KR101948431B1 - 미세조류 세포 용해용 조성물 및 미세조류 검출 방법 - Google Patents

미세조류 세포 용해용 조성물 및 미세조류 검출 방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 미세조류 세포 용해용 조성물 및 미세조류 검출 방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 미세조류를 용해시킴으로써 DNA 및 단백질을 추출할 수 있는 세포 용해용 조성물 및 이를 이용한 미세조류 검출 방법에 관한 것으로, 본 발명의 세포 용해용 조성물을 이용하면 세포의 용해에 의해 단백질 또는 핵산을 추출할 수 있으므로 이를 효과적으로 미세조류의 검출에 이용할 수 있는 효과가 있다.

Description

미세조류 세포 용해용 조성물 및 미세조류 검출 방법{Microalgae cell lysis composition and Method for detecting microalgae}
본 발명은 미세조류 세포 용해용 조성물 및 미세조류 검출 방법에 관한 것으로, 미세조류를 용해시킴으로써 DNA 및 단백질을 추출할 수 있는 세포 용해용 조성물 및 이를 이용한 미세조류 검출 방법에 관한 것이다.
선박평형수(ballast water)는 선박 내에 저장되는 해수를 의미하며, 선박으로부터 화물을 반출할 시 부력에 의해 선박의 무게중심이 높아짐에 따라 선박 안정성이 낮아지는 것을 방지하기 위하여 화물 반출량에 비례하여 저장된다. 선박의 안전하고 효율적인 운항을 위해 저장되는 선박평형수에 의해 매년 약 50억 톤 이상의 해수가 국제적으로 이동되고 있고, 이로 인해 약 7,000 여종의 해양생물이 운반되고 있는 것으로 알려져 있다.
이 중 미세조류는 선박평형수 내의 생물 중 가장 문제시 되고 있는데, 이들은 열악한 생존 조건에서도 휴면포자 상태로 장기간 생존하므로 좋은 환경을 만날 경우 다시 발아해서 문제를 일으킬 가능성이 크기 때문이다.
선박평형수에 의해 이동될 수 있는 미세조류 중 적조를 일으켜 우리나라 연안 생태계를 위협하고 독성을 함유하는 와편모조류를 대표적인 예로 들 수 있으며, 헤테로캅사 트리퀘트라(heterocapsa triquetra), 아카시오 상기니아(Akashiwo sanguinea), 프로로센트럼 미칸스(Prorocentrum micans), 페리디늄 속(Peridinium sp.) 등이 가장 대표적이다. 이들 와편모조류는 담수 및 해수에서 적조를 형성하여 어패류를 폐사시키거나 독소를 생산하며, 급격한 증식으로 인해 다양한 환경, 생태, 경제적 문제를 일으키고 있다.
따라서, 선박평형수를 통한 해양생물 개체의 이동으로 인해 해양 생태계를 교란시키는 원인이 되고 있는 미세조류들의 제거가 필요하며, 이후 처리수 내의 미세조류 생존 여부에 대한 확인이 필요하다. 이를 특이적으로 검출하기 위해서는 일차적으로 이들을 분해할 수 있는 세포 용해용 조성물이 필요한 상황이다.
종래의 세포 용해는 기본적으로 물리적 파쇄(sonication, Tissue Lyzer)와 같은 방법이 활용되었고, 용해 여부를 확인하기 위한 방법으로 열처리 후 샘플의 유무를 확인하는 방법이 사용되었으나, 이러한 방법의 수행을 위해서는 고온처리가 가능한 고가의 장비가 필요하였다.
용해 여부를 현장에서 즉시 확인하기 위해서는 장비 없이도 현장에서 바로 용해가 진행되고 수 분 내지 수 시간 내로 확인이 가능한 시스템이 필요하다. 뿐만 아니라, 시판되고 있는 화학적 방법을 이용하는 세포 용해 버퍼의 거의 대부분은 박테리아, 효모, 식물 또는 동물 세포와 같이 다양한 세포들을 분해하기 위한 라이시스 버퍼로서, 미세조류를 대상으로 하는 버퍼는 찾아보기 어렵다.
