KR101794298B1 - 폴리뉴클레오타이드의 집합체 조성물 및 이에 대한 방법 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 하나 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 조성물 및 빠른 집합 방법을 제공한다. 본 발명의 방법은 어닐링될 수 있는 링커 서열, 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 LA 및 LB, 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열/프라이머 결합 절편 쌍 LA과 PB 또는 PA과 LB의 측면에 배치된 DNA 절편 D를 포함하는 원형 핵산 벡터를 이용한다. 집합될 DNA 절편(segment)을 포함하는 수많은 벡터의 제한 엔도뉴클레아제 분해는 PA-D-LB, LA-D-LB 및 LA-D-PB 또는 D-LB, LA-D-LB 및 LA-D 성분들을 포함하는 수많은 DNA 절편들을 형성한다. 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 및 LB의 서열은 DNA 절편에 상보적인 말단을 제공하며, 이는 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에서 사용되거나 또는, 다양한 DNA 절편(segment)의 하나 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로의 정렬된 집합체에 대한 폴리머라제 사이클링 집합 반응에서 절편 PA와 PB를 결합시키는 프라이머와 함께 사용된다.
Description
본 발명은 일반적으로 DNA 재조합 기술 분야에 관한 것이며, 더욱 구체적으로, 다수의 DNA 절편(segment)을 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들에 삽입한 정렬된 집합체에 대한 개선된 방법에 관한 것이다.
본 출원은 전체 내용이 본원에 인용되어 있는, 2008년 11월 19일에 출원된, 미국 가출원 제 61/116,109호, 2009년 3월 23일에 출원된 미국 가출원 제 61/162,230호의 우선권의 이익을 주장하고 있다.
폴리뉴클레오타이드의 재조합은 업계에 알려진 수많은 방법을 이용하여 실행될 수 있다. 핵산을 재조합하는 종래의 기술은 새로운 핵산 분자를 만들기 위하여 제한효소와 연결효소(ligating enzyme)를 사용해 왔다. 클로닝 벡터 및 발현 벡터와 같은 재조합 분자는 숙주 세포의 게놈으로 관심있는 핵산 서열을 통합하거나, 및/또는 관심있는 하나 이상의 유전자의 발현을 유도하기 위하여 사용될 수 있다. 세포, 예를 들어, 효모 세포 내의 관심있는 유전자의 발현을 유도하기 위한 벡터의 사용은, 상기 벡터가 관심있는 유전자의 복제 및 발현을 가능하게 하는 필수적 유전적 성분을 포함할 것을 요구한다. 이러한 성분들은, 예를 들어, 관심있는 유전자 또는 유전자들, 프로모터 서열, 종결자(terminator) 서열, 선별표지(selectable marker), 통합 부위(integration loci), 기타 등등을 포함할 수 있다.
종래의 제한효소 및 연결효소에 기반한 방법을 사용하는 단일 벡터로 상기 성분들을 집합시키는 것은 시간을 낭비하고 힘이 들 수 있다. 각각의 서브-클로닝 단계, 예를 들어, 존재하는 폴리뉴클레오타이드로 새로운 핵산 절편의 도입은, 추가적인 절편을 도입하기 전에 결과물 클론이 선별되고 특징지어져야 함을 요구할 수 있다. 평활 말단(blunt end) 연결에 의해 생성된 클론은, 절편이 적절한 방향으로 도입되었다는 확인을 요구한다. 한편, 접착말단(sticky-end) 연결은, 수용체 절편 상의 접착말단(sticky end)을 형성하기 위하여 사용된 제한 부위가 또한 도너(donor) 절편에 존재해야 하며, 도너(donor) 절편 내 관심있는 서열을 단절시키는 부위에 존재해서는 안된다는 것을 요구한다. 따라서, 실행가능한 제한 부위의 선택은 연결될 부분의 조성에 전적으로 의존하므로 각각의 경우에 있어서 조심스럽게 고려되어야 한다. 또한, 이러한 방법은 원하는 유전자 결과물의 구조 및 기능을 방해할 수 있는 결과물 클론에, 관련없는 핵산 서열을 종종 도입한다. 더욱이, 제한효소에 기반한 클로닝 방법의 효율의 제한은 단일한 반응에서 함께 연결될 수 있는 수많은 핵산 분자 상에서의 고유한 제한이다.
중합효소 연쇄 반응 (PCR)은 게놈 DNA, cDNA 및 mRNA을 포함하는, 특정 폴리뉴클레오타이드 서열이 생체 밖에서 증폭되는 강력한 기법이다. PCR은 전형적으로 2개의 가닥 상에서 상보적인 프라이머 신장 생성물의 형성을 허용하는 조건 하에서 2개의 올리고뉴클레오타이드 프라이머를 갖는 타겟 핵산의 분리된 상보적인 가닥들을 접촉시키는 것을 포함한다. 이러한 가닥들은 원하는 핵산 서열의 복제의 합성을 위한 주형으로 작용한다. 자동화 시스템(automated system)에서 분리 과정과 합성 과정을 반복함으로써, 타겟 서열의 기하급수적 복제를 이룰 수 있다.
PCR의 하나의 방법으로서, "겹침 신장에 의한 스플라이싱(splicing by overlap extension : SOE)" (예를 들어, 미국 특허등록 제 5,023,171호를 참조)로 불리는 방법은, 제한효소 또는 연결효소(ligase)를 사용하지 않고 정확한 접합부에서 DNA 분자의 집합체를 촉진한다. 재조합될 절편 성분은 다른 것에 대해 상보적인 말단을 갖는 앰플리콘을 생산하는, 특이하게 고안된 프라이머를 사용하는 별개의 중합효소 연쇄 반응에서 형성된다. 이러한 앰플리콘의 혼합 및 변성에 있어서, 3' 말단에서 상보적인 서열을 갖는 가닥들이 겹쳐서 서로에 대해 프라이머로서 작용한다. DNA 폴리머라제에 의한 이러한 겹침의 신장(extension)은, 원래의 서열들이 서로 "스플라이싱 된(spliced)" 핵산 분자를 생산한다. PCR의 차후의 단계는 결과물인 스플라이싱 된 폴리뉴클레오타이드를 증폭한다.
수많은 핵산 절편들을 결합시키는 종래의 연결 효소에 기반한 방법보다 더욱 효율적인, SOE는, 프라이머 서열을 최적화하는 시간과 원하는 생성물을 생산하기 위한 증폭 조건을 요구한다. 서로 스플라이싱 되어야 하는 절편들 사이의 각각의 접합부는 개별적으로 고려되어야 하며, 한 쌍의 프라이머들은 양립될 수 있는 말단들을 형성하도록 각각의 절편에 대하여 고안되어야 한다. PCR 프라이머의 고안을 위한 종래의 고려 사항, 예를 들어, 융점, G-C 함량, 헤어핀(hairpin) 및 다이머 형성의 회피, 잘못된 프라이밍 부위에 대한 엄격함(stringency)은, SOE 반응의 증가에서 스플라이싱 될 수많은 절편으로서 더욱 조심스럽게 고려되어야 한다.
따라서, DNA 재조합 기술의 진보에도 불구하고, 폴리뉴클레오타이드의 빠르고 정렬된 집합체를 제공하는 개선된 방법에 대한 필요성이 존재한다. 특히, 프라이머 호적화 단계에 대한 필요성 없이, 중간체 생성물의 최소한의 조작과 특성화를 갖는 수많은 폴리뉴클레오타이드의 집합체를 촉진할 수 있는 방법에 대한 필요성이 존재한다. 이러한 필요성들은 본 발명의 조성물 및 이에 대한 방법에 의해 충족될 수 있다.
본 발명의 조성물 및 이에 대한 방법은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들에 삽입된 폴리뉴클레오타이드 성분들의 빠르고 정렬된 집합체 또는 "스티칭(stitching)"을 허용한다. 몇몇 실시예에서, 본 발명의 방법은 원형의 핵산 집합 벡터를 사용한다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는 폴리뉴클레오타이드 성분을 포함하며, 상기 폴리뉴클레오타이드 성분은 (i) 3' 말단의 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker); (ii) 5' 말단의 프라이머 결합 절편과 3' 말단의 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker); (iii) 3' 말단 및 5' 말단의 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker); (vi) 5' 말단의 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 및 3' 말단의 프라이머 결합 절편; 또는 (v) 5' 말단의 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker);의 측면에 위치한 DNA 절편을 포함한다.
몇몇 실시예에서, 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들은 단일 반응 베셀 내 수많은 집합 벡터들을 제공함으로써 서로 스티칭될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 폴리뉴클레오타이드 성분들은 반응 베셀 내 집합 벡터로부터 잘라낼 수 있다. 몇몇 실시예에서, 그 후, 폴리뉴클레오타이드 성분은 변성될 수 있고, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 인접한 폴리뉴클레오타이드 성분 상의 상보적인 가닥들에 어닐링될 수 있으며, 폴리뉴클레오타이드 성분은 겹침 신장에 의한 스플라이싱(SOE) 이후에 PCR을 함으로써 집합된 폴리뉴클레오타이드 내로 함께 스티칭될 수 있다. 다른 실시예에서, 집합 벡터들로부터 잘라진 폴리뉴클레오타이드 성분들은 폴리뉴클레오타이드 성분들로 형질 변환된 숙주 세포 내 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 생체 내 집합된 폴리뉴클레오타이드로 집합될 수 있다. 집합된 폴리뉴클레오타이드들은 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 생체 내에서 더 결합될 수 있다.
폴리뉴클레오타이드 집합체의 효율성은 집합 벡터 내에 사용된 어닐링될 수 있는 링커 서열의 표준 세트의 제공에 의해 증진될 수 있으며, 예를 들어, 본원에 제시된 상기 서열로서 서열번호 1 내지 23을 들 수 있다. 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 집합 반응(assembly reaction)에서 인접한 폴리뉴클레오타이드 성분들 간에 서열 겹침을 제공한다. 이상적으로, 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 RNA 수준 및 DNA 수준에서 감지할 수 있을 정도의 2차 구조가 부족하며, 원하지 않는 방식으로 서로 교차 반응하지 않으며, 상대적으로 높은 융점(Tm)을 갖는다. 따라서, 많은 폴리뉴클레오타이드 성분들은 각각의 폴리뉴클레오타이드 성분에 대한 특이 프라이머의 고안에 대한 필요성 없이 서로 스티칭할 수 있으며, 이를 통해 시간과 노력을 절감할 수 있다. 본 발명의 조성물 및 이에 대한 방법은, 합성 유전자, 구성, 클로닝 벡터, 발현 벡터, 염색체, 게놈, 펩타이드 라이브러리, 기타 등등을 포함하는, 다양한 타입의 폴리뉴클레오타이드들을 결합하는데 사용될 수 있다.
일 측면에서, 본 발명은 벡터, 예를 들어, 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 집합된 하나 이상의 폴리뉴클레오타이드들의 집합체에 사용될 수 있는, 집합 벡터를 제공한다.
몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-D-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-D-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-D-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-PA-D-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'- RA-LA-D-PB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-D-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 예시적인 집합 벡터들은 도 1b 및 도 2에서 제시되었다.
몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 (예를 들어, PA 또는 PB)은 집합된 폴리뉴클레오타이드를 제조하는데 사용된 어닐링될 수 있는 링커 서열들 중 어느 것과도 상보적이지 않은 뉴클레오타이드 서열일 수 있다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편은 제한 엔도뉴클레아제 인식 부위 및/또는 절단 부위를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편은, 특정한 집합 반응(assembly reaction)에 사용되지 않는, 이용가능한 링커 서열들 (예를 들어, 서열번호 1 내지 23 중 하나) 중 어느 하나의 핵산 서열, 또는 이의 상보적 서열(complement)을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA의 핵산 서열은 서열번호 24, 25 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 서열번호 24, 25 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된다. 바람직한 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA 및 프라이머 결합 절편 PB는 서열에서 동일하지 않다.
몇몇 실시예에서, 2개 이상의 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 적어도 24개의 뉴클레오타이드 길이이며 적어도 60℃의 Tm을 갖는다.
몇몇 실시예에서, 2개 이상의 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 적어도 70%의 G-C 함량 및 적어도 70℃의 Tm을 가지며, 인지가능한 2차 DNA 구조를 형성하지 않는다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 8 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 8 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 8 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된다.
몇몇 실시예에서, 2개 이상의 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 적어도 30%의 A-T 함량 및 적어도 65℃의 Tm을 가지며, 인지가능한 2차 DNA 또는 RNA 구조를 형성하지 않는다. 몇몇 실시예에서, 2개 이상의 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 낮은 G-C 함량 및 적어도 65℃의 Tm을 가지며, 서열 모티프 5'-ANNNNNNNNANNNAANTANNTTNANA-3'를 포함하며, 상기 A는 아데닌을 나타내며, N은 임의의 뉴클레오타이드를 나타내며, T는 티민을 나타낸다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA의 핵산 서열은 서열번호 9 내지 23 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 9 내지 23 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 9 내지 23 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된다.
수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들의 정렬된 집합체는 집합 벡터 내에 DNA 절편을 측면에 배치한 어닐링될 수 있는 링커 서열들의 선택에 의해 조절될 수 있다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 폴리뉴클레오타이드 성분들이 정렬된 방식으로 집합될 수 있는지 확인하기 위하여, 특정한 집합 벡터 내의 어닐링될 수 있는 링커 서열/어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍의 서열은 상보적이지 않다. 유사하게, 몇몇 실시예에서, 특정한 집합 벡터 내의 프라이머 결합 절편/어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍의 서열들은 상보적이지 않다.
특정 실시예에서, 집합 벡터로부터 폴리뉴클레오타이드 성분이 잘려지는 것을 촉진시킬 수 있도록, 제한 부위 RA 및 RB는 동일한 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위 RA 또는 RB는 5' 또는 3' 오버행(overhang)을 남기는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 다른 실시예에서, 제한 부위 RA 또는 RB는 평활 말단(blunt end)을 남기는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위 RA 및 RB는 동일한 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 또다른 실시예에서, 제한 부위 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위 RA 및 RB는 동일한 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 특정 실시예에서, 제한 부위 RA 및 RB는 SapI 또는 LguI 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단되 수 있다.
다른 측면에서, 본 발명은 DNA 절편을 포함하는 집합 벡터의 제조에 유용한 엔트리 벡터(entry vector)를 제공한다.
몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-RY-D-RZ-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-RY-D-RZ-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-RY-D-RZ-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-PA-RY-D-RZ-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 프라이머 결합 절편 PB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-RY-D-RZ-PB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 예시적인 엔트리 벡터(entry vector)는 도 1a에 제시하였다.
RY 및 RZ를 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제를 갖는 엔트리 벡터(entry vector)의 분해(digestion)는 DNA 절편을 수용할 수 있는 선형(linearized) 벡터를 형성할 수 있다. DNA 절편은 본 발명의 집합 벡터를 형성하는 표준 클로닝 기술을 사용하여 RY 및 RZ 부위에 연결될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위 RY 및 RZ는 동일한 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위 RY 및 RZ는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위 RY 및 RZ는 동일한 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 특정한 실시예에서, IIS형 제한 엔도뉴클레아제는 SchI 또는 MlyI이다.
몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위 RA 및 RB는 동일한 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위 RA 및 RB는 동일한 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 특정한 실시예에서, IIS형 제한 엔도뉴클레아제는 SapI 또는 LguI이다.
다른 측면에서, 본 발명은 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 하나 이상의 집합된 폴리뉴클레오타이드들의 집합체에 사용되는 수많은 집합 벡터를 포함하는 집합체 조성물을 제공한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은, 하기의 것들을 포함한다:
(a) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 그룹 D0로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBo 및 두번째 제한 부위 RBo를 포함하는, 하나 이상의 첫번째 핵산 분자;
(b) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn을 포함하는, 하나 이상의 중간 핵산 분자(상기 n은 1 내지 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(c) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, 그룹 Dm으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 제한 부위 RBm를 포함하는, 하나 이상의 마지막 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타냄);
여기에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단 및 결과물 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며, 상기 n은 1부터 (m-1)까지 변하는 정수이며, 상기 p는 1 내지 m의 정수를 나타내며, 및 상기 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm은 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성된다.
몇몇 실시예에서, 하나 이상의 첫번째 핵산 분자는 그룹 D0로부터 선택된 DNA 절편에 대하여 5'에 위치한 프라이머 결합 절편 PA를 더 포함한다. 몇몇 실시예에서, 하나 이상의 마지막 핵산 분자는 그룹 Dm으로부터 선택된 DNA 절편에 대하여 3'에 위치한 프라이머 결합 절편 PB를 더 포함한다.
몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 2개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 3개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 4개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 5개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 특정 실시예에서, 조성물은 6개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 7개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 8개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 9개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 10개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 15개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 20개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다.
몇몇 실시예에서, m은 1이다. 몇몇 실시예에서, m은 2이다. 몇몇 실시예에서, m은 3이다. 몇몇 실시예에서, m은 4이다. 몇몇 실시예에서, m은 5이다. 몇몇 실시예에서, m은 6이다. 몇몇 실시예에서, m은 7이다. 몇몇 실시예에서, m은 8이다. 몇몇 실시예에서, m은 9이다. 몇몇 실시예에서, m은 10이다. 몇몇 실시예에서, m은 10 이상이다.
몇몇 실시예에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단 및 결과물 선형 핵산 분자의 변성에서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은, 집합체 조성물에서, 다른 어닐링할 수 있는 링커 서열, 또는 이의 상보적 서열(complement)에 비해, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 선택적으로 하이브리드할 수 있다. 몇몇 실시예에서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 L(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp과 서열에 있어서 동일하다.
특정 실시예에서, 집합 벡터들로부터 폴리뉴클레오타이드 성분들의 잘려짐을 촉진할 수 있도록, 제한 부위들 RA0부터 RBm까지는 동일한 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA0부터 RBm까지는 SapI 및/또는 LguI 제한 엔도뉴클레아제들에 의해 절단될 수 있다.
다른 측면에서, 본 발명은 수많은 선형 핵산 분자를 포함하는 성분 조성물(component composition)을 제공하며, 상기 선형 핵산 분자는 제한 부위 RA0부터 RBm까지 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제로 집합체 조성물을 분해함으로써 형성될 수 있으며, 상기 집합체 조성물은 하기의 것들을 포함한다:
(a) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 그룹 D0로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함하는, 하나 이상의 첫번째 핵산 분자;
(b) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn를 포함하는, 하나 이상의 중간 핵산 분자(상기 n은 1부터 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(c) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, 그룹 Dm으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 제한 부위 RBm을 포함하는, 하나 이상의 마지막 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수임);
여기에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단 및 결과물 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며, 상기 n은 1부터 (m-1)까지 변하는 정수이며, 상기 p는 1부터 m까지의 정수를 나타내며, 상기 각각의 그룹 Do,... Dn,...및 Dm은 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성된다.
몇몇 실시예에서, 하나 이상의 첫번째 핵산 분자는 그룹 D0로부터 선택된 DNA 절편에 대해 5'에 위치한 프라이머 결합 절편 PA를 더 포함한다. 몇몇 실시예에서, 하나 이상의 마지막 핵산 분자는 그룹 Dm으로부터 선택된 DNA 절편에 대해 3'에 위치한 프라이머 결합 절편 PB를 더 포함한다.
몇몇 실시예에서, 성분들의 조성물은 2개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 성분들의 조성물은 3개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 성분들의 조성물은 4개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 성분들의 조성물은 5개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 성분들의 조성물은 6개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 성분들의 조성물은 7개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 8개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 9개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 10개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 15개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 20개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다.
몇몇 실시예에서, m은 1이다. 몇몇 실시예에서, m은 2이다. 몇몇 실시예에서, m은 3이다. 몇몇 실시예에서, m은 4이다. 몇몇 실시예에서, m은 5이다. 몇몇 실시예에서, m은 6이다. 몇몇 실시예에서, m은 7이다. 몇몇 실시예에서, m은 8이다. 몇몇 실시예에서, m은 9이다. 몇몇 실시예에서, m은 10이다. 몇몇 실시예에서, m은 10 이상이다.
다른 측면에서, 본 발명의 방법에 따른 수많은 폴리뉴클레오타이드들을 집합하는데 유용한 키트를 제공한다. 몇몇 실시예에서, 상기 키트는: (a) 본원에 제시된 하나 이상의 엔트리 벡터(entry vector)들; (b) 엔트리 벡터(entry vector)들의 제한 부위들 RA 및 RB를 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제들; 및 (c) 엔트리 벡터(entry vector)들의 제한 부위들 RY 및 RZ을 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제들을 포함한다.
다른 측면에서, 본 발명은 핵산 분자의 라이브러리를 제공한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리의 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 두번째 제한 부위 RB를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리의 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 두번째 제한 부위 RB를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리의 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 두번째 제한 부위 RB를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리의 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D 및 두번째 제한 부위 RB를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리의 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB 및 두번째 제한 부위 RB를 포함한다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 하기의 각각의 벡터들 중 적어도 하나를 포함한다:
(a) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(b) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터; 및
(c) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D 및 제한 부위 RB0를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 하기의 각각의 벡터들 중 적어도 하나를 포함한다:
(a) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(b) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터; 및
(c) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB 및 제한 부위 RB0를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터.
몇몇 실시예에서, DNA 절편 D는 선별표지(selectable marker), 프로모터, 게놈 타겟팅(targeting) 서열, 에피토프 태그(epitope tag)를 코딩하는 핵산 서열 및 관심 있는 유전자를 코딩하는 핵산 서열, 종결 코돈 및 lacZ를 코딩하는 핵산 서열로 구성된 군으로부터 선택된 핵산 서열을 포함한다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 하기의 각각의 핵산 분자 중 적어도 하나를 포함한다:
(a) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, DNA 절편 D0, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함하ㄴ는 첫번째 핵산 분자;
(b) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, DNA 절편 Dn, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn를 포함하는 중간 핵산 분자(상기 n은 1부터 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄);
(c) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, DNA 절편 Dm, 두번째 제한 부위 RBm를 포함하는 마지막 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수를 초과하는 정수임);
여기에서, 제한 부위 RA0부터 RBn까지의 절단 및 결과물 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며, 상기 p는 1부터 m까지의 정수이다. 몇몇 실시예에서, 첫번째 핵산 분자는 그룹 D0으로부터 선택된 DNA 절편에 대해 5'에 위치한 프라이머 결합 절편 PA를 더 포함한다. 몇몇 실시예에서, 마지막 핵산 분자는 그룹 Dm으로부터 선택된 DNA 절편에 대해 3'에 위치한 프라이머 결합 절편 PB를 더 포함한다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 2개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리는 3개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리는 4개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리는 5개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리는 6개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리는 7개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 8개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 9개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 10개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 15개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 20개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다.
몇몇 실시예에서, m은 1이다. 몇몇 실시예에서, m은 2이다. 몇몇 실시예에서, m은 3이다. 몇몇 실시예에서, m은 4이다. 몇몇 실시예에서, m은 5이다. 몇몇 실시예에서, m은 6이다. 몇몇 실시예에서, m은 7이다. 몇몇 실시예에서, m은 8이다. 몇몇 실시예에서, m은 9이다. 몇몇 실시예에서, m은 10이다. 몇몇 실시예에서, m은 10 이상이다.
다른 측면에서, 본 발명은 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 하나 이상의 집합된 폴리뉴클레오타이드들을 결합하는 방법을 제공하며, 하기의 단계를 포함한다:
(a) 성분들 조성물을 형성하기 위하여, 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제들을 사용하여 집합체 조성물을 분해하는 단계로서, 상기 집합체 조성물은 하기의 것들을 포함하며:
(i) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 그룹 PA로부터 선택된 임의의 프라이머 결합 절편, 그룹 D0로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함하는, 하나 이상의 첫번째 핵산 분자;
(ii) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn를 포함하는, 하나 이상의 중간 핵산 분자(상기 n은 1부터 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(iii) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, 그룹 Dm으로부터 선택된 DNA 절편, 그룹 PB로부터 선택된 임의의 프라이머 결합 절편 및 두번째 제한 부위 RBm를 포함하는, 하나 이상의 마지막 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타냄); 여기에서, 제한 부위 RA0에서 RBm까지의 절단 및 결과물 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며, 상기 n은 1부터 (m-1)까지 변하는 정수이며, 상기 P는 1부터 m까지의 정수를 나타내며 및 상기 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm은 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성되며;
상기 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제들은 제한 부위 RA0부터 RBm까지를 절단할 수 있으며; 및
(b) 핵산 분자의 변성, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp에 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)의 어닐링 및 이들로부터의 신장에 적절한 조건 하에서, 성분 조성물(component composition)을 DNA 폴리머라제, 데옥시리보뉴클레오사이드 트리포스페이트, 하나 이상의 제 1 프라이머들 및 하나 이상의 제 2 프라이머들과 접촉시키는 단계로서; 상기 각각의 제 1 프라이머는 그룹 PA로부터 선택된 상기 프라이머 결합 절편(segment) 중 하나에 하이브리드할 수 있으며, 상기 각각의 제 2 프라이머는 그룹 PB로부터 선택된 상기 프라이머 결합 절편(segment) 중 하나에 하이브리드할 수 있으며; 및 성분 조성물(component composition)을 중합효소 연쇄 반응시키는 단계,
여기에서, 5'에서 3'의 방향으로, 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm으로부터 선택된 하나의 DNA 절편을 포함하는 상기 폴리뉴클레오타이드는 집합된다. 상기 방법에서, p는 1부터 m까지의 정수를 나타낸다.
몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 2개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 3개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 4개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 5개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 6개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 7개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 8개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 9개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 10개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 15개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 20개 이상의 중간 핵산 분자를 포함한다.
몇몇 실시예에서, m은 1이다. 몇몇 실시예에서, m은 2이다. 몇몇 실시예에서, m은 3이다. 몇몇 실시예에서, m은 4이다. 몇몇 실시예에서, m은 5이다. 몇몇 실시예에서, m은 6이다. 몇몇 실시예에서, m은 7이다. 몇몇 실시예에서, m은 8이다. 몇몇 실시예에서, m은 9이다. 몇몇 실시예에서, m은 10이다. 몇몇 실시예에서, m은 10 이상이다.
몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은 하나의 첫번째 핵산 분자 및 하나의 마지막 핵산 분자를 포함한다. 다른 실시예에서, 집합체 조성물은 하나를 초과하는 첫번째 핵산 분자 및 하나를 초과하는 마지막 핵산 분자를 포함하며, 집합 방법은 조합하는 방식으로 여러 개의 폴리뉴클레오타이드 성분들을 수많은 집합된 폴리뉴클레오타이드들에 제공한다. 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은, 동일한 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 또는 LB, 또는 동일한 프라이머 결합 절편 PA 또는 PB, 또는 동일한 쌍의 어닐링될 수 있는 링커 서열들 LA 및 LB, 또는 동일한 쌍의 어닐링될 수 있는 링커 서열/프라이머 결합 절편들 LA 및 PB, 또는 LB 및 PA를 포함하는 적어도 2개의 핵산 분자들을 포함한다.
다른 측면에서, 본 발명은 집합된 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 숙주 세포를 형성하는 방법을 제공한다. 몇몇 실시예에서, 상기 방법은 본원에 제시된 폴리뉴클레오타이드 집합 방법에 의해 형성된 집합된 폴리뉴클레오타이드로 숙주 세포를 형질 변환하는 것을 포함한다. 다른 실시예에서, 상기 방법은 본원에 제시된 폴리뉴클레오타이드 집합 방법에 의해 형성된, 수많은 집합된 폴리뉴클레오타이드로 숙주 세포를 형질 변환하는 것을 포함한다. 특정 실시예에서, 숙주 세포는 2개 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 결합된(combined) 하나 이상의 폴리뉴클레오타이드에 결합시킨다. 또다른 실시예에서, 상기 방법은 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들로 숙주 세포를 형질변환시키고 상기 숙주 세포로 하여금 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 집합되거나(assembled) 결합된(combined) 하나 이상의 폴리뉴클레오타이드들을 형성하게 하는 것을 포함한다.
다른 측면에서, 본 발명은 수많은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 수많은 숙주 세포들을 형성하는 방법을 제공한다. 몇몇 실시예에서, 수많은 숙주 세포들은, 폴리뉴클레오타이드 성분들의 조합된 집합체에 의해 형성된 수많은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 조성물로 숙주세포들을 형질 변환함으로써 형성된다. 다른 실시예에서, 수많은 숙주 세포들은, 수많은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 조성물로 숙주 세포들을 형질 변환하고 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포들을 선택함으로써 형성되며, 상기 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 중 적어도 2개의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은 선별표지(selectable marker)의 비-기능적 절편(segment)을 포함하며, 상기 표지(marker)에서 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)은 기능적인 선별표지(selectable marker)를 형성한다. 또다른 실시예에서, 수많은 숙주 세포들은 다수의 폴리뉴클레오타이드 성분들을 포함하는 성분 조성물(component composition)로 숙주 세포들을 형질 변환하고, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포들을 선택하는 조합 방법에 의해 형성되며, 상기 다수의 폴리뉴클레오타이드 중 적어도 2개의 폴리뉴클레오타이드 성분들은 동일한 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 또는 LB, 또는 동일한 쌍의 어닐링될 수 있는 링커 서열들 LA 및 LB를 포함한다.
다른 측면에서, 본 발명은 서열번호 1 내지 25를 구성하는 군으로부터 선택된 서열을 갖는 폴리뉴클레오타이드를 제공한다.
다른 측면에서, 본 발명은 서열번호 1 내지 25를 구성하는 군으로부터 선택된 하나 이상의 서열들을 포함하는 폴리뉴클레오타이드를 제공한다.
실시예의
상세한 설명
1. 정의
본원에서 사용된, 용어 "폴리뉴클레오타이드"는 당업자에 의해 이해되는 뉴클레오타이드 단위들로 구성된 폴리머를 말한다. 바람직한 뉴클레오타이드 단위들은, 그러나 이에 제한되지 않는, 아데닌 (A), 구아닌 (G), 시토신 (C), 티민 (T) 및 우라실 (U)을 포함하는 뉴클레오타이드 단위들을 포함한다. 유용한 변형된 뉴클레오타이드 단위들은, 그러나 이에 제한되지 않는, 4-아세틸시티딘, 5-(카르복시히드록실메틸)우리딘, 2-O-메틸시티딘, 5-카르복시메틸아미노메틸-2-티오우리딘, 5-카르복시메틸아미노-메틸우리딘, 디히드로우리딘, 2-O-메틸슈도우리딘, 2-O-메틸구아노신, 이노신, N6-이소펜틸아데노신, 1-메틸아데노신, 1-메틸슈도우리딘, 1-메틸구아노신, 1-메틸이노신, 2,2-디메틸구아노신, 2-메틸아데노신, 2-메틸구아노신, 3-메틸시티딘, 5-메틸시티딘, N6-메틸아데노신, 7-메틸구아노신, 5-메틸아미노메틸우리딘, 5-메톡시아미노메틸-2-티오우리딘, 5-메톡시우리딘, 5-메톡시카르보닐메틸-2-티오우리딘, 5-메톡시카르보닐메틸우리딘, 2-메틸티오-N6-이소펜틸아데노신, 우리딘-5-옥시아세트산-메틸에스테르, 우리딘-5-옥시아세트산, 와이부톡소신(wybutoxosine), 와이부토신(wybutosine), 슈도우리딘, 퀘우오신(queuosine), 2-티오시티딘, 5-메틸-2-티오우리딘, 2-티오우리딘, 4-티오우리딘, 5-메틸우리딘, 2-O-메틸-5-메틸우리딘, 2-0-메틸우리딘, 기타 등등을 포함한다. 폴리뉴클레오타이드들은 자연적으로 발생하는 핵산, 예를 들어, 데옥시리보핵산 ("DNA") 및 리보핵산 ("RNA"), 뿐만 아니라 핵산 유사체를 포함한다. 핵산 유사체들은 비-자연적으로 발생하는 염기, 자연적으로 발생하는 포스포디에스테르 결합이 아닌 다른 뉴클레오타이드와의 연결(linkage)에 관여하는 뉴클레오타이드, 또는 포스포디에스테르 결합이 아닌 연결(linkage)을 통하여 부착된 염기들을 포함하는 뉴클레오타이드를 포함하는 핵산 유사체들을 포함한다. 따라서, 뉴클레오타이드 유사체는, 예를 들어, 이에 제한되지 않는, 포스포로티오에이트, 포스포로디티오에이트, 포스포로트리에스테르(phosphorotriester), 포스포라미데이트(phosphoramidate), 보라노포스페이트(boranophosphate), 메틸포스포네이트, 카이랄-메틸 포스포네이트, 2-O-메틸 리보뉴클레오타이드, 펩타이드-핵산 (PNA), 기타 등등을 포함한다.
본원에서 사용된, "폴리뉴클레오타이드 성분(component)"은 본원에 제시된 폴리뉴클레오타이드 집합 방법을 사용하여 "집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드"를 형성하기 위하여 서로 집합될 수 있는 폴리뉴클레오타이드 서열을 말한다. 수많은 집합 벡터들이 집합 벡터들로부터 폴리뉴클레오타이드 성분들을 잘라낼 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제로 분해될 때, 폴리뉴클레오타이드 성분들의 결과물 집단은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 내로 집합되는 DNA 절편(segment)의 전체를 포함할 수 있다.
본원에서 사용된, "집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드"는 본원에 제시된 폴리뉴클레오타이드 집합 방법에 의해 생산된 폴리뉴클레오타이드를 말한다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 2개 이상의 폴리뉴클레오타이드 성분들로 구성될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 2개, 3개, 4개, 5개, 6개, 7개, 8개, 9개, 10개, 11개, 12개, 13개, 14개, 15개 또는 그 이상의 폴리뉴클레오타이드 성분들을 포함한다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 길이는 약 100개 내지 약 20,000개의 뉴클레오타이드, 또는 그 이상의 개수의 뉴클레오타이드 길이(length) 일 수 있다. 몇몇 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 길이는 약 200개 내지 약 10,000개, 약 200개 내지 약 8000개, 약 200개 내지 약 5000개, 약 200개 내지 약 3000개, 또는 약 200개 내지 약 1000개 뉴클레오타이드 길이(length) 일 수 있다. 다른 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 길이는 약 200개 내지 약 2000개, 약 2000개 내지 약 5000개, 약 5000개 내지 약 10,000개, 약 10,000개 내지 약 20,000개, 또는 20,000개를 초과하는 뉴클레오타이드 길이(length)일 수 있다.
폴리뉴클레오타이드 서열들을 설명하기 위하여 종래의 표기법이 본원에 사용되었다: 단일-가닥 폴리뉴클레오타이드 서열의 왼쪽 말단은 5'-말단이며; 이중-가닥 폴리뉴클레오타이드 서열의 왼쪽 방향은 5'-방향을 말한다.
본원에서 사용된, 하기의 실시예에서 "비트(Bit)"로 호환하여 칭하는, 용어 "DNA 절편"은, 분리되거나 분리될 수 있는 DNA 분자를 말한다. 유용한 실시예는, 그러나 이에 제한되지 않는, 단백질-코딩 서열, 리포터 유전자(reporter gene), 형광 표지(marker) 코딩 서열, 프로모터, 증폭자(enhancer), 종결자(terminator), 인트론, 엑손, 폴리-A 꼬리, 다수의 클로닝 부위, 핵 위치 신호(nuclear localization signal), mRNA 안정 신호(mRNA stabilization signal), 선별표지(selectable marker), 통합 부위(integration loci), 에피토프 태그(epitope tag) 코딩 서열, 분해 신호(degradation signal), 기타 자연적으로 발생한 DNA 분자 또는 합성 DNA 분자를 포함한다. 몇몇 실시예에서, DNA 절편은 천연 유래(natural origin)된 것일 수 있다. 선택적으로, DNA 절편은 생체 밖에서 생산된, 완전히 합성 유래(origin)된 것일 수 있다. 더욱이, DNA 절편은 분리되고 자연적으로 발생하는 DNA 분자의 임의의 조합, 또는 분리되고 자연적으로 발생하는 DNA 분자 및 합성 DNA 분자의 임의의 조합을 포함할 수 있다. 예를 들어, DNA 절편은 단백질 코딩서열에 사용할 수 있게 연결된 이형(heterologous) 프로모터, 폴리-A 꼬리에 연결된 단백질 코딩서열, 에피토프 태그(epitope tag) 코딩 서열로 뼈대가 완성되어 연결된 단백질 코딩서열, 기타 등등을 포함할 수 있다.
용어 "상보적인(complementary)"은 위상적인(topological) 상보성을 말하거나, 당업자에 의해 이해되는 바와 같이 2개의 폴리뉴클레오타이드들의 상호작용하는 표면을 서로 짝짓는 것을 말한다. 따라서, 안정한 비-평행의, 이중-가닥 핵산 구조를 형성하기 위하여 서로에게 하이브리드할 수 있다면, 2개의 서열들은 서로에 대해 "상보적"이다. 제 1 폴리뉴클레오타이드의 뉴클레오타이드 서열이 실질적으로 제 2 폴리뉴클레오타이드의 폴리뉴클레오타이드 결합 파트너의 뉴클레오타이드 서열과 동일하다면, 또는 제 1 폴리뉴클레오타이드가 엄격한 하이브리드 조건에서 제 2 폴리뉴클레오타이드와 하이브리드할 수 있다면, 제 1 폴리뉴클레오타이드는 제 2 폴리뉴클레오타이드에 대해 상보적이다. 따라서, 서열이 5'-TATAC-3'의 폴리뉴클레오타이드는, 서열이 5'-GTATA-3'인 폴리뉴클레오타이드에 대해 상보적이다.
"프라이머"는, 합성에 적절한 조건 하에서, 예를 들어, 뉴클레오타이드 및 합성 반응을 촉진시키는(catalyze) 성분 (예를 들어, DNA 폴리머라제)의 존재 하에서, 폴리뉴클레오타이드 주형(template) 서열, 예를 들어, 프라이머 결합 절편에 특히 하이브리드 할 수 있는 폴리뉴클레오타이드 서열과, 상보적 폴리뉴클레오타이드의 합성을 위한 개시 지점을 제공할 수 있는 폴리뉴클레오타이드를 말한다. 프라이머는 폴리뉴클레오타이드 주형(template) 서열에 대해 상보적이지만, 폴리뉴클레오타이드 주형(template) 서열에 대해 정확한 상보적 서열(complement)일 필요는 없다. 예를 들어, 프라이머는 폴리뉴클레오타이드 주형(template) 서열의 상보적 서열(complement)에 대해 적어도 약 80, 85, 90, 95, 96, 97, 98, 또는 99% 동일할 수 있다. 프라이머는 다양한 길이를 가질 수 있지만, 일반적으로 적어도 15개의 염기 길이를 가진다. 몇몇 실시예에서, 프라이머는 15 내지 35개의 염기 길이를 가진다. 몇몇 실시예에서, 프라이머는 35개를 초과하는 염기 길이를 가진다. 다른 실시예에서, 프라이머는 융점 (Tm)을 가지며, 예를 들어, 적어도 5O℃의 상기 융점에서 DNA 이중나선의 1/2은 단일 가닥으로 분리될 것이다. 다른 실시예에서, 프라이머는 약 5O℃ 내지 7O℃의 Tm을 갖는다. 또다른 실시예에서, 폴리뉴클레오타이드 주형(template) 서열의 하이브리드화(hybridization)의 효율에 영향을 미치지 않도록, 프라이머는 인지가능한 DNA 또는 RNA 2차 구조를 형성하지 않는다.
본원에서 사용된, 용어 "프라이머 결합 절편(primer binding segment)"은 합성에 적당한 조건하에서 상보적 폴리뉴클레오타이드의 합성의 개시 지점을 제공하기 위하여 프라이머에 결합하는 폴리뉴클레오타이드 서열이다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 서열은 본 발명의 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 중 하나이다. 서열은, 주어진 세트의 집합체 조성물 내의 상보적 링커 또는 집합체 조성물 내의 폴리뉴클레오타이드 성분들의 부존재 속에서, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker)를 대신하는 프라이머 결합 서열이다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편은 게놈 타겟팅(targeting) 서열, 예를 들어, 업스트림(upstream) 또는 다운스트림(downstream) 게놈 타겟팅(targeting) 서열로서 기능할 수 있다.
