KR20180059981A - Mutant escherichia coli having an improved fatty acid production ability and method for preparing the same - Google Patents

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Abstract

The present invention relates to mutant E. coli having improved fatty acid production ability and a manufacturing method thereof and, more specifically, to mutant E. coli which shows excellent fatty acid production by inactivating a specific gene, and to a manufacturing method thereof. The mutant E. coli according to the present invention exhibits improved fatty acid production ability compared to wild-type E. coli, thereby being useful for producing fatty acid and producing chemical products containing the same. In particular, envR, gusC and mdlA genes newly identified in the present invention contribute to reducing side effects (e.g. cytotoxicity) by fatty acids when inactivated, thereby increasing production of fatty acids in E. coli, and thus the genes may be applied to various studies associated with fatty acid production.

Description

지방산 생성능이 개선된 변이 대장균 및 이의 제조방법 {MUTANT ESCHERICHIA COLI HAVING AN IMPROVED FATTY ACID PRODUCTION ABILITY AND METHOD FOR PREPARING THE SAME} TECHNICAL FIELD [0001] The present invention relates to a mutant E. coli having improved fatty acid production ability and a method for producing the same. [0002]

본 발명은 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균 및 이의 제조방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 특정 유전자의 불활성화에 의해 우수한 지방산 생성능을 나타내는 변이 대장균 및 이의 제조방법에 관한 것이다.
The present invention relates to a mutant E. coli having improved fatty acid production ability and a method for producing the same, and more particularly, to a mutant E. coli having excellent fatty acid production ability by inactivation of a specific gene and a method for producing the mutant E. coli.

지방산은 수송연료, 소비재, 그리고 공산품과 같은 함유화학제품(oleochemicals)의 전구체로 사용되는 물질로서 식물성 기름 및 동물성 유지로부터 합성되고 있다. 하지만, 바이오디젤과 같은 함유화학제품의 수요가 급증함에 따라 기존의 방법과는 달리 지속가능하고 친환경적인 방법으로, 예를 들어 미생물로부터 지방산을 생산하려는 노력이 계속되고 있다. Fatty acids are substances used as precursors to oleochemicals, such as transportation fuels, consumer goods, and industrial products, and are synthesized from vegetable oils and animal fats. However, as the demand for containing chemicals such as biodiesel surges, efforts to produce fatty acids from, for example, microorganisms have continued in a sustainable and environmentally friendly manner, unlike conventional methods.

최근에는 미생물, 특히 대장균의 대사경로를 조절하여 대사흐름을 바꿈으로써 지방산의 생산을 증대시킬 수 있는 대사공학적 방법이 주목을 받고 있다(Pfleger et al., Metab Eng . 29, 1-11, 2015). Recently, a metabolic engineering method that can increase the production of fatty acids by regulating the metabolic pathway of microorganisms, particularly E. coli, has been attracting attention (Pfleger et al. Metab Eng . 29, 1-11, 2015).

대장균에서의 지방산 합성은 여러 단백질이 관여하는 복잡한 과정에 의해 수행된다. 일반적으로, 아세틸코에이(acetyl-CoA)가 여러 단계의 효소반응을 통해 아실-ACP(acyl-ACP)가 된 후에 최종적으로 싸이오에스터라아제(thioesterase)에 의해 지방산으로 전환된다. 지방산 생산 경로에 의해 만들어진 아실-ACP는 음성 피드백 억제(negative feedback inhibition)를 통해 생산에 관여하는 여러 단백질의 활성을 저해시킨다(Fujita et al., Mol . Microbiol . 66, 829839. 2007). 따라서, 싸이오에스터라아제의 발현을 통한 음성 피드백 억제의 완화는 대장균에서의 지방산 생산량을 15배 증가시키는 것으로 나타났다(Lu et al., Metab . Eng . 10, 333339 2008; Steen et al., Nature 463, 559562, 2010). 추가적인 지방산의 생산 증대는 분해 경로를 불활성화시킴으로써 이루어졌다. 지방산의 분해 경로에 수반되는 유전자의 제거는 생성된 지방산의 분해를 막아 대장균에서의 지방산 합성을 향상시켰고(Steen et al., Nature 463, 559562, 2010), 탄소원의 대사(central carbon metabolism)를 조절함으로써 지방산 전구체의 공급을 증가시키는 기법도 대장균에서의 지방산 생산을 증가시켰다(He et al., Biotechnol Bioeng . 111, 575585 2014). 또한 대장균의 지방산 대사를 전반적으로 조절하는 전사인자의 발현은 지방산 대사경로를 활성화시켜 생산량을 증가시켰다(Zhang et al., Metab . Eng . 14, 653660. 2012). 하지만 대장균에 의해 생산되는 많은 양의 지방산은 전자 전달계 방해, 산화성 인산화, 영양분 수송 방해, 그리고 세포의 용해와 같은 항균 효과(antibacterial effect)를 나타내어 대장균의 세포 생장을 억제하는 등의 부작용이 있었다(Desbois and Smith, Appl . Microbiol . Biotechnol . 85. 1629-1642. 2010; Lennen et al., Appl . Environ. Microbiol . 77, 81148128. 2011). 이러한 지방산의 세포독성은 대장균에서의 지방산 생산 증대를 방해하는 걸림돌 중 하나이다.The synthesis of fatty acids in E. coli is carried out by a complex process involving several proteins. Generally, acetyl-CoA is converted to acyl-ACP (acyl-ACP) through several enzymatic reactions and finally converted to fatty acid by thioesterase. Acyl-ACP produced by the fatty acid production pathway inhibits the activity of various proteins involved in production through negative feedback inhibition (Fujita et al., Mol . Microbiol . 66, 829839. 2007). Thus, mitigation of negative feedback suppression through expression of thyrotase has been shown to increase fatty acid production in E. coli 15-fold (Lu et al., Metab . Eng . 10, 333339 2008; Steen et al., Nature 463 , 559562, 2010). Increased production of additional fatty acids was achieved by inactivating the degradation pathway. (Steen et al., Nature 463, 559562, 2010), it has been shown that the removal of genes involved in the degradation pathway of fatty acids prevents the degradation of the produced fatty acids and thus enhances the synthesis of fatty acids in E. coli Thereby increasing the fatty acid production in E. coli (He et al., Biotechnol Bioeng . 111, 575585 2014). In addition, the expression of transcription factors that regulate the fatty acid metabolism of E. coli generally activates fatty acid metabolism pathways (Zhang et al., Metab . Eng . 14, 653660. 2012). However, a large amount of fatty acids produced by Escherichia coli has side effects such as inhibition of cell growth of Escherichia coli due to antibacterial effects such as interference with electron transport, oxidative phosphorylation, inhibition of nutrient transport, and dissolution of cells (Desbois and Smith, Appl . Microbiol . Biotechnol ., 85, 1629-1642, 2010; Lennen et al., Appl . Environ. Microbiol . 77, 81148128. 2011). Cytotoxicity of these fatty acids is one of the obstacles preventing the increase of fatty acid production in E. coli.

종래의 합리적 접근 방법(rational approach)이 대장균에서 지방산의 생산을 상당히 증가시켜 왔음에도 불구하고, 여전히 지방산의 이론적 수율은 70% 밖에 미치지 못하고 있는 상황이다. 그러므로 지방산의 수송, 그리고 내성에 직간접적으로 영향을 미치는 유전자들의 규명 및 연구가 절실하다(Hoover et al., Environmental Progress & Sustainable Energy 31, 17-23. 2012). 그러나, 이러한 유전자들을 합리적인 접근방법을 통해서 예측하는 것은 많은 시간과 노동력을 필요로 하므로, 무작위 접근방법(random approach)이 지방산 생산과 관련된 타겟 유전자들을 예측 및 규명하는데 더 유용할 수 있다. Although the conventional rational approach has significantly increased the production of fatty acids in E. coli, the theoretical yield of fatty acids is still only 70%. Therefore, it is urgent to identify and study genes that directly or indirectly affect fatty acid transport and resistance (Hoover et al., Environmental Progress & Sustainable Energy 31, 17-23, 2012). However, since it takes a lot of time and labor to predict these genes through a rational approach, a random approach may be more useful in predicting and identifying target genes associated with fatty acid production.

이에, 본 발명자는 플라스포존(plasposon)을 이용하여 대장균의 유전자가 무작위적으로 불활성화된 돌연변이 라이브러리(mutant library)를 제작하였다. 이후, 본 발명자들은 지방산 바이오센서를 이용하여 상기 라이브러리로부터 지방산의 생성능이 개선된 돌연변이 균주를 선별하고, 상기 선별된 균주들에서 지방산 생산에 관여하는 유전자들을 규명함으로써 본 발명을 완성하였다.
Thus, the present inventors produced a mutant library in which a gene of E. coli was randomly inactivated using a plasposon. Hereinafter, the present inventors completed the present invention by selecting a mutant strain having improved fatty acid production ability from the library using a fatty acid biosensor, and identifying genes involved in fatty acid production in the selected strains.

Pfleger et al., Metab Eng. 29, 1-11, 2015; Pfleger et al., Metab Eng. 29, 1-11, 2015; Fujita et al., Mol. Microbiol. 66, 829839. 2007; Fujita et al., Mol. Microbiol. 66, 829839. 2007; Lu et al., Metab. Eng. 10, 333339 2008; Lu et al., Metab. Eng. 10, 333339 2008; Steen et al., Nature 463, 559562, 2010; Steen et al., Nature 463, 559562, 2010; He et al., Biotechnol Bioeng. 111, 575585 2014; He et al., Biotechnol Bioeng. 111, 575585 2014; Zhang et al., Metab. Eng. 14, 653660. 2012; Zhang et al., Metab. Eng. 14, 653660. 2012; Desbois and Smith, Appl. Microbiol. Biotechnol. 85. 1629-1642. 2010; Desbois and Smith, Appl. Microbiol. Biotechnol. 85. 1629-1642. 2010; Lennen et al., Appl. Environ. Microbiol. 77, 81148128. 2011; Lennen et al., Appl. Environ. Microbiol. 77, 81148128. 2011; Hoover et al., Environmental Progress & Sustainable Energy 31, 17-23. 2012. Hoover et al., Environmental Progress & Sustainable Energy 31, 17-23. 2012.

본 발명의 목적은 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제공하는 것이다. It is an object of the present invention to provide an E. coli mutant having improved fatty acid producing ability.

본 발명의 다른 목적은 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법을 제공하는 것이다. Another object of the present invention is to provide a method for producing an E. coli mutant having improved fatty acid production ability.

본 발명의 또 다른 목적은 전술한 변이 대장균을 이용하여 지방산을 생산하는 방법을 제공하는 것이다.
It is still another object of the present invention to provide a method for producing fatty acids using the above-mentioned mutant E. coli.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 불활성화된 변이 대장균을 제공한다. In order to achieve the above object, the present invention provides a mutant E. coli in which at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA is inactivated.

또한, 본 발명은 야생형 대장균의 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자를 불활성화시키는 단계를 포함하는, 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법을 제공한다.In addition, the present invention provides a method for producing a mutant E. coli having improved fatty acid producing ability, comprising the step of inactivating at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA of wild-type E. coli.

나아가, 본 발명은 (a) 야생형 대장균을 트랜스포존(transposon) 또는 플라스포존(plasposon)을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발(random insertional mutagenesis)에 의해 돌연변이시켜 라이브러리를 제작하는 단계; 및 (b) 상기 라이브러리로부터 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 불활성화된 변이 균주를 선별하는 단계를 포함하는 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법을 제공한다. Further, the present invention provides a method for producing a library, comprising: (a) preparing a library by mutating wild-type E. coli by random insertional mutagenesis using a transposon or a plasposon; And (b) selecting a mutant strain in which at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC, and mdlA is inactivated, from the library, thereby producing a mutant E. coli having improved fatty acid producing ability.

더욱이, 본 발명은 (a) 야생형 대장균을 트랜스포존(transposon) 또는 플라스포존(plasposon)을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발(random insertional mutagenesis)에 의해 돌연변이시켜 라이브러리를 제작하는 단계; 및 (b) 상기 라이브러리로부터 야생형 대장균과 비교하여 지방산 생성능이 개선된 균주를 선별하는 단계를 포함하는 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법을 제공한다. Further, the present invention provides a method for producing a library, comprising: (a) preparing a library by mutating wild-type E. coli by random insertional mutagenesis using a transposon or a plasposon; And (b) selecting a strain having improved fatty acid producing ability from the library in comparison with wild-type E. coli, thereby producing a mutant E. coli having improved fatty acid producing ability.

또한, 본 발명은 전술한 변이 대장균을 배양하는 단계를 포함하는, 변이 대장균을 이용하여 지방산을 생산하는 방법을 제공한다.
The present invention also provides a method for producing a fatty acid using a mutant E. coli comprising the step of culturing the mutant E. coli.

본 발명에 따른 변이 대장균은 야생형 대장균에 비해 개선된 지방산 생성능을 나타내므로, 지방산 생산 및 이로부터 함유화학제품을 생산하는데 유용하게 사용될 수 있다. 특히, 본 발명에서 새롭게 규명된 envR, gusC 및 mdlA 유전자들은 불활성화되는 경우 지방산에 의한 부작용(예를 들어, 세포독성)을 감소시켜 대장균에서 지방산의 생산을 증가시키는데 기여하므로, 상기 유전자들은 지방산 생산과 관련된 다양한 연구에 응용될 수 있을 것이다.
The mutant Escherichia coli according to the present invention exhibits improved fatty acid production ability as compared with wild-type Escherichia coli, and thus can be usefully used for production of fatty acid and a chemical product containing the same. In particular, envR, gusC and mdlA genes newly identified in the present invention contribute to the increase of fatty acid production in E. coli by reducing adverse effects (for example, cytotoxicity) caused by fatty acids when they are inactivated, And can be applied to various studies related to

도 1a는 본 발명의 일 구현예에 따라 플라스포존을 이용하여 무작위적 삽입 돌연변이의 라이브러리를 제작하는 과정을 도식적으로 나타낸 것이고; 도 1b는 본 발명에서 제조된 플라스포존의 지도를 나타낸 것이다.
도 2는 본 발명에서 선별된 변이 균주의 지방산 생산량을 나타낸 것이다. 대조군(control)은 pBbB6c-tesA를 포함하는 야생형 E.coli MG1655를 나타내고, △envR-TesA, △gusC-TesA 및 △mdlA-TesA는 pBbB6c-tesA를 포함하나 각각 envR, gusC 및 mdlA가 불활성화된 변이 대장균(MG1655)을 나타낸다.
도 3은 본 발명에서 선별된 변이 균주의 세포 내부 및 외부 지방산의 농도 (mg/L)를 측정한 결과이다. 각 막대의 하부 영역은 세포 내부 지방산 농도를, 상부 영역은 세포 외부에서의 지방산 농도를 나타낸다. 대조군(control)은 pBbB6c-tesA를 포함하는 야생형 E.coli MG1655를 나타내고, △envR-TesA, △gusC-TesA 및 △mdlA-TesA는 pBbB6c-tesA를 포함하나 각각 envR, gusC 및 mdlA가 불활성화된 변이 대장균(MG1655)을 나타낸다.
도 4는 본 발명의 선별된 변이 균주의 지방산 유무에 따른 세포 생장 속도를 측정한 것이다. MG-△fadD(대조군)는 아실-CoA 합성효소를 암호화하는 fadD가 제거되어 지방산 분해경로가 불활성화된 대장균을 나타내고, △envR, △gusC 및 △mdlA는 MG-△fadD 균주로부터 EnvR, MdlA 및 GusC 유전자를 각각 제거한 변이 균주를 나타낸다. 각 도면에서 화살표는 지방산이 첨가된 시점을 가리킨다.
도 5는 본 발명에서 규명된 유전자들의 이중제거(double knockout)에 의한 변이 대장균에서의 지방산 생산량을 나타낸 것이다. '△envR△gusC-TesA'는 envR 및 gusC가 이중제거된 돌연변이를, '△gusC△mdlA-TesA'는 gusC 및 mdlA가 이중제거된 돌연변이를, '△envR△mdlA-TesA'는 envR 및 mdlA가 이중제거된 돌연변이를, 그리고 대조군(control)은 상기 유전자가 제거되지 않은 균주를 나타낸다. FIG. 1A schematically illustrates the process of constructing a library of random insertion mutants using a plasposon according to one embodiment of the invention; FIG. 1B shows a map of the plastic zone produced in the present invention.
Fig. 2 shows the amount of fatty acid production of the mutant strains selected in the present invention. The control (control) was a wild-type E. coli containing pBbB6c-tesA. coli MG1655, and ΔenvR-TesA, ΔgusC-TesA, and ΔmdlA-TesA represent mutant E. coli (MG1655) containing pBbB6c-tesA but inactivated envR, gusC and mdlA respectively.
FIG. 3 shows the results of measurement of concentration (mg / L) of intracellular and extracellular fatty acids in the mutant strains selected in the present invention. The lower region of each rod represents the intracellular fatty acid concentration and the upper region represents the fatty acid concentration outside the cell. The control (control) was a wild-type E. coli containing pBbB6c-tesA. coli MG1655, and ΔenvR-TesA, ΔgusC-TesA, and ΔmdlA-TesA represent mutant E. coli (MG1655) containing pBbB6c-tesA but inactivated envR, gusC and mdlA respectively.
FIG. 4 is a graph showing the cell growth rate depending on the presence or absence of fatty acid in the selected mutant strains of the present invention. MG-ΔfadD (control group) represents Escherichia coli in which the fadD encoding the acyl-CoA synthetase is removed and the fatty acid degradation pathway is inactivated, and ΔenvR, ΔgusC and ΔmdlA represent EnvR, MdlA, GUSC gene, respectively. In each figure, the arrow indicates the time point at which the fatty acid is added.
FIG. 5 shows the production of fatty acids in the mutant E. coli by double knockout of the genes identified in the present invention. '△ envR △ gusC-TesA' is a mutation in which envR and gusC are double-removed, '△ gusC △ mdlA-TesA' is a mutation in which gusC and mdlA are double-removed, '△ envR △ mdlA-TesA' is envR and mdlA And the control (control) represents a strain in which the gene has not been removed.

