NO880794L - USE OF MULLERIAN INHIBITIVE SUBSTANCE AS A CONTRACTIVE AGENT. - Google Patents

USE OF MULLERIAN INHIBITIVE SUBSTANCE AS A CONTRACTIVE AGENT.

Info

Publication number
NO880794L
NO880794L NO880794A NO880794A NO880794L NO 880794 L NO880794 L NO 880794L NO 880794 A NO880794 A NO 880794A NO 880794 A NO880794 A NO 880794A NO 880794 L NO880794 L NO 880794L
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
mis
mullerian
female
substance
oocytes
Prior art date
Application number
NO880794A
Other languages
Norwegian (no)
Other versions
NO880794D0 (en
Inventor
Patricia K Donahoe
Original Assignee
Gen Hospital Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from US06/877,735 external-priority patent/US4753794A/en
Application filed by Gen Hospital Corp filed Critical Gen Hospital Corp
Publication of NO880794D0 publication Critical patent/NO880794D0/en
Publication of NO880794L publication Critical patent/NO880794L/en

Links

Landscapes

  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Paper (AREA)

Description

Foreliggende oppfinnelse angår mulleriansk inhiberingssubstans og dettes bruk som kontraseptiv. The present invention relates to Mullerian inhibiting substance and its use as a contraceptive.

I. Mulleriansk inhiberingssubstansI. Mullerian inhibitory substance

Mulleriansk inhiberingssubstans, MIS, er et 140 000 dalton glykoprotein som er ansvarlig for regresjon av mulleriankanalen hos et hannembryo (Jost, A., Comptes Rend. Soc. Biol., 140:463:464 (1946); Jost, A., Comptes Rend. Soc. Biol., 141:135-136 (1947); Balanchard, M.G., et al., Ped. Res., 8:968-971 (1974); Donahoe, P.K., et al., Biol. Repro., 15:329-334 (1976); Donahoe, P.K., et al., J. Ped. Surg. , 12:323-330 (1977); Donahoe, P.K., et al., Biol. Repro., 16:238-243 (1977)). Mullerian inhibitory substance, MIS, is a 140,000 dalton glycoprotein responsible for regression of the Mullerian duct in a male embryo (Jost, A., Comptes Rend. Soc. Biol., 140:463:464 (1946); Jost, A., Comptes Rend. Soc. Biol., 141:135-136 (1947); Balanchard, M. G., et al., Ped. Res., 8:968-971 (1974); Donahoe, P. K., et al., Biol. Repro. , 15:329-334 (1976); Donahoe, P.K., et al., J. Ped. Surg., 12:323-330 (1977); Donahoe, P. K., et al., Biol. Repro., 16:238 -243 (1977)).

Mullian-inhiberingssubstansen er funnet å være et glyko-proteinhormon. Substansen produseres ved fetale og neonatale sertoli-celler av testes. MIS har vært delvis renset og er funnet å være et dimert glykoprotein på 72 000 henholdsvis 74 000 dalton (Budzik, G.P., et al., i: Lash, J.W., Saxen, L. , (utg.), Developmental Mechanisms: Normal and Abnormal. New York, Alan R. Liss, s. 207-223 (1985)). Rensingen av MIS er beskrevet av Donahoe, P.K., et al., (US-PS 4 510 131). The Mullian inhibitory substance has been found to be a glyco-protein hormone. The substance is produced by fetal and neonatal Sertoli cells of the testes. MIS has been partially purified and found to be a dimeric glycoprotein of 72,000 and 74,000 daltons, respectively (Budzik, G.P., et al., in: Lash, J.W., Saxen, L. , (eds.), Developmental Mechanisms: Normal and Abnormal. New York, Alan R. Liss, pp. 207-223 (1985)). The purification of MIS is described by Donahoe, P.K., et al., (US-PS 4,510,131).

Monoklonale antistoffer til MIS er utviklet og funnet å være brukbare ved rensing og fremstilling av MIS (Shima, H. , et al., Hybridoma, 3:201-214 (1984); Donahoe, P.K., et al., US-PS 4 487 833), Necklaws, E.C., et al., Endocrinology 118:791:796 (1986). Ved bruk av disse monoklonale antistoffer er det utviklet en radioimmunoanalyse for å påvise MIS (Hayashi, M. , et al., J. Histochem. Cytochem., 32:649:654 Monoclonal antibodies to MIS have been developed and found to be useful in the purification and preparation of MIS (Shima, H., et al., Hybridoma, 3:201-214 (1984); Donahoe, P.K., et al., US-PS 4 487,833), Necklaws, E.C., et al., Endocrinology 118:791:796 (1986). Using these monoclonal antibodies, a radioimmunoassay has been developed to detect MIS (Hayashi, M., et al., J. Histochem. Cytochem., 32:649:654

(1984)). Denne radioimmunoanalyse har påvist MIS i follikulær fluidet av modne bovinovarier (Vigler, B., et al., Endocrinol., 114:1315-1320 (1984), i fluid fra store og små follikler til nyfødte ovarier (Necklaws, E. , et al., Endocrinol., 2:791-796 (1986), og i inkuberingsmedia til bovingranuloseceller (Vigler, B., et al., supra, (1984)). (1984)). This radioimmunoassay has detected MIS in the follicular fluid of mature bovine ovaries (Vigler, B., et al., Endocrinol., 114:1315-1320 (1984), in fluid from large and small follicles of newborn ovaries (Necklaws, E., et al. al., Endocrinol., 2:791-796 (1986), and in incubation media of bovine granulosa cells (Vigler, B., et al., supra, (1984)).

MIS er funnet å være cytotoksisk mot humanovariecancerceller in vitro (Donahoe, P.K., et al., Science, 205:913-915 MIS has been found to be cytotoxic against human ovarian cancer cells in vitro (Donahoe, P.K., et al., Science, 205:913-915

(1979)). De er også funnet å være effektive mot denne cancer in vivo (Donahoe, P.K., et al., US-PS 4 510 131). (1979)). They have also been found to be effective against this cancer in vivo (Donahoe, P.K., et al., US-PS 4,510,131).

Genet for MIS er klonet og eksprimert i vevkulturceller; både DNA- og aminosyresekvensene er kjent (Cate, R.L. , et al., Cell, 45:685-698 (1986)). The gene for MIS has been cloned and expressed in tissue culture cells; both the DNA and amino acid sequences are known (Cate, R.L., et al., Cell, 45:685-698 (1986)).

II. PattedyrembryologiII. Mammalian Embryology

Pattedyroocyttene går inn i den første meiotiske del under det fetale liv, men stanses i den sene profase (i dicytatet eller diffus diplotentrinnet i meiose) før eller akkurat etter fødsel (Beaumont, H.M., et al., Proe. R. Soc. London (Series Biological Sciences) 155:557-579 (1962)). Gjenopptak av meiose skjer vanligvis ikke inntil kort før ovulering når et behov for gonadotropiner fremmer gjenopptak av den meiotiske modning (Dekel, N. , et al., Proe. Nati. Acad. Sei. USA, 75:4369-4373 (1978)). Preovulart gjenopptak av meiose karakteriseres ved: (1) nedbrytning av strukturer kjent som germinale vesikler, GV; (2) ekspulsering av det første polare legemet; og (3) fremskriden til metafasen for den andre meiotiske del (Tsafriri, A., et al., J. Repro. Fertil., 64:541-551 (1982). Hos rotter faller MIS-produksjonsperioden til ovariet sammen med perioden for oocyttmeiotisk stans. De fysiologiske mekanismer som er ansvarlig for å holde oocytten i en tilstand av meiotisk stans er ukjent, men er ikke vesentlig for en forståelse av foreliggende oppfinnelse. Slike mekanismer antas å reguleres ved oppfinnelsens MIS. Det er imidlertid velkjent at visse gnager-, storfe- eller svin-oocytter dyrkes in vitro og deretter isoleres fra follikler, gjenopptar de meiosen spontant (Edwards, R.G., Nature, 196:446-450 (1962); Foote, W.D., et al., Anal. Biol. Animale Bloch. Biophys. (Paris), 9:329-349 (1969)=. The mammary thyrocytes enter the first meiotic division during fetal life, but are arrested in the late prophase (in the dicytate or diffuse diplotene stage of meiosis) before or just after birth (Beaumont, H.M., et al., Proe. R. Soc. London ( Series Biological Sciences) 155:557-579 (1962)). Resumption of meiosis usually does not occur until shortly before ovulation when a need for gonadotropins promotes resumption of meiotic maturation (Dekel, N., et al., Proe. Nati. Acad. Sei. USA, 75:4369-4373 (1978)) . Preovular resumption of meiosis is characterized by: (1) breakdown of structures known as germinal vesicles, GV; (2) ejection of the first polar body; and (3) the progression to metaphase of the second meiotic division (Tsafriri, A., et al., J. Repro. Fertil., 64:541-551 (1982). In rats, the MIS production period of the ovary coincides with the period of oocyte meiotic arrest. The physiological mechanisms responsible for keeping the oocyte in a state of meiotic arrest are unknown, but are not essential for an understanding of the present invention. Such mechanisms are believed to be regulated by the MIS of the invention. However, it is well known that certain rodents , bovine or porcine oocytes are cultured in vitro and then isolated from follicles, they spontaneously resume meiosis (Edwards, R.G., Nature, 196:446-450 (1962); Foote, W.D., et al., Anal. Biol. Animale Bloch .Biophys.(Paris), 9:329-349 (1969)=.

