances 0.000 description 1
- 230000000845 anti-microbial effect Effects 0.000 description 1
- 239000002585 base Substances 0.000 description 1
- 238000006065 biodegradation reaction Methods 0.000 description 1
- 239000012472 biological sample Substances 0.000 description 1
- 230000036983 biotransformation Effects 0.000 description 1
- 210000004899 c-terminal region Anatomy 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 230000020176 deacylation Effects 0.000 description 1
- 238000005947 deacylation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000009510 drug design Methods 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 1
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 1
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 1
- 229930184322 gageostatin Natural products 0.000 description 1
- 235000013922 glutamic acid Nutrition 0.000 description 1
- 239000004220 glutamic acid Substances 0.000 description 1
- 230000002949 hemolytic effect Effects 0.000 description 1
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 description 1
- 238000001871 ion mobility spectroscopy Methods 0.000 description 1
- 231100001231 less toxic Toxicity 0.000 description 1
- 238000004811 liquid chromatography Methods 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 238000004949 mass spectrometry Methods 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- YWOITFUKFOYODT-UHFFFAOYSA-N methanol;sodium Chemical class [Na].OC YWOITFUKFOYODT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 229930014626 natural product Natural products 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 238000004262 preparative liquid chromatography Methods 0.000 description 1
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 1
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 1
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 1
- 238000007127 saponification reaction Methods 0.000 description 1
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000007669 thermal treatment Methods 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 238000001946 ultra-performance liquid chromatography-mass spectrometry Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
- C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
- C07K1/12—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by hydrolysis, i.e. solvolysis in general
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K7/00—Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
- C07K7/04—Linear peptides containing only normal peptide links
- C07K7/06—Linear peptides containing only normal peptide links having 5 to 11 amino acids
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
- C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
- C07K1/16—Extraction; Separation; Purification by chromatography
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
- External Artificial Organs (AREA)
Abstract
Przedmiotem zgłoszenia jest sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury. Sposób ten charakteryzuje się tym, że wydzielanie lipopeptydów odbywa się na drodze sorpcji połączonej z reakcjami chemicznymi, które są katalizowane na powierzchni węgla aktywnego.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury.
Biosurfaktanty są związkami powierzchniowo czynnymi produkowanymi przez mikroorganizmy lub otrzymywanymi na drodze biotransformacji. Przy zachowaniu doskonałej zdolności do obniżania napięcia powierzchniowego na granicy faz, są biodegradowalne i mniej toksyczne oraz bardziej odporne na skrajne warunki środowiska niż ich syntetyczne odpowiedniki.
Lipopeptydy są grupą biosurfaktantów, których cząsteczki zbudowane są z cyklicznego peptydu oraz przyłączonej do niego za pomocą estrowego wiązania laktonowego reszty β-hydroksykwasu tłuszczowego. Najlepiej poznanym lipopeptydem jest surfaktyna, produkowana przez różne szczepy z rodzaju Bacillu s. Występuje ona w postaci szeregu homologów, które różnią się długością łańcucha węglowego - 12-17 at. C jak opisano w publikacji P. Biniarz i M. Łukaszewicz, “Direct quantification of lipopeptide biosurfactants in biological samples via HPLC and UPLC-MS requires sample modification with an organic solvent,” Appl. Microbiol. Biotechnol., vol. 101, 15 no. 11, pp. 4747-4759, 2017, a nawet 18 at. C, jak podano w publikacji S. Dufour, M. Deleu, K. Nott, B. Wathelet, et al., Hemolytic activity of new linear surfactin analogs in relation to their physico-chemical properties. Biochim. Biophys. Acta Gen. Subj. 2005, 1726, 87-95, lub składem bądź sekwencją aminokwasów w pierścieniu peptydowym.
Surfaktyna może ulegać hydrolizie pod wpływem różnych czynników, co prowadzi do powstania nowych biosurfaktantów o innych właściwościach. Hydrolizie ulega wiązanie laktonowe, bądź jedno z wiązań peptydowych, wskutek czego następuje otwarcie cyklicznego peptydu i powstają liniowe analogi surfaktyny.