본 발명은 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 불활성화된 변이 대장균을 제공한다.
The present invention provides a mutant E. coli in which one or more genes selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA are inactivated.

상기 변이 대장균은 본 발명자들에 의해 규명된 신규 유전자가 불활성화된 것을 특징으로 한다. The mutant E. coli is characterized in that a novel gene identified by the present inventors is inactivated.

본 발명자들은 플라스포존(plasposon)을 이용하여 대장균의 유전자가 무작위적으로 불활성화된 돌연변이 라이브러리(mutant library)를 제작하고, 상기 라이브러리로부터 본 발명자들이 개발한 지방산 바이오센서를 이용하여 지방산의 생성능이 개선된 돌연변이 균주를 수득하였고, 상기 선별된 균주들의 유전자형을 확인함으로써 대장균의 게놈 내의 envR, gusC 및 mdlA 유전자가 대장균에서의 지방산 생산에 관여한다는 것을 새로운 사실을 확인하였다. The present inventors prepared a mutant library in which a gene of E. coli was randomly inactivated using a plasposon and using the fatty acid biosensor developed by the present inventors from the library, An improved mutant strain was obtained and confirmed that the envR, gusC and mdlA genes in the genome of E. coli were involved in fatty acid production in E. coli by confirming the genotype of the selected strains.

본 발명자들이 확인한 결과, 상기 3종의 유전자들은 종래에 지방산 생산과 밀접한 관련성이 있다는 것이 알려져 있지 않았고, 이들 유전자를 이용하여 대장균에서 지방산 생산을 개선하고자 하는 노력도 보고된 바 없었다. As a result of the inventors' findings, it has not been known that the above three genes are closely related to fatty acid production in the past, and no efforts have been made to improve fatty acid production in E. coli using these genes.

본원에서 확인된 유전자 중 하나인 'EnvR'(envCD로도 알려짐)은 대장균의 수송 펌프인 AcrAB와 AcrEF의 발현을 억제하는 것으로 알려져 있다(Hirakawa et al., J Bacteriol . 190, 6276-9. 2008; WO 2006/1138972). EnvR은 상기 수송 펌프를 조절을 통해 물질의 수송에 관여하는 것으로 예상되나, EnvR이 대장균에서 지방산의 생산과 연관되는지, 그리고 이를 제거함으로써 대장균에서 지방산의 생산을 증가시킬 수 있는지에 관한 구체적인 보고는 없다.EnvR (also known as envCD), one of the genes identified herein, is known to inhibit the expression of AcrAB and AcrEF, the transport pumps of E. coli (Hirakawa et al., J Bacteriol ., 190 , 6276-9 , 2008; WO 2006/1138972). Although EnvR is expected to be involved in the transport of the substance through regulation of the transport pump, there is no specific report on whether EnvR is associated with the production of fatty acids in E. coli and can increase the production of fatty acids in E. coli by removing it .

본원에서 확인된 다른 유전자인 'GusC'는 글루쿠로니드(glucuronide)를 세포내로 수송하는 외막 단백질(outer membrane protein)이다. 글루쿠로니드는 글루쿠론산이 결합되어 있는 형태의 물질로 지방산과 유사하게 탄소사슬과 카복실기로 구성되어 있다. 현재까지 GusC와 지방산과의 관계는 밝혀진 바가 없지만, 글루쿠로니드가 지방산과 유사한 구조를 가지고 있다는 점을 고려할 때 GusC가 지방산의 수송에도 관여하는 것이 아닐까 판단된다. GusC, another gene identified herein, is an outer membrane protein that transports glucuronide into cells. Glucuronide is a substance in which glucuronic acid is bound and is composed of a carbon chain and a carboxyl group similar to fatty acids. To date, the relationship between GusC and fatty acids has not been elucidated. However, considering that glucuronide has a structure similar to that of fatty acids, it is considered that GusC is also involved in the transport of fatty acids.

본원에서 확인된 또 다른 유전자인 'MdlA'는 정확한 역할이 아직 밝혀진 바 없으나, 본 발명자들에 의해 아미노산 분석 결과 기존에 밝혀진 다중약물방출단백질(multi-drug efflux pump)들의 역할을 할 것으로 보인다.
Although the precise role of 'MdlA', another gene identified herein, has not been clarified yet, amino acid analysis by the present inventors seems to play a role of multi-drug efflux pumps that have been found previously.

전술한 바와 같이, 본 발명에 따른 변이 대장균은 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 불활성화된 것을 특징으로 한다. As described above, the mutant E. coli according to the present invention is characterized in that at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA is inactivated.

본원에서 사용된 바와 같이, 용어 '불활성화'는 해당 유전자가 발현되지 않거나 발현되더라도 기능성이 있는 해당 유전자 산물을 생산하지 않는 것을 의미한다. 또한, '불활성화'란 해당 유전자가 완전하게 불활성화되어 있는 것뿐만 아니라 그 발현 수준이 현저하게 낮아 실질적으로 발현되지 않는 것도 포함되는 의미이다.As used herein, the term " inactivated " means that the gene is not expressed or expressed, but does not produce a functional gene product of interest. Also, 'inactivation' means not only that the gene is completely inactivated but also that the expression level thereof is remarkably low, so that the gene is not substantially expressed.

본원에서 유전자의 불활성화는 당업계에 알려진 임의의 방법, 예를 들면, 돌연변이유발, 상동성 재조합 등을 포함하나, 이에 제한되지 않는다. Deactivation of a gene herein includes, but is not limited to, any method known in the art, for example, mutagenesis, homologous recombination, and the like.

본 발명의 일 구현예에 따르면, 본 발명의 변이 대장균은 envR 유전자가 불활성화된 변이 대장균이다.According to one embodiment of the present invention, the mutant E. coli of the present invention is a mutant E. coli in which the envR gene is inactivated.

본 발명의 다른 구현예에 따르면, 본 발명의 변이 대장균은 gusC 유전자가 불활성화된 변이 대장균이다. According to another embodiment of the present invention, the mutant E. coli of the present invention is a mutant E. coli in which the gusC gene is inactivated.

본 발명의 또 다른 구현예에 따르면, 본 발명의 변이 대장균은 mdlA 유전자가 불활성화된 변이 대장균이다. According to another embodiment of the present invention, the mutant E. coli is a mutant E. coli in which the mdlA gene is inactivated.

본 발명의 또 다른 구현예에 따르면, 본 발명의 변이 대장균은 envR 및 gusC 유전자가 불활성화된 변이 대장균이다.According to another embodiment of the present invention, the mutant E. coli of the present invention is a mutant E. coli in which envR and gusC genes are inactivated.

본 발명의 또 다른 구현예에 따르면, 본 발명의 변이 대장균은 envR 및 mdlA 유전자가 불활성화된 변이 대장균이다.According to another embodiment of the present invention, the mutant E. coli of the present invention is a mutant E. coli in which envR and mdlA genes are inactivated.

본 발명의 또 다른 구현예에 따르면, 본 발명의 변이 대장균은 gusC 및 mdlA 유전자가 불활성화된 변이 대장균이다.According to another embodiment of the present invention, the mutant E. coli of the present invention is a mutant E. coli in which the gusC and mdlA genes are inactivated.

상기 변이 대장균에서 각각의 유전자는 독립적인 방법에 의해 불활성될 수 있는 것으로 이해되어야 한다. 즉, envR, gusC 및 mdlA 유전자는 서로 다른 방법에 의해 불활성화될 수 있다.
It is to be understood that each gene in the mutant E. coli can be inactivated by an independent method. That is, envR, gusC and mdlA genes can be inactivated by different methods.

본 발명의 일 구현예에 따르면, 본 발명에 따른 변이 대장균은 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 돌연변이된 변이 대장균이다. According to one embodiment of the present invention, the mutant E. coli according to the present invention is a mutant E. coli mutant in which one or more genes selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA are mutated.

본원에서 사용된 용어 "돌연변이", "변이"는 야생형과 비교하여, 유전자 내의 뉴클레오타이드 또는 아미노산 서열의 변화를 가리킨다. 이러한 돌연변이는 삽입(insertion), 결실(deletion), 치환(substitution), 점 돌연변이(point mutation), 다수의 뉴클레오타이드 또는 아미노산의 돌연변이, 전위(transposition), 역위(inversion), 프레임 쉬프트(frame shift), 표적 서열을 넌센스 돌연변이 또는 유전자의 야생형 서열과 차별화하는 다른 형태의 변형을 포함한다. 하지만, 상기 돌연변이는 envR, gusC 및 mdlA 중 하나 이상의 유전자의 작용(예를 들면, 발현)을 억제 또는 감소시키는 한 특별한 제한이 없다.As used herein, the terms " mutation ", " mutation " refer to a change in the nucleotide or amino acid sequence in a gene as compared to a wild type. Such mutations can be introduced by insertion, deletion, substitution, point mutation, mutation of many nucleotides or amino acids, transposition, inversion, frame shift, And other forms of modification that differentiate target sequences from nonsense mutations or wild-type sequences of the genes. However, the mutation has no particular limitation as long as it inhibits or reduces the action (e. G., Expression) of one or more genes of envR, gusC and mdlA.

이러한 돌연변이 방법으로는, 부위-특이 돌연변이 기법(site-directed mutagenesis)(Sambrook, J. and Russell, D. W., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, N. Y., 2001), 카세트 돌연변이 기법(cassette mutagenesis)(Arkin, A. and Youvan, D. C., Proc . Natl. Acad . Sci . USA, 89:7811-7815, 1992; Delagrave et al., Protein Engineering, 6:327-331, 1993; Goldman, E. R. and Youvan, D. C., Bio/Technology, 10:1557-1561, 1992), 포화 돌연변이 기법(saturation mutagenesis)(USP No. 6,171,820 및 USP No. 6,238,884), 에러-유발성 중합효소 연쇄반응 기법(error-prone PCR)(Leung, D. W. et al., Technique, 1:11-15, 1989; Caldwell, R. C. and Joyce, G. F., PCR Methods and Applications, 2:28-33, 1992; Gramm, H. et al., Proc . Natl . Acad . Sci . USA, 89:3576-3580, 1992), 화학적 돌연변이 기법(chemical mutagenesis)(Myers, R. M. et al., Science, 229:242-247, 1985; Walton, C. et al., Directed Mutagenesis : A practical approach(ed. M. J. McPherson), 135-162, IRL Press, Oxford, United Kingdom, 1991) 등을 들 수 있다. Such mutagenesis methods include site-directed mutagenesis (Sambrook, J. and Russell, DW, Molecular Cloning: A Laboratory Manual , 3rd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, NY, Cassette mutagenesis (Arkin, A. and Youvan, DC, Proc . Natl. Acad . Sci . USA , 89: 7811-7815, 1992; Delagrave et al., Protein Engineering , 6: 327-331, 1993; Saturation mutagenesis (USP No. 6,171,820 and USP No. 6,238,884), error-inducible polymerase chain reaction technique (USP No. 6,171,820) and USP No. 6,238,884 (Goldman, ER and Youvan, DC, Bio / Technology , 10: 1557-1561, Gramm, H. et al., " Error-prone PCR " (Leung, DW et al., Technique , 1: 11-15, 1989; Caldwell, RC and Joyce, GF, PCR Methods and Applications , (Myers, RM et al., Science , 229: 242-247, 1985; Walton, C., et al., Proc . Natl . Acad . Sci . USA , 89: 3576-3580, 1992). et al., Directed Mutagenesis : A practical approach (ed. MJ McPherson, 135-162, IRL Press, Oxford, United Kingdom, 1991).

상기 돌연변이는 트랜스포존(transposon) 또는 플라스포존(plasposon)을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발(random insertional mutagenesis)에 의해 수득될 수 있다. The mutation can be obtained by random insertional mutagenesis using a transposon or a plasposon.

본원에서 사용된 용어 "트랜스포존"은 트랜스포자아제(transposase) 또는 인테그라제(integrase) 효소에 의해 인식되는 핵산 절편을 가리키며, 이는 타겟 핵산 내로 삽입될 수 있는, 즉 전위(transposition)될 수 있는 기능적 핵산-단백질 복합체 중 필수 성분이다. 트랜스포존을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발은 당업계에 널리 알려져 있다. 이들 트랜스포존은 세포의 게놈에 새로운 표현계를 혼입하기 위한 유전자 도입 툴로서, 변이 도입, 유전자 트래핑, 트랜스제닉 개체의 제작 및 약제 내성 단백질을 발현시키는 것 등에 이용되고 있다. As used herein, the term " transposon " refers to a nucleic acid fragment recognized by a transposase or integrase enzyme, which is a functional nucleic acid that can be inserted into the target nucleic acid, - is an essential component of the protein complex. Random insertion using a transposon Mutagenesis is well known in the art. These transposons are used as gene introduction tools for incorporating a new expression system into the genome of cells, such as mutagenesis, gene trapping, production of transgenic plants, and expression of drug resistance proteins.

본원에서 사용된 용어 "플라스포존"은 복제 원점을 갖는 미니-트랜스포존을 가리킨다. 대표적인 예로서, TnMod라는 명칭의 기본 플라스포존이 알려져 있으며, 이는 삽입 돌연변이의 맵핑 및 그램 음성 박테리아로부터 클론을 신속하게 회수하는데 사용된다(Dennis and Zylstra, Appl Environ Microbiol . 64, 2710-5, 1998). The term " plasmazone " as used herein refers to a mini-transposon having a replication origin. As a representative example, a basic plasposolon named TnMod is known, which is used for mapping of insertion mutants and for rapid recovery of clones from gram negative bacteria (Dennis and Zylstra, Appl . Environ Microbiol . 64 , 2710-5, 1998 ).

전술한 트랜스포존 또는 플라스포존을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발은 상기 트랜스포존 또는 플라스포존이 대장균의 게놈 내에 무작위로 삽입되어 대장균의 다양한 유전자의 돌연변이를 유발한다. 상기 돌연변이유발에 의해 무작위적 삽입 돌연변이 라이브러리를 수득할 수 있고, 그 중에서 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 불활성화된 변이 대장균을 선별할 수 있다.
Random insertion mutagenesis using the above-described transposon or plasposon is randomly inserted into the genome of the E. coli to induce mutation of various genes of E. coli. The above-mentioned mutation induction allows a random insertion mutant library to be obtained, and E. coli mutants in which one or more genes selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA are inactivated can be selected.