III. Meiose- inhibitorerIII. Meiosis inhibitors

Tre forskjellige typer molekyler er angitt å være involvert i meiose-inhibering hos pattedyroocytter: (1) en lav-molekyl-vektsproteinfraksjon av follikulær fluid eller granulosaceller (kalt "oocyttmeiose-inhibitor" ), (2) steroider, og (3) cAMP og andre nukleotider (Downs, S.M., et al., Proe. Nati. Acad. Sei. USA, 82:454-458 (1985 ); McGaughey, R.W., Endocrinol., 100:39-45 (1977); Dekel, N., et al., Biol. Repro., 20:191-197 (1979); og Hubbard, C.J., et al., Biol. Repro., 26:628:632 (1982)). Oocyttmeiose-inhibitoren fremstilles av granulosaceller og er tilstede i mullerian-follikulærfluid. Partiell rensing av dette fluid har vist at oocyttmeiose-inhibitoren er et lite polypeptid med en molekylvekt på under 6 000, Sato. E. , et al., Differentiation, 26;59-62 (1984). Dette protein forhindrer det spontane gjenopptak av meiose i dyrkede kumuluscelle-innelukkede oocytter, men ikke i avkledde oocytter, Hillensjo, T. et al., Adv. Exper. Med. Biol., 147:175-188 Three different types of molecules have been suggested to be involved in meiosis inhibition in mammalian oocytes: (1) a low-molecular-weight protein fraction of follicular fluid or granulosa cells (termed "oocyte meiosis inhibitor"), (2) steroids, and (3) cAMP and other nucleotides (Downs, S.M., et al., Proe. Nati. Acad. Sei. USA, 82:454-458 (1985); McGaughey, R.W., Endocrinol., 100:39-45 (1977); Dekel, N. , et al., Biol. Repro., 20:191-197 (1979); and Hubbard, C.J., et al., Biol. Repro., 26:628:632 (1982)). The oocyte meiosis inhibitor is produced by granulosa cells and is present in mullerian follicular fluid. Partial purification of this fluid has shown that the oocyte meiosis inhibitor is a small polypeptide with a molecular weight of less than 6,000, Sato. E., et al., Differentiation, 26;59-62 (1984). This protein prevents the spontaneous resumption of meiosis in cultured cumulus cell-enclosed oocytes, but not in undressed oocytes, Hillensjo, T. et al., Adv. Exper. With. Biol., 147:175-188

(1982). Proteinets inhiberende virkning kan overvinnes ved luteiniseringshormonet, LH. De inhiberende virkninger kan også snus ved å fjerne faktoren fra dyrkningsmediet (Sato. E. et al., supra). (1982). The protein's inhibitory effect can be overcome by the luteinizing hormone, LH. The inhibitory effects can also be reversed by removing the factor from the culture medium (Sato. E. et al., supra).

Som en oppsummering beskriver således den kjente teknikk at MIS, et høy-molekylvektsglykoprotein, fremstilles av pattedyrtestes. MIS er i stand til å styre regresjonen av mulleriankanalen i et hannembryo under utvikling. I fravær av denne substans vil mulleriankanalen fortsette sin utvikling til det kvinnelige reproduktivsystem. Thus, as a summary, the prior art describes that MIS, a high molecular weight glycoprotein, is produced by mammalian testes. MIS is able to direct the regression of the Mullerian duct in a developing male embryo. In the absence of this substance, the Mullerian duct will continue its development into the female reproductive system.

Når det er dannet i embryon under utvikling, blir den etterfølgende utvikling av pattedyr occytter stanset i det sene profasetrinn av meiosen. Denne inhibering av utviklingen antas å være resultatet av interaksjoner mellom det kvinnelige reproduktivsystem og enten en lav-molekylvektsoocytt-meiose-inhibitor, steroider eller nukleotider slik som cAMP. Foreliggende oppfinnelse er basert på den oppdagelse at mullerian-inhiberingssubstansen er funnet å inhibere oocyttmeiose. Denne inhibering forhindrer dannelsen av mature oocytter og resulterer derfor i en infertilitetstilstand. Viktig er at denne inhibering er reversibel via administrering av forbindelser som epidermal vekstfaktor. Således angår foreliggende oppfinnelse anvendelsen av MIS som et kontraseptivt middel. Søkeren tror, men ønsker ikke å være bundet av denne teori, at kontraseptivevnen til MIS stammer fra MIS's evne til å interferere med oocyttmodningen. Once formed in the developing embryo, the subsequent development of mammalian oocytes is arrested in the late prophase stage of meiosis. This inhibition of development is believed to be the result of interactions between the female reproductive system and either a low molecular weight oocyte meiosis inhibitor, steroids or nucleotides such as cAMP. The present invention is based on the discovery that the mullerian inhibitory substance has been found to inhibit oocyte meiosis. This inhibition prevents the formation of mature oocytes and therefore results in a state of infertility. Importantly, this inhibition is reversible via the administration of compounds such as epidermal growth factor. Thus, the present invention relates to the use of MIS as a contraceptive. Applicant believes, but does not wish to be bound by this theory, that the contraceptive ability of MIS derives from MIS' ability to interfere with oocyte maturation.

I detalj, tilveiebringer foreliggende oppfinnelse et preparat egnet for bruk som et kontraseptivmiddel og som omfatter mullerian-inhiberingssubstans som er i det vesentlige fri for naturlige kontaminanter. In detail, the present invention provides a preparation suitable for use as a contraceptive and comprising mullerian inhibitory substance which is substantially free of natural contaminants.

I tillegg angår oppfinnelsen en fremgangsmåte for kontrasepsjon som omfatter til en kvinne å tilveiebringe en effektiv mengde av det ovenfor angitte preparat. In addition, the invention relates to a method for contraception which comprises providing a woman with an effective amount of the above-mentioned preparation.

Oppfinnelsen er også rettet mot et preparat egnet for bruk som et fertilitetslnduserende middel som omfatter et antistoff i stand til binding til mullerian-inhiberingssubstansen hvorved antistoffet er i det vesentlige fritt for naturlige kontaminanter. The invention is also directed to a preparation suitable for use as a fertility-inducing agent comprising an antibody capable of binding to the mullerian inhibitory substance whereby the antibody is essentially free of natural contaminants.

Oppfinnelsen er videre rettet mot en fremgangsmåte for å indusere fertilitet hos kvinner og som omfatter å tilveiebringe hos kvinnen en effektiv mengde av det ovenfor angitte antistoffpreparat. The invention is further directed to a method for inducing fertility in women and which comprises providing the woman with an effective amount of the above-mentioned antibody preparation.

Oppfinnelsen er videre rettet mot en fremgangsmåte for å reversere den kontraseptive aktivitet av mullerian-inhiberingssubstans og som omfatter hos en kvinnelig mottager av mullerian-inhiberingssubstans å gi et middel I stand til å reversere kontraseptivaktiviteten i en mengde tilstrekkelig til å oppnå denne reversering. The invention is further directed to a method for reversing the contraceptive activity of mullerian inhibiting substance and which comprises in a female recipient of mullerian inhibiting substance providing an agent capable of reversing the contraceptive activity in an amount sufficient to achieve this reversal.

Oppfinnelsen tilveiebringe i tillegg en fremgangsmåte for å kontrollere fertiliteten hos en kvinne og denne omfatter: (a) å tilveiebringe en initialmengde mullerian-inhiberende substans i tilstrekkelig grad til å indusere en infertilitetstilstand hos kvinnen, (b) å opprettholde infertilitetstilstanden i en ønsket tidsperiode ved å tilveiebringe en ytterligere mengde The invention additionally provides a method for controlling fertility in a woman and this comprises: (a) providing an initial amount of mullerian-inhibiting substance sufficient to induce a state of infertility in the woman, (b) maintaining the state of infertility for a desired period of time by to provide a further quantity

mullerian-inhiberingssubstans, ogmullerian inhibitory substance, and

(c) hvis ønskelig, å tilveiebringe et middel i stand til å (c) if desired, to provide a means capable of

reversere den infertilitetstilstand som er indusert av mullerian-inhiberingssubstansen i en mengde tilstrekkelig til å Indusere en fertilitetstilstand. reversing the state of infertility induced by the mullerian inhibitory substance in an amount sufficient to induce a state of fertility.

Figur 1 er en tegning av en matur graf-follikkel som viser de relative posisjoner av immatur oocytt, kumulusceller og den germinale vesikkelstruktur. Figur 2 viser tidssekvensen for oocyttmodning, målt ved germinal vesikkelnedbrytning av avkledde rotteoocytter 1 nærvær av eller fravær av MIS. Figur 3 viser den midlere prosentandel germinal vesikkelnedbrytning som ble funnet å skje i nærvær eller fravær av MIS etter en inkuberingstid på 4-5 timer. Stjernene antyder at disse datas signifikans har en p-verdi på mindre enn 0,01. Figur 4 viser virkningen av varigheten av MIS-nærværet på prosentandelen oocytter som undergår germinal vesikkelnedbrytning. Reversibiliteten til MIS-aktiviteten er vist. Figurene 5A henholdsvis 5B viser virkningen av dibutyryl-cyklisk AMP og MIS på prosentandelen av avkledde oocytter eller kumulus celle-Innelukkede oocytter som undergår germinal vesikkelnedbrytning. Figur 6 viser virkningen av reproduktive hormoner på MIS-indusert inhibering av germinal vesikkelnedbrytning i avkledde og kumulus celle-innelukkede oocytter. Figur 7 viser virkningen av MIS på germinal vesikkelnedbrytning i avkledde og kumulus celle-innelukkede museoocytter. Figur 8 viser evnen til rekombinant human MIS-preparater til Figure 1 is a drawing of a mature graph follicle showing the relative positions of the immature oocyte, cumulus cells and the germinal vesicle structure. Figure 2 shows the time sequence of oocyte maturation, measured by germinal vesicle breakdown of stripped rat oocytes 1 in the presence or absence of MIS. Figure 3 shows the mean percentage of germinal vesicle degradation found to occur in the presence or absence of MIS after an incubation time of 4-5 hours. The asterisks indicate that the significance of these data has a p-value of less than 0.01. Figure 4 shows the effect of the duration of MIS presence on the percentage of oocytes undergoing germinal vesicle breakdown. The reversibility of the MIS activity is shown. Figures 5A and 5B respectively show the effect of dibutyryl-cyclic AMP and MIS on the percentage of undressed oocytes or cumulus cell-enclosed oocytes undergoing germinal vesicle breakdown. Figure 6 shows the effect of reproductive hormones on MIS-induced inhibition of germinal vesicle breakdown in undressed and cumulus cell-enclosed oocytes. Figure 7 shows the effect of MIS on germinal vesicle degradation in undressed and cumulus cell-enclosed mouse oocytes. Figure 8 shows the ability of recombinant human MIS preparations to

å inhibere nedbrytning av germinalveslkler.to inhibit the breakdown of germinal vesicles.