본원에서 사용된, 용어 "링커(linker) 서열" 및 "어닐링될 수 있는 링커 서열"은 상호교환적으로 사용되었고, 본 발명에 제시된 엔트리 벡터(entry vector) 및 집합 벡터 내에 함유된 폴리뉴클레오타이드 서열을 말한다. 특히, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 엔트리 벡터(entry vector) 또는 집합 벡터 내에 DNA 절편을 측면에 배치한다. 집합 벡터로부터 폴리뉴클레오타이드 성분의 잘라냄과 폴리뉴클레오타이드 성분의 변성에 있어서, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker)는, 본원에 제시된 바와 같이, 폴리뉴클레오타이드 집합 반응(assembly reaction)에서 인접한 폴리뉴클레오타이드 성분의 상보적인 어닐링될 수 있는 링커 서열에 특히 하이브리드할 수 있다. 상보적 링커 가닥과 어닐링함에 있어서, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker)는 상보적 폴리뉴클레오타이드의 합성을 위한 개시 지점을 제공할 수 있다.
본원에서 사용된, 용어 "벡터"는 세포에서 복제할 수 있는 염색체 외의(extrachromosomal) 핵산 분자 및 삽입 서열의 복제를 유발하도록 실제로 연결될 수 있는 삽입 서열과 관련하여 사용된다. 유용한 실시예는, 그러나 이에 제한되지 않는, 플라즈미드 구성, 파지(phage) 구성, 코스미드(cosmid) 벡터 등등과 같은 원형 DNA 분자 뿐만 아니라, 선형 핵산 구성 (예를 들어, 람다 파지(phage) 구성, 박테리아의 인공 염색체 (BAC), 효모의 인공 염색체 (YAC), 등)를 포함한다. 벡터는 프로모터 및/또는 종결자(terminator)와 같은 발현 신호, 항생제에 대한 저항성을 부여하는 유전자와 같은 선별표지(selectable marker) 및 삽입 서열들이 복제될 수 있는 하나 이상의 제한 부위를 포함할 수 있다. 벡터들은 (벡터가 수용할 수 있는 DNA 삽입의 크기와 같은) 기타 특이한 특성을 가질 수 있다.
본원에서 사용된, 용어 "엔트리 벡터(entry vector)"는 본원에서 제공된 폴리뉴클레오타이드 집합 방법에서 사용되는 집합 벡터의 제조를 위한 원래의(parental) 벡터로 제공할 수 있는 클로닝 벡터 플라즈마를 말한다. 엔트리 벡터(entry vector)는 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열들, 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 및 프라이머 결합 절편을 포함하며, 이들은 집합 벡터를 형성하기 위하여 DNA 절편의 도입에 이용될 수 있는 제한 부위를 측면에 배치한다. 본원에서 사용된, "집합 벡터"는 DNA 절편이 도입된 엔트리 벡터(entry vector)를 말한다. 집합 벡터는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 집합될 수 있는 폴리뉴클레오타이드 성분을 제공하기 위하여, 본원에 제시된 폴리뉴클레오타이드 집합 방법에 사용될 수 있다.
본원에서 사용된, 용어 "집합 벡터"는 1개의 어닐링될 수 있는 링커 서열, 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열들, 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열과 프라이머 결합 절편, 및 DNA 절편을 포함하는 벡터를 말한다.
본원에서 사용된, 용어 "제한효소" 또는 "제한 엔도뉴클레아제"는 서열 내 정확한 위치에서 유사한 DNA 서열에 결합하여 DNA 분자를 절단하는 촉매적 분자의 계열의 구성원 또는 구성원들을 말한다. 제한 엔도뉴클레아제는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제들을 포함한다. 이러한 계열의 효소는 인식서열(recognition sequence)이 절단 부위로부터 분리된 점에서, 기타 다른 제한 엔도뉴클레아제들과 다르다. IIS형 제한효소의 몇몇 실시예는 AlwI, BsaI, BbsI, BbuI, BsmAI, BsrI, BsmI, BspMI, EarI, Esp3I, FokI, HgaI, HphI, LguI, MboII, MnlI, PleI, SapI, SchI, SfaNi, 기타 등등을 포함한다. 이러한 많은 제한 엔도뉴클레아제들은 상업적으로 구입할 수 있으며 당업자에게 잘 알려져 있다.
본원에서 사용된, 용어 "어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 서열 두 가닥의(duplex)"은 비평형 접합(antiparallel association)에서 실질적으로 상보적인 어닐링될 수 있는 링커 서열 가닥과 함께 정렬된 하나의 어닐링될 수 있는 링커 서열 가닥을 말한다. 특정한 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 두 가닥의(duplex) 서열이 완전한 상보성을 갖는 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열 가닥들을 포함하더라도, 상보성은 완전할 필요는 없으며; 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 서열 두 가닥(duplex)은 짝짓지 않은 염기쌍 또는 짝짓지 않은 염기들을 포함할 수 있다.
본원에서 사용된, 용어 "게놈 타겟팅(targeting) 서열"은 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 삽입되는 부위에서 숙주 세포의 게놈에 존재하는 뉴클레오타이드 서열을 말한다. 용어 "업스트림(upstream) 게놈 타겟팅(targeting) 서열" 및 "다운스트림(downstream) 게놈 타겟팅(targeting) 서열"은 숙주 세포의 게놈에 서로 업스트림 및 다운스트림에 위치한 게놈 타겟팅(targeting) 서열들을 말한다.
본원에서 사용된, 용어 "염색체의 타겟팅(targeting) 서열"은 본 발명의 폴리뉴클레오타이드가 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 삽입되는 부위에서 숙주 세포의 염색체에 존재하는 뉴클레오타이드 서열을 말한다. 용어 "업스트림(upstream) 염색체의 타겟팅(targeting) 서열" 및 "다운스트림(downstream) 염색체의 타겟팅(targeting) 서열"은 숙주 세포의 염색체 내에서 서로의 업스트림 및 다운스트림에 위치한 염색체의 타겟팅(targeting) 서열들을 말한다.
2.
폴리뉴클레오타이드
집합 방법
일 측면에서, 본 발명은 하나 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들로 삽입되는 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들의 정열된 집합체에 대한 빠르고, 강건하며 높은 생산량의(high-throughput) 방법을 제공한다. 본 발명의 방법들은 집합 벡터들로 불리는 원형 핵산 벡터들을 사용하며, 이들은 각각, 어닐링될 수 있는 링커 서열 (예를 들어, LA 또는 LB)의 측면에 배치된 DNA 절편 D, 한 쌍의 어닐링될 수 있는 링커 서열들 (예를 들어, LA과 LB), 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열과 프라이머 결합 절편 (예를 들어, LA과 PB, 또는 LB과 PA) 및 한쌍의 제한 부위들 RA 및 RB를 포함한다(도 1b). 제한 부위 RA 및 RB에서의 수많은 집합 벡터들의 제한 엔도뉴클레아제 분해는 성분들 5'-LA-D-3', 5'-D-LB-3', 5'-LA-D-LB-3', 5'-LA-D-PB-3', 또는 5'-LB-D-PA-3'을 포함하는 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들을 생성한다 (도 3). 본 발명의 방법에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열들 LA 및 LB는 스플라이스 겹침 신장 집합 반응(assembly reaction) 후에, 정렬된 서열과 함께, 폴리뉴클레오타이드 성분들을 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 집합시키는 중합효소 연쇄 반응 (SOE/PCR)에 사용되는 상보적 말단을 갖는 폴리뉴클레오타이드 성분들을 제공한다.
특히, 상기 방법들은, 그러나 이에 제한되지 않는, 단백질-코딩 서열, 리포터 유전자, 형광 표지(marker) 코딩 서열, 프로모터, 증폭자(enhancer), 종결자(terminator), 인트론, 엑손, 폴리-A 꼬리, 다수의 클로닝 부위, 핵 위치 신호(nuclear localization signal), mRNA 안정 신호(mRNA stabilization signal), 선별표지(selectable marker), 통합 부위(integration loci), 에피토프 태그(epitope tag) 코딩 서열 및 분해 신호(degradation signal)를 포함하는, 기능적인 수많은 DNA 성분들의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로의 집합을 제공한다. 상기 방법들은, 그러나 이에 제한되지 않는 합성 유전자, 구성, 클로닝 벡터, 발현 벡터, 염색체, 게놈 통합(integration) 구성, 게놈 및 DNA 라이브러리를 포함하는, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 임의의 형태의 집합을 위하여 사용될 수 있다. 더욱이, 상기 방법들은 중간 생산물의 증폭 및 특성화를 할 필요 없이 단일한 반응에서 DNA 절편을 집합하는데 사용될 수 있다.
몇몇 실시예에서, 상기 방법들은, 1개 또는 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열들 LA 및/또는 LB에 의해, 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열과 프라이머 결합 절편 (예를 들어, LA과 PB 또는 LB과 PA) 측면에 배치되는, 집합 벡터 (즉, 예를 들어, PCR 증폭, 화학적 합성, 기타 등등과 같이 업계에 알려진 표준 방법에 의해 수득된 DNA 절편(segment))에서 유래되지 않는 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 집합체를 또한 제공한다. 집합 벡터로부터 유래되지 않은 폴리뉴클레오타이드 성분들은 SOE/PCR 반응 또는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로의 집합을 위한 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination) 이전의 단계에서 집합 반응(assembly reaction)으로 첨가될 수 있다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 집합 방법은 (1) 1개 또는 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열들, 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열과 프라이머 결합 절편을 포함하는 집합 벡터로부터 유도되고 집합 벡터들의 분해에 의해 생성된 폴리뉴클레오타이드 성분들; (2) 1개 또는 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열들에 의해, 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열과 프라이머 결합 절편에 의해 측면에 배치된 벡터없는(vectorless) DNA 절편들; 및 (3) 이들의 조합;을 집합하는데 사용될 수 있다.
몇몇 실시예에서, 본 발명은 하나 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들로 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들을 집합시키는 방법을 제공하며, 상기 방법은 하기의 단계들을 포함한다:
(a) 성분 조성물(component composition)을 생성하기 위하여 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제들을 사용하여 집합체 조성물을 분해하는 단계로서, 상기 집합체 조성물은 하기의 것들을 포함하며:
(i) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 그룹 PA로부터 선택된 임의의 프라이머 결합 절편, 그룹 D0로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0을 포함하는, 하나 이상의 첫번째 핵산 분자;
(ii) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn를 포함하는, 하나 이상의 중간 핵산 분자(상기 n은 1부터 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(iii) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, 그룹 Dm으로부터 선택된 DNA 절편, 그룹 PB로부터 선택된 임의의 프라이머 결합 절편 및 두번째 제한 부위 RBm를 포함하는, 하나 이상의 마지막 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타냄); 여기에서, 제한 부위 RA0에서 RBm까지의 절단 및 결과물 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며, 상기 n은 1부터 (m-1)까지 변하는 정수이며, 상기 p는 1부터 m까지의 정수를 나타내며, 상기 각각의 그룹 D0,... Dn,...및 Dm,는 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성되며;
여기에서, 상기 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제들은 제한 부위 RA0부터 RBm까지를 절단할 수 있으며; 및
(b) 핵산 분자의 변성, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp에 대한 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)의 어닐링 및 이들로부터의 신장에 적절한 조건하에서, 성분 조성물(component composition)을 DNA 폴리머라제, 데옥시리보뉴클레오사이드 트리포스페이트, 하나 이상의 제 1 프라이머들 및 하나 이상의 제 2 프라이머들과 접촉시키는 단계; 상기 각각의 제 1 프라이머는 그룹 PA로부터 선택된 상기 프라이머 결합 절편(segment) 중 하나에 하이브리드할 수 있으며, 상기 각각의 제 2 프라이머는 그룹 PB로부터 선택된 상기 프라이머 결합 절편(segment) 중 하나에 하이브리드할 수 있으며; 및 상기 성분 조성물(component composition)을 중합효소 연쇄 반응시키는 단계,
상기 폴리뉴클레오타이드는 5'에서 3'의 방향으로, 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm의 각각으로부터 선택된 하나의 DNA 절편을 포함하여 집합된다. 상기 방법에서, p는 1부터 m까지의 정수를 나타낸다.
도 3은 예시적인 목적으로, 본 발명의 집합 방법의 일 실시예를 나타낸다. 상기 예시에서, 총 4개의 폴리뉴클레오타이드 성분들은 집합되어(assembled) 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 생산하였다. 그러나, 본 발명의 집합 방법은 임의의 개수의 폴리뉴클레오타이드 성분들을 하나 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 집합하는데 사용될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 본 발명의 상기 방법은 2개, 3개, 4개, 5개, 6개, 7개, 8개, 9개, 10개, 11개, 12개, 13개, 14개, 15개, 또는 그 이상의 폴리뉴클레오타이드 성분들이 하나 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 집합된 집합체를 형성한다.
도 3에 나타낸 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 형성하는 집합체 조성물은 "첫번째", "중간 1 (int1)", "중간 2 (int2)" 및 "마지막"으로 표시한, 4개의 인풋(input) 집합체들을 포함한다. 각각의 집합 벡터는 어닐링될 수 있는 링커 서열과 프라이머 결합 절편에 의하거나, 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열들 측면에 배치된 DNA 절편을 포함한다. 특히, DNA 절편 D0는 5' 프라이머 결합 절편 PA와 3' 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0에 의해 측면에 배치된다. DNA 절편 D1은 5' 및 3' 어닐링될 수 있는 링커 서열들 LA1 및 LB1의 측면에 배치되며, DNA 절편 D2는 5' 및 3' 어닐링될 수 있는 링커 서열들 LA2 및 LB2에 의해 측면에 배치된다. DNA 절편 D3은 3' 프라이머 결합 절편 PB와 5' 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA3의 측면에 배치된다. 집합 벡터들 내 5'-PA-D-LB-3', 5'-LA-D-LB-3', 또는 5'-LA-D-PB-3' 성분들은 SapI 제한 엔도뉴클레아제 부위의 측면에 더 배치된다.
도 3에 나타낸 집합 반응(assembly reaction)의 첫번째 단계에서, 집합체 조성물은 SapI에 의해 분해되어, 집합 벡터 골격으로부터 5'-PA-D-LB-3', 5'-LA-D-LB-3' 또는 5'-LA-D-PB-3'를 포함하는 폴리뉴클레오타이드 성분들을 성분 조성물(component composition)로의 절단을 유발한다. SapI는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제이기 때문에, SapI의 인지 부위는 SapI의 절단 부위에서 멀고, 절단은 SapI의 인식서열(recognition sequence)의 바깥쪽에서 일어난다. 제한-부위 자국(scar)을 포함하지 않으며, 만약 그렇지 않으면 비-IIS형 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 제한 부위 RA 및 RB의 절단을 유발할 수 있는, 폴리뉴클레오타이드들이 집합될 수 있기 때문에, 상기 특성은 IIS형 제한 엔도뉴클레아제들을 본 발명의 방법에 따른 폴리뉴클레오타이드의 집합체에 특히 유용하게 만든다. 도 2와 관련하여, IIS형 인지 부위는 절단 부위 RB0, RAn 및 RAm의 각각의 RA0, RAn 및 RAm 및 3'에 대응되는 절단 부위의 5'이다. 따라서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지는, RA0부터 RBm까지 절단할 수 있는 하나 이상의 IIS형 제한 엔도뉴클레아제들에 의한 절단이, D0로부터의 RA0 분리, RBO로부터의 LB0 분리, LAn으로부터의 RAn 분리, RMn으로부터의 LBn 분리, LAm으로부터의 RAm 분리 및 RBm으로부터의 Dm 분리를 유발하도록 지향되며, 상기 결과물인 D0, LB0, RAn, LBn, LAm 또는 Dm를 포함하는 선형의 핵산 분자는 RA0부터 RBm까지의 임의의 것을 포함하지 않는다. 그 결과, 결과물 폴리뉴클레오타이드 성분들은 제한효소의 인지 또는 절단 부위를 적은 양이라도 포함하지 않는다. 그 결과, 독창적인 폴리뉴클레오타이드 집합 방법은 유전적 불안정성을 일으킬 수 있는 서열 반복의 유도 없이 숙주 세포들을 여러번 형질 변환하는데 사용될 수 있다.
따라서, 제한 엔도뉴클레아제는 선택적으로 불활성화된다. 만약 불활성화가 요구된다면, 컬럼 또는 겔-기반 정제 방법을 포함하는, 엔도뉴클레아제 효소 활성을 불활성화하는 업계에 알려진 임의의 방법이 사용될 수 있다. 하나의 편리한 방법은 열 불활성화(heat inactivation), 예를 들어, 20분 동안 65℃에서의 열 불활성화이며, 상기 방법은 반응 튜브 바깥의 성분 조성물(component composition)들의 적은 증폭을 필요로 하거나 증폭을 전혀 필요로 하지 않는다.
집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 삽입된 폴리뉴클레오타이드 성분들의 집합체는 폴리뉴클레오타이드 성분들 중에서 상보적인 말단의 중복되는 가닥들에 의해 형성된 두 가닥의(duplex) 서열들에 의해 이루어질 수 있다. 특히, 어닐링될 수 있는 링커 서열들이 고안되어, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA1의 상보적 서열(complement)에 하이브리드될 수 있으며, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB1은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA2의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB2는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA3의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있다. 따라서, 집합 반응(assembly reaction)의 두번째 단계에서, 폴리뉴클레오타이드 성분들은 변성 조건 (예를 들어, 열)에서 단일 가닥의 폴리뉴클레오타이드 성분들을 형성하며, 상기 집합 반응(assembly reaction)의 변성 단계와 함께, 또는 그 후에 생긴 부수물이 내열성의 DNA 폴리머라제 및 데옥시리보뉴클레오사이드 트리포스페이트와 접촉된다.
내열성의 DNA 폴리머라제는 당업자에 의해 적당한 것으로 여겨지는 임의의 내열성의 DNA 폴리머라제일 수 있다. 본 발명의 방법의 사용에 적당한 내열성의 DNA 폴리머라제들은, 그러나 이에 제한되지 않는, Thermus thermophilus (Tth) DNA 폴리머라제, Thermus aquaticus (Taq) DNA 폴리머라제, Thermotoga neopolitana (Tne) DNA 폴리머라제, Thermotoga maritima (Tma) DNA 폴리머라제, Therm °C° Ccus litoralis (Tli 또는 VENT™) DNA 폴리머라제, Pyr °C°Ccus furiosus (Pfu 또는 DEEPVENT™) DNA 폴리머라제, Pyr ℃℃ cus woosii (Pwo) DNA 폴리머라제, Bacillus sterothermophilus (Bst) DNA 폴리머라제, Sulfolobus acid ° Caldarius (SAC) DNA 폴리머라제, Thermoplasma acidophilum (Tac) DNA 폴리머라제, Thermus flavus (Tfl/Tub) DNA 폴리머라제, Thermus ruber (Tru) DNA 폴리머라제, Thermus br ° Ckianus (DYNAZYME™) DNA 폴리머라제, Methanobacterium ruminantium (Mth) DNA 폴리머라제 및 이의 돌연변이, 변종 및 유도체를 포함한다. 높은 복제성 (예를 들어, 프루프리딩 물성)과 낮은 오류율을 갖는 내열성의 DNA 폴리머라제들이 바람직하다. 몇몇 실시예에서, DNA 폴리머라제는 Phusion™ DNA 폴리머라제 (New England Biolabs, Ipswich, MA)이다. 다른 실시예에서, DNA 폴리머라제는 PfuUltra™ II Fusion DNA 폴리머라제 (Strategene / Agilent, La Jolla, CA)이다.
그 후, 내열성의 DNA 폴리머라제가, 겹치는 어닐링될 수 있는 링커 서열들 사이의 부분들을 채우는 동안, 집합 반응(assembly reaction)은 겹치는 어닐링될 수 있는 링커 서열들의 3'-히드록시 부분으로부터 가닥의 신장(strand elongation)을 허용하는 조건에 둔다. 상당한 양의 이중-가닥 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들이 형성되는 동안, 상기 집합 반응(assembly reaction)은 변성 / 어닐링 / 신장의 제한된 수의 반복 사이클(예를 들어, 5 내지 15 사이클)을 겪게 된다. 상기 사이클이 일어나는 동안, 폴리뉴클레오타이드 성분들은 프라이머와 주형(template)으로 작용하여 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드에 대하여 완전한 길이의 주형(template)을 형성한다. 몇몇 실시예에서, PCR의 어닐링 및 신장은 모두 72℃에서 실시된다.
어닐링될 수 있는 링커 서열들 LA 및 LB과 반대로, 프라이머 결합 절편(segment) PA 및 PB는 서로 겹치지 않거나, 어닐링될 수 있는 링커 서열들 또는 DNA 절편(segment)과 겹치지 않도록 만들어지나, 완전한 길이의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 증폭하는데 사용된 프라이머들에 대한 결합 부위로 역할을 한다. 따라서, 집합 반응(assembly reaction)의 4 단계 및 5 단계에서, 프라이머 결합 절편(segment)들 PA 및 PB에 상보적인 프라이머들이 첨가되어, 조성물은 종래의 PCR 증폭 조건을 겪게 된다. PCR 증폭 조건은 당업자에 의해 적당한 것으로 여겨지는 임의의 PCR 증폭 조건일 수 있으며, 이러한 조건은 PCR Technology: Principles and Applications for DNA Amplication, ed. HA Erlich, Stockton Press, New York, N.Y. (1989); PCR Prot ° Cols: A Guide to Methods and Applications, eds. Innis, Gelfland, Snisky, and White, Academic Press, San Diego, Calif. (1990); Mattila et al . (1991) Nucleic acids Res. 19: 4967; Eckert, K. A. and Kunkel, T. A. (1991) PCR Methods and Applications 1 : 17; 및 미국 특허등록 제 4,683,202호 및 제 4,965,188호에 제시된 조건들을 포함하며, 이들은 각각 인용에 의해 본원에 통합된다. 몇몇 실시예에서, 집합 반응(assembly reaction)의 PCR 단계는 결합 절편(segment)들 PA 및 PB에 결합하는 프라이머에 상보적인 프라이머의 존재시에, 약 35 사이클의 변성, 어닐링 및 신장을 포함한다. 몇몇 실시예에서, PCR의 어닐링 및 신장 단계는 모두 72℃에서 실행될 수 있다. 그러나, 성공적인 증폭을 위한 선택적 조건은 내열성의 DNA 폴리머라제와 사용된 어닐링될 수 있는 링커 서열들에 따라 다르며, 따라서 이러한 조건들은 조정될 수 있다는 것을 당업자는 이해할 것이다.
선택적으로, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 당업자에게 명백한 임의의 기술, 예를 들어, 겔 전기영동 정제 방법에 의해 정제될 수 있으며, 다양한 목적으로 사용된다. 예를 들어, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 서열 검증을 위한 발현 벡터 골격으로 삽입될 수 있다.
3 집합된(
assembled
)
폴리뉴클레오타이드들을
포함하는 숙주 세포들을 제조하는 방법
다른 측면에서, 본 발명은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 숙주 세포들을 제조하는 방법을 제공한다. 몇몇 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 적어도 3 kb의 크기이다. 다른 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 적어도 5 kb의 크기이다. 또다른 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 적어도 6, 7, 8, 9 또는 10 kb의 크기이다. 또다른 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 10 kb를 초과하는 크기이다. 또다른 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 15 kb를 초과하는 크기이다. 또다른 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 20 kb를 초과하는 크기이다.
몇몇 실시예에서, 본 발명은 본원에 제시된 폴리뉴클레오타이드의 집합 방법에 의해 제조된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 숙주 세포를 형질 변환하는 것을 포함하는 방법을 제공한다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 형질 변환 전에 원형으로 만들어질 수 있거나, 선형 분자로서 형질 변환될 수 있다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 염색체 외의(extrachromosomal) 폴리뉴클레오타이드로서 숙주 세포에서 유지될 수 있다. 선택적으로, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는, 예를 들어, 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해, 숙주 세포의 게놈으로 통합될 수 있다. 상동 재조합(homologous recombination)에 의해, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 게놈으로 통합하기 위하여, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는, 한쪽 말단에서 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 포함하는 핵산 서열을 포함하며, 다른 쪽 말단에서 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 포함하는 핵산 서열을 포함한다. 따라서, 숙주 세포의 염색체로 통합되는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 업스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열을 포함하는 첫번째 핵산 분자;와 다운스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열을 포함하는 마지막 핵산 분자;를 포함하는 집합체 조성물로부터 형성되며, 각각의 염색체의 타겟팅(targeting) 서열은 상기 염색체를 갖는 숙주 세포에 의해 상동 재조합(homologous recombination)을 개시할 수 있는 충분한 길이를 갖는다.
다른 실시예에서, 본 발명의 방법들은 본원에 제시된 폴리뉴클레오타이드 집합 방법에 의해 제조된 수많은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들로 숙주 세포를 형질 변환하는 것을 포함한다. 특정 실시예에서, 숙주 세포는 2개 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 단일 결합된 폴리뉴클레오타이드와 결합시킨다. 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 숙주 세포 형질 변환체들은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 결합시키는 과정에서 제조된 선별표지(selectable marker)를 표시함으로써 선택된다. 상동 재조합(homologous recombination)에 의해, 상대적으로 큰 조각의 폴리뉴클레오타이드를 타겟 폴리뉴클레오타이드에 삽입하는데 상기 방법이 특히 유용하다. 염색체의 통합(integration)이 발생하기 위하여, 결합된 폴리뉴클레오타이드는 선별표지(selectable marker)의 코딩 서열의 5' 또는 3'에 위치한 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열과 선별표지(selectable marker)의 코딩 서열의 3' 또는 5'에 위치한 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열을, 각각 포함하여야 한다. 본원에서 사용된 게놈 통합(integration)은 염색체의 통합(integration), 예를 들어, 숙주 세포의 염색체로의 폴리뉴클레오타이드의 통합을 포함한다. Saccharomyces cerevisiae 내 적당한 염색체의 통합(integration) 부위는, 그러나 이에 제한되지 않는, NDT80, HO, GAL2 및 GALl - GAL 10- GAL7 위치를 포함한다. 상기 방법은, 염색체 외로(extrachromosomally) 유지된 폴리뉴클레오타이드, 예를 들어, 벡터 및 발현 플라즈미드를 포함하는 숙주 세포를 제조하는데 유용할 수 있다. 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드가, 동일한 어닐링될 수 있는 링커 서열들이나, 그 외에는 폴리뉴클레오타이드 성분의 절편(segment)의 절단을 유발하는 추가적인 상동 재조합(homologous recombination) 이벤트를 개시할 수 있는 직접적 반복으로 배열된 DNA 절편(segment)을 포함하지 않을 때, 염색체로 통합되거나 염색체 외로(extrachromosomally) 유지된 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드의 안정성이 상승한다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은 특유의 어닐링될 수 있는 링커 서열들 및 DNA 절편(segment)을 포함한다. 다른 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은 하나 이상의 동일한 어닐링될 수 있는 링커 서열 또는 DNA 절편(segment)을 포함하며, 여기에서 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들의 조합은 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드에서 역반복(inverted repeat)으로 배열된다.
예시적인 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드의 제조와, 상동 재조합(homologous recombination)에 의한, 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드의 숙주 세포의 염색체로의 통합(integration)은 도 8에 나타나 있다. 2개의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 A 및 B는 상동 재조합(homologous recombination)을 할 수 있는 숙주 세포에 흡수된다. 각각의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 선별표지(selectable marker)의 절편을 코딩하는 DNA 절편 Dm을 포함하며, 여기에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 A의 DNA 절편 Dm1은 선별표지(selectable marker)의 첫번째 절편을 코딩하며, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 B의 DNA 절편 Dm2는 선별표지(selectable marker)의 두번째 절편을 코딩하며, 여기에서, DNA 절편 Dm1 및 DNA 절편 Dm2는 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)을 개시하는데 충분한 상동(homology) 영역을 포함하며, 여기에서, DNA 절편 Dm1 또는 DNA 절편 Dm2 중 그 어느 것도 기능적인 선별표지(selectable marker)를 생산하지 않지만, 숙주 세포에 의한 상동 재조합(homologous recombination)에서 기능적인 선별표지(selectable marker)가 형성된다. 각각의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 숙주 매개 상동 재조합(homologous recombination)을 개시하는데 충분한 길이의 염색체의 타겟팅(targeting) 서열을 코딩하는 DNA 절편 D0를 더 포함하며, 여기에서 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 A의 DNA 절편 D01은 업스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열을 코딩하며, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 B의 DNA 절편 D02는 다운스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열을 코딩한다. 세포 내에서 한번, 숙주 세포는, 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 형성하기 위하여 DNA 절편(segment) Dm1 및 Dm2 내 상동(homology) 영역에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 A와 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 B를 재결합시킨다. 또한, 숙주 세포는 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 염색체로 삽입하기 위하여, DNA 절편(segment) D01 및 D02에 의해 코딩된 염색체의 타겟팅(targeting) 서열들을 사용한다. 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포들은 형성된 기능적 선별표지(selectable marker)에 기반하여 용이하게 식별될 수 있다.
또다른 실시예에서, 본 발명의 방법들은 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들로 숙주 세포를 형질 변환하는 것과, 숙주 세포가 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 하나 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 형성하는 것을 포함한다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 숙주 세포에서 염색체 외로(extrachromosomally) 유지될 수 있거나 숙주 세포의 염색체로 통합될 수 있다. 숙주 세포에서 상동 재조합(homologous recombination)에 의한 예시적인 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 형성과, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 숙주 세포의 염색체로의 통합(integration)은 도 9에 나타나 있다. 첫번째 단계에서, 집합 벡터들을 포함하는 집합체 조성물은 SapI 또는 LguI와 같은 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 분해되어, 폴리뉴클레오타이드 성분들의 집합 벡터 골격으로부터의 절단을 유발한다. 상기 실시예에서, D0 및 D3은 업스트림 및 다운스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열이 될 수 있으며, 이 경우에 첫번째 및 마지막 집합 벡터 내의 프라이머 결합 절편의 존재는 선택적이다. 선택적으로, 2개의 프라이머 결합 절편(segment)은 업스트림 및 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열들로서 기능할 수 있다.
일단 절단되면, 각각의 절단된 폴리뉴클레오타이드 성분은 다른 폴리뉴클레오타이드 성분의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA에 상동이고, 숙주 매개 상동 재조합(homologous recombination)을 개시하는데 충분한 길이의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB를 포함한다. 첫번째 집합 벡터로부터 절단된 폴리뉴클레오타이드 성분은 업스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열을 더 포함하며, 마지막 집합 벡터로부터 절단된 폴리뉴클레오타이드 성분은 다운스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열을 더 포함하며, 여기에서 상기 2개의 염색체의 타겟팅(targeting) 서열들 모두 숙주 세포의 염색체를 갖는, 숙주 매개 상동 재조합(homologous recombination)을 개시하는데 충분한 길이이다. 따라서 제한 엔도뉴클레아제는 불활성화될 수 있다. 상기 방법의 두번째 단계에서, 성분들 조성물은 상동 재조합(homologous recombination)을 할 수 있는 숙주 세포로 도입된다. 세포 내에서 한번, 숙주 세포는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 형성하기 위하여 어닐링될 수 있는 링커 서열들 사이의 상동(homology) 영역에서 폴리뉴클레오타이드 성분들을 재결합시키며, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 염색체로 통합된다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포들은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 DNA 절편에 의해 코딩된 선별표지(selectable marker)에 기반하여 용이하게 식별될 수 있다.
임의의 숙주 세포는 본원에 제시된 발법들에 사용될 수 있다. 특정 실시예에서, 적당한 숙주 세포들은, 본원에서 제공된 선별표지(selectable marker) 절편(segment), 게놈 타겟팅(targeting) 서열들 및 어닐링될 수 있는 링커 서열들에 의해 제공된 바와 같은, 상보적인 서열 스트레치(stretch)에 기반한 폴리뉴클레오타이드들을 재결합시킬 수 있는 숙주 세포들이다. 예시적인 실시예의 상기와 같은 숙주 세포들은, 그러나 이에 제한되지 않는, Saccharomyces cerevisiae을 포함한다. 그러한 숙주 세포들에 의한 DNA의 흡수에 적당한 조건은 업계에 잘 알려져 있다.
집합된(assembled) 또는 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포 형질변환체는, 세포 성장을 위하거나, 세포 성장에 대항하는 선택을 허용하는, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드에 의하거나, 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드에 의해 코딩된 선별표지(selectable marker)의 표현에 의해 용이하게 식별될 수 있다. 선별표지(selectable marker)는 집합체 조성물의 집합 벡터에 존재하는 단일 DNA 절편에 의해 코딩될 수 있다. 선택적으로, 선별표지(selectable marker)의 비기능적 절편(segment)은 집합체 조성물의 다수의 집합 벡터들 내 또는 다수의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들에 존재하는 DNA 절편(segment)에 의해 코딩될 수 있어서, 기능적 선별표지(selectable marker)는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 형성 또는 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드의 형성시에만 각각 제조된다.
다양한 선별표지(selectable marker)가 업계에 알려져 있다 (예를 들어, 하기의 것들을 참조 : Kaufman, Meth . Enzymol ., 185:487 (1990); Kaufman, Meth . Enzymol ., 185:537 (1990); Srivastava and SchIessinger, Gene, 103:53 (1991); Romanos et al., in DNA Cloning 2: Expression Systems, 2nd Edition, pages 123-167 (IRL Press 1995); Markie, Methods Mol . Biol ., 54:359 (1996); Pfeifer et al ., Gene, 188:183 (1997); Tucker and Burke, Gene, 199:25 (1997); Hashida-Okado et al ., FEBS Letters, 425:117 (1998)). 몇몇 실시예에서, 선별표지(selectable marker)는 약물 저항 표지(drug resistant marker)이다. 상기 약물 저항 표지는, 만약 독성을 제거하지 않으면 세포를 죽이는 외인성(exogenous) 약물의 독성을 제거할 수 있게 한다. 약물 저항 표지의 예시적인 실시예는, 그러나 이에 제한되지 않는, 앰피실린, 테트라사이클린, 카나마이신, 블레오마이신, 스트렙토마이신, 하이그로마이신(hygromycin), 네오마이신, Zeocin™, 기타 등등과 같은 항생제에 대한 저항성을 부여하는 것들을 포함한다. 다른 실시예에서, 선별표지(selectable marker)는 영양요구 표지(auxotrophic marker)이다. 영양요구 표지는 필수 성분(통상적으로 아미노산)이 부족한 배지에서 세포가 성장하는 동안, 상기 필수 성분을 합성할 수 있게 한다. 선택가능한 영양요구 유전자 서열들은, 예를 들어, 히스티디놀(histidinol)의 존재하에 히스티딘이 없는 배지에서 성장할 수 있게 하는, hisD을 포함한다. 기타 선별표지(selectable marker)는 블레오마이신-저항 유전자, 메탈로티오네인(metallothionein) 유전자, 하이그로마이신(hygromycin) B-포스포트랜스퍼라제 유전자, AURI 유전자, 아데노신 디아미나아제 유전자, 아미노글리코시드 포스포트랜스퍼라제 유전자, 디하이드로폴레이트 리덕타아제(dihydrofolate reductase) 유전자, 티미딘 키나아제 유전자, 잔틴-구아닌 포스포리보실트랜스퍼라아제(phosphoribosyltransferase) 유전자, 기타 등등을 포함한다.
집합된(assembled) 또는 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드의 통합(integration)이, 숙주 세포가 세포 성장에 필요한 성분을 합성하여, 세포를 영양요구성(auxotrophic)이 되도록 요구하는 유전자의 붕괴를 유발할 때, 영양요구성(auxotrophy)은 염색체로 통합된, 집합되거나(assembled) 또는 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포 형질변환체를 식별하는데 또한 사용될 수 있다.
염색체적으로 통합된, 집합되거나(assembled) 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포 형질변환체는 각각의 DNA 절편(segment)에 의해 코딩된 기타 소질(trait)을 발휘하는 숙주 세포 형질변환체를 선택하거나, DNA 절편(segment)의 조합, 예를 들어, 빛을 방출하는 펩타이드들의 발현에 의하거나, 각각의 숙주 세포 클로니의 분자 분석에 의하거나, 예를 들어, 제한효소 매핑(mapping), PCR 증폭, 또는 분리된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 또는 염색체의 통합(integration) 부위의 서열 분석에 의해 또한 식별될 수 있다.
4
폴리뉴클레오타이드
집합체의 조합 방법과 숙주 세포 형성
다른 측면에서, 본 발명은 다수의 폴리뉴클레오타이드 성분들을 수많은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들에 삽입한 정렬된 집합체에 대한 빠르고, 강건하며 높은 생산량의(high-throughput) 방법들을 제공한다. 상기 방법들은 집합 벡터들을 포함하는 집합체 조성물의 사용에 의존하며, 각각의 집합 벡터는, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 또는 LB, 한 쌍의 어닐링될 수 있는 링커 서열들 LA 및 LB의 측면에 배치되거나, 한 쌍의 제한 부위들 RA 및 RB의 측면에 배치된, 어닐링될 수 있는 링커 서열과 프라이머 결합 절편, 예를 들어, LA과 PB, 또는 LB와 PA(도 1b)의 측면에 배치된, DNA 절편 D를 포함한다. 그러나, 본원에 제시된 방법들을 사용하는 다양한 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이들을 형성하기 위하여, 어닐링될 수 있는 링커 서열들과 프라이머 결합 절편(segment)이 선택되어 폴리뉴클레오타이드 성분들의 하나 이상의 조합은 반응에서 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 집합될 수 있다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 집합체 조성물은, 동일한 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 또는 LB, 또는 동일한 프라이머 결합 절편 PA 또는 PB를 갖지만, DNA 절편과 다른, 적어도 2개의 집합 벡터들을 포함한다. 또다른 실시예에서, 집합체 조성물은, 동일한 한 쌍의 어닐링될 수 있는 링커 서열들 LA 및 LB, 또는 동일한 어닐링될 수 있는 링커 서열과 프라이머 결합 절편 쌍, 예를 들어, LA 및 PB, 또는 LB 및 PA를 갖지만 DNA 절편과 다른, 적어도 2개의 집합 벡터들을 포함한다.
도 10은 동일한 반응에서 7개의 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 수많은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 형성하는 예시적인 방법을 나타낸다. 집합된(assembled) DNA 절편(segment)을 포함하는 집합 벡터들을 단일 튜브에 넣고 SapI로 분해하여 집합 벡터 골격들로부터 폴리뉴클레오타이드 절편 성분들을 방출한다. SapI의 열 불활성화 후에, 폴리뉴클레오타이드 성분들을 변성 상태에 둔 후, 상보적인 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 쌍의 하이브리드화에 충분한 어닐링 조건에 둔다. DNA 폴리머라제 및 dNTP들의 존재하에 프라이머 신장을 한 후, 프라이머 결합 절편들(segment) PA 및 PB에 상보적인 프라이머들을 다양한 가능한 조합으로 집합된 DNA 절편(segment) D01 /02, D1 /2, D3 및 D41 /42를 포함하는 8개의 서로 다른 완전한 길이의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 PCR 증폭하기 위하여 첨가한다. 각각의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은, 예를 들어, DNA 절편(segment) D01, D02, D41 및 D42의 영역에 상보적인 프라이머들을 이용한 성공적인 PCR 증폭에 의해, 혼합된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들의 조성물로부터 분리될 수 있다. 선택적으로, 한 세트의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은 프라이머 결합 절편(segment) PA 및/또는 PB의 그룹의 하나를 포함하고, 프라이머 결합 절편(segment) PA 및 PB의 선택적인 서브그룹과 하이브리드하는 PCR 증폭용 프라이머를 사용하는, 첫번째 및 마지막 집합 벡터들에 의해 분리될 수 있다. 분리된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은, 예를 들어, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 수많은 숙주 세포들을 형성하기 위하여 숙주 세포들을 형질 변환하는데 사용될 수 있다. 선택적으로, 숙주 세포들은 혼합된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들과 숙주 세포 형질변환체의 조성물로 직접적으로 형질전환될 수 있으며, 각각의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는, 예를 들어, 각각의 숙주 세포 콜로니의 분자 분석에 의하거나, 선별표지(selectable marker)를 포함하거나 각각의 DNA 절편(segment) 또는 DNA 절편(segment)의 조합에 의해 코딩된 기타 소질(trait)을 나타내는 숙주 세포 형질변환체를 선택함으로써, 분리될 수 있다.