Znane są przypadki hydrolizy zachodzące na drodze zasadowej, gdzie następuje zmydlenie wiązania estrowego, pod wpływem działania wodorotlenku sodu (NaOH) w metanolu, co opisano w zgłoszeniu patentowym US20060166869, lub pod wpływem działania metanolami sodu w metanolu jak opisano w publikacji T. Imura, S. Ikeda, K. Aburai, T. Taira i D. Kitamoto, “Interdigitated Lamella and Bicontinuous Cubic Phases Formation from Natural Cyclic Surfactin and Its Linear Derivative,” J. Oleo Sci., vol. 62, no. 7, pp. 499-503, 2013, bądź wodnego roztworu wodorotlenku sodu lub amonu, jak podano w patencie JPH0892279.
Znane są przypadki hydrolizy zachodzące na drodze kwasowej, co opisano w patencie JPH0892279. Ma ona miejsce na skutek działania kwasem solnym na cykliczną surfaktynę.
Znana jest również hydroliza enzymatyczna, którą indukują enzymy wydzielane przez mikroorganizmy. Szczep Streptomyces sp. Mg1 produkuje enzym - hydrolazę surfaktyny, który również prowadzi do hydrolizy wiązania laktonowego, co opisano w publikacji B. C. Hoefler, K. V. Gorzelnik, J, Y. Yang, N. Hendricks, P. C. Dorrestein i P. D. Straight, “Enzymatic resistance to the lipopeptide surfactin as identified through imaging mass spectrometry of bacterial competition,” Proc. Natl. Acad. Sci., vol. 109, no. 32, pp. 13082-13087, 2012. Z kolei V8 endoproteaza, pozyskana ze Staphylococcus aureus, powoduje hydrolizę wiązania peptydowego pomiędzy kwasem glutaminowym (L-Glu1) i leucyną (L-Leu2), co opisano w publikacji I. Grangemard, J. Wallach i F. Peypoux, “Evidence of surfactin hydrolysis by a bacterial endoprotease,” Biotechnol. Lett., vol. 21, no. 3, pp. 241-244, 1999). Znane są również przypadki enzymatycznej hydrolizy innych związków z grupy lipopeptydów, np. antybiotyku daptomycyny. W publikacji V. M. D’Costa et al, “Inactivation of the lipopeptide antibiotic daptomycin by hydrolytic mechanisms,” Antimicrob. Agents Chemother., vol. 56, no. 2, pp. 757-764, 2012 przedstawiono badania jego podatności na biodegradację przez 60 odpornych na daptomycynę promieniowców (Actinomycetales), z których 44% powodowało hydrolizę daptomycyny, a 29% jej deacylację.
Liniowe lipopeptydy mogą być również wytwarzane bezpośrednio przez mikroorganizmy. Trzy lipopeptydy wytwarzane przez szczep Bacillus subtilis KCTC 12411 BP są tematem zgłoszenia patentowego KR20180003520A H.J. Shin, F.S. Tareq, H.S. Lee, J.S. Lee Y.J. Lee, M.A. Lee „Gageostatins lipotetrapeptides produced from a marine-derived Bacillus subtilis having antimicrobial activity”. Posiadają one identyczny skład aminokwasów w części peptydowej jak surfaktyna, ale o odmiennej konfiguracji chiralnej (LLLDLLL w porównaniu do LLDLLDL w surfaktynie). Istnieje również możliwość modyfikacji genetycznej mikroorganizmów produkujących w stanie naturalnym lipopeptydy cykliczne. Nie otrzymano jednak w ten sposób liniowych analogów surfaktyny, a jedynie lipopeptydy o krótszych sekwencjach aminokwasów (De Ferra, F., Rodriguez, F., Tortora, O., Tosi, C., Grandi, G., Engineering of peptide synthetases. Key role of the thioesterase-like domain for efficient production of recombinant
PL 243656 Β1 peptides. J. Biol. Chem. 1997, 272, 25304-25309; Stachelhaus, T., Schneider, A., Marahiel, M., Rational design of peptide antibiotics by targeted replacement of bacterial and fungal domains. Science 1995,269, 69-72).