Figur 9 viser evnen til epidermal vekstfaktor til å reversere evnen til MIS til å Inhibere germinal vesikkelnedbrytning. Figure 9 shows the ability of epidermal growth factor to reverse the ability of MIS to inhibit germinal vesicle degradation.

Mullerian-inhiberende substans kan oppnås ved et antall forskjellige metoder. Substansen kan renses fra testikulaervev i henhold til Donahoe, P.K. , et al., (US-PS 4 510 131 og 4 404 188). Alternativt kan MIS renses fra testikulaervev ved bruk av immunoaffinitetskromatografi som beskrevet av Donahoe, P.K., et al., (US-PS 4 487 833). Materialet kan også oppnås ved hjelp av rekombinant DNA-teknikker (Cate, R.L., et al., Cell, 45:685-698 (1986)). Mullerian inhibitory substance can be obtained by a number of different methods. The substance can be purified from testicular tissue according to Donahoe, P.K. , et al., (US-PS 4,510,131 and 4,404,188). Alternatively, MIS can be purified from testicular tissue using immunoaffinity chromatography as described by Donahoe, P.K., et al., (US-PS 4,487,833). The material can also be obtained by recombinant DNA techniques (Cate, R.L., et al., Cell, 45:685-698 (1986)).

Uttrykket "mullerian-inhiberingssubstans! (også angitt som "MIS") er ment å inkludere forbindelser og stoffer som er strukturelt like MIS. Eksempler på slike inkluderer stoffer og materialer som salter, derivater og aglykone former av MIS. I tillegg er foreliggende oppfinnelse ment å inkludere mutante former av MIS som har i det vesentlige den samme biologiske aktivitet som MIS. Eksempler på slike mutante former er MIS-molekyler som har en utelatelse, et innskudd eller en endring i aminosyresekvensen. MIS kan oppnås fra enhver pattedyrkilde eller, som antydet ovenfor, fra ikke-pattedyrkllder via bruk av rekombinant DNA-teknologi, eller fra den kjemiske syntese av MIS-proteinet. The term "mullerian inhibitory substance! (also referred to as "MIS") is intended to include compounds and substances structurally similar to MIS. Examples of such include substances and materials such as salts, derivatives and aglycone forms of MIS. In addition, the present invention is intended to include mutant forms of MIS that have substantially the same biological activity as MIS. Examples of such mutant forms are MIS molecules that have a deletion, insertion, or change in the amino acid sequence. MIS can be obtained from any mammalian source or, as indicated above, from non-mammalian lineages via the use of recombinant DNA technology, or from the chemical synthesis of the MIS protein.

Uttrykket "peptidfragment" er ment å inkludere både synte-tisk og naturlig forekommende aminosyresekvenser som kan avledes fra den naturlig forekommende aminosyresekvens av The term "peptide fragment" is intended to include both synthetic and naturally occurring amino acid sequences that can be derived from the naturally occurring amino acid sequence of

MIS. MIS.

Et peptid sies å være "avledbart fra den naturlig forekommende aminosyresekvens av MIC" hvis den kan oppnås ved fragmentering av den naturlig forekommende valgte MIS-sekvens, eller hvis den kan syntetiseres basert på kunnskap om sekvensen til den naturlig forekommende aminosyresekvens eller det genetiske materialet (DNA eller RNA) som koder denne sekvens. A peptide is said to be "derivable from the naturally occurring amino acid sequence of the MIC" if it can be obtained by fragmentation of the naturally occurring selected MIS sequence, or if it can be synthesized based on knowledge of the sequence of the naturally occurring amino acid sequence or the genetic material ( DNA or RNA) that encodes this sequence.

Et materiale sies å være "i det vesentlige fritt for naturlige kontaminanter" hvis det i vesentlig grad er renset for materialer med hvilket det vanligvis og naturlig finnes men før rensing. Eksempler på naturlige kontaminanter med hvilke MIS kan forbindes er: andre peptider, karbohydrater, glykosylerte peptider, lipider, membran, osv. Et materiale sies også å være i det vesentlige fritt for naturlige kontaminanter hvis disse i det vesentlige er fraværende fra en prøve av materialet. A material is said to be "substantially free of natural contaminants" if it has been substantially cleaned of materials with which it usually and naturally exists but before cleaning. Examples of natural contaminants with which MIS can be associated are: other peptides, carbohydrates, glycosylated peptides, lipids, membrane, etc. A material is also said to be essentially free of natural contaminants if these are essentially absent from a sample of the material .

Et gen er sagt å være et "rekombinant" gen, hvis det stammer fra anvendelse av rekombinant DNA-teknikker. Eksempler på rekombinant DNA-teknikker er kloning, mutagenese, transfor-mering, osv. Rekombinant DNA-teknikker er beskrevet av Maniatis, T., et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, NY (1982). A gene is said to be a "recombinant" gene, if it originates from the application of recombinant DNA techniques. Examples of recombinant DNA techniques are cloning, mutagenesis, transformation, etc. Recombinant DNA techniques are described by Maniatis, T., et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, NY (1982).

Oppfinnelsen angår videre polypeptlder som 1 tillegg til den valgte sekvens kan inneholde eller mangle en eller flere aminosyrer som Ikke behøver å være tilstede i den naturlig forekommende sekvens, der slike polypeptlder funksjonelt tilsvarer det valgte polypeptid. SLike polypeptlder kalles for oppfinnelsens formål "funksjonelle derivater", forutsatt at de viser aktivitet som i det vesentlige tilsvarer den til The invention further relates to polypeptides which, in addition to the selected sequence, may contain or lack one or more amino acids which need not be present in the naturally occurring sequence, where such polypeptides functionally correspond to the selected polypeptide. For the purposes of the invention, similar polypeptides are called "functional derivatives", provided that they show activity substantially equivalent to that of

MIS. MIS.

Inkludert innenfor oppfinnelsens ramme er de peptidfragmenter i MIS som er i stand til å virke som inhibitorer for oocyttmodning. Også inkludert er bruken av ytterligere aminosyrerester tilsatt for å forbedre koblingen til baererproteinet eller aminosyrerester som tilsettes for å øke den Inhiberende effekt. Som kjent 1 denne teknikk kan aminosyrerestene til MIS foreligge i beskyttet eller ikke-beskyttet form ved bruk av egnede amino- eller karboksyl-beskyttende grupper. MIS kan også foreligge i form av kationiske saltgrupper. Brukbare kationer er alkali- eller jordalkalimetallkationer, f.eks. Na, K, Li, tøCa, tøBa, etc, eller aminkationer slik som tetraalkylammonium, trialkyl-ammonium, der alkyl kan være C^-C^g'Included within the scope of the invention are those peptide fragments in MIS that are capable of acting as inhibitors of oocyte maturation. Also included is the use of additional amino acid residues added to improve binding to the carrier protein or amino acid residues added to increase the inhibitory effect. As known in the art, the amino acid residues of MIS can be in protected or unprotected form using suitable amino or carboxyl protecting groups. MIS can also exist in the form of cationic salt groups. Useful cations are alkali or alkaline earth metal cations, e.g. Na, K, Li, tøCa, tøBa, etc, or amine cations such as tetraalkylammonium, trialkylammonium, where alkyl can be C^-C^g'

MIS-preparatet kan foreligge i form av de frie aminer (på N-terminus), eller syreaddisjonssalter derav. Vanlige syreaddisjonssalter er hydrogenhalogensyresalter som HBr, HI eller helst HC1. The MIS preparation can be in the form of the free amines (at the N-terminus), or acid addition salts thereof. Common acid addition salts are hydrohalic acid salts such as HBr, HI or preferably HC1.

MIS-preparatene Ifølge oppfinnelsen kan formuleres i henhold til kjente metoder for fremstilling av farmasøytisk brukbare preparater, der MIS eller funksjonelle derivater derav kombineres i blanding med en farmasøytisk akseptabel bærer. Egnede bærere og disses formulering inkludert andre human-proteiner, f.eks. humanserumalbumln, er f.eks. beskrevet i Remington's Pharmaceutical Sciences (16. utg. A. Oslo. utg. Mack, Easton PA (1980)). For å danne et farmasøytisk aksepterbart preparat egnet for effektiv administrering vil slike preparater inneholde en effektiv mengde MIS eller dettes funksjonelle derivat, sammen med en egnet mengde bærer. The MIS preparations according to the invention can be formulated according to known methods for the production of pharmaceutically usable preparations, where MIS or functional derivatives thereof are combined in admixture with a pharmaceutically acceptable carrier. Suitable carriers and their formulation including other human proteins, e.g. human serum albumin, is e.g. described in Remington's Pharmaceutical Sciences (16th ed. A. Oslo. ed. Mack, Easton PA (1980)). To form a pharmaceutically acceptable preparation suitable for effective administration, such preparations will contain an effective amount of MIS or its functional derivative, together with a suitable amount of carrier.