본 명세서 전체에 걸쳐 다수의 논문 및 특허문헌이 참조되고 그 인용이 표시되어 있다. 인용된 논문 및 특허문헌의 개시 내용은 그 전체로서 본 명세서에 참조로 삽입되어 본 발명이 속하는 기술 분야의 수준 및 본 발명의 내용이 보다 명확하게 설명된다.
이에 본 발명자들은 미세조류의 검출을 위해, 미세조류를 용해시킬 수 있는 세포 용해용 조성물을 개발하고자 예의 연구 노력하였다. 그 결과, 소듐 도데실 설페이트 기반의 세포 용해용 조성물이 미세조류를 신속하게 용해시킨다는 점을 규명함으로써, 본 발명을 완성하였다.
따라서 본 발명의 목적은, 미세조류에 대한 세포 용해용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은, 상기 세포 용해용 조성물을 이용하여 미세조류를 검출하는 방법을 제공하는 것이다.
본 발명은 미세조류를 신속하게 용해시킴으로써 단백질 및 DNA를 효과적으로 추출할 수 있는, 소듐 도데실 설페이트(sodium dodecyl sulfate; 이하, SDS) 기반의 세포 용해용 조성물 및 이를 이용한 미세조류의 검출 방법을 포함한다.
이하, 본 발명을 더욱 자세히 설명하고자 한다.
본 발명의 일 양태는 Tris-HCl 10 내지 200 mM; 소듐 도데실 설페이트 0.1 내지 5.0(v/v)%; 에틸렌디아민사아세트산(ethylenediaminetetraacetic acid; 이하, EDTA) 0.1 내지 10.0 mM; 염화나트륨(sodium chloride) 100 내지 200 mM; 파이로인산나트륨(sodium pyrophosphate) 1.0 내지 5.0 mM; 베타-글리세로포스페이트(beta-glycerophosphate) 0.1 내지 10.0 mM; 바나듐산나트륨(sodium orthovanadate) 0.1 내지 10.0 mM; 및 류펩틴(leupeptin) 0.1 내지 10.0 ug/ml;을 포함하는 미세조류 세포 용해용 조성물에 관한 것이다.
상기 SDS는 0.1 내지 5.0(v/v)%, 0.2 내지 5.0(v/v)%, 0.5 내지 5.0(v/v)%, 1.0 내지 5.0(v/v)%, 2.0 내지 5.0(v/v)%, 3.0 내지 5.0(v/v)%일 수 있으며, 예를 들어, 3.0 내지 5.0(v/v)%일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 0.1(v/v)% 미만으로 포함하는 경우 세포의 용해가 일어나지 않고, 5.0(v/v)% 초과하여 포함하는 경우 더 이상의 상승 효과가 나타나지 않았다.
상기 미세조류는 와편모조류(dinophyta)일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 와편모조류는 헤테로캅사 트리퀘트라(heterocapsa triquetra), 아카시오 상기니아(Akashiwo sanguinea), 프로로센트럼 미칸스(Prorocentrum micans) 또는 페리디늄 속(Peridinium sp.), 예를 들어, 헤테로캅사 트리퀘트라일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 미세조류 용해용 조성물은, Tris-HCl 100 mM; 소듐 도데실 설페이트 1.0(v/v)%; EDTA 1.0 mM; 염화나트륨 150 mM; 파이로인산나트륨 2.5 mM; 베타-글리세로포스페이트 1.0 mM; 바나듐산나트륨 1.0 mM; 및 류펩틴 1.0 ug/ml을 포함하는 것인, 미세조류 세포 용해용 조성물일 수 있다.
