KR101220946B1 - 히알루론산 유도체, 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 및 이의 제조방법 - Google Patents

히알루론산 유도체, 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 및 이의 제조방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 및 이의 제조 방법에 관한 것으로서, 본 발명에 따르면, 수용액 상에서 컨쥬게이션 반응을 진행할 수 있어, 수용액에 용해 가능한 수용성 펩타이드 활성 성분의 생접합을 통한 약물 전달 시스템 전반에 걸쳐 응용 가능하다. 또한 본 발명에 따라 생접합 효율이 매우 높고 약효 시간을 증대할 수 있으며 생체적합성, 생분해성 유도체와 결합하여 인체에 적용하기에 안전하므로 다양한 펩타이드 의약품의 약물 전달 시스템에 유용한 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트를 얻을 수 있다.

Description

히알루론산 유도체, 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 및 이의 제조방법{HYALURONIC ACID DERIVATIVE, HYALURONIC ACID-PEPTIDE CONJUGATE, AND PREPARING THE SAME}
본 발명은 펩타이드 의약품의 약물 전달체 및 이의 제조 방법에 관한 것이다. 보다 상세하게는 다양한 펩타이드 등의 활성 성분 및 이를 이용한 다양한 펩타이드 의약품의 약물 전달 시스템에 적용 가능하고, 생체적합성, 생분해성 전달체와 컨쥬게이션을 하여, 인체에 안전하게 적용할 수 있으며, 또한 생접합 효율이 높고, 약효 시간을 증대할 수 있는 히알루론산 유도체, 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 및 이의 제조 방법에 관한 것이다.
펩타이드 의약품의 장기 약효 지속 제형에 관한 연구는 최근까지 생체 적합한 생분해성 고분자와의 컨쥬게이션 반응을 통한 제형 개발에 포커스가 맞추어 지고 있다. 상기와 같은 펩타이드 의약품의 약효 지속 시간은 제형의 형태 및 컨쥬게이션 되는 활성 성분에 따라 몇 주까지 연장되기도 한다. 이와 같은 제형을 개발하기 위해서는 제형의 약효 지속 시간의 증대 및 활성 성분에 컨쥬게이션 되는 고분자의 생체적합성 여부도 고려해야 한다.
따라서, 최근에는 생체적합한 생분해성 폴리에틸렌 글리콜(poly ethylene glycol, PEG) 또는 히알루론산(hyaluronic acid, HA)과 활성 성분을 컨쥬게이션하여 약물 전달 시스템에 응용하려는 연구가 활발히 진행되고 있다.
하지만, 활성 성분에 폴리에틸렌 글리콜(PEG)을 컨쥬게이션하는 반응, 즉 소위 말하는 페길화(PEGylation) 반응에 사용되는 PEG는 FDA에서 공인한 대표적인 생체용 고분자 재료 중의 하나이지만, 약물전달체로 활용되는 폴리에틸렌 글리콜-리포솜(PEG-Liposome) 접합체를 반복 주사하게 되면 체내에서 투여된 약물의 소실이 빨리 일어나는 'accelerated blood clearance(가속된 혈중 청소율, ABC)' 현상이 일어나는 것으로 보고되고 있다.
한편, 히알루론산을 활성 성분에 컨쥬게이션하여 사용하는 기술의 경우, 이들 컨쥬게이트 반응의 생접합 효율이 낮아 한계가 있다.
이에 본 발명은 상기와 같은 종래 기술의 문제점을 해결하기 위하여 안출된 것으로서, 생접합 효율이 높고 수용성 펩타이드 등의 수용성 활성 성분에 적용 가능한 히알루론산 유도체, 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 및 이의 제조 방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.
상기와 같은 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 하기 화학식 1을 갖는 히알루론산(Hyaluronic acid, HA) 유도체와 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드가 결합된 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트를 제공한다.
Figure 112010044236295-pat00001
상기 화학식 1에서,
n은 50 내지 10,000의 정수이고,
R1 및 R2는 각각 독립적으로 -OH,
Figure 112010044236295-pat00002
또는
Figure 112010044236295-pat00003
이다.
또한, 본 발명은 비닐술폰기를 갖는 하기 화학식 2 또는 화학식 3의 히알루론산 유도체를 제조하고,
상기 제조된 히알루론산 유도체의 비닐술폰기에 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드를 수용액에서 반응시키는 단계를 포함하는 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법을 제공한다.
Figure 112010044236295-pat00004
Figure 112010044236295-pat00005
상기 화학식 2 및 화학식 3에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
또한 본 발명은 하기 화학식 2를 갖는 히알루론산 유도체를 제공한다.
[화학식 2]
Figure 112010044236295-pat00006
상기 화학식 2에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
이하, 본 발명의 일 구현예에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 및 이의 제조방법에 대하여 보다 상세하게 설명한다.
본 발명의 일 구현예에 따라, 상기 화학식 1을 갖는 히알루론산 유도체 및 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드가 결합된 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트가 제공된다.
본 발명의 일 구현예에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트는 활성 성분인 상기 펩타이드에 생체적합성, 생분해성 고분자인 히알루론산을 컨쥬게이션하여, 인체에 안전하게 적용할 수 있을 뿐만 아니라, 생접합 효율이 높아, 수용성 펩타이드 등을 포함한 수용성 활성 성분의 약물 전달 시스템에 관한 산업분야에 널리 적용할 수 있다.
바람직하게는 상기 히알루론산 유도체는 상기 화학식 2 또는 화학식 3을 갖는 화합물인 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트가 될 수 있다.
상기 화학식 2를 갖는 화합물은 신규한 히알루론산 유도체로서, 본 발명자의실험 결과 상기 화합물의 비닐술폰기와 수용성 펩타이드의 티올기간의 반응을 통해 결합된 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트는 생접합 효율을 90% 이상으로 현저히 향상시킬 수 있을 뿐만 아니라, 약효시간도 현저히 증대시킬 수 있음이 밝혀졌다.
상기 화학식 2를 갖는 히알루론산 유도체를 제조하는 방법은 제한되지 않으나, 바람직하게는 히알루론산의 카르복실기에 시스테아민 화합물을 반응시킨 후 디비닐술폰(Divinyl sulfone, DVS)을 추가로 반응시켜 제조된 것일 수 있다.