En "egnet mengde" MIS er en mengde som er tilstrekkelig til å oppnå kontrasepsjon i et ovulerende menneske eller dyr. I henhold til oppfinnelsen kan kontrasepsjon oppnås ved å interferere med den naturlige utvikling av stansede oocytter til mature oocytter. Den effektive mengde kan variere avhengig av kriterier som alder, vekt, fysikalsk tilstand, tidligere medisinsk historie samt resipientsensitivitet, men ligger fortrinnsvis mellom 10~<7>til IO"<2>M. An "appropriate amount" of MIS is an amount sufficient to achieve contraception in an ovulating human or animal. According to the invention, contraception can be achieved by interfering with the natural development of arrested oocytes into mature oocytes. The effective amount may vary depending on criteria such as age, weight, physical condition, previous medical history and recipient sensitivity, but is preferably between 10~<7> to 10"<2>M.

Fordi kontraseptivaktiviteten til MIS er reversibel, er det foretrukket kontinuerlig å tilveiebringe en effektiv mengde MIS til en resipient for å opprettholde en forlenget tilstand av indusert infertilitet. F.eks. kan månedlig eller to-månedlig administrering benyttes. Alternativt kan det benyttes preparater med langsom avgivelse av aktivt materiale. Faktorer som ville påvirke administreringsfrekvensen for MIS inkluderer de farmakokinetiske data ved opphold i ovariet, preparatpotensen, osv. Because the contraceptive activity of MIS is reversible, it is preferred to continuously provide an effective amount of MIS to a recipient to maintain a prolonged state of induced infertility. E.g. monthly or bi-monthly administration can be used. Alternatively, preparations with a slow release of active material can be used. Factors that would affect the frequency of administration of MIS include the pharmacokinetic data on residence in the ovary, the formulation potency, etc.

Preparater inneholdende MIS eller funksjonelle derivater kan administreres oralt, intravenøst, intramuskulært, subkutant eller lokalt. Preparations containing MIS or functional derivatives can be administered orally, intravenously, intramuscularly, subcutaneously or locally.

For parenteral administrering beskrives det preparater inneholdende MIS i destillert vann, der pH-verdien er justert til ca. 6-8. For å lette lyof iliseringsprosessen som resulterer i et egnet produkt, kan laktose tilsettes til oppløsningen. Oppløsningen ble så flltersterillsert, fylt på ampuller og lyofllisert. Konsentrasjonen av MIS I disse preparater kan variere fra IO"<7>til IO-<2>M. For parenteral administration, preparations containing MIS in distilled water are described, where the pH value has been adjusted to approx. 6-8. To facilitate the lyophilization process resulting in a suitable product, lactose may be added to the solution. The solution was then filter sterilized, filled into ampoules and lyophilized. The concentration of MIS in these preparations can vary from IO"<7> to IO-<2>M.

Ytterligere farmasøytiske metoder kan benyttes for å kontrollere vlrkningsvarigheten. Preparater med kontrollert avgivelse kan oppnås ved bruk av polymerer for å kompleks-danne eller adsorbere MIS eller de funksjonelle derivater derav. Den kontrollerte avgivelse kan utøves ved valg av egnede makromolekyler Ø(f.eks. polyestere, polyaminosyrer, povinylpyrrolldon, etylenvinylacetat, metylcellulose, karboksymetylcellulose og protaminsulfat) og konsentrasjonen av makromolekylene så vel som metodene for Innarbeiding av disse for å styre avgivelsen. En annen mulig metode for å kontrollere varigheten av virkningen ved kontrollert avgivelse av et preparat er å innarbeide MIS i partikler av et polymermateriale slik som polyestere, polyamlnosyrer, hydrogeler, poly(melkesyre) eller etylenvinylacetat-kopolymerer. Alternativt og i stedet for å innarbeide MIS i disse polymerpartikler, er det mulig å fange inn MIS i mikrokapsler som f.eks. er fremstilt ved koaserverings-teknikker eller ved en grenseflatepolymerisering, f.eks. hydroksymetylcellulose eller gelatin-mikrokapsler og poly(metylmetakrylat)mikrokapsler, eller i kolloide medikamentavgivelsessystemer som f.eks. llposomer, albumin-mikrosfærer, mikroemulsjoner, nanopartikler og nanokapsler eller i makroemulsjoner. Dette er beskrevet nærmere i Remington's Pharmaceutical Sciences, supra (1980). Additional pharmaceutical methods can be used to control the duration of exposure. Controlled release preparations can be obtained by using polymers to complex or adsorb MIS or its functional derivatives. The controlled release can be carried out by choosing suitable macromolecules Ø (e.g. polyesters, polyamino acids, povinylpyrroldone, ethylene vinyl acetate, methylcellulose, carboxymethylcellulose and protamine sulfate) and the concentration of the macromolecules as well as the methods for their incorporation to control the release. Another possible method to control the duration of the effect by controlled release of a preparation is to incorporate MIS into particles of a polymer material such as polyesters, polyamlinic acids, hydrogels, poly(lactic acid) or ethylene vinyl acetate copolymers. Alternatively and instead of incorporating MIS into these polymer particles, it is possible to capture MIS in microcapsules such as e.g. is produced by coaservation techniques or by an interfacial polymerization, e.g. hydroxymethyl cellulose or gelatin microcapsules and poly(methyl methacrylate) microcapsules, or in colloidal drug delivery systems such as e.g. Liposomes, albumin microspheres, microemulsions, nanoparticles and nanocapsules or in macroemulsions. This is described in more detail in Remington's Pharmaceutical Sciences, supra (1980).

Oppfinnelsens MIS kan administreres ved bruk av enten et "bolus"- eller et "forsinket avgivelse"-preparat. Uttrykket "bolus" er ment å henvise til enhver administreringsform som medfører å tilveiebringe MIS i diskrete og separerbare doser. Piller, tabletter, kapsler, Injeksjonsenheter, osv. utgjør alle eksempler på bolus-administrering. Når det gjelder forsinket avgivelse, henviser dette til enhver admini-strasjonsform som medfører tilveiebringelse av MIS på kontinuerlig måte i lang tid. Eksempel på dette er implan-tater, infusjonselementer, tidsavgivende innretninger, osv. The MIS of the invention can be administered using either a "bolus" or a "delayed release" formulation. The term "bolus" is intended to refer to any form of administration which involves providing MIS in discrete and separable doses. Pills, tablets, capsules, injection devices, etc. are all examples of bolus administration. When it comes to delayed submission, this refers to any form of administration that entails the provision of MIS continuously for a long time. Examples of this are implants, infusion elements, time-releasing devices, etc.

Oppfinnelsens MIS og de funksjonelle derivater derav, enten alene eller i farmakologisk aksepterbare preparater, er brukbare som kontraseptive midler i ovulerende mennesker eller dyr. Evnen til MIS til å gripe inn overfor normal oocyttmaturasjon antas, uten å være bundet av noen teori, å skyldes den konseptive effektivitet til MIS. The MIS of the invention and the functional derivatives thereof, either alone or in pharmacologically acceptable preparations, are usable as contraceptives in ovulating humans or animals. The ability of MIS to intervene against normal oocyte maturation is believed, without being bound by theory, to be due to the conceptive efficiency of MIS.

Et aspekt ved foreliggende oppfinnelse stammer fra den oppdagelse at den kontraseptive virkning til MIS (dvs. evnen til MIS til å inhibere oocyttmaturering) kan reverseres ved forbindelser slik som epldermal vekstfaktor, EGF. Både effektiviteten av den kontraseptive aktivitet til MIS og muligheten for reversering ved hjelp av forbindelser slik som EGF, øker med økende MIS-konsentrasjon. Epidermal vekstfaktor er et peptidhormon som stimulerer veksten og differen-sieringen av epidermalvev under embryogenese (Carpenter, G. , et al., Exper. Cell. Res. 164:1-10 (1986); Kris, R.M., et al., Blo-Technol. 3:135-140 (1985)). EGF kan renses fra naturlige kilder eller oppnås via anvendelse av rekombinant DNA-teknologl. Mengden EGF som er nødvendig for å reversere kontraseptlvvirkningene av MIS bestemmes generelt via en betraktning av de samme faktorer som de som ble tatt opp ved bestemmelse av doseringen og administreringsmåten for MIS. Den mengde EGF som er nødvendig for å reversere den kontraseptive virkning vil generelt variere fra ca. IO-<7>til ca. IO-<2>M. EGF kan oppnås fra Collaboratlve Research, Lexington, One aspect of the present invention stems from the discovery that the contraceptive effect of MIS (ie, the ability of MIS to inhibit oocyte maturation) can be reversed by compounds such as epidermal growth factor, EGF. Both the effectiveness of the contraceptive activity of MIS and the possibility of reversal using compounds such as EGF increase with increasing MIS concentration. Epidermal growth factor is a peptide hormone that stimulates the growth and differentiation of epidermal tissue during embryogenesis (Carpenter, G., et al., Exper. Cell. Res. 164:1-10 (1986); Kris, R.M., et al., Blo -Technol. 3:135-140 (1985)). EGF can be purified from natural sources or obtained via the use of recombinant DNA technology. The amount of EGF necessary to reverse the contraceptive effects of MIS is generally determined via consideration of the same factors as those considered in determining the dosage and mode of administration of MIS. The amount of EGF required to reverse the contraceptive effect will generally vary from approx. IO-<7> to approx. IO-<2>M. EGF can be obtained from Collaboratlve Research, Lexington,

MA. MA.

Slik det ville være klart for fagmannen, er den foregående diskusjon når det gjelder farmasøytiske preparater også anvendbar på formulering av farmasøytisk egnede formuleringer av epidermal vekstfaktor eller anti-MIS-antisera. As would be apparent to those skilled in the art, the foregoing discussion regarding pharmaceutical preparations is also applicable to the formulation of pharmaceutically suitable formulations of epidermal growth factor or anti-MIS antisera.