본 발명의 일 양태는 다음의 단계를 포함하는 미세조류 검출 방법에 관한 것이다:
(a) Tris-HCl 10 내지 200 mM, 소듐 도데실 설페이트(sodium dodecyl sulfate, 이하 SDS) 0.1 내지 5.0(v/v)%, EDTA 0.1 내지 10.0 mM, 염화나트륨(sodium chloride) 100 내지 200 mM, 파이로인산나트륨(sodium pyrophosphate) 1.0 내지 5.0 mM, 베타-글리세로포스페이트(beta-glycerophosphate) 0.1 내지 10.0 mM, 바나듐산나트륨(sodium orthovanadate) 0.1 내지 10.0 mM 및 류펩틴(leupeptin) 0.1 내지 10.0 ug/ml을 포함하는 미세조류 세포 용해용 조성물을 대상 시료와 반응시키는 반응 단계; 및
(b) 단백질 또는 핵산을 추출하는 추출 단계.
상기 핵산은 DNA 또는 RNA, 예를 들어, DNA일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 미세조류는 와편모조류(dinophyta)일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 와편모조류는 헤테로캅사 트리퀘트라(heterocapsa triquetra), 아카시오 상기니아(Akashiwo sanguinea), 프로로센트럼 미칸스(Prorocentrum micans) 또는 페리디늄 속(Peridinium sp.), 예를 들어, 헤테로캅사 트리퀘트라일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 SDS는 0.1 내지 5.0(v/v)%, 0.2 내지 5.0(v/v)%, 0.5 내지 5.0(v/v)%, 1.0 내지 5.0(v/v)%, 2.0 내지 5.0(v/v)%, 3.0 내지 5.0(v/v)%일 수 있으며, 예를 들어, 3.0 내지 5.0(v/v)%일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 0.1(v/v)% 미만으로 포함하는 경우 세포의 용해가 일어나지 않고, 5.0(v/v)% 초과하여 포함하는 경우 더 이상의 상승 효과가 나타나지 않았다.
상기 반응 단계는 0 내지 40, 0 내지 35, 0 내지 30, 10 내지 40, 10 내지 35, 10 내지 30, 20 내지 40, 20 내지 35, 20 내지 30, 22 내지 27의 온도 조건 하에서 수행될 수 있고, 예를 들어, 22 내지 27의 온도 조건 하에서 수행될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 저온 환경에서 반응을 수행할 경우 세포 용해용 조성물에서 결정이 발생하여 세포 용해의 진행을 방해할 수 있으며, 40 이상의 온도 조건으로 인한 상승 효과가 나타나지 않았다.
상기 추출 단계는 반응 단계 이후 20분 이내, 18분 이내, 15분 이내, 12분 이내, 예를 들어, 10분 이내에 수행될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 추출 단계는 단백질을 추출하기 위해 단백질-은 염색(Protein-Silver Staining), 쿠마시 블루(Commasie bule) 염색 또는 BCA 단백질 정량을 수행하는 단계를 더 포함할 수 있고, 예를 들어, 단백질-은 염색을 수행하는 단계를 더 포함할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 추출 단계는 핵산을 추출하기 위해 PCI(phenol:chloroform:isoamylalcohol = 25:24:1) 에탄올 침전법을 수행하여 시료로부터 DNA를 분리하는 단계를 더 포함할 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 핵산을 추출하는 추출 단계는 시료로부터 분리한 DNA를 증폭시켜 확인하기 위해 PCR을 수행하는 단계를 포함할 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명은 미세조류를 용해시키는 세포 용해용 조성물 및 이를 이용한 미세조류 검출 방법에 관한 것으로서,
상기 세포 용해용 조성물을 이용함으로써 세포를 용해시켜 단백질 또는 핵산을 추출할 수 있으므로 이를 효과적으로 미세조류의 검출에 이용할 수 있고, 상기 세포 용해용 조성물은 특히 와편모조류에 대하여 효과적으로 사용할 수 있으므로, 담수 및 해수에서 적조를 형성하여 어패류를 폐사시키거나 독소를 생산하며, 증식 속도가 빠른 와편모조류의 검출에 이용할 수 있다.