상기 시스테아민 화합물은 시스테아민, 다양한 시스테아민 염, 및 체내에서 대사되어 시스테아민을 생성할 수 있는 시스테아민 전구체를 비롯하여 시스테아민 유사체, 시스테아민의 유도체, 시스테아민의 접합체 및 시스테아민의 대사 산물을 모두 포함한다. 바람직하게는 상기 시스테아민 화합물은 시스테아민 하이드로클로라이드, 시스테아민 포스페이트, 판토텐산, 시스타민 또는 시스타민 디하이드로클로라이드이며, 더욱 바람직하게는 시스테아민, 시스테아민 하이드로클로라이드, 시스타민 또는 시스타민 디하이드로클로라이드이다.
바람직하게는 상기 화학식 2를 갖는 화합물은 하기 반응식 1a 내지 1c에 따라 제조될 수 있다.
[반응식 1a]
Figure 112010044236295-pat00007
[반응식 1b]
Figure 112010044236295-pat00008
[반응식 1c]
Figure 112010044236295-pat00009
상기 반응식 1a 및 반응식 1b에 따른 반응은 바람직하게는 수용액에서 이루어질 수 있으며, 상세하게는 히알루론산 또는 히알루론산의 염의 카르복실기를 1-에틸-3-(3-디메틸아미노프로필)카보디이미드(1-Ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide, EDC) 및 1-하이드록시벤조트리아졸(1-Hydroxybenzotriazole, HOBt)로 활성화시킨 후 시스타민 디하이드로클로라이드(Cystamine dihydrochloride)와 반응시켜 히알루론산-시스타민(HA-Cystamine) 결합체를 형성하고 상기 히알루론산-시스타민 결합체에 트리스(2-카르복시에틸)포스파인(tris(2-carboxyethyl)phosphine, TCEP)를 추가로 첨가하여 반응시켜 티올기를 갖는 히알루론산 유도체(HA-SH)를 형성하는 단계를 포함하여 이루어질 수 있다. 상기 제조된 티올기를 갖는 히알루론산 유도체(HA-SH)는 추가로 디비닐술폰과 수용액에서 반응시킴으로써 상기 화학식 2의 화합물을 제조할 수 있다.
또한 바람직하게는 상기 화학식 2를 갖는 화합물은 하기 화학식 4를 갖는 화합물의 카르복실기와 하기 화학식 5를 갖는 화합물의 아민기를 유기용매에서 반응시켜 제조할 수 있다.
Figure 112010044236295-pat00010
상기 화학식 4에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
Figure 112010044236295-pat00011
상기 화학식 2를 갖는 화합물은 바람직하게는 하기 반응식 2에 따라 히알루론산, 또는 히알루론산의 염과 테트라-n-부틸 암모니움 하이드록사이드(Tetra-n-butyl ammonium hydroxide, TBA-OH)를 반응시켜 상기 화학식 4의 HA-TBA를 형성하고, 이와 별도로 시스테아민 화합물을 디비닐술폰과 유기용매 존재 하에 반응시켜 상기 화학식 5의 비닐술폰-시스테아민 결합체(vinyl sulfone cysteamine, VSC)를 형성하여 상기 HA-TBA와 상기 비닐술폰-시스테아민 결합체를 유기용매 존재 하에 반응시키는 단계를 포함하여 제조할 수 있다.
또한 바람직하게는 히알루론산 한 구성단위(unit)에 대한 상기 비닐술폰-시스테아민 결합체의 몰비를 조절하여 비닐기 치환율을 조절할 수 있으며, 비닐기 치환율을 높임으로써 혈청 안정성 및 약효 시간을 더욱 증대시킬 수 있다.
[반응식 2]
Figure 112010044236295-pat00012

바람직하게는 상기 화학식 4의 HA-TBA의 형성은 양이온 교환수지를 이용하여 수행할 수 있다.
상세하게는, 양이온 교환수지에 테트라-n-부틸 암모니움 하이드록사이드(Tetra-n-butyl ammonium hydroxide)를 반응시키는 단계, 및 히알루론산, 또는 히알루론산의 염을 추가로 첨가하여 반응하는 단계를 포함하여 이루어질 수 있다.
이 때, 상기 양이온 교환수지는 테트라-n-부틸 암모니움 하이드록사이드와 반응하여, TBA-OH의 양이온을 교환할 수 있는 것이면, 어떠한 것이든 무방하나 바람직하게는 상기 양이온 교환수지는 Dowex® 50WX2-200, Dowex® 50WX4-400, Dowex® 50WX2-100, Dowex® 50WX2-400, Dowex® 50WX8-100, Dowex® 50WX8-200, 및 Dowex® 50WX8-400로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상을 사용할 수 있다. 상기와 같은 양이온 교환수지를 HA-TBA 형성에 사용하는 경우, HA의 카르복실기에 있던 Na+ 이온을 TBA 이온으로 교환하여 HA-Na를 HA-TBA로 변환시킬 수 있는 점에서 유리하다.
상기 화학식 5의 비닐술폰-시스테아민 결합체(VSC)의 형성에 사용되는 시스테아민 화합물로는 바람직하게는 시스테아민 하이드로클로라이드(Cysteamine hydrochloride)를 사용할 수 있다.
또한 상기 유기 용매는 상기 화학식 4의 HA-TBA 및 상기 화학식 5의 비닐술폰-시스테아민 결합체를 용해시킬 수 있는 것이면, 어떠한 것이든 무방하나 바람직하게는, 디메틸설폭사이드(dimethyl sulfoxide, DMSO), 디메틸포름아미드(dimethylformamide, DMF), 디메틸아세트아미드(dimethylacetamide), N-메틸-2-피롤리돈(N-methyl-2-pyrrolidone, NMP), 및 헥사메틸포스포아미드(hexamethylphosphoramide, HMPA)로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상을 사용할 수 있다.
또한 바람직하게는, 상기 화학식 4의 HA-TBA 및 상기 화학식 5의 비닐술폰-시스테아민 결합체를 유기용매 존재 하에 반응시키기 전에, 상기 HA-TBA를 벤조트리아졸-1-일-옥시-트리스(디메틸아미노)포스포니움 헥사플로로포스페이트 (Benzotriazole-1-yl-oxy-tris(dimethylamino)phosphonium hexafluorophosphate, BOP), 1, 3-디시클로헥실카르보디이미드(1,3-Dicyclohexylcarbodiimide, DCC) 및 1, 3-다이아이소프로필카보다이이미드(1,3-Diisopropylcarbodiimide, DIC) 로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상의 활성제에 첨가하여 활성화시키는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
이처럼 활성제에 HA-TBA를 첨가해 활성화 시키는 단계를 거친 후에, HA-TBA 및 비닐술폰-시스테아민 결합체를 유기 용매 존재 하에 반응시키는 컨쥬게이션 반응을 진행하면, 히알루론산의 카르복실기가 활성화되어 비닐술폰-시스테아민 결합체의 아미노기와 반응성이 높아져 컨쥬게이션 반응 효율을 높일 수 있다. 이 때, 활성제에 첨가해 활성화시키는 시간은 사용되는 활성제의 종류 및 농도에 따라 달리 적용할 수 있는데, 바람직하게는 충분한 반응성 향상을 위해 30분 내지 1시간 활성화시킬 수 있다.