W przypadku hydrolizy enzymatycznej wiązania peptydowego jej wydajność wynosiła max. 14%, natomiast hydroliza enzymatyczna wiązania laktonowego pozwoliła na uzyskanie 95% konwersji surfaktyny cyklicznej do liniowej. Zasadowa hydroliza chemiczna wiązania laktonowego prowadziła do otrzymania końcowego produktu z 97% wydajnością, zaś hydroliza kwasowa - tylko z 56% wydajnością. Hydroliza chemiczna wymaga jednak użycia toksycznych (metanol) i korozyjnych (NaOH, NH3 H2O lub HCI) związków, co czyni ten proces mało przyjaznym środowisku.
Celem rozwiązania według wynalazku jest uzyskanie produktu o wysokiej czystości. Zanieczyszczenia cyklicznymi formami lipopeptydów są minimalne przy jednoczesnym ograniczeniu stosowania nieprzyjaznych środowisku związków chemicznych podczas hydrolizy.
Istota sposobu według wynalazku polega na tym, że wydzielanie lipopeptydów odbywa się z roztworów zawierających wodę na drodze sorpcji, a w przypadku cyklicznych lipopeptydów, w których pierścień peptydowy jest zamknięty poprzez wiązanie laktonowe, dodatkowo sorpcja połączona jest z reakcjami hydrolizy zachodzącymi na powierzchni węgla aktywnego, prowadzącymi do linearyzacji na skutek rozerwania wiązania laktonowego.
Korzystnie, gdy proces adsorpcji i/lub desorpcji na węglu aktywnym prowadzi się przy użyciu mikrofal, pola magnetycznego lub prądu elektrycznego.
Korzystnie, gdy proces prowadzony jest w przepływie lub układzie stacjonarnym.
Korzystnie, gdy węgiel aktywny jest w postaci ziarnistej, sypkiej lub monolitycznych kształtek.
Korzystnie, gdy węgiel aktywny charakteryzuje się powierzchnią powyżej 600 m2/g, a pH jego wodnej zawiesiny jest powyżej 6.
Korzystnie, gdy liniowe lipopeptydy rozdziela się przy użyciu znanych metod.
Korzystnie, gdy struktury liniowych lipopeptydów otrzymanych według sposobu przyjmują formuły chemiczne w postaci:
rL /¾ ,R ^CH iII
OHO gdzie:
R1 - grupa alkilowa o liczbie at. C > 4 oraz konfiguracji liniowej, izo- lub anteizo-;
R2 - peptyd zakończony C-końcem o dowolnej sekwencji aminokwasów i długości od 4 do 12 aminokwasów.
Zaletą rozwiązania jest prowadzenie hydrolizy surfaktyny na węglu aktywnym jako katalizatorze procesu niezagrażającym środowisku. Ponadto, węgiel aktywny jest łatwo dostępnym produktem naturalnym. Może być stosowany jako katalizator wielokrotnego użycia, zaś po zużyciu w prosty i tani sposób poddany regeneracji, np. na drodze termicznej obróbki. Istotną zaletą jest prowadzenie hydrolizy przy minimalizacji stosowania nieprzyjaznych środowisku związków chemicznych takich jak metanol, zasady lub kwasy. Hydroliza w tym przypadku prowadzona jest w roztworze wodnym. Ponadto w ten sposób można uzyskać produkt o wysokiej czystości, w bardzo niewielkim stopniu zanieczyszczony cyklicznymi formami surfaktyny. Uzyskiwane produkty z wydajnością nawet 95% są w pełni biodegradowalne.