다른 실시예에서, 조합 방법에 의해 집합된(assembled) 수많은 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 수많은 숙주 세포들은 다수의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 조성물로 숙주 세포들을 형질전환하고, 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포들을 선택함으로써 형성되며, 상기 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들의 적어도 2개의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은 기능적 선별표지(selectable marker)를 형성하는 상동 재조합(homologous recombination)에서 선별표지(selectable marker)의 비-기능적 절편(segment)을 포함한다. 도 11은 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 수많은 숙주 세포들을 형성하기 위한 조합적 접근을 나타낸다. 실시예에서, 동일한 업스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열과 선별표지(selectable marker)의 동일한 첫번째 부분을 포함하는 각각의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 A1 및 A2, 동일한 다운스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열과 선별표지(selectable marker)의 동일한 두번째 부분을 포함하는 각각의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 Bl 및 B2는, 4개의 서로 다른 숙주 세포들을 형성하는 염색체로 삽입될 수 있는, 4개의 서로 다른 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들, A1/B1, A1/B2, A2/B1 및 A2/B2를 형성하는 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 조합적으로 결합된다.
또다른 실시예에서, 조합적 방법에 의해 집합되고(assembled) 결합된(combined) 수많은 숙주 세포들은 다수의 폴리뉴클레오타이드 성분들을 포함하는 성분 조성물(component composition)로 숙주 세포들을 형질변환하고, 집합되거나(assembled) 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포들을 선택함으로써 형성되며, 상기 폴리뉴클레오타이드들 중 적어도 2개의 폴리뉴클레오타이드 성분들은, 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)이 기능적 선별표지(selectable marker)를 형성하는 선별표지(selectable marker)의 비-기능적 절편(segment)을 포함한다.
5 엔트리 벡터(
entry
vector
)
다른 측면에서, 본 발명은, 예를 들어, 집합 벡터를 제조하는데 사용될 수 있는, 엔트리 벡터(entry vector)를 제공한다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는 선별표지(selectable marker), 복제의 원점(origin), 및 본원에 제공된 집합 방법에서 집합되는(assembled) 서로 다른 DNA 절편(segment)의 서브크로닝을 촉진하는 2개의 제한 부위에 의해 즉각적으로 측면에 배치되는 DNA 절편을 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 엔트리 벡터(entry vector)는, 제한 부위의 측면에 배치되는, 1개 또는 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열들, 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 및 프라이머 결합 절편을 더 포함한다. 엔트리 벡터(entry vector)는 DNA 절편의 측면의 바깥쪽에 위치하는, 예를 들어, 1개 또는 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열들, 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열과 프라이머 결합 절편의 측면에 위치하는, 추가적 쌍의 제한 부위를 더 포함한다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ 및 제한 부위 RB를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 다른 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 다른 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 프라이머 결합 절편 PB 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다.
몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)의 DNA 절편 D의 서열은 lac Z 리포터 유전자(reporter gene)이다. 상기 lac Z 리포터 유전자(reporter gene)는, 예를 들어, 본원에 제시된 집합 벡터를 제조하는 동안, lac Z 외의 DNA 절편(segment)을 포함하는 벡터들로 형질변환된 콜로니의 청색/백색 선택(blue/white selection)을 촉진하는데 사용된다.
몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-RY-D-RZ-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-RY-D-RZ-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-RY-D-RZ-LB-RB-3')을 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-PA-RY-D-RZ-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 엔트리 벡터(entry vector)는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 프라이머 결합 절편 PB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-RY-D-RZ-PB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 예시적인 엔트리 벡터(entry vector)는 도 1a에 제시하였다.
프라이머 결합 절편은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 제조하는데 사용된 임의의 어닐링될 수 있는 링커 서열들과 상보적인 임의의 뉴클레오타이드 서열일 수 있다. 몇몇 실시예에서, 2개의 프라이머 결합 절편은 제한 엔도뉴클레아제 인지 및 절단 부위를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편은 특정한 집합 반응(assembly reaction)에서 사용되지 않는, 단순하게 이용가능한 링커 서열 중 하나이다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA 및 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열들은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 바람직한 실시예에서, PA와 PB는 서열에서 동일하지 않다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 또는 LB의 핵산 서열은 적어도 24개의 뉴클레오타이드이며 적어도 60℃의 Tm을 갖는다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다.
제한 부위 RY 및 RZ는 집합 벡터의 형성을 위한 다양한 DNA 절편(segment)을 도입하기 위한 클로닝 부위들로서 사용될 수 있다. 몇몇 실시예에서, RY와 RZ는 서열에서 동일하지 않다. 몇몇 실시예에서, RY와 RZ는 동일한 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, RY와 RZ는 서열에서 동일하다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위 RY와 RZ는 엇갈린(staggered) 말단들, 예를 들어 5' 또는 3' 오버행(overhang)을 갖는 말단을 형성하는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 다른 실시예에서, 제한 부위 RY와 RZ는 평활 말단(blunt end)을 형성하는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다.
제한 부위 RY와 RZ가 업계에 알려진 임의의 제한 부위일 수 있더라도, IIS형 제한 엔도뉴클레아제들에 의해 인지된 제한 부위는 특히 유용하다. IIS형 제한 엔도뉴클레아제들은 절단 영역에서 떨어진 DNA 결합 영역을 갖는다. 따라서, IIS형 제한 엔도뉴클레아제들은 특정 서열을 인지하지만, 어느 정도 떨어진 거리에서 절단한다. 예를 들어, IIS형 제한 엔도뉴클레아제 SchI (MIyI로도 또한 알려져 있음)는 서열 GAGTC를포함하는 인지 부위에 결합하며, 인지 부위로부터 떨어진 4개의 염기 쌍을 절단하여, 평활 말단(blunt end) DNA 분자를 형성한다. IIS형 제한 부위는 엔트리 벡터(entry vector)로부터 집합 벡터를 제조하는데 특히 유용하다. 예를 들어, 서브클로닝 과정에서, 엔트리 벡터(entry vector)의 DNA 절편, 예를 들어 lacZ는, 관심있는 DNA로 대체되며, IIS형 제한 엔도뉴클레아제를 사용한 lacZ의 절단은 제한 부위 인식서열(recognition sequence)의 완전한 제거를 유발할 수 있다. 그 결과, 선형의 엔트리 벡터(entry vector)에 대하여 관심있는 DNA 절편의 연결에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 또는 프라이머 결합 절편 사이의 관련없는(extraneous) 서열과 새롭게 도입되는 DNA 절편은 최소화된다.
따라서, 몇몇 실시예에서, 제한 부위 RY 및 RZ는 업계에 알려진 임의의 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지가능하고 절단될 수 있는 제한 부위이다. 적당한 IIS형 제한 엔도뉴클레아제들은, 그러나 이에 제한되지 않는, 하기의 엔도뉴클레아제들과, 괄호 안에 표시된 이들의 아이소스키조머(isoschizomer)들을 포함한다: Alw26I (BsmAI), AlwI (AclWI, BinI), AsuHPI (HphI), BbvI (Bst71I), BcefI, BstF5I (BseGI, FokI), FauI, HgaI, SapI (LguI), MboII, PleI, SapI, SchI (MlyI), SfaNI 및 TspRI, AceIII, BbsI (BbvII, Bpil, BpuAI), Bce83I, BciVI, BfiI (BmrI), BpmI (GsuI), BsaI (Eco31I), BseRI, BsgI, BsmBI (Esp3I), BsmFI, BspMI, BsrDI (Bse3DI), Bsu6I (Eaml104I, EarI, Ksp632I), Eco57I, FauI, MmeI, RleAI, TaqII 및 Tth111II. 특정한 실시예에서, 제한 부위 RY 및 RZ은 SchI 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지가능하며 절단될 수 있다.
몇몇 실시예에서, RA와 RB는 서열에서 동일하지 않다. 몇몇 실시예에서, RA와 RB는 동일한 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, RA와 RB는 서열에서 동일하다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 엇갈린(staggered) 말단, 예를 들어, 5' 또는 3' 오버행(overhang)을 갖는 말단을 형성하는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 다른 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 평활 말단(blunt end)을 형성하는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다.
제한 부위들 RA 및 RB는 업계에 알려진 임의의 제한 부위일 수 있지만, 하나 이상의 생물의 DNA (예를 들어, cDNA)에서 다소 드문 제한 부위(예를 들어, 드문 커터(cutter))가 특히 유용하다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 인간 DNA의 다소 드문 제한 부위를 갖는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 마우스 DNA의 다소 드문 제한 부위를 갖는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 효모 DNA, 예를 들어, Saccharomyces cerevisiae, Pichia pastoris, Kluyveromyces lactis, Arxula adeninivorans, 또는 Hansenula polymorpha의 DNA에서 다소 드문 제한 부위를 갖는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 박테리아의 DNA, 예를 들어, Escherichia coli 또는 Bacillus subtilis의 DNA에서 다소 많지 않은 제한 부위를 갖는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다.
몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있으며, 상기 인지 부위는, 예를 들어, PA/LA-D-PB/LB를 포함하는 폴리뉴클레오타이드 서열과 거리가 멀다. 몇몇 실시예에서, 각각의 제한 부위들 RA 및 RB는 MssI, NruI (Bsp68I, MluB2I, Sbol3I, SpoI), SnaBI (BstSNI, Ecol05I), SrfI 및 SwaI (BstRZ246I, BstSWI, MspSWI, SmiI), HpaI, HincII, PshAI, OliI, AluI, Alw26I, BalI, DraI, DpnI, EcoR47III, EcoRCRI, EcoRV, FokI, HaeIII, HincII, MboI, MspAlI, NaeI, RsaI, PvuII, ScaI, SmaI, SspI, StuI, XmnI, EcaBC3I, SciI, HincII, DraI, BsaBI, Cac8I, Hpy8I, MlyI, PshAI, SspD51, BfrBI, BsaAI, BsrBI, BtrI, CdiI, CviJI, CviRI, Eco47III, Eco78I, EcoICRI, FnuDII, FspAI, HaeI, LpnI, MlyI, MslI, MstI, NaeI, NlaIV, NruI, NspBII, OliI, PmaCI, PshAI, PsiI, SrfI, StuI, XcaI, XmnI, ZraI 및 이의 아이소스키조머(isoschizomer)로 구성된 군으로부터 선택된 제한 엔도뉴클레아제에 의해 독립적으로 인지 및 절단될 수 있다. 특정 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 SapI 또는 LguI 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다. LguI는 동일한 인지 및 절단 특이성을 갖는 SapI의 아이소스키조머(isoschizomer)이다.
몇몇 실시예에서, 본원에서 제공된 엔트리 벡터(entry vector)는 또한, 벡터 (예를 들어, 복제의 원점(origin))의 복제, 유지 또는 통합의 몇몇 기능을 일반적으로 갖는 하나 이상의 핵산 서열들 뿐만 아니라 선별표지(selectable marker)를 포함한다. 복제 원점(origin)들은 다중 결합의 원점(origin)-결합 단백질에 의해 인지되고 원점(origin) 부위에서 DNA 복제 효소를 결합하는데 중요한 역할을 하는 다수의 짧은 반복 서열들을 포함하는 특유의 폴리뉴클레오타이드들이다. 본원에서 제공된 엔트리 벡터 및 집합 벡터에서의 사용을 위한 복제의 적당한 원점(origin)들은, 그러나 이에 제한되지 않는, E. coli oriC, colEl 플라즈미드 원점(origin), 2 μ 및 ARS (둘다 효모 계통에 유용함), sfl, SV40 EBV oriP (포유동물 계통에 유용함), 또는 pSClOl에서 발견되는 것들을 포함한다. 선별표지(selectable marker)는, 선별표지(selectable marker)를 포함하는 벡터를 사용하여 성공적으로 형질 변환되고 표지를 발현하는 세포의 성장을 위하거나, 세포의 성장에 대항하기 위하여 선택되는 수단을 제공하기 때문에, 벡터 내에서 유용한 성분이 될 수 있다.
몇몇 실시예에서, 임의의 벡터는 본원에 제공된 바와 같은 엔트리 벡터(entry vector)를 구성하는데 사용될 수 있다. 특히, 업계에 알려진 벡터들과 상업적으로 이용가능한 벡터들 (및 이의 변종 또는 유도체)은, 본원에서 제공된 방법에서의 사용을 위한, 제한 부위 RA, 선택적으로 프라이머 결합 절편 PA 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 선택적으로 프라이머 결합 절편 PB 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하기 위하여 조작될 수 있다. 그러한 벡터들은, 예를 들어, Vector Laboratories Inc., InVitrogen, Promega, Novagen, NEB, Clontech, Boehringer Mannheim, Pharmacia, EpiCenter, OriGenes Technologies Inc., Stratagene, Perkin Elmer, Pharmingen, Life Technologies, Inc. 및 Research Genetics로부터 얻을 수 있다. 특별히 관심있는 벡터들의 일반적인 계통은 원핵 및/또는 진핵 클로닝 벡터, 발현 벡터, 융합 벡터, 투-하이브리브(two-hybrid) 또는 역 투-하이브리브(reverse two-hybrid) 벡터, 서로 다른 호스트에서의 사용을 위한 셔틀(shuttle) 벡터, 돌연변이유발(mutagenesis) 벡터, 전사 벡터, 거대한 삽입물을 수용하기 위한 벡터, 기타 등등을 포함한다. 관심있는 기타 벡터들은 바이러스성 오리진 벡터(origin vector) (M 13 벡터, 박테리아 파지(phage) λ 벡터, 아데노바이러스 벡터 및 레트로바이러스 벡터), 많고, 적고, 조정가능한 복제 개수 벡터, 단일 호스트 (PACYC184 및 pBR322)와 진핵 에피솜(episomal) 복제 벡터 (pCDM8)에서의 조합에 사용되는 호환가능한 레플리콘(replicon)을 갖는 벡터를 포함한다.
특정한 실시예에서, 본원에서 제공된 방법에 따른 사용을 위한 엔트리 벡터(entry vector)는 서열번호 207 내지 221의 뉴클레오타이드 서열을 갖는 pRYSE 벡터이다. pRYSE 벡터의 도식은 도 4에 나타냈으며 pRYSE 벡터의 제조는 하기 실시예 1에 제시하였다.
6 집합 벡터
다른 측면에서, 본 발명은 벡터, 예를 들어, 하나 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들에 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들을 삽입한 집합체에 사용될 수 있는, 집합 벡터를 제공한다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는 선별표지(selectable marker), 복제의 원점(origin) 및 어닐링될 수 있는 링커 서열, 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍의 측면에 배치된 DNA 절편, 또는 한 쌍의 제한 부위의 측면에 배치된, 어닐링될 수 있는 링커 서열/프라이머 결합 절편 쌍의 측면에 배치된 DNA 절편을 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 제한 부위는 집합 반응(assembly reaction) 동안, 집합 벡터 골격으로부터 폴리뉴클레오타이드 성분의 절단을 촉진시키는 역할을 할 수 있다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D 및 제한 부위 RB를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB을 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다.
몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-D-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-D-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-D-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-PA-D-LB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 몇몇 실시예에서, 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB 및 제한 부위 RB (예를 들어, 5'-RA-LA-D-PB-RB-3')를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드이다. 예시적인 집합 벡터들은 도 1b 및 도 2에 나타냈다.
몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA와 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 바람직한 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA와 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 동일하지 않다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 또는 LB의 핵산 서열은 적어도 24개의 뉴클레오타이드이며 적어도 60℃의 Tm를 갖는다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA와 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다.
몇몇 실시예에서, RA와 RB는 서열에서 동일하지 않다. 몇몇 실시예에서, RA와 RB는 동일한 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, RA와 RB는 서열에서 동일하지 않다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 엇갈린(staggered) 말단, 예를 들어, 5' 또는 3' 오버행(overhang)을 갖는 말단을 형성하는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 다른 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 평활 말단(blunt end)을 형성하는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다.
제한 부위들 RA 및 RB가 업계에 알려진 임의의 제한 부위가 될 수 있다고 하더라도, 하나 이상의 생물의 DNA (예를 들어, cDNA)에서 다소 드문 제한 부위 (예를 들어, 드문 커터(cutter))는 특히 유용하다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 인간 DNA의 상대적으로 드문 제한 부위를 갖는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 마우스 DNA의 상대적으로 드문 제한 부위를 갖는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 효모 DNA, 예를 들어, Saccharomyces cerevisiae, Pichia pastoris, Kluyveromyces lactis, Arxula adeninivorans, 또는 Hansenula polymorpha의 DNA에서, 상대적으로 드문 제한 부위를 갖는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 박테리아의 DNA, 예를 들어, Escherichia coli 또는 Bacillus subtilis의 DNA에서 다소 많지 않은 제한 부위를 갖는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다.
몇몇 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다. 적당한 IIS형 제한 엔도뉴클레아제의 예시적인 예는, 그러나 이에 제한되지 않는, MssI, NruI (Bsp68I, MluB2I, Sbo13I, SpoI), SnaBI (BstSNI, Ecol05I), SrfI 및 SwaI (BstRZ246I, BstSWI, MspSWI, SmiI), HpaI, HincII, PshAI, OliI, AluI, Alw26I, BalI, DraI, DpnI, EcoR47III, EcoRCRI, EcoRV, FokI, HaeIII, HincII, MboI, MspAlI, NaeI, RsaI, PvuII, ScaI, SmaI, SspI, StuI, XmnI, EcaBC3I, SciI, HincII, DraI, BsaBI, Cac8I, Hpy8I, MlyI, PshAI, SspD51, BfrBI, BsaAI, BsrBI, BtrI, CdiI, CviJI, CviRI, Eco47III, Eco78I, EcoICRI, FnuDII, FspAI, HaeI, LpnI, MlyI, MslI, MstI, NaeI, NlaIV, NruI, NspBII, OliI, PmaCI, PshAI, PsiI, SrfI, StuI, XcaI, XmnI, ZraI, 또는 이의 아이소스키조머(isoschizomer)를 포함한다. 특정 실시예에서, 제한 부위들 RA 및 RB는 SapI 또는 LguI 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있다.
바람직하게, 집합 벡터의 DNA 절편은 집합 벡터 내의 임의의 제한 부위 RA 및 RB를 절단할 수 있는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있는 핵산 서열을 포함하지 않는다. 이것은, 폴리뉴클레오타이드 성분이 집합 벡터 골격으로부터 절단되는 동안, 집합 반응(assembly reaction)의 첫번째 단계 동안 DNA 절편이 손상되지 않는다는 것을 보증한다. 특정한 실시예에서, DNA 절편은 SapI/LguI 부위를 포함하지 않으며 RA와 RB는 SapI 또는 LguI에 의해 절단될 수 있다. 부위-특이적(site-directed) 돌연변이유발(mutagenesis) (참조 : Carter, Bi °C h em. J. 237:1-7 (1986); Zoller and Smith, Methods Enzymol. 154:329-50 (1987)), 카세트 돌연변이 유발(cassette mutagenesis), 제한 선택돌연변이유발(mutagenesis) (Wells et al, Gene 34:315-323 (1985)), 올리고뉴클레오타이드-매개 (부위-특이적) 돌연변이유발(mutagenesis), PCR 돌연변이유발(mutagenesis), 기타 알려진 기술들은 엔트리 벡터(entry vector)에 DNA 절편이 연결되기 전 또는 후에 DNA 절편 내에 임의의 상기 서열을 개질하기 위하여 실시될 수 있다.
몇몇 실시예에서, 본원에서 제공된 집합 벡터는 벡터의 복제, 유지, 또는 통합의 몇몇 기능 (예를 들어, 복제의 원점(origin)) 뿐만 아니라 하나 이상의 선별표지(selectable marker)를 일반적으로 갖는 하나 이상의 핵산 서열들을 또한 포함한다. 복제 원점(origin)은 다중 결합의 원점(origin)-결합 단백질에 의해 인지되고 원점(origin) 부위에서 DNA 복제 효소를 결합시키는데 중요한 역할을 하는 다수의 짧은 반복 서열들을 포함하는 특이한 폴리뉴클레오타이드이다. 본원에서 제공된 엔트리 벡터 및 집합 벡터에서의 사용을 위한 복제의 적당한 원점(origin)은, 그러나 이에 제한되지 않는, E. coli oriC, colEl 플라즈미드 원점(origin), 2 μ와 ARS (둘 다 효모 계통에서 유용함), sfl, SV40 EBV oriP (포유동물 계통에서 유용함), 또는 pSClOl에서 발견되는 것들을 포함한다. 선별표지(selectable marker)를 포함하는 벡터를 사용하여 성공적으로 형질변환되고 상기 표지를 발현하는 세포의 성장을 위하거나, 세포의 성장에 대항하기 위하여 선택되는 수단을 제공하기 때문에, 선별표지(selectable marker)는 벡터에서 유용한 성분이 될 수 있다.
몇몇 실시예에서, 임의의 벡터는 본원에서 제공된 바와 같은 집합 벡터를 구성하는데 사용될 수 있다. 특히, 업계에 알려진 벡터들과 상업적으로 이용가능한 벡터들 (및 이의 변종 또는 유도체)은, 본원에서 제공된 방법들에 사용하기 위한, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하도록 조작될 수 있다. 그러한 벡터들은, 예를 들어, Vector Laboratories Inc., InVitrogen, Promega, Novagen, NEB, Clontech, Boehringer Mannheim, Pharmacia, EpiCenter, OriGenes Technologies Inc., Stratagene, Perkin Elmer, Pharmingen, Life Technologies, Inc. 및 Research Genetics로부터 얻을 수 있다. 특히 관심있는 벡터들의 일반적인 계열은 원핵 및/또는 진핵 클로닝 벡터, 발현 벡터, 융합 벡터, 투-하이브리브(two-hybrid) 또는 역 투-하이브리브(reverse two-hybrid) 벡터, 서로 다른 호스트에서의 사용을 위한 셔틀 벡터, 돌연변이유발(mutagenesis) 벡터, 전사 벡터, 거대한 삽입물을 수용하기 위한 벡터, 기타 등등을 포함한다. 기타 관심있는 벡터는 바이러스의 오리진 벡터(origin vector) (M13 벡터, 박테리아 파지(phage) λ 벡터, 아데노바이러스 벡터 및 레트로바이러스 벡터), 많고, 적고, 조정가능한 복제 개수 벡터, 단일 호스트 (PACYC 184 및 pBR322)와 진핵 에피솜(episomal) 복제 벡터 (pCDM8)에서 조합에 사용하기 위한 호환가능한 레플리콘(replicon)을 갖는 벡터를 포함한다.
집합 벡터는 엔트리 벡터(entry vector)로부터 제조될 수 있다. 엔트리 벡터(entry vector)로부터 집합 벡터를 제조하기 위하여, 엔트리 벡터(entry vector)는 벡터를 선형으로 만들어서 RY와 RZ를 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 분해될 수 있으므로, 상기 엔트리 벡터는 DNA 절편을 수용할 수 있다. 본 발명의 집합 벡터를 형성하기 위하여 표준 클로닝 기술을 사용하여, DNA 절편은 RY와 RZ 부위에 연결될 수 있다. 예를 들어, DNA 절편은, 화학적 합성에 의하거나, cDNA 클로닝에 의하거나, 또는 원하는 세포로부터 정제된, 게놈 DNA, 또는 이의 절편의 클로닝에 의하거나, PCR 증폭과 클로닝에 의해, 복제된 DNA (예를 들어, DNA "라이브러리")로부터 업계에 알려진 표준 과정에 의해 수득될 수 있다. 예를 들어, Sambrook et al ., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 3d. ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York (2001); Glover, D.M. (ed.), DNA Cloning : A Practical Approach, 2d. ed., MRL Press, Ltd., Oxford, U.K. (1995)를 참조한다.
집합 벡터는 어닐링될 수 있는 링커 서열, 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍, 또는 DNA 절편의 부위에 측면으로 부착된 어닐링될 수 있는 링커 서열/프라이머 결합 절편 쌍을 포함하지 않는 다른 벡터로부터 또한 제조될 수 있다. 상기 벡터로부터 집합 벡터를 제조하기 위하여, 벡터는 DNA 절편의 삽입에 적당한 부위, 예를 들어, 다수의 클로닝 부위에서 벡터를 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 분해될 수 있으며, 이로써 벡터를 선형으로 만들어서 상기 벡터는 DNA 절편을 수용할 수 있다. 삽입되어야 하는 DNA 절편은, 예를 들어, 클로닝, 화학적 합성, 또는 PCR 증폭과 같이, 업계에서 알려진 표준 과정에 의해 수득될 수 있다. DNA 절편은 어닐링될 수 있는 링커 서열, 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열/프라이머 결합 절편 쌍의 측면에 배치된 DNA 절편을 포함한다. 따라서, 몇몇 실시예에서, DNA 절편은, 5'에서 3' 방향으로, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 또는 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 또는 프라이머 결합 절편 PB (예를 들어, 5'-LA-D-LB-3' 또는 5'-PA-D-LB-3' 또는 5'-LA-D-PB-3')를 포함한다. 몇몇 실시예에서, DNA 절편은, 5'에서 3'의 방향으로, DNA 절편 D 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 또는 프라이머 결합 절편 PB (예를 들어, 5'-D-LB-3' 또는 5'-D-PB-3')를 포함한다. 몇몇 실시예에서, DNA 절편은, 5'에서 3'의 방향으로, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 또는 프라이머 결합 절편 PA 및 DNA 절편 D (예를 들어, 5'-LA-D-3' 또는 5'-PA-D-3')를 포함한다. DNA 절편은 어닐링될 수 있는 링커 서열, 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열/프라이머 결합 절편 쌍을 측면에 배치하는 한쌍의 제한 부위를 포함하며, 그 부위에서 제한 엔도뉴클레아제에 의한 절단은, DNA 절편이 삽입되어야 하는 벡터를 선형으로 만들어서 형성된 말단과 호환할 수 있는 말단을 형성한다. 선택적으로, DNA 절편이 형성될 수 있어서, 상기 DNA 절편은 상기 호환가능한 말단을 포함하며, 호환가능한 말단을 형성하기 위하여 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 추가적인 분해를 요구하지 않는다. 집합 벡터를 형성하기 위하여 선형으로 만들어진 벡터를 사용하여 DNA 절편의 연결함에 있어서, 호환가능한 말단을 형성하는데 사용된 제한 부위는 집합 벡터의 제한 부위 RA 및 RB로서 역할을 하기 위하여 보존될 수 있다. 선택적으로, 상기 연결은 원래의 제한 부위를 제거할 수 있지만, 추가적인 제한 부위가 집합 벡터의 제한 부위 RA 및 RB로서 역할을 할 수 있는 선형으로 만들어진 벡터에 존재할 수 있다.
엔트리 벡터(entry vector) (예를 들어, pRYSE 벡터) 또는 다른 벡터 (예를 들어, pMULE 벡터)로부터 집합 벡터를 형성하는 예시적인 방법은 하기 실시예 6에 제시되었다.
7 어닐링될 수 있는 링커 서열
다른 측면에서, 본 발명은 엔트리 벡터(entry vector)와 집합 벡터 내에 위치한 DNA 절편을 측면에 배치하는 어닐링될 수 있는 링커 서열을 제공한다. 어닐링될 수 있는 링커 서열은 집합 반응(assembly reaction)에서 인접한 폴리뉴클레오타이드 성분들 사이에 겹치는 서열을 제공하여, 집합체를 위한 폴리뉴클레오타이드 성분을 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 준비시킨다. 따라서, 바람직한 실시예에서, 엔트리 벡터 및 집합 벡터의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 및 LB는, 집합 반응(assembly reaction) 동안에 상보적인 어닐링될 수 있는 링커 서열에 효율적이고 정확한 프라이밍을 제공하도록 최적화된다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열의 길이는 상보적인 어닐링될 수 있는 링커 서열과 알맞는 특이성을 제공할 수 있을 정도로 길지만, 집합 반응(assembly reaction)의 어닐링 온도에서 상보적인 어닐링될 수 있는 링커 서열에 용이하게 어닐링 할 수 있을 정도로 짧다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열의 길이는 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)이 상보적 서열(complement) 어닐링될 수 있는 링커 서열을 갖게 할 정도로 충분히 길다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 약 5개, 10개, 15개, 20개, 25개, 30개, 35개, 40개, 45개, 50개, 55개, 60개, 65개, 70개, 75개, 또는 80개의 뉴클레오타이드 길이다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 10개, 12개, 14개, 16개, 18개, 20개, 22개, 24개, 26개, 28개, 또는 30개의 뉴클레오타이드 길이다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 30개, 40개, 50개, 60개, 70개, 80개, 90개, 100개, 500개, 1000개, 5000개, 또는 10,000개의 뉴클레오타이드 길이를 초과한다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker)는 적어도 18개의 뉴클레오타이드 길이이며 3으로 나뉘어질 수 있는 갯수의 뉴클레오타이드 길이라서, DNA 절편을 코딩하기 위하여 연결될 때, 링커의 연속 판독(read-through) 전사를 촉진할 수 있다. 특정한 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker)는 18개, 21개, 24개, 27개, 30개, 33개, 36개, 39개, 42개, 45개, 48개, 51개, 54개, 57개 또는 60개 뉴클레오타이드 길이다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 다소 높은 융점 (Tm), 예를 들어, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 두 가닥의(duplex) 서열의 1/2이 단일 가닥으로 분리될 온도를 갖는다. 어닐링될 수 있는 링커의 Tm은 최근접 이웃 알고리즘(nearest neighbor algorithm)을 이용하여 SantaLucia, PNAS, 95:-1460-1465 (1998)에 따라 계산될 수 있다. 다소 높은 Tm은 집합 반응(assembly reaction) 동안 더욱 특이한 프라이밍을 제공할 수 있다. 다소 높은 Tm은 PCR의 어닐링 및 신장 단계의 조합을 허용하거나, PCR의 어닐링 및 신장 단계 사이의 온도를 조절하는데 필요한 양의 시간을 감소시켜서, 본 발명의 집합 방법을 사용하는데 있어서 효율성을 더 높일 수 있다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 두 가닥의(duplex) 서열은 약 60℃ 내지 80℃의 Tm를 갖는다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 두 가닥의(duplex) 서열은 약 65℃ 내지 75℃의 Tm를 갖는다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 두 가닥의(duplex) 서열은 50℃, 55℃, 60℃, 65℃, 70℃, 75℃, 80℃, 85℃, 또는 90℃를 초과하는 Tm를 갖는다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열들은, DNA 수준에서, 또는 RNA 수준에서 또는 DNA와 RNA 수준 모두에서, 본원에 제시된 방법의 조건 하에서, 분자내 (예를 들어, 동일한 분자 내) 상호작용을 통하여 형성된 인지가능한 2차 구조 (예를 들어, 헤어핀, 셀프-다이머(self-dimer))를 형성하지 않는다. DNA에서 2차 구조의 존재는 집합 반응(assembly reaction)의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 적게 생산하거나 전혀 생산하지 않을 수 있다. RNA에서 2차 구조의 존재는 감소된 번역 효율성을 유도할 수 있으며, 이것은, 프로모터와 단백질 코딩서열을 포함하는 폴리뉴클레오타이드 성분들을 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드에 결합시키기 위하여 어닐링될 수 있는 링커 서열이 사용될 때 특히 중요하며, 상기 어닐링될 수 있는 링커 서열은 프로모터와 단백질 코딩서열 사이에 위치한다. 따라서, 본 발명의 집합 방법에 유용한 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 2차 구조의 RNA 및/또는 DNA 구조를 형성하지 않도록 고안된다. 2차 구조의 RNA 또는 DNA 구조를 형성하기 위한 어닐링될 수 있는 링커 서열의 능력은, 예를 들어, IDT Oligo Analyzer (Integrated DNA Technologies, Coralville, IA), mFold (Zuker 2003 Nucleic acids Res. 31 (13), 3406-15), 또는 RNAfold (Hofacker & Stadler (2006) Bioinformatics 22 (10): 1172-6)와 같은 소프트웨어 도구들을 사용하여 측정될 수 있다. 일반적으로, 이러한 도구들은 선형 상태에서 접힌 상태로의 서열로 전이하는데 필요한 깁스 자유 에너지 (ΔG)를 계산한다. 더 큰 ΔG 일수록, 서열이 2차 구조를 덜 형성할 것이다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 선형 상태에서접혀진 상태로의 전이를 위하여 더 큰 ΔG 값을 갖도록 고안된다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 Saccharomyces cerevisiae 게놈에서 많이 발현된 유전자의 코딩 서열의 즉각적인 업스트림에 존재하는 n-염기의 선형 상태에서 접혀진 상태로의 전이에 대한 ΔG 값과 동일하거나 그보다 큰, 선형 상태에서 접혀진 상태로의 전이에 대한 ΔG 값을 갖도록 고안되며, 상기 n은 어닐링될 수 있는 링커 서열에서 수많은 염기에 대응되는 정수를 나타낸다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열을 36개의 염기 길이이며, 선형 상태에서 접혀진 상태로의 전이에 대하여 -1 이상의 ΔG 값을 갖는다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 의도하지 않은 분자간 상호작용 (예를 들어, 서로 다른 분자들 사이)를 피하기 위하여 또한 고안된다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은, 본원에서 제공된 방법에 의해 폴리뉴클레오타이드 집합체에 요구된, 어닐링될 수 있는 링커 서열 (예를 들어, 벡터 골격 서열)을 포함하는 집합 벡터 내 임의의 기타 서열 및/또는, 상보적인 어닐링될 수 있는 링커 서열들로부터 떨어진 집합체 조성물의 다른 집합 벡터 내의 임의의 기타 서열과 실질적으로 어닐링하지 않는다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 본원에서 제공된 집합체 조성물의 집합 벡터 내 기타 어닐링될 수 있는 링커 서열들과 실질적으로 어닐링하지 않는다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 높은 G-C 함량, 예를 들어, 어닐링될 수 있는 링커 서열 내 총 염기 개수의 백분율로서 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 내 많은 구아닌과 시토신 뉴클레오타이드를 갖는다. 높은 G-C 함량은 일반적으로 높은 Tm을 제공하기 때문에, 높은 G-C 함량을 갖는 어닐링될 수 있는 링커 서열들은 일반적으로 본 발명의 방법에 유용하며, 그 결과, 이것은 집합 반응(assembly reaction) 동안 더욱 특이한 프라이밍을 제공할 수 있으며, SOE/PCR의 어닐링 및 신장 단계의 조합을 허용함으로써 시간과 공정의 절감을 제공할 수 있다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열의 G-C 함량은 약 20 내지 80%이다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열의 G-C 함량은 약 40 내지 60%이다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열의 G-C 함량은 약 40, 45, 50, 55, 60, 또는 70%이다. 특정한 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 70%를 초과하는 G-C 함량을 갖는다. 높은 G-C 함량을 갖는 어닐링될 수 있는 링커 서열들의 예시적인 실시예는, 인지가능한 2차 DNA 구조를 형성하지 않으며 70℃ 이상의 Tm를 갖거나, 서열번호 1 내지 8이다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 높은 A-T 함량, 예를 들어, 어닐링될 수 있는 링커 서열 내 총 염기 개수의 백분율로서 어닐링될 수 있는 링커 서열 내 많은 아데닌 및 티민 뉴클레오타이드를 갖는다. 높은 A-T 함량은 실질적인 2차 구조를 형성하는 어닐링될 수 있는 링커 서열의 감소된 성향을 제공할 수 있으며, 이는, 프로모터와 단백질 코딩서열을 포함하는 폴리뉴클레오타이드를 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드에 결합시키기 위하여, 프로모터와 단백질 코딩 사이에 위치한, 어닐링될 수 있는 링커 서열이 사용될 때 특히 중요할 수 있다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열의 A-T 함량은 약 20 내지 80%이다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열의 A-T 함량은 약 40 내지 60%이다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열의 A-T 함량은 약 30, 35, 40, 45, 50, 55, 또는 60%이다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 30%를 초과하는 A-T 함량을 갖는다. 몇몇 실시예에서, 3'-어닐링될 수 있는 링커 서열의 최대 26개의 염기의 서열은 공통 서열 5'-ANNNNNNNNANNNAANTANNTTNANA-3'을 가지며, 상기 A는 아데닌을 나타내며, N은 임의의 뉴클레오타이드를 나타내고 T는 티민을 나타낸다. 이러한 공통 서열은 Saccharomyces cerevisiae의 게놈에서 높게 발현된 유전자의 시작 코돈의 업스트림에 존재하는 26개의 염기에서 종종 발견된다. 이러한 공통 서열을 포함하는 어닐링될 수 있는 링커 서열의 예시적인 실시예는, 다소 높은 A-T 함량을 가지며, 인지가능한 2차 구조의 RNA 또는 DNA 구조를 형성하지 않으며, 65℃ 이상의 Tm를 가지며, 서열번호 9 내지 23이다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 하나 이상의 제한 부위를 포함한다. 제한 부위의 어닐링될 수 있는 링커 서열로의 통합은, 엔트리 벡터(entry vector) 또는 집합 벡터 내 제한 부위 RA 및 RB를 유지하는 반면, 엔트리 벡터 또는 집합 벡터로부터 DNA 절편을 절단하게 한다. 어닐링될 수 있는 링커 서열 내 제한 부위은 DNA 절편(segment)의 기타 엔트리 벡터 또는 집합 벡터로의 방향성 서브클로닝(directional subcloning)을 또한 촉진시킨다. 이러한 특성은, 예를 들어, 하기에 제시된 서로 다른 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍을 포함하는 집합 벡터의 라이브러리를 형성하기 위하여, 동일한 DNA 절편을 포함하지만 서로 다른 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 또는 프라이머 결합 절편/어닐링될 수 있는 링커 서열 상을 갖는 집합 벡터의 효율적인 구조를 촉진시킨다. 이러한 특성은 또한, 재-증폭에 대한 필요성과 DNA 절편을 포함하는 추가적 집합 벡터를 형성하기 위한 서열 DNA 절편에 대한 필요성을 제거할 수 있다. 따라서, 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 특유한 제한 부위를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위는 7개의 염기쌍 제한 부위이며, 예를 들어, 7개의 염기쌍 뉴클레오타이드 서열을 인지하는 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위는 8개의 염기쌍 제한 부위를 포함한다. 특정한 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열 내 제한 부위는 MreI, FseI, SbfI, AsiSI, NotI, AscI, 또는 BbvCI에 의해 인지 및 절단될 수 있다.
몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은, 일단 코딩 DNA 절편에 연결된 링커를 연속 판독(read-through) 전사할 수 있게 하는 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 5'에서 3'의 방향으로, 그리고 3'에서 5'의 방향으로 연속 판독(read-through) 전사를 하게 한다. 이러한 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열의 길이는, 바람직하게, 3에 의해 나누어질 수 있는 개수의 뉴클레오타이드이다.
특정한 실시예에서, 어닐링될 수 있는 링커 서열은 Escherichia coli (E. coli) 또는 Saccharomyces cerevisiae (S. cerevisiae)에서 드물게 사용되는 코돈을 포함하지 않는다. E. coli 또는 S. cerevisiae의 이형(heterologous) 유전자의 효율적인 발현은, 드물게 사용된 코돈의 존재와, 드물게 사용된 코돈이 더욱 자주 사용된 코돈으로 대체될 때 종종 상승하는 이형(heterologous) 단백질의 발현 정도에 의해 역으로 영향을 받을 수 있다. 예를 들어, Williams et al ., Nucleic acids Res. 16: 10453-10467, 1988 및 Hoog et al., Gene 43: 13-21, 1986를 참조한다. 따라서, 연속 판독(read-through) 서열을 포함하는 어닐링될 수 있는 링커 서열은, 바람직하게 E. coli 또는 S. cerevisiae에서 드물게 사용된 코돈을 포함하지 않아서, 어닐링될 수 있는 링커 서열을 포함하는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드에 의해 코딩된 단백질의 효율적인 발현을 가능하게 한다.
몇몇 실시예에서, 일련의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 의도된 호스트 생물에서 발견되지 않는 특이한 서열이다. 몇몇 실시예에서, 일련의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 E. coli에서 발견되지 않는 특이한 서열이다. 다른 실시예에서, 일련의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 S. cerevisiase에서 발견되지 않는 특이한 서열이다.