바람직하게는 상기 HA-TBA 및 상기 비닐술폰-시스테아민 결합체를 유기 용매 존재 하에 반응시키는 공정은, N, N-디이소프로필 에틸아민(N,N-diisopropyl ethylamine, DIPEA), 2,2,6,6,-테트라메틸피페리딘(2,2,6,6-tetramethylpiperidine), 또는 이들의 혼합물을 추가로 첨가하여 이루어질 수 있다. 이를 통해 상기 N, N-디이소프로필 에틸아민(N,N-diisopropyl ethylamine, DIPEA) 등의 첨가물이 컨쥬게이션 반응에서 촉매의 역할을 하여 반응 속도를 증가시킬 수 있다.
하기 화학식 3을 갖는 화합물은 바람직하게는 히알루론산을 디비닐술폰과 수용액에서 반응시켜 제조될 수 있다(반응식 3).
[화학식 3]
Figure 112010044236295-pat00013
상기 화학식 3에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
[반응식 3]
Figure 112010044236295-pat00014
본 발명의 일 구현예에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트의 제조에 사용되는 히알루론산, 히알루론산의 염 또는 히알루론산의 유도체는 그 구성의 한정은 없으나, 바람직하게는 분자량이 10,000 내지 3,000,000 달톤(Da)인 것을 사용할 수 있다. 상기와 같은 범위의 분자량을 갖는 히알루론산, 또는 히알루론산의 염, 또는 히알루론산의 유도체는 약물 전달을 위한 컨쥬게이트에 사용되기에 적합하다.
또한, 상기 컨쥬게이션 반응에 있어서, 히알루론산 유도체 한 분자에 결합되는 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드 분자수는 그 구성의 한정은 없으나, 바람직하게는 3 내지 60 분자수의 펩타이드가 결합될 수 있다. 상기와 같은 범위 내의 분자수의 펩타이드가 결합된 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트는 원하는 약효 지속 시간을 나타낼 수 있다.
한편, 본 발명의 일 구현예에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트는 예컨대 하기 반응식 4에 나타난 바와 같이, 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드를 준비해 화학식 2의 화합물(HA-VS)과 수용액 상에서 반응시켜 생성할 수 있으며, 또는 하기 반응식 5에 나타난 바와 같이, 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드를 준비해 화학식 3의 화합물(HA-DVS)과 수용액 상에서 반응시켜 생성할 수 있다.
[반응식 4]
Figure 112010044236295-pat00015
[반응식 5]
Figure 112010044236295-pat00016
히알루론산에 생접합되는 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드는 수용액 상에서 용해될 수 있는 것이면, 어떠한 것이든 무방하나, 예컨대 제2형 당뇨병 치료제인 엑센딘 4(Exendin 4), 또는 FPRL1 수용체(receptor)에 대한 작용제 펩타이드(agonistic peptide)를 사용할 수 있으며, 상기 FPRL1 수용체(receptor)에 대한 작용제 펩타이드(agonistic peptide)로는 예컨대, CWRYMVm (서열번호 1: Cys-Trp-Arg-Tyr-Met-Val-D-Met) 또는 CWKYMVm (서열번호 2: Cys-Trp-Lys-Tyr-Met-Val-D-Met)를 사용할 수 있다. 또한 바람직하게는 엑센딘 4(Exendin 4), 또는 FPRL1 수용체(receptor)에 대한 작용제 펩타이드의 N-말단에 시스테인을 도입한 것을 사용할 수 있다.
말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드의 준비는 활성 성분인 펩타이드가 그 자체에 티올기를 말단에 포함한 경우 별도의 준비 과정이 필요치 않으며, 말단에 티올기를 포함하지 않거나, 또는 말단에 티올기를 갖고 있기는 하나 포함된 티올기의 반응성이 낮은 펩타이드의 경우, 펩타이드의 말단에 별도로 티올기를 도입하는 공정을 거칠 수 있다.
펩타이드의 말단에 별도로 티올기를 도입하는 공정은 특별한 제한 없이 이루어질 수 있으나, 바람직하게는 펩타이드의 말단에 시스테인을 도입하여 진행할 수 있다. 이처럼 펩타이드의 말단에 시스테인을 사용하여 티올기를 도입하면, 도입된 티올기에 의해 컨쥬게이션 반응성을 증가시킬 수 있다.
본 발명의 다른 구현예에 따라, 비닐술폰기를 갖는 하기 화학식 2 또는 화학식 3의 히알루론산 유도체를 제조하고, 상기 제조된 히알루론산 유도체의 비닐술폰기에 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드를 수용액에서 반응시키는 단계를 포함하는 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법을 제공한다.
[화학식 2]
Figure 112010044236295-pat00017
[화학식 3]
Figure 112010044236295-pat00018
상기 화학식 2 및 화학식 3에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
바람직하게는 상기 화학식 2를 갖는 화합물은 히알루론산의 카르복실기에 시스테아민 화합물을 반응시킨 후 디비닐술폰을 추가로 반응시켜 제조된 것일 수 있다.
보다 바람직하게는 히알루론산의 카르복실기에 시스테아민 화합물을 반응시키고 트리스(2-카르복시에틸)포스파인(tris(2-carboxyethyl)phosphine, TCEP)를 반응시켜, 티올기를 갖는 하기 화학식 6의 화합물을 제조하고, 상기 화학식 6의 화합물을 디비닐술폰과 수용액에서 반응시켜 제조되는 것일 수 있다.
Figure 112010044236295-pat00019
상기 화학식 6에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
상기 화학식 3을 갖는 화합물은 바람직하게는 히알루론산을 디비닐술폰과 수용액에서 반응시켜 제조할 수 있다.