Przykład 1
Z roztworu pofermentacyjnego zawierającego mieszaninę lipopeptydów, z dominującym udziałem surfaktyny, wydziela się znanym sposobem surfaktynę. Otrzymany wodny roztwór surfaktyny o stężeniu 0,8 mg/ml wprowadza się w ilości 100 ml do kolby stożkowej o poj. 250 ml. Następnie wprowadza się 1 gram węgla aktywnego o uziarnieniu od 0,2 do 1 mm i o powierzchni porów wynoszącej 650 m2/g oraz charakteryzującego się pH jego wodnej zawiesiny wynoszącym 8,5. Zawiesina jest mieszana przy pomocy wytrząsarki przez 72 godziny w temperaturze 20°C. Po tym czasie roztwór jest oddzielany od węgla aktywnego przez sączenie i wirowanie. Na węglu aktywnym pozostaje zaadsorbowana surfaktyna w ilości 5% początkowo wprowadzonej do roztworu. Pozostała część surfaktyny reaguje na powierzchni węgla aktywnego tworząc hydrolizat surfaktyny o linearnej strukturze przedstawionej wzorami (I) i (II).
PL 243656 Β1
OH
H3C^CH2-)-----CH—CH2-C—L-Glu —L-Leu —D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu(I) ? 8-11ii
O h3C\OH
CH-(-CH2—)----CH—CH2-C-L-Glu-L-Leu—D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu (II) / ' 6-9 32
H3C
Fig. 1 Wzory liniowych analogów surfaktyny, o sekwencji aminokwasów L-Glu-L-Leu-D-Leu-L-Val-L-Asp-D-Leu-L-Leu, w których reszta β-hydroksykwasu tłuszczowego zbudowana jest z 12-15 at. C i ma konfigurację liniową (I) lub izo- (II).
Przykład 2
Jak w przykładzie 1 z tym, że stężenie wodnego roztworu surfaktyny wynosi 2 mg/ml. Następnie wprowadza się 3 gramy węgla aktywnego o uziarnieniu od 0,1 do 0,2 mm i o powierzchni wewnętrznej wynoszącej 750 m2/g oraz charakteryzującego się pH jego wodnej zawiesiny wynoszącym 9. Zawiesina jest mieszana przy pomocy wytrząsarki przez 72 godziny w temperaturze 25°C. Po tym czasie roztwór jest oddzielany od węgla aktywnego za pomocą sączenia i wirowania. Na węglu aktywnym pozostaje zaadsorbowana surfaktyna w ilości 3% początkowo wprowadzonej do roztworu. Pozostała część surfaktyny reaguje na powierzchni węgla tworząc hydrolizat surfaktyny o linearnej strukturze. Mieszanina linearnych produktów jest rozdzielana przy pomocy preparatywnej chromatografii cieczowej na analogi różniące się długością łańcucha alkilowego, których strukturę przedstawia wzór (III).
OH
R----CH—CH2-C—L-Glu—L-Leu —D-Leu-L-Val-L-Asp-D-Leu-L-Leu
2 1
R1 - łańcuch alkilowy o Lat. C wynoszącej 9-12
Fig. 2 Wzór liniowego analogu surfaktyny, o sekwencji aminokwasów L-Glu-L-Leu-D-Leu-L-Val-L-Asp-D-Leu-L-Leu, w którym reszta β-hydroksykwasu tłuszczowego zbudowana jest z 12-15 at. C i ma konfigurację liniową, izo- lub anteizo-.
Przykład 3
Jak w przykładzie 1 z tym, że roztwór surfaktyny podaje się na kolumnę. Kolumnę wypełnia się 20 gramami węgla aktywnego w formie monolitycznej kształtki o wymiarach oczek 0,5 x 0,5 mm i o grubości ścianki 0,5 mm oraz powierzchni porów wynoszącej 750 m2/g oraz charakteryzującej się pH jej wodnej zawiesiny wynoszącym 9. W temperaturze 25°C, przy użyciu pompy perystaltycznej wprowadzane jest od góry 2000 ml/h wodnego roztworu surfaktyny o stężeniu 2 mg/ml. Roztwór po przejściu przez złoże węgla aktywnego kierowany jest do zbiornika manipulacyjnego, z którego pobierany jest przez pompę w celu prowadzenia procesu w układzie przepływowym. Proces prowadzony jest przez 48 godzin. Na węglu aktywnym pozostaje zaadsorbowana surfaktyna w ilości 10% wprowadzonej początkowo do roztworu. Pozostała część surfaktyny reaguje na powierzchni węgla aktywnego tworząc hydrolizaty surfaktyny o linearnej strukturze, przedstawione wzorami (IV)—(VI), które pozostają w roztworze cyrkulacyjnym. Węgiel może być kilkukrotnie używany w procesie. Regeneracja węgla może być realizowana w kolumnie lub poza nią.