전술한 본 발명에 따른 변이 대장균은 변이되지 않은 대장균, 예컨대 야생형(wild-type) 대장균과 비교하여 개선된 지방산 생성능을 나타내는 것을 특징으로 한다. 상기 지방산 생성능의 개선은 변이 대장균이 야생형 대장균에 비해 동일한 조건에서 증가된 지방산 생산량을 나타낸다는 것을 의미한다. 이는 본 발명에서 확인된 유전자의 불활성화가 대장균에서 지방산의 생산에 크게 기여한다는 것을 가리킨다. 예를 들어, 본 발명에 따른 변이 대장균은 변이되지 않은 야생형 대장균과 비교하여 적어도 5%, 10%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 100%, 200%, 300% 또는 그 이상의 증가된 지방산 생산량을 나타낸다. The mutant E. coli according to the present invention described above is characterized in that it exhibits improved fatty acid production ability as compared with unmutated E. coli, for example, wild-type E. coli. The improvement in the fatty acid production ability means that the mutant E. coli shows increased fatty acid production under the same conditions as the wild type E. coli. This indicates that inactivation of the genes identified in the present invention contributes greatly to the production of fatty acids in E. coli. For example, the mutant E. coli according to the present invention may be at least 5%, 10%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90% 100%, 200%, 300% or more.

또한, 본 발명에 따른 변이 대장균은 변이되지 않은 대장균, 예컨대 야생형 대장균과 비교하여 세포 외부 지방산의 비율이 더 높은 것을 특징으로 한다. 상기 세포 외부 지방산의 비율은 총 지방산 농도 (세포 내부 지방산 및 세포 외부 지방산 모두 포함) 대비 세포 외부 지방산의 농도의 비를 의미한다. 이는 본 발명에서 확인된 유전자의 불활성화가 대장균 내의 세포 내부 지방산의 비율을 낮추고 세포 외부 지방산의 비율을 증가시키는데 크게 기여한다는 것을 가리킨다. 예를 들어, 본 발명에 따른 변이 대장균은 총 지방산 중 외부 지방산의 비율이 25% 이상, 27% 이상, 30% 이상, 33% 이상, 35% 이상, 40% 이상, 45% 이상, 또는 50% 이상일 수 있다. 본 발명에 따른 변이 대장균은 세포 내부 지방산의 비율을 낮춤으로써 지방산으로 인한 세포 독성을 줄일 수 있다. 따라서, 본 발명에 따른 변이 대장균은 세포 생장에 대한 저해없이 지방산을 생산할 수 있다.
In addition, the mutant E. coli according to the present invention is characterized in that the ratio of the extracellular fatty acids is higher than that of unmutated E. coli, for example, wild-type E. coli. The ratio of the extracellular fatty acids means the ratio of the concentration of the extracellular fatty acids to the total fatty acid concentration (including both intracellular fatty acids and extracellular fatty acids). This indicates that inactivation of the gene identified in the present invention contributes greatly to lowering the ratio of the intracellular fatty acid in the E. coli and increasing the ratio of the extracellular fatty acid. For example, the mutant Escherichia coli according to the present invention has a proportion of the external fatty acid in the total fatty acids of 25% or more, 27% or more, 30% or more, 33% or more, 35% or more, 40% or more, 45% or 50% Or more. The mutant E. coli according to the present invention can reduce cytotoxicity due to fatty acids by lowering the ratio of the intracellular fatty acids. Therefore, the mutant E. coli according to the present invention can produce a fatty acid without inhibiting cell growth.

본원이 envR, gusC 및/또는 mdlA 유전자가 불활성화된, 예컨대 돌연변이된 대장균만을 기술하고 있음에도 불구하고, 본 기술분야의 숙련자라면, 타겟 미생물이 게놈 내에 상기 유전자를 가지는 한, 본 발명의 방법이 대장균 이외의 다른 다양한 타겟 미생물에 적용될 수 있음을 인식할 것이다.
It should be understood by those skilled in the art that, although the present invention describes only mutated E. coli strains in which the envR, gusC and / or mdlA genes are inactivated, as long as the target microorganism has the gene in the genome, It will be appreciated that the invention may be applied to various other target microorganisms.

또한, 본 발명은 야생형 대장균의 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자를 불활성화시키는 단계를 포함하는, 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법을 제공한다. In addition, the present invention provides a method for producing a mutant E. coli having improved fatty acid producing ability, comprising the step of inactivating at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA of wild-type E. coli.

전술한 바와 같이, 상기 유전자의 불활성화는 당업계에 알려진 다양한 방법, 예컨대 돌연변이유발에 의해 수행될 수 있다. 본 발명에 따른 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균의 제조방법은 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자의 불활성화를 달성하기만 하면 될 뿐, 그 불활성화 방법에 제한되지 않는다.
As described above, inactivation of the gene can be performed by various methods known in the art, for example, by mutagenesis. The method for producing the mutant Escherichia coli with improved fatty acid production ability according to the present invention is not limited to the inactivation method as long as it achieves inactivation of at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA.

나아가, 본 발명은 하기 단계를 포함하는 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법을 제공한다:Further, the present invention provides a method for producing a mutant E. coli having an improved fatty acid producing ability comprising the steps of:

(a) 야생형 대장균을 트랜스포존(transposon) 또는 플라스포존(plasposon)을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발(random insertional mutagenesis)에 의해 돌연변이시켜 라이브러리를 제작하는 단계; 및(a) preparing a library by mutating wild-type E. coli by random insertional mutagenesis using a transposon or a plasposon; And

(b) 상기 라이브러리로부터 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 불활성화된 변이 균주를 선별하는 단계. (b) selecting a mutant strain in which at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA is inactivated from the library.

전술한 방법에서, 단계 (a)는 목적하는 특성을 갖는 균주를 얻기 위한 다양한 변이된 돌연변이 집단을 수득하는 단계이다. 상기 돌연변이의 집단은 종래 공지된 다양한 방법에 의해 수행될 수 있으나, 무작위적 삽입 돌연변이유발에 의해 수행하는 것이 바람직하다. 상기 무작위적 삽입 돌연변이유발의 구체적인 예로는, 트랜스포존을 이용한 돌연변이유발 또는 플라스포존을 이용한 돌연변이유발을 들 수 있으며, 바람직하게는 플라스포존을 이용한 돌연변이유발에 의해 수행될 수 있다.In the aforementioned method, step (a) is a step of obtaining various mutated populations to obtain strains having the desired characteristics. The population of mutants may be performed by a variety of methods known in the art, but is preferably performed by random insertion mutagenesis. Specific examples of the random insertion mutagenesis include mutagenesis using a transposon or mutagenesis using a plasposon, and preferably mutagenesis using a plasposon.

플라스포존을 이용한 돌연변이유발에 따르면, 적절하게 제조된 플라스포존을 공여세포(donor cell)에 삽입한 후 세포접합(conjugation)에 의해 상기 플라스포존을 수용세포(recipient cell)에 전달함으로써 무작위적 삽입 돌연변이 균주를 생성할 수 있다. 상기 플라스포존을 이용한 무작위 삽입 돌연변이유발은 공여세포와 수용세포를 구별하고, 플라스포존이 삽입되지 않은 수용세포와 플라스포존이 삽입된 수용세포를 구별할 수 있는 조건하에 수행될 수 있다. 예를 들어, 영양요구주 공여세포를 사용함으로써 공여세포와 수용세포를 구별할 수 있고, 카나마이신 및 특정한 복제기점을 갖는 플라스포존을 사용함으로써 플라스포존이 삽입되지 않은 수용세포와 플라스포존이 삽입된 수용세포를 구별할 수 있다. According to the mutagenesis using the plasposon, a suitably prepared plasmapone is inserted into a donor cell, and then the plasmid is transferred to a recipient cell by cell conjugation, It is possible to generate an insecticidal mutant strain. The random insertion mutagenesis using the plasmid zone can be performed under conditions that distinguish the donor cell from the recipient cell and distinguish the recipient cell into which the plasposon is not inserted and the recipient cell into which the plasmid is inserted. For example, by using a nutrition-requiring primary donor cell, it is possible to distinguish donor cells from recipient cells, and by using a plasmid zone having kanamycin and a specific origin of replication, The inserted recipient cells can be distinguished.

전술한 플라스포존 및 세포접합을 이용한 방법은 본 기술분야에 널리 알려져 있다. Methods using the above-described plasposponses and cell junctions are well known in the art.

전술한 방법에서, 단계 (b)는 단계 (a)에서 수득된 무작위적 삽입 돌연변이 라이브러리 내의 균주를 분석하여 envR, gusC 및 mdlA 중 어느 하나의 유전자가 변이된 변이 균주를 선별하는 것이다. In the above-described method, step (b) is a step of analyzing strains in the random insertion mutation library obtained in step (a) to select mutant strains in which any one of envR, gusC and mdlA genes are mutated.

이는 상기 라이브러리 내의 균주들의 플라스포존 삽입 부위를 시퀀싱하여 서열을 확인함으로써 수행될 수 있다. 또한, 시퀀싱하는 균주의 수를 축소시키기 위하여, 시퀀싱과 더불어 무작위적 삽입 돌연변이 라이브러리 내의 균주 중 야생형 대장균에 비해 지방산 생성이 증가된 균주를 선별하는 과정을 조합할 수 있다. 예를 들어, 상기 라이브러리 내의 균주들에 대해 지방산 생성을 조사하여 지방산 생성능이 개선된 균주들을 1차 선별한 후, 상기 선별된 균주에 대해 플라스포존 삽입 부위의 서열을 조사함으로써 envR, gusC 및 mdlA 중 어느 하나의 유전자가 변이된 변이 균주를 선별할 수 있다.
This can be done by sequencing the plasposon insertion site of the strains in the library to identify the sequence. In addition, in order to reduce the number of strains to be sequenced, it is possible to combine the sequencing and the selection of strains having increased fatty acid production among the strains in the random insertion mutation library as compared with the wild type Escherichia coli. For example, the strains in the library are firstly screened for fatty acid production by investigating the fatty acid production, and envR, gusC and mdlA Can be selected as the mutant strain.

한편, 본 발명은 하기 단계를 포함하는 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법을 제공한다:On the other hand, the present invention provides a method for producing a mutant E. coli having an improved fatty acid producing ability comprising the steps of:

(a) 야생형 대장균을 트랜스포존(transposon) 또는 플라스포존(plasposon)을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발(random insertional mutagenesis)에 의해 돌연변이시켜 라이브러리를 제작하는 단계; 및(a) preparing a library by mutating wild-type E. coli by random insertional mutagenesis using a transposon or a plasposon; And

(b) 상기 라이브러리로부터 야생형 대장균과 비교하여 지방산 생성능이 개선된 균주를 선별하는 단계.
(b) selecting from the library a strain having improved fatty acid production ability as compared to wild-type E. coli.

전술한 방법에서, 단계 (a)는 앞서 설명한 바와 같다. In the above-described method, step (a) is as described above.

전술한 방법에서, 단계 (b)는 단계 (a)에서 수득된 무작위적 돌연변이 라이브러리 내의 균주를 분석하여 야생형 대장균에 비해 지방산 생성능이 개선된 균주를 선별한다. In the above-described method, step (b) analyzes strains in the random mutation library obtained in step (a) to select strains having improved fatty acid production ability compared to wild-type E. coli.

상기 방법에서, 변이 대장균의 지방산 생성능은 지방산 대사경로의 전사인자인 fadR, tetA 및 적색 형광 단백질(RFP)을 포함하는 플라스미드에 의해 측정될 수 있다. 상기 플라스미드는 본 발명자에 의해 개발된 것으로서, 본원에서 '지방산 바이오센서(fatty acid biosensor; FAB)'로 명명된다. In this method, the fatty acid producing ability of mutant E. coli can be measured by a plasmid containing fadR, tetA and red fluorescent protein (RFP) which are transcription factors of a fatty acid metabolic pathway. The plasmid was developed by the present inventor and is referred to herein as a fatty acid biosensor (FAB).

하나의 구현예에서, 상기 지방산 바이오센서 플라스미드는 pBAD 프로모터 및 이의 제어 하에 있는 fadR 유전자를 포함하고, FadR 결합 부위가 PL 프로모터에 삽입된 PLR 프로모터 및 이의 제어하에 있는 tetA 및 rfp 유전자를 포함한다.In one embodiment, the fatty acid biosensor plasmid comprises a pBAD promoter and a fadR gene under the control of the pBAD promoter, wherein the FadR binding site is P L The P LR promoter inserted into the promoter and the tetA and rfp genes under its control.

상기 지방산 바이오센서 플라스미드는 지방산이 불충분한 경우 FadR이 프로모터 내의 FadR 결합 부위에 결합하여 RNA 폴리머라아제가 프로모터에 결합하는 것을 막음으로써 tetA와 rfp 전사를 억제한다. 한편, 지방산이 충분한 경우 지방산이 아실-CoA로 활성화되고 이는 FadR의 DNA 결합 활성을 길항하며, RNA 폴리머라아제는 프로모터에 결합하여 tetA와 rfp 전사를 작동시킨다. 따라서, 테트라사이클린에 대한 내성과 RFP의 발현량을 측정함으로써 지방산 생성량을 측정할 수 있다.
The fatty acid biosensor plasmid inhibits tetA and rfp transcription by preventing FadR binding to the FadR binding site in the promoter and binding of the RNA polymerase to the promoter when the fatty acid is insufficient. On the other hand, if the fatty acid is sufficient, the fatty acid is activated by acyl-CoA, which antagonizes the DNA binding activity of FadR, and RNA polymerase binds to the promoter to activate tetA and rfp transcription. Therefore, fatty acid production can be measured by measuring resistance to tetracycline and the expression level of RFP.

본 발명은 또한 전술한 변이 대장균을 배양하는 단계를 포함하는, 변이 대장균을 이용하여 지방산을 생산하는 방법을 제공한다. The present invention also provides a method for producing a fatty acid using a mutant E. coli, which comprises culturing the mutant E. coli described above.

상기 변이 대장균의 배양은 적절한 대장균 배양용 배지, 예를 들면 LB 배지, M9-최소 배지 등을 이용하여 수행될 수 있다. 상기 배양 중 싸이오에스터라제의 발현을 돕기 위해 0.01 내지 1 mM, 바람직하게는 0.3 mM의 IPTG가 첨가될 수 있다. The above-mentioned mutant E. coli can be cultured using a suitable culture medium for Escherichia coli culture, for example, LB medium, M9-minimal medium and the like. IPTG of 0.01 to 1 mM, preferably 0.3 mM, may be added to aid in the expression of thiostere during the culture.

상기 배양 과정을 통해 수득한 배양물은 지방산을 수득하기 위해 종래 알려진 통상적인 방법, 예를 들면 셜록 미생물 동정 시스템(SherlockTM Microbial Identification System) 방법을 추가로 거칠 수 있다.
The culture obtained through the culturing process may further be subjected to a conventional method known in the art for obtaining a fatty acid, for example, a Sherlock ™ Microbial Identification System method.

이하, 본 발명을 실시예를 들어 상세히 설명하고자 하나, 하기 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐 이로 인해 본 발명의 범위가 제한되는 것은 아니다.
EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to Examples. However, the following Examples are for illustrative purposes only and are not intended to limit the scope of the present invention.

참고예: 세균 균주, 플라스미드 및 프라이머Reference Examples: Bacterial strains, plasmids and primers

하기 실시예에서 사용된 프라이머를 하기 표 1에 나타내었고, 균주 및 플라스미드를 하기 표 2에 나타내었다.The primers used in the following examples are shown in Table 1, and the strains and plasmids are shown in Table 2 below.