몇몇 실시예에서, 적당한 어닐링될 수 있는 링커 서열은 테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드에서 식별된다. 테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 테스트되어야 하는 어닐링될 수 있는 링커 서열과 어닐링될 수 있는 링커 서열의 테스트를 허용하는 추가적 성분들을 포함한다. 예를 들어, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 내 프로모터의 조절 하에 있도록, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker)가 프로모터 서열을 포함하는 첫번째 폴리뉴클레오타이드 성분;과 단백질 코딩서열을 포함하는 두번째 폴리뉴클레오타이드 성분을 결합시키는데 적당한지 테스트하기 위하여, 테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는, 5'에서 3'의 방향으로, 프라이머 결합 절편 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열을 포함하는 첫번째 폴리뉴클레오타이드 성분; 프로모터와 테스트되어야 하는 어닐링될 수 있는 링커 서열을 포함하는 DNA 절편; 및 5'에서 3'의 방향으로, 테스트 되어야 하는 어닐링될 수 있는 링커 서열, 리포터 유전자(reporter gene)를 코딩하는 DNA 절편 (예를 들어, 녹색 형광 단백질 (GFP)) 및 프라이머 결합 절편 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열을 포함하는 두번째 폴리뉴클레오타이드 성분;으로부터 집합될 수 있다. 테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 리포터 유전자(reporter gene)의 발현의 효율성을 위하여 생체 내 또는 생체 밖에서 테스트될 수 있다. 유사한 테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은, 증폭자(enhancer), 종결자(terminator), 폴리-A 꼬리, 핵 위치 신호(nuclear localization signal), mRNA 안정 신호(mRNA stabilization signal), 선별표지(selectable marker), 에피토프 태그(epitope tag) 코딩 서열, 분해 신호(degradation signal), 기타 등등과 같은 기타 성분들을 포함하는 DNA 절편을 포함하는 폴리뉴클레오타이드 성분들을 결합시키는데 어닐링될 수 있는 링커 서열의 적절성을 테스트하기 위하여 집합될 수 있다. 테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 테스트를 가능하게 하는 추가적인 폴리뉴클레오타이드 성분들, 예를 들어, 생체 내 테스트를 위하여 숙주 세포로의 테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 도입과 양성 형질변환체의 선택을 가능하게 하는 게놈 타겟팅(targeting) 서열과 선별표지(selectable marker)를 포함할 수 있다.
표 1은 Tm, 제한 부위 및 서열번호(SEQ ID NO) 1 내지 23에 상응되는 예시적인 어닐링될 수 있는 링커 서열의 연속 판독(read-through) 아미노산을 나타낸다.
표 1 - 어닐링될 수 있는 링커 서열의 서열및 특성 | ||||||||
어닐링할 수 있는 링커 서열 |
서열 이름 |
길이 (염기) |
% G-C |
% A-T |
융점(Tm) |
제한 효소 부위 |
연속판독(read-through) 아미노산 | |
Fwd | Rev | |||||||
SEQ ID NO: 1 | RYSE 1 | 24 | 79.2 | 20.8 | 72.4 | |||
SEQ ID NO: 2 | RYSE 2 | 24 | 75.0 | 25.0 | 71.4 | MreI | ||
SEQ ID NO: 3 | RYSE 3 | 24 | 75.0 | 25.0 | 73.7 | FseI | TAGQARGD | |
SEQ ID NO: 4 | RYSE 4 | 24 | 70.8 | 29.2 | 71.5 | SbfI | NLQAASAD | IGARGLQV |
SEQ ID NO: 5 | RYSE 5 | 24 | 70.8 | 29.2 | 71.2 | AsiSI | NAIADAAD | IGGVGDRV |
SEQ ID NO: 6 | RYSE 6 | 24 | 70.8 | 29.2 | 70.9 | NotI | KAAAGEGD | ISLASGRL |
SEQ ID NO: 7 | RYSE 7 | 24 | 70.8 | 29.2 | 71.5 | AscI | KARHGRRD | |
SEQ ID NO: 8 | RYSE 8 | 24 | 75.0 | 25.0 | 70.7 | BbvCI | ||
SEQ ID NO: 9 | RYSE 9 | 36 | 50.0 | 50.0 | 67.4 | |||
SEQ ID NO: 10 | RYSE 10 | 36 | 52.8 | 47.2 | 67.7 | |||
SEQ ID NO: 11 | RYSE 11 | 36 | 58.3 | 41.7 | 69.2 | |||
SEQ ID NO: 12 | RYSE 12 | 36 | 50.0 | 50.0 | 67.4 | |||
SEQ ID NO: 13 | RYSE 13 | 36 | 58.3 | 41.7 | 69.4 | |||
SEQ ID NO: 14 | RYSE 14 | 36 | 52.8 | 47.2 | 67.4 | |||
SEQ ID NO: 15 | RYSE 15 | 36 | 52.8 | 47.2 | 67.8 | |||
SEQ ID NO: 16 | RYSE 16 | 36 | 52.8 | 47.2 | 67.8 | |||
SEQ ID NO: 17 | RYSE 17 | 36 | 52.8 | 47.2 | 68.4 | |||
SEQ ID NO: 18 | RYSE 18 | 36 | 50.0 | 50.0 | 67.8 | |||
SEQ ID NO: 19 | RYSE 19 | 36 | 52.8 | 47.2 | 68.1 | |||
SEQ ID NO: 20 | RYSE 20 | 36 | 55.6 | 44.4 | 68.3 | |||
SEQ ID NO: 21 | RYSE 21 | 36 | 55.6 | 44.4 | 67.9 | |||
SEQ ID NO: 22 | RYSE 22 | 36 | 52.8 | 47.2 | 67.4 | |||
SEQ ID NO: 23 | RYSE 23 | 36 | 55.6 | 44.4 | 68.8 |
8 라이브러리
다른 측면에서, 본 발명은 수많은 집합 벡터들을 포함하는 라이버러리를 제공한다. 라이브러리는 원핵세포 또는 진핵세포에서 기능적인 하나 이상의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 수많은 폴리뉴클레오타이드 성분들의 효율적인 집합을 촉진시키는 기능을 할 수 있어서, 따라서, 시간을 소모하는 제한 엔도뉴클레아제와 연결효소(ligase)에 기초한 클로닝 기술에 대한 필요성 없이, 특이한 생물, 예를 들면, 박테리아 또는 효모의 재조합 종(strain)의 형성을 촉진한다. 본원에서 제공된 집합 방법 및 조성물은, 발현 구성 내에서, 기능적 DNA 단위, 예를 들어, 프로모터, 증폭자(enhancer), 복제 원점(origin), 등등의 효율적인 대체 또는 도입을 촉진할 수 있어서, 호스트 생물 내 발현 구성의 복제, 및/또는 그로부터의 발현의 효율적인 최적화를 제공할 수 있다.
[00154] 라이브러리는 단일한 조성물 또는 컨테이너(container), 예를 들어, 본원에서 제공된 집합 방법을 실시하는데 적당한 조성물 또는 컨테이너(container) 내에서 집합된 수많은 집합 벡터들을 포함할 수 있다. 선택적으로, 라이브러리는 동일한 조성물 또는 컨테이너(container) 내에 집합되지 않은 수많은 집합 벡터들을 포함할 수 있다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리는 적어도 3개, 적어도 6개, 적어도 10개, 적어도 20개, 적어도 50개, 또는 50개를 초과하는 집합 벡터들을 포함하며, 각각의 벡터는 DNA 절편을 포함한다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 수많은 집합 벡터들을 포함하며, 상기 각각의 집합 벡터들은, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 두번째 제한 부위 RB를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리는 수많은 집합 벡터들을 포함하며, 각각의 집합 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA 또는 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D 및 두번째 제한 부위 RB를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리는 수많은 집합 벡터들을 포함하며, 상기 각각의 집합 벡터들은, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 또는 프라이머 결합 절편 PB 및 두번째 제한 부위 RB를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리의 각각의 집합 벡터 내의 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열/1차 결합 절편 쌍은 동일한 서열을 포함하지 않는다. 몇몇 실시예에서, 각각의 집합 벡터 내 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 및/또는 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 각각의 집합 벡터 내 프라이머 결합 절편 PA 또는 PB의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 하기의 각각의 벡터들 중 적어도 하나를 포함한다:
(a) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성되는 벡터;
(b) 5'에서 3' 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성되는 벡터; 및
(c) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D 및 제한 부위 RB0를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 하기의 각각의 벡터들 중 적어도 하나를 포함한다:
(a) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(b) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터; 및
(c) 5'에서 3' 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB 및 제한 부위 RB0를 포함하는 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터.
몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA와 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리 내 임의의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA와 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리 내 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 중 적어도 하나와 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 중 적어도 하나의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리 내 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA와 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 각각의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다.
몇몇 실시예에서, DNA 절편 D는 선별표지(selectable marker), 프로모터, 게놈 타겟팅(targeting) 서열, 에피토프 태그(epitope tag)를 코딩하는 핵산 서열, 관심있는 유전자를 코딩하는 핵산 서열, 종결 코돈을 코딩하는 핵산 서열 및 lacZ로 구성된 군으로부터 선택된 핵산 서열을 포함한다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 하기의 각각의 핵산 분자 중 적어도 하나를 포함한다:
(a) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 그룹 D0, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0로부터 선택된 임의의 DNA 절편을 포함하는, 첫번째 핵산 분자;
(b) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn을 포함하는, 중간 핵산 분자(n은 1부터 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(c) 각각, 원형이며, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, 그룹 Dm으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 제한 부위 RBm을 포함하는, 마지막 핵산 분자(m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타냄);
여기에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단과 결과물 선형 핵산 분자의 변성에서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며, 상기 p는 1부터 m까지의 정수를 나타내며, 상기 각각의 그룹 D0,... Dn,...및 Dm은 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성된다. 몇몇 실시예에서, 첫번째 핵산 분자는 그룹 D0으로부터 선택된 DNA 절편에 대해 5'에 위치한 프라이머 결합 절편 PA를 더 포함한다. 몇몇 실시예에서, 마지막 핵산 분자는 그룹 Dm으로부터 선택된 DNA 절편에 대해 3'에 위치한 프라이머 결합 절편 PB를 더 포함한다.
몇몇 실시예에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단과 결과물 선형 핵산 분자의 변성에서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은, 성분 조성물(component composition)에서, 다른 어닐링될 수 있는 링커 서열 대비 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp 또는 이들의 상보적 서열(complement)의 상보적 서열(complement)에 선택적으로 하이브리드될 수 있다. 몇몇 실시예에서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp과 서열에서 동일하다.
특정 실시예에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지는 동일한 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있어서 집합 벡터들로부터의 폴리뉴클레오타이드 성분들의 절단을 촉진할 수 있다. 몇몇 실시예에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지는 SapI 및 LguI 제한 엔도뉴클레아제들에 의해 절단될 수 있다.
몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA와 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 바람직한 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA와 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 동일하지 않다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리 내 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA와 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리 내 적어도 하나의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA와 적어도 하나의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리 내 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA와 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 조성물 내 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA의 핵산 서열은 다른 핵산 서열과 동일하지 않다. 몇몇 실시예에서, 조성물 내 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 다른 핵산 서열과 동일하지 않다.
특정 실시예에서, 라이브러리는 하기의 핵산 분자를 포함한다:
(a) 2개의 첫번째 핵산 분자로서, 상기 하나의 첫번째 핵산 분자는, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D01, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함하며, 상기 다른 첫번째 핵산 분자는, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D02, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함하며, 상기 DNA 절편 D01은 첫번째 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 코딩하며, 상기 DNA 절편 D02는 타겟 게놈 내 첫번째 게놈 타겟팅(targeting) 서열의 다운스트림에 위치한 두번째 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 코딩하며, 상기 DNA 절편 D02는 프라이머 결합 절편 PA와 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 대비 DNA 절편 D01에 대해 반대쪽 방향에 위치하며 ;
(b) 적어도 하나의 중간 핵산 분자로서, 상기 중간 핵산 분자는 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, DNA 절편 Dn, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn를 포함하며, 상기 n은 1부터 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타내며; 및
(c) 2개의 마지막 핵산 분자로서, 상기 하나의 마지막 핵산 분자는, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, DNA 절편 Dm1, 프라이머 결합 절편 PB 및 두번째 제한 부위 RBm을 포함하며, 상기 다른 마지막 핵산 분자는, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, DNA 절편 Dm2, 프라이머 결합 절편 PB 및 두번째 제한 부위 RBm를 포함하며, 상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타내며, 상기 DNA 절편 Dm1은 선별표지(selectable marker)의 첫번째 절편을 코딩하며, 상기 DNA 절편 Dm2는 선별표지(selectable marker)의 두번째 절편을 코딩하며, 상기 DNA 절편 Dm2는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm과 프라이머 결합 절편 PB에 대비 DNA 절편 Dm1에 대해 반대쪽 방향에 위치하며, 상기 DNA 절편 Dm1 또는 DNA 절편 Dm2는 기능적 선별표지(selectable marker)를 형성하지 않지만, DNA 절편(segment) Dm1과 Dm2의 상동 재조합(homologous recombination)에서 기능적 선별표지(selectable marker)가 형성되며;
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp와 동일하며, 상기 p는 1부터 m까지의 정수를 나타낸다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 수많은 집합 벡터들을 포함하며, 상기 각각의 집합 벡터는 동일한 어닐링될 수 있는 링커 서열, 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열/1차 결합 절편 쌍을 포함하지만, 상기 벡터의 각각의 DNA 절편 D와 서열에서 다르다.
다른 실시예에서, 라이브러리는 수많은 집합 벡터들을 포함하며, 상기 각각의 집합 벡터는 특유한 어닐링될 수 있는 링커 서열, 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열/프라이머 결합 절편 쌍의 측면에 배치된 동일한 DNA 절편 D를 포함한다. 그러한 라이브러리는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로의 집합된 다른 DNA 절편(segment) 대비 특정한 위치 또는 배향으로의 DNA 절편 D의 빠른 집합을 촉진하는 기능을 할 수 있다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리의 구성원은 공동의 구조적 또는 기능적 특성을 갖는 DNA 절편(segment)을 포함한다. 예를 들어, 라이브러리는 동일한 기능적 DNA 단위를 포함하는 수많은 집합 벡터들을 포함할 수 있다. 예시적인 기능적 DNA 단위들은, 그러나 이에 제한되지 않는, 단백질-코딩 서열, 리포터 유전자, 형광 표지, 프로모터, 증폭자(enhancer), 종결자(terminator), 인트론, 엑손, 폴리-A 꼬리, 다수의 클로닝 부위, 핵 위치 신호(nuclear localization signal), 핵 배출 신호(nuclear export signal), mRNA 안정 신호(mRNA stabilization signal), 선별표지(selectable marker), 통합 부위(integration loci), 에피토프 태그(epitope tag) 및 분해 신호(degradation signal)를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 라이브러리는 수많은 집합 벡터들을 포함하며, 상기 각각의 집합 벡터는 동일한 프로모터를 포함한다. 집합 벡터는 업계에 알려진 임의의 원핵 또는 진핵 프로모터 서열을 포함할 수 있다. 예시적인 진핵 프로모터는, 그러나 이에 제한되지 않는, 메탈로티오네인(metallothionein) 프로모터, 항시성 아데노바이러스 메이저 레이트 프로모터(constitutive major late promotor), 덱사메타손-유도성 MMTV 프로모터, SV40 프로모터, MRP pol III 프로모터, 항시성 MPSV 프로모터, RSV 프로모터, 테트라사이클린-유도성 CMV 프로모터 (예를 들어, 인간 조기발현(immediate-Early) CMV 프로모터) 및 항시성 CMV 프로모터를 포함한다. 특정한 실시예에서, 집합 벡터는 효모 프로모터 서열을 포함한다. 예시적인 효모 프로모터는, 그러나 이에 제한되지 않는, PGAL3, PGAL7, PCTR3, PMET3, PPGK1, PTDH1, PTDH3, PFBA1, PTEF1, PENO1, PENO2, PCYC1, PTDH2, PCUP1, PGAL80, PGAL2, PBNA6, PTMA29, PSBP1, PPUP3, PACS2, PTPO1, PRPT1, PAAT2, PAHP1, PSSE1, PTEF2, PNPL3, PPET9, PTUB2, POLE1, PCPR1, PIPPP1 및 PSOD1를 포함한다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 수많은 집합 벡터들을 포함하며, 상기 각각의 집합 벡터는 동일한 종결자(terminator) 서열을 포함한다. 집합 벡터는 업계에 알려진 임의의 원핵 또는 진핵 종결자(terminator) 서열을 포함할 수 있다. 특정한 실시예에서, 집합 벡터는 효모 종결자(terminator) 서열을 포함한다. 예시적인 효모 종결자(terminator)는, 그러나 이에 제한되지 않는, TADH1, TENO1, TENO2, TCYC1, TNDT80, TTDH3, TTDH1 및 TPGK1를 포함한다.
몇몇 실시예에서, 라이브러리는 수많은 집합 벡터들을 포함하며, 상기 각각의 집합 벡터는 동일한 선별표지(selectable marker)를 포함한다. 집합 벡터는 업계에 알려진 임의의 원핵 또는 진핵 선별표지(selectable marker)를 포함할 수 있다. 선별표지(selectable marker)의 예는, 그러나 이에 제한되지 않는, 항생제 내성 표지 (예를 들어, 카나마이신, 앰피실린, 클로람페니콜, 젠타마이신, 또는 트리메토프림에 대한 내성을 코딩하는 유전자) 및 대사성 표지(metabolic marker)(예를 들어, 아미노산 합성 유전자 또는 운반 RNA 유전자)를 포함한다.
9 키트(
Kit
)
다른 측면에서, 본원은 폴리뉴클레오타이드의 집합체 키트를 제공하며, 상기 키트는 2개 이상의 하기의 것들을 포함한다: (a) 본원에서 제시된 하나 이상의 엔트리 벡터(entry vector); (b) 상기 하나 이상의 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위들 RA 및 RB를 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제; (c) 상기 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위들 RY 및 RZ를 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제; 및 (d) 상기 하나 이상의 엔트리 벡터(entry vector)의 프라이머 결합 절편(segment)들 PA 및 PB에 어닐링할 수 있는 올리고뉴클레오타이드프라이머.
몇몇 실시예에서, 상기 키트의 각각의 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위 RA 및 RB는 SapI 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있으며, 상기 키트는 SapI 제한 엔도뉴클레아제를 포함한다. 몇몇 실시예에서, 상기 키트의 각각의 엔트리 벡터(entry vector)의 제한 부위 RY 및 RZ는 SchI (또는 MlyI) 제한 엔도뉴클레아제에 의해 인지 및 절단될 수 있으며, 상기 키트는 SchI (또한 MlyI) 제한 엔도뉴클레아제를 포함한다.
몇몇 실시예에서, 키트 내 하나 이상의 엔트리 벡터(entry vector)의 프라이머 결합 절편 PA의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 키트 내 하나 이상의 엔트리 벡터(entry vector)의 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 서열번호 24 및 25로 구성된 군으로부터 선택된다. 바람직한 실시예에서, 프라이머 결합 절편 PA와 프라이머 결합 절편 PB의 핵산 서열은 동일하지 않다.
몇몇 실시예에서, 키트 내 하나 이상의 엔트리 벡터(entry vector)의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 키트 내 하나 이상의 엔트리 벡터(entry vector)의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다. 몇몇 실시예에서, 키트 내 모든 엔트리 벡터(entry vector)의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB의 핵산 서열은 서열번호 1 내지 23으로 구성된 군으로부터 선택된다.
몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #1, 서열번호 221와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #2, 서열번호 207와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #3, 서열번호 208와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #4, 서열번호 209와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #5, 서열번호 210와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #6, 서열번호 211와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #7, 서열번호 212와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #8, 서열번호 213와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #9, 서열번호 214와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #10, 서열번호 215와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #11, 서열번호 216와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #12, 서열번호 217와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #13, 서열번호 218와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #14, 서열번호 219와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다. 몇몇 실시예에서, 키트는 pRYSE 벡터 #15, 서열번호 220와 같이 본원에서 제공된 서열을 포함한다.
몇몇 실시예에서, 키트는 본원에서 제시된 폴리뉴클레오타이드 집합 방법을 설명하는 용도에 대한 지침을 더 포함한다. 몇몇 실시예에서, 내열성의 DNA 폴리머라제 (예를 들어, Pfu DNA 폴리머라제) 및 데옥시리보뉴클레오사이드 트리포스페이트 (dNTP)와 같은 폴리뉴클레오타이드 폴리머라제 또한, 키트 내에 존재한다. 몇몇 실시예에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 집합되는 폴리뉴클레오타이드 성분을 각각 포함하는 2개 이상의 집합 벡터는 키트 내에 제공될 수 있다. 예를 들어, 집합 벡터는 교정 및/또는 키트의 올바른 실시를 증명하기 위한 양성 대조군으로서의 사용에 유용한 폴리뉴클레오타이드 성분을 포함하도록 제공될 수 있다. 기타 실시예는, 그러나 이에 제한되지 않는, 집합 벡터는 폴리뉴클레오타이드 성분으로서 단백질-코딩 서열, 리포터 유전자(reporter gene), 형광 표지(marker) 코딩 서열, 프로모터, 증폭자(enhancer), 종결자(terminator), 인트론, 엑손, 폴리-A 꼬리, 다수의 클로닝 부위, 핵 위치 신호(nuclear localization signal), mRNA 안정 신호(mRNA stabilization signal), 선별표지(selectable marker), 통합 부위(integration loci), 에피토프 태그(epitope tag) 코딩 서열 및 분해 신호(degradation signal)를 포함한다.
도 1a는 본 발명의 집합 벡터의 제조에 유용한 엔트리 벡터(entry vector)의 도식을 제공한다. 상기 벡터는 제한 부위 RA0, 프라이머 결합 절편 PA 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 프라이머 결합 절편 PB 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함한다.
도 1b는 집합 벡터를 형성하기 위하여 DNA 절편의 수용을 위한 엔트리 벡터(entry vector)의 예시적인 제조 방법을 제공한다. 실시예에서, RY=RZ=SchI이다. SchI를 사용한 분해, 즉 평활 말단(blunt end)을 형성할 수 있는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제는 DNA 절편 D로 융합되도록, 열려져 있는 링커 부위를 갖는 벡터의 분리를 허용한다. 엔트리 벡터(entry vector)로의 D의 평활 말단(blunt-end) 연결은, 예를 들어, T4 DNA 연결효소(ligase)를 사용하는 종래의 방법에 의해 실시될 수 있다.
도 2는 수많은 집합 벡터 (첫번째, 중간 및 마지막)를 포함하는 집합체 조성물의 도식을 나타내며, 각각의 집합 벡터는 관심있는 DNA 절편 (D0, Dn, Dm)을 포함한다. 첫번째 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RA0, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D0, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함한다. 하나 이상의 중간 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, DNA 절편 Dn, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn을 포함하며, 상기 n은 1부터 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타내며; 마지막 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, DNA 절편 Dm, 프라이머 결합 절편 PB, 두번째 제한 부위 RBm을 포함하며, 상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타낸다.
도 3은 집합하는 예시적인 방법, 예를 들어, 4개의 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 "스티칭(stitching)"하는 방법을 나타낸다. 집합될 DNA 절편을 포함하는 집합 벡터들은 하나의 싱글 튜브에 넣어진 후에, 집합 벡터 골격으로부터 폴리뉴클레오타이드 절편 성분을 분리하기 위하여 SapI를 사용하여 분해된다. SapI의 열 불활성화 후에, 폴리뉴클레오타이드 절편 성분들은 변성 조건을 겪게 된 후, 상보적인 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 쌍의 하이브리드에 충분한 어닐링 조건을 겪게 된다. DNA 폴리머라제 및 dNTP의 존재 하에서 프라이머 신장을 한 후, PA 및 PB에 상보적인 프라이머가 첨가된 후, 종래의 PCR 증폭이 실시된다. 집합 반응의 결과에 따라, 5'에서 3'의 방향으로 집합된 폴리뉴클레오타이드 성분들 D0, D1, D2 및 D3를 포함하는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드가 형성된다.
도 4는 pRYSE 벡터의 맵(map)을 보여준다.
도 5는 SapI 제한 엔도뉴클레아제 (컬럼 정제 또는 열 불활성화)를 제거하는 서로 다른 방법, 기타 모든 절편들의 동일한 몰 농도를 갖는 가장 작은 절편의 서로 다른 집합 벡터 DNA 농도 (5 ng (낮은 DNA 농도) 또는 50 ng (높은 DNA 농도)) 및 PCR 증폭을 위한 서로 다른 어닐링 온도 (54℃ 및 72℃)를 사용하여, 2개 내지 4개의 폴리뉴클레오타이드 성분들 (표 7의 집합체 1 내지 6)을 집합하여 얻은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 보여준다.
도 6은 서로 다른 DNA 폴리머라제들 (Phusion (New England Biolabs, Ipswich, MA) 및 PfuUltraII (Stratagene/Agilent, La Jolla, CA))를 사용하여 6개 또는 9개 폴리뉴클레오타이드 성분들 (표 7의 집합체 7 및, 13 내지 16)을 집합하여 얻은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 보여준다.
도 7은 pMULE 벡터의 맵(map)을 보여준다. pMULE 엔트리 벡터(entry vector)는, 프라이머 결합 절편(segment) 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열이 없다는 점에서 pRYSE 엔트리 벡터(entry vector)와 다르다.
도 8은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드에 결합시키고, 상기 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 숙주 세포의 염색체에 통합시키는 예시적인 방법을 나타낸다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 A는 선별표지(selectable marker)의 비-기능적 첫번째 절편을 코딩하는 DNA 절편 Dm1 및 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 코딩하는 DNA 절편 D01을 포함한다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 B는 선별표지(selectable marker)의 비-기능적 두번째 절편을 코딩하는 DNA 절편 Dm2 및 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 코딩하는 DNA 절편 D02를 포함한다. 숙주 세포는, 기능적 선별표지(selectable marker)를 포함하는 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 형성하기 위하여 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 A와 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 B를 DNA 절편(segment) Dm1 및 Dm2의 상동(homology) 영역에서 재결합하고, 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 숙주 세포 염색체에 삽입하기 위하여 DNA 절편(segment) D01 및 D02에 의해 코딩된 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 사용한다.
도 9는 숙주 세포에서 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 형성하고 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 숙주 세포의 염색체로 통합하는 예시적인 방법을 나타낸다. 첫번째 단계에서, 집합 벡터를 포함하는 집합체 조성물은 제한 엔도뉴클레아제에 의해 분해되어, 집합 벡터 골격으로부터 폴리뉴클레오타이드 성분들의 절단을 유발한다. 두번째 단계에서, 폴리뉴클레오타이드 성분들은 숙주 세포에 도입되며, 여기에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 형성하기 위하여 어닐링될 수 있는 링커 서열의 상동(homology) 영역에서 재결합되고 상기 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 숙주 세포의 염색체로 통합된다.
도 10은 동일한 반응에서 7개의 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 수많은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 집합하는 예시적인 방법을 나타낸다. 집합될 DNA 절편(segment)을 포함하는 집합 벡터는 하나의 싱글 튜브에 옮겨진 후 집합 벡터 골격으로부터 폴리뉴클레오타이드 성분들을 분리하기 위하여 SapI를 사용하여 분해된다. SapI의 열 불활성화 이후에, 폴리뉴클레오타이드 절편 성분들은 변성 조건을 겪게 되고, 상보적인 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 쌍의 하이브리드에 충분한 어닐링 조건을 겪게 된다. DNA 폴리머라제 및 dNTP들의 존재 하에서 프라이머 신장 이후에, PA 및 PB에 상보적인 프라이머들이 첨가된 후, 종래의 PCR 증폭이 실시된다. 집합 반응(assembly reaction)은 5'에서 3' 방향으로 집합된 폴리뉴클레오타이드 성분들 DO1 /02, D1 /2, D3 및 D41 /42을 포함하는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 형성을 유발한다.
도 11은 조합적으로 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 수많은 숙주 세포들을 형성하는 예시적인 방법을 나타낸다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 A1 및 A2 (이들은 각각, 동일한 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열 및 선별표지(selectable marker)의 비기능적인 동일한 첫번째 부분을 포함함) 및 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 Bl 및 B2 ( 이들은 각각 동일한 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열 및 선별표지(selectable marker)의 비기능적인 동일한 두번째 부분을 포함함)는, 서로 다른 4개의 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들, Al/Bl, A1/B2, A2/B1 및 A2/B2를 형성하기 위하여 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의하여 조합적으로 결합되며, 이들은 각각, 서로 다른 4개의 숙주 세포들을 형성하기 위하여 염색체로 삽입될 수 있는, 기능적 선별표지(selectable marker)를 포함한다.
도 12a는 조합적으로 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 및 조합적으로 집합되고(assembled) 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들 및 예상된 집합되고(assembled) 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 효모 세포들의 높은 생산량의(high-throughput)의 형성을 위하여 실시예 10에서 사용된 폴리뉴클레오타이드 성분들을 보여준다. US = 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열, DS = 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열, P = 다양한 프로모터 서열들, G = 다양한 단백질 코딩서열들, URA = 선별표지(selectable marker)의 5' 절편, RA3 = 선별표지(selectable marker)의 3' 절편, PA = 프라이머 결합 절편 PmeI-5', PB = 프라이머 결합 절편 PmeI-3', LB0 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 2, LAn1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 2, LBn1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15, LAn2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LBn2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 16, LAn3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15, LBn3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LAn4 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 16, LBn4 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 4, LAm1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LAm2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 4, LAm3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3를 나타낸다.
도 12b는 실시예 10에서 제시된 바와 같이 형성되고 1% 아가로스 겔 상에서 분해된 예시적인 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 (박스 부분)를 나타낸다.
도 12c는 실시예 10에서 제시된 바에 따라 얻은 예시적인 세포 콜로니에 대한 제한 분석(restriction analysis)을 나타낸다.
도 13a는 실시예 11에서 사용된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 및 폴리뉴클레오타이드 성분과, 집합 및 숙주 세포에 의한 염색체의 통합(integration)으로부터 얻은 예상되는 염색체 위치를 나타낸다.
도 13b는 염색체로 통합된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는, 실시예 11에서 형성된 효모 세포 형질변환체로부터 얻은 cPCR 분석 결과를 보여준다.
도 14는 염색체로 통합된 조합적으로 집합되고(assembled) 조합적으로 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들 및 집합 및 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)의 조합에서 얻은 예상되는 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 효모 세포의 높은 생산량의(high-throughput) 형성을 위하여, 실시예 12에서 사용된 폴리뉴클레오타이드 성분들을 보여준다. US = 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열, DS = 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열, P = 다양한 프로모터 서열, G = 다양한 단백질 코딩서열, URA = 선별표지(selectable marker)의 5' 절편, RA3 = 선별표지(selectable marker)의 3' 절편, PA = 프라이머 결합 절편 PmeI-5', PB = 프라이머 결합 절편 PmeI-3', LB0 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 2, LAn1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 2, LBn1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15, LAn2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LBn2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 16, LAn3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15, LBn3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LAn4 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 16, LBn4 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 4, LAm1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LAm2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 4, LAm3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3을 나타낸다.
도 1b는 집합 벡터를 형성하기 위하여 DNA 절편의 수용을 위한 엔트리 벡터(entry vector)의 예시적인 제조 방법을 제공한다. 실시예에서, RY=RZ=SchI이다. SchI를 사용한 분해, 즉 평활 말단(blunt end)을 형성할 수 있는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제는 DNA 절편 D로 융합되도록, 열려져 있는 링커 부위를 갖는 벡터의 분리를 허용한다. 엔트리 벡터(entry vector)로의 D의 평활 말단(blunt-end) 연결은, 예를 들어, T4 DNA 연결효소(ligase)를 사용하는 종래의 방법에 의해 실시될 수 있다.
도 2는 수많은 집합 벡터 (첫번째, 중간 및 마지막)를 포함하는 집합체 조성물의 도식을 나타내며, 각각의 집합 벡터는 관심있는 DNA 절편 (D0, Dn, Dm)을 포함한다. 첫번째 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RA0, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D0, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함한다. 하나 이상의 중간 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, DNA 절편 Dn, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn을 포함하며, 상기 n은 1부터 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타내며; 마지막 핵산 분자는 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, DNA 절편 Dm, 프라이머 결합 절편 PB, 두번째 제한 부위 RBm을 포함하며, 상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타낸다.
도 3은 집합하는 예시적인 방법, 예를 들어, 4개의 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 "스티칭(stitching)"하는 방법을 나타낸다. 집합될 DNA 절편을 포함하는 집합 벡터들은 하나의 싱글 튜브에 넣어진 후에, 집합 벡터 골격으로부터 폴리뉴클레오타이드 절편 성분을 분리하기 위하여 SapI를 사용하여 분해된다. SapI의 열 불활성화 후에, 폴리뉴클레오타이드 절편 성분들은 변성 조건을 겪게 된 후, 상보적인 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 쌍의 하이브리드에 충분한 어닐링 조건을 겪게 된다. DNA 폴리머라제 및 dNTP의 존재 하에서 프라이머 신장을 한 후, PA 및 PB에 상보적인 프라이머가 첨가된 후, 종래의 PCR 증폭이 실시된다. 집합 반응의 결과에 따라, 5'에서 3'의 방향으로 집합된 폴리뉴클레오타이드 성분들 D0, D1, D2 및 D3를 포함하는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드가 형성된다.
도 4는 pRYSE 벡터의 맵(map)을 보여준다.
도 5는 SapI 제한 엔도뉴클레아제 (컬럼 정제 또는 열 불활성화)를 제거하는 서로 다른 방법, 기타 모든 절편들의 동일한 몰 농도를 갖는 가장 작은 절편의 서로 다른 집합 벡터 DNA 농도 (5 ng (낮은 DNA 농도) 또는 50 ng (높은 DNA 농도)) 및 PCR 증폭을 위한 서로 다른 어닐링 온도 (54℃ 및 72℃)를 사용하여, 2개 내지 4개의 폴리뉴클레오타이드 성분들 (표 7의 집합체 1 내지 6)을 집합하여 얻은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 보여준다.
도 6은 서로 다른 DNA 폴리머라제들 (Phusion (New England Biolabs, Ipswich, MA) 및 PfuUltraII (Stratagene/Agilent, La Jolla, CA))를 사용하여 6개 또는 9개 폴리뉴클레오타이드 성분들 (표 7의 집합체 7 및, 13 내지 16)을 집합하여 얻은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 보여준다.
도 7은 pMULE 벡터의 맵(map)을 보여준다. pMULE 엔트리 벡터(entry vector)는, 프라이머 결합 절편(segment) 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열이 없다는 점에서 pRYSE 엔트리 벡터(entry vector)와 다르다.
도 8은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드에 결합시키고, 상기 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 숙주 세포의 염색체에 통합시키는 예시적인 방법을 나타낸다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 A는 선별표지(selectable marker)의 비-기능적 첫번째 절편을 코딩하는 DNA 절편 Dm1 및 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 코딩하는 DNA 절편 D01을 포함한다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 B는 선별표지(selectable marker)의 비-기능적 두번째 절편을 코딩하는 DNA 절편 Dm2 및 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 코딩하는 DNA 절편 D02를 포함한다. 숙주 세포는, 기능적 선별표지(selectable marker)를 포함하는 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 형성하기 위하여 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 A와 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 B를 DNA 절편(segment) Dm1 및 Dm2의 상동(homology) 영역에서 재결합하고, 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 숙주 세포 염색체에 삽입하기 위하여 DNA 절편(segment) D01 및 D02에 의해 코딩된 게놈 타겟팅(targeting) 서열을 사용한다.
도 9는 숙주 세포에서 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 형성하고 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 숙주 세포의 염색체로 통합하는 예시적인 방법을 나타낸다. 첫번째 단계에서, 집합 벡터를 포함하는 집합체 조성물은 제한 엔도뉴클레아제에 의해 분해되어, 집합 벡터 골격으로부터 폴리뉴클레오타이드 성분들의 절단을 유발한다. 두번째 단계에서, 폴리뉴클레오타이드 성분들은 숙주 세포에 도입되며, 여기에서, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 형성하기 위하여 어닐링될 수 있는 링커 서열의 상동(homology) 영역에서 재결합되고 상기 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 숙주 세포의 염색체로 통합된다.
도 10은 동일한 반응에서 7개의 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 수많은 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 집합하는 예시적인 방법을 나타낸다. 집합될 DNA 절편(segment)을 포함하는 집합 벡터는 하나의 싱글 튜브에 옮겨진 후 집합 벡터 골격으로부터 폴리뉴클레오타이드 성분들을 분리하기 위하여 SapI를 사용하여 분해된다. SapI의 열 불활성화 이후에, 폴리뉴클레오타이드 절편 성분들은 변성 조건을 겪게 되고, 상보적인 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) 쌍의 하이브리드에 충분한 어닐링 조건을 겪게 된다. DNA 폴리머라제 및 dNTP들의 존재 하에서 프라이머 신장 이후에, PA 및 PB에 상보적인 프라이머들이 첨가된 후, 종래의 PCR 증폭이 실시된다. 집합 반응(assembly reaction)은 5'에서 3' 방향으로 집합된 폴리뉴클레오타이드 성분들 DO1 /02, D1 /2, D3 및 D41 /42을 포함하는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 형성을 유발한다.
도 11은 조합적으로 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 수많은 숙주 세포들을 형성하는 예시적인 방법을 나타낸다. 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 A1 및 A2 (이들은 각각, 동일한 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열 및 선별표지(selectable marker)의 비기능적인 동일한 첫번째 부분을 포함함) 및 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 Bl 및 B2 ( 이들은 각각 동일한 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열 및 선별표지(selectable marker)의 비기능적인 동일한 두번째 부분을 포함함)는, 서로 다른 4개의 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들, Al/Bl, A1/B2, A2/B1 및 A2/B2를 형성하기 위하여 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의하여 조합적으로 결합되며, 이들은 각각, 서로 다른 4개의 숙주 세포들을 형성하기 위하여 염색체로 삽입될 수 있는, 기능적 선별표지(selectable marker)를 포함한다.
도 12a는 조합적으로 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 및 조합적으로 집합되고(assembled) 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들 및 예상된 집합되고(assembled) 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 효모 세포들의 높은 생산량의(high-throughput)의 형성을 위하여 실시예 10에서 사용된 폴리뉴클레오타이드 성분들을 보여준다. US = 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열, DS = 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열, P = 다양한 프로모터 서열들, G = 다양한 단백질 코딩서열들, URA = 선별표지(selectable marker)의 5' 절편, RA3 = 선별표지(selectable marker)의 3' 절편, PA = 프라이머 결합 절편 PmeI-5', PB = 프라이머 결합 절편 PmeI-3', LB0 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 2, LAn1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 2, LBn1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15, LAn2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LBn2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 16, LAn3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15, LBn3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LAn4 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 16, LBn4 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 4, LAm1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LAm2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 4, LAm3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3를 나타낸다.
도 12b는 실시예 10에서 제시된 바와 같이 형성되고 1% 아가로스 겔 상에서 분해된 예시적인 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 (박스 부분)를 나타낸다.
도 12c는 실시예 10에서 제시된 바에 따라 얻은 예시적인 세포 콜로니에 대한 제한 분석(restriction analysis)을 나타낸다.
도 13a는 실시예 11에서 사용된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 및 폴리뉴클레오타이드 성분과, 집합 및 숙주 세포에 의한 염색체의 통합(integration)으로부터 얻은 예상되는 염색체 위치를 나타낸다.
도 13b는 염색체로 통합된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는, 실시예 11에서 형성된 효모 세포 형질변환체로부터 얻은 cPCR 분석 결과를 보여준다.
도 14는 염색체로 통합된 조합적으로 집합되고(assembled) 조합적으로 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들 및 집합 및 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)의 조합에서 얻은 예상되는 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 효모 세포의 높은 생산량의(high-throughput) 형성을 위하여, 실시예 12에서 사용된 폴리뉴클레오타이드 성분들을 보여준다. US = 업스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열, DS = 다운스트림 게놈 타겟팅(targeting) 서열, P = 다양한 프로모터 서열, G = 다양한 단백질 코딩서열, URA = 선별표지(selectable marker)의 5' 절편, RA3 = 선별표지(selectable marker)의 3' 절편, PA = 프라이머 결합 절편 PmeI-5', PB = 프라이머 결합 절편 PmeI-3', LB0 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 2, LAn1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 2, LBn1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15, LAn2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LBn2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 16, LAn3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15, LBn3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LAn4 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 16, LBn4 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 4, LAm1 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3, LAm2 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 4, LAm3 = 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 3을 나타낸다.
실시예
본 발명은 하기의 실시예에 의해 예시적으로 설명되며, 이것은 어떠한 방식으로도 본 발명을 제한하려는 의도가 아니다. 실시예에 제시된 Saccharyomices cerevisiae 구성은 Saccharyomices cerevisiae 종(strain) CEN.PK2로부터 유래되었다. Saccharyomices cerevisiae 종(strain) S288c과 달리, 종(strain) CEN.PK2의 게놈 서열은 대중적으로 이용할 수 없다. 제시된 구성의 몇몇은 서열이 밝혀진 것이어서, 제공된 서열들의 구성은 실제의 CEN.PK2-유래 구성이다. 서열이 밝혀지지 않은 구성에 대하여, 제공된 서열은 종(strain) S288c의 공개된 게놈 서열에 기초하기 때문에, 실제의 CEN.PK2-유래 구성의 서열과 다형성(polymorphic) 차이를 포함할 수 있다.