상술한 바와 같이, 본 발명의 일 구현예에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트는, 히알루론산 유도체와 수용성 펩타이드의 말단에 포함된 티올기 간의 컨쥬게이션 반응을 통해 제조될 수 있으며, 이러한 컨쥬게이션 반응이 수용액 상에서 진행되므로, 본 발명의 일 구현예에 따라 제조된 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트는 수용액에 용해 가능한 수용성 펩타이드 활성 성분의 생접합을 통한 약물 전달 시스템 전반에 걸쳐 응용 가능하다.
본 발명의 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조 방법에 따르면, 수용액 상에서 컨쥬게이션 반응을 진행할 수 있어, 수용액에 용해 가능한 수용성 펩타이드 활성 성분의 생접합을 통한 약물 전달 시스템 전반에 걸쳐 응용 가능하다. 또한 본 발명의 히알루론산 유도체를 사용함에 따라 생접합 효율이 매우 높고 약효 시간을 증대할 수 있으며 생체적합성, 생분해성 유도체와 결합하여 인체에 적용하기에 안전하므로 다양한 펩타이드 의약품의 약물 전달 시스템에 유용한 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트를 얻을 수 있다.
도 1a는 본 발명의 실험예 1에 따른 비닐술폰기를 갖는 히알루론산 유도체(HA-VS)의 1H-NMR 스펙트럼을 나타낸 것이다.
도 1b는 비닐술폰-시스테아민 결합체의 비율에 따른 비닐술폰기의 치환율을 나타낸 것이다.
도 1c는 본 발명의 실험예 1에 따른 비닐술폰기를 갖는 히알루론산 유도체(HA-DVS)의 1H-NMR 스펙트럼을 나타낸 것이다.
도 1d는 본 발명의 실험예 1에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬케이트의 시스테인 억제(cysteine blocking) 전후의 1H-NMR 스펙트럼을 나타낸 것이다.
도 2는 본 발명의 실험예 2에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트의 하나의 히알루론산 체인에 포함된 펩타이드 분자수(빨간색) 및 펩타이드 분자수에 따른 생접합 효율 (하얀색)를 나타낸 것이다.
도 3a 및 도 3b는 본 발명의 실험예 3에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트와 펩타이드의 GPC 분석 결과를 나타낸 것이다.
도 4는 본 발명의 실험예 4에 따른 인간 혈청(Human serum) 내에서 펩타이드 (검정색) 및 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트(빨간색: HA-Exendin 4 컨쥬게이트(70/10) 및 파란색: HA-Exendin 4 컨쥬게이트(30/10))의 안정성을 나타낸 것이다.
도 5는 본 발명의 실험예 5에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 (분홍색: HA-Exendin 4 컨쥬게이트(70/10) 및 초록색: HA-Exendin 4 컨쥬게이트(30/10))와 펩타이드 (파란색: Exendin 4)의 포도당 내성검사 결과 (도 5a) 및 이의 곡선하면적(area under the curve)을 이용한 정량결과 (도 5b)를 나타낸 것이다.
도 6은 본 발명의 실험예 6에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 (분홍색: HA-Exendin 4 컨쥬게이트(70/10) 및 초록색: HA-Exendin 4 컨쥬게이트(30/10))와 펩타이드 (파란색: Exendin 4)의 혈당 강하 효과 검사 결과 (도 6a) 및 이의 곡선하면적(area under the curve)을 이용한 정량결과(도 6b)를 나타낸 것이다.
도 7은 본 발명의 실험예 7에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트와 펩타이드의 면역 조직 화학적 검사 결과 (도 7a) 및 이의 면적을 이용한 정량결과 (도 7b)를 나타낸 것이다.
도 8은 본 발명의 실험예 8에 따른 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 (분홍색: HA-Exendin 4 컨쥬게이트(70/10) 및 초록색: HA-Exendin 4 컨쥬게이트(30/10))와 펩타이드 (파란색: Exendin 4)의 약리 (PK) 특성 분석 결과를 비교하여 나타낸 것이다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 보다 상세히 설명한다. 다만, 이는 발명의 이해를 돕기 위한 것일뿐, 이에 의해 본 발명의 권리 범위가 제한되는 것은 아니다.
실시예 1. 화학식 2의 화합물( HA - VS )과 HA - Exendin 4 컨쥬게이트의 제조
[화학식 2]
Figure 112010044236295-pat00020
상기 화학식 2에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
히알루론산(HA)(MW=100kDa) 200mg을 증류수 20ml에 용해시킨 후, EDC와 HOBt을 각각 HA의 카르복실기에 대해 4배의 몰비로 첨가해 30분 간 활성화 시켰다. 이 후, 시스타민 디하이드로클로라이드(Cystamine dihydrochloride)를 HA의 카르복실기에 대해 20배의 몰비로 첨가하고 용액의 pH를 4.8로 맞춘 후 하룻밤 동안 반응시켰다. 반응이 끝난 용액은 에탄올 침전법(ethanol precipitation)을 통해 불순물을 거르고 남은 석출물을 증류수 20ml에 녹여 TCEP을 HA의 카르복실기에 대해 4배의 몰비로 첨가하고 용액의 pH를 6으로 맞춘 후 4시간 동안 반응시켰다. 반응이 끝난 용액은 에탄올 침전법을 통해 불순물을 거르고 남은 석출물을 증류수 20ml에 녹여 3일간 동결건조 시켜, HA-SH을 얻었다. 얻어진 HA-SH 50mg을 pH 8.5의 인산염 완충용액(phosphate buffer solution) 10ml에 용해시킨 후, TCEP을 HA의 카르복실기에 대해 4배의 몰비로 첨가하고, DVS를 HA-SH의 -SH에 대해 20배의 몰비로 첨가하였다. 다시 pH를 8.5로 맞춘 후 상온에서 12시간 동안 반응시켰다. 과량의 증류수에 대해 투석시킨 후 3일간 동결건조 시켜, HA-VS을 얻었다. 얻어진 HA-VS는 1H-NMR (DPX300, Bruker, Germany)으로 분석하였다.