PL 243656 Β1
OH
H3C-^CH2—----CH—CH2-C-L-Giu -L-Leu —D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu (IV) 3-5 $11
O h3c xOH
-CH—CH2-C-L-Glu -L-Leu-D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu 3 2 1AA ch-^ch2·
CH?-C—L-Glu -L-Leu —D-Leu -L-Val -L-Asp-D-Leu -L-Leu (VI) 21
II O
Fig. 3 Wzory liniowych analogów surfaktyny, o sekwencji aminokwasów L-Glu-L-Leu- D-Leu-L-Val-L-Asp-D-Leu-L-Leu, w których reszta β-hydroksykwasu tłuszczowego zbudowana jest z 7-9 at. C i ma konfigurację liniową (IV), izo- (V) lub anteizo- (VI).
Przykład 4
Jak w przykładzie 1 z tym, że roztwór surfaktyny podaje się na kolumnę. Kolumnę wypełnia się 20 gramami węgla aktywnego w formie monolitycznej kształtki o wymiarach oczek 0,5 x 0,5 mm i o grubości ścianki 0,5 mm oraz powierzchni wewnętrznej wynoszącej 750 m2/g oraz charakteryzującej się pH jej wodnej zawiesiny wynoszącym 9. Kształtka jest podłączona do prądu elektrycznego w czasie przepływu roztworu. W temperaturze 25°C, przy użyciu pompy perystaltycznej wprowadzane jest od góry 2000 ml/h wodnego roztworu surfaktyny o stężeniu 2 mg/ml. Roztwór przejściu przez złoże węgla aktywnego kierowany jest do zbiornika manipulacyjnego, z którego pobierany jest przez pompę w celu prowadzenia procesu w układzie przepływowym. Proces prowadzony jest przez 48 godzin. Na węglu aktywnym pozostaje zaadsorbowana surfaktyna w ilości 15% wprowadzonej początkowo do roztworu. Pozostała część surfaktyny reaguje na powierzchni węgla aktywnego tworząc hydrolizat surfaktyny o linearnej strukturze, przedstawionej wzorem (VII)—(IX), który pozostaje w roztworze cyrkulacyjnym. Węgiel może być kilkukrotnie używany w procesie.
OH
H3C-^CH2—)----CH—CH2-C-L-Glu-L-Leu—D-Leu-L-Ala-L-Asp-D-Leu-L-Leu (VII) ' 3-5 3 2 u
O ^sQ OH
CH2-C-L-GIu -L-Leu-D-Leu -L-Ala-L-Asp-D-Leu -L-Leu 2 i
II
O (VIII)
OH
CH—CH2-C-L-Glu—L-Leu—D-Leu -L-Ala-L-Asp-D-Leu -L-Leu 3 2 1
II (IX)
PL 243656 Β1
Fig. 4 Wzory liniowych analogów surfaktyny, o sekwencji aminokwasów L-Glu-L-Leu-D-Leu-L-Ala-L-Asp-D-Leu-L-Leu, w których reszta β-hydroksykwasu tłuszczowego zbudowana jest z 7-9 at. C i ma konfigurację liniową (VII), izo- (VIII) lub anteizo- (IX).
Przykład 5
Jak w przykładzie 4 z tą różnicą, że kolumna jest umieszczona w reaktorze mikrofalowym.
Przykład 6
Jak w przykładzie 4 z tą różnicą, że kolumna jest umieszczona w polu magnetycznym.