실시예
1
본 실시예는 pRYSE 벡터를 만드는 방법을 제시한다. pRYSE 벡터는, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 SapI 제한효소 인지 부위, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 또는 프라이머 결합 절편, 첫번째 SchI 제한효소 인지 부위, 녹색 형광 단백질 (GFP) 또는 lacZ 표지 유전자, 두번째 SchI 제한효소 인지 부위, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 또는 프라이머 결합 절편 및 두번째 SapI 제한효소 인지 부위를 포함한다.
β-락타마아제를 코딩하는 DNA 절편은, pUC19의 bla 유전자 내 SchI 제한효소 인지 부위가 PCR 프라이머 JCB158-17A (서열번호 227) 및 JCBl 58-17B (서열번호 228)을 사용한 pUC19의 부위-특이적(site-directed) 돌연변이유발(mutagenesis)에 의해 제거된 후에, 프라이머 JCB158-17C (서열번호 229) 및 JCB158-17D (서열번호 230)을 사용한 pUC19 벡터 (유전자 은행의 등록번호 L09137)로부터 PCT 증폭되었다. PCR 생산물은 겔 정제 된 후 TOPO 벡터 (Invitrogen, Carlsbad, CA)로 연결되고, 상기 결과물은 SphI 및 MfeI 제한효소를 사용하여 완전히 분해하여 다시 유리되어, "bla DNA 절편"을 생성하였다.
DNA 절편들 1040 (서열번호 224), 1041 (서열번호 225) 및 1042 (서열번호 226)은 종합적으로 형성되었다 (Biosearch Technologies, Novato, CA). DNA 절편들 1040 및 1041은 BstXI 제한효소를 사용하여 완전히 분해되었고, 각각의 분해된 절편은, 제한효소 SacI 및 KpnI를 사용하여 pAM1466 (서열번호 223; Biosearch Technologies, Novato, CA에 의해 종합적으로 형성됨)를 완전히 커팅하여 형성된 2.65 kb 벡터 골격과 연결되었다. 1040_pAM1466 DNA 구성은 BsmBI 및 BstXI 제한효소를 사용하여 완전히 분해되었고, 상기 반응 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, 1040 DNA 절편을 포함하는 대략 3.5 kb DNA 절편은 겔 정제되었다. 1041_pAM1466 DNA 구성은 BsaI 및 BstXI 제한효소를 사용하여 완전히 분해되었고, 상기 반응 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, 및 1041 DNA 절편을 포함하는 대략 0.9 kb 1041 DNA 절편은 겔 정제되었다. 정제된 DNA 절편들이 연결되어, DNA 구성 1040_1041_pAM1466을 형성하였다. 1040_1041 DNA 절편을 형성하기 위한 프라이머들 JO36 (서열번호 69) 및 JO37 (서열번호 70), 1040_1041 DNA 절편의 말단 서열과 겹치는 말단 서열을 갖는 1042 DNA 절편을 형성하기 위한 프라이머들 JO38 (서열번호 71) 및 JO39 (서열번호 72), 및 2개의 PCR 생성물에 결합하기 위한 프라이머들 JO39 (SphI 제한효소 인지 부위를 포함함) (서열번호 72) 및 JO36 (MfeI 제한효소 인지 부위를 포함함) (서열번호 69)을 사용하는 PCR "스티칭(stitching)" 반응에 의해, DNA 절편 1042은 DNA 구성 1040_1041에 결합되었다. 상기 1040_1041_1042 PCR 생성물은 SphI 및 MfeI 제한효소를 사용하여 완전해 분해되었고, 상기 반응 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, 대략 2.4 kb 1040_1041_1042 DNA 절편은 겔 정제되었고, 정제된 DNA 절편은 겔 정제된 bla 절편에 연결되어, "1040_1041_1042_bla" DNA 구성을 형성하였다.
GFP 유전자를 코딩하는 1040_1041_1042_bla DNA 구성의 절편은 PCR 프라이머 1 및 2 (표 2 참조)를 사용하여 PCR 증폭되었다. PCR 반응의 첫번째 단계에서 형성된 겔-추출된 GFP 절편 및 PCR 프라이머 3 및 4를 주형(template)으로 사용하는 PCR 증폭에 의해, SacI 및 XhoI 제한효소 인지 부위는 상기 증폭된 GFP 절편 말단에 첨가되었다(표 2 참조). 증폭된 PCR 생성물은 겔 추출된 후, XhoI 및 SacI 제한효소를 사용하여 완전히 분해한 후, 제한효소는 65℃에서 20분 동안 열 불활성화되었고, 분해된 PCR 생성물은 컬럼 정제된 후 겔 정제된, XhoI 및 SacI 제한효소를 사용하여 1040_1041_1042_bla DNA 구성을 완전히 분해하여 얻은 대략 2.2 kb DNA 절편에 연결되었다. 결과물 벡터는 PCR 프라이머들 5 및 6을 사용하여 PCR 증폭되었고 (표 3 참조), 결과물 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, 대략 2.2 kb "pRYSE 벡터 골격"이 겔 정제되었다.
lacZ 유전자는 프라이머들 S027 (서열번호 65) 및 S028 (서열번호 66)를 사용하여 pUC 19 벡터로부터 PCR 증폭되었고, 각각의 프라이머는 SchI 제한효소 인지 부위를 포함한다. 상기 반응 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, 대략 0.5 kb PCR 생성물은 겔 정제되고, 정제된 PCR 생성물은 각각의 pRYSE 벡터 골격과 연결되었다. 부위-특이적(site-directed) 돌연변이유발(mutagenesis)은, 복제의 원점(origin)으로부터 SchI 제한효소 인지 부위를 제거하기 위하여 PCR 프라이머 L012 (서열번호 231) 및 L013 (서열번호 232)를 사용하여 결과물 벡터에서 실시되었다. 마지막으로, 두번째 부위-특이적(site-directed) 돌연변이유발(mutagenesis)은, lacZ 절편으로부터 SchI 제한효소 인지 부위를 제거하기 위하여, PCR 프라이머들 S036 (서열번호 67) 및 S037 (서열번호 68)을 사용하여 실시되어, pRYSE 벡터들 1 내지 15를 형성하였다(pRYSE 벡터들 및, pRYSE 벡터들 1 내지 15의 뉴클레오타이드 서열에 대한 서열번호 207의 플라즈미드 맵(map)에 대한 도 4를 참조).
실시예
2
본 실시예는 pRYSE 벡터들을 만드는 대안적 방법을 제시한다.
pRYSE 벡터들 1 내지 15는 주형(template)으로서 서열번호 207 내지 221를 사용하여 종합적으로 형성될 수 있다 (예를 들어, Biosearch Technologies, Novato, CA에 의함). 서로 다른 어닐링될 수 있는 링커 서열들을 포함하는 추가적 pRYSE 벡터는 주형(template)으로서 서열번호 221을 사용하여 종합적으로 형성될 수 있으며, 상기 서열번호 221에서 Pmel-5' 프라이머 결합 절편 및/또는 RYSE 1 어닐링될 수 있는 링커 서열들이 다른 적당한 어닐링될 수 있는 링커 서열 또는 프라이머 결합 절편으로 바뀌었다 (표 1 참조).
실시예
3
본 실시예는, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 SapI 제한효소 인지 부위, 첫번째 SchI 제한효소 인지 부위, lacZ 표지 유전자, 두번째 SchI 제한효소 인지 부위 및 두번째 SapI 제한효소 인지 부위를 포함하는 pMULE 벡터를 만드는 방법을 제시한다. pMULE 벡터는 Mule을 복제하기 위하여 사용될 수 있다.
pRYSE 벡터 8의 골격은 프라이머들 K162 (서열번호 109) 및 K163 (서열번호 110)을 사용하여 PCR 증폭되었다. 상기 반응 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, 대략 2.2 kb 벡터 골격은 겔 정제되었다. SchI 제한효소를 사용하여 pRYSE 벡터 8을 완전히 분해하고, 상기 효소를 65℃에서 20분 동안 열 불활성화하고, 겔 전기영동에 의해 반응물 혼합물을 분해하고 및 대략 0.5 kb DNA 절편을 겔 정제함으로써, lacZ 유전자를 포함하는 DNA 절편이 형성되었다. lacZ 유전자를 포함하는 정제된 DNA 절편은 정제된 벡터 골격과 연결되어, pMULE 벡터를 형성하였다 (플라즈미드 맵(map)에 대한 도 7을 참조).
실시예
4
본 실시예는 "비트(Bit)"를 만드는 방법을 제시한다. 비트(Bit)는 본원에 제시된 방법들을 사용하여 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 집합될 수 있는 폴리뉴클레오타이드 성분들을 포함하는 집합 벡터들을 형성하기 위하여, pRYSE 벡터로 삽입될 수 있는 DNA 절편이다. 비트(Bit)는 유전자 또는 관심있는 유전 성분 (예를 들어, 프로모터, 종결자(terminator), 선별표지(selectable marker), 통합 부위(integration loci), 에피토프 태그(epitope tag), 위치 신호(localization signal), 분해 신호(degradation signal), 형광 표지, 다수의 클로닝 부위)을 코딩할 수 있다. 비트(Bit)는 표 4에 제시된 프라이머들을 사용하여 주형으로부터 PCR 증폭되었다.
PCR 증폭은, 제조업자가 제시한 프로토콜에 따라 Phusion DNA 폴리머라제 (New England Biolabs, Ipswich, MA)를 사용하여 이루어졌다. PCR 반응물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, 상기 비트(Bit)는 겔 정제되었고 정제된 비트(Bit)는 제조업자가 제시한 프로토콜에 따라 T4 폴리뉴클레오타이드 키나아제 (PNK) (New England Biolabs, Ipswich, MA)로 처리되었다. PNK는 65℃에서 20분 동안 열 불활성화 되었고, 샘플은 -20℃에서 저장되었다.
실시예
5
본 실시예는 "MULE"를 만드는 방법을 제시한다. MULE는 본원에 제시된 방법을 사용하여 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들에 집합될 수 있는 폴리뉴클레오타이드 성분을 포함하는 집합 벡터를 형성하기 위하여 pMULE 벡터로 삽입될 수 있는 DNA 절편이다. MULE은 유전자, 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 또는 어닐링될 수 있는 링커 서열 /프라이머 결합 절편 쌍의 측면에 배치된 관심있는 유전 성분 (예를 들어, 프로모터, 종결자(terminator), 선별표지(selectable marker), 통합 부위(integration loci), 에피토프 태그(epitope tag), 위치 신호(localization signal), 분해 신호(degradation signal), 형광 표지, 다수의 클로닝 부위)를 코딩할 수 있다. MULE는, 표 5에 제시되어 있는 바와 같이, 프라이머를 사용하여 주형(template)으로부터 PCR 증폭되었으며, 상기 프라이머의 3' 말단은 타겟 서열에 어닐링되며 5' 말단은 어닐링될 수 있는 링커 서열 또는 프라이머 결합 절편을 포함한다 (적당한 어닐링될 수 있는 링커 서열에 대한 표 1 참조).
PCR 증폭은, 제조업자가 제시한 프로토콜에 따라, Phusion DNA 폴리머라제 (New England Biolabs, Ipswich, MA)를 사용하여 실시되었다. PCR 반응물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, MULE은 겔 정제되었고, 정제된 MULE은, 제조업자가 제시한 프로토콜에 따라, T4 폴리뉴클레오타이드 키나아제 (PNK) (New England Biolabs, Ipswich, MA)로 처리되었다. PNK는 65℃에서 20분 동안 열 불활성화되었고, 샘플은 -20℃에서 저장되었다.
실시예
6
본 실시예는 집합 벡터를 형성하기 위하여 비트(Bit)를 pRYSE 벡터로 삽입하거나, MULE를 pMULE 벡터로 삽입하는 방법을 제시한다.
pRYSE 벡터들 1 내지 8과 pRYSE 벡터 15는 SchI 제한효소를 사용하여 완전히 분해되었고, 분해된 DNA 절편은 Antarctic Phosphatase (New England Biolabs, Ipswich, MA)를 사용하여 처리되었다. 상기 포스파타아제는 65℃에서 20분 동안 열 불활성화되었고, 반응물 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고 대략 2.2 kb pRYSE 벡터 골격(lacZ 결핍)은 겔 정제되었다. 정제된 pRYSE 벡터 골격은 표 6에 상세히 나와 있는 바와 같이 비트(Bit)와 연결되어, 집합 벡터를 형성하였다.
pMULE 벡터는 SchI 제한효소를 사용하여 완전히 분해되었고, 반응물 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고 대략 2.2 kb pMULE 벡터 골격(lacZ 결핍)은 겔 정제되었다. 정제된 pMULE 벡터 골격은 포스파타아제 (예를 들어, Antarctic Phosphatase (New England Biolabs, Ipswich, MA), CIAP (New England Biolabs, Ipswich, MA), SAP (New England Biolabs, Ipswich, MA; Fermentas, Glen Burnie, MD), 또는 FastAP (Fermentas, Glen Burnie, MD))로 처리되었고, 상기 포스파타아제는 열 불활성화되었고 (예를 들어, 65℃에서 20분) 및 pMULE 벡터 골격은 MULE과 연결되어 집합 벡터를 형성하였다.
집합 벡터는 형질변환되어 화학 제품 TOPlO Escherichia coli 모세포 (Invitrogen, Carlsbad, CA) 성분으로 되었다. 숙주 세포 형질변환체는 100 ug/mL 카르베니실린 및 40 ug/mL X-gal을 포함하는 Luria Bertoni (LB) 아가에서 선택되었다. 단일한 백색 콜로니는 LB 아가로부터, 5 mL의 LB 액체 배지 및 카르베니실린을 포함하는 배양 튜브로 옮겨진 후, 상기 배양물은 회전 교반기에서 250 rpm에서 37℃에서 밤새도록 배양되었다. 플라즈미드 DNA는 추출된 후, 올바른 방향에서 올바른 서열을 포함하는 클론을 식별하기 위하여 배열되었다. 상기 세포들은 초저온 냉동 용기(cryo-vial)에서 400 uL 멸균 50% 글리세롤 및 600 uL 액체 배양물로 이루어진 1 mL 원액 부분표본(aliquot)에서 -80℃로 저장되었다.
실시예
7
본 실시예는, 집합 벡터 및/또는 MULE를 사용하여 폴리뉴클레오타이드 성분들을 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드로 집합하는 방법을 제시한다.
집합 벡터 (표 7 참조)는 하나의 튜브 (333 fmole의 각각의 RABit)에 함께 옮겨진 후, LguI 제한효소 (Fermentas, Glen Burnie, MD)를 사용하여 분해되었다. 제한효소는 컬럼 원심분리에 의해 제거되거나 65℃에서 20분 동안 열 불활성화되었다. MULE들 또는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 집합 반응(assembly reaction)에 대해, 333 fmole의 각각의 MULE 또는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 (표 7 참조)는 함께 하나의 튜브에 옮겨지거나, 분해된 집합 벡터들에 첨가되었다. 샘플은 3개의 30 uL 반응물로 나뉜 후; 물, 버퍼, dNTP 및 DNA 폴리머라제가 각각의 반응물 혼합물에 첨가되고, 첫번째 단계의 PCR 증폭이 개시되었다. 샘플을 얼음 위에 옮긴 후, 0.5 uM의 각각의 말단의 프라이머 (표 7)가 반응물 혼합물에 첨가된 후 및 두번째 단계의 PCR 증폭이 실시되었다. 3개의 PCR 반응 혼합물이 하나의 튜브에서 결합된 후, 반응물 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되고, PCR 생성물은 겔 정제되었다.
도 5 및 6에서 나타난 바와 같이, 2 내지 9 폴리뉴클레오타이드 성분들은 최대 7.7 kb 길이의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들로 정확하게 집합되었다.
실시예
8
본 실시예는 본원에 제시된 방법에 의해 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 사용하여 유전적으로 변형된 호스트 미생물을 형성하는 방법을 제시한다.
I-A 형태(Phase) 및 I-B 형태(Phase)의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은 (표 7 참조) TOPO Zero Blunt II 클로닝 벡터 (Invitrogen, Carlsbad, CA)로 복제되어, 각각, 플라즈미드들 TOPO-I-A 형태(Phase) 및 TOPO-I-B 형태(Phase)를 형성하였다. 50 μg/ml 카나마이신을 포함하는 LB 아가에서 성장한 TOPlO 세포 (Invitrogen, Carlsbad, CA)에서 구성물이 증식되었다. 각각의 플라즈미드는 NotI 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 완전히 분해되었고, I-A 형태(Phase) 및 I-B 형태(Phase)의 삽입물들은 겔 정제 키트 (Qiagen, Valencia, CA)를 사용하여 겔 추출되었고, 동일한 몰비율의 정제된 DNA 절편들은 T4 DNA 연결효소(ligase) (New England Biolabs, Ipswich, MA)를 사용하여 연결되어, 완전한 I 형태(Phase I complete)의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 형성하였다. 상기 완전한 I 형태(Phase I complete)의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 TOPO Zero Blunt II 클로닝 벡터 (Invitrogen, Carlsbad, CA)로 복제되어, 플라즈미드 TOPO-I 형태(Phase)를 형성하였다. 50 μg/ml 카나마이신을 포함하는 LB 아가에서 성장된 TOPlO 세포 (Invitrogen, Carlsbad, CA)에서 구성물이 증식되었다.
완전한 II 형태(Phase II complete)의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 (표 7 참조)는 TOPO Zero Blunt II 클로닝 벡터 (Invitrogen, Carlsbad, CA)로 복제되어, 플라즈미드 TOPO-II 형태(Phase)를 형성하였다. 50 μg/ml 카나마이신을 포함하는 LB 아가에서 성장된 TOPlO 세포 (Invitrogen, Carlsbad, CA)에서 구성물이 증식되었다.
III-A 형태(Phase) 및 III-B 형태(Phase)의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은 (표 7 참조) TOPO Zero Blunt II 클로닝 벡터 (Invitrogen, Carlsbad, CA)로 복제되어, 플라즈미드들 TOPO-III-A 형태(Phase) 및 TOPO-III-B 형태(Phase)를 각각 형성하였다. 50 μg/ml 카나마이신을 포함하는 LB 아가에서 성장된 TOPlO 세포 (Invitrogen, Carlsbad, CA)에서 구성물이 증식되었다. 각각의 플라즈미드는 BamHI 및 SbfI 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 완전히 분해되었고, III-A 형태(Phase) 및 III-B 형태(Phase)의 삽입물들은 겔 정제 키트 (Qiagen, Valencia, CA)를 사용하여 겔 추출되었으며 동일한 몰비율의 DNA 절편들은 T4 DNA 연결효소(ligase) (New England Biolabs, Ipswich, MA)를 사용하여 연결되어, 완전한 III 형태(Phase III complete)의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 형성하였다. 상기 완전한 III 형태(Phase III complete)의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드는 TOPO Zero Blunt II 클로닝 벡터 (Invitrogen, Carlsbad, CA)로 복제되어, 플라즈미드 TOPO-III 형태(Phase)를 형성하였다. 50 μg/ml 카나마이신을 포함하는 LB 아가에서 성장된 TOPlO 세포 (Invitrogen, Carlsbad, CA)에서 구성물이 증식되었다.
효모 세포 형질변환에 있어서, 25 ml의 Yeast Extract Peptone Dextrose (YPD) 배지는 단일 콜로니의 출발 호스트 종(strain)로 접종되었다. 상기 배양물은 200 rpm의 회전 교반기에서 3O℃에서 밤새 성장되었다. 배양물의 OD600이 측정된 후, 배양물은 0.15의 OD600가 될 때까지 50 ml의 YPD 배지를 접종하는데 사용되었다. 새롭게 접종된 배양물은 0.7 내지 0.9의 OD600가 될 때까지 200 rpm의 회전 교반기에서 30℃에서 성장되었고, 상기 시점에서 세포들은 1 μg의 DNA를 사용하여 형질변환되었다. 숙주 세포 형질변환체를 식별하기 위한 선택적 성분을 포함하는 아가에 세포들을 옮기기 전에, 4시간 동안 YPD 배지에서 세포들이 회복되도록 하였다.
100 ug/mL 카르바마이실린(carbamicillin) 및 50 ug/mL 카나마이신을 포함하는 5 mL의 YPD 배지에서, 활성있는 건식 PE-2 효모 (Santelisa Vale, Sertaozinho, Brazil에서 1994년에 분리됨)를 재분산시킴으로써, 시작자(starter) 호스트 종(strain) Y1198이 형성되었다. 배양물은 200 rpm의 회전 교반기에서 30℃에서 밤새 배양되었다. 그 후, 부분표본(aliquot)의 10 uL의 배양물은 YPD 플레이트 위에 옮겨진 후 건조되도록 하였다. 단일 콜로니에 대하여 상기 세포에 성공적으로 줄무늬를 넣은 후 30℃에서 2일 동안 배양되었다. 12개의 단일 콜로니를 골라, 새로운 YPD 플레이트에서 조금 떼어내어(조금 떼어내어(patched out)) 30℃에서 밤새 성장하도록 하였다. 콜로니의 종(strain) 식별은 제조업자의 설명서에 따라, Bio-Rad CHEF 게놈 DNA Plug Kit (Bio-Rad, Hercules, CA)를 사용하여 Bio-Rad CHEF DR II 시스템 (Bio-Rad, Hercules, CA)에서 염색체 크기를 분석함으로써 확인하였다. 하나의 콜로니를 골라 종(strain) Y1198로 저장하였다.
종(strain) Y1661, Y1662, Y1663 및 Y1664는 종(strain) 홀배수체(haploid)를 제공함으로써 종(strain) Y1198로부터 형성되었다. 종(strain) Yl198는 롤러 드럼(roller drum) 내 유리 튜브에서 3O℃에서 5 mL의 YPD 배지에서 밤새 성장되었다. OD600가 측정된 후 세포들은, 2% 포타슘 아세테이트를 포함하는 5 mL의 YP 배지에서 0.2의 OD600가 되도록 희석되었다. 배양물은 롤러 드럼(roller drum) 내 유리 튜브에서 30℃에서 밤새 성장되었다. OD600을 다시 측정한 후 4 OD600*mL의 세포들은 2분 동안 5,000g에서 원심분리함으로써 수집되었다. 세포 펠렛은 멸균수로 한번 수세된 후 0.02% 라피노스를 포함하는 3 mL의 2% 포타슘 아세테이트에서 재분산되었다. 상기 세포는 롤러 드럼(roller drum) 내 유리 튜브에서 30℃에서 3일 동안 성장되었다. 포자 형성은 현미경 검사법으로 확인되었다. 부분표본(aliquot)의 33 uL의 배양물을 1.5 mL의 마이크로퓨지 튜브(microfuge tube)로 옮긴 후 2분 동안 14,000rpm에서 원심분리하였다. 세포 펠렛은 2 uL의 10 mg/mL Zymolyase 1OOT (MP Biomedicals, Solon, OH)를 포함하는 50 uL의 멸균수에 재분산된 후, 세포는 30℃ 수조에서 10분 동안 배양되었다. 상기 튜브는 얼음으로 옮겨진 후 150 uL의 얼음물이 첨가되었다. 부분표본(aliquot)의 10 uL의 상기 혼합물은 12 mL YPD 플레이트에 첨가된 후 테트라드(tetrad)는 Singer MSM 300 해부 현미경(dissection microscope) (Singer, Somerset, UK)에서 해부되었다. YPD 플레이트는 3일 동안 3O℃에서 배양된 후, 포자(spore)를 새로운 YPD 플레이트로 조금 떼어낸(patched out) 후 30℃에서 밤새 성장시켰다. 8개의 4개-포자(spore) 테트라드(tetrad)로부터 각각의 포자의 교배형이 콜로니 PCR에 의해 분석되었다. 2개의 MATA 및 2개의 MATalpha 포자(spore)를 갖는 단일한 4개 포자(spore) 테트라드(tetrad)를 골라, 종(strain) Y1661 (MATA), Y1662 (MATA), Y1663 (MATalpha) 및 Y1664 (MATalpha)로 저장하였다.
PmeI 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 완전히 분해된 플라즈미드 TOPO-I 형태(Phase)로 종(strain) Y1664를 형질변환함으로써 호스트 종(strain) 1515이 형성되었다. 숙주 세포 형질변환체는 300 ug/mL 하이그로마이신(hygromycin) B를 포함하는 YPD 배지에서 선택되었다.
PmeI 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 완전히 분해된 플라즈미드 TOPO-II 형태(Phase)로 종(strain) Y1515를 형질변환함으로 써호스트 종(strain) 1762가 형성되었다. 숙주 세포 형질변환체는 100 ug/mL 노르세오트리신(nourseothricin)을 포함하는 YPD 배지에서 선택되었다.
PmeI 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 완전히 분해된 발현 플라즈미드 pAM404 및 플라즈미드 TOPO-III 형태(Phase)로 2개의 단계에서 종(strain) Y1762를 형질변환함으로써 호스트 종(strain) 1770이 형성되었다. 발현 플라즈미드 pAM404는, β-파네센 신타아제(β-farnesene synthase)를 코딩하는 뉴클레오타이드 서열을 pRS425-Gall 벡터에 삽입함으로써 형성된, 플라즈미드 pAM353로부터 유래되었다 (Mumberg et. al. (1994) Nucl . Acids . Res. 22(25): 5767-5768). Saccharomyces cerevisiae (서열번호 121)에서의 발현에 최적화을 위하여 코돈-최적화된 Artemisia annua (유전자 은행의 등록번호 AY835398)의 코딩 서열을 주형(template)으로 사용하여, 뉴클레오타이드 서열 삽입물이 종합적으로 형성되었다. 종합적으로 형성된 뉴클레오타이드 서열은 5' BamHI 및 3' XhoI 제한 부위의 측면에 배치되어, 따라서 표준 pUC 또는 pACYC 오리진 벡터(origin vector)와 같은 클로닝 벡터의 호환가능한 제한 부위로 클론될 수 있다. BamHI 및 XhoI 제한효소를 사용하여 DNA 합성 구조를 완전히 분해함으로써, 종합적으로 형성된 뉴클레오타이드 서열이 분리되었다. 상기 반응 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되어, β-파네센 신타아제(β-farnesene synthase) 코딩 서열을 포함하는 대략 1.7 kb DNA 절편이 겔 추출된 후 분리된 DNA 절편이 pRS425-Gall 벡터의 BamHI XhoI 제한 부위로 연결되어 발현 플라즈미드 pAM353을 형성하였다. β-파네센 신타아제(β-farnesene synthase)를 코딩하는 뉴클레오타이드 서열은 프라이머들 GW-52-84 pAM326 BamHI (서열번호 188) 및 GW-52-84 pAM326 NheI (서열번호 189)을 이용하여 pAM353으로부터 PCR 증폭되었다. 결과물 PCR 생성물은 BamHI 및 NheI 제한효소를 사용하여 완전히 분해되었고, 상기 반응 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, β-파네센 신타아제(β-farnesene synthase) 코딩 서열을 포함하는 대략 1.7 kb DNA 절편은 겔 추출되고, 분리된 DNA 절편은 벡터 pAM178 (서열번호 122)의 벡터의 BamHI NheI 제한 부위로 연결되어, 발현 플라즈미드 pAM404를 형성하였다. pAM404를 갖는 숙주 세포 형질변환체는 pAM404는 메티오닌 및 루신이 결핍된 완전 합성 배지 (CSM)에서 선택되었다. pAM404 및 완전한 III 형태(Phase III complete)의 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 갖는 숙주 세포 형질변환체는 메티오닌 및 루신이 결핍되고 200 ug/mL G418를 포함하는 CSM에서 선택되었다.
호스트 종(strain) 1793은 URA3 녹아웃(knockout) 구조 (서열번호 123)을 갖는 종(strain) Y1770을 형질변환함으로써 형성되었다. 녹아웃(knockout) 구조는, DNA 절편들 URA3US (PCR 프라이머들 KMH33-276-21-URA3 5'.fwd (서열번호 147) 및 KMH34-276-21-URA3 5'.rev (서열번호 148)을 사용하여 Saccharomyces cerevisiae 종(strain) CEN.PK2 게놈 DNA로부터 형성됨)과 URA3DS (PCR 프라이머들 KMH35-276-21-URA3 3'.fwd (서열번호 149) 및 KMH36-276-21-URA3 3'.rev (서열번호 150)를 사용한 후; PCR 프라이머들 KMH33-276-21-URA3 5'.fwd 및 KMH36-276-21-URA3 3 '.rev를 사용하여 2개의 DNA 절편들을 서로 스티칭(stitching)하여 Saccharomyces cerevisiae 종(strain) CEN.PK2 게놈 DNA로부터 형성됨)를 첫번째로 형성함으로써 형성되었다. 숙주 세포 형질변환체는 5-FOA를 포함하는 YPD 배지로부터 선택되었다.
호스트 종(strain) YAAA는 I 형태(Phase)의 표지 리사이클링(marker recycling) 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 (표 7 참조)를 사용하여 종(strain) Y1793을 형질변환함으로써 형성되었다. 숙주 세포 형질변환체는 메티오닌 및 우라실이 결핍된 CSM에서 선택되었다. 회전 교반기에서 200 rpm에서 3O℃에서 YPD 배지에서 밤새 세포를 성장시킨 후 5-FOA를 포함하는 아가로 세포를 옮김으로써 URA3 표지가 절단되었다. 표지 절단은 콜로니 PCR에 의해 확인되었다.
호스트 종(strain) YBBB는 II 형태(Phase)의 표지 리사이클링 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 사용하여 종(strain) YAAA를 형질변환함으로써 형성되었다(표 7 참조). 숙주 세포 형질변환체는 메티오닌 및 우라실이 결핍된 CSM에서 선택되었다. 회전 교반기에서 200 rpm에서 3O℃에서 YPD 배지에서 밤새 세포를 성장시킨 후 5-FOA를 포함하는 아가로 세포를 옮김으로써 URA3 표지가 절단되었다. 표지 절단은 콜로니 PCR에 의해 확인되었다.
호스트 종(strain) Y1912는 III 형태(Phase)의 표지 리사이클링 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 사용하여 종(strain) YBBB를 형질변환함으로써 형성되었다(표 7 참조). 숙주 세포 형질변환체는 메티오닌 및 우라실이 결핍된 CSM에서 선택되었다. 회전 교반기에서 200 rpm에서 3O℃에서 YPD 배지에서 밤새 세포를 성장시킨 후 5-FOA를 포함하는 아가로 세포를 옮김으로써 URA3 표지가 절단되었다. 표지 절단은 콜로니 PCR에 의해 확인되었다.
호스트 종(strain) Y1913은 STE5 녹아웃(knockout) 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 사용하여 종(strain) Y1912를 형질변환함으로써 형성되었다(표 7 참조). 숙주 세포 형질변환체는 메티오닌 및 우라실이 결핍된 CSM에서 선택되었다.
pAM404로부터 종(strain)을 고친 후(curing) IMEl 녹아웃(knockout) 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 사용하여 상기 결과물 종(strain)을 형질변환함으로써 호스트 종(strain) Y1915가 형성되었다 (표 7 참조). 종(strain) Y1913은 회전 교반기에서 200 rpm에서 30℃에서 비-선택적 YPD 배지에서 증식되었다. 대략 100개의 세포가 YPD 고체 배지로 옮겨진 후 30℃에서 3일 동안 성장되도록 한 후, 메티오닌 및 루신이 결핍된 CSM 플레이트에서 복제-평판(replica-plated)되었고, 여기에서 세포들은 다시 30℃에서 3일 동안 성장되었다. 고쳐진 세포(cured cell)는, 루신을 포함하는 최소 배지에서 성장하는 능력과 루신이 결핍된 배지에서 성장하는 무능력(inability)에 의해 식별되었다. 콜로니와 같은 싱글(single)이 선택된 후 IMEl 녹아웃(knockout) 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 사용하여 형질변환되었다. 숙주 세포 형질변환체는 메티오닌 및 우라실이 결핍된 CSM에서 선택되었다.
실시예
9
본 실시예는, 본원에 제시된 창조적인 방법에 의해, 프로모터와 단백질 코딩서열을 코딩하는 폴리뉴클레오타이드 성분들을 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드에 결합하는데 사용되는 어닐링될 수 있는 링커 서열들을 선택하는 방법을 제시한다.
2개의 서로 다른 후보인 어닐링될 수 있는 링커 서열들, 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15 (Rl5; 서열번호 15) 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 7 (R7; 서열번호 7) 이후에 프로모터들을 코딩하는 MULE 뿐만 아니라, 상기 2개의 어닐링될 수 있는 링커 서열들에 선행하여 GFP를 코딩하는 MULE가, 표 8에 제시된 바와 같이 PCR 증폭되었다.
표 8 - 프로모터 및, 어닐링할 수 있는 링커 서열들 RYSE 15(R15) 또는 어닐링할 수 있는 링커 서열 RYSE 7(R7)을 갖는 GFP를 코딩하는 증폭된 MULE | ||||
MULE | TYPE * | 프라이머들 | 크기 (bp) | 주형 |
pGAL1-R15 | P | Plan X19(SEQ ID NO:236) Plan X20(SEQ ID NO:237) |
698 | Saccharomyces cerevisiae 종 CEN.PK2 게놈 DNA |
pTDH3-R15 | P | Plan X47(SEQ ID NO:238) Plan X48(SEQ ID NO:239) |
613 | Saccharomyces cerevisiae 종 CEN.PK2 게놈 DNA |
pCYC1-R15 | P | Plan X11(SEQ ID NO:240) Plan X12(SEQ ID NO:241) |
645 | Saccharomyces cerevisiae 종 CEN.PK2 게놈 DNA |
pGAL1-R7 | P | Plan X19(SEQ ID NO:236) Plan X64(SEQ ID NO:242) |
692 | Saccharomyces cerevisiae 종 CEN.PK2 게놈 DNA |
pTDH3-R7 | P | Plan X47(SEQ ID NO:238) Plan X71(SEQ ID NO:243) |
607 | Saccharomyces cerevisiae 종 CEN.PK2 게놈 DNA |
pCYC1-R7 | P | Plan X11(SEQ ID NO:240) Plan X78(SEQ ID NO:244) |
639 | Saccharomyces cerevisiae 종 CEN.PK2 게놈 DNA |
R7-GFP | GsT | Plan X96(SEQ ID NO:247) Plan X88(SEQ ID NO:245) |
1378 | RABit 634 플라즈미드 DNA ** |
A-GFP | GsT | Plan X89(SEQ ID NO:246) Plan X88(SEQ ID NO:245) |
1385 | RABit 634 플라즈미드 DNA ** |
PCR 반응물은 67 uL ddH2O, 20 uL 5x HF 버퍼, 2 uL의 각각의 프라이머 (10uM), 1 uL dNTP 믹스 (200 uM), 1uL Phusion DNA 폴리머라제(New England Biolabs, Ipswich, MA), 및 9 uL Y002 게놈 DNA 또는 RABit 634 플라즈미드 DNA를 포함하였다. PCR 증폭은 하기와 같이 실시되었다 : 98℃에서 2분 동안 변성하는 사이클 1회; 98℃에서 15초 동안 변성, 각각의 사이클마다 1℃씩 낮추면서 61℃에서 30초 동안 어닐링 및 72℃에서 1분 동안 신장하는 사이클 9회; 98℃에서 15초 동안 변성, 52℃에서 30초 동안 어닐링, 및 72℃에서 1분 동안 신장하는 단계 26회; 72℃에서 7분 동안 최종 신장하는 사이클 1회; 및 4℃에서 최종 유지. * G=유전자; s=종결 코돈; T=종결자; P=프로모터. ** RABit 634는 녹색 형광 단백질 (GFP)의 코딩 서열를 뒤잇는 Saccharomyces cerevisiae의 ADH1 유전자의 종결자를 포함한다. |
PCR 반응물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, MULE은 겔 정제되었고, 상기 정제된 MULE은 테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드를 결합하는데 사용되었다. 상기 말단에, 집합될 (표 9 참조) MULE 및 집합 벡터 (표 6 참조)는 튜브(333 fmole의 각각의 집합 벡터, 667 fmole의 각각의 MULE)에 함께 넣은 후 LguI 제한효소 (Fermentas, Glen Burnie, MD)를 사용하여 분해되었다. 제한효소는 65℃에서 20분 동안 열 불활성화되었다. 샘플은 3개의 30 uL의 반응물로 나뉘어지고; 물, 버퍼, dNTP 및 DNA 폴리머라제는 각각의 반응물 혼합물에 첨가되고 PCR 증폭의 첫번째 단계가 개시되었다. 그 후 말단의 프라이머는 반응물 혼합물에 첨가되고 PCR 증폭의 두번째 단계가 실시되었다 (표 9 참조).
3개의 PCR 반응물 혼합물이 하나의 튜브에서 결합되었고(combined), 상기 반응물 혼합물은 겔 전기영동에 의해 분해되었고, PCR 생성물은 겔 정제되었다.
표 9 - 테스트용 집합된 폴리뉴클레오타이드의 집합체에 대한 말단 프라이머 | ||||
집합체 |
결합될
MULE (표 8 참조) 및 집합 벡터(표 6 참조)* |
집합된
폴리뉴클레오타이드 크기 ( kb ) |
말단
프라이머 1 |
말단
프라이머 2 |
1 | 97_555_pGAL1-A_A-GFP_24 | 4.7 | S000 (SEQ ID NO : 45) |
S019 (SEQ ID NO : 64) |
2 | 97_555_pTDH3-A_A-GFP_24 | 4.6 | ||
3 | 97_555_pCYC1-A_A-GFP_24 | 4.7 | ||
7 | 97_555_pGAL1-R7_R7-GFP_24 | 4.7 | ||
8 | 97_555_pTDH3-R7_R7-GFP_24 | 4.6 | ||
9 | 97_555_pCYC1-R7_R7-GFP_24 | 4.6 | ||
PCR 반응물은 하기의 것들을 포함한다: l1 uL ddH2O, 20 uL 5x HF 버퍼, 5 uL의 각각의 말단 프라이머(1 uM), 2 uL dNTP 믹스(200 uM), 1.8 uL Phusion DNA 폴리머라아제 및 30 uL MULE 또는 LguI 분해된 결합 벡터. PCR 증폭의 첫번째 단계는 하기와 같이 실시되었다: 98℃에서 2분 동안 변성하는 사이클 1회; 98℃에서 30초 동안 변성, 60℃에서 30초 동안 어닐링 및 72℃에서 2.5분 동안 신장하는 사이클 5회; 후에 2개의 말단 프라이머들을 첨가하고 4℃에서 유지한다. PCR 증폭의 두번째 단계는 하기와 같이 실시되었다 : 98℃에서 2분 동안 변성하는 사이클 1회; 98℃에서 12초 동안 변성, 60℃에서 30초 동안 어닐링 및 72℃에서 2.5분 동안 신장하는 단계 35회; 72℃에서 7분 동안 최종 신장하는 사이클 1회; 및 4℃에서 최종 유지. * 결합 벡터는 숫자로 표기되었고, MULE는 이름으로 표기되었다. |
테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은, URA3가 부족하고 GAL80 위치에서 HaeI가 삭제된 Saccharomyces cerevisiae 호스트 종(strain)을 형질변환하는데 사용되었다. 숙주 세포 형질변환체는 우라실이 결핍된 CSM에서 선택되었고, 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 정확한 게놈 통합(integration)은 콜로니 PCR에 의해 확인되었다. 각각의 형질변환으로부터의 2개의 검증된 콜로니가 선택되어 2% 수크로오스를 포함하는 360 uL Bird Seed Medium (BSM)에 첨가된 후 배양물이 회전 교반기에서 999 rpm에서 3O℃에서 48시간 동안 배양되었다. 부분표본(aliquot)의 14.4 uL를 취하여 각각의 웰에 넣고 96-웰 블록 플레이트에서 4% 수크로오스를 포함하는 1.1 mL BSM으로 이동시킨 후 회전 교반기에서 999 rpm에서 3O℃에서 6시간 동안 배양하고, 각각의 배양물의 100 uL 지점에서 이들을 GFP 발현의 분석을 위하여 투명한 바닥 96-웰 플레이트의 웰로 옮겼다. 각각의 웰에서의 GFP 발현은 M5 Plate 리더 분광 광도계 (Molecular Devices, Sunnyvale, CA)에서 485 nm 여기(excitation)된 후 515 nm 방출을 측정함으로써 분석되었다. 각각의 배양물에 대하여 세포 배양물 성장을 OD600 리딩(reading)으로 나눔으로써 측정된 GFP 농도가 표준화되었다.