명칭designation 서열order 서열번호SEQ ID NO: 프라이머primer R6K-Kan FPR6K-Kan FP AAGGTACCAGATTGCAGCATTACACGTCAAGGTACCAGATTGCAGCATTACACGTC 1One R6K-Kan RPR6K-Kan RP CGAGCTCCTGAGATAGGTGCCTCACTGCGAGCTCCTGAGATAGGTGCCTCACTG 22 TesA FPTesA FP AAAGAATTCAAAAGATCTTTTAAGAAGGAGATATACATATGGCGGACACGTTATTGATAAAGAATTCAAAAGATCTTTTAAGAAGGAGATATACATATGGCGGACACGTTATTGAT 44 TesA RP TesA RP TTACTCGAGTTATGAGTCATGATTTACTATTACTCGAGTTATGAGTCATGATTTACTA 55 FadR FPFadR FP AAAGATCTTTTAAGAAGGAGATATACAT ATGGTCATTAAGGCGCAAAGAAAGATCTTTTAAGAAGGAGATATACAT ATGGTCATTAAGGCGCAAAG 77 FadR RPFadR RP TACTCGAGTTATCGCCCCTGAATGGCTATACTCGAGTTATCGCCCCTGAATGGCTA 88 TetA FPTetA FP ACATCAGCAGGACGCACTGACCGAATTCAATTTAAGAAGGAGATATACATATGAAATCTAACAATGCGCTCATCGACATCAGCAGGACGCACTGACCGAATTCAATTTAAGAAGGAGATATACATATGAAATCTAACAATGCGCTCATCG 99 TetA RPTetA RP AGAACCGCCTCCAGAACCACCACCGGAGCCGCCGCCGCTTCCACCGCC GGTCGAGGTGGCCCGGCTCCATGCAAGAACCGCCTCCAGAACCACCACCGGAGCCGCCGCCGCTTCCACCGCC GGTCGAGGTGGCCCGGCTCCATGCA 1010 RFP FPRFP FP GGCGGTGGAAGCGGCGGCGGCTCCGGTGGTGGTTCTGGAGGCGGTTCT ATGGCGAGTAGCGAAGACGTTATCAGt; 1111 RFP RPRFP RP GTCAAGTTGTCATAAGACGTCTACCGCCTTTGAGTGAGCTGGTCAAGTTGTCATAAGACGTCTACCGCCTTTGAGTGAGCTG 1212 K2 RPK2 RP GGACTGGCTGCTATTGGGCGAAGTGGACTGGCTGCTATTGGGCGAAGT 1313 Km seq RPKm seq RP GAAGAACTCGTCAAGAAGGCGATAG GAAGAACTCGTCAAGAAGGCGATAG 1414 EnvR delete FPEnvR delete FP GAACTGAATTTTCAGGACAGAATGTGAATTTACATGACACTTAATTCATTGTGTAGGCTGGAGCTGCTTCGAACTGAATTTTCAGGACAGAATGTGAATTTACATGACACTTAATTCATTGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC 1515 EnvR delete RPEnvR delete RP ATTTTCTCACTCTGTGTCGAATATATTTATTTCCTGAATAATTAATCATGATTCCGGGGATCCGTCGACCATTTTCTCACTCTGTGTCGAATATATTTATTTCCTGAATAATTAATCATGATTCCGGGGATCCGTCGACC 1616 EnvR sequencing FPEnvR sequencing FP GTTAAGCGAAGTTGACCCCGATCTCGTTAAGCGAAGTTGACCCCGATCTC 1717 EnvR sequencing RPEnvR sequencing RP AAAGAAAAATACAGTTCGCTATCCTAAAGAAAAATACAGTTCGCTATCCT 1818 GusC delete FPGusC delete FP CCGGAGATTTTTCTCTCCGGCGTTATTTTTTACTTCAGCATAAAGTCATAGTGTAGGCTGGAGCTGCTTCCCGGAGATTTTTCTCTCCGGCGTTATTTTTTTCTCAGCATAAAGTCATAGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC 1919 GusC delete RPGusC delete RP ACTAATTAATATTCAATAAAAATAATCAGAACATCAAAGGTGCAACTATGATTCCGGGGATCCGTCGACCACTAATTAATATTCAATAAAAATAATCAGAACATCAAAGGTGCAACTATGATTCCGGGGATCCGTCGACC 2020 GusC sequencing FPGusC sequencing FP GGCATGTTTGCGATGCCAGCTCTTAGGCATGTTTGCGATGCCAGCTCTTA 2121 GusC sequencing RPGusC sequencing RP CCGGCGTGCGAATTGAAGGGCTCACCCGGCGTGCGAATTGAAGGGCTCAC 2222 MdlA delete FPMdlA delete FP TCTTTACCCATCGAATAAATATCCAGAATCAGGTCAGGACACAACGCGTGGTGTAGGCTGGAGCTGCTTCTCTTTACCCATCGAATAAATATCCAGAATCAGGTCAGGACACAACGCGTGGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC 2323 MdlA delete RPMdlA delete RP GCTTGAGAGTCGGCCACAGTTGGCTAAAACTACGCATCGACGGCCTCCTCATTCCGGGGATCCGTCGACCGCTTGAGAGTCGGCCACAGTTGGCTAAAACTACGCATCGACGGCCTCCTCATTCCGGGGATCCGTCGACC 2424 MdlA sequencing FPMdlA sequencing FP AACGGCTGGAGGACGACGGTATCCTAACGGCTGGAGGACGACGGTATCCT 2525 MdlA sequencing RPMdlA sequencing RP ACAGCAGCGACTGCGCGTAATGTAGACAGCAGCGACTGCGCGTAATGTAG 2626 FadD delete FPFadD delete FP CATTTGGGGTTGCGATGACGACGAACACGCATTTTAGAGGTGAAGAATTGGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC≪ RTI ID = 2727 FadD delete RPFadD delete RP TAACCGGCGTCTGACGACTGACTTAACGCTCAGGCTTTATTGTCCACTTTATTCCGGGGATCCGTCGACCTAACCGGCGTCTGACGACTGACTTAACGCTCAGGCTTTATTGTCCACTTTATTCCGGGGATCCGTCGACC 2828 FadD sequencing FPFadD sequencing FP GAGAGTACAAACAGTTGTAACTGGAGAGTACAAACAGTTGTAACTG 2929 FadD sequencing RPFadD sequencing RP CCATCGAAAAGTTGAATCAACCATCGAAAAGTTGAATCAA 3030

명칭designation 특성characteristic 입수처 또는 참고문헌Availability or References 균주Strain E.coli MG1655 E. coli MG1655 야생형Wild type Blattner 등 Science 277, 5331, 1453-1474(1997) Blattner et al., Science 277, 5331, 1453-1474 (1997) E. coli MFD λ pir E. coli MFD λ pir MG1655 RP4-2-Tc::[ΔMu1::aac(3)IV-ΔaphA-Δnic35-ΔMu2::zeo] ΔdapA::(erm-pir) ΔrecAMG1655 RP4-2-Tc :: [ΔMu1 :: aac (3) IV-ΔaphA-Δnic35-ΔMu2 :: zeo] ΔdapA:: (erm-pir) ΔrecA Ferrieres et al.,
J Bacteriol . 192, 6418-27. 2010Ferrieres et al.,
J Bacteriol . 192 , 6418-27. 2010 E. coli MFD λ pir-플라스포존 E. coli MFD ? Pir - Plasphozone 플라스포존을 포함하는 E. coli MFD λpir E. coli containing the plasspazone MFD λpir 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-△fadD
MG-? FadD
acyl-CoA 합성효소를 암호화하는 fadD가 제거된 MG1655
fadD-cleaved MG1655 encoding acyl-CoA synthetase
하기 실시예에서 제조
In the following examples,
MG-△envRMG-? EnvR envR이 제거된 MG1655MG1655 with envR removed 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-△gusCMG-? GusC gusC가 제거된 MG1655MG1655 with gusC removed 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-△mdlAMG-? MdlA mdlA가 제거된 MG1655MG1655 with mdlA removed 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-TesA(control)MG-TesA (control) pBbB6c-tesA를 포함하는 야생형 MG1655wild-type MG1655 containing pBbB6c-tesA 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-△envR-TesAMG-? EnvR-TesA pBbB6c-tesA를 포함하는 MG-△envRMG-? envR containing pBbB6c-tesA 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-△gusC-TesAMG-? GusC-TesA BbB6c-tesA를 포함하는 MG-△gusCMG-? GusC containing BbB6c-tesA 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-△mdlA-TesAMG-? MdlA-TesA BbB6c-tesA를 포함하는 MG-△mdlAMG-? MdlA containing BbB6c-tesA 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-△envR,△gusC-TesAMG-? EnvR,? GusC-TesA BbB6c-tesA를 포함하는 MG-△envR,△gusCMG-? EnvR,? GusC including BbB6c-tesA 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-△envR,△mdlA-TesAMG-? EnvR,? MdlA-TesA BbB6c-tesA를 포함하는 MG-△envR,△mdlAMG-? EnvR,? MdlA containing BbB6c-tesA 하기 실시예에서 제조In the following examples, MG-△mdl,A△gusC-TesAMG-? Mdl, A? GusC-TesA BbB6c-tesA를 포함하는 MG-△mdl,A△gusCMG-? Mdl, A? GusC containing BbB6c-tesA 하기 실시예에서 제조In the following examples, 플라스미드Plasmid pBbB6c-tesApBbB6c-tesA BBR1 ori; Cmr, PlacO1-tesABBR1 ori; Cm r , P lacO1 -tesA 하기 실시예에서 제조In the following examples, pBbB8a-FadRpBbB8a-FadR ColE1 ori; Ampr, PBAD-fadRColE1 ORi; Ampr, P BAD -fadR 하기 실시예에서 제조In the following examples, Fatty Acid Biosensor(FAB)Fatty Acid Biosensor (FAB) ColE1 ori; Ampr, PBAD-fadR, PLR-tetA-RFPColE1 ORi; Ampr, P BAD -fadR, PLR-tetA-RFP 하기 실시예에서 제조In the following examples, pKD13pKD13 R6K ori ; Kmr R6 is OR1; Km r Datsenko and Wanner, Proc Natl Acad Sci U S A. 97, 6640-5, 2000Datsenko and Wanner, Proc Natl Acad Sci US A. 97 , 6640-5, 2000 pTNMod-OTcpTNMod-OTc pMB1 ori; Tetr, OriT, TnppMB1 ori; Tetr, OriT, Tnp Dennis and Zylstra, Appl Environ Microbiol . 64, 2710-5, 1998Dennis and Zylstra, Appl . Environ Microbiol . 64 , 2710-5, 1998 pTNMod-R6K-KmpTNMod-R6K-Km R6k ori; Kmr, OriT, TnpR6 is OR1; Kmr, OriT, Tnp 하기 실시예에서 제조In the following examples, pCP20pCP20 R101 origin, repA101(ts); FLP 재조합효소, AmpR, CmR R101 origin, repA101 (ts); FLP recombinant enzyme, Amp R , Cm R Cherepanov and Wackernagel, Gene. 158, 9-14. 1995Cherepanov and Wackernagel, Gene. 158 , 9-14. 1995 pSIM5pSIM5 R101 origin, repA101(ts); Red 재조합효소, CmR R101 origin, repA101 (ts); Red recombinase, Cm R Datsenko and Wanner, Proc Natl Acad Sci U S A. 97, 6640-5, 2000Datsenko and Wanner, Proc Natl Acad Sci US A. 97 , 6640-5, 2000

실시예Example 1:  One: 플라스포존을Flavors Zone 이용한 무작위적 삽입 돌연변이 라이브러리의 제작 Construction of a random insertion mutation library using

도 1에 도시된 바와 같이, 대장균의 게놈에 무작위로 삽입되어 유전자를 불활성화시키는 플라스포존을 이용하여 무작위적 삽입 돌연변이 라이브러리를 제작하였다.
As shown in Fig. 1, a random insertion mutagenesis library was constructed using a plasposon in which the gene was inactivated randomly in E. coli genome.

<1-1> 플라스포존의 제조&Lt; 1-1 > Preparation of Plasphozone

박테리아의 게놈에 무작위적으로 삽입되는 플라스미드인 플라스포존 pTNMod-OTc를 G. J. ZYLSTRA 박사로부터 제공받았다(Dennis and Zylstra, Appl Environ Microbiol. 64, 2710-5, 1998). 상기 플라스포존 내의 테트라사이클린 내성유전자(Tetr) 및 pMB1 복제기점(pMB1 ori)을 프라이머(서열번호 1: AAGGTACCAGATTGCAGCATTACACGTC; 및 서열번호 2: CGAGCTCCTGAGATAGGTGCCTCACTG)를 이용한 PCR에 의해 플라스미드 pKD13(Datsenko and Wanner, Proc Natl Acad Sci U S A. 97, 6640-5, 2000) 유래의 카나마이신 내성유전자(Kmr) 및 R6K 복제기점으로 교체하였다(도 1 참조). 상기 제조된 플라스포존을 'pTNMod-R6K-Km'으로 명명하였다. 상기 제조된 플라스포존의 지도가 도 1b에 나타나 있으며, 전체 염기서열이 서열번호 3으로 표시되어 있다. Plasmozone pTNMod-OTc, a plasmid that is randomly inserted into the genome of bacteria, was obtained from Dr. GJ ZYLSTRA (Dennis and Zylstra, Appl . Environ Microbiol. 64, 2710-5, 1998). The tetracycline resistance gene (Tetr) and the pMB1 replication origin (pMB1 ori) in the above-mentioned plasmid were amplified by PCR using primers (SEQ ID NO: 1: AAGGTACCAGATTGCAGCATTACACGTC; SEQ ID NO: 2: CGAGCTCCTGAGATAGGTGCCTCACTG) and plasmid pKD13 (Datsenko and Wanner, Proc Natl Acad Sci USA A. 97 , 6640-5, 2000) (Kmr) and R6K origin of replication (see FIG. 1). The prepared plastic zone was named 'pTNMod-R6K-Km'. The map of the prepared plasmid zone is shown in FIG. 1B, and the entire nucleotide sequence is shown in SEQ ID NO: 3.

상기 플라스포존은 차후 실시예 2에서 사용될 바이오센서를 고려하여 제조하였다. 상기 바이오센서는 테트라사이클린 저항성에 의해 균주를 선별하므로, 플라스포존의 항생제 마커를 테트라사이클린에서 카나마이신으로 교체하였다. 그리고, pMB1 복제기점은 대장균에서 복제가 가능하여 돌연변이 균주를 선별하는데 사용될 수 없으므로, 이를 자살벡터(suicide vector)의 복제기점인 R6K로 교체하였다. 따라서, 카나마이신 내성 유전자 및 R6K가 대장균의 게놈에 삽입된 변이 균주는 카나마아신 함유 플레이트에서 성장할 수 있다.
The above-described plasmapone was prepared considering the biosensor to be used in the second embodiment. Since the biosensor selects strains by resistance to tetracycline, the antibiotic marker in the plasposon was changed from tetracycline to kanamycin. Since the origin of replication of pMB1 can not be used for screening mutant strains because it can be replicated in Escherichia coli, it is replaced with R6K, which is the origin of replication of a suicide vector. Thus, a mutant strain in which the kanamycin resistance gene and R6K are inserted into the genome of E. coli can grow on a kanamycin-containing plate.

<1-2> 무작위적 삽입 돌연변이 라이브러리의 제작<1-2> Construction of a random insertion mutation library

실시예 <1-1>에서 제조된 플라스포존을 공여세포에 삽입한 후, 세포접합을 통해 무작위적 삽입 돌연변이 라이브러리를 제작하였다. The plasmid zone prepared in Example < 1-1 > was inserted into donor cells, and then a random insertion mutation library was prepared through cell joining.

구체적으로, 공여세포(donor cell)로서 E. coli MFD λpir (Institut Pasteur; France) 및 수용세포(recipient cell)로서 E.coli MG1655(Blattner 등 Science, 277, 5331, 1453-1474(1997))를 이용하였다. Specifically, donor cells (donor cell) as an E. coli MFD λ pir (Institut Pasteur ; France) , and as a receiving cell (recipient cell) E. coli MG1655 (Blattner et al., Science , 277, 5331, 1453-1474 (1997)) was used.