Anti-MIS-antisera eller monoklonalt antlstofff kan benyttes for å fremme fertilitet hos hunnpasienter hvis infertiliteten er forårsaket av abnormt høy produksjon av MIS. Antistoffet kan administreres lokalt eller på enhver annen egnet måte. Doseringsområdene er fra 10~<7>til IO"<2>M. Anti-MIS antisera or monoclonal antibody can be used to promote fertility in female patients if the infertility is caused by abnormally high production of MIS. The antibody may be administered locally or by any other suitable means. The dosage ranges are from 10~<7> to IO"<2>M.

Etter at oppfinnelsen nå er beskrevet generelt, vil den forstås bedre under henvisning til visse spesifikke eksempler som her Innarbeides for å illustreres, uten å virke begrens-ende, på oppfinnelsen. After the invention has now been described in general, it will be better understood with reference to certain specific examples which are incorporated here to illustrate, without being limiting, the invention.

EKSEMPEL 1EXAMPLE 1

Rensing av mullerlan- lnhiberende substans Purification of mullerlan-lnhibiting substance

Mulllerian-inhiberende substans ble renset i henhold til Budzik, G.P., et al., Cell, 21:909-915 (1980) og Budzik, G.P., et al., Cell, 34:307-314 (1983). Kort sagt ble testikler fra kalver på under to uker oppmalt til 1 mm fragmenter i iset, serumfritt Ham's F10 medium (Budzik, G.P., et al., (1980), supra) og deretter inkubert ved 37° C i 45 minutter under mild omrøring. Mediet ble konsentrert ved ammoniumsulfatutfelling, reekvilibrert 250 mM NaCl, 10 mM natriumfosfat, 0,03$ natriumazid, 1 mM EDTA, pH 8, og så tilført til en dietylaminoetyl bio-gel-A-kolonne. Det ble funnet høy biologisk aktivitet i den ikke-bundne fraksjon. Denne fraksjon ble så justert til pH 5 ved forbruk av fortynnet HC1, sentrifugert ved 40 000 x g i 10 minutter for å fjerne presipitatet, og supernatanten ble så ført gjennom en karboksymetyl bio-gel-A-kolonne som var forekvilibrert med 50 mM NaCl, 10 mM natriumfosfat, 0,03$ natriumazid, 1 mM EDTA, pH 6. Den ikke-bundne fraksjon som igjen viste høy biologisk aktivitet, ble konsentrert 3 ganger på et "Amicon PM-30"-ultrafilter og direkte fylt på en hvetespirelektin (WGL)-sefarose-6MB-kolonne (Budzik, G.P., et al., (1980), supra) som var ekvilibrert med 10 mM HEPES (pH 7), 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 5 mM 2-merkaptoetanol, 0,01$ Nonidet P-40 (NP-40). Etter en buffervasking ble den biologisk aktive fraksjon eluert med 100 mg/ml N-acetylglukosamin og uten ytterligere ekvilibrering fylt på en affinitetskolonne inneholdende Matrex Gel Green A® (AMICON) (Budzik, G.P., et al., (1983), supra) som på forhånd var ekvilibrert i 150 mM NaCl, 10 mM HEPES, 1 mM EDTA, 5 mM 2-merkaptoetanool, 0,01$ NP-40, pH 8,0. Etter eluering med denne buffer alene og med 10 mM ATP, ble den bundne fraksjon inneholdende MIS biologisk aktivitet eluert med fylling av buffer inneholdende 500 mM NaCl. Denne siste fraksjon ble konsentrert 80 ganger ved vakuumdialyse mot fosfatbufret saltoppløsning inneholdende 0,01* NP-40, og lagret 1 1 ml aliqouter ved -80°C for etterfølgende bruk. Hver ampulle inneholdt 0,15 mg protein pr. ml 1 PBS (pH 7) og 0,01* NP-40. Fortynninger av dette materialet ble gjennomført ved bruk av Krebs-Ringer's bikarbonat (KRB) (Donahoe, R.P., J. Exper. Zool. 169:237-250. Mullerian inhibitory substance was purified according to Budzik, G.P., et al., Cell, 21:909-915 (1980) and Budzik, G.P., et al., Cell, 34:307-314 (1983). Briefly, testes from calves less than two weeks of age were minced into 1 mm fragments in ice-cold, serum-free Ham's F10 medium (Budzik, G.P., et al., (1980), supra) and then incubated at 37°C for 45 minutes with gentle agitation . The medium was concentrated by ammonium sulfate precipitation, reequilibrated 250 mM NaCl, 10 mM sodium phosphate, 0.03% sodium azide, 1 mM EDTA, pH 8, and then fed to a diethylaminoethyl bio-gel-A column. High biological activity was found in the unbound fraction. This fraction was then adjusted to pH 5 using dilute HCl, centrifuged at 40,000 x g for 10 min to remove the precipitate, and the supernatant was then passed through a carboxymethyl bio-gel-A column pre-equilibrated with 50 mM NaCl, 10 mM sodium phosphate, 0.03$ sodium azide, 1 mM EDTA, pH 6. The unbound fraction, which again showed high biological activity, was concentrated 3 times on an "Amicon PM-30" ultrafilter and directly loaded onto a wheat germ lectin (WGL )-sepharose-6MB column (Budzik, G.P., et al., (1980), supra) which was equilibrated with 10 mM HEPES (pH 7), 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 5 mM 2-mercaptoethanol, 0, 01$ Nonidet P-40 (NP-40). After a buffer wash, the biologically active fraction was eluted with 100 mg/ml N-acetylglucosamine and, without further equilibration, loaded onto an affinity column containing Matrex Gel Green A® (AMICON) (Budzik, G.P., et al., (1983), supra) as was previously equilibrated in 150 mM NaCl, 10 mM HEPES, 1 mM EDTA, 5 mM 2-mercaptoethanol, 0.01$ NP-40, pH 8.0. After elution with this buffer alone and with 10 mM ATP, the bound fraction containing MIS biological activity was eluted with filling buffer containing 500 mM NaCl. This last fraction was concentrated 80 times by vacuum dialysis against phosphate buffered saline containing 0.01* NP-40, and stored 1 1 ml aliquots at -80°C for subsequent use. Each ampoule contained 0.15 mg of protein per ml 1 PBS (pH 7) and 0.01* NP-40. Dilutions of this material were carried out using Krebs-Ringer's bicarbonate (KRB) (Donahoe, R.P., J. Exper. Zool. 169:237-250.

(1968)) oppløsning for å oppnå MIS-konsentrasjoner på 1,5 x IO-2 til 1,5 x IO-<9>mg/ml. (1968)) solution to achieve MIS concentrations of 1.5 x IO-2 to 1.5 x IO-<9>mg/ml.

EKSEMPEL 2EXAMPLE 2

Analyse på oocytt- matureringsinhiberende aktivitetAnalysis of oocyte maturation inhibitory activity

Ovarier av prepubertale Sprague-Dawley-rotter i en alder av 25-27 dager (omtrentlig kroppsvekt 50-60 g) eller sveitsiske mus med en kroppsvekt på ca. 15-20 g ble dissektert umiddelbart etter avlivning og anbragt i KRB-oppløsningen som beskrevet i eksempel 1. Vevet ble holdt på en varmeplate ved 35°C. Oocyttene ble visualisert under et mikroskop og kumulus-innelukkede oocytter ble befridd fra folliklene ved terging med en steril nål. I enkelte tilfeller ble adherende kumulus-oofore celler strippet fra oocyttene ved hurtig trekking av aggregerte celler inn og ut av en pipette for å oppnå en avkledd oocytt. Helt utvokste oocytter inneholdende en intakt germinal vesikkel med og uten kumulus-celler ble benyttet i løpet av 3 minutter etter isoleringen. Premature og små oocytter ble kassert. 10-20 oocytter ble pipettert inn i 0,2 ml media under lett paraffinolje og dyrket i en inkubator i 1 til 24 timer umiddelbart etter gjenvinning ved 37°C. Oocyttene ble kontinuerlig spylt med 95* luft og 5* C02mettet med vann. Figur 1 viser en diagramatisk representasjon av en oocytt under utvikling. Ovaries of prepubertal Sprague-Dawley rats at the age of 25-27 days (approximate body weight 50-60 g) or Swiss mice with a body weight of approx. 15-20 g were dissected immediately after killing and placed in the KRB solution as described in example 1. The tissue was kept on a hot plate at 35°C. The oocytes were visualized under a microscope and cumulus-enclosed oocytes were freed from the follicles by aspiration with a sterile needle. In some cases, adherent cumulus-oophoric cells were stripped from the oocytes by rapid pulling of aggregated cells in and out of a pipette to obtain a stripped oocyte. Fully grown oocytes containing an intact germinal vesicle with and without cumulus cells were used within 3 minutes of isolation. Premature and small oocytes were discarded. 10-20 oocytes were pipetted into 0.2 ml of media under light paraffin oil and cultured in an incubator for 1 to 24 hours immediately after recovery at 37°C. The oocytes were continuously flushed with 95% air and 5% CO 2 saturated with water. Figure 1 shows a diagrammatic representation of a developing oocyte.

På hvert valgte tidspunkt ble oocyttene bedømt somm immature (intakt germinal vesikkel med nukleus) eller som mature (hvis ingen germinal vesikkel kunne detekteres). At each selected time point, the oocytes were judged as immature (intact germinal vesicle with nucleus) or as mature (if no germinal vesicle could be detected).