표 10에서 나타난 바와 같이, 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 7에 비하여, 어닐링될 수 있는 링커 서열 RYSE 15는 테스트용 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드에서 GFP 리포터 유전자(reporter gene)의 상승된 GALl, TDH3 및 CYCl 프로모터 유도 발현(driven expression)을 가능하게 하였다.
표 10 - 프로모터와 GFP 리포터 사이의 어닐링할 수 있는 링커 서열 RYSE 15 (R15) 또는 어닐링할 수 있는 링커 서열 RYSE 7 (R7)을 포함하는 테스트용 집합된 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포에서의 GFP 발현 | ||||
테스트용 집합된 폴리뉴클레오타이드에서 프로모터와 GFP 리포터 유전자 사이에 위치한 어닐링할 수 있는 링커 서열 | 평균 GFP 발현% (3개의 균일한 대조군 구조* 중 하나를 포함하는 숙주 세포를 사용하여 얻은 평균 GFP 발현% 대비; 2개의 독립적인 숙주 세포 분리물) |
|||
GALl 프로모터 | TDH3 프로모터 | CYCl 프로모터 | 상기 3개의 프로모터의 평균 |
|
R15 | 79.34 | 91.42 | 81.92 | 84.22 |
R7 | 27.43 | 54.68 | 46.31 | 42.81 |
* 균일한(seamless) 대조군 구조는, 프로모터 서열이 GFP 리포터 유전자에 균일하게 연결된 점(예를 들어, 어닐링할 수 있는 링커의 사이에 끼어들지 않음)을 제외하고 테스트용 집합된 폴리뉴클레오타이드와 동일한 구조를 가졌다. |
실시예
10
본 실시예는 폴리뉴클레오타이드의 높은 생산량의(high-throughput) 조합적 집합 방법 및 조합적으로 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 높은 생산량의(high-throughput) 숙주 세포의 형성 방법을 제시한다.
본 실시예에서 사용된 폴리뉴클레오타이드 성분들 및, 상기 폴리뉴클레오타이드 성분들로부터 형성된 예상되는 집합된(assembled) 및 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드는, 도 12a에서 도식적으로 나타냈다. 폴리뉴클레오타이드 성분들은 업스트림 및 다운스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열 (US 및 DS), 6개의 서로 다른 프로모터 (P), 35개의 서로 다른 단백질 (G), 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 또는 프라이머 결합 절편/어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍의 측면에 배치된, URA3 선별표지(selectable marker)의 5' 및 3' 절편 (각각, URA 및 RA3)을 코딩하는 DNA 절편(segment)을 포함하였다.
LguI 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 RABit 또는 MULE를 분해함으로써 집합 벡터로부터 폴리뉴클레오타이드 성분들이 분리되었다. 이 때문에, 96-웰 플레이트 ("LguI 분해 플레이트(Digestion Plates)")가 하기 표에 나타난 바와 같이 설정되었고 상기 플레이트는 75분 동안 37℃에서 배양되었고, 그 후에 LguI 제한 엔도뉴클레아제는 PCR 기기에서 20분 동안 65℃에서 열 불활성화되었다.
LguI 분해 플레이트 | |
성분(웰 당) | 부피( uL ) |
667 fMole RABit 또는 MULE | 가변적임 |
10x Tango 버퍼 (Fermentas, Glen Burnie, MD) | 10 |
LguI (Fermentas, Glen Burnie, MD) | 2.5 |
ddH2O | to 100 |
폴리뉴클레오타이드 성분들은 SOE에 의해 집합되었다. 하기 표에 나타난 바와 같이, 각각의 LguI 분해 플레이트에 대하여, 3개의(triplicate) 96-웰 플레이트 ("SOE/PCR 플레이트")가 설정되었고 PCR 기계에서 열화학사이클(thermocycle) 되었다.
집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은 PCR 증폭되었다. 하기 표에 나타난 바와 같이 각각의 SOE/PCR 플레이트는 추가 성분이 첨가된 후 PCR 기계에서 열화학사이클(thermocycle) 되었다. 대응되는 SOE/PCR 플레이트의 웰은 96-딥 웰 블록(deep well block)으로 넣어진 후, 제조업자가 제시한 프로토콜에 따라(대략 45 uL의 말기(end) 부피) Omega Biotek E-Z 96® Cycle-Pure Kit (Omega Bio-Tek Inc., Norcross, GA)을 사용하여 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들이 정제되었다.
SOE / PCR 플레이트 | |||
추가 성분 (웰 당) | 부피 ( uL ) | ||
말단 프라이머들 S000(SEQ ID NO : 45) 및 S019(SEQ ID NO : 64)의 10 mM 원액 | 10 | ||
열화학사이클( Thermocycling ) 조건 | |||
최초 변성 | 98℃ | 2 min | |
35 사이클 |
변성 어닐링 신장 |
98℃ 67℃ 72℃ |
12 sec 30 sec 4.5 min |
최종 신장 | 72℃ | 7 min | |
유지 | 4℃ | ∞ |
도 12b는, 예시적인 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들 (박스 부분)이 1% 아가로스 겔에서 분해되었음을 보여준다.
클로닝을 위한 접착 말단(sticky end)을 형성하기 위하여 LguI 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 정제된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들이 분해되었다. 이를 위하여, 하기 표에 나타난 바와 같이 96-웰 플레이트 ("플레이트에서의 LguI 집합된 폴리뉴클레오타이드 분해")가 설정되었고 상기 플레이트들은 60분 동안 37℃에서 배양되었고, 그 후 LguI 제한 엔도뉴클레아제는 PCR 기계에서 20 분 동안 65℃에서 열 불활성화되었다. LguI 분해된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은, 제조업자들이 추천하는 프로토콜에 따라 ZR-96 Zymoclean™ Gel DNA Recovery Kit (Zymo Research Corporation, Orange, CA)를 사용하여 겔 정제되었다.
LguI 집합된 폴리뉴클레오타이드 LguI 분해 플레이트 | |
성분(웰 당) | 부피( uL ) |
정제된 집합된 폴리뉴클레오타이드 | 43 |
10x Tango 버퍼 | 5 |
LguI | 2 |
집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들은 pUC-19계 벡터 골격으로 연결되었다. 상기 벡터로 어떠한 삽입물도 연결되지 않을 때, pTRC 프로모터 (예를 들어, Saccharomyces cerevisiae의 TRC 유전자의 프로모터)는 GluRS의 발현을 유발하고 숙주 세포를 죽인다. 96-웰 플레이트 ("연결 플레이트(Ligation Plates)")는 하기 표에 나타난 바와 같이 설정되었고 상기 플레이트는 15분 동안 24℃에서 배양되 후 밤새 16℃에서 배양되었다. 연결 생성물은, 제조업자가 제안한 프로토콜에 따라, ZR-96 DNA Clean & Concentrator™-5 (Zymo Research Corporation, Orange, CA)를 사용하여 정제되었다.
연결 플레이트 | |
성분(웰 당) | 부피( uL ) |
ddH2O | 5 |
10x T4 DNA Ligase 버퍼 | 2 |
벡터 골격 | 2 |
정제된 집합된 폴리뉴클레오타이드 | 10 |
T4 DNA 리가아제 (NEB, Ipswich, MA) | 1 |
연결 생성물은 E. coli 성분 세포로 전기천공되었다(electroporate). 하기 표에 나타난 바와 같이, 미리 냉각된 96-웰 전기천공(electroporation) 플레이트가 설정된 후, 전기천공이 실시되었다.
전기천공 플레이트 | ||
성분(웰 당) | 부피( uL ) | |
정제된 연결 생성물 | 10 | |
Lucigen 10G 성분 세포(Lucigen Corporation, Middleton, WI) | 25 | |
전기천공 설정 | ||
2400V | 750Ω | 25 uF |
250 uL의 미리 데워진 SOC를 포함하는 1.1 mL 96-웰 배양 플레이트 ("배양 플레이트(Culture Plate)")가 준비된 후, 각각의 웰로부터 100 uL SOC를 취하여, 전기천공(electroporation) 후에 즉시 전기천공(electroporate)된 세포에 첨가되었다. SOC와 세포들이 혼합되었고, 100 uL의 각각의 혼합물은 배양 플레이트로 다시 옮겨졌다. 배양 플레이트는 Multitron II Incubator Shaker (ATR Biotech, Laurel, MD)에서 1시간 동안 37℃에서 배양되었다. 세포의 2개의 희석물 (3 ul 및 240 ul)은 50 ug/mL 카나마이신을 포함하는 LB 아가에 옮겨진 후 37℃에서 밤새 배양되었다. 콜로니가 선택된 후, 웰 당 카나마이신을 갖는 1 mL LB 배지를 포함하는 96 딥 웰 플레이트에서 성장되었고, LguI 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 제한 분석(restriction analysis)을 위하여 DNA가 추출되었다. 대략 8 kb 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 24개의 예시적인 콜로니 중 22개 대한 상기 제한 분석의 결과를 도 12c에 나타냈다.
염색체로 통합된 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 효모 세포들은 말단 염색체의 타겟팅(targeting) 서열과 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들의 선별표지(selectable marker) 절편(segment) 사이의 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 형성되었다. 이를 위하여, 하기 표에 나타낸 바와 같이, 96-웰 PCR 플레이트 ("효모 형질변환 플레이트(Yeast Transformation Plates)")가 준비된 후, PCR 기계에서 열 충격 형질변환(heat shock transformation)이 실시되었다.
효모 형질변환 플레이트 | |
성분(웰 당) | 부피( uL ) |
Miniprep DNA(20 ng/uL) | 10 |
효모 세포 성분 * | 40 |
PEG/SS/LiAc 마스터 믹스 ** | 200 |
열 충격 | |
30℃ | 30 min |
42℃ | 45 min |
24℃(선택적) | 30 min |
* 100 mL YPD에서 밤새 세포를 성장시키고, 배양물을 희석하고, 밤새 약 0.8의 OD600으로 성장시킨 후, 5분 동안 3,000g에서 배양물을 회전시키고, 1 L ddH2O를 사용하여 세포 펠렛을 수세하고, 1L 100 mM 리튬 아세테이트 (LiAc)로 상기 세포 펠렛을 수세하고, 100 mM LiAc에서 총 부피 18 mL까지 세포 펠렛을 재분산시켜서 제조됨. ** 4개의 PCR 플레이트에 충분한 마스터 믹스는 100 mL 50% PEG, 끓는(적어도 10분 동안 95℃) 4 mL 단일 가닥의 DNA, 15 mL 1M LiAc를 포함한다. |
효모 형질변환 플레이트는 2분 동안 2,00Og에서 회전되었고, 상층물이 제거된 후 세포 펠렛들은 200 uL ddH2O를 사용하여 3회 수세되었다. 세포 펠렛은, 이전에 제조된, 웰 당 360 uL 차가운 BSM을 포함하는 미리 냉각된 96-웰 배양 플레이트 ("시드 플레이트(Seed Plates)")로부터 취한 100 uL cold Bird Seed Media (BSM)를 사용하여 재분산되었다. 재분산된 세포들은 시드 플레이트로 옮겨진 후 Multitron II Incubator Shaker에서 3O℃에서 밤새 성장되었다. 상기 시드 플레이트는 5분 동안 3,000g에서 회전되고, 60 uL의 액체를 제외하고 모두 제거되었고, 세포 펠렛을 재분산하기 위하여 덮개가 덮여진 시드 플레이트는 l,000rpm에서 교반되었다.
실시예
11
본 실시예는 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 형성된 집합된 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 효모 세포들을 형성하는 방법을 제시한다.
본 실시예에 사용된 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드 및 폴리뉴클레오타이드 성분들 및 집합과 염색체의 통합(integration)에서 얻어진 예상되는 염색체의 위치는, 도 13a에 도식적으로 나타냈다.
효모 세포 형질변환은 하기 표에 나타낸 바와 같이 실시되었다. 열 충격(heat shock) 후에, 세포들을 회전시켜 상층물이 제거된 후, 세포들은 400 uL ddH2O에 재분산되었고 숙주 세포 형질변환체는 우라실 결핍 아가로 100 내지 200 uL의 세포 분산물을 옮겨서 선택되었다.
효모 형질변환 | |
성분 | 부피( uL ) |
성분 및 집합된 폴리뉴클레오타이드 (각각 300-500 ng) | 20 |
효모 세포 성분 * | 세포 펠렛 * |
50% PEG 용액 | 240 |
1M LiAc pH 8.4-8.9 | 36 |
끓는 (95℃에서 5분 동안) 단일 가닥의 DNA (10 mg/mL) (Invitrogen, Carlsbad, CA) | 10 |
ddH2O | 54 |
열 충격 | |
42℃ | 40 min |
* 밤새 세포를 성장시키고, 배양물을 희석하고, 밤새 30℃에서 25 mL YPD에서 콜로니로부터 0.7 내지 0.9의 OD600으로 세포를 성장시킨 후, 5 내지 40 mL ddH2O로 세포 펠렛을 수세한 후, 1 mL ddH2O로 세포 펠렛을 수세한 후, 1 mL 100 mM 리튬 아세테이트 (LiAc)로 상기 세포 펠렛을 수세하고, 상기 세포를 침전시키기 위하여 30초 동안 마이크로센트리퓨지에서 회전시킨 후, 상층물을 제거시켜서 제조되었다. |
집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드들의 성공적인 통합은 cPCR 프라이머 A, B, E 및 F (염색체의 통합(integration) 부위의 5' 접합부) 또는 cPCR 프라이머 C, D, G 및 H (염색체의 통합(integration) 부위의 3' 접합부)를 사용하여 cPCR에 의해 측정되었다 (도 13a). 도 13b에 나타낸 바와 같이, 분석된 모든 8개의 콜로니들은 예상되는 집합된(assembled) 폴리뉴클레오타이드의 양성 염색체의 통합(integration) 이벤트를 나타내는 700 bp PCR 밴드를 생성하였고, 원래의 위치에 생성되었을 950 bp PCR 밴드를 결핍하였다.
실시예
12
본 실시예는 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의해 형성된 조합적으로 집합된(assembled) 및 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들을 포함하는 높은 생산량의(high-throughput)의 효모 세포의 형성 방법을 제시한다.
본 실시예에서 사용된 폴리뉴클레오타이드 성분들 및 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)에 의한 집합 및 결합으로부터 얻은 예상되는 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드들은, 도 14A에 도식적으로 나타냈다. 폴리뉴클레오타이드 성분들은 업스트림 및 다운스트림 염색체의 타겟팅(targeting) 서열 (US 및 DS)을 코딩하는 DNA 절편, 6개의 서로 다른 프로모터 (P), 35개의 서로 다른 단백질 (G) 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍 또는 프라이머 결합 절편/어닐링될 수 있는 링커 서열 쌍의 측면에 배치된, URA3 선별표지(selectable marker)의 5' 및 3' 절편 (각각, URA 및 RA3)을 포함하였다.
LguI 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 RABit 또는 MULE를 분해함으로써, 집합 벡터로부터 폴리뉴클레오타이드 성분들이 분리되었다. 이를 위하여, 96-웰 플레이트 ("LguI 분해 플레이트(LguI Digestion Plate)")는 하기 표에 나타난 바와 같이 준비된 후 상기플레이트는 75분 동안 37℃에서 배양되었고, 그 후에 LguI 제한 엔도뉴클레아제는 PCR 기계에서 20분 동안 65℃에서 열 불활성화되었다.
LguI 분해 플레이트 | |
성분(웰 당) | 부피( uL ) |
667 fMole RABit 또는 MULE | 가변적임 |
10x Tango 버퍼 (Fermentas, Glen Burnie, MD) | 5 |
LguI (Fermentas, Glen Burnie, MD) | 2.5 |
ddH2O | to 50 |
염색체로 통합된(integrated), 조합적으로 집합된(assembled) 및 조합적으로 결합된(combined) 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 효모 세포를 형성하기 위하여, 96-웰 PCR 플레이트 ("효모 형질변환 플레이트(Yeast Transformation Plate)")가 준비된 후, 열 충격 형질변환이 하기 표에 나타난 바와 같이 PCR 기계에서 실시되었다.
효모 형질변환 플레이트 | |
성분(웰 당) | 부피( uL ) |
폴리뉴클레오타이드 성분 | 10 |
효모 세포 성분 * | 40 |
PEG/SS/LiAc 마스터 믹스 ** | 200 |
열 충격 | |
30℃ | 30 min |
42℃ | 45 min |
24℃(선택적) | 30 min |
*100 mL YPD에서 밤새 세포를 성장시키고, 상기 배양물을 희석시키고 약 0.8의 OD600까지 밤새 성장시킨 후, 5분 동안 3,00Og에서 배양물을 회전시킨 후, 1 L ddH2O를 사용하여 세포 펠렛을 수세하고, 1 L 10OmM 리튬 아세테이트 (LiAc)를 사용하여 세포 펠렛을 수세한 후, 10O mM LiAc 내 총 18 mL의 부피까지 상기 세포 펠렛을 재분산시켜서 제조됨. **4개의 PCR 플레이트에 대한 마스터 믹스는 contains 100 mL 50% PEG, 4 mL의 끓는 (적어도 10 분 동안의 95℃) 단일 가닥 DNA, 15 mL 1 M LiAc를 포함한다. |
효모 형질변환 플레이트가 2분 동안 2,00Og에서 회전된 후 상층물은 제거되었으며, 세포 펠렛은 200 uL ddH2O를 사용하여 3회 수세되었다. 웰 당 360 uL의 차가운 BSM을 포함하는, 미리 제조된, 미리 냉각된 96-웰 배양 플레이트 ("시드 플레이트(Seed Plate)")로부터 취한 100 uL 차가운 Bird Seed Media (BSM)를 사용하여 세포 펠렛이 재분산되었다. 분산된 세포는 시드 플레이트로 옮겨진 후 Multitron II Incubator Shaker에서 3O℃에서 밤새 성장되었다. 시드 플레이트는 5분 동안 3,000g에서 회전된 후, 60 uL를 제외하고 모든 액체가 제거된 후, 세포 펠렛을 재분산하기 위하여 덮개가 덮여진 시드 플레이트는 l,000rpm에서 교반되었다. 세포의 다양한 희석물은 우라실이 결힙된 아가로 옮겨진 후 37℃에서 밤새 배양되었다. 기능적 URA3 선별표지(selectable marker)를 포함하는 효모 세포 형질변환체의 콜로니를 취하여 분석하였다.
각각의 공개 공보 또는 특허 출원이 특히, 그리고 개별적으로 인용에 의해 통합되는 것으로 나타나는 것처럼, 본 명세서에서 인용된 모든 공개 공보, 특허 및 특허 출원은 인용에 의해 본원에 통합된다. 명확히 이해시킬 목적으로 예시 및 실시예의 방법으로 어느 정도 상세하게 발명이 제시되었다고 하더라도, 첨부된 청구항의 사상 또는 범위에서 벗어남이 없이, 어떠한 변화 또는 변형이 본 발명의 내용에 이루어질 수 있다는 것은, 본 발명의 내용의 관점에서 당업자에게 분명할 것이다. 상기에 제시된 본 발명의 실시예는 단지 예시적인 것을 의도할 뿐이며 당업자는 통상적인 경험, 본원에 제시된 특정 공정에 대한 수많은 균등물 이상을 사용하지 않고도 인지하거나 확신할 수 있을 것이다. 그러한 모든 균등물들은 본 발명의 범위 내에 있는 것으로 간주되며 하기의 청구항에 의해 뒷받침된다. 더욱이, 본 명세서 및 청구항에 사용된 바와 같은, 단수 형태들 "하나의(a 또는 an)" 및 "상기(the)"는, 분명하게 달리 표현하지 않는 한, 복수 형태를 포함한다.
SEQUENCE LISTING
<110> Amyris Biotechnologies, Inc.
Serber, Zach
Lowe, Raymond
Ubersax, Jeffrey A.
Chandran, Sunil S.
Dean, Erik Jedediah
Platt, Darren M.
Takeoka, Kenneth Toshiki
<120> COMPOSITIONS AND METHODS FOR THE
ASSEMBLY OF POLYNUCLEOTIDES
<130> 11836-047-228
<150> 61/116,109
<151> 2008-11-19
<150> 61/162,230
<151> 2009-03-20
<160> 220
<170> FastSEQ for Windows Version 4.0
<210> 1
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Gold (Au)
<400> 1
gctcacacgc ggccaggggg agcc 24
<210> 2
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Lapis (La)
<400> 2
cgctcgtcca acgccggcgg acct 24
<210> 3
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Copper (Cu)
<400> 3
atccccgcgt gcttggccgg ccgt 24
<210> 4
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Quartz (Qz)
<400> 4
aacctgcagg ccgcgagcgc cgat 24
<210> 5
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Iron (Fe)
<400> 5
aacgcgatcg ccgacgccgc cgat 24
<210> 6
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Obsidian (Ob)
<400> 6
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<210> 7
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Indigo (In)
<400> 7
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<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Silver (Ag)
<400> 8
agcccctcag cccccctagc gtcg 24
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Pme1-5prime
<400> 9
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<210> 10
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Linker Pme1-3prime
<400> 10
cggtgtttaa accccagcgc ctggcggg 28
<210> 11
<211> 2737
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> pRYSE Entry vector 1
<400> 11
gtaaaacgac ggccagtatt aaccctcact aaagggaact cgaggctctt cagacggcac 60
ggccacgcgt ttaaaccgcc tggcagactc catatgctat gcggcatcag agcagattgt 120
actgagagtg caccatatgc ggtgtgaaat accgcacaga tgcgtaagga gaaaataccg 180
catcaggcgc cattcgccat tcaggctgcg caactgttgg gaagggcgat cggtgcgggc 240
ctcttcgcta ttacgccagc tggcgaaagg gggatgtgct gcaaggcgat taagttgggt 300
aacgccaggg ttttcccagt cacgacgttg taaaacgacg gccagtgaat tcgagctcgg 360
tacccgggga tcctctagcg tcgacctgca ggcatgcaag cttggcgtaa tcatggtcat 420
agctgtttcc tgtgtgaaat tgttatccgc tcacaattcc acacaacata cgagccggaa 480
gcataaagtg taaagcctgg ggtgcctaat gagtgagcta actcacatta attgcgttgc 540
gcgctagcga gtcatccagc tcacacgcgg ccagggggag cctgaagagc gagctcccgc 600
tgagcaataa ctagcgtcat agctgtttcc tgggtcgttc ggctgcggcg agcggtatca 660
gctcactcaa aggcggtaat acggttatcc acagaatcag gggataacgc aggaaagaac 720
atgtgagcaa aaggccagca aaaggccagg aaccgtaaaa aggccgcgtt gctggcgttt 780
ttccataggc tccgcccccc tgacgagcat cacaaaaatc gacgctcaag tcagaggtgg 840
cgaaacccga caggactata aagataccag gcgtttcccc ctggaagctc cctcgtgcgc 900
tctcctgttc cgaccctgcc gcttacccga tacctgtccg cctttctccc ttcgggaagc 960
gtggcgcttt ctcatagctc acgctgtagg tatctcagtt cggtgtaggt cgttcgctcc 1020
aagctgggct gtgtgcacga accccccgtt cagcccgacc gctgcgcctt atccggtaac 1080
tatcgtcttg attccaaccc ggtaagacac gacttatcgc cactggcagc agccactggt 1140
aacaggatta gcagagcgag gtatgtaggc ggtgctacag agttcttgaa gtggtggcct 1200
aactacggct acactagaag aacagtattt ggtatctgcg ctctgctgaa gccagttacc 1260
ttcggaaaaa gagttggtag ctcttgatcc ggcaaacaaa ccaccgctgg tagcggtggt 1320
ttttttgttt gcaagcagca gattacgcgc agaaaaaaag gatctcaaga agatcctttg 1380
atcttttcta cggggtctga cgctcagtgg aacgaaaact cacgttaagg gattttggtc 1440
atgagattat caaaaaggat cttcacctag atccttttaa attaaaaatg aagttttaaa 1500
tcaatctaaa gtatatatga gtaacttggt cgcatgctta ccaatgctta atcagtgagg 1560
cacctatctc agcgatctgt ctatttcgtt catccatagt tgcctgactg cccgtcgtgt 1620
agataactac gatacgggag ggcttaccat ctggccccag tgctgcaatg ataccgcgag 1680
acccacgctc accggctcca gatttatcag caataaacca gccagccgga agggccgagc 1740
gcagaagtgg tcctgcaact ttatccgcct ccatccagtc tattaattgt tgccgggaag 1800
ctagagtaag tagttcgcca gttaatagtt tgcgcaacgt tgttgccatt gctacaggca 1860
tcgtggtgtc acgctcgtcg tttggtatgg cttcattcag ctccggttcc caacgatcaa 1920
ggcgagttac atgatccccc atgttgtgca aaaaagcggt tagctccttc ggtcctccga 1980
tcgttgtcag aagtaagttg gccgcagtgt tatcactcat ggttatggca gcactgcata 2040
attctcttac tgtcatgcca tccgtaagat gcttttctgt gactggtgag tactcaacca 2100
agtcattctg agaatagtgt atgcggcgac cgagttgctc ttgcccggcg tcaatacggg 2160
ataataccgc gccacatagc agaactttaa aagtgctcat cattggaaaa cgttcttcgg 2220
ggcgaaaact ctcaaggatc ttaccgctgt tgagatccag ttcgatgtaa cccactcgtg 2280
cacccaactg atcttcagca tcttttactt tcaccagcgt ttctgggtga gcaaaaacag 2340
gaaggcaaaa tgccgcaaaa aagggaataa gggcgacacg gaaatgttga atactcatca 2400
attgcctttt tcaatattat tgaagcattt atcagggtta ttgtctcatg agcggttaca 2460
tatttgaatg tatttagaaa aataaacaaa taggggttcc gcgcacattt ccccgaaaag 2520
tgccacctga cgtctaagaa accattatta tcatgacatt aacctataaa aataggcgta 2580
tcacgaggcc ctttcatctc gcgcgtttcg gtgatgacgg tgaaaacctc tgacacatgc 2640
agctcccgga gacagtcaca gcttgtctgt aagcggatgc cgggagcaga caagcccgtc 2700
agggcgcgtc agcgggtgtt ggcgggtgtc ggggctg 2737
<210> 12
<211> 7692
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> DNA fragment resulting from Stitch 7
<400> 12
gacggcacgg ccacgcgttt aaaccgccct ccaagctgac ataaatcgca ctttgtatct 60
actttttttt attcgaaaac aaggcacaac aatgaatcta tcgccctgtg agattttcaa 120
tctcaagttt gtgtaataga tagcgttata ttatagaact ataaaggtcc ttgaatatac 180
atagtgtttc attcctatta ctgtatatgt gactttacat tgttacttcc gcggctattt 240
gacgttttct gcttcaggtg cggcttggag ggcaaagtgt cagaaaatcg gccaggccgt 300
atgacacaaa agagtagaaa acgagatctc aaatatctcg aggcctgtcc tctatacaac 360
cgcccagctc tctgacaaag ctccagaacg gttgtctttt gtttcgaaaa gccaaggtcc 420
cttataattg ccctccattt tgtgtcacct atttaagcaa aaaattgaaa gtttactaac 480
ctttcattaa agagaaataa caatattata aaaagcgctt aaagctcaca cgcggccagg 540
gggagccgag ctcctcgaga agttaagatt atatgaataa ctaaatacta aatagaaatg 600
taaatacagt gagaacaaaa caaaaaaaaa cgaacagaga aactaaatcc acattaattg 660
agagttctat ctattagaaa atgcaaactc caactaaatg ggaaaacaga taacctcttt 720
tatttttttt taatgtttga tattcgagtc tttttctttt gttaggttta tattcatcat 780
ttcaatgaat aaaagaagct tcttattttg gttgcaaaga atgaaaaaaa aggatttttt 840
catacttcta aagcttcaat tataaccaaa aattttataa atgaagagaa aaaatctagt 900
agtatcaagt taaacctatt cctttgccct cggacgagtg ctggggcgtc ggtttccact 960
atcggcgagt acttctacac agccatcggt ccagacggcc gcgcttctgc gggcgatttg 1020
tgtacgcccg acagtcccgg ctccggatcg gacgattgcg tcgcatcgac cctgcgccca 1080
agctgcatca tcgaaattgc cgtcaaccaa gctctgatag agttggtcaa gaccaatgcg 1140
gagcatatac gcccggagcc gcggcgatcc tgcaagctcc ggatgcctcc gctcgaagta 1200
gcgcgtctgc tgctccatac aagccaacca cggcctccag aagaagatgt tggcgacctc 1260
gtattgggaa tccccgaaca tcgcctcgct ccagtcaatg accgctgtta tgcggccatt 1320
gtccgtcagg acattgttgg agccgaaatc cgcgtgcacg aggtgccgga cttcggggca 1380
gtcctcggcc caaagcatca gctcatcgag agcctgcgcg acggacgcac tgacggtgtc 1440
gtccatcaca gtttgccagt gatacacatg gggatcagca atcgcgcata tgaaatcacg 1500
ccatgtagtg tattgaccga ttccttgcgg tccgaatggg ccgaacccgc tcgtctggct 1560
aagatcggcc gcagcgatcg catccatggc ctccgcgacc ggctgcagaa cagcgggcag 1620
ttcggtttca ggcaggtctt gcaacgtgac accctgtgca cggcgggaga tgcaataggt 1680
caggctctcg ctgaattccc caatgtcaag cacttccgga atcgggagcg cggccgatgc 1740
aaagtgccga taaacataac gatctttgta gaaaccatcg gcgcagctat ttacccgcag 1800
gacatatcca cgccctccta catcgaagct gaaagcacga gattcttcgc cctccgagag 1860
ctgcatcagg tcggagacgc tgtcgaactt ttcgatcaga aacttctcga cagacgtcgc 1920
ggtgagttca ggctttttca tttttaatgt tacttctctt gcagttaggg aactataatg 1980
taactcaaaa taagattaaa caaactaaaa taaaaagaag ttatacagaa aaacccatat 2040
aaaccagtac taatccataa taataataca caaaaaaact atcaaataaa accagaaaac 2100
agattgaata gaaaaatttt ttcgatctcc ttttatattc aaaattcgat atatgaaaaa 2160
gggaactctc agaaaatcac caaatcaatt taattagatt tttcttttcc ttctagcgtt 2220
ggaaagaaaa atttttcttt ttttttttag aaatgaaaaa tttttgccgt aggaatcacc 2280
gtataaaccc tgtataaacg ctactctgtt cacctgtgta ggctatgatt gacccagtgt 2340
tcattgttat tgcgagagag cgggagaaaa gaaccgatac aagagatcca tgctggtata 2400
gttgtctgtc caacactttg atgaacttgt aggacgatga tgtgtattac tagtgtcgac 2460
gctcgtccaa cgccggcgga cctcttttaa ttctgctgta acccgtacat gcccaaaata 2520
gggggcgggt tacacagaat atataacatc gtaggtgtct gggtgaacag tttattcctg 2580
gcatccacta aatataatgg agcccgcttt ttaagctggc atccagaaaa aaaaagaatc 2640
ccagcaccaa aatattgttt tcttcaccaa ccatcagttc ataggtccat tctcttagcg 2700
caactacaga gaacaggggc acaaacaggc aaaaaacggg cacaacctca atggagtgat 2760
gcaacctgcc tggagtaaat gatgacacaa ggcaattgac ccacgcatgt atctatctca 2820
ttttcttaca ccttctatta ccttctgctc tctctgattt ggaaaaagct gaaaaaaaag 2880
gttgaaacca gttccctgaa attattcccc tacttgacta ataagtatat aaagacggta 2940
ggtattgatt gtaattctgt aaatctattt cttaaacttc ttaaattcta cttttatagt 3000
tagtcttttt tttagtttta aaacaccaag aacttagttt cgatccccgc gtgcttggcc 3060
ggccgtatga cagatgtagt aatagtatcc gccgcaagaa cagcagttgg aaagtttgga 3120
ggctctcttg caaagattcc agcccctgaa ttaggagctg ttgttataaa agccgcactt 3180
gaaagggcag gtgtgaagcc tgaacaagtc agtgaagtca taatgggtca agttttaact 3240
gccggctcag gtcaaaaccc agccagacag gctgctatta aagctggttt accggcaatg 3300
gttcccgcga tgactattaa caaagtttgt ggttccggcc ttaaagcagt gatgttagct 3360
gctaacgcaa taatggctgg ggatgctgaa atagtagtcg ccggaggaca agagaatatg 3420
agtgcagccc cacacgtttt accgggctcc agagatggat tccgtatggg tgacgctaag 3480
ttagttgata ctatgatagt agatggacta tgggatgtct ataaccaata tcacatgggt 3540
attacagccg aaaacgtggc gaaagaatat gggattacga gagaagcaca ggatgagttc 3600
gccgtgggta gtcaaaataa ggcggaggcg gctcaaaaag ccggtaaatt tgatgaggaa 3660
atagtacctg tccttatacc acagagaaaa ggagatccgg ttgcctttaa aaccgatgag 3720
tttgtcagac aaggcgccac attagacagc atgtctggtt tgaaacctgc ttttgataag 3780
gccgggaccg tgaccgctgc taatgcgtca ggactaaacg atggagctgc ggcggtggtt 3840
gttatgtctg ctgctaaagc aaaagaatta gggttaactc cattagccac tatcaaatct 3900
tatgctaacg cgggggtgga cccaaaagtg atgggaatgg gacctgttcc agccagtaag 3960
agggcgttat ctagggccga atggactcct caagacttgg atttaatgga aattaatgaa 4020
gcatttgccg cacaggcgtt agctgtccac caacagatgg gttgggatac aagtaaggtc 4080
aatgttaatg gaggtgcaat cgccattggt cacccaattg gtgcgtccgg atgtagaatt 4140
ttagttaccc tactgcatga gatgaagagg cgtgatgcaa agaaaggctt agcttcgttg 4200
tgtatcggtg gtggaatggg tgtggcatta gcagtcgagc gtaaataaaa cctgcaggcc 4260
gcgagcgccg attaagtgaa tttactttaa atcttgcatt taaataaatt ttctttttat 4320
agctttatga cttagtttca atttatatac tattttaatg acattttcga ttcattgatt 4380
gaaagctttg tgttttttct tgatgcgcta ttgcattgtt cttgtctttt tcgccacatg 4440
taatatctgt agtagatacc tgatacattg tggatgctga gtgaaatttt agttaataat 4500
ggaggcgctc ttaataattt tggggatatt ggcttaacgc gatcgccgac gccgccgatt 4560
gacagcagga ttatcgtaat acgtaatagt tgaaaatctc aaaaatgtgt gggtcattac 4620
gtaaataatg ataggaatgg gattcttcta tttttccttt ttccattcta gcagccgtcg 4680
ggaaaacgtg gcatcctctc tttcgggctc aattggagtc acgctgccgt gagcatcctc 4740
tctttccata tctaacaact gagcacgtaa ccaatggaaa agcatgagct tagcgttgct 4800
ccaaaaaagt attggatggt taataccatt tgtctgttct cttctgactt tgactcctca 4860
aaaaaaaaaa atctacaatc aacagatcgc ttcaattacg ccctcacaaa aacttttttc 4920
cttcttcttc gcccacgtta aattttatcc ctcatgttgt ctaacggatt tctgcacttg 4980
atttattata aaaagacaaa gacataatac ttctctatca atttcagtta ttgttcttcc 5040
ttgcgttatt cttctgttct tctttttctt ttgtcatata taaccaaggc ggccgctggc 5100
gagggagata tgaaactctc aactaaactt tgttggtgtg gtattaaagg aagacttagg 5160
ccgcaaaagc aacaacaatt acacaataca aacttgcaaa tgactgaact aaaaaaacaa 5220
aagaccgctg aacaaaaaac cagacctcaa aatgtcggta ttaaaggtat ccaaatttac 5280
atcccaactc aatgtgtcaa ccaatctgag ctagagaaat ttgatggcgt ttctcaaggt 5340
aaatacacaa ttggtctggg ccaaaccaac atgtcttttg tcaatgacag agaagatatc 5400
tactcgatgt ccctaactgt tttgtctaag ttgatcaaga gttacaacat cgacaccaac 5460
aaaattggta gattagaagt cggtactgaa actctgattg acaagtccaa gtctgtcaag 5520
tctgtcttga tgcaattgtt tggtgaaaac actgacgtcg aaggtattga cacgcttaat 5580
gcctgttacg gtggtaccaa cgcgttgttc aactctttga actggattga atctaacgca 5640
tgggatggta gagacgccat tgtagtttgc ggtgatattg ccatctacga taagggtgcc 5700
gcaagaccaa ccggtggtgc cggtactgtt gctatgtgga tcggtcctga tgctccaatt 5760
gtatttgact ctgtaagagc ttcttacatg gaacacgcct acgattttta caagccagat 5820
ttcaccagcg aatatcctta cgtcgatggt catttttcat taacttgtta cgtcaaggct 5880
cttgatcaag tttacaagag ttattccaag aaggctattt ctaaagggtt ggttagcgat 5940
cccgctggtt cggatgcttt gaacgttttg aaatatttcg actacaacgt tttccatgtt 6000
ccaacctgta aattggtcac aaaatcatac ggtagattac tatataacga tttcagagcc 6060
aatcctcaat tgttcccaga agttgacgcc gaattagcta ctcgcgatta tgacgaatct 6120
ttaaccgata agaacattga aaaaactttt gttaatgttg ctaagccatt ccacaaagag 6180
agagttgccc aatctttgat tgttccaaca aacacaggta acatgtacac cgcatctgtt 6240
tatgccgcct ttgcatctct attaaactat gttggatctg acgacttaca aggcaagcgt 6300
gttggtttat tttcttacgg ttccggttta gctgcatctc tatattcttg caaaattgtt 6360
ggtgacgtcc aacatattat caaggaatta gatattacta acaaattagc caagagaatc 6420
accgaaactc caaaggatta cgaagctgcc atcgaattga gagaaaatgc ccatttgaag 6480
aagaacttca aacctcaagg ttccattgag catttgcaaa gtggtgttta ctacttgacc 6540
aacatcgatg acaaatttag aagatcttac gatgttaaaa aataatcttc ccccatcgat 6600
tgcatcttgc tgaaccccct tcataaatgc tttatttttt tggcagcctg ctttttttag 6660
ctctcattta atagagtagt tttttaatct atatactagg aaaactcttt atttaataac 6720
aatgatatat atatatattt tttttataaa gaattgtata tctatattta taacacaata 6780
aatctaatct caactttttt ctttaaagtt aagcccaacc gatttttttt ctcataaggc 6840
gcgccacggt cgtgcggatt aaagcttttg attaagcctt ctagtccaaa aaacacgttt 6900
ttttgtcatt tatttcattt tcttagaata gtttagttta ttcattttat agtcacgaat 6960
gttttatgat tctatatagg gttgcaaaca agcatttttc attttatgtt aaaacaattt 7020
caggtttacc ttttattctg cttgtggtga cgcgtgtatc cgcccgctct tttggtcacc 7080
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acacaggacc tccagataac ttgaccgaag ttttttcttc agtctggcgc tctcccaact 7260
gagctaaatc cgcttactat ttgttatcag ttcccttcat atctacatag aataggttaa 7320
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attgggtgaa taatttgata attttgagat tcaattgtta atcaatgtta caatattatg 7440
tatacagagt atactagaag ttctcttcgg agatcttgaa gttcacaaaa gggaatcgat 7500
atttctacat aatattatca ttacttcttc cccatcttat atttgtcatt cattattgat 7560
tatgatcaat gcaataatga ttggtagttg ccaaacattt aatacgatcc tctgtaatat 7620
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
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gccccgaaga acgttttcca atgatgagca cttttaaagt tctgctatgt ggcgcggtat 360
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aggaagcgga agagcgccca atacgcaaac cgcctctccc cgcgcgttgg ccgattcatt 1980
aatgcagctg gcacgacagg tttcccgact ggaaagcggg cagtgagcgc aacgcaatta 2040
atgtgagtta gctcactcat taggcacccc aggctttaca ctttatgctt ccggctcgta 2100
tgttgtgtgg aattgtgagc ggataacaat ttcacacagg aaacagctat gaccatgagt 2160
ttaaacatga gcaaaggcga agaactgttc acgggcgttg taccgatcct ggtggaactg 2220
gacggggatg tgaatgggca caagttttca gtgagcggcg aaggagaagg cgatgcgacc 2280
tacggcaaac tgaccctgaa attcatttgc accaccggta aacttcccgt gccgtggccc 2340
accctggtga ccacctttgg ctatggcgta cagtgcttcg cgcgttaccc ggatcacatg 2400
aaacgccacg acttctttaa gagcgctatg ccagagggct acgtccagga acgcaccata 2460
ttcttcaaag acgacggcaa ctacaagacg cgcgctgaag tcaagtttga aggggacacg 2520
ctggtgaacc gtattgagct gaagggcatc gacttcaagg aggacgggaa catcctgggc 2580
cataagctgg agtacaatta caacagccac aacgtgtata tcatggcgga caagcagaag 2640
aacggcatca aggtcaactt caagatccgg cacaacatcg aggatggcag cgtgcagctg 2700
gcggatcatt atcaacagaa caccccgatt ggcgatggac cggtgctgct gcccgataat 2760
cattacctga gtacccagag cgccctgagc aaggacccga atgagaagcg tgatcacatg 2820
gtactgctgg aatttgtgac cgcggctggc atcacccacg gcatggatga actgtataaa 2880
taaggtaccg cggccgccgt ctccggggac agacgtctcg ccccttaggg tccatgcagt 2940
tggcttcgat ggtctctttt ttataggtcg agtaccaatt cgccctatag tgagtcgtat 3000
tacaattcac tggccgtcgt tttacaacgt cgtgactggg aaaaccctgg cgttacccaa 3060
cttaatcgcc ttgcagcaca tccccctttc gccagctggc gtaatagcga agaggcccgc 3120
accgatcgcc cttcccaaca gttgcgcagc ctgaatggcg aatgggacgc gccctgtagc 3180
ggcgcattaa gcgcggcggg tgtggtggtt acgcgcagcg tgaccgctac acttgccagc 3240
gccctagcgc ccgctccttt cgctttcttc ccttcctttc tcgccacgtt cgccggcttt 3300
ccccgtcaag ctctaaatcg ggggctccct ttagggttcc gatttagtgc tttacggcac 3360
ctcgacccca aaaaacttga ttagggtgat ggttcacgta gtgggccatc gccctgatag 3420
acggtttttc gccctttgac gttggagtcc acgttcttta atagtggact cttgttccaa 3480
actggaacaa cactcaaccc tatctcggtc tattcttttg atttataagg gattttgccg 3540
atttcggcct attggttaaa aaatgagctg atttaacaaa aatttaacgc gaattttaac 3600
aaaatattaa cgcttacaat ttaggtg 3627
<210> 14
<211> 915
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic DNA fragment 1040
<400> 14
taagtagttg accatagcta tggaaggtct cacggaaatg ttgaatactc atcaattgcc 60
tttttcaata ttattgaagc atttatcagg gttattgtct catgagcggt tacatatttg 120
aatgtattta gaaaaataaa caaatagggg ttccgcgcac atttccccga aaagtgccac 180
ctgacgtcta agaaaccatt attatcatga cattaaccta taaaaatagg cgtatcacga 240
ggccctttca tctcgcgcgt ttcggtgatg acggtgaaaa cctctgacac atgcagctcc 300
cggagacagt cacagcttgt ctgtaagcgg atgccgggag cagacaagcc cgtcagggcg 360
cgtcagcggg tgttggcggg tgtcggggct ggtaaaacga cggccagtat taaccctcac 420
taaagggaac tcgaggctct tcacgctcgt ccaacgccgg cggaccttgg atgactcgct 480
agccgcccaa tacgcaaacc gcctctcccc gcgcgttggc cgattcatta atgcagctgg 540
cacgacaggt ttcccgactg gaaagcgggc agtgagcgca acgcaattaa tgtgagttag 600
ctcactcatt aggcacccca ggctttacac tttatgcttc cggctcgtat gttgtgtgga 660
attgtgagcg gataacaatt tcacacagga aacagctatg agcaaaggcg aagaactgtt 720
cacgggcgtt gtaccgatcc tggtggaact ggacggggat gtgaatgggc acaagttttc 780
agtgagcggc gaaggagaag gcgatgcgac ctacggcaaa ctgaccctga aattcatttg 840
caccaccggt aaacttcccg tgccgtggcc caccctggtg accacctttg gagacgccac 900
gtacatggct tattg 915
<210> 15
<211> 882
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic DNA fragment 1041
<400> 15
taagtagttg accatagcta tggaaggtct ccctttggct atggcgtaca gtgcttcgcg 60
cgttacccgg atcacatgaa acgccacgac ttctttaaga gcgctatgcc agagggctac 120
gtccaggaac gcaccatatt cttcaaagac gacggcaact acaagacgcg cgctgaagtc 180
aagtttgaag gggacacgct ggtgaaccgt attgagctga agggcatcga cttcaaggag 240
gacgggaaca tcctgggcca taagctggag tacaattaca acagccacaa cgtgtatatc 300
atggcggaca agcagaagaa cggcatcaag gtcaacttca agatccggca caacatcgag 360
gatggcagcg tgcagctggc ggatcattat caacagaaca ccccgattgg cgatggaccg 420
gtgctgctgc ccgataatca ttacctgagt acccagagcg ccctgagcaa ggacccgaat 480
gagaagcgtg atcacatggt actgctggaa tttgtgaccg cggctggcat cacccacggc 540
atggatgaac tgtataaata acatatggag tctgccatcg gtgtttaaac cccagcgcct 600
ggcgggtgaa gagcgagctc ccgctgagca ataactagcg tcatagctgt ttcctgggtc 660
gttcggctgc ggcgagcggt atcagctcac tcaaaggcgg taatacggtt atccacagaa 720
tcaggggata acgcaggaaa gaacatgtga gcaaaaggcc agcaaaaggc caggaaccgt 780
aaaaaggccg cgttgctggc gtttttccat aggctccgcc cccctgacga gcatcacaaa 840
aatcgacgct caagtcagag acgccacgta catggcttat tg 882
<210> 16
<211> 787
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic DNA fragment 1042
<400> 16
taagtagttg accatagcta tggaaggtct caagtcagag gtggcgaaac ccgacaggac 60
tataaagata ccaggcgttt ccccctggaa gctccctcgt gcgctctcct gttccgaccc 120
tgccgcttac ccgatacctg tccgcctttc tcccttcggg aagcgtggcg ctttctcata 180
gctcacgctg taggtatctc agttcggtgt aggtcgttcg ctccaagctg ggctgtgtgc 240
acgaaccccc cgttcagccc gaccgctgcg ccttatccgg taactatcgt cttgtgtcca 300
acccggtaag acacgactta tcgccactgg cagcagccac tggtaacagg attagcagag 360
cgaggtatgt aggcggtgct acagagttct tgaagtggtg gcctaactac ggctacacta 420
gaagaacagt atttggtatc tgcgctctgc tgaagccagt taccttcgga aaaagagttg 480
gtagctcttg atccggcaaa caaaccaccg ctggtagcgg tggttttttt gtttgcaagc 540
agcagattac gcgcagaaaa aaaggatctc aagaagatcc tttgatcttt tctacggggt 600
ctgacgctca gtggaacgaa aactcacgtt aagggatttt ggtcatgaga ttatcaaaaa 660
ggatcttcac ctagatcctt ttaaattaaa aatgaagttt taaatcaatc taaagtatat 720
atgagtaaac ttggtcgcat gcttaccaat gcttaatcag tggagacgcc acgtacatgg 780
cttattg 787
<210> 17
<211> 36
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JCB158-17A
<400> 17
cgttcatcca tagttgcctg actgcccgtc gtgtag 36
<210> 18
<211> 36
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JCB158-17B
<400> 18
ctacacgacg ggcagtcagg caactatgga tgaacg 36
<210> 19
<211> 59
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JCB158-17C
<400> 19
atatgagtaa acttggtcgc atgcttacca atgcttaatc agtgaggcac ctatctcag 59
<210> 20
<211> 52
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JCB158-17D
<400> 20
ttgaaaaagg caattgatga gtattcaaca tttccgtgtc gcccttattc cc 52
<210> 21
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L012
<400> 21
ccggtaacta tcgtcttgat tccaacccgg taagacacg 39