먼저, 공여세포에 형질전환을 통해 실시예 <1-1>의 플라스포존 'pTNMod-R6K-Km'을 삽입하여 'MFD λpir-플라스포존' 균주를 준비하였다. First, a plasmid 'pTNMod-R6K-Km' of Example <1-1> was inserted into a donor cell to transform the MFD λ pir - flavosone strain.

공여세포로서 상기 균주 및 수용세포로서 E.coli MG1655를 각각 0.3 mM의 디아미노피멜산(DAP)이 첨가된 LB 배지 및 DAP가 첨가되지 않은 LB 배지에서 37℃에서 16시간 동안 배양하였다. 상기 배양된 세포들을 같은 조성의 배지에 1:100 희석하여 접종을 한 후 세포의 흡광도가 0.5~0.8이 될 때까지 배양하였다. As the strain and the receiving cell as a donor cell E. coli MG1655 was cultured in LB medium supplemented with 0.3 mM diaminopimelic acid (DAP) and LB medium supplemented with DAP at 37 DEG C for 16 hours. The cultured cells were diluted 1: 100 in the same composition medium, inoculated, and cultured until the absorbance of the cells reached 0.5-0.8.

공여세포에 포함된 카나마이신 내성 유전자와 자살벡터(suicide vector)의 복제기점인 R6K를 수용세포에 전달하기 위하여, 상기 배양된 두 균주를 멸균수로 헹군 다음 1:5의 부피비(공여:수용, 30 mL:150 mL)로 혼합하여 LB 플레이트에 도말하고, 37℃에서 6시간 동안 배양하였다. 상기 배양 중, 공여세포에 있던 플라스포존은 세포접합을 통하여 수용세포로 전달되고 플라스포존에 암호화되어 있던 트랜스포자아제가 발현되어 카나마이신 내성유전자와 R6K가 수용세포의 게놈에 무작위적으로 삽입된다. 이후, 상기 삽입에 의해 수용세포의 게놈에 있는 유전자가 무작위로 불활성화된다. 상기 공여세포는 디아미노피멜릭산이 없는 배지에서 생존할 수 없고, 게놈에 카나마이신 내성유전자와 R6K가 삽입되지 않은 수용세포는 카나마이신을 함유하는 배지에서 생존할 수 없다. 따라서, 세포를 디아미노피멜릭산이 결여되고 카나마이신을 함유하는 배지에서 성장시킴으로써 유전자가 무작위적으로 불활성화된 변이 대장균만을 수득할 수 있다. In order to transfer the kanamycin resistance gene and the origin of replication of the suicide vector (R6K) contained in the donor cells to the recipient cells, the cultivated strains were rinsed with sterilized water and then rinsed with sterilized water at a volume ratio of 1: 5 mL: 150 mL), plated on an LB plate, and cultured at 37 ° C for 6 hours. During the cultivation, the plasmids in the donor cells are transferred to the recipient cells through cell junctions, and the transposase encoded in the plasmid is expressed, and the kanamycin resistance gene and R6K are randomly inserted into the genome of the recipient cell . Thereafter, the insertion in the genome of the recipient cell is randomly inactivated. The donor cells can not survive in the medium without diaminopimeric acid, and the recipient cells in which the kanamycin resistance gene and R6K are not inserted into the genome can not survive in the medium containing kanamycin. Thus, by growing the cells in a culture medium lacking diaminopimeric acid and containing kanamycin, only mutant E. coli in which the genes are randomly inactivated can be obtained.

상기 6시간 배양 후, 세포들을 카나마이신 항생제가 포함된 LB 플레이트에 도말하여 성장시킴으로써, 다양한 유전자가 불활성화된 무작위적 돌연변이 라이브러리(총 18,882개의 균주)를 획득하였다.
After incubation for 6 hours, the cells were plated on an LB plate containing kanamycin antibiotics and grown to obtain a random mutant library in which various genes were inactivated (total 18,882 strains).

실시예 2: 지방산 생성능이 증가된 균주의 선별 및 유전자 규명Example 2: Selection and gene identification of strains with increased fatty acid producing ability

실시예 1에서 획득한 돌연변이 라이브러리 중에서 지방산 생성능이 증가된 균주를 선별하고, 상기 균주로부터 지방산 생성능에 관여하는 유전자를 확인하였다. Among the mutant libraries obtained in Example 1, strains with increased fatty acid production ability were selected and genes involved in fatty acid production ability were identified from the strains.

상기 균주의 선별을 위해, 하기 실시예 <2-1> 및 <2-2>에서 제조된 싸이오에스터라제 발현 플라스미드와 지방산 바이오센서 플라스미드를 이용하였다.
For the screening of the strains, thyroid protease plasmids and fatty acid biosensor plasmids prepared in the following Examples <2-1> and <2-2> were used.

<2-1> 싸이오에스테라아제 발현 플라스미드의 제조<2-1> Preparation of plasmid expressing thioesterase

MG1655 게놈의 싸이오에스터라아제를 주형으로 하고 프라이머로서 TesA FP(서열번호 4: AAAGAATTCAAAAGATCTTTTAAGAAGGAGATATACATATGGCGGACACGTTATTGAT)와 TesA RP(서열번호 5: TTACTCGAGTTATGAGTCATGATTTACTA)를 이용한 PCR에 의해 552bp의 싸이오에스테라아제(tesA) 유전자를 증폭시켰다. 상기 증폭된 tesA를 EcoRI과 XhoI으로 절단한 후, 동일한 제한효소로 처리된 pBbB6c-RFP 플라스미드(Joint BioEnergy Institute, USA)에 라이게이션하여 싸이오에스터라제를 발현하는 플라스미드 'pBbB6c-tesA'를 제조하였다.
A 552 bp thioesterase ( tesA ) gene was amplified by PCR using Tesla FP (SEQ ID NO: 4: AAAGAATTCAAAAGATCTTTTAAGAAGGATATACATATGGCGGACACGTTATTGAT) and TesA RP (SEQ ID NO: 5: TTACTCGAGTTATGAGTCATGATTTACTA) with the thymus of MG1655 genome as the template. The amplified tesA was digested with Eco RI and Xho I and then ligated to a pBbB6c-RFP plasmid (Joint BioEnergy Institute, USA) treated with the same restriction enzyme to generate plasmid pBbB6c-tesA, which expresses thyrosolase .

<2-2> 지방산 바이오센서(FAB)의 제조<2-2> Production of fatty acid biosensor (FAB)

문헌[Fuzhong et al., Nature Biotechnology, 30, 354-359(2012)]에 기재된 방법을 참조하여, 지방산의 농도를 간접적으로 감지할 수 있는 FAB 플라스미드를 제작하였다. FAB plasmids capable of indirectly detecting the concentration of fatty acids were prepared by referring to the method described in Fuzhong et al., Nature Biotechnology , 30, 354-359 (2012).

먼저, 대장균의 지방산 대사경로의 전사인자인 FadR이 결합할 수 있는 DNA 서열(서열번호 6: ATCTGGTACGACCAGAT)을 프라이머(서열번호 9: ACATCAGCAGGACGCACTGACCGAATTCAATTTAAGAAGGAGATATACATATGAAATCTAACAATGCGCTCATCG)를 이용하여 PL 프로모터에 삽입하였다.First, with the transcription factor FadR of fatty acid metabolic pathway of E. coli capable of binding DNA sequence (SEQ ID NO: 6: ATCTGGTACGACCAGAT) a primer: using a (SEQ ID NO: 9 ACATCAGCAGGACGCACTGACCGAATTCAATTTAAGAAGGAGATATACATATGAAATCTAACAATGCGCTCATCG) P L Lt; / RTI &gt;

이후, FadR의 원활한 발현을 위해 대장균의 FadR 유전자를 프라이머(서열번호 7: AAAGATCTTTTAAGAAGGAGATATACATATGGTCATTAAGGCGCAAAG; 및 서열번호 8: TACTCGAGTTATCGCCCCTGAATGGCTA)를 이용한 PCR에 의해 증폭한 다음, 이를 bglII와 XhoI로 절단하였다. 상기 절단된 단편을 동일한 제한 효소로 처리된 대장균용 발현 플라스미드 pBbB8a(Joint BioEnergy Institute, USA)에 삽입하여 FadR을 포함하는 플라스미드 'pBbB8a-FadR'을 제작하였다. After that, the FadR gene of E. coli was amplified by PCR using primers (SEQ ID NO: 7: AAAGATCTTTTAAGAAGGAGATATACATATGGTCATTAAGGCGCAAAG; SEQ ID NO: 8: TACTCGAGTTATCGCCCCTGAATGGCTA) for smooth expression of FadR and then digested with bglII and XhoI. The digested fragment was inserted into an expression plasmid pBbB8a (Joint BioEnergy Institute, USA) for Escherichia coli treated with the same restriction enzyme to prepare a plasmid 'pBbB8a-FadR' containing FadR.

한편, tetA 유전자를 플라스미드 pBBR1MCS-3(Applied Environmental Microbiology Lab, UNIST, Korea)을 주형으로 하여 프라이머(서열번호 9: ACATCAGCAGGACGCACTGACCGAATTCAATTTAAGAAGGAGATATACATATGAAATCTAACAATGCGCTCATCG; 및 서열번호 10: AGAACCGCCTCCAGAACCACCACCGGAGCCGCCGCCGCTTCCACCGCCGGTCGAGGTGGCCCGGCTCCATGCA)의 프라이머를 이용한 PCR에 의해 증폭하였다. 또한, 적색 형광 단백질(Red Fluorescent Protein; RFP) 유전자를 플라스미드 pBbB8a-RFP(Joint BioEnergy Institute, USA)를 주형으로 하여 프라이머(서열번호 11: GGCGGTGGAAGCGGCGGCGGCTCCGGTGGTGGTTCTGGAGGCGGTTCTATGGCGAGTAGCGAAGACGTTATCA; 및 서열번호 12: GTCAAGTTGTCATAAGACGTCTACCGCCTTTGAGTGAGCTG)를 이용한 PCR에 의해 증폭하였다. On the other hand, the tetA gene in the plasmid pBBR1MCS-3 (Applied Environmental Microbiology Lab, UNIST, Korea) template-primer:;: was amplified by PCR using primers (SEQ ID NO: 9 AGAACCGCCTCCAGAACCACCACCGGAGCCGCCGCCGCTTCCACCGCCGGTCGAGGTGGCCCGGCTCCATGCA ACATCAGCAGGACGCACTGACCGAATTCAATTTAAGAAGGAGATATACATATGAAATCTAACAATGCGCTCATCG and SEQ ID NO: 10). In addition, red fluorescent protein (Red Fluorescent Protein; RFP) gene to the a plasmid pBbB8a-RFP (Joint BioEnergy Institute, USA) template primer (SEQ ID NO: 11: GGCGGTGGAAGCGGCGGCGGCTCCGGTGGTGGTTCTGGAGGCGGTTCTATGGCGAGTAGCGAAGACGTTATCA; and SEQ ID NO: 12: GTCAAGTTGTCATAAGACGTCTACCGCCTTTGAGTGAGCTG) amplified by PCR using the Respectively.

상기 증폭된 tetA 유전자 및 RFP 유전자를 SOEing PCR 기법으로 연결하여 하나의 융합 단백질(fusion protein)을 제조하였다. 상기 융합 단백질을 Aat로 절단한 후, 동일한 제한 효소로 처리된 플라스미드 pBbB8a-FadR에 삽입하여 지방산의 농도를 간접적으로 감지할 수 있는 '지방산 바이오센서(FAB)'를 제조하였다.
The amplified tetA gene and the RFP gene were linked by SOEing PCR technique to prepare a fusion protein. The fusion protein was digested with Aat and then inserted into the plasmid pBbB8a-FadR treated with the same restriction enzyme to prepare a fatty acid biosensor (FAB) capable of indirectly detecting the concentration of fatty acid.

<2-3> <2-3> 싸이오에스터라제Cyoestrase 발현 플라스미드와 지방산 바이오센서를 이용한 지방산  Fatty acids using expression plasmids and fatty acid biosensors 생성능이Productive 증가된Increased 균주의 선별 Selection of strains

상기 실시예 <2-1> 및 <2-2>에서 제조된 싸이오에스터라제 발현 플라스미드 및 FAB를 상기 제작된 돌연변이 라이브러리의 각 균주에 형질전환에 의해 삽입하였다. The thiostearase-expressing plasmids and FAB prepared in Examples <2-1> and <2-2> were inserted into each strain of the prepared mutant library by transformation.

상기 형질전환된 균주들을 40~60 ug/mL의 테트라사이클린이 함유된 LB 배지에서 농축배양 후 FACS(Fluorescence-activated cell sorting)를 통해 강한 RFP(red fluorescent protein)를 발현하는 균주들을 선별하였다. The transformed strains were enriched in LB medium containing 40-60 ug / mL of tetracycline, and then strains expressing strong RFP (red fluorescent protein) were selected by fluorescence-activated cell sorting (FACS).

선별된 균주들을 M9 배지(1X M9, 2mM MgSO4, 0.1mM CaCl2, 100mM 인산나트륨 완충액(pH 7.0), 및 2% 글루코오스)에서 배양하면서, 세포의 흡광도(optical density)가 1이 될 때 0.3 mM의 IPTG를 첨가하여 싸이오에스테라아제의 발현 및 이에 따른 지방산의 생성을 유도하였다. While the selected strains cultured in M9 medium (1X M9, 2mM MgSO 4, 0.1mM CaCl 2, 100mM sodium phosphate buffer (pH 7.0), and 2% glucose), 0.3 when the absorbance (optical density) of the cell to be first mM IPTG was added to induce the expression of thioesterase and thereby fatty acid production.

생성된 지방산의 농도를 가스크로마토그래피를 이용하여 측정하였다. 상기 측정된 지방산 농도를 기초로 지방산 생성능이 증가된 균주들을 선별하였다.
The concentration of the produced fatty acid was measured by gas chromatography. Based on the measured fatty acid concentration, strains with increased fatty acid production ability were selected.

<2-4> 지방산 생성에 관여하는 유전자의 확인<2-4> Identification of genes involved in fatty acid production

상기 지방산 생산량이 증가된 균주의 유전자형을 확인하기 위하여, 프라이머(서열번호 13: GGACTGGCTGCTATTGGGCGAAGT)를 이용하여 RATE(random amplification of transposon ends) PCR을 실시하였다(Ducey and Dyer et al., EPICENTRE Forum 9: 67, 2002). 이후, 카나마이신 내성유전자에 결합할 수 있는 프라이머(서열번호 14: GAAGAACTCGTCAAGAAGGCGATAG)를 이용한 염기서열 분석에 의해 플라스포존에 의해 불활성화된 유전자를 확인하였다. RATE (random amplification of transposon ends) PCR was performed using a primer (SEQ ID NO: 13: GGACTGGCTGCTATTGGGCGAAGT) to confirm the genotype of the strain with increased fatty acid production (Ducey and Dyer et al., EPICENTER Forum 9: 67 , 2002). Thereafter, the gene inactivated by the plasmid was identified by sequencing using a primer capable of binding to the kanamycin resistance gene (SEQ ID NO: 14: GAAGAACTCGTCAAGAAGGCGATAG).

상기 결과, 불활성화된 유전자 중에 envR, gusC, 및 mdlA 유전자가 확인되었다. 상기 유전자들은 기존에 알려진 지방산 생산에 관여하는 유전자가 아닌 새로운 유전자들이었다. As a result, envR, gusC, and mdlA genes were identified as inactivated genes. These genes were new genes that are not known to be involved in fatty acid production.