Prosentandelen oocytter i de to kategorier ble beregnet for hver eksperimentelle behandling. For å prøve forskjellene mellom grupper av statistisk signifikans ble Chi-kvadrat-prøven benyttet. En p-verdi på under 0,01 ble ansett som signifikant. The percentage of oocytes in the two categories was calculated for each experimental treatment. To test the differences between groups for statistical significance, the Chi-square test was used. A p-value of less than 0.01 was considered significant.

EKSEMPEL 3EXAMPLE 3

Bestemmelse av tldssekvensen for oocyttmatureringDetermination of the tlds sequence for oocyte maturation

MIS ble fremstilt som beskrevet i eksempel 1. Virkningen av MIS på tldssekvensen for oocyttmaturering ble bestemt via bruken av analyse på oocyttmatureringsinhiberende virkning som beskrevet i eksempel 2. Således ble avkledde rotteoocytter inkubert med KRB-medium alene eller med tilsatt MIS, og tidsforløpet og graden av germinal vesikkelnedbrytning ble bestemt. Prosentandelen spontan germinal vesikkelnedbrytning for oocyttene ble beregnet ved inkrementale inkuberingstider. Etter 5 timers inkubering og kontrollmedium opptrådte spontan germinal vesikkelnedbrytning i mer enn 80* av avkledde oocytter, noe som Indikerer at en vesentlig andel av oocyttene undergikk maturering. En vesentlig og doseavhengig inhibering av spontan germinal vesikkelnedbrytning ble observert i oocyttpreparater som var inkubert i nærværet av MIS-inneholdende fraksjoner ved konsentrasjoner på 1,5 x 10~<7>til 10~<2>mg protein/ml. Resultatene av dette forsøk er vist i figur 2. Dette forsøk viser at MIS er en potent Inhibitor for oocyttmaturering. Som vist i figur 3 forårsaket tilsetning av MIS-holdig ved disse konsentrasjoner, men ikke IO-<9>eller 10~<8>mg proteln/ml, betydelig og økende inhibering av germinal vesikkelnedbrytning av både avkledde og kumulus-celleomsluttede rotteoocytter. Ved ekvimolare konsentrasjoner var det ingen signifikant forskjell 1 MIS-indusert inhibering av germinal vesikkelnedbrytning mellom avkledde eller kumulus-celle-omsluttede oocytter. Den Inhiberende effekt av MIS på oocyttmatureringen ble derfor funnet å være doseavhengig og kumulus-celle-uavhengig. MIS was prepared as described in Example 1. The effect of MIS on the tlds sequence of oocyte maturation was determined via the use of the oocyte maturation inhibitory effect assay as described in Example 2. Thus, stripped rat oocytes were incubated with KRB medium alone or with added MIS, and the time course and degree of germinal vesicle degradation was determined. The percentage of spontaneous germinal vesicle breakdown for the oocytes was calculated by incremental incubation times. After 5 hours of incubation and control medium, spontaneous germinal vesicle breakdown occurred in more than 80* of stripped oocytes, indicating that a substantial proportion of the oocytes underwent maturation. A significant and dose-dependent inhibition of spontaneous germinal vesicle breakdown was observed in oocyte preparations incubated in the presence of MIS-containing fractions at concentrations of 1.5 x 10~<7> to 10~<2>mg protein/ml. The results of this experiment are shown in Figure 2. This experiment shows that MIS is a potent inhibitor of oocyte maturation. As shown in Figure 3, addition of MIS-containing at these concentrations, but not 10-<9> or 10~<8>mg protein/ml, caused significant and increasing inhibition of germinal vesicle breakdown of both undressed and cumulus cell-enclosed rat oocytes. At equimolar concentrations, there was no significant difference 1 MIS-induced inhibition of germinal vesicle breakdown between undressed or cumulus-cell-enclosed oocytes. The inhibitory effect of MIS on oocyte maturation was therefore found to be dose-dependent and cumulus cell-independent.

EKSEMPEL 4EXAMPLE 4

Reversibilitet av MIS- lnhiberingenReversibility of the MIS inhibition

For å bestemme hvorvidt MIS-inhiberingen av oocyttmaturering var reversibel, ble et tidsforløp for oocyttmaturering satt opp. Således ble i timeintervaller, avkledde rotteoocytter, fremstilt som i eksempel 2, undersøkt med henblikk på tegn på maturering enten i nærvær eller i fravær av MIS. Resultatene av disse forsøk er vist 1 figur 4. Ved en time ble 10* avkledde rotteoocytter funnet å ha undergått spontant germinal vesikkelnedbrytning i kontrollerte media. Denne nedbrytning ble funnet å øke i progressive inkrementer inntil, ved 5 timer, 81* av oocyttene som opprinnelig var tilstede hadde undergått germinal vesikkelnedbrytning. Nærværet av 1,5 x IO-<3>mg protein/ml MIS totalt, forhindret opptreden av germinal vesikkelnedbrytning ved 1 time og redusert germinal vesikkelnedbrytning ved omtrent 50* (dvs. 43* av oocyttene hadde undergått germinal vesikkelnedbrytning etter 5 timer). To determine whether the MIS inhibition of oocyte maturation was reversible, a time course of oocyte maturation was set up. Thus, at hourly intervals, stripped rat oocytes, prepared as in Example 2, were examined for signs of maturation either in the presence or in the absence of MIS. The results of these experiments are shown in Figure 4. At one hour, 10* stripped rat oocytes were found to have undergone spontaneous germinal vesicle breakdown in controlled media. This degradation was found to increase in progressive increments until, at 5 hours, 81* of the oocytes initially present had undergone germinal vesicle degradation. The presence of 1.5 x 10-<3>mg protein/ml MIS in total prevented the occurrence of germinal vesicle breakdown at 1 hour and reduced germinal vesicle breakdown by approximately 50* (ie 43* of the oocytes had undergone germinal vesicle breakdown at 5 hours).

Etter 2 timer MIS inkubering ble en del av oocyttprøven vasket tre ganger i KRB-oppløsnlng og overført til en frisk KRB-oppløsning. 74* oocytter som var behandlet på denne måte viste germinal vesikkelnedbrytning etter 5 timer, noe som antyder at MIS-virkningen på avkledde oocytter var reversibel . After 2 hours MIS incubation, part of the oocyte sample was washed three times in KRB solution and transferred to a fresh KRB solution. 74* oocytes treated in this way showed germinal vesicle breakdown after 5 hours, suggesting that the MIS effect on undressed oocytes was reversible.

Dette forsøk antyder videre at den kontraseptive effektivitet for MIS er avhengig av det kontinuerlige nærvær av en effektiv mengde MIS. This experiment further suggests that the contraceptive efficacy of MIS is dependent on the continuous presence of an effective amount of MIS.

EKSEMPEL 5EXAMPLE 5

Virkning av dibutyrvl- cyklisk AMP på MIS- inhibering Rotteoocytter ble dyrket 1 5 timer i kontrollert medium alene eller med 1,5 x 10"<3>mg protein/ml MIS. Dibutyryl-cyklisk AMP (dbcAMP) i konsentrasjoner på 50, 100 eller 150 x 10~<6>mM ble inkubert enten alene eller med 1,5 x IO-<3>mg proteln/ml MIS. Tilsetning av 50 x IO"<6>M dbcAMP i KRB-oppløsning endret ikke signifikant prosentandelen oocytter som underglkk germinal vesikkelnedbrytning, heller Ikke var det noen påvirkning av den inhiberende virkning av MIS (ved en konsentrasjon på 1,5 x 10~<3>mg protein/ml). Tilsetning av 100 x IO-<6>M og 150 x IO<6>M dbcAMP i KRB-oppløsning inhiberte signifikant den spontane germinale vesikkelnedbrytning, men forbedret ikke den inhiberende virkning på 1,5 x IO"<3>mg protein/ml MIS. Disse forsøk ble gjennomført både på avkledde og kumulus-celle-innesluttede oocytter. Resultatene av disse forsøk er vist i figur 5A (avkledde oocytter) og 5B (kumulus-celle-innelukkede oocytter). Effect of dibutyryl-cyclic AMP on MIS inhibition Rat oocytes were cultured for 15 hours in controlled medium alone or with 1.5 x 10"<3>mg protein/ml MIS. Dibutyryl-cyclic AMP (dbcAMP) at concentrations of 50, 100 or 150 x 10~<6>mM were incubated either alone or with 1.5 x IO-<3>mg proteinn/ml MIS. Addition of 50 x IO"<6>M dbcAMP in KRB solution did not significantly change the percentage of oocytes which underwent germinal vesicle breakdown, nor was there any influence of the inhibitory action of MIS (at a concentration of 1.5 x 10~<3>mg protein/ml). Addition of 100 x 10-<6>M and 150 x 10<6>M dbcAMP in KRB solution significantly inhibited the spontaneous germinal vesicle breakdown, but did not enhance the inhibitory effect of 1.5 x 10"<3>mg protein/ml MIS These experiments were performed on both undressed and cumulus-cell-enclosed oocytes.The results of these experiments are shown in Figure 5A (undressed oocytes) and 5B (cumulus-cell-enclosed oocytes).

Dette forsøk viser at MIS ikke virker synergistisk eller antagonistisk med dbcAMP for å inhibere oocyttmaturering. Forsøket viser videre at den MIS-inhiberende virkning var kumulus-celle-uavhengig og cAMP-uavhengig. This experiment shows that MIS does not act synergistically or antagonistically with dbcAMP to inhibit oocyte maturation. The experiment further shows that the MIS-inhibitory effect was cumulus cell-independent and cAMP-independent.

EKSEMPEL 6EXAMPLE 6

Virkning av andre reproduktive hormoner på MIS- indusert inhibering av oocyttmaturering. Effect of other reproductive hormones on MIS-induced inhibition of oocyte maturation.