<210> 22
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L013
<400> 22
cgtgtcttac cgggttggaa tcaagacgat agttaccgg 39
<210> 23
<211> 38
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L054
<400> 23
cgaaactaag ttcttggtgt tttaaaacta aaaaaaag 38
<210> 24
<211> 35
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L057
<400> 24
ggttatatat gacaaaagaa aaagaagaac agaag 35
<210> 25
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L109
<400> 25
atgaaactct ctactaaact ttgttggtg 29
<210> 26
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L110
<400> 26
atgagaaaaa aaatcggttg ggcttaac 28
<210> 27
<211> 31
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L176
<400> 27
gactagctcc acttttaaga attatttatg c 31
<210> 28
<211> 38
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L185
<400> 28
gtgaatttac tttaaatctt gcatttaaat aaattttc 38
<210> 29
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L186
<400> 29
aagccaatat ccccaaaatt attaagagcg 30
<210> 30
<211> 54
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer VH296-235-55-Leu2 12-1 F
<400> 30
gctcacacgc ggccaggggg agcccgttga gccattagta tcaatttgct tacc 54
<210> 31
<211> 57
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer VH296-235-55-Leu2 12-1 R
<400> 31
aggtccgccg gcgttggacg agcgaggcgc ctgattcaag aaatatcttg accgcag 57
<210> 32
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L219
<400> 32
ctccaagctg acataaatcg cactttg 27
<210> 33
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L220
<400> 33
tttaagcgct ttttataata ttgttatttc tctttaatg 39
<210> 34
<211> 37
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L221
<400> 34
ataaactaat gattttaaat cgttaaaaaa atatgcg 37
<210> 35
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L222
<400> 35
gaattgaaga taattgaacg ttgctgtg 28
<210> 36
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L224
<400> 36
cttttaattc tgctgtaacc cgtacatg 28
<210> 37
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L225
<400> 37
tgacagcagg attatcgtaa tacg 24
<210> 38
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L226
<400> 38
atgacagatg tagtaatagt atccgcc 27
<210> 39
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L227
<400> 39
ttatttacgc tcgactgcta atgccac 27
<210> 40
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L229
<400> 40
atgaaaaatt gtgtcatcgt cagtgc 26
<210> 41
<211> 32
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L230
<400> 41
ttaattcaat ctttcaatca ccatcgcaat tc 32
<210> 42
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L235
<400> 42
atgaccatcg gtattgacaa gattag 26
<210> 43
<211> 38
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L236
<400> 43
ttaattacga taagatctta cagtattgtt aatcgcag 38
<210> 44
<211> 35
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer L248
<400> 44
taaagctttt gattaagcct tctagtccaa aaaac 35
<210> 45
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S000
<400> 45
gacggcacgg ccacgcgttt aaaccgcc 28
<210> 46
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S001
<400> 46
ggcggtttaa acgcgtggcc gtgccgtc 28
<210> 47
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S002
<400> 47
gctcacacgc ggccaggggg agcc 24
<210> 48
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S003
<400> 48
ggctccccct ggccgcgtgt gagc 24
<210> 49
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S004
<400> 49
cgctcgtcca acgccggcgg acct 24
<210> 50
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S005
<400> 50
aggtccgccg gcgttggacg agcg 24
<210> 51
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S006
<400> 51
atccccgcgt gcttggccgg ccgt 24
<210> 52
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S007
<400> 52
acggccggcc aagcacgcgg ggat 24
<210> 53
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S008
<400> 53
aacctgcagg ccgcgagcgc cgat 24
<210> 54
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S009
<400> 54
atcggcgctc gcggcctgca ggtt 24
<210> 55
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S010
<400> 55
aacgcgatcg ccgacgccgc cgat 24
<210> 56
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S011
<400> 56
atcggcggcg tcggcgatcg cgtt 24
<210> 57
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S012
<400> 57
aaggcggccg ctggcgaggg agat 24
<210> 58
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S013
<400> 58
atctccctcg ccagcggccg cctt 24
<210> 59
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S014
<400> 59
aaggcgcgcc acggtcgtgc ggat 24
<210> 60
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S015
<400> 60
atccgcacga ccgtggcgcg cctt 24
<210> 61
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S016
<400> 61
agcccctcag cccccctagc gtcg 24
<210> 62
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S017
<400> 62
cgacgctagg ggggctgagg ggct 24
<210> 63
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S018
<400> 63
cggtgtttaa accccagcgc ctggcggg 28
<210> 64
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S019
<400> 64
cccgccaggc gctggggttt aaacaccg 28
<210> 65
<211> 37
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S027
<400> 65
tggatgactc gctagcgcgc aacgcaatta atgtgag 37
<210> 66
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S028
<400> 66
tggcagactc catatgctat gcggcatcag agcagattg 39
<210> 67
<211> 42
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S036
<400> 67
tacccgggga tcctctagcg tcgacctgca ggcatgcaag ct 42
<210> 68
<211> 42
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer S037
<400> 68
agcttgcatg cctgcaggtc gacgctagag gatccccggg ta 42
<210> 69
<211> 54
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J036
<400> 69
gccgcaaaaa agggaataag ggcgacacgg aaatgttgaa tactcatcaa ttgc 54
<210> 70
<211> 42
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J037
<400> 70
cgggtttcgc cacctctgac ttgagcgtcg atttttgtga tg 42
<210> 71
<211> 42
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J038
<400> 71
catcacaaaa atcgacgctc aagtcagagg tggcgaaacc cg 42
<210> 72
<211> 55
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J039
<400> 72
ctgagatagg tgcctcactg attaagcatt ggtaagcatg cgaccaagtt tactc 55
<210> 73
<211> 58
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J018
<400> 73
gacggcacgg ccacgcgttt aaaccgcctt ggatggatac gctagccgcc caatacgc 58
<210> 74
<211> 58
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J019
<400> 74
gctcacacgc ggccaggggg agccttggat ggatggatac gctagccgcc caatacgc 58
<210> 75
<211> 57
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J020
<400> 75
cgctcgtcca acgccggcgg accttggatg gatggatacg ctagccgccc aatacgc 57
<210> 76
<211> 57
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J021
<400> 76
atccccgcgt gcttggccgg ccgttggatg gatggatacg ctagccgccc aatacgc 57
<210> 77
<211> 57
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J022
<400> 77
aacctgcagg ccgcgagcgc cgattggatg gatggatacg ctagccgccc aatacgc 57
<210> 78
<211> 57
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J023
<400> 78
aacgcgatcg ccgacgccgc cgattggatg gatggatacg ctagccgccc aatacgc 57
<210> 79
<211> 57
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J024
<400> 79
aaggcggccg ctggcgaggg agattggatg gatggatacg ctagccgccc aatacgc 57
<210> 80
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J025
<400> 80
aaggcgcgcc acggtcgtgc ggatggatgg atggatacgc tagccgccca atacgc 56
<210> 81
<211> 58
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J026
<400> 81
agcccctcag cccccctagc gtcgttggat ggatggatac gctagccgcc caatacgc 58
<210> 82
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J029
<400> 82
acggccggcc aagcacgcgg ggattggcag gataccatat gttatttata cagttc 56
<210> 83
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J030
<400> 83
atcggcgctc gcggcctgca ggtttggcag gataccatat gttatttata cagttc 56
<210> 84
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J031
<400> 84
atcggcggcg tcggcgatcg cgtttggcag gataccatat gttatttata cagttc 56
<210> 85
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J032
<400> 85
atctccctcg ccagcggccg cctttggcag gataccatat gttatttata cagttc 56
<210> 86
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J033
<400> 86
atccgcacga ccgtggcgcg cctttggcag gataccatat gttatttata cagttc 56
<210> 87
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J034
<400> 87
cgacgctagg ggggctgagg ggcttggcag gataccatat gttatttata cagttc 56
<210> 88
<211> 50
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J055
<400> 88
aaagggaact cgaggctctt cagacggcac ggccacgcgt ttaaaccgcc 50
<210> 89
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J056
<400> 89
aaagggaact cgaggctctt cagctcacac gcggccaggg ggagcc 46
<210> 90
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J057
<400> 90
aaagggaact cgaggctctt cacgctcgtc caacgccggc ggacct 46
<210> 91
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J058
<400> 91
aaagggaact cgaggctctt caatccccgc gtgcttggcc ggccgt 46
<210> 92
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J059
<400> 92
aaagggaact cgaggctctt caaacctgca ggccgcgagc gccgat 46
<210> 93
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J060
<400> 93
aaagggaact cgaggctctt caaacgcgat cgccgacgcc gccgat 46
<210> 94
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J061
<400> 94
aaagggaact cgaggctctt caaaggcggc cgctggcgag ggagat 46
<210> 95
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J062
<400> 95
aaagggaact cgaggctctt caaaggcgcg ccacggtcgt gcggat 46
<210> 96
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J063
<400> 96
aaagggaact cgaggctctt caagcccctc agccccccta gcgtcg 46
<210> 97
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J064
<400> 97
ctcagcggga gctcgctctt caggctcccc ctggccgcgt gtgagc 46
<210> 98
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J065
<400> 98
ctcagcggga gctcgctctt caaggtccgc cggcgttgga cgagcg 46
<210> 99
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J066
<400> 99
ctcagcggga gctcgctctt caacggccgg ccaagcacgc ggggat 46
<210> 100
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J067
<400> 100
ctcagcggga gctcgctctt caatcggcgc tcgcggcctg caggtt 46
<210> 101
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J068
<400> 101
ctcagcggga gctcgctctt caatcggcgg cgtcggcgat cgcgtt 46
<210> 102
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J069
<400> 102
ctcagcggga gctcgctctt caatctccct cgccagcggc cgcctt 46
<210> 103
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J070
<400> 103
ctcagcggga gctcgctctt caatccgcac gaccgtggcg cgcctt 46
<210> 104
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J071
<400> 104
ctcagcggga gctcgctctt cacgacgcta ggggggctga ggggct 46
<210> 105
<211> 50
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J072
<400> 105
ctcagcggga gctcgctctt cacccgccag gcgctggggt ttaaacaccg 50
<210> 106
<211> 57
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J073
<400> 106
ggctccccct ggccgcgtgt gagcttggca ggataccata tgttatttat acagttc 57
<210> 107
<211> 57
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J074
<400> 107
aggtccgccg gcgttggacg agcgttggca ggataccata tgttatttat acagttc 57
<210> 108
<211> 58
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer J075
<400> 108
cccgccaggc gctggggttt aaacaccgtt ggcaggatac catatgttat ttatacag 58
<210> 109
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer K162
<400> 109
tgaagagcga gctcccgctg 20
<210> 110
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer K163
<400> 110
tgaagagcct cgagttccct ttag 24
<210> 111
<211> 8139
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Phase I-A stitch product
<400> 111
gacggcacgg ccacgcgttt aaaccgccca gatggaatcc cttccataga gagaaggagc 60
aagcaactga cccaatattg actgccactg gacctgaaga catgcaacaa agtgcaagca 120
tagtggggcc ttcttccaat gctaatccgg tcactgccac tgctgctacg gaaaaccaac 180
ctaaaggtat taacttcttc actataagaa aatcacacga gcgcccggac gatgtctctg 240
tttaaatggc gcaagttttc cgctttgtaa tatatattta tacccctttc ttctctcccc 300
tgcaatataa tagtttaatt ctaatattaa taatatccta tattttcttc atttaccggc 360
gcactctcgc ccgaacgacc tcaaaatgtc tgctacattc ataataacca aaagctcata 420
actttttttt ttgaacctga atatatatac atcacatgtc actgctggtc cttgccgacc 480
agcgtataca atctcgatag ttggtttccc gttctttcca ctcccgtcgc tcacacgcgg 540
ccagggggag ccgagctcct cgagaagtta agattatatg aataactaaa tactaaatag 600
aaatgtaaat acagtgagaa caaaacaaaa aaaaacgaac agagaaacta aatccacatt 660
aattgagagt tctatctatt agaaaatgca aactccaact aaatgggaaa acagataacc 720
tcttttattt ttttttaatg tttgatattc gagtcttttt cttttgttag gtttatattc 780
atcatttcaa tgaataaaag aagcttctta ttttggttgc aaagaatgaa aaaaaaggat 840
tttttcatac ttctaaagct tcaattataa ccaaaaattt tataaatgaa gagaaaaaat 900
ctagtagtat caagttaaac ctattccttt gccctcggac gagtgctggg gcgtcggttt 960
ccactatcgg cgagtacttc tacacagcca tcggtccaga cggccgcgct tctgcgggcg 1020
atttgtgtac gcccgacagt cccggctccg gatcggacga ttgcgtcgca tcgaccctgc 1080
gcccaagctg catcatcgaa attgccgtca accaagctct gatagagttg gtcaagacca 1140
atgcggagca tatacgcccg gagccgcggc gatcctgcaa gctccggatg cctccgctcg 1200
aagtagcgcg tctgctgctc catacaagcc aaccacggcc tccagaagaa gatgttggcg 1260
acctcgtatt gggaatcccc gaacatcgcc tcgctccagt caatgaccgc tgttatgcgg 1320
ccattgtccg tcaggacatt gttggagccg aaatccgcgt gcacgaggtg ccggacttcg 1380
gggcagtcct cggcccaaag catcagctca tcgagagcct gcgcgacgga cgcactgacg 1440
gtgtcgtcca tcacagtttg ccagtgatac acatggggat cagcaatcgc gcatatgaaa 1500
tcacgccatg tagtgtattg accgattcct tgcggtccga atgggccgaa cccgctcgtc 1560
tggctaagat cggccgcagc gatcgcatcc atggcctccg cgaccggctg cagaacagcg 1620
ggcagttcgg tttcaggcag gtcttgcaac gtgacaccct gtgcacggcg ggagatgcaa 1680
taggtcaggc tctcgctgaa ttccccaatg tcaagcactt ccggaatcgg gagcgcggcc 1740
gatgcaaagt gccgataaac ataacgatct ttgtagaaac catcggcgca gctatttacc 1800
cgcaggacat atccacgccc tcctacatcg aagctgaaag cacgagattc ttcgccctcc 1860
gagagctgca tcaggtcgga gacgctgtcg aacttttcga tcagaaactt ctcgacagac 1920
gtcgcggtga gttcaggctt tttcattttt aatgttactt ctcttgcagt tagggaacta 1980
taatgtaact caaaataaga ttaaacaaac taaaataaaa agaagttata cagaaaaacc 2040
catataaacc agtactaatc cataataata atacacaaaa aaactatcaa ataaaaccag 2100
aaaacagatt gaatagaaaa attttttcga tctcctttta tattcaaaat tcgatatatg 2160
aaaaagggaa ctctcagaaa atcaccaaat caatttaatt agatttttct tttccttcta 2220
gcgttggaaa gaaaaatttt tctttttttt tttagaaatg aaaaattttt gccgtaggaa 2280
tcaccgtata aaccctgtat aaacgctact ctgttcacct gtgtaggcta tgattgaccc 2340
agtgttcatt gttattgcga gagagcggga gaaaagaacc gatacaagag atccatgctg 2400
gtatagttgt ctgtccaaca ctttgatgaa cttgtaggac gatgatgtgt attactagtg 2460
tcgacgctcg tccaacgccg gcggacctag ttatgacaat tacaacaaca gaattctttc 2520
tatatatgca cgaacttgta atatggaaga aattatgacg tacaaactat aaagtaaata 2580
ttttacgtaa cacatggtgc tgttgtgctt ctttttcaag agaataccaa tgacgtatga 2640
ctaagtttag gatttaatgc aggtgacgga cccatctttc aaacgattta tatcagtggc 2700
gtccaaattg ttaggttttg ttggttcagc aggtttcctg ttgtgggtca tatgactttg 2760
aaccaaatgg ccggctgcta gggcagcaca taaggataat tcacctgcca agacggcaca 2820
ggcaactatt cttgctaatt gacgtgcgtt ggtaccagga gcggtagcat gtgggcctct 2880
tacacctaat aagtccaaca tggcaccttg tggttctaga acagtaccac caccgatggt 2940
acctacttcg atggatggca tggatacgga aattctcaaa tcaccgtcca cttctttcat 3000
caatgttata cagttggaac tttcgacatt ttgtgcagga tcttgtccta atgccaagaa 3060
aacagctgtc actaaattag ctgcatgtgc gttaaatcca ccaacagacc cagccattgc 3120
agatccaacc aaattcttag caatgttcaa ctcaaccaat gcggaaacat cactttttaa 3180
cacttttctg acaacatcac caggaatagt agcttctgcg acgacactct taccacgacc 3240
ttcgatccag ttgatggcag ctggtttttt gtcggtacag tagttaccag aaacggagac 3300
aacctccata tcttcccagc catactcttc taccatttgc tttaatgagt attcgacacc 3360
cttagaaatc atattcatac ccattgcgtc accagtagtt gttctaaatc tcatgaagag 3420
taaatctcct gctagacaag tttgaatatg ttgcagacgt gcaaatcttg atgtagagtt 3480
aaaagctttt ttaattgcgt tttgtccctc ttctgagtct aaccatatct tacaggcacc 3540
agatcttttc aaagttggga aacggactac tgggcctctt gtcataccat ccttagttaa 3600
aacagttgtt gcaccaccgc cagcattgat tgccttacag ccacgcatgg cagaagctac 3660
caaacaaccc tctgtagttg ccattggtat atgataagat gtaccatcga taaccaaggg 3720
gcctataaca ccaacgggca aaggcatgta acctataaca ttttcacaac aagcgccaaa 3780
tacgcggtcg tagtcataat ttttatatgg taaacgatca gatgctaata caggagcttc 3840
tgccaaaatt gaaagagcct tcctacgtac cgcaaccgct ctcgtagtat cacctaattt 3900
tttctccaaa gcgtacaaag gtaacttacc gtgaataacc aaggcagcga cctctttgtt 3960
cttcaattgt tttgtatttc cactacttaa taatgcttct aattcttcta aaggacgtat 4020
tttcttatcc aagctttcaa tatcgcggga atcatcttcc tcactagatg atgaaggtcc 4080
tgatgagctc gattgcgcag atgataaact tttgactttc gatccagaaa tgactgtttt 4140
attggttaaa actggtgtag aagccttttg tacaggagca gtaaaagact tcttggtgac 4200
ttcagtcttc accaattgat ctgcagccat atccccgcgt gcttggccgg ccgttacttt 4260
ttttttggat ggacgcaaag aagtttaata atcatattac atggcaatac caccatatac 4320
atatccatat ctaatcttac ttatatgttg tggaaatgta aagagcccca ttatcttagc 4380
ctaaaaaaac cttctctttg gaactttcag taatacgctt aactgctcat tgctatattg 4440
aagtacggat tagaagccgc cgagcgggcg acagccctcc gacggaagac tctcctccgt 4500
gcgtcctggt cttcaccggt cgcgttcctg aaacgcagat gtgcctcgcg ccgcactgct 4560
ccgaacaata aagattctac aatactagct tttatggtta tgaagaggaa aaattggcag 4620
taacctggcc ccacaaacct tcaaatcaac gaatcaaatt aacaaccata ggataataat 4680
gcgattagtt ttttagcctt atttctgggg taattaatca gcgaagcgat gatttttgat 4740
ctattaacag atatataaat gcaaaagctg cataaccact ttaactaata ctttcaacat 4800
tttcggtttg tattacttct tattcaaatg tcataaaagt atcaacaaaa aattgttaat 4860
atacctctat acttaacctg caggccgcga gcgccgatat gtctcagaac gtttacattg 4920
tatcgactgc cagaacccca attggttcat tccagggttc tctatcctcc aagacagcag 4980
tggaattggg tgctgttgct ttaaaaggcg ccttggctaa ggttccagaa ttggatgcat 5040
ccaaggattt tgacgaaatt atttttggta acgttctttc tgccaatttg ggccaagctc 5100
cggccagaca agttgctttg gctgccggtt tgagtaatca tatcgttgca agcacagtta 5160
acaaggtctg tgcatccgct atgaaggcaa tcattttggg tgctcaatcc atcaaatgtg 5220
gtaatgctga tgttgtcgta gctggtggtt gtgaatctat gactaacgca ccatactaca 5280
tgccagcagc ccgtgcgggt gccaaatttg gccaaactgt tcttgttgat ggtgtcgaaa 5340
gagatgggtt gaacgatgcg tacgatggtc tagccatggg tgtacacgca gaaaagtgtg 5400
cccgtgattg ggatattact agagaacaac aagacaattt tgccatcgaa tcctaccaaa 5460
aatctcaaaa atctcaaaag gaaggtaaat tcgacaatga aattgtacct gttaccatta 5520
agggatttag aggtaagcct gatactcaag tcacgaagga cgaggaacct gctagattac 5580
acgttgaaaa attgagatct gcaaggactg ttttccaaaa agaaaacggt actgttactg 5640
ccgctaacgc ttctccaatc aacgatggtg ctgcagccgt catcttggtt tccgaaaaag 5700
ttttgaagga aaagaatttg aagcctttgg ctattatcaa aggttggggt gaggccgctc 5760
atcaaccagc tgattttaca tgggctccat ctcttgcagt tccaaaggct ttgaaacatg 5820
ctggcatcga agacatcaat tctgttgatt actttgaatt caatgaagcc ttttcggttg 5880
tcggtttggt gaacactaag attttgaagc tagacccatc taaggttaat gtatatggtg 5940
gtgctgttgc tctaggtcac ccattgggtt gttctggtgc tagagtggtt gttacactgc 6000
tatccatctt acagcaagaa ggaggtaaga tcggtgttgc cgccatttgt aatggtggtg 6060
gtggtgcttc ctctattgtc attgaaaaga tatgattacg ttctgcgatt ttctcatgat 6120
ctttttcata aaatacataa atatataaat ggctttatgt ataacaggca taatttaaag 6180
ttttatttgc gattcatcgt ttttcaggta ctcaaacgct gaggtgtgcc ttttgactta 6240
cttttccgcc ttggcaagct ggccgggtga tacttgcaca agttccacta attactgaca 6300
tttgtggtat taactcgttt gactgctcta caattgtagg atgttaatca atgtcttggc 6360
tgcctaacgc gatcgccgac gccgccgata tgagaaaaaa aatcggttgg gcttaacttt 6420
aaagaaaaaa gttgagatta gatttattgt gttataaata tagatataca attctttata 6480
aaaaaaatat atatatatat cattgttatt aaataaagag ttttcctagt atatagatta 6540
aaaaactact ctattaaatg agagctaaaa aaagcaggct gccaaaaaaa taaagcattt 6600
atgaaggggg ttcagcaaga tgcaatcgat gggggaagat tattttttaa catcgtaaga 6660
tcttctaaat ttgtcatcga tgttggtcaa gtagtaaaca ccactttgca aatgctcaat 6720
ggaaccttga ggtttgaagt tcttcttcaa atgggcattt tctctcaatt cgatggcagc 6780
ttcgtaatcc tttggagttt cggtgattct cttggctaat ttgttagtaa tatctaattc 6840
cttgataata tgttggacgt caccaacaat tttgcaagaa tatagagatg cagctaaacc 6900
ggaaccgtaa gaaaataaac caacacgctt gccttgtaag tcgtcagatc caacatagtt 6960
taatagagat gcaaaggcgg cataaacaga tgcggtgtac atgttacctg tgtttgttgg 7020
aacaatcaaa gattgggcaa ctctctcttt gtggaatggc ttagcaacat taacaaaagt 7080
tttttcaatg ttcttatcgg ttaaagattc gtcataatcg cgagtagcta attcggcgtc 7140
aacttctggg aacaattgag gattggctct gaaatcgtta tatagtaatc taccgtatga 7200
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gttcaaagca tccgaaccag cgggatcgct aaccaaccct ttagaaatag ccttcttgga 7320
ataactcttg taaacttgat caagagcctt gacgtaacaa gttaatgaaa aatgaccatc 7380
gacgtaagga tattcgctgg tgaaatctgg cttgtaaaaa tcgtaggcgt gttccatgta 7440
agaagctctt acagagtcaa atacaattgg agcatcagga ccgatccaca tagcaacagt 7500
accggcacca ccggttggtc ttgcggcacc cttatcgtag atggcaatat caccgcaaac 7560
tacaatggcg tctctaccat cccatgcgtt agattcaatc cagttcaaag agttgaacaa 7620
cgcgttggta ccaccgtaac aggcattaag cgtgtcaata ccttcgacgt cagtgttttc 7680
accaaacaat tgcatcaaga cagacttgac agacttggac ttgtcaatca gagtttcagt 7740
accgacttct aatctaccaa ttttgttggt gtcgatgttg taactcttga tcaacttaga 7800
caaaacagtt agggacatcg agtagatatc ttctctgtca ttgacaaaag acatgttggt 7860
ttggcccaga ccaattgtgt atttaccttg agaaacgcca tcaaatttct ctagctcaga 7920
ttggttgaca cattgagttg ggatgtaaat ttggatacct ttaataccga cattttgagg 7980
tctggttttt tgttcagcgg tcttttgttt ttttagttca gtcatttgca agtttgtatt 8040
gtgtaattgt tgttgctttt gcggcctaag tcttccttta ataccacacc aacaaagttt 8100
agtagagagt ttcataaggc ggccgctggc gagggagat 8139<210> 112
<211> 2962
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Phase I-B stitch product
<400> 112
aaggcggccg ctggcgaggg agataagtat agaggtatat taacaatttt ttgttgatac 60
ttttatgaca tttgaataag aagtaataca aaccgaaaat gttgaaagta ttagttaaag 120
tggttatgca gcttttgcat ttatatatct gttaatagat caaaaatcat cgcttcgctg 180
attaattacc ccagaaataa ggctaaaaaa ctaatcgcat tattatccta tggttgttaa 240
tttgattcgt tgatttgaag gtttgtgggg ccaggttact gccaattttt cctcttcata 300
accataaaag ctagtattgt agaatcttta ttgttcggag cagtgcggcg cgaggcacat 360
ctgcgtttca ggaacgcgac cggtgaagac caggacgcac ggaggagagt cttccgtcgg 420
agggctgtcg cccgctcggc ggcttctaat ccgtacttca atatagcaat gagcagttaa 480
gcgtattact gaaagttcca aagagaaggt ttttttaggc taagataatg gggctcttta 540
catttccaca acatataagt aagattagat atggatatgt atatggtggt attgccatgt 600
aatatgatta ttaaacttct ttgcgtccat ccaaaaaaaa agtaaaggcg cgccacggtc 660
gtgcggatat ggctgcagat caattggtga agactgaagt caccaagaag tcttttactg 720
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aagtcaaaag tttatcatct gcgcaatcga gctcatcagg accttcatca tctagtgagg 840
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<223> IME1 knockout stitch product
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for expression in Saccharomyces cerevisiae
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<212> DNA
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cggctccaga tttatcagca ataaaccagc cagccggaag ggccgagcgc agaagtggtc 5160
ctgcaacttt atccgcctcc atccagtcta ttaattgttg ccgggaagct agagtaagta 5220
gttcgccagt taatagtttg cgcaacgttg ttgccattgc tacaggcatc gtggtgtcac 5280
gctcgtcgtt tggtatggct tcattcagct ccggttccca acgatcaagg cgagttacat 5340
gatcccccat gttgtgcaaa aaagcggtta gctccttcgg tcctccgatc gttgtcagaa 5400
gtaagttggc cgcagtgtta tcactcatgg ttatggcagc actgcataat tctcttactg 5460
tcatgccatc cgtaagatgc ttttctgtga ctggtgagta ctcaaccaag tcattctgag 5520
aatagtgtat gcggcgaccg agttgctctt gcccggcgtc aatacgggat aataccgcgc 5580
cacatagcag aactttaaaa gtgctcatca ttggaaaacg ttcttcgggg cgaaaactct 5640
caaggatctt accgctgttg agatccagtt cgatgtaacc cactcgtgca cccaactgat 5700
cttcagcatc ttttactttc accagcgttt ctgggtgagc aaaaacagga aggcaaaatg 5760
ccgcaaaaaa gggaataagg gcgacacgga aatgttgaat actcatactc ttcctttttc 5820
aatattattg aagcatttat cagggttatt gtctcatgag cggatacata tttgaatgta 5880
tttagaaaaa taaacaaata ggggttccgc gcacatttcc ccgaaaagtg ccacctgaac 5940
gaagcatctg tgcttcattt tgtagaacaa aaatgcaacg cgagagcgct aatttttcaa 6000
acaaagaatc tgagctgcat ttttacagaa cagaaatgca acgcgaaagc gctattttac 6060
caacgaagaa tctgtgcttc atttttgtaa aacaaaaatg caacgcgaga gcgctaattt 6120
ttcaaacaaa gaatctgagc tgcattttta cagaacagaa atgcaacgcg agagcgctat 6180
tttaccaaca aagaatctat acttcttttt tgttctacaa aaatgcatcc cgagagcgct 6240
atttttctaa caaagcatct tagattactt tttttctcct ttgtgcgctc tataatgcag 6300
tctcttgata actttttgca ctgtaggtcc gttaaggtta gaagaaggct actttggtgt 6360
ctattttctc ttccataaaa aaagcctgac tccacttccc gcgtttactg attactagcg 6420
aagctgcggg tgcatttttt caagataaag gcatccccga ttatattcta taccgatgtg 6480
gattgcgcat actttgtgaa cagaaagtga tagcgttgat gattcttcat tggtcagaaa 6540
attatgaacg gtttcttcta ttttgtctct atatactacg tataggaaat gtttacattt 6600
tcgtattgtt ttcgattcac tctatgaata gttcttacta caattttttt gtctaaagag 6660
taatactaga gataaacata aaaaatgtag aggtcgagtt tagatgcaag ttcaaggagc 6720
gaaaggtgga tgggtaggtt atatagggat atagcacaga gatatatagc aaagagatac 6780
ttttgagcaa tgtttgtgga agcggtattc gcaatatttt agtagctcgt tacagtccgg 6840
tgcgtttttg gttttttgaa agtgcgtctt cagagcgctt ttggttttca aaagcgctct 6900
gaagttccta tactttctag agaataggaa cttcggaata ggaacttcaa agcgtttccg 6960
aaaacgagcg cttccgaaaa tgcaacgcga gctgcgcaca tacagctcac tgttcacgtc 7020
gcacctatat ctgcgtgttg cctgtatata tatatacatg agaagaacgg catagtgcgt 7080
gtttatgctt aaatgcgtac ttatatgcgt ctatttatgt aggatgaaag gtagtctagt 7140
acctcctgtg atattatccc attccatgcg gggtatcgta tgcttccttc agcactaccc 7200
tttagctgtt ctatatgctg ccactcctca attggattag tctcatcctt caatgctatc 7260
atttcctttg atattggatc atactaagaa accattatta tcatgacatt aacctataaa 7320
aataggcgta tcacgaggcc ctttcgtc 7348<210> 123
<211> 746
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> URA3 knockout construct
<400> 123
tgcgaggcat atttatggtg aaggataagt tttgaccatc aaagaaggtt aatgtggctg 60
tggtttcagg gtccataaag cttttcaatt catctttttt ttttttgttc ttttttttga 120
ttccggtttc tttgaaattt ttttgattcg gtaatctccg agcagaagga agaacgaagg 180
aaggagcaca gacttagatt ggtatatata cgcatatgtg gtgttgaaga aacatgaaat 240
tgcccagtat tcttaaccca actgcacaga acaaaaacct gcaggaaacg gctcacacgc 300
ggccaggggg agccctgtat tataagtaaa tgcatgtata ctaaactcac aaattagagc 360
ttcaatttaa ttatatcagt tattacccgg gaatctcggt cgtaatgatt tctataatga 420
cgaaaaaaaa aaaattggaa agaaaaagct tcatggcctt tataaaaagg aactatccaa 480
tacctcgcca gaaccaagta acagtatttt acggggcaca aatcaagaac aataagacag 540
gactgtaaag atggacgcat tgaactccaa agaacaacaa gagttccaaa aagtagtgga 600
acaaaagcaa atgaaggatt tcatgcgttt gtactctaat ctggtagaaa gatgtttcac 660
agactgtgtc aatgacttca caacatcaaa gctaaccaat aaggaacaaa catgcatcat 720
gaagtgctca gaaaagttct tgaagc 746
<210> 124
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-106-168-110-ERG9 CDS-f
<400> 124
atgggaaagc tattacaatt ggcattg 27
<210> 125
<211> 34
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-107-168-110-ERG9 CDS-r
<400> 125
attcaagttg taattttcat ctaagatgta gtcg 34
<210> 126
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-108-168-110-ERG9 US-f
<400> 126
aaaagtgcag ctcagagccc 20
<210> 127
<211> 37
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-162-168-110-LEU2 DS-f
<400> 127
aaagattctc tttttttatg atatttgtac ataaact 37
<210> 128
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-163-168-110-LEU2 DS-r
<400> 128
tagatttagt actgaagagg aggtcgac 28
<210> 129
<211> 37
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-164-168-110-LEU2 US-f
<400> 129
taggataatt atactctatt tctcaacaag taattgg 37
<210> 130
<211> 41
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-165-168-110-LEU2 US-r
<400> 130
tagaatggta tatccttgaa atatatatat atatattgct g 41
<210> 131
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-169-168-110-URA3-f
<400> 131
gttcatcatc tcatggatct gcaca 25
<210> 132
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-170-168-110-URA3-r
<400> 132
atgcgtccat ctttacagtc ctg 23
<210> 133
<211> 60
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-172-168-110-ERG9 US-r1
<400> 133
gtgtgtgtgt gatatgtgac gtgtatacgt tttccgcttc tgcttttcgt cttttctctt 60
<210> 134
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-218-168-130-GAL80US-F
<400> 134
cagatggaat cccttccata gagag 25
<210> 135
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-219-168-130-GAL80US-R
<400> 135
gacgggagtg gaaagaacgg 20
<210> 136
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-220-168-130-GAL80DS-F
<400> 136
aagcatcttg ccctgtgctt g 21
<210> 137
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-221-168-130-GAL80DS-R
<400> 137
catgctacct tccatggttg agc 23
<210> 138
<211> 44
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-284-275-31-GAL4-FIX-F2
<400> 138
ggattttatg cccagggatg cacttcatgg atttgattgg tctg 44
<210> 139
<211> 44
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-285-275-31-GAL4-FIX-R2
<400> 139
cagaccaatc aaatccatga agtgcatccc tgggcataaa atcc 44
<210> 140
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-286-275-31-GAL4-F
<400> 140
atgaagctac tgtcttctat cgaacaagc 29
<210> 141
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer JU-287-275-31-GAL4-R
<400> 141
tgagcgaagc ttctgaataa gccc 24
<210> 142
<211> 50
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KB454-266-53
<400> 142
gacggcacgg ccacgcgttt aaaccgccat ccaattcctc tattatatgc 50
<210> 143
<211> 41
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KB455-266-53
<400> 143
ggctccccct ggccgcgtgt gagcgtggcg gaaagaacag c 41
<210> 144
<211> 50
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KB457-266-53
<400> 144
cccgccaggc gctggggttt aaacaccgtt tgccttttaa ctatatcagg 50
<210> 145
<211> 54
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH14-276-4-linker9.ERG12.rev
<400> 145
cccgccaggc gctggggttt aaacaccgat gtcattaccg ttcttaactt ctgc 54
<210> 146
<211> 49
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH15-276-4-linker9.ERG19.rev
<400> 146
cccgccaggc gctggggttt aaacaccgat gaccgtttac acagcatcc 49
<210> 147
<211> 40
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH33-276-21-URA3 5 prime fwd
<400> 147
tgcgaggcat atttatggtg aaggataagt tttgaccatc 40
<210> 148
<211> 64
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH34-276-21-URA3 5 prime rev
<400> 148
ggctccccct ggccgcgtgt gagccgtttc ctgcaggttt ttgttctgtg cagttgggtt 60
aaga 64
<210> 149
<211> 73
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH35-276-21-URA3 3 prime fwd
<400> 149
gctcacacgc ggccaggggg agccctgtat tataagtaaa tgcatgtata ctaaactcac 60
aaattagagc ttc 73
<210> 150
<211> 40
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH35-276-21-URA3 3 prime rev
<400> 150
gcttcaagaa cttttctgag cacttcatga tgcatgtttg 40
<210> 151
<211> 44
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH46-276-43-ERG12linker4.fwd
<400> 151
aacctgcagg ccgcgagcgc cgatattcgc gggtggaagg acct 44
<210> 152
<211> 49
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH47-276-43-ERG19linker4.fwd
<400> 152
aacctgcagg ccgcgagcgc cgatcttgtg ctaagtggtg ctgttagac 49
<210> 153
<211> 59
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH5-276-1-linker3.FS(Kozak).fwd
<400> 153
atccccgcgt gcttggccgg ccgtaattaa taatgtcaac tttgcctatt tcttctgtg 59
<210> 154
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH7-276-1-linker4.TCYC1.rev
<400> 154
tacggcgctc gcggcctgca ggttcttcga gcgtcccaaa accttc 46
<210> 155
<211> 53
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH81-276-116-TDH3.rev.tHMG1