N-말단에 티올기를 갖는 Exendin 4 펩타이드(Exendin 4-Cys)를 준비하고, Exendin 4-Cys 펩타이드 5mg과 상기 HA-VS 14mg을 각각 증류수에 용해시켰다. Exendin 4-Cys 펩타이드 용액에 10배의 몰비로 TCEP를 첨가해 30분간 상온에서 반응시켰다. 이 후, HA-VS 용액 3ml와 상기 Exendin 4-Cys 펩타이드 용액 1ml를 혼합하고 1N NaOH를 이용해 pH를 9로 맞추어 주었다. 37℃에서 12시간 동안 반응시킨 후 반응하지 않은 아크릴로일(acryloyl)기를 억제(blocking)하기 위해 HA-VS의 비닐기에 대해 2배의 몰비로 시스테인(cysteine)을 첨가하였다. 다시 pH를 9로 맞춘 후 37℃에서 12시간 동안 반응시켰다. 1N HCl을 이용해 pH를 7.0으로 맞추어 반응을 종결시킨 후, GPC를 통해 HA-Exendin 4 컨쥬게이트를 정제하였다.
실시예 2. 화학식 2의 화합물( HA - VS )과 HA - Exendin 4 컨쥬게이트의 제조
Dowex 50WX-8-400 이온교환수지(ion-exchange resin) 12.5 g을 250 mL의 증류수로 3회 세척한 후, 상기 Dowex 수지 에 24.5 mL의 테트라-n-부틸 암모니움 하이드록사이드(tetra-n-butyl ammonium hydroxide, TBA-OH) 를 넣어 30분간 반응 후, 필터를 통해 여과하였다. 히알루론산(HA)(MW=100kDa) 1 g을 100 mL의 물에 녹인 후, DOWEX-TBA 수지 (10g)을 첨가해 3시간 동안 반응시켰다. 상층액을 0.45 μm 필터로 걸러 3일간 동결건조 시켜, HA-TBA를 얻었다.
시스테아민 하이드로클로라이드(0.2mmol)를 디메틸 설폭사이드(dimethyl sulfoxide, DMSO) 2ml에 녹인 후, DVS(1mmol)을 첨가하고 4시간 동안 반응시켜 비닐술폰-시스테아민 결합체(VSC)를 합성하였다. 상기 HA-TBA (0.1mmol)을 DMSO 8ml에 녹이고 벤조트리아졸-1-일-옥시-트리스(디메틸아미노)포스포니움 헥사플로로포스페이트 (Benzotriazole-1-yl-oxy-tris(dimethylamino) phosphonium hexafluorophosphate, BOP)를 HA의 카르복실기에 대해 2.5배의 몰비로, N,N-디이소프로필 에틸아민(N,N-diisopropyl ethylamine, DIPEA)을 HA의 카르복실기에 대해 1/1의 몰비로 첨가해 30분간 활성화 시켰다. 이 후, HA-TBA 용액 8ml와 상기 VSC 용액 2ml를 혼합하여 24시간 동안 반응시켰다. 이후 과량의 100 mM NaCl 수용액, 증류수에 대해 투석시킨 후 3일간 동결건조시켜, 상기 화학식 2의 화합물(HA-VS)을 얻었다. 얻어진 HA-VS는 1H-NMR (DPX500, Bruker, Germany)으로 분석하였다.
N-말단에 티올기를 갖는 Exendin 4 펩타이드(Exendin 4-Cys)를 준비하고, 상기 Exendin 4-Cys 펩타이드 5mg과, 피드(Feed) 내에서 HA 한 분자 당 반응시킨 펩타이드의 분자수가 7, 11, 15, 21, 29가 되도록 상기 HA-VS를 각각 증류수에 용해시켰다. Exendin 4-Cys 펩타이드 용액에 10배의 몰비로 TCEP를 첨가해 30분간 상온에서 반응시켰다. 이 후, HA-VS 용액 3ml와 상기 Exendin 4-Cys 펩타이드 용액 1ml를 혼합하고 1N NaOH를 이용해 pH를 9로 맞추어 주었다. 피드(Feed) 내에서 HA 한 분자 당 반응시킨 펩타이드의 분자수는 7, 11, 15, 21, 29였다. 37℃에서 12시간 동안 반응시킨 후 반응하지 않은 아크릴로일(acryloyl)기를 억제(blocking)하기 위해 HA-VS의 비닐기에 대해 2배의 몰비로 시스테인(cysteine)을 첨가하였다. 다시 pH를 9로 맞춘 후 37℃에서 12시간 동안 반응시켰다. 1N HCl을 이용해 pH를 7.0으로 맞추어 반응을 종결시킨 후, GPC(겔 침투 크로마토그래피, gel permeation chromatography)를 통해 HA-Exendin 4 컨쥬게이트를 정제하였다.
실시예 3. 화학식 3의 화합물( HA - DVS )과 HA - Exendin 4 컨쥬게이트의 제조
[화학식 3]
Figure 112010044236295-pat00021
상기 화학식 3에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
히알루론산(HA) (MW=12kDa) 200mg을 pH10의 탄산나트륨 완충용액(sodium carbonate buffer solution) 40ml에 용해시킨 후, DVS를 HA의 단위 unit에 대해 20배의 몰비로 첨가해 6시간 동안 반응시켰다. 과량의 증류수에 대해 투석시킨 후 3일간 동결건조 시켜, 상기 화학식 3의 화합물(HA-DVS)을 얻었다. 얻어진 HA-DVS는 1H-NMR (DPX300, Bruker, Germany)으로 분석하였다.
말단 티올기를 갖는 Exendin 4 펩타이드(Exendin 4-Cys)를 준비하고, Exendin 4-Cys 펩타이드 5mg과 상기 HA-DVS 25mg을 각각 증류수에 용해시켰다. Exendin 4-Cys 펩타이드 용액에 10배의 몰비로 TCEP를 첨가해 30분간 상온에서 반응시켰다. 이 후, HA-DVS 용액 4ml와 상기 Exendin 4-Cys 펩타이드 용액 1ml를 혼합하고 1N NaOH를 이용해 pH를 9로 맞추어 주었다. 37℃에서 12시간 동안 반응시킨 후 반응하지 않은 아크릴로일(acryloyl)기를 억제(blocking)하기 위해 HA-DVS의 비닐기에 대해 2배의 몰비로 시스테인(cysteine)을 첨가하였다. 다시 pH를 9로 맞춘 후 37℃에서 12시간 동안 반응시켰다. 1N HCl을 이용해 pH를 7.0으로 맞추어 반응을 종결시킨 후, GPC를 통해 HA-Exendin 4 컨쥬게이트를 정제하였다.