Przykład 7
Lipopeptydy otrzymane sposobem jak w przykładach od 1 do 6 zanalizowane zostały za pomocą chromatografii cieczowej i spektrometrii mas. Struktury liniowych analogów surfaktyny otrzymanych przedstawionym sposobem przyjmują następującą postać:
OH O
R1 - grupa alkilowa o liczbie at. C > 4 oraz konfiguracji liniowej, izo- lub anteizo-;
R2 - heptapeptyd zakończony C-końcem o sekwencji chiralnej LLDLLDL i sekwencji aminokwasów, przedstawionych w Tab. 1
Tab. 1 Sekwencja aminokwasów w grupie R2 (heptapeptyd) liniowych analogów surfaktyny
Numer aminokwasu | |||||||
Nr sekwencji | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
1 | Glu | Leu | Leu | Val | Asp | Leu | Leu |
2 | Glu | Leu | Val | Asp | Leu | Val | |
3 | Glu | Leu | Leu | Val | Asp | Leu | Ile |
4 | Glu | Leu | Leu | Leu | Asp | Leu | Ile |
5 | Glu | Leu | Leu | Leu | Asp | Leu | Val |
6 | Glu | Leu | Leu | Ala | Asp | Leu | Leu |
7 | Glu | Leu | Leu | Leu | Asp | Leu | Leu |
8 | Glu | Leu | Leu | Ile | Asp | Leu | Leu |
9 | Glu | Leu | Leu | Ile | Asp | Leu | Ile |
10 | Glu | Ile | Leu | Ile | Asp | Leu | Ile |
11 | Glu | Val | Leu | Val | Asp | Leu | Val |
12 | Glu | Ile | Leu | Val | Asp | Leu | Val |
13 | Glu | Ile | Leu | Val | Asp | Leu | Ile |
14 | Gin | Leu | Leu | Val | Asp | Leu | Leu |
15 | Gin | Leu | Leu | Val | Asp | Leu | Val |
16 | Gin | Leu | Leu | Val | Asp | Leu | Ile |
17 | Gin | Leu | Leu | Ala | Asp | Leu | Leu |
18 | Gin | Leu | Leu | Ala | Asp | Leu | Val |
19 | Gin | Leu | Leu | Ala | Asp | Leu | Ile |
PL 243656 Β1
Claims (7)
1. Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury z cyklicznej na liniową znamienny tym, że wydzielanie lipopeptydów odbywa się z roztworów zawierających wodę na drodze sorpcji, a w przypadku cyklicznych lipopeptydów, w których pierścień peptydowy jest zamknięty poprzez wiązanie laktonowe, dodatkowo sorpcja połączona jest z reakcjami hydrolizy zachodzącymi na powierzchni węgla aktywnego, prowadzącymi do linearyzacji na skutek rozerwania wiązania laktonowego.
2. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że proces adsorpcji i/lub desorpcji na węglu aktywnym prowadzi się przy użyciu mikrofal, pola magnetycznego lub prądu elektrycznego.
3. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że proces prowadzony jest w przepływie lub układzie stacjonarnym.
4. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że węgiel aktywny jest w postaci ziarnistej, sypkiej lub monolitycznych kształtek.
5. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że węgiel aktywny charakteryzuje się powierzchnią powyżej 600 m2/g, a pH jego wodnej zawiesiny jest powyżej 6.
6. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że liniowe lipopeptydy rozdziela się przy użyciu znanych metod.
7. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że struktury liniowych lipopeptydów otrzymanych według sposobu przyjmują formuły chemiczne w postaci:
i2
RL /CH2 R ^CH iII
OHO gdzie:
R1 - grupa alkilowa o liczbie at. C > 4 oraz konfiguracji liniowej, izo- lub anteizo-;
R2 - peptyd zakończony C-końcem o dowolnej sekwencji aminokwasów, i długości od 4 do 12 aminokwasów.