<400> 155
ggtctgcagc cattattaat ttgtttgttt atgtgtgttt attcgaaact aag 53
<210> 156
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH82-276-116-tHMG1.fwd.TDH3
<400> 156
cgaataaaca cacataaaca aacaaattaa taatggctgc agaccaattg gtgaag 56
<210> 157
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH8-276-1-linker4.tHMG1.fwd
<400> 157
aacctgcagg ccgcgagcgc cgatagttat gacaattaca acaacagaat tctttc 56
<210> 158
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH91-276-116-TDH3.rev.FS
<400> 158
taggcaaagt tgacattatt aatttgtttg tttatgtgtg tttattcgaa actaag 56
<210> 159
<211> 54
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH92-276-116-FS.fwd.TDH3
<400> 159
aaacacacat aaacaaacaa attaataatg tcaactttgc ctatttcttc tgtg 54
<210> 160
<211> 48
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH9-276-1-linker9.tHMG1.rev
<400> 160
cccgccaggc gctggggttt aaacaccgat ggctgcagac caattggt 48
<210> 161
<211> 47
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer KMH93-276-130-3 prime IME.linker4.fwd
<400> 161
aacctgcagg ccgcgagcgc cgatctcgaa aagtactaca atcttcc 47
<210> 162
<211> 44
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer PW-91-093-CPK422-G
<400> 162
gatgtgtatt actagtgtcg acgacagcat tcgcccagta tttt 44
<210> 163
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_K_0142
<400> 163
gtattccaat gagaatcgct agaa 24
<210> 164
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_K_0143
<400> 164
ttcgtctgtt tttatccctc ttc 23
<210> 165
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_K_131
<400> 165
cctctcttaa aatgatggcg 20
<210> 166
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_034
<400> 166
gacggtagca acaagaatat agcacgagcc 30
<210> 167
<211> 36
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_035
<400> 167
ttttgaggga atattcaact gttttttttt atcatg 36
<210> 168
<211> 34
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_036
<400> 168
ttttttatca tgttgatgct ctgcataata atgc 34
<210> 169
<211> 34
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_053
<400> 169
tttgtttgtt tatgtgtgtt tattcgaaac taag 34
<210> 170
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_106
<400> 170
atgtctcaga acgtttacat tgtatcg 27
<210> 171
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_107
<400> 171
aggcagccaa gacattgatt aacatcc 27
<210> 172
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_109
<400> 172
atgaaactct ctactaaact ttgttggtg 29
<210> 173
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_110
<400> 173
atgagaaaaa aaatcggttg ggcttaac 28
<210> 174
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_112
<400> 174
atgtcattac cgttcttaac ttctgc 26
<210> 175
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_113
<400> 175
attcgcgggt ggaaggacct tgtgg 25
<210> 176
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_115
<400> 176
atgaccgttt acacagcatc cgttacc 27
<210> 177
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_116
<400> 177
cttgtgctaa gtggtgctgt tagac 25
<210> 178
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_118
<400> 178
atgtcagagt tgagagcctt cagtg 25
<210> 179
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_119
<400> 179
agtgcacact ttcaagctaa cac 23
<210> 180
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_121
<400> 180
atgactgccg acaacaatag tatgccc 27
<210> 181
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_122
<400> 181
catcagtggg aaacattcaa gaggcc 26
<210> 182
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_124
<400> 182
atggcttcag aaaaagaaat taggagagag 30
<210> 183
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_125
<400> 183
tgaggtcgtt gcttttccta ttattatatg 30
<210> 184
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_193
<400> 184
tcgacactag taatacacat catcgtcc 28
<210> 185
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_194
<400> 185
gagctcctcg agaagttaag attatatg 28
<210> 186
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_194
<400> 186
atggctgcag atcaattggt gaagac 26
<210> 187
<211> 32
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_233
<400> 187
agttatgaca attacaacaa cagaattctt tc 32
<210> 188
<211> 32
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer GW-52-84 pAM326 BamHI
<400> 188
taataaggat ccatgtcaac tttgcctatt tc 32
<210> 189
<211> 32
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer GW-52-84 pAM326 NheI
<400> 189
ttatagctag ctcaaacgac cataggatga ac 32
<210> 190
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_266
<400> 190
tacttttttt ttggatggac gcaaag 26
<210> 191
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_L_267
<400> 191
aagtatagag gtatattaac aattttttg 29
<210> 192
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_RN017
<400> 192
acgaagtgac tgacagaata ctgacatcag 30
<210> 193
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_RN018
<400> 193
ttaaaagttg tttccgctgt atcctgtatc 30
<210> 194
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_RN019
<400> 194
agtatacact aaattttatg caataataaa 30
<210> 195
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_RN020
<400> 195
ggttttgcta aggaagtttt ggagtatgct 30
<210> 196
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_Z025
<400> 196
cacgaaaatc gttattgtct tgaagg 26
<210> 197
<211> 52
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_Z026
<400> 197
gctttatgga ccctgaaacc actcactatt attccataag atgatcatta gc 52
<210> 198
<211> 54
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_Z027
<400> 198
gcttcaattt aattatatca gttattacca cgaaaatcgt tattgtcttg aagg 54
<210> 199
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_Z028
<400> 199
tcactattat tccataagat gatcattagc 30
<210> 200
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_Z033
<400> 200
gtggtttcag ggtccataaa gc 22
<210> 201
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_Z034
<400> 201
gtaataactg atataattaa attgaagc 28
<210> 202
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_Z035
<400> 202
ctgttgacat tgcgaagagt gacaaagatt ttgttatcg 39
<210> 203
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer TRIX_Z036
<400> 203
cgataacaaa atctttgtca ctcttcgcaa tgtcaacag 39
<210> 204
<211> 45
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer VH228-235-7-URA3LOF3RYSE12-1F
<400> 204
gctcacacgc ggccaggggg agcctcacta ttattccata agatg 45
<210> 205
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer VH229-235-7-URA3LOF3RYSE12-1R
<400> 205
aggtccgccg gcgttggacg agcgcacgaa aatcgttatt gtcttg 46
<210> 206
<211> 198
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic DNA fragment
<400> 206
cacgaaaatc gttattgtct tgaaggtgaa atttctactc ttattaatgg tgaacgttaa 60
gctgatgcta tgatggaagc tgattggtct taacttgctt gtcatcttgc taatggtcat 120
atggctcgtg ttattactta agttatttgt actcgttttg aacgtaatgc taatgatcat 180
cttatggaat aatagtga 198
<210> 207
<211> 2733
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> pRYSE Entry vector 2
<400> 207
gtaaaacgac ggccagtatt aaccctcact aaagggaact cgaggctctt cagctcacac 60
gcggccaggg ggagcctggc agactccata tgctatgcgg catcagagca gattgtactg 120
agagtgcacc atatgcggtg tgaaataccg cacagatgcg taaggagaaa ataccgcatc 180
aggcgccatt cgccattcag gctgcgcaac tgttgggaag ggcgatcggt gcgggcctct 240
tcgctattac gccagctggc gaaaggggga tgtgctgcaa ggcgattaag ttgggtaacg 300
ccagggtttt cccagtcacg acgttgtaaa acgacggcca gtgaattcga gctcggtacc 360
cggggatcct ctagcgtcga cctgcaggca tgcaagcttg gcgtaatcat ggtcatagct 420
gtttcctgtg tgaaattgtt atccgctcac aattccacac aacatacgag ccggaagcat 480
aaagtgtaaa gcctggggtg cctaatgagt gagctaactc acattaattg cgttgcgcgc 540
tagcgagtca tccacgctcg tccaacgccg gcggaccttg aagagcgagc tcccgctgag 600
caataactag cgtcatagct gtttcctggg tcgttcggct gcggcgagcg gtatcagctc 660
actcaaaggc ggtaatacgg ttatccacag aatcagggga taacgcagga aagaacatgt 720
gagcaaaagg ccagcaaaag gccaggaacc gtaaaaaggc cgcgttgctg gcgtttttcc 780
ataggctccg cccccctgac gagcatcaca aaaatcgacg ctcaagtcag aggtggcgaa 840
acccgacagg actataaaga taccaggcgt ttccccctgg aagctccctc gtgcgctctc 900
ctgttccgac cctgccgctt acccgatacc tgtccgcctt tctcccttcg ggaagcgtgg 960
cgctttctca tagctcacgc tgtaggtatc tcagttcggt gtaggtcgtt cgctccaagc 1020
tgggctgtgt gcacgaaccc cccgttcagc ccgaccgctg cgccttatcc ggtaactatc 1080
gtcttgattc caacccggta agacacgact tatcgccact ggcagcagcc actggtaaca 1140
ggattagcag agcgaggtat gtaggcggtg ctacagagtt cttgaagtgg tggcctaact 1200
acggctacac tagaagaaca gtatttggta tctgcgctct gctgaagcca gttaccttcg 1260
gaaaaagagt tggtagctct tgatccggca aacaaaccac cgctggtagc ggtggttttt 1320
ttgtttgcaa gcagcagatt acgcgcagaa aaaaaggatc tcaagaagat cctttgatct 1380
tttctacggg gtctgacgct cagtggaacg aaaactcacg ttaagggatt ttggtcatga 1440
gattatcaaa aaggatcttc acctagatcc ttttaaatta aaaatgaagt tttaaatcaa 1500
tctaaagtat atatgagtaa cttggtcgca tgcttaccaa tgcttaatca gtgaggcacc 1560
tatctcagcg atctgtctat ttcgttcatc catagttgcc tgactgcccg tcgtgtagat 1620
aactacgata cgggagggct taccatctgg ccccagtgct gcaatgatac cgcgagaccc 1680
acgctcaccg gctccagatt tatcagcaat aaaccagcca gccggaaggg ccgagcgcag 1740
aagtggtcct gcaactttat ccgcctccat ccagtctatt aattgttgcc gggaagctag 1800
agtaagtagt tcgccagtta atagtttgcg caacgttgtt gccattgcta caggcatcgt 1860
ggtgtcacgc tcgtcgtttg gtatggcttc attcagctcc ggttcccaac gatcaaggcg 1920
agttacatga tcccccatgt tgtgcaaaaa agcggttagc tccttcggtc ctccgatcgt 1980
tgtcagaagt aagttggccg cagtgttatc actcatggtt atggcagcac tgcataattc 2040
tcttactgtc atgccatccg taagatgctt ttctgtgact ggtgagtact caaccaagtc 2100
attctgagaa tagtgtatgc ggcgaccgag ttgctcttgc ccggcgtcaa tacgggataa 2160
taccgcgcca catagcagaa ctttaaaagt gctcatcatt ggaaaacgtt cttcggggcg 2220
aaaactctca aggatcttac cgctgttgag atccagttcg atgtaaccca ctcgtgcacc 2280
caactgatct tcagcatctt ttactttcac cagcgtttct gggtgagcaa aaacaggaag 2340
gcaaaatgcc gcaaaaaagg gaataagggc gacacggaaa tgttgaatac tcatcaattg 2400
cctttttcaa tattattgaa gcatttatca gggttattgt ctcatgagcg gttacatatt 2460
tgaatgtatt tagaaaaata aacaaatagg ggttccgcgc acatttcccc gaaaagtgcc 2520
acctgacgtc taagaaacca ttattatcat gacattaacc tataaaaata ggcgtatcac 2580
gaggcccttt catctcgcgc gtttcggtga tgacggtgaa aacctctgac acatgcagct 2640
cccggagaca gtcacagctt gtctgtaagc ggatgccggg agcagacaag cccgtcaggg 2700
cgcgtcagcg ggtgttggcg ggtgtcgggg ctg 2733
<210> 208
<211> 2733
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> pRYSE Entry vector 3
<400> 208
gtaaaacgac ggccagtatt aaccctcact aaagggaact cgaggctctt cacgctcgtc 60
caacgccggc ggaccttggc agactccata tgctatgcgg catcagagca gattgtactg 120
agagtgcacc atatgcggtg tgaaataccg cacagatgcg taaggagaaa ataccgcatc 180
aggcgccatt cgccattcag gctgcgcaac tgttgggaag ggcgatcggt gcgggcctct 240
tcgctattac gccagctggc gaaaggggga tgtgctgcaa ggcgattaag ttgggtaacg 300
ccagggtttt cccagtcacg acgttgtaaa acgacggcca gtgaattcga gctcggtacc 360
cggggatcct ctagcgtcga cctgcaggca tgcaagcttg gcgtaatcat ggtcatagct 420
gtttcctgtg tgaaattgtt atccgctcac aattccacac aacatacgag ccggaagcat 480
aaagtgtaaa gcctggggtg cctaatgagt gagctaactc acattaattg cgttgcgcgc 540
tagcgagtca tccaatcccc gcgtgcttgg ccggccgttg aagagcgagc tcccgctgag 600
caataactag cgtcatagct gtttcctggg tcgttcggct gcggcgagcg gtatcagctc 660
actcaaaggc ggtaatacgg ttatccacag aatcagggga taacgcagga aagaacatgt 720
gagcaaaagg ccagcaaaag gccaggaacc gtaaaaaggc cgcgttgctg gcgtttttcc 780
ataggctccg cccccctgac gagcatcaca aaaatcgacg ctcaagtcag aggtggcgaa 840
acccgacagg actataaaga taccaggcgt ttccccctgg aagctccctc gtgcgctctc 900
ctgttccgac cctgccgctt acccgatacc tgtccgcctt tctcccttcg ggaagcgtgg 960
cgctttctca tagctcacgc tgtaggtatc tcagttcggt gtaggtcgtt cgctccaagc 1020
tgggctgtgt gcacgaaccc cccgttcagc ccgaccgctg cgccttatcc ggtaactatc 1080
gtcttgattc caacccggta agacacgact tatcgccact ggcagcagcc actggtaaca 1140
ggattagcag agcgaggtat gtaggcggtg ctacagagtt cttgaagtgg tggcctaact 1200
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tatctcagcg atctgtctat ttcgttcatc catagttgcc tgactgcccg tcgtgtagat 1620
aactacgata cgggagggct taccatctgg ccccagtgct gcaatgatac cgcgagaccc 1680
acgctcaccg gctccagatt tatcagcaat aaaccagcca gccggaaggg ccgagcgcag 1740
aagtggtcct gcaactttat ccgcctccat ccagtctatt aattgttgcc gggaagctag 1800
agtaagtagt tcgccagtta atagtttgcg caacgttgtt gccattgcta caggcatcgt 1860
ggtgtcacgc tcgtcgtttg gtatggcttc attcagctcc ggttcccaac gatcaaggcg 1920
agttacatga tcccccatgt tgtgcaaaaa agcggttagc tccttcggtc ctccgatcgt 1980
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tcttactgtc atgccatccg taagatgctt ttctgtgact ggtgagtact caaccaagtc 2100
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taccgcgcca catagcagaa ctttaaaagt gctcatcatt ggaaaacgtt cttcggggcg 2220
aaaactctca aggatcttac cgctgttgag atccagttcg atgtaaccca ctcgtgcacc 2280
caactgatct tcagcatctt ttactttcac cagcgtttct gggtgagcaa aaacaggaag 2340
gcaaaatgcc gcaaaaaagg gaataagggc gacacggaaa tgttgaatac tcatcaattg 2400
cctttttcaa tattattgaa gcatttatca gggttattgt ctcatgagcg gttacatatt 2460
tgaatgtatt tagaaaaata aacaaatagg ggttccgcgc acatttcccc gaaaagtgcc 2520
acctgacgtc taagaaacca ttattatcat gacattaacc tataaaaata ggcgtatcac 2580
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<210> 209
<211> 2733
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> pRYSE Entry vector 4
<400> 209
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aggcgccatt cgccattcag gctgcgcaac tgttgggaag ggcgatcggt gcgggcctct 240
tcgctattac gccagctggc gaaaggggga tgtgctgcaa ggcgattaag ttgggtaacg 300
ccagggtttt cccagtcacg acgttgtaaa acgacggcca gtgaattcga gctcggtacc 360
cggggatcct ctagcgtcga cctgcaggca tgcaagcttg gcgtaatcat ggtcatagct 420
gtttcctgtg tgaaattgtt atccgctcac aattccacac aacatacgag ccggaagcat 480
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caataactag cgtcatagct gtttcctggg tcgttcggct gcggcgagcg gtatcagctc 660
actcaaaggc ggtaatacgg ttatccacag aatcagggga taacgcagga aagaacatgt 720
gagcaaaagg ccagcaaaag gccaggaacc gtaaaaaggc cgcgttgctg gcgtttttcc 780
ataggctccg cccccctgac gagcatcaca aaaatcgacg ctcaagtcag aggtggcgaa 840
acccgacagg actataaaga taccaggcgt ttccccctgg aagctccctc gtgcgctctc 900
ctgttccgac cctgccgctt acccgatacc tgtccgcctt tctcccttcg ggaagcgtgg 960
cgctttctca tagctcacgc tgtaggtatc tcagttcggt gtaggtcgtt cgctccaagc 1020
tgggctgtgt gcacgaaccc cccgttcagc ccgaccgctg cgccttatcc ggtaactatc 1080
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agttacatga tcccccatgt tgtgcaaaaa agcggttagc tccttcggtc ctccgatcgt 1980
tgtcagaagt aagttggccg cagtgttatc actcatggtt atggcagcac tgcataattc 2040
tcttactgtc atgccatccg taagatgctt ttctgtgact ggtgagtact caaccaagtc 2100
attctgagaa tagtgtatgc ggcgaccgag ttgctcttgc ccggcgtcaa tacgggataa 2160
taccgcgcca catagcagaa ctttaaaagt gctcatcatt ggaaaacgtt cttcggggcg 2220
aaaactctca aggatcttac cgctgttgag atccagttcg atgtaaccca ctcgtgcacc 2280
caactgatct tcagcatctt ttactttcac cagcgtttct gggtgagcaa aaacaggaag 2340
gcaaaatgcc gcaaaaaagg gaataagggc gacacggaaa tgttgaatac tcatcaattg 2400
cctttttcaa tattattgaa gcatttatca gggttattgt ctcatgagcg gttacatatt 2460
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acctgacgtc taagaaacca ttattatcat gacattaacc tataaaaata ggcgtatcac 2580
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cgcgtcagcg ggtgttggcg ggtgtcgggg ctg 2733
<210> 210
<211> 2733
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> pRYSE Entry vector 5
<400> 210
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agtaagtagt tcgccagtta atagtttgcg caacgttgtt gccattgcta caggcatcgt 1860
ggtgtcacgc tcgtcgtttg gtatggcttc attcagctcc ggttcccaac gatcaaggcg 1920
agttacatga tcccccatgt tgtgcaaaaa agcggttagc tccttcggtc ctccgatcgt 1980
tgtcagaagt aagttggccg cagtgttatc actcatggtt atggcagcac tgcataattc 2040
tcttactgtc atgccatccg taagatgctt ttctgtgact ggtgagtact caaccaagtc 2100
attctgagaa tagtgtatgc ggcgaccgag ttgctcttgc ccggcgtcaa tacgggataa 2160
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attctcttac tgtcatgcca tccgtaagat gcttttctgt gactggtgag tactcaacca 2100
agtcattctg agaatagtgt atgcggcgac cgagttgctc ttgcccggcg tcaatacggg 2160
ataataccgc gccacatagc agaactttaa aagtgctcat cattggaaaa cgttcttcgg 2220
ggcgaaaact ctcaaggatc ttaccgctgt tgagatccag ttcgatgtaa cccactcgtg 2280
cacccaactg atcttcagca tcttttactt tcaccagcgt ttctgggtga gcaaaaacag 2340
gaaggcaaaa tgccgcaaaa aagggaataa gggcgacacg gaaatgttga atactcatca 2400
attgcctttt tcaatattat tgaagcattt atcagggtta ttgtctcatg agcggttaca 2460
tatttgaatg tatttagaaa aataaacaaa taggggttcc gcgcacattt ccccgaaaag 2520
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tcacgaggcc ctttcatctc gcgcgtttcg gtgatgacgg tgaaaacctc tgacacatgc 2640
agctcccgga gacagtcaca gcttgtctgt aagcggatgc cgggagcaga caagcccgtc 2700
agggcgcgtc agcgggtgtt ggcgggtgtc ggggctg 2737
Claims (110)
- (a) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 그룹 D0로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함하며 원형인, 하나 이상의 첫번째 핵산 분자;
(b) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn을 포함하며 원형인, 하나 이상의 중간 핵산 분자(상기 n은 1 내지 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(c) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, 그룹 Dm으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 및 두번째 제한 부위 RBm를 포함하며 원형인, 하나 이상의 마지막 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타냄);를 포함하며,
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이이며;
여기에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단 및 절단된(excised) 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며 상기 절단된 선형 핵산 분자에 대한 상보적인 폴리뉴클레오타이드의 합성을 위한 개시 지점으로 기능할 수 있으며, 상기 n은 1부터 (m-1)까지 변하는 정수이며, 상기 p는 1 내지 m의 정수를 나타내며, 및 상기 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm은, 서로 독립적으로 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성된 것을 특징으로 하는 조성물. - 제 1항에 있어서, 상기 하나 이상의 첫번째 핵산 분자는 각각, 그룹 D0로부터 선택된 DNA 절편에 대하여 5'에 위치한 프라이머 결합 절편 PA를 더 포함하며, 하나 이상의 마지막 핵산 분자는 각각, 그룹 Dm으로부터 선택된 DNA 절편에 대하여 3'에 위치한 프라이머 결합 절편 PB를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단 및 절단된(excised) 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 조성물에서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 선택적으로 하이브리드할 수 있는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) LB(p-1)은 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp 또는 이의 상보적 서열(complement)과 서열에서 동일한 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 하나의 첫번째 핵산 분자 및 마지막 핵산 분자를 포함하는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 각각의 제한 부위 RA0부터 RBm는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 제한 부위 RA0부터 RBm는 동일한 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 제한 부위 RA0부터 RBm는 SapI 또는 LguI 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제1항에 있어서, 상기 2개 이상의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 각각 적어도 60℃의 융점을 갖는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 2개 이상의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 각각, 서로 독립적으로, 적어도 70%의 G-C의 염기쌍의 함량과 적어도 70℃의 융점을 갖는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 2개 이상의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 각각, 서로 독립적으로, 적어도 30%의 A-T의 염기쌍의 함량과 적어도 65℃의 융점을 가지며, 서열 모티프 5'ANNNNNNNNANNNAANTANNTTNANA-3'를 포함하며, 상기 A는 아데닌을 나타내며, N은 임의의 뉴클레오타이드를 나타내며, T는 티민을 나타내는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 2개 이상의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 서열번호 1 내지 8 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된 서열을 갖는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 서열번호 1 내지 8 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된 서열을 갖는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 2항에 있어서, 상기 각각의 프라이머 결합 절편은 서열번호 9 내지 10 및 이의 상보적 서열(complement)로 구성된 군으로부터 선택된 서열을 갖는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 제한 부위 RB0부터 RBm까지 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 8항에 있어서, SapI 또는 LguI 제한 엔도뉴클레아제를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제한 부위 RA0부터 RBm까지 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제를 갖는 제 1항 또는 제 2항의 조성물을 분해함으로써 형성된 다수의 선형 핵산 분자를 포함하는 조성물.
- 제 17항에 있어서, 상기 각각의 선형 핵산 분자는 접착말단(sticky-end)을 포함하는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 2항에 있어서, 프라이머 결합 절편 PA 또는 이의 상보적 서열(complement)에 상보적인 첫번째 프라이머, 및 프라이머 결합 절편 PB 또는 이의 상보적 서열(complement)에 상보적인 두번째 프라이머를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 조성물.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, DNA 폴리머라제를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 조성물.
- SapI 또는 LguI 제한 엔도뉴클레아제를 갖는 제8항의 조성물을 분해함으로써 형성된 다수의 선형 핵산 분자를 포함하는 조성물.
- (a) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(b) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(c) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(d) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터; 및
(e) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;로부터 선택되며,
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이이며;
상기 각각의 제한 부위들 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있는 것을 특징으로 하는 벡터. - (a) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(b) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(c) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(d) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터; 및
(e) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, DNA 절편 D, 제한 부위 RZ, 프라이머 결합 절편 PB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;로부터 선택되며,
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이이며;
상기 각각의 제한 부위들 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있는 것을 특징으로 하는 벡터. - (a) 제 23항의 하나 이상의 벡터;
(b) 제한 부위들 RA 및 RB를 절단할 수 있는 하나 이상의 IIS형 제한 엔도뉴클레아제; 및
(c) 제한 부위들 RY 및 RZ를 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제;를 포함하는 키트. - (a) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(b) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(c) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터; 중 적어도 하나를 포함하며,
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이이며;
상기 각각의 제한 부위들 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있는 것을 특징으로 하는 핵산 분자의 라이브러리. - (a) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(b) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(c) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 프라이머 결합 절편 PB 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터; 중 적어도 하나를 포함하며,
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이이며;
상기 각각의 제한 부위들 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있는 것을 특징으로 하는 핵산 분자의 라이브러리. - (a) 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 그룹 D0로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함하며 원형인 첫번째 핵산 분자;
(b) 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn 및 두번째 제한 부위 RBn을 포함하며 원형인 중간 핵산 분자(상기 n은 1 내지 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(c) 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, 그룹 Dm으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 및 두번째 제한 부위 RBm를 포함하며 원형인 마지막 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타냄); 중 적어도 하나를 포함하며,
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이이며;
상기 각각의 제한 부위 RA0부터 RBm까지는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있으며,
여기에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단 및 절단된(excised) 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며 상기 절단된 선형 핵산 분자에 대해 상보적인 폴리뉴클레오타이드의 합성을 위한 개시 지점으로 기능할 수 있으며, 상기 n은 1부터 (m-1)까지 변하는 정수이며, 상기 p는 1 내지 m의 정수를 나타내며, 및 상기 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm은 서로 독립적으로, 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성된 것을 특징으로 하는 핵산 분자의 라이브러리. - (a) (i), (ii) 및 (iii)의 핵산 분자로부터 절단된(excised) 폴리뉴클레오티드를 형성하기 위하여 하나 이상의 IIS형 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 조성물을 분해하는 단계;
상기 조성물은,
(i) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 그룹 PA로부터 선택된 임의의 프라이머 결합 절편, 그룹 D0으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0, 및 두번째 제한 부위 RB0를 포함하며 원형인, 하나 이상의 첫번째 핵산 분자;
(ii) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn, 및 두번째 제한 부위 RBn을 포함하며 원형인, 하나 이상의 중간 핵산 분자(상기 n은 1 내지 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(iii) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, 그룹 Dm으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 그룹 PB로부터 선택된 임의의 프라이머 결합 절편, 및 두번째 제한 부위 RBm을 포함하며 원형인, 하나 이상의 마지막 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타냄);를 포함하며, 여기에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단 및 절단된(excised) 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며 상기 절단된 선형 핵산 분자에 대한 상보적인 폴리뉴클레오타이드의 합성을 위한 개시 지점으로 기능할 수 있으며, 상기 n은 1부터 (m-1)까지 변하는 정수이며, 상기 p는 1 내지 m의 정수를 나타내며, 및 상기 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm은 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성되며; 및
(b) 상기 조성물을 DNA 폴리머라제, 데옥시리보뉴클레오사이드 트리포스페이트 및 하나 이상의 첫번째 프라이머 및 하나 이상의 두번째 프라이머와 접촉시키는 단계;
상기 각각의 첫번째 프라이머는 그룹 PA로부터 선택된 상기 프라이머 결합 절편 중 하나에 하이브리드 될 수 있으며, 상기 각각의 두번째 프라이머는 그룹 PB로부터 선택된 상기 프라이머 결합 절편 중 하나에 하이브리드 될 수 있으며; 및 상기 성분 조성물을 폴리머라제 사슬 반응을 겪게 하는 단계;를 포함하며,
여기에서, 5'에서 3'의 방향으로, 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm으로부터 선택된 하나의 DNA 절편을 포함하는 폴리뉴클레오타이드가 상기 어닐링될 수 있는 링커 서열에 의해 집합되며; 상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이인 것을 특징으로 하는
상기 (i), (ii) 및 (iii)의 핵산 분자로부터 절단된(excised) 폴리뉴클레오티드의 다수로부터 어닐링될 수 있는 링커 서열에 의해 집합된 폴리뉴클레오티드를 형성하는 방법. - (a) 제 28항에 따라 어닐링될 수 있는 링커에 의해 집합된 하나 이상의 폴리뉴클레오타이드로 숙주 세포를 형질변환하는 단계; 및
(b) 어닐링될 수 있는 링커에 의해 집합된 하나 이상의 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포를 선택하는 단계;를 포함하는 것을 특징으로 하는, 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포의 형성 방법. - (a) (i), (ii), 및 (iii) 또는 (i) 및 (iii)을 포함하는 조성물을 사용하여 숙주 세포를 형질변환하는 단계;
(i) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 그룹 D0으로부터 선택된 임의의 DNA 절편 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0를 포함하는, 하나 이상의 첫번째 선형 핵산 분자;
(ii) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn으로부터 선택된 임의의 DNA 절편 및 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn을 포함하는, 하나 이상의 중간 선형 핵산 분자(상기 n은 1 내지 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(iii) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm 및 그룹 Dm으로부터 선택된 임의의 DNA 절편을 포함하는, 하나 이상의 마지막 선형 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수보다 큰 정수를 나타냄);를 포함하며,
여기에서, 상기 n은 1부터 (m-1)까지 변하는 정수이며,
상기 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm은 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성되며,
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 LB(p-1)과 LAp 사이에서 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)을 개시하는데 충분한 길이의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp를 갖는 상동(homology) 영역을 포함하며, 상기 p는 1 내지 m의 정수를 나타내며, 상기 상동 재조합은 상기 어닐링될 수 있는 링커에 의해 폴리뉴클레오타이드의 집합체를 유발하며; 및
(b) 5'에서 3'의 방향으로, 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm으로부터 선택된 하나의 DNA 절편을 포함하는 상기 어닐링될 수 있는 링커에 의해 집합된 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포를 선택하는 단계;를 포함하며,
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이인 것을 특징으로 하는 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포의 형성 방법. - 제 30항의 방법에 의해 형성된 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포.
- (a) (a1) 하나 이상의 IIS형 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 (i), (ii), 및 (iii)을 포함하는 조성물 내 (i), (ii) 및 (iii)의 핵산 분자를 분해하거나, 또는 (a2) 하나 이상의 IIS형 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 (i) 및 (iii)을 포함하는 조성물 내 (i) 및 (iii)의 핵산 분자를 분해하는 단계:
(i) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RA0, 프라이머 결합 절편 PA, 그룹 D0로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB0, 및 두번째 제한 부위 RB0을 포함하며 원형인, 하나 이상의 첫번째 핵산 분자;
(ii) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAn, 첫번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAn, 그룹 Dn으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 두번째 어닐링될 수 있는 링커 서열 LBn, 및 두번째 제한 부위 RBn을 포함하며 원형인, 하나 이상의 중간 핵산 분자(상기 n은 1부터 중간 핵산 분자의 개수까지의 정수를 나타냄); 및
(iii) 각각, 5'에서 3'의 방향으로, 첫번째 제한 부위 RAm. 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAm, 그룹 Dm으로부터 선택된 임의의 DNA 절편, 프라이머 결합 절편 PB, 및 두번째 제한 부위 RBm을 포함하며 원형인, 하나 이상의 마지막 핵산 분자(상기 m은 중간 핵산 분자의 개수를 초과하는 정수임);를 포함하며, 여기에서, 제한 부위 RA0부터 RBm까지의 절단 및 절단된(excised) 선형 핵산 분자의 변성에 있어서, 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)는 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp의 상보적 서열(complement)에 하이브리드할 수 있으며, 상기 p는 1 내지 m의 정수를 나타내며, 상기 n은 1부터 (m-1)까지 변하는 정수이며, 및 상기 각각의 그룹 D0,... Dn,... 및 Dm은 하나 이상의 DNA 절편(segment)으로 구성되며;
상기 하나 이상의 IIS형 제한 엔도뉴클레아제는 제한 부위 RA0부터 RBm까지 절단할 수 있으며;
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이이며; 및
(b) 상기 (a) 단계로부터 얻은 분해된 조성물을 사용하여 숙주 세포를 형질변환하는 단계; 상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB(p-1)은 LB(p-1)과 LAp 사이에 숙주 세포 매개 상동 재조합(homologous recombination)을 개시하는데 충분한 길이의 어닐링될 수 있는 링커 서열 LAp를 갖는 상동(homology) 영역을 포함하며, 상기 상동 재조합은 상기 어닐링될 수 있는 링커에 의해 폴리뉴클레오타이드의 집합체를 유발하며, 상기 p는 1 내지 m의 정수를 나타내며; 및
(c) 5'에서 3'의 방향으로, 각각의 그룹 D0,...Dn,...Dm으로부터 선택된 하나의 DNA 절편을 포함하는, 상기 어닐링될 수 있는 링커에 의해 집합된 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포를 선택하는 단계;를 포함하는, 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포를 형성하는 방법. - 제 32항의 방법에 의해 형성된 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 숙주 세포.
- 삭제
- 삭제
- (a) 하기의 벡터에서 선택된 벡터를, 제한 부위들 RY 및 RZ을 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 분해하는 단계:
(i) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 제한 부위 RY, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형의 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(ii) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, 제한 부위 RZ, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형의 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(iii) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 프라이머 결합 절편 PA, 제한 부위 RY, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB, 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형의 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
(iv) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, 제한 부위 RZ, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형의 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터; 및
(v) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 제한 부위 RY, 제한 부위 RZ, 프라이머 결합 절편 PB 및 제한 부위 RB를 포함하는, 원형의 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터;
상기 분해하는 단계는 선형의 벡터를 형성하며;
상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이이며; 및
(b) 연결효소(ligase)의 존재하에서 선형의 벡터를 선형의 DNA 절편 D와 접촉시키는 단계를 포함하며, 상기 접촉시키는 단계는 DNA 절편 D를 포함하는 원형의 벡터를 형성하며, 상기 제한부위들 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있는 것을 특징으로 하는 벡터를 제조하는 방법. - (a) 5'에서 3'의 방향으로, 제한 부위 RA, 제한 부위 RY, 제한 부위 RZ, 및제한 부위 RB를 포함하는, 원형의 폴리뉴클레오타이드로 구성된 벡터를, 제한 부위들 RY 및 RZ를 절단할 수 있는 하나 이상의 제한 엔도뉴클레아제를 사용하여 분해하는 단계;
상기 분해하는 단계는 선형 벡터를 형성하며; 및
(b) 연결효소(ligase)의 존재 하에서, 선형 벡터를 하기의 것들에서 선택된 선형 폴리뉴클레오타이드와 접촉시키는 단계:
(i) 5'에서 3'의 방향으로, DNA 절편 D, 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB를 포함하는 선형 폴리뉴클레오타이드;
(ii) 5'에서 3'의 방향으로, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, 및 DNA 절편을 포함하는 선형 폴리뉴클레오타이드;
(iii) 5'에서 3'의 방향으로, 프라이머 결합 절편 PA, DNA 절편 D, 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB를 포함하는 선형 폴리뉴클레오타이드;
(iv) 5'에서 3'의 방향으로, 어닐링될 수 있는 링커 서열 LA, DNA 절편 D, 및 어닐링될 수 있는 링커 서열 LB를 포함하는 선형 폴리뉴클레오타이드; 및
(v) 5'에서 3'의 방향으로, 어닐링될 수 있는 링커(annealable linker) LA, DNA 절편 D, 및 프라이머 결합 절편 PB를 포함하는 선형 폴리뉴클레오타이드;
상기 접촉시키는 단계는 DNA 절편 D를 포함하는 원형의 벡터를 형성하며, 상기 각각의 제한 부위 RA 및 RB는 IIS형 제한 엔도뉴클레아제에 의해 절단될 수 있으며, 상기 각각의 어닐링될 수 있는 링커 서열은 적어도 24개 뉴클레오티드의 길이인 것을 특징으로 하는 벡터를 제조하는 방법. - 삭제
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