EnvR(envCD로도 알려짐)은 대장균의 수송 펌프인 AcrAB와 AcrEF의 발현을 억제하는 것으로 알려져 있다(Hirakawa et al., J. Bacteriol . 190, 6276-9. 2008; WO 2006/1138972). EnvR은 상기 수송 펌프를 조절을 통해 물질의 수송에 관여하는 것으로 예상된다. 따라서 본 발명에서 규명된 EnvR의 불활성화는 지방산 수송펌프의 발현을 향상시킴으로써 지방산에 의해 발생하는 세포독성을 줄이고 대장균의 지방산 생성능을 증가시키는 것으로 여겨진다. GusC는 글루쿠로니드(glucuronide)를 세포내로 수송하는 외막 단백질(outer membrane protein)이다. 글루쿠로니드는 글루쿠론산이 결합되어 있는 형태의 물질로 지방산과 유사하게 탄소사슬과 카복실기로 구성되어 있다. 현재까지 GusC와 지방산과의 관계는 밝혀진 바가 없지만 지방산과 유사한 구조를 가지고 있어 지방산의 수송에도 관여하는 것으로 여겨진다. MdlA의 경우 아미노산 서열을 분석한 결과 기존에 밝혀진 다중약물방출단백질(multi-drug efflux pump)들의 역할을 할 것으로 보이지만 정확한 역할은 아직 밝혀지지 않았다.
EnvR (also known as envCD) is known to inhibit the expression of AcrAB and AcrEF, the transport pumps of E. coli (Hirakawa et al., J. Bacteriol ., 190 , 6276-9 , 2008; WO 2006/1138972). EnvR is expected to be involved in the transport of the substance through regulation of the transport pump. Therefore, it is believed that the inactivation of EnvR identified in the present invention improves the expression of the fatty acid transport pump, thereby reducing cytotoxicity caused by fatty acids and increasing the fatty acid production ability of E. coli. GusC is an outer membrane protein that transports glucuronide into cells. Glucuronide is a substance in which glucuronic acid is bound and is composed of a carbon chain and a carboxyl group similar to fatty acids. To date, the relationship between GusC and fatty acids has not been elucidated yet, but it has a structure similar to that of fatty acids and is considered to be involved in the transport of fatty acids. Analysis of the amino acid sequences of MdlA seems to play a role of multi-drug efflux pumps, but its exact role has not yet been established.

실시예 3: envR, gusC, 및 mdlA 유전자의 지방산 생성 효과Example 3 Effect of EnvR, gusC, and mdlA Genes on Fatty Acid Formation

실시예 2에서 확인된 envR, gusC, 및 mdlA 유전자가 대장균에서의 지방산 생산에 관여하는지 살펴보기 위하여, 실시예 <2-3>에서와 같이 상기 유전자가 불활성화되어 지방산의 생성이 증가된 변이 대장균을 대상으로 지방산 농도를 측정하였다. In order to examine whether the envR, gusC, and mdlA genes identified in Example 2 were involved in the fatty acid production in E. coli, the mutant Escherichia coli, in which the gene was inactivated and the fatty acid production was increased as in Example <2-3 Were measured.

상기 결과를 도 2에 나타내었다. 도 2에서 대조군(control)은 pBbB6c-tesA를 포함하는 야생형 E.coli MG1655를 나타내고, △envR-TesA, △gusC-TesA 및 △mdlA-TesA는 각각 pBbB6c-tesA를 포함하고 envR, gusC 및 mdlA가 불활성화된 변이 대장균(MG1655)을 나타낸다. The results are shown in Fig. In Figure 2, the control (control) was wild-type E. coli containing pBbB6c-tesA. E. coli MG1655, and ΔenvR-TesA, ΔgusC-TesA and ΔmdlA-TesA represent mutant E. coli (MG1655) containing pBbB6c-tesA and inactivated envR, gusC and mdlA, respectively.

상기 도 2에서 보는 바와 같이, envR, gusC 및 mdlA가 불활성화된 변이 대장균은 대조군과 비교하여 우수한 지방산 생성능을 나타내었다.
As shown in FIG. 2, the mutant E. coli inactivated envR, gusC and mdlA showed excellent fatty acid production ability as compared with the control group.

실시예 4: 변이 대장균의 세포 내부 및 외부 지방산량 비교Example 4: Comparison of internal and external fatty acid amounts of mutant E. coli

선별된 유전자들의 기능이 지방산의 수송과 관련 있는지 살펴보기 위하여, 상기 변이 대장균 세포 내부와 외부의 지방산량을 비교하였다. In order to examine whether the function of the selected genes is related to the transport of fatty acids, the amount of fatty acid inside and outside the mutant E. coli cells was compared.

실시예 3에서 사용된 변이 대장균의 각 배양액을 10,000 RCF(relative centrifugal force)에서 5분 동안 원심분리하여 세포를 분리하였다. 상등액과 세포 부분을 분리하여 각각 다른 튜브에 보관하였다. 세포부분 (cell fraction)은 상등액과 동일한 양의 증류수를 넣어 다시 풀어준 후 지방산을 추출 및 메틸화하여 가스크로마토그래피로 지방산의 양을 측정하였다(Steen et al., Nature 463, 559562, 2010). 요약하면, 2.0 mL의 튜브에 500 uL의 배양액 (세포 외부의 경우 원심분리 후 상등액 부분을, 세포 내부의 경우 증류수에 풀어진 세포 부분을 가리킴), 50 uL의 6N HCl, 50 uL의 메틸노나데카노에이트 (1g/L, 내부 표준으로서 사용됨), 및 500 uL의 에틸아세테이트을 첨가한 후 30초간 강하게 볼텍싱하여 지방산을 유기용매층으로 추출하였다. 이후, 13500 rpm에서 2분간 원심분리하여 유기용매층을 분리하였다. 500 uL의 유기용매층을 메틸화(100 μL의 MeOH:6N HCl (9:1, v/v) 혼합액에 100 μL의 TMS-디아조메탄 첨가)한 후 가스크로마토그래피로 각각 세포 내부 및 세포 외부의 지방산 농도를 측정하였다. Each culture of the mutant E. coli used in Example 3 was centrifuged at 10,000 RCF (relative centrifugal force) for 5 minutes to separate the cells. The supernatant and cell fraction were separated and stored in different tubes. The cell fraction was extracted with the same amount of distilled water as that of the supernatant, and then the fatty acid was extracted and methylated, and the amount of fatty acid was measured by gas chromatography (Steen et al., Nature 463, 559562, 2010). To summarize, in a 2.0-mL tube, 500 μL of culture solution (supernatant after centrifugation in the case of extracellular cells, and cell part dissolved in distilled water in the case of cells), 50 μL of 6N HCl, 50 μL of methylnonadecano (1 g / L, used as an internal standard), and 500 uL of ethyl acetate, followed by vortexing vigorously for 30 seconds to extract the fatty acid into the organic solvent layer. Thereafter, the organic solvent layer was separated by centrifugation at 13500 rpm for 2 minutes. 500 μL of the organic solvent layer was methylated (100 μL of TMS-diazomethane was added to 100 μL of a mixed solution of MeOH: 6N HCl (9: 1, v / v) The fatty acid concentration was measured.

상기 결과를 도 3에 나타내었다. 도 3에서 각 막대의 하부 영역은 세포 내부 지방산 농도이며, 상부 영역은 세포 외부에서의 지방산 농도이다. 상기 도면에서 대조군(control)은 pBbB6c-tesA를 포함하는 야생형 E.coli MG1655를 나타내고, △envR-TesA, △gusC-TesA 및 △mdlA-TesA는 pBbB6c-tesA를 포함하나 각각 envR, gusC 및 mdlA가 불활성화된 변이 대장균(MG1655)을 나타낸다. The results are shown in Fig. In Fig. 3, the lower region of each rod is the intracellular fatty acid concentration, and the upper region is the fatty acid concentration outside the cell. In the figure, the control is a wild-type E. coli containing pBbB6c-tesA. coli MG1655, and ΔenvR-TesA, ΔgusC-TesA, and ΔmdlA-TesA represent mutant E. coli (MG1655) containing pBbB6c-tesA but inactivated envR, gusC and mdlA respectively.

상기 결과에서 보는 바와 같이, 대조군(야생형 대장균)의 경우 전체 지방산 중 세포 외부 지방산의 비율이 약 25%인데 반해, 본 발명에 따른 변이 대장균의 경우 세포 외부 지방산의 비율이 모두 30%를 넘는 것으로 나타났다. 그 중에서도, 수송 단백질들의 전사조절인자인 EnvR이 불활성화된 돌연변이 균주가 외부 지방산의 비율이 가장 높았고, 그 다음으로 MdlA 및 GusC의 순이었다. As shown in the above results, in the case of the control (wild-type E. coli), the proportion of the extracellular fatty acids in the total fatty acids was about 25%, while the proportion of the extracellular fatty acids in the mutant E. coli according to the present invention was more than 30% . Among them, the mutation strain in which EnvR, a transcription regulator of transport proteins, was inactivated had the highest ratio of external fatty acids, followed by MdlA and GusC.

상기 결과는 EnvR, MdlA 및 GusC 중 어느 하나의 유전자의 불활성화가 내부 지방산의 비율을 감소시킨다는 것을 보여준다. 따라서, EnvR, MdlA 및 GusC 중 어느 하나의 유전자의 불활성화는 내부 지방산의 비율을 감소시켜 상기 내부 지방산으로 인한 대장균의 성장 억제 및 부작용을 최소화할 수 있을 것으로 예상된다.
The results show that inactivation of any one of EnvR, MdlA and GusC reduces the ratio of internal fatty acids. Therefore, inactivation of any one of EnvR, MdlA, and GusC genes is expected to reduce the proportion of internal fatty acids, thereby minimizing growth inhibition and side effects of E. coli caused by the internal fatty acids.

실시예 5: 지방산의 유무에 따른 변이 대장균의 생장 변화Example 5: Variation according to presence or absence of fatty acid Growth of E. coli

본 발명에서 확인된 유전자들의 특성을 이해하기 위하여, 본 발명의 변이 대장균이 지방산의 유무에 따라 세포 생장에 영향을 받는지 살펴보았다. In order to understand the characteristics of the genes identified in the present invention, it was examined whether the mutant E. coli according to the present invention was affected by cell growth with or without fatty acids.

먼저, 문헌[Lennen et al., Biotechnol Bioeng . 106, 193-202. 2010]을 참고하여, acyl-CoA 합성효소를 암호화하는 fadD가 제거되어 지방산 분해경로가 불활성화된 대장균을 제조하였다. 상기 제조된 대장균을 'MG-△fadD'로 명명하였다. First, Lennen et al. Biotechnol Bioeng . 106 , 193-202. 2010], fadD encoding acyl-CoA synthetase was removed and E. coli inactivated fatty acid degradation pathway was prepared. The prepared E. coli was named 'MG-? FadD'.

한편, 상기 제조된 MG-△fadD 균주로부터 본 발명에서 확인된 EnvR, MdlA 및 GusC 유전자를 각각 제거하여 변이 균주를 제조하였다. 각각의 유전자와 상동성 서열을 지니고 있는 프라이머 (EnvR의 제거를 위한 서열번호 15 및 16의 프라이머, GusC의 제거를 위한 서열번호 19 및 20의 프라이머, mdlA의 제거를 위한 서열번호 23 및 24의 프라이머) 및 주형으로서 pKD13을 이용하여 kan 카세트를 PCR 증폭하였다. λRed 재조합 시스템을 pSIM5로부터 발현한 후, 상동성 재조합을 통해 상기 유전자들을 제거하였다. 이후, pCP20를 이용하여 kan 카세트를 제거하여 상기 유전자들을 대장균의 게놈에서 제거하였다. 상기 제조된 변이 균주를 각각 'MG-△envR', 'MG-△gusC' 및 'MG-△mdlA'로 명명하였다. On the other hand, the EnvR, MdlA, and GusC genes identified in the present invention were respectively deleted from the MG-? FadD strain to prepare a mutant strain. The primers of SEQ ID NOs: 15 and 16 for the removal of the primer (EnvR having a homology with each gene, the primers of SEQ ID NOs: 19 and 20 for the removal of GusC, the primers of SEQ ID NOs: 23 and 24 for the removal of mdlA ) And kan cassettes were PCR amplified using pKD13 as a template. The lambda Red recombination system was expressed from pSIM5 and then the genes were removed via homologous recombination. Then, pCP20 was used to remove the kan cassette and the genes were removed from the E. coli genome. The mutant strains thus prepared were named 'MG-? EnvR', 'MG-? GusC' and 'MG-? MdlA', respectively.

상기 제조된 4종의 균주를 M9배지(1X M9, 2mM MgSO4, 0.1mM CaCl2, 100mM 인산나트륨 완충액(pH 7.0), 2% 글리세롤, 및 지방산을 수용화하기 위한 0.05% tween-80)에서 배양하였다. 세포 흡광도가 1.1~1.3일 때 5 g/L(C12 : C14 : C16 : C18:1 = 30 : 50 : 10 : 10 (%), w/v)의 지방산을 첨가한 후 세포 흡광도를 측정하였다. 상기 결과를 도 4에 나타내었다. The strains of the produced four kinds of M9 medium in (1X M9, 2mM MgSO 4, 0.1mM CaCl 2, 100mM sodium phosphate buffer (pH 7.0), 2% glycerol, and 0.05% tween-80 for receiving a flower fatty acid) Lt; / RTI &gt; (C12: C14: C16: C18: 1 = 30: 50: 10: 10 (w / v), w / v) fatty acid was added at a cell absorbance of 1.1 to 1.3 and the cell absorbance was measured. The results are shown in Fig.

도 4에서 보는 바와 같이, 대조군 MG-△fadD 균주의 경우 지방산의 첨가에 따라 세포 생장이 30~40% 감소하는 것으로 나타났다. 이에 반해, 본 발명에서 확인된 유전자가 제거된 균주들은 지방산의 첨가에 의해 세포 생장이 크게 영향을 받지 않았다. 따라서, 본 발명에서 확인된 3개의 유전자는 내부 지방산에 의한 세포 독성을 감소시킴으로써 세포 생장을 개선하고, 이에 따라 대장균의 지방산 생성능을 증가시키는 것으로 예상된다.
As shown in FIG. 4, in the case of the control MG-? FadD strain, cell growth was reduced by 30 ~ 40% by the addition of fatty acid. On the contrary, the strains in which the genes identified in the present invention were removed were not significantly affected by the addition of fatty acids. Thus, the three genes identified in the present invention are expected to improve cell growth by decreasing cytotoxicity by internal fatty acids, thereby increasing the fatty acid production ability of E. coli.

실시예Example 6: 2 가지 유전자의 불활성화에 따른 지방산  6: Fatty acids due to inactivation of two genes 생성능Generation

본 발명에서 확인된 유전자들의 다양한 조합을 불활성화시키는 것이 지방산의 생성능을 추가적으로 증가시키는지 살펴보기 위하여, 이중제거(double knockout) 돌연변이 균주를 제작하였다. A double knockout mutant strain was constructed to examine whether the inactivation of various combinations of genes identified in the present invention further increased the fatty acid production ability.

구체적으로, 기존의 잘 알려진 λ-재조합 시스템(λ-recombinase system)을 이용하여 타겟 유전자들을 제거하였다(Datsenko and Wanner, Proc Natl Acad Sci U S A. 97, 6640-5, 2000). 상기 각 유전자의 제거를 위해 프라이머(envR -서열번호 15, 16, 17, 및 18; gusC - 서열번호 19, 20, 21, 및 22; mdlA - 서열번호 23, 24, 25 및 26)를 이용하였다. 상기 제작된 이중제거된 균주를 각각 'MG-△envR,△gusC-TesA', 'MG-△gusC,△mdlA-TesA' 및 'MG-△envR,△mdlA-TesA'로 명명하였다. 또한, 대조군으로서, 프라이머(fadD-서열번호 27, 28, 29, 및 30)를 사용하여 FadD가 제거된 균주를 제조하였다. Specifically, target genes were removed using a well-known λ-recombinase system (Datsenko and Wanner, Proc Natl Acad Sci. US A. 97 , 6640-5, 2000). For removal of each gene, a primer ( envR SEQ ID NOS: 15, 16, 17, and 18; gusC - SEQ ID NOS: 19, 20, 21, and 22; mdlA-SEQ ID NOS: 23, 24, 25 and 26). The prepared double-removed strains were designated as 'MG-? EnvR,? GusC-TesA', 'MG-? GusC,? MdlA-TesA' and 'MG-? EnvR,? MdlA-TesA', respectively. Also, as a control, strains in which FadD was removed were prepared using primers (fadD-SEQ ID NOS: 27, 28, 29, and 30).