Priority Applications (9)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL425775A PL243656B1 (pl) | 2018-05-30 | 2018-05-30 | Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury |
PCT/IB2019/054480 WO2019229690A2 (en) | 2018-05-30 | 2019-05-30 | Method of removing lipopeptides from solutions and changing their structure |
BR112020023776-0A BR112020023776A2 (pt) | 2018-05-30 | 2019-05-30 | método de remoção de lipopeptídeos a partir de soluções e mudança da sua estrutura |
CN201980036100.0A CN112262151B (zh) | 2018-05-30 | 2019-05-30 | 去除溶液中的脂肽以及改变脂肽结构的方法 |
EP19746144.5A EP3802561A2 (en) | 2018-05-30 | 2019-05-30 | Method of removing lipopeptides from solutions and changing their structure |
JP2020566585A JP7058767B2 (ja) | 2018-05-30 | 2019-05-30 | 溶液からリポペプチドを除去しかつそれらの構造を変更する方法 |
CA3105671A CA3105671A1 (en) | 2018-05-30 | 2019-05-30 | Method of removing lipopeptides from solutions and changing their structure |
US17/059,403 US11884745B2 (en) | 2018-05-30 | 2019-05-30 | Method of removing lipopeptides from solutions and changing their structure |
KR1020207036988A KR20210018852A (ko) | 2018-05-30 | 2019-05-30 | 용액으로부터 리포펩타이드를 수거하고 이들의 구조를 변형시키는 방법 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL425775A PL243656B1 (pl) | 2018-05-30 | 2018-05-30 | Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL425775A1 PL425775A1 (pl) | 2019-12-02 |
PL243656B1 true PL243656B1 (pl) | 2023-09-25 |
Family
ID=68655145
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL425775A PL243656B1 (pl) | 2018-05-30 | 2018-05-30 | Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US11884745B2 (pl) |
EP (1) | EP3802561A2 (pl) |
JP (1) | JP7058767B2 (pl) |
KR (1) | KR20210018852A (pl) |
CN (1) | CN112262151B (pl) |
BR (1) | BR112020023776A2 (pl) |
CA (1) | CA3105671A1 (pl) |
PL (1) | PL243656B1 (pl) |
WO (1) | WO2019229690A2 (pl) |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2545750B2 (ja) | 1994-09-21 | 1996-10-23 | 工業技術院長 | 直鎖状サーファクチン |
PT1107981E (pt) * | 1998-08-20 | 2005-05-31 | Lilly Co Eli | Sintese de analogos peptidicos ciclicos de anel modificado |
CA2491001A1 (en) | 2002-06-28 | 2004-01-08 | Faculte Universitaire Des Sciences Agronomiques De Gembloux | Novel use of lipopeptide preparations |
CN102276685A (zh) * | 2011-08-11 | 2011-12-14 | 华东理工大学 | 一种脂肽的水解方法 |
CN102659932B (zh) * | 2012-05-04 | 2016-01-13 | 华东师范大学 | 一种脂肽及其衍生物、及其制备方法和应用 |
CN105112476B (zh) * | 2015-04-15 | 2020-04-03 | 南京工业大学 | 一种发酵生产脂肽类生物表面活性剂的方法 |
KR20180003520A (ko) | 2017-12-27 | 2018-01-09 | 한국해양과학기술원 | 해양 유래 바실러스 서브틸리스가 생산하는 선형의 신규 항균 지질펩타이드, 가거스타틴 |
-
2018
- 2018-05-30 PL PL425775A patent/PL243656B1/pl unknown
-
2019
- 2019-05-30 KR KR1020207036988A patent/KR20210018852A/ko unknown
- 2019-05-30 EP EP19746144.5A patent/EP3802561A2/en active Pending
- 2019-05-30 WO PCT/IB2019/054480 patent/WO2019229690A2/en active Application Filing
- 2019-05-30 US US17/059,403 patent/US11884745B2/en active Active
- 2019-05-30 JP JP2020566585A patent/JP7058767B2/ja active Active
- 2019-05-30 CA CA3105671A patent/CA3105671A1/en active Pending
- 2019-05-30 CN CN201980036100.0A patent/CN112262151B/zh active Active