실시예 4. 화학식 3의 화합물( HA - DVS )과 HA - CWRYMVm 컨쥬게이트의 제조
히알루론산(HA) (MW=100kDa) 200mg을 pH10의 탄산나트륨 완충용액(sodium carbonate buffer solution) 40ml에 용해시킨 후, DVS를 HA의 단위 unit에 대해 20배의 몰비로 첨가해 6시간 동안 반응시켰다. 과량의 증류수에 대해 투석시킨 후 3일간 동결건조 시켜, 상기 화학식 3의 화합물(HA-DVS)을 얻었다. 얻어진 HA-DVS는 1H-NMR (DPX300, Bruker, Germany)으로 분석하였다.
말단 티올기를 갖는 FPRL 1 수용체에 대한 작용제 펩타이드 (CWRYMVm, 서열번호 1)를 준비하고, CWRYMVm 펩타이드 5mg과 상기 HA-DVS 14mg을 각각 증류수에 용해시켰다. CWRYMVm 펩타이드 용액에 10배의 몰비로 TCEP를 첨가해 30분간 상온에서 반응시켰다. 이 후, HA-DVS 용액 6ml와 상기 CWRYMVm 펩타이드 용액 1ml를 혼합하고 1N NaOH를 이용해 pH를 9로 맞추어 주었다. 37℃에서 12시간 동안 반응시킨 후 반응하지 않은 아크릴로일(acryloyl)기를 억제(blocking)하기 위해 HA-DVS의 비닐기에 대해 2배의 몰비로 시스테인(cysteine)을 첨가하였다. 다시 pH를 9로 맞춘 후 37℃에서 12시간 동안 반응시켰다. 1N HCl을 이용해 pH를 7.0으로 맞추어 반응을 종결시킨 후, GPC를 통해 HA-CWRYMVm 컨쥬게이트를 정제하였다.
실험예 1. 히알루론산- 펩타이드 컨쥬게이트의 NMR 분석
1-1) 분석 방법
상술한 실시예들에 따라 얻어진 히알루론산 유도체 및 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트를 1H-NMR로 분석하였다. 분석 결과 중, 실시예 2에 따른 HA-VS 유도체(도 1a), 실시예 3에 따른 HA-DVS 유도체(도 1c) 및 실시예 2에 따른 HA-Exendin 4 컨쥬게이트(도 1d)의 1H-NMR 스펙트럼을 도 1에 도시하였다.
1-2) 분석 결과
도 1a에서 볼 수 있는 바와 같이, 실시예 2에 따른 HA-VS의 1H-NMR 스펙트럼(DPX500, Bruker, Germany)에서는 히알루론산의 피크 외에도, δ = 6.4 ~ 6.9 ppm에 VS의 피크가 나타났다(도 1a의 α, β 및 γ). 정량분석을 위해 δ = 1.85 ~ 1.95 ppm의 히알루론산의 아세트아미도 관능기의 메틸 공명(methyl resonance of acetamido moiety of HA)을 내부표준(internal standard)로 정했다(도 1a의 δ). 실시예 2에 따른 HA-VS 유도체 내의 비닐기 치환율은 δ = 1.85 ~ 1.95 ppm의 피크 면적과 δ = 6.4 ~ 6.9 ppm의 피크 면적을 비교해서 구했다. 도 1b에서 볼 수 있는 바와 같이, HA unit에 대한 VSC(vinyl sulfone cysteamine)의 몰비를 조절하여 비닐기 치환율을 조절할 수 있었다.
도 1c에서 볼 수 있는 바와 같이, 실시예 3에 따른 HA-DVS의 1H-NMR 스펙트럼(DPX300, Bruker, Germany)에서는 히알루론산의 피크 외에도, δ = 6.4 ~ 6.9 ppm에 DVS의 피크가 나타났다(도 1c의 α, β 및 γ). 정량분석을 위해 δ = 1.85 ~ 1.95 ppm의 히알루론산의 아세토아미도 관능기의 메틸 공명(methyl resonance of acetamido moiety of HA)을 내부표준(internal standard)로 정했다(도 1c의 δ). 실시예 3에 따른 HA-DVS 유도체 내의 비닐기 치환율은 δ = 1.85 ~ 1.95 ppm의 피크 면적과 δ = 6.4 ~ 6.9 ppm의 피크 면적을 비교해서 구했다.
도 1d에서 볼 수 있는 바와 같이, 실시예 2에 따른 HA-Exendin 4 컨쥬게이트의 1H-NMR 스펙트럼(DPX500, Bruker, Germany)에서는 HA-VS의 피크 외에도, δ = 7.2 ~ 7.5 ppm과 8.7 ppm에 Exendin 4의 피크가 나타났다(도 1d의 ε). 이들 피크는 Exendin 4의 페닐알라닌(phenylalanine)과 트립토판(tryptophan)의 방향족 고리(aromatic ring)에 의한 것이다. 반응하지 않고 남아 있는 아크릴로일(acryloyl)기를 억제하기 위해 시스테인으로 억제하였는데, 억제 이전에는 δ = 6.4 ~ 6.9 ppm에 아크릴로일기의 세 개의 수소에 해당하는 피크가 나타났으나, 억제 이후에는 δ = 6.4 ~ 6.9 ppm에 피크가 나타나지 않았다. 이 때, δ = 7.2 ~ 7.5 ppm과 8.7 ppm의 Exendin 4 피크는 변함이 없었다. 이러한 1H-NMR 분석 결과를 통해 HA-Exendin 4 컨쥬게이트가 합성된 것을 확인할 수 있었다.
실험예 2. 히알루론산- 펩타이드 컨쥬게이트의 정량 분석
2-1) 분석 방법
상기 실시예 2에 따른 HA-Exendin 4 컨쥬게이트 내의 Exendin 4 함량은 GPC에서 피크 아래의 면적을 측정해 구하였다. 먼저 증류수에 1 mg/mL의 농도로 Exendin 4 원액 (Exendin 4 stock solution)을 준비한 뒤, 희석시켜 Exendin 4 표준용액(Exendin 4 standard solutions)을 준비하였다. 상기의 GPC 분석 조건에서 Exendin 4 표준용액을 분석하여 Exendin 4 농도에 따른 GPC 피크 아래 면적의 표준곡선(stnadard curve)를 구하였다. 상기 실시예 2에 따른 HA-Exendin 4 컨쥬게이트를 같은 조건에서 분석해 얻은 GPC 피크 아래 면적을 표준곡선에 대입해 펩타이드 함량을 구했다. 도 2는 GPC 분석으로 정량한 실시예 2에 따른 HA-Exendin 4 컨쥬게이트 내의 Exendin 4 함량 분석 결과 및 생접합 효율을 분석한 결과를 도시한 것이다.