실시예 2에서와 같이, 상기 이중제거 균주에 싸이오에스테라아제를 도입한 후 상기와 동일한 조성의 M9 배지에서 배양하여 지방산의 생산량을 측정하였다. 상기 결과를 도 5에 나타내었다. As in Example 2, thioesterase was introduced into the double-removed strain and then cultured in M9 medium having the same composition as above to measure the amount of fatty acid production. The results are shown in Fig.

도 5에서 보는 바와 같이, gusC와 envR이 동시에 제거된 MG-△envR,△gusC-TesA 균주가 가장 높은 지방산 생성능을 보였으며, 이는 envR만이 제거된 돌연변이 균주 및 gusC가 단독 제거된 돌연변이 균주(도 2)보다 지방산 생성능이 우수하였다. 또한, 다른 두 균주(MG-△gusC,△mdlA-TesA 및 MG-△envR,△mdlA-TesA)는 모 균주(parental strain)와 비슷한 양의 지방산을 생산하였다.As shown in FIG. 5, the MG-? EnvR and? GusC-TesA strains with the highest removal of envR and gusC from the strain gusC and envR were found to have the highest fatty acid production ability, 2). In addition, two other strains (MG-? GusC,? MdlA-TesA and MG-? EnvR,? MdlA-TesA) produced similar amounts of fatty acids as the parental strain.

상기 결과는 본 발명에서 확인된 유전자들의 조합을 불활성화함으로써 대장균의 지방산 생성능을 개선할 수 있음을 보여준다. These results show that the fatty acid production ability of E. coli can be improved by inactivating the combination of the genes identified in the present invention.

<110> UNIST(ULSAN NATIONAL INSTITUTE OF SCIENCE AND TECHNOLOGY) <120> MUTANT ESCHERICHIA COLI HAVING AN IMPROVED FATTY ACID PRODUCTION ABILITY AND METHOD FOR PREPARING THE SAME <130> FPD201610-0011 <160> 30 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R6K-Kan FP <400> 1 aaggtaccag attgcagcat tacacgtc 28 <210> 2 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R6K-Kan RP <400> 2 cgagctcctg agataggtgc ctcactg 27 <210> 3 <211> 5321 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> pTNMod-R6K-Km <220> <221> misc_feature <222> (35)..(52) <223> Outside end Tn5 transposase recognition sequences <220> <221> misc_feature <222> (53)..(1070) <223> Misc Feature 3(oriT) <220> <221> misc_feature <222> (1537)..(2559) <223> transposase <220> <221> misc_feature <222> (3066)..(3084) <223> Inside end Tn5 transposase recognition sequences <220> <221> misc_feature <222> (3249)..(4041) <223> Tn5 neomycin phosphotransferase <220> <221> misc_feature <222> (4825)..(5211) <223> R6K origin <400> 3 cttaattaat ttaaatctag actagtgcgg ccgcacttgt gtataagagt cagaattcta 60 ctgtttgggt gtatgagcta tttgcaaagg aaattggtga tgacaaagct cggcgctatt 120 tgaagaaaat cgactatggc aacgccgatc ctttttgtcc ggtgttgggt tgaaggtgaa 180 gccggtcggg gccgcagcgg gggccggctt ttcagccttg cccccctgct tcggccgccg 240 tggctccggc gtcttgggtg ccggcgcggg ttccgcagcc ttggcctgcg gtgcgggcac 300 atcggcgggc ttggccttga tgtgccgcct ggcgtgcgag cggaacgtct cgtaggagaa 360 cttgaccttc cccgtttccc gcatgtgctc ccaaatggtg acgagcgcat agccggacgc 420 taacgccgcc tcgacatccg ccctcaccgc caggaacgca accgcagcct catcacgccg 480 gcgcttcttg gccgcgcggg attcaaccca ctcggccagc tcgtcggtgt agctctttgg 540 catcgtctct cgcctgtccc ctcagttcag taatttcctg catttgcctg tttccagtcg 600 gtagatattc cacaaaacag cagggaagca gcgcttttcc gctgcataac cctgcttcgg 660 ggtcattata gcgatttttt cggtatatcc atcctttttc gcacgatata caggattttg 720 ccaaagggtt cgtgtagact ttccttggtg tatccaacgg cgtcagccgg gcaggatagg 780 tgaagtaggc ccacccgcga gcgggtgttc cttcttcact gtcccttatt cgcacctggc 840 ggtgctcaac gggaatcctg ctctgcgagg ctggccggct accgccggcg taacagatga 900 gggcaagcgg atggctgatg aaaccaagcc aaccaggaag ggcagcccac ctatcaaggt 960 gtactgcctt ccagacgaac gaagagcgat tgaggaaaag gcggcggcgg ccggcatgag 1020 cctgtcggcc tacctgctgg ccgtcggcca gggctacaaa atcacgggcg tcgtggacta 1080 tgagcacgtc cgcgagctgg cccgcatcaa tggcgacctg ggccgcctgg gcggcctgct 1140 gaaactctgg ctcaccgacg acccgcgcac ggcgcggttc ggtgatgcca cgatccgggc 1200 aacgttgttg ccattgctgc aggcgcagaa ctggtaggta tggaagatcc tctacgccgg 1260 acgcatcgtg gccggcatca ccggcgccac aggtgcggtt gctggcgcct atatcgccga 1320 catcaccgat ggggaagatc gggctcgcca cttcgggctc atgagcgctt gtttcggcgt 1380 gggtatggtg gcaggccccg tggccggggg actgttgggc gccatctcct tgcatgcacc 1440 attccttgcg gcggcggtgc tcaacggcct caacctacta ctgggctgct tcctaatgca 1500 ggagtcgcat aagggagagc gtcgagcggg ggccgatcag atcttgatcc cctgcgccat 1560 cagatccttg gcggcaagaa agccatccag tttactttgc agggcttccc aaccttccca 1620 gagggcgccc cagctggcaa ttccggttcg cttgctgtcc ataaaaccgc ccagtctagc 1680 tatcgccatg taagcccact gcaagctacc tgctttctct ttgcgcttgc gttttccctt 1740 gtccagatag cccagtagct gacattcatc cggggtcagc accgtttctg cggactggct 1800 ttctacgtgt tccgcttcct ttagcagccc ttgcgccctg agtgcttgcg gcagcgtgaa 1860 gctttctctg agctgtaaca gcctgaccgc aacaaacgag aggatcgaga ccatccgctc 1920 cagattatcc ggctcctcca tgcgttgcct ctcggctcct gctccggttt tccatgcctt 1980 atggaactcc tcgatccgcc agcgatgggt ataaatgtcg atgacgcgca aggcttgggc 2040 tagcgactcg accggttcgc tggtcagcaa caaccatttc aacggggtct cacccttggg 2100 cgggttaatc tcctcggcca gcaccgcgtt gagcgtgata ttcccctgtt ttagcgtgat 2160 gcgcccactg cgcaggctca agctcgcctt gcgggctggt cgatttttac gtttaccgcg 2220 tttatccacc acgccctttt gcggaatgct gatctgatag ccacccaact ccggttggtt 2280 cttcagatgg tcgtacagat acaacccaga ctctacgtcc ttgcgtgggt gcttggagcg 2340 caccacgaag cgctcgttat gcgccagttt gtcctgcaga taagcatgaa tatcggcttc 2400 gcggtcacag accgcaatca cgttgctcat catgctgccc atgcgtaacc ggctagttgc 2460 ggcggctgcc agccatttgc cactctcctt ttcatccgca tcggcagggt catccgggcg 2520 catccaccac tcctgatgca gtaatcctac ggtgcggaat gtggtggcct cgagcaagag 2580 aacggagtga acccaccatc cgcgggattt atcctgaata gagcccagct tgccaagctc 2640 ttcggcgacc tggtggcgat aactcaaaga ggtggtgtcc tcaatggcca gcagttcggg 2700 aaactcctga gccaacttga ctgtttgcat ggcgccagcc tttctgatcg cctcggcaga 2760 aacgttggga ttgcggataa atcggtaagc gccttcctgc atggcttcac taccctctga 2820 tgagatggtt attgatttac cagaatattt tgccaattgg gcggcgacgt taaccaagcg 2880 ggcagtacgg cgaggatcac ccagcgccgc cgaagagaac acagatttag cccagtcggc 2940 cgcacgatga agagcagaag ttatcatgaa cgttaccatg ttaggcaggt cacatggaag 3000 atcagatcct ggaaaacggg aaaggttccg ttcaggacgc tacttgtgta cgggatcggt 3060 ctagactgtc tcttgatcag atctggccac ctaggccggc cgcgatcgcc ggcgcgccat 3120 gcatgtcgac ggtaccagat tgcagcatta cacgtcttga gcgattgtgt aggctggagc 3180 tgcttcgaag ttcctatact ttctagagaa taggaacttc ggaataggaa cttcaagatc 3240 cccttattag aagaactcgt caagaaggcg atagaaggcg atgcgctgcg aatcgggagc 3300 ggcgataccg taaagcacga ggaagcggtc agcccattcg ccgccaagct cttcagcaat 3360 atcacgggta gccaacgcta tgtcctgata gcggtccgcc acacccagcc ggccacagtc 3420 gatgaatcca gaaaagcggc cattttccac catgatattc ggcaagcagg catcgccatg 3480 ggtcacgacg agatcctcgc cgtcgggcat gcgcgccttg agcctggcga acagttcggc 3540 tggcgcgagc ccctgatgct cttcgtccag atcatcctga tcgacaagac cggcttccat 3600 ccgagtacgt gctcgctcga tgcgatgttt cgcttggtgg tcgaatgggc aggtagccgg 3660 atcaagcgta tgcagccgcc gcattgcatc agccatgatg gatactttct cggcaggagc 3720 aaggtgagat gacaggagat cctgccccgg cacttcgccc aatagcagcc agtcccttcc 3780 cgcttcagtg acaacgtcga gcacagctgc gcaaggaacg cccgtcgtgg ccagccacga 3840 tagccgcgct gcctcgtcct gcagttcatt cagggcaccg gacaggtcgg tcttgacaaa 3900 aagaaccggg cgcccctgcg ctgacagccg gaacacggcg gcatcagagc agccgattgt 3960 ctgttgtgcc cagtcatagc cgaatagcct ctccacccaa gcggccggag aacctgcgtg 4020 caatccatct tgttcaatca tgcgaaacga tcctcatcct gtctcttgat cagatcttga 4080 tcccctgcgc catcagatcc ttggcggcaa gaaagccatc cagtttactt tgcagggctt 4140 cccaacctta ccagagggcg ccccagctgg caattccggt tcgcttgctg tccataaaac 4200 cgcccagtct agctatcgcc atgtaagccc actgcaagct acctgctttc tctttgcgct 4260 tgcgttttcc cttgtccaga tagcccagta gctgacattc atccggggtc agcaccgttt 4320 ctgcggactg gctttctacg tgttccgctt cctttagcag cccttgcgcc ctgagtgctt 4380 gcggcagcgt gagcttcaaa agcgctctga agttcctata ctttctagag aataggaact 4440 tcgaactgca ggtcgacgga tccccggaat taattctcat gtttgacagc ttatcactga 4500 tcagtgaatt aatggcgatg acgcatcctc acgataatat ccgggtaggc gcaatcactt 4560 tcgtctctac tccgttacaa agcgaggctg ggtatttccc ggcctttctg ttatccgaaa 4620 tccactgaaa gcacagcggc tggctgagga gataaataat aaacgagggg ctgtatgcac 4680 aaagcatctt ctgttgagtt aagaacgagt atcgagatgg cacatagcct tgctcaaatt 4740 ggaatcaggt ttgtgccaat accagtagaa acagacgaag aagctagctt tgcactggat 4800 tgcgaggctt tgccatggct aattcccatg tcagccgtta agtgttcctg tgtcactgaa 4860 aattgctttg agaggctcta agggcttctc agtgcgttac atccctggct tgttgtccac 4920 aaccgttaaa ccttaaaagc tttaaaagcc ttatatattc ttttttttct tataaaactt 4980 aaaaccttag aggctattta agttgctgat ttatattaat tttattgttc aaacatgaga 5040 gcttagtacg tgaaacatga gagcttagta cgttagccat gagagcttag tacgttagcc 5100 atgagggttt agttcgttaa acatgagagc ttagtacgtt aaacatgaga gcttagtacg 5160 tgaaacatga gagcttagta cgtactatca acaggttgaa ctgcggatct tgcggccgca 5220 aaaattaaaa atgaagtttt aaatcaatct aaagtatata tgagtaaact tggtctgaca 5280 gttaccaatg cttaatcagt gaggcaccta tctcaggagc t 5321 <210> 4 <211> 58 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> TesA FP <400> 4 aaagaattca aaagatcttt taagaaggag atatacatat ggcggacacg ttattgat 58 <210> 5 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> TesA RP <400> 5 ttactcgagt tatgagtcat gatttacta 29 <210> 6 <211> 17 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sequence binding to FadR <400> 6 atctggtacg accagat 17 <210> 7 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadR FP <400> 7 aaagatcttt taagaaggag atatacatat ggtcattaag gcgcaaag 48 <210> 8 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadR RP <400> 8 tactcgagtt atcgcccctg aatggcta 28 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ttaattcatt gtgtaggctg 60 gagctgcttc 70 <210> 16 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> EnvR delete RP <400> 16 attttctcac tctgtgtcga atatatttat ttcctgaata attaatcatg attccgggga 60 tccgtcgacc 70 <210> 17 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> EnvR sequencing FP <400> 17 gttaagcgaa gttgaccccg atctc 25 <210> 18 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> EnvR sequencing RP <400> 18 aaagaaaaat acagttcgct atcct 25 <210> 19 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> GusC delete FP <400> 19 ccggagattt ttctctccgg cgttattttt tacttcagca taaagtcata gtgtaggctg 60 gagctgcttc 70 <210> 20 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> GusC delete RP <400> 20 actaattaat attcaataaa aataatcaga acatcaaagg tgcaactatg attccgggga 60 tccgtcgacc 70 <210> 21 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> GusC sequencing FP <400> 21 ggcatgtttg cgatgccagc tctta 25 <210> 22 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> GusC sequencing RP <400> 22 ccggcgtgcg aattgaaggg ctcac 25 <210> 23 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> MdlA delete FP <400> 23 tctttaccca tcgaataaat atccagaatc aggtcaggac acaacgcgtg gtgtaggctg 60 gagctgcttc 70 <210> 24 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> MdlA delete RP <400> 24 gcttgagagt cggccacagt tggctaaaac tacgcatcga cggcctcctc attccgggga 60 tccgtcgacc 70 <210> 25 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> MdlA sequencing FP <400> 25 aacggctgga ggacgacggt atcct 25 <210> 26 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> MdlA sequencing RP <400> 26 acagcagcga ctgcgcgtaa tgtag 25 <210> 27 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadD delete FP <400> 27 catttggggt tgcgatgacg acgaacacgc attttagagg tgaagaattg gtgtaggctg 60 gagctgcttc 70 <210> 28 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadD delete RP <400> 28 taaccggcgt ctgacgactg acttaacgct caggctttat tgtccacttt attccgggga 60 tccgtcgacc 70 <210> 29 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadD sequencing FP <400> 29 gagagtacaa acagttgtaa ctg 23 <210> 30 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadD sequencing RP <400> 30 ccatcgaaaa gttgaatcaa 20 <110> UNIST (ULSAN NATIONAL INSTITUTE OF SCIENCE AND TECHNOLOGY) <120> MUTANT ESCHERICHIA COLI HAVING AN IMPROVED FATTY ACID PRODUCTION          ABILITY AND METHOD FOR PREPARING THE SAME <130> FPD201610-0011 <160> 30 <170> KoPatentin 3.0 <210> 1 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R6K-Kan FP <400> 1 aaggtaccag attgcagcat tacacgtc 28 <210> 2 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R6K-Kan RP <400> 2 cgagctcctg agataggtgc ctcactg 27 <210> 3 <211> 5321 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> pTNMod-R6K-Km <220> <221> misc_feature &Lt; 222 > (35) <223> Outside end Tn5 transposase recognition sequences <220> <221> misc_feature &Lt; 222 > (53) <223> Misc Feature 3 (oriT) <220> <221> misc_feature &Lt; 222 > (1537) .. (2559) <223> transposase <220> <221> misc_feature (3066). (3084) <223> Inside end Tn5 transposase recognition sequences <220> <221> misc_feature &Lt; 222 > (3249). (4041) <223> Tn5 neomycin phosphotransferase <220> <221> misc_feature &Lt; 222 > (4825) .. (5211) <223> R6K origin <400> 3 cttaattaat ttaaatctag actagtgcgg ccgcacttgt gtataagagt cagaattcta 60 ctgtttgggt gtatgagcta tttgcaaagg aaattggtga tgacaaagct cggcgctatt 120 tgaagaaaat cgactatggc aacgccgatc ctttttgtcc ggtgttgggt tgaaggtgaa 180 gccggtcggg gccgcagcgg gggccggctt ttcagccttg cccccctgct tcggccgccg 240 tggctccggc gtcttgggtg ccggcgcggg ttccgcagcc ttggcctgcg gtgcgggcac 300 atcggcgggc ttggccttga tgtgccgcct ggcgtgcgag cggaacgtct cgtaggagaa 360 cttgaccttc cccgtttccc gcatgtgctc ccaaatggtg acgagcgcat agccggacgc 420 taacgccgcc tcgacatccg ccctcaccgc caggaacgca accgcagcct catcacgccg 480 gcgcttcttg gccgcgcggg attcaaccca ctcggccagc tcgtcggtgt agctctttgg 540 catcgtctct cgcctgtccc ctcagttcag taatttcctg catttgcctg tttccagtcg 600 gtagatattc cacaaaacag cagggaagca gcgcttttcc gctgcataac cctgcttcgg 660 ggtcattata gcgatttttt cggtatatcc atcctttttc gcacgatata caggattttg 720 ccaaagggtt cgtgtagact ttccttggtg tatccaacgg cgtcagccgg gcaggatagg 780 tgaagtaggc ccacccgcga gcgggtgttc cttcttcact gtcccttatt cgcacctggc 840 ggtgctcaac gggaatcctg ctctgcgagg ctggccggct accgccggcg taacagatga 900 gggcaagcgg atggctgatg aaaccaagcc aaccaggaag ggcagcccac ctatcaaggt 960 gtactgcctt ccagacgaac gaagagcgat tgaggaaaag gcggcggcgg ccggcatgag 1020 cctgtcggcc tacctgctgg ccgtcggcca gggctacaaa atcacgggcg tcgtggacta 1080 tgagcacgtc cgcgagctgg cccgcatcaa tggcgacctg ggccgcctgg gcggcctgct 1140 gaaactctgg ctcaccgacg acccgcgcac ggcgcggttc ggtgatgcca cgatccgggc 1200 aacgttgttg ccattgctgc aggcgcagaa ctggtaggta tggaagatcc tctacgccgg 1260 acgcatcgtg gccggcatca ccggcgccac aggtgcggtt gctggcgcct atatcgccga 1320 catcaccgat ggggaagatc gggctcgcca cttcgggctc atgagcgctt gtttcggcgt 1380 gggtatggtg gcaggccccg tggccggggg actgttgggc gccatctcct tgcatgcacc 1440 attccttgcg gcggcggtgc tcaacggcct caacctacta ctgggctgct tcctaatgca 1500 ggagtcgcat aagggagagc gtcgagcggg ggccgatcag atcttgatcc cctgcgccat 1560 cagatccttg gcggcaagaa agccatccag tttactttgc agggcttccc aaccttccca 1620 gagggcgccc cagctggcaa ttccggttcg cttgctgtcc ataaaaccgc ccagtctagc 1680 tatcgccatg taagcccact gcaagctacc tgctttctct ttgcgcttgc gttttccctt 1740 gtccagatag cccagtagct gacattcatc cggggtcagc accgtttctg cggactggct 1800 ttctacgtgt tccgcttcct ttagcagccc ttgcgccctg agtgcttgcg gcagcgtgaa 1860 gctttctctg agctgtaaca gcctgaccgc aacaaacgag aggatcgaga ccatccgctc 1920 cagattatcc ggctcctcca tgcgttgcct ctcggctcct gctccggttt tccatgcctt 1980 atggaactcc tcgatccgcc agcgatgggt ataaatgtcg atgacgcgca aggcttgggc 2040 tagcgactcg accggttcgc tggtcagcaa caaccatttc aacggggtct cacccttggg 2100 cgggttaatc tcctcggcca gcaccgcgtt gagcgtgata ttcccctgtt ttagcgtgat 2160 gcgcccactg cgcaggctca agctcgcctt gcgggctggt cgatttttac gtttaccgcg 2220 tttatccacc acgccctttt gcggaatgct gatctgatag ccacccaact ccggttggtt 2280 cttcagatgg tcgtacagat acaacccaga ctctacgtcc ttgcgtgggt gcttggagcg 2340 caccacgaag cgctcgttat gcgccagttt gtcctgcaga taagcatgaa tatcggcttc 2400 gcggtcacag accgcaatca cgttgctcat catgctgccc atgcgtaacc ggctagttgc 2460 ggcggctgcc agccatttgc cactctcctt ttcatccgca tcggcagggt catccgggcg 2520 catccaccac tcctgatgca gtaatcctac ggtgcggaat gtggtggcct cgagcaagag 2580 aacggagtga acccaccatc cgcgggattt atcctgaata gagcccagct tgccaagctc 2640 ttcggcgacc tggtggcgat aactcaaaga ggtggtgtcc tcaatggcca gcagttcggg 2700 aaactcctga gccaacttga ctgtttgcat ggcgccagcc tttctgatcg cctcggcaga 2760 aacgttggga ttgcggataa atcggtaagc gccttcctgc atggcttcac taccctctga 2820 tgagatggtt attgatttac cagaatattt tgccaattgg gcggcgacgt taaccaagcg 2880 ggcagtacgg cgaggatcac ccagcgccgc cgaagagaac acagatttag cccagtcggc 2940 cgcacgatga agagcagaag ttatcatgaa cgttaccatg ttaggcaggt cacatggaag 3000 atcagatcct ggaaaacggg aaaggttccg ttcaggacgc tacttgtgta cgggatcggt 3060 ctagactgtc tcttgatcag atctggccac ctaggccggc cgcgatcgcc ggcgcgccat 3120 gcatgtcgac ggtaccagat tgcagcatta cacgtcttga gcgattgtgt aggctggagc 3180 tgcttcgaag ttcctatact ttctagagaa taggaacttc ggaataggaa cttcaagatc 3240 cccttattag aagaactcgt caagaaggcg atagaaggcg atgcgctgcg aatcgggagc 3300 ggcgataccg taaagcacga ggaagcggtc agcccattcg ccgccaagct cttcagcaat 3360 atcacgggta gccaacgcta tgtcctgata gcggtccgcc acacccagcc ggccacagtc 3420 gatgaatcca gaaaagcggc cattttccac catgatattc ggcaagcagg catcgccatg 3480 ggtcacgacg agatcctcgc cgtcgggcat gcgcgccttg agcctggcga acagttcggc 3540 tggcgcgagc ccctgatgct cttcgtccag atcatcctga tcgacaagac cggcttccat 3600 ccgagtacgt gctcgctcga tgcgatgttt cgcttggtgg tcgaatgggc aggtagccgg 3660 atcaagcgta tgcagccgcc gcattgcatc agccatgatg gatactttct cggcaggagc 3720 aaggtgagat gacaggagat cctgccccgg cacttcgccc aatagcagcc agtcccttcc 3780 cgcttcagtg acaacgtcga gcacagctgc gcaaggaacg cccgtcgtgg ccagccacga 3840 tagccgcgct gcctcgtcct gcagttcatt cagggcaccg gacaggtcgg tcttgacaaa 3900 aagaaccggg cgcccctgcg ctgacagccg gaacacggcg gcatcagagc agccgattgt 3960 ctgttgtgcc cagtcatagc cgaatagcct ctccacccaa gcggccggag aacctgcgtg 4020 caatccatct tgttcaatca tgcgaaacga tcctcatcct gtctcttgat cagatcttga 4080 tcccctgcgc catcagatcc ttggcggcaa gaaagccatc cagtttactt tgcagggctt 4140 cccaacctta ccagagggcg ccccagctgg caattccggt tcgcttgctg tccataaaac 4200 cgcccagtct agctatcgcc atgtaagccc actgcaagct acctgctttc tctttgcgct 4260 tgcgttttcc cttgtccaga tagcccagta gctgacattc atccggggtc agcaccgttt 4320 ctgcggactg gctttctacg tgttccgctt cctttagcag cccttgcgcc ctgagtgctt 4380 gcggcagcgt gagcttcaaa agcgctctga agttcctata ctttctagag aataggaact 4440 tcgaactgca ggtcgacgga tccccggaat taattctcat gtttgacagc ttatcactga 4500 tcagtgaatt aatggcgatg acgcatcctc acgataatat ccgggtaggc gcaatcactt 4560 tcgtctctac tccgttacaa agcgaggctg ggtatttccc ggcctttctg ttatccgaaa 4620 tccactgaaa gcacagcggc tggctgagga gataaataat aaacgagggg ctgtatgcac 4680 aaagcatctt ctgttgagtt aagaacgagt atcgagatgg cacatagcct tgctcaaatt 4740 ggaatcaggt ttgtgccaat accagtagaa acagacgaag aagctagctt tgcactggat 4800 tgcgaggctt tgccatggct aattcccatg tcagccgtta agtgttcctg tgtcactgaa 4860 aattgctttg agaggctcta agggcttctc agtgcgttac atccctggct tgttgtccac 4920 aaccgttaaa ccttaaaagc tttaaaagcc ttatatattc ttttttttct tataaaactt 4980 aaaaccttag aggctattta agttgctgat ttatattaat tttattgttc 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75 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> TetA FP <400> 9 acatcagcag gacgcactga ccgaattcaa tttaagaagg agatatacat atgaaatcta 60 acaatgcgct catcg 75 <210> 10 <211> 73 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> TetA RP <400> 10 agaaccgcct ccagaaccac caccggagcc gccgccgctt ccaccgccgg tcgaggtggc 60 ccggctccat gca 73 <210> 11 <211> 73 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> RFP FP <400> 11 ggcggtggaa gcggcggcgg ctccggtggt ggttctggag gcggttctat ggcgagtagc 60 gaagacgtta tca 73 <210> 12 <211> 41 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> RFP RP <400> 12 gtcaagttgt cataagacgt ctaccgcctt tgagtgagct g 41 <210> 13 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> K2 RP <400> 13 ggactggctg ctattgggcg aagt 24 <210> 14 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Km seq RP <400> 14 gaagaactcg tcaagaaggc gatag 25 <210> 15 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> EnvR delete FP <400> 15 gaactgaatt ttcaggacag aatgtgaatt tacatgacac ttaattcatt gtgtaggctg 60 gagctgcttc 70 <210> 16 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> EnvR delete RP <400> 16 attttctcac tctgtgtcga atatatttat ttcctgaata attaatcatg attccgggga 60 tccgtcgacc 70 <210> 17 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> EnvR sequencing FP <400> 17 gttaagcgaa gttgaccccg atctc 25 <210> 18 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> EnvR sequencing RP <400> 18 aaagaaaaat acagttcgct atcct 25 <210> 19 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> GusC delete FP <400> 19 ccggagattt ttctctccgg cgttattttt tacttcagca taaagtcata gtgtaggctg 60 gagctgcttc 70 <210> 20 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> GusC delete RP <400> 20 actaattaat attcaataaa aataatcaga acatcaaagg tgcaactatg attccgggga 60 tccgtcgacc 70 <210> 21 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> GusC sequencing FP <400> 21 ggcatgtttg cgatgccagc tctta 25 <210> 22 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> GusC sequencing RP <400> 22 ccggcgtgcg aattgaaggg ctcac 25 <210> 23 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> MdlA delete FP <400> 23 tctttaccca tcgaataaat atccagaatc aggtcaggac acaacgcgtg gtgtaggctg 60 gagctgcttc 70 <210> 24 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> MdlA delete RP <400> 24 gcttgagagt cggccacagt tggctaaaac tacgcatcga cggcctcctc attccgggga 60 tccgtcgacc 70 <210> 25 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> MdlA sequencing FP <400> 25 aacggctgga ggacgacggt atcct 25 <210> 26 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> MdlA sequencing RP <400> 26 acagcagcga ctgcgcgtaa tgtag 25 <210> 27 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadD delete FP <400> 27 catttggggt tgcgatgacg acgaacacgc attttagagg tgaagaattg gtgtaggctg 60 gagctgcttc 70 <210> 28 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadD delete RP <400> 28 taaccggcgt ctgacgactg acttaacgct caggctttat tgtccacttt attccgggga 60 tccgtcgacc 70 <210> 29 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadD sequencing FP <400> 29 gagagtacaa acagttgtaa ctg 23 <210> 30 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> FadD sequencing RP <400> 30 ccatcgaaaa gttgaatcaa 20