- 2019-05-30 BR BR112020023776-0A patent/BR112020023776A2/pt unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN112262151A (zh) | 2021-01-22 |
CN112262151B (zh) | 2024-07-05 |
WO2019229690A2 (en) | 2019-12-05 |
BR112020023776A2 (pt) | 2021-03-23 |
PL425775A1 (pl) | 2019-12-02 |
JP7058767B2 (ja) | 2022-04-22 |
CA3105671A1 (en) | 2019-12-05 |
US11884745B2 (en) | 2024-01-30 |
JP2021526141A (ja) | 2021-09-30 |
KR20210018852A (ko) | 2021-02-18 |
WO2019229690A3 (en) | 2020-03-05 |
US20210214393A1 (en) | 2021-07-15 |
EP3802561A2 (en) | 2021-04-14 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Mnif et al. | Review lipopeptides biosurfactants: mean classes and new insights for industrial, biomedical, and environmental applications | |
Geissler et al. | Lipopeptide biosurfactants from Bacillus species | |
JP3123078B2 (ja) | 環状リポペプチド物質の脱アシル化法 | |
Valivety et al. | Chemo‐enzymatic synthesis of amino acid‐based surfactants | |
Oku et al. | Unnarmicins A and C, new antibacterial depsipeptides produced by marine bacterium Photobacterium sp. MBIC06485 | |
RU2117672C1 (ru) | Липопептиды, способ получения, лекарственное средство и штамм actinoplanes sp. dsm 7358 в качестве продуцента липопептидов | |
Yonezawa et al. | New diketopiperazine derivatives isolated from sea urchin-derived bacillus sp. | |
Théatre et al. | Bacillus sp.: A remarkable source of bioactive lipopeptides | |
Hamdache et al. | Comparative genome analysis of Bacillus spp. and its relationship with bioactive nonribosomal peptide production | |
Röhrich et al. | Hypopulvins, novel peptaibiotics from the polyporicolous fungus Hypocrea pulvinata, are produced during infection of its natural hosts | |
Hirano et al. | Design and synthesis of diketopiperazine and acyclic analogs related to the caprazamycins and liposidomycins as potential antibacterial agents | |
Buchardt et al. | Phosphinic Peptide Matrix Metalloproteinase‐9 Inhibitors by Solid‐Phase Synthesis Using a Building Block Approach | |
PL243656B1 (pl) | Sposób usuwania lipopeptydów z roztworów i zmiana ich struktury | |
He et al. | Circulocins, new antibacterial lipopeptides from Bacillus circulans, J2154 | |
Hirota-Takahata et al. | Pedopeptins, novel inhibitors of LPS: Taxonomy of producing organism, fermentation, isolation, physicochemical properties and structural elucidation | |
CA2720173A1 (en) | Highly bridged peptides from actinomadura namibiensis | |
Mohammadipanah et al. | Persipeptides A and B, two cyclic peptides from Streptomyces sp. UTMC 1154 | |
RU2778683C2 (ru) | Способ удаления липопептидов из растворов и изменение их структуры | |
KR101370632B1 (ko) | 항균 활성을 포함한 다양한 생리 활성을 가지는 신규의 화합물, 이 화합물을 생성하는 해양 미생물 | |
EP3000821B1 (en) | Pseudofactin derivatives, a method of synthesizing pseudofactin derivatives and their use | |
Brückner et al. | Sequences of acretocins, peptaibiotics Containing the rare 1-aminocyclopropanecarboxylic acid, from Acremonium crotocinigenum CBS 217.70 | |
CN1373770A (zh) | 假单胞菌素前药 | |
KR101093079B1 (ko) | 유류분해능을 갖고 생물계면활성제를 생산하는 바실러스 서브틸리스 제이케이-1의 배양방법 | |
Ju-Soon et al. | Production and characterization of lipopeptide biosurfactant from Bacillus subtilis A8-8 | |
CA2112522A1 (en) | Tan-1511, its derivatives, production and use thereof |