2-2) 분석 결과
도 2에서 볼 수 있는 바와 같이, 실시예 2에 따른 HA - Exendin 4 컨쥬게이트 내의 펩타이드 함량은 feed 내에서 HA 한 분자 당 반응시킨 펩타이드의 분자수에 따라 증가하는 것을 알 수 있었다. Feed 내에서 HA 한 분자 당 반응시킨 펩타이드의 분자수를 7, 11, 15, 21, 29로 변화시켰을 때, HA 한 분자 당 결합한 펩타이드의 평균 분자수는 7에서 27까지 조절 가능했다.
생접합 효율(Bioconjugation efficiency) (%)은 반응용액에 첨가한 펩타이드에 대해 반응한 펩타이드의 몰 비로 표시했다. Feed 내에서 HA 한 분자 당 반응시킨 펩타이드의 분자수에 상관없이 생접합 효율은 90 % 이상으로 매우 높게 나타났다.
실험예 3. 히알루론산- 펩타이드 컨쥬게이트의 분석
3-1) 분석 방법
실시예 2에 따라 준비된 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트의 GPC 분석을 통해 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트의 형성을 확인하였다. 고성능 액상 크로마토그래피(High performance liquid chromatography, HPLC)를 사용하여 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트의 GPC 분석하였다. 분석 조건은 하기와 같다.
3-2) GPC 분석 조건
<HA-Exendin 4 컨쥬게이트의 GPC 분석조건>
펌프: Waters 1525 binary HPLC pump
흡광도 측정기: Waters 2487 dual λ absorbance detector
샘플러: Waters 717 plus auto-sampler
컬럼: Superdex 200 10/300 GL column
이동상: PBS(인산완충식염수, phosphate buffered saline) pH 7.4, flow rate는 0.5 mL/min.
측정 파장: 210 nm와 280 nm로 이중 측정(dual detection)
<HA-CWRYMVm 컨쥬게이트의 GPC 분석조건>
펌프: Waters 1525 binary HPLC pump
흡광도 측정기: Waters 2487 dual λ absorbance detector
샘플러: Waters 717 plus auto-sampler
컬럼: Superdex Peptide 10/300 GL column
이동상: 30% acetonitrile / 0.1% trifluoroacetic acid, flow rate는 0.5 mL/min.
측정 파장: 210 nm와 280 nm로 이중 측정(dual detection)
3-3) 분석 결과
도 3a에서 볼 수 있는 바와 같이, 280nm의 파장에서 측정하였을 때, 고분자량의 히알루론산의 체류 시간(retention time)인 14분 대에서 피크가 나타나 히알루론산(HA)에 펩타이드가 컨쥬게이션 되었음을 확인하였다. 또한 도 3b에서 볼 수 있는 바와 같이, 280nm의 파장에서 측정하였을 때, 고분자량의 히알루론산의 체류 시간(retention time)인 15분 대에서 피크가 나타나 히알루론산(HA)에 펩타이드가 컨쥬게이션 되었음을 확인하였다.
실험예 4. 히알루론산- 펩타이드 컨쥬게이트의 혈청 안정성( serum stability ) 분석( In vitro )
4-1) 분석 방법
다음의 세 가지 샘플을 사용하였다.
- Exendin 4
- HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10)
: 상기 실시예 2에 따라 합성하였으며, 비닐기 치환율이 30% 이며 HA 한 체인(chain) 당 10개의 Exendin 4 분자가 결합.
- HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)
: 상기 실시예 2에 따라 합성하였으며, 비닐기 치환율이 70% 이며 HA 한 체인(chain) 당 10개의 Exendin 4 분자가 결합.
위의 세 가지 샘플을 Exendin 4 농도가 1 mg/mL로 동일하도록 각각 인간 혈청(human serum)에 용해시켜 37℃에서 96시간 동안 배양했다. 정해진 시간이 되었을 때 일부를 샘플링해 인간 혈청의 영향을 막기 위해 PBS에 1000배로 희석한 후 냉동시켰다. 각 샘플의 생물학적 활성도는 Exendin 4 EIA kit를 사용해 측정하였다.
4-2) 분석결과
도 4에서 볼 수 있는 바와 같이, Exendin 4는 약 4.1시간의 반감기를 가지며 빠르게 분해되었다. 하지만 두 종류의 HA-Exendin 4 컨쥬게이트는 96시간 이상으로 반감기가 연장되어, Exendin 4에 비해 약 20배 길어진 반감기를 가졌다. HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)은 HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10)에 비해 약간 더 높은 혈청 안정성(serum stability)을 보였는데 이는 VS 치환율이 더 높기 때문이다.
실험예 5. 히알루론산- 펩타이드 컨쥬게이트의 포도당 내성 검사( In vivo )
5-1) 분석 방법
본 실험은 당뇨병이 발생한 실험용 쥐 db/db 마우스 (n=5)를 이용해 진행되었다. 각 그룹의 평균 몸무게와 혈당치는 동일했다. db/db 마우스를 18시간 동안 절식시킨 후, 실험예 4의 Exendin 4, HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), HA- Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)를 각각 10nmol/kg으로 복강투여 하였다. 한 시간 후, 400 mg/kg의 포도당을 복강투여 하였다. 꼬리 정맥으로부터 매 15분마다 혈액을 채취해 혈당측정기로 혈당을 측정하였다.
5-2) 분석 결과
도 5a에서 볼 수 있는 바와 같이, Exendin 4, HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)의 포도당 내성은 PBS에 비해 높았다. PBS를 처리한 대조군의 혈당은 빠르게 높은 혈당치까지 상승하고 천천히 내려가 포도당을 투여한지 4시간 만에 기준(baseline) 혈당치로 돌아왔다. 반면에 Exendin 4, HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)를 처리한 실험군에서는 낮은 최고 혈당치를 보였고, 빠르게 내려가 90분 만에 기준(baseline) 혈당치로 돌아왔다. 도 5a의 그래프의 곡선하면적(area under the curve, AUC)을 도 5b로 나타냈는데, PBS를 처리한 대조군에 비해 Exendin 4, HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)를 처리한 실험군의 AUC가 통계학적으로 유의한 수준으로 낮았다.