도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 세포 용해용 조성물의 계면활성제 종류 및 함량 변화에 따른 세포 용해 효과를 단백질 추출 정도로 비교한 단백질-은 염색(silver staining) 결과이다.
도 2는 본 발명의 일 실시예에 따른 세포 용해용 조성물의 화학적 파쇄능을 물리적 파쇄능을 기준으로 하여 상대적으로 비교한 세포 용해 결과 그래프이다.
도 3은 본 발명의 일 실시예에 따른 세포 용해용 조성물을 이용하여 추출한 단백질의 ATPase 활성 분석 결과 그래프이다.
도 4는 헤테로캅사 트리퀘트라(heterocapsa triquetra)의 ITS(Gen Bank No. AB084101.1) 영역 부위를 나타내는 모식도이다.
도 5는 본 발명의 일 실시예에 따른 세포 용해용 조성물의 계면활성제 종류 및 함량 변화에 따른 세포 용해 효과를 DNA 추출 정도로 비교한 아가로즈 겔 전기영동 결과이다(1열: 계면활성제 불포함; 2 내지 6열: CHAPS 각 0.1, 0.5, 1.0, 3.0 및 5.0% 포함; 7 내지 11열: SDS 각 0.1, 0.5, 1.0, 3.0 및 5.0% 포함; 12 내지 16열: Triton X-100 각 0.1, 0.5, 1.0, 3.0 및 5.0% 포함; 17열: CTAB DNA 추출방법; 18열: TE 보일링 방법).
도 6은 본 발명의 일 실시예에 따라 헤테로캅사 트리퀘트라의 세포 용해 이후 ITS 영역 부위의 검출을 확인한 결과이다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.
실시예: 세포 용해용 조성물의 제조 및 이를 이용한 세포 용해
계면활성제의 종류 및 농도를 달리하여 세포 용해용 조성물을 제조한 뒤, 이를 이용하여 헤테로캅사 트리퀘트라와 반응시켰다.
구체적으로, 100 mM 농도의 Tris-HCl(pH 7.5), 계면활성제(detergent)로는 0.0, 0.1, 0.5, 1.0, 3.0 및 5.0(v/v)% 농도의 소듐 도데실 설페이트(sodium dodecyl sulfate; 이하, SDS), 단백질분해효소 억제제(protease inhibitor)는 1.0 mM 농도의 에틸렌디아민사아세트산(ethylenediaminetetraacetic acid; 이하, EDTA), 150 mM 농도의 염화나트륨(sodium chloride, 이하 NaCl), 2.5 mM 농도의 파이로인산나트륨(sodium pyrophosphate), 1.0 mM 농도의 베타-글리세로포스페이트(beta-glycerophosphate), 1.0 mM 농도의 바나듐산나트륨(sodium orthovanadate) 및 1.0 ug/ml 농도의 류펩틴(leupeptin)을 포함하는 세포 용해용 조성물을 제조하였다.
또한, 상기와 동일한 조성에서, SDS 대신 Triton X-100 및 CHAPS를 동일 농도로 포함하는 세포 용해용 조성물을 추가적으로 준비하였다.
상기 세포 용해용 조성물의 효과를 확인하기 위해, 미세조류를 1.0 X 105 cells/ml 기준으로 확보한 후 이와 동일 부피의 세포 용해용 조성물을 넣어 10분 동안 상온(25℃)에서 반응시켰다.
이후 단백질 및 DNA 추출을 통해 결과를 확인하기 위하여, 13,000 rpm, 4 조건에서 5분 동안 원심분리를 진행하였고, 상등액만을 이용하여 세포 용해 효과를 확인하고자 하였다.