Claims (9)

envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 불활성화된 변이 대장균.
wherein at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC, and mdlA is inactivated.
제1항에 있어서, 상기 하나 이상의 유전자가 돌연변이된 것을 특징으로 하는 변이 대장균.
The mutant Escherichia coli according to claim 1, wherein said one or more genes are mutated.
제2항에 있어서, 상기 돌연변이가 트랜스포존(transposon) 또는 플라스포존(plasposon)을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발(random insertional mutagenesis)에 의한 것을 특징으로 하는 변이 대장균.
3. The mutant E. coli according to claim 2, wherein said mutation is by random insertional mutagenesis using a transposon or a plasposon.
제1항에 있어서, envR 및 gusC 유전자가 불활성화된 것을 특징으로 하는 변이 대장균.
The mutant Escherichia coli according to claim 1, wherein the envR and gusC genes are inactivated.
제1항에 있어서, 상기 변이 대장균이 개선된 지방산 생성능을 나타내는 것을 특징으로 변이 대장균.
The mutant E. coli according to claim 1, wherein the mutant E. coli exhibits improved fatty acid production ability.
야생형 대장균의 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자를 불활성화시키는 단계를 포함하는, 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법.
Inactivating at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC and mdlA of wild-type E. coli.
(a) 야생형 대장균을 트랜스포존(transposon) 또는 플라스포존(plasposon)을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발(random insertional mutagenesis)에 의해 돌연변이시켜 라이브러리를 제작하는 단계; 및
(b) 상기 라이브러리로부터 envR, gusC 및 mdlA로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자가 불활성화된 변이 균주를 선별하는 단계를 포함하는, 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법.
(a) preparing a library by mutating wild-type E. coli by random insertional mutagenesis using a transposon or a plasposon; And
(b) selecting a mutant strain in which at least one gene selected from the group consisting of envR, gusC, and mdlA is inactivated from the library, to thereby produce a mutant E. coli having improved fatty acid production ability.
(a) 야생형 대장균을 트랜스포존(transposon) 또는 플라스포존(plasposon)을 이용한 무작위적 삽입 돌연변이유발(random insertional mutagenesis)에 의해 돌연변이시켜 라이브러리를 제작하는 단계; 및
(b) 상기 라이브러리로부터 야생형 대장균과 비교하여 지방산 생성능이 개선된 균주를 선별하는 단계를 포함하는, 지방산 생성능이 개선된 변이 대장균을 제조하는 방법.
(a) preparing a library by mutating wild-type E. coli by random insertional mutagenesis using a transposon or a plasposon; And
(b) selecting a strain having improved fatty acid-producing ability from the library in comparison with wild-type E. coli.
제1항 내지 제5항 중 어느 한 항에 따른 변이 대장균을 배양하는 단계를 포함하는, 변이 대장균을 이용하여 지방산을 생산하는 방법. A method for producing a fatty acid using a mutant E. coli, which comprises culturing the mutant E. coli according to any one of claims 1 to 5.
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