Virkningen av reproduktive hormoner slik som follikkel-stimulerende hormon, FSH, lutelnlserende hormon, LH, progesteron, 17p<->estradiol og testosteron på MIS-indusert inhibering ble bestemt ved bruk av avkledde eller kumulus-celle-innesluttede rotteoocytter. For å gjennomføre denne bestemmelse ble analysen på oocyttmatureringsinhiberende aktivitet, beskrevet i eksempel 2, gjennomført ved bruk av avkledde og kumulus-celle-innesluttede rotteoocytter. MIS-konsentrasjonen var 1,5 x IO-<3>mg protein/ml. MIS-indusert inhibering ble bedømt ved varierende hormonkonsentrasjoner (0,1, 1,0 og 10 jjg/ml FSH; 0,4, 4,0 og 40 >Jg/ml LH; 0,1, 1,0 og 10 jjg/ml progesteron; 0,1, 1,0 og 10 jjg/ml 17e-estradlol; og 0,1, 1,0 og 10 jjg/ml testosteron). Som vist i figur 6, kunne disse hormoner ikke bevirke MIS-indusert inhibering hos hverken avkledde eller kumulus-celle-innesluttede oocytter. Disse resultater viser at MIS-indusert inhibering av oocyttmaturering er uavhengig av nærværet eller fraværet av andre reproduktive hormoner. The effect of reproductive hormones such as follicle-stimulating hormone, FSH, luteinizing hormone, LH, progesterone, 17β<->estradiol and testosterone on MIS-induced inhibition was determined using stripped or cumulus cell-enclosed rat oocytes. To carry out this determination, the assay for oocyte maturation inhibitory activity, described in Example 2, was carried out using stripped and cumulus cell-enclosed rat oocytes. The MIS concentration was 1.5 x 10-<3>mg protein/ml. MIS-induced inhibition was assessed at varying hormone concentrations (0.1, 1.0 and 10 µg/ml FSH; 0.4, 4.0 and 40 µg/ml LH; 0.1, 1.0 and 10 µg/ml ml progesterone; 0.1, 1.0 and 10 µg/ml 17e-estradlol; and 0.1, 1.0 and 10 µg/ml testosterone). As shown in Figure 6, these hormones failed to cause MIS-induced inhibition in either undressed or cumulus cell-enclosed oocytes. These results show that MIS-induced inhibition of oocyte maturation is independent of the presence or absence of other reproductive hormones.

EKSEMPEL 7EXAMPLE 7

Virkning av lsobutylmetylxantin på MIS- indusert inhibering av oocyttmaturering Effect of isobutylmethylxanthine on MIS-induced inhibition of oocyte maturation

Avkledde og kumulus-celle-innesluttede museoocytter ble dyrket i 3 timer i kontrollmedia alene eller med 1,5 x IO"<2>, IO-<4>, IO-<6>eller IO-<8>mg proteln/ml MIS, eller IO"<4>M lsobutylmetylxantin (IBMX). Som vist 1 figur 7 forårsaket tilsetning av IBMX signifikant inhibering av spontan germinal vesikkelnedbrytning både i avkledde og kumulus-celle-innesluttede oocytter. MIS ble funnet å være ute av stand til å Inhibere spontan germinal vesikkelnedbrytning, noe som indikerer at bovin-MIS ikke har den inhiberende virkning på museoocytt-meiose som tidligere er observert for rotteoocytter . Stripped and cumulus cell-enclosed mouse oocytes were cultured for 3 h in control media alone or with 1.5 x IO"<2>, IO-<4>, IO-<6>, or IO-<8>mg protein/ml MIS , or 10"<4>M isobutylmethylxanthine (IBMX). As shown in Figure 7, addition of IBMX caused significant inhibition of spontaneous germinal vesicle breakdown in both undressed and cumulus cell-enclosed oocytes. MIS was found to be unable to inhibit spontaneous germinal vesicle breakdown, indicating that bovine MIS does not have the inhibitory effect on mouse oocyte meiosis previously observed for rat oocytes.

EKSEMPEL 8EXAMPLE 8

Virkning av anti- MIS- antisera på MIS- inhlberingEffect of anti-MIS antisera on MIS incorporation

Monoklonale antistoffer 1 stand til å binde til renset MIS ble fremstilt i henhold til metoden ifølge Shima, H., et al., (Hybridoma, 3:201-214 (1984)). Etter en første avsøking av hybridomcellene med henblikk på deres evne til å produsere MIS-spesifikke antistoffer, ble positive hybridomer ytterligere selektert med henblikk på evnen til å inhibere MIS-biologisk aktivitet. Fordi MIS er en inhibitor av oocyttmaturering, er administreringen av anti-MIS-antisera (i stand til å inhibere den biologiske aktivitet til MIS) i stand til å blokkere og derved å reversere MIS-lnhibering. Hvis hunninfertilitet forårsakes av en abnorm produksjon av MIS, vil administreringen av et anti-MIS-antistoff, slik som det som er beskrevet ovenfor, gi gjenopprettet fertilitet. Monoclonal antibodies capable of binding to purified MIS were prepared according to the method of Shima, H., et al., (Hybridoma, 3:201-214 (1984)). After an initial screening of the hybridoma cells for their ability to produce MIS-specific antibodies, positive hybridomas were further selected for their ability to inhibit MIS biological activity. Because MIS is an inhibitor of oocyte maturation, the administration of anti-MIS antisera (capable of inhibiting the biological activity of MIS) is able to block and thereby reverse MIS inhibition. If female infertility is caused by an abnormal production of MIS, the administration of an anti-MIS antibody, such as that described above, will restore fertility.

EKSEMPEL 9EXAMPLE 9

Evnen for rekombinant human MIS- preparater til å inhibere germinal vesikkelnedbrytning The ability of recombinant human MIS preparations to inhibit germinal vesicle degradation

Oocytt germinal vesikkelnedbrytningsanalysen ifølge eksempel 2 ble benyttet for å prøve evnen til rekombinant human-MIS-preparater til å inhibere oocyttmaturering. Rekombinant human-MIS ble fremstilt ved transfeksjon av MIS-genet (Cate, R.L., et al., Cell, 45:685-698 (1986)) til ovarieceller fra kinesisk hamster, CHO-celler, og dyrking av disse celler i et serumfritt medium (tilpasset mediet i henhold til Cate, R.L., et al., (1986)). Dette MIS ble så renset ved ionebytting og lektin-affinitetskromatografi (Budzik, G.P., et al., Cell, 21:909-921 (1980)) for derved å oppnå et MIS-preparat Inneholdende eventuelt mellom 1 og 10* MIS, mest sannsynlig ca. 1* MIS. Resultatene av denne oocyttanalyse er vist i figur 8. Slik det fremgår av figuren, ble ingen av de ikke-ioniske detergenter NP-40, fortynnet IO-<7>ganger) eller Krebs-ringer-buffer, KRB, funnet å inhibere germinal vesikkelnedbrytning. Serumfritt rekombinant human-MIS ble funnet signifikant å inhibere germinal vesikkelnedbrytning ved fortynning til IO-<2>til 10~<1>ganger. The oocyte germinal vesicle degradation assay of Example 2 was used to test the ability of recombinant human MIS preparations to inhibit oocyte maturation. Recombinant human MIS was produced by transfection of the MIS gene (Cate, R.L., et al., Cell, 45:685-698 (1986)) into Chinese hamster ovary cells, CHO cells, and culturing these cells in a serum-free medium (adapted to the medium according to Cate, R.L., et al., (1986)). This MIS was then purified by ion exchange and lectin affinity chromatography (Budzik, G.P., et al., Cell, 21:909-921 (1980)) to thereby obtain an MIS preparation containing possibly between 1 and 10* MIS, most likely about. 1* MIS. The results of this oocyte analysis are shown in Figure 8. As can be seen from the figure, none of the nonionic detergents NP-40, diluted 10-fold) or Krebs-ringer buffer, KRB, were found to inhibit germinal vesicle breakdown . Serum-free recombinant human MIS was found to significantly inhibit germinal vesicle degradation at 10-<2> to 10~<1>fold dilution.

Evnen til human rekombinant MIS til å inhibere germinal vesikkelnedbrytning ble funnet å kreve nærværet av en ikke-ioniske detergent, fortrinnsvis NP-40, ved fortynning IO"<6>til 10~<8>ganger, helst ca. 10~7 ganger. The ability of human recombinant MIS to inhibit germinal vesicle degradation was found to require the presence of a nonionic detergent, preferably NP-40, at dilutions 10"<6>to 10~<8>fold, preferably about 10~7 fold.

EKSEMPEL 10EXAMPLE 10

Evnen til EGF til å reversere evnen til MIS til å Inhibere oocyttmaturering The ability of EGF to reverse the ability of MIS to inhibit oocyte maturation

Oocytt germinal vesikkelnedbrytningsanalysen ifølge eksempel 2, ble benyttet for å prøve evnen til EGF til å reversere den kontraseptive aktivitet til MIS. Rekombinant, human MIS, fremstilt i henhold til eksempel 9, ble renset ved bruk av fargestoff-affinitetskromatografi (Budzik, G.P., et al., Cell, 34:307-314 (1983)). Dette EGF ble oppnådd fra Collaborative Research, Lexington, MA. The oocyte germinal vesicle breakdown assay of Example 2 was used to test the ability of EGF to reverse the contraceptive activity of MIS. Recombinant human MIS prepared according to Example 9 was purified using dye affinity chromatography (Budzik, G.P., et al., Cell, 34:307-314 (1983)). This EGF was obtained from Collaborative Research, Lexington, MA.