시험예 1: 세포 용해를 통한 단백질의 검출능 확인
1-1. 단백질 검출이 가능한 계면활성제의 종류 및 함량의 확인
상기 실시예에서 이용한 세포 용해용 조성물의 세포 용해 효과를 비교하기 위한 대조군으로서 조직파쇄기(Tissue Lyzer, Qiagen)로 5분 동안 30 kHz의 조건으로 파쇄한 시료인 C1, RIPA 버퍼(Thermo Scientific)를 첨가하고 히팅블럭(Heating block)을 이용하여 100에서 5분 동안 가열한 후 5분 동안 아이스 위에서 안정화시킨 시료인 C2를 준비하였다.
세포 용해 결과는 10(v/v)% SDS-PAGE 겔을 이용하여 나타냈으며, 단백질-은 염색 키트(EzWay Protein-Silver Staining Kit, K14040D, gomabiotech)를 사용하여 은 염색(silver staining)으로서 결과를 확인하였다. 염색 과정은 상기 키트의 프로토콜을 기반으로 상온 조건 하에서 수행하였다.
도 1에서 확인할 수 있듯이, Triton X-100을 이용한 세포 용해용 조성물에 의해서는 헤테로캅사 트리퀘트라로부터 단백질이 검출되지 않았으며, 세포 용해용 조성물 중 단백질을 검출할 수 있는 SDS의 최저 함량은 0.1%, CHAPS의 최저 함량은 1.0%인 것으로, 둘 중 SDS가 더 우수한 것으로 확인되었다.
1-2. 물리적 파쇄 방법과의 파쇄능 비교
상기 시험예 1-1의 결과에 근거하여, C1의 물리적 파쇄 방법(Tissue Lyzer)에 의한 물리적 파쇄능을 100%로 설정하였을 때, 본 발명의 세포 용해용 조성물을 이용한 화학적 파쇄능을 1.0(v/v)% 농도의 SDS 또는 CHAPS를 포함하는 기준으로 상대적으로 비교하여 수치화하였다. C2는 "Chemical Boiling"으로 표시하였다. "Non detergent"는 상기 실시예 중 계면활성제를 포함하지 않은 경우에 해당한다.
도 2에서 확인할 수 있듯이, 1.0(v/v)% 농도의 SDS를 포함하는 시료의 경우 92.67%로 물리적 파쇄 방법과 약 7% 정도의 파쇄능 차이를 보여 화학적 파쇄능으로서 가장 높은 값을 기록한 것을 확인할 수 있으며, 같은 농도의 CHAPS의 경우 파쇄능이 63.96%임을 확인할 수 있다. RIPA 버퍼와 같이 시판되는 세포 용해용 버퍼의 경우 파쇄능이 28.60%로 상대적으로 낮은 효율을 보였고, 계면활성제를 포함하지 않은 경우에 있어서는 유의미한 파쇄능 수치가 확인되지 않았다.
1-3. ATPase 활성 분석을 통한 추출 단백질의 검증
상기 실시예에 따른 세포 용해용 조성물을 이용하여 미세조류로부터 추출한 단백질을 검증하기 위한 ATPase 활성(activity)을 분석하였다. 결과를 검증하기 위하여 ATPase 분석 키트(High Throughput Colorimetric ATPase Assays, inc. PiColorLock, innova bioscience)를 사용하였으며, 제품의 설명서를 기준으로 관련 프로토콜에 따라 수행하였다.
도 3에서 확인할 수 있듯이, ATPase 활성 분석 결과, SDS를 1.0(v/v)% 이상으로 포함하는 세포 용해용 조성물을 이용하여 추출한 단백질에서 ATPase 활성이 나타남을 확인할 수 있다.
시험예 2: 세포 용해를 통한 DNA의 검출능 확인
2-1. DNA 검출이 가능한 계면활성제의 종류 및 함량의 확인
상기 실시예에서 이용한 세포 용해용 조성물의 세포 용해 효과를 비교하기 위한 대조군으로서 통상적으로 이용되는 CTAB DNA 추출 방법(도 5의 17열) 및 TE 보일링(Boiling) 방법(도 5의 18열)을 수행하여 시료를 준비하였다.
상기 실시예에서의 원심분리 이후 상등액을 이용하여 PCI 에탄올 침전법을 적용하였다. PCI 에탄올 침전법의 수행을 위해 100 ul의 상등액에 동량의 PCI(Biosesang)를 투입한 후 13,000 rpm, 10분, 4℃ 조건으로 원심분리를 진행하였다. 이 중 상등액만 회수하여 3배 부피에 해당하는 100(v/v)% 에탄올을 첨가한 후, 저온 조건에서의 효과적인 DNA의 농축을 위해 1시간 동안 -20℃ 냉동고에서 반응시켰다. 이후 13,000 rpm, 10분, 4℃ 조건으로 원심분리를 수행하여 DNA 펠릿(pellet)을 확보한 후 이를 완전히 건조시켜 여분의 에탄올을 제거하기 위해서 50℃ 히팅블록에서 15분 동안 건조시켰고, 50 ul 증류수(D.W)로 DNA 펠릿을 녹였다.
증폭된 산물을 확인하기 위하여 PCR을 수행하였으며, 도 4와 같이 헤테로캅사 트리퀘트라의 ITS(Gen Bank No. AB084101.1) 영역 부위를 이용해 프라이머 쌍을 제작한 후 PCR을 수행하였다. 상기 ITS 영역 부위는 짧은 바코딩 영역을 가지고 있고, 진핵생물을 확인할 수 있는 특이적인 서열을 포함하고 있기 때문에, 증폭 및 판독이 용이하다는 점에서 선택되었다.
프라이머 쌍은 F: GCACGCATCCAAACTGC(서열목록 제1서열), R: GAAGTCACAAGTGACTATGGAAG(서열목록 제2서열)에 해당하며, PCR 조건은 변성 전(pre-denaturation): 95℃, 10분; 변성(denaturation): 95℃, 30초; 어닐링(annealing): 55℃, 30초; 신장(extension): 72℃, 2분; 신장 후(post-extension): 72℃, 10분으로 진행하였다. PCR 믹스(mix)는 PCR 프리믹스(premix, solgent)를 이용하여 수행하였다.
DNA 전기영동 결과는 2(w/v)% 아가로즈 겔(agarose gel)을 이용하여 100V 조건에서 25분 동안 전기영동을 수행하여 도출되었다.
도 5에서 확인할 수 있듯이, 1.0(v/v)% 이상의 SDS를 포함하는 세포 용해용 조성물과 반응시킨 시료에서만 DNA가 검출되었고, CHAPS 및 Triton X-100을 포함하는 세포 용해용 조성물과 반응시킨 시료에서는 계면활성제의 농도에 관계없이 DNA가 검출되지 않았다.
2-2. 세포 용해를 통한 타겟 유전자의 검출 확인
헤테로캅사 트리퀘트라의 ITS 영역 내의 염기서열에 EcoRI 제한효소 서열이 있으므로, 본 발명의 세포 용해용 조성물(SDS 1.0(v/v)% 포함)로 추출된 DNA를 PCR하여 얻은 산물을 이용하여 절단(digestion)을 진행하였다. 37℃에서 2시간 동안 반응시킴으로써 절단하였으며, 2(w/v)% 아가로즈 겔을 이용하여 100 V에서 25분 동안 전기영동을 수행하였다.
도 6에서 확인할 수 있듯이, 헤테로캅사 트리퀘트라의 ITS 영역 내의 염기서열이 세포 용해 이후 추출한 DNA로부터 검출되었다.
상기 실시예 및 시험예 1 및 2에서의 세포 용해용 조성물의 조성에 대한 분석 결과, 100 mM Tris-HCl(pH 7.5), 1.0(v/v)% SDS, 1.0 mM EDTA, 150 mM NaCl, 2.5 mM 파이로인산나트륨, 1.0 mM 베타-글리세로포스페이트, 1.0 mM 바나듐산나트륨, 1.0 ug/ml 류펩틴을 포함하는 세포 용해용 조성물이 가장 최적의 조성비를 나타낸다고 볼 수 있다.