Resultatene fra dette forsøk er vist i figur 9. Figuren viser at tilsetning av KRB eller EGF til germinal vesikler ikke var i stand til å Inhibere nedbrytning av germinal vesiklene (stolpene 1 og 2). Tilsetning av MIS, renset enten ved bruk av DEAE/grønn 3 eller fase 0 ionebytting/grønn 3 kromatografi The results from this experiment are shown in figure 9. The figure shows that addition of KRB or EGF to germinal vesicles was not able to inhibit degradation of the germinal vesicles (columns 1 and 2). Addition of MIS, purified using either DEAE/green 3 or phase 0 ion exchange/green 3 chromatography

(stolpene 3 henholdsvis 5) ble funnet å inhibere germinal vesikkelnedbrytning. Tilsetningen av EGF til en prøve inneholdende MIS resulterte i en reversering av inhiberingen og en nedbrytning av germinal vesiklene (stolpene 4 henholdsvis 6). Således viser dette eksempel at den kontraseptive virkning av MIS kan reverseres med EGF. (bars 3 and 5 respectively) were found to inhibit germinal vesicle degradation. The addition of EGF to a sample containing MIS resulted in a reversal of the inhibition and a degradation of the germinal vesicles (bars 4 and 6 respectively). Thus, this example shows that the contraceptive effect of MIS can be reversed with EGF.

Mens oppfinnelsen er beskrevet i forbindelse med spesielle utførelsesformer skal det være klart at det kan gjennomføres ytterligere modifikasjoner og at søknaden er ment å dekke enhver variant, anvendelse eller tilpasning av oppfinnelsen ved generelt å følge oppfinnelsens prinsipper og inkludere slike mindre avvik i beskrivelsen som ligger innenfor vanlig kjent praksis i denne teknikk oppfinnelsen angår, og som kan anvendes på de vesentlige trekk som angitt i de ledsagende krav. While the invention is described in connection with particular embodiments, it should be clear that further modifications can be carried out and that the application is intended to cover any variant, application or adaptation of the invention by generally following the principles of the invention and including such minor deviations in the description as are within commonly known practice in this technique to which the invention relates, and which can be applied to the essential features as stated in the accompanying claims.

Claims (12)

1. Fremgangsmåte for konsepsjon, karakterisert ved at den omfatter til en hunn å gi en effektiv mengde av et preparat omfattende mullerian-inhiberende substans.1. Method of conception, characterized in that it comprises administering to a female an effective amount of a preparation comprising mullerian inhibitory substance. 2. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at man benytter en mullerian-inhiberende substans som i det vesentlige er fri for naturlige kontaminanter.2. Method according to claim 1, characterized in that a Mullerian-inhibiting substance is used which is essentially free of natural contaminants. 3. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at det benyttes en mullerian-inhiberende substans som er fremstilt ved eksprimering av en rekombinant mullerian-inhiberende substansgen i en vert.3. Method according to claim 1, characterized in that a Mullerian-inhibiting substance is used which has been produced by expressing a recombinant Mullerian-inhibiting substance gene in a host. 4. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at administreringen skjer oralt, lokalt, intravenøst, intramuskulært eller parenteralt.4. Method according to claim 1, characterized in that the administration takes place orally, locally, intravenously, intramuscularly or parenterally. 5. Fremgangsmåte for indusering av fertilitet hos en hunn som lider av infertilitet på grunn av abnormt høye nivåer av mullerian-inhiberende substans, karakterisert ved at den omfatter til hunnen å administrere en effektiv mengde av et antistoff mot mullerian-inhiberende substans.5. A method of inducing fertility in a female suffering from infertility due to abnormally high levels of mullerian inhibitory substance, comprising administering to the female an effective amount of an antibody against mullerian inhibitory substance. 6. Fremgangsmåte ifølge krav 5, karakterisert ved at det anvendes et monoklonalt antistoff.6. Method according to claim 5, characterized in that a monoclonal antibody is used. 7. Fremgangsmåte for reversering av den kontraseptive aktivitet av mullerian-inhiberende substans, karakter!- sert ved at den omfatter til en hunnmottager av mullerian-inhiberende substans å gi et middel i stand til å reversere den kontraseptive aktivitet i en mengde tilstrekkelig til å oppnå denne reversering.7. Method for reversing the contraceptive activity of a mullerian-inhibiting substance, characterized in that it comprises administering to a female recipient of a mullerian-inhibiting substance an agent capable of reversing the contraceptive activity in an amount sufficient to achieve this reversal . 8. Fremgangsmåte ifølge krav 7, karakterisert ved at man som middel benytter epidermal vekstfaktor.8. Method according to claim 7, characterized in that epidermal growth factor is used as agent. 9. Fremgangsmåte for kontroll av fertiliteten hos en hunn, karakterisert ved at den omfatter: (a) å tilveiebringe en initialmengde mullerian-inhiberende substans til en hunn i tilstrekkelig mengde til å indusere en infertilitetstilstand hos hunnen, (b) å opprettholde infertilitetstilstanden i et ønsket tidsrom ved å tilveiebringe en ytterligere mengde mullerian-inhiberende substans til hunnen, og (c) etter ønske, å tilveiebringe et middel i stand til å reversere den infertilitetstilstand som er indusert av den benyttede mullerian-inhiberende substans i en mengde tilstrekkelig til å indusere en fertilitetstilstand.9. Procedure for checking the fertility of a female, characterized in that it includes: (a) providing an initial amount of mullerian inhibitory substance to a female in an amount sufficient to induce a state of infertility in the female; (b) maintaining the state of infertility for a desired period of time by providing an additional amount of mullerian inhibitory substance to the female, and (c) optionally, providing an agent capable of reversing the state of infertility induced by the mullerian inhibitory substance used in an amount sufficient to induce a state of fertility. 10. Fremgangsmåte ifølge krav 9, karakterisert ved at midlet er epidermal vekstfaktor.10. Method according to claim 9, characterized in that the agent is an epidermal growth factor. 11. Fremgangsmåte ifølge krav 9, karakterisert ved at den ytterligere mengde mullerian-inhiberende substans tilveiebringes til hunnen som en bolus.11. Method according to claim 9, characterized in that the additional amount of mullerian-inhibiting substance is provided to the female as a bolus. 12. Fremgangsmåte ifølge krav 9, karakterisert ved at den ytterligere mengde mullerian-inhiberende substans tilveiebringes som et medikament med forsinket avgivelse.12. Method according to claim 9, characterized in that the additional amount of mullerian-inhibiting substance is provided as a drug with delayed release.
NO880794A 1986-06-24 1988-02-23 USE OF MULLERIAN INHIBITIVE SUBSTANCE AS A CONTRACTIVE AGENT. NO880794L (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US06/877,735 US4753794A (en) 1986-06-24 1986-06-24 Use of mullerian inhibiting substance as a contraceptive agent
PCT/US1987/001514 WO1988000054A1 (en) 1986-06-24 1987-06-24 Use of mullerian inhibiting substance as a contraceptive agent

Publications (2)

Publication Number Publication Date
NO880794D0 NO880794D0 (en) 1988-02-23
NO880794L true NO880794L (en) 1988-04-05

Family

ID=26775947

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO880794A NO880794L (en) 1986-06-24 1988-02-23 USE OF MULLERIAN INHIBITIVE SUBSTANCE AS A CONTRACTIVE AGENT.

Country Status (1)

Country Link
NO (1) NO880794L (en)

Also Published As

Publication number Publication date
NO880794D0 (en) 1988-02-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4753794A (en) Use of mullerian inhibiting substance as a contraceptive agent
SCHWABE et al. Relaxin
Bryant-Greenwood et al. Human relaxins: chemistry and biology
Chang et al. Recombinant human chorionic gonadotropin (rhCG) in assisted reproductive technology: results of a clinical trial comparing two doses of rhCG (OvidrelR) to urinary hCG (ProfasiR) for induction of final follicular maturation in in vitro fertilization–embryo transfer
International Recombinant Human Chorionic Gonadotropin Study Group Induction of ovulation in World Health Organization group II anovulatory women undergoing follicular stimulation with recombinant human follicle-stimulating hormone: a comparison of recombinant human chorionic gonadotropin (rhCG) and urinary hCG
Conn et al. Potency enhancement of a GnRH agonist: GnRH-receptor microaggregation stimulates gonadotropin release
US5010055A (en) Use of EGF to reverse the contraceptive activity of MIS
US4196123A (en) Hybrid chorionic gonadotropin preparations and methods for stimulating ovulation using same
EP0509047B1 (en) Method for inhibiting follicular maturation
Telleria et al. Apoptosis induced by antigestagen RU486 in rat corpus luteum of pregnancy
Paulson et al. Addition of a gonadotropin releasing hormone (GnRH) antagonist and exogenous gonadotropins to unstimulated in vitro fertilization (IVF) cycles: physiologic observations and preliminary experience
Wrathall et al. Production of immunoactive inhibin by bovine granulosa cells in serum-free culture: effects of exogenous steroids and FSH
EP0509040B1 (en) Method for increasing fertility in females
NO880794L (en) USE OF MULLERIAN INHIBITIVE SUBSTANCE AS A CONTRACTIVE AGENT.
Crawford et al. The hypothalamic–pituitary–ovarian axis and manipulations of the oestrous cycle in the brushtail possum
JP2562472B2 (en) Use of Mueller inhibitors as contraceptives
Beier et al. Hormones and proteins involved in uterine preparation for implantation
Weiss et al. Relaxin and the cervix
EP0538394B1 (en) Treatment of male infertility
Geurts et al. PUREGON"(ORG 32489)-RECOMBINANT HUMAN
Russell et al. The N-terminal peptide of the inhibin α subunit: What are its endocrine and paracrine roles?
AU646487B2 (en) Treatment of male infertility
WO1995019991A1 (en) New composition of glycoprotein isoforms having follicle stimulating activity
Ogawa et al. Changes in the immunoreactivity of follistatin within preovulatory follicles after the primary gonadotrophin surge in rats
Delves The development of contraceptive vaccines