이상, 본 발명내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적인 기술은 단지 바람직한 실시양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의해 정의된다고 할 것이다.
<110> Industry-University Cooperation Foundation Chungbuk University <120> Microalgae cell lysis composition and Method for detecting microalgae <130> PN170063 <160> 2 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 17 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Artificial sequence <400> 1 gcacgcatcc aaactgc 17 <210> 2 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Artificial sequence <400> 2 gaagtcacaa gtgactatgg aag 23

Claims (9)

  1. Tris-HCl 10 내지 200 mM;
    소듐 도데실 설페이트(sodium dodecyl sulfate; 이하, SDS) 0.1 내지 5.0 (v/v)%;
    에틸렌디아민사아세트산(ethylenediaminetetraacetic acid; 이하, EDTA) 0.1 내지 10.0 mM;
    염화나트륨(sodium chloride) 100 내지 200 mM;
    파이로인산나트륨(sodium pyrophosphate) 1.0 내지 5.0 mM;
    베타-글리세로포스페이트(beta-glycerophosphate) 0.1 내지 10.0 mM;
    바나듐산나트륨(sodium orthovanadate) 0.1 내지 10.0 mM; 및
    류펩틴(leupeptin) 0.1 내지 10.0 ug/ml;
    을 포함하는 미세조류 세포 용해용 조성물.
  2. 제 1 항에 있어서, 상기 SDS는 1.0 내지 5.0(v/v)% 인 것인, 미세조류 세포 용해용 조성물.
  3. 제 1 항에 있어서, 상기 미세조류는 와편모조류(dinophyta)인 것인, 미세조류 세포 용해용 조성물.
  4. 제 1 항에 있어서, 상기 미세조류 세포 용해용 조성물은,
    Tris-HCl 100 mM;
    소듐 도데실 설페이트 1.0(v/v)%;
    EDTA 1.0 mM;
    염화나트륨 150 mM;
    파이로인산나트륨 2.5 mM;
    베타-글리세로포스페이트 1.0 mM;
    바나듐산나트륨 1.0 mM; 및
    류펩틴 1.0 ug/ml
    을 포함하는 것인, 미세조류 세포 용해용 조성물.
  5. 다음의 단계를 포함하는 미세조류 검출 방법:
    (a) Tris-HCl 10 내지 200 mM, 소듐 도데실 설페이트(sodium dodecyl sulfate, 이하 SDS) 0.1 내지 5.0(v/v)%, EDTA 0.1 내지 10.0 mM, 염화나트륨(sodium chloride) 100 내지 200 mM, 파이로인산나트륨(sodium pyrophosphate) 1.0 내지 5.0 mM, 베타-글리세로포스페이트(beta-glycerophosphate) 0.1 내지 10.0 mM, 바나듐산나트륨(sodium orthovanadate) 0.1 내지 10.0 mM 및 류펩틴(leupeptin) 0.1 내지 10.0 ug/ml을 포함하는 미세조류 세포 용해용 조성물을 대상 시료와 반응시키는 반응 단계; 및
    (b) 단백질 또는 핵산을 추출하는 추출 단계.
  6. 제 5 항에 있어서, 상기 미세조류는 와편모조류(dinophyta)인 것인, 미세조류 검출 방법.
  7. 제 5 항에 있어서, 상기 SDS는 1.0 내지 5.0(v/v)%인 것인, 미세조류 검출 방법.
  8. 제 5 항에 있어서, 상기 반응 단계는 0 내지 40℃의 온도 조건 하에서 수행되는 것인, 미세조류 검출 방법.
  9. 제 5 항에 있어서, 상기 추출 단계는 반응 단계 이후 20분 이내에 수행되는 것인, 미세조류 검출 방법.
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