실험예 6. 히알루론산- 펩타이드 컨쥬게이트의 혈당 강하 효과 검사( In vivo )
6-1) 분석 방법
본 실험은 db/db 마우스(n=5)를 이용해 진행되었다. 각 그룹의 평균 몸무게와 혈당치, 그리고 먹이 제공량은 동일했다. 실험예 4의 Exendin 4, HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)를 각각 50nmol/kg으로 피하투여 하였다. 꼬리 정맥으로부터 혈액을 채취해 혈당측정기로 혈당을 측정하였다. 다음의 저혈당도(Hypoglycemic degree) (HGD%0-time) 계산식을 사용하여 PBS와 다른 샘플의 결과를 비교하였다.
[수학식 1]
HGD%0-time = [(AUCPBS, 0-time - AUCtest, 0-time) / AUCPBS, 0-time] × 100
6-2) 분석 결과
도 6a에서 볼 수 있는 바와 같이, 각 샘플을 투여하자 모든 그룹의 혈당이 빠르게 정상 혈당치로 떨어졌지만, 그 지속시간은 그룹별로 달랐다. Exendin 4는 혈당이 24시간 만에 빠르게 고혈당치로 돌아왔다. 반면에 HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)의 혈당 강하 효과는 3일 동안 지속되었다. 도 6a의 AUC를 이용해 24시간, 72시간까지의 혈당 강하 효과를 구했고, 이를 도 6b에 나타내었다. 24시간 일 때 HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)의 혈당 강하 효과는 Exendin 4의 약 2배로 높았고, 72시간일 때 HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)의 혈당 강하 효과는 Exendin 4의 약 3배로 높았다.
실험예 7. 히알루론산- 펩타이드 컨쥬게이트의 면역 조직 화학적 검사( In vivo )
7-1) 분석 방법
Db/db 마우스에 상기의 각 샘플을 피하투여 하고 30분 후 췌장 섬(islet)을 인슐린 면역조직화학 염색(insulin immunostain)하였다. 각 조직 샘플은 PBS로 세척한 후 10 vol% 중성 완충 포르말린(neutral buffered formalin)에 보관하였다. 조직 염색(staining)은 일반적인 방법으로 진행했는데, 파라핀 왁스(paraffin wax)에 넣고 2μm 두께로 잘라서 폴리리신(polylysine)이 코팅된 슬라이드에 부착하였다. 이 섹션 샘플은 자일렌(xylene), 단계적인 알콜, 공기 건조로 투명화하고 탈수시켰다. 내재성 과산화효소의 억제(Endogenous peroxidase blocking) 과정은 상온에서 10분 동안 전처리를 한 후 실시되었다. 각 섹션을 일차 항체(primary antibody로서 1/100의 비율로 희석된 guinea pig anti-swine insulin antibody)와 15분 동안 반응시킨 후, 덱스트란(dextran)(Envision kit)과 상온에서 30분 간 배양하였다. 각 과정 사이에 0.5 wt%의 트윈 20(Tween 20)을 포함한 트리스-버퍼(tris-buffer)(pH 7.6)로 세척하는 과정을 수차례 거쳤다. 최종적으로 각 섹션을 3,3'-디아미노-벤지딘(3,3'-diamino-benzidine, DAB)로 염색하고, 헤마톡실린(real hematoxylin)과 0.3% 암모니아수(ammonia water)로 대비 염색(conter stain)하였다. 인슐린 양성(Insulin positive) 세포(cell) / 섬(islet) (%)는 섬(islet) 내의 인슐린-양성 세포(insulin-positive cell)의 면적을 섬(islet) 면적으로 나누어 구했다. 이미지 분석은 Image J version 1.33 (NIH image, Maryland, MD)를 이용했다. 정량분석을 위해 n=3로 진행하였다.
7-2) 분석 결과
도 7a에서 볼 수 있는 바와 같이, HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)를 투여한 그룹의 인슐린 양성 신호가 PBS나 Exendin 4를 투여한 그룹보다 강했다. 더 진한 색깔은 인슐린 분비가 더 많이 되었음을 의미한다. 도 7b에는 정량분석을 통해 구한 인슐린 양성(insulin positive) 세포(cell) / 섬(islet)(%) 수치를 나타냈다. HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)의 인슐린 분비 촉진 효과가 가장 높았고, 다음으로 HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (30/10), Exendin 4 순으로 높았다.
실험예 8. 히알루론산- 펩타이드 컨쥬게이트의 약리( PK ) 특성 분석 ( In vivo )
8-1) 분석 방법
SD 래트(rat)의 꼬리 정맥을 통해 PBS, Exendin 4, HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)를 각각 투여한 후, 정해진 시간이 되었을 때 꼬리 정맥에서 혈액을 채취해 각 샘플의 혈중농도를 Exendin 4 EIA kit를 사용해 측정하였다.
8-2) 분석 결과
도 8에서 볼 수 있는 바와 같이, Exendin 4의 혈중농도는 4시간 이전에 기준(baseline)으로 떨어졌으나, HA-Exendin 4 컨쥬게이트 (70/10)의 혈중농도는 4일째에도 기준(baseline)으로 떨어지지 않았다. 따라서 약효 시간을 현저히 증대시킬 수 있음을 확인하였다.
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  8. 비닐술폰기를 갖는 하기 화학식 2 또는 화학식 3의 히알루론산 유도체를 제조하고,
    상기 제조된 히알루론산 유도체의 비닐술폰기에 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드를 수용액에서 반응시키는 단계를 포함하며,
    상기 화학식 2의 히알루론산 유도체는 히알루론산의 카르복실기에 시스테아민 화합물을 반응시킨 후 디비닐술폰을 추가로 반응시켜 제조되는 것인, 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법:
    [화학식 2]
    Figure 112012060846124-pat00027

    [화학식 3]
    Figure 112012060846124-pat00028

    상기 화학식 2 및 화학식 3에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
  9. 삭제
  10. 제8항에 있어서,
    상기 화학식 2를 갖는 화합물은 히알루론산의 카르복실기에 시스테아민 화합물을 반응시키고 트리스(2-카르복시에틸)포스파인(tris(2-carboxyethyl)phosphine, TCEP)를 반응시켜, 티올기를 갖는 하기 화학식 6의 화합물을 제조하고, 상기 화학식 6의 화합물을 디비닐술폰과 수용액에서 반응시켜 제조되는 것인 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법:
    [화학식 6]
    Figure 112012060846124-pat00029

    상기 화학식 6에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
  11. 제8항에 있어서,
    상기 시스테아민 화합물은 시스테아민, 시스테아민 염, 시스테아민의 전구체, 시스테아민의 유사체, 시스테아민의 유도체, 시스테아민의 접합체 및 시스테아민의 대사 산물로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상인, 제조방법.
  12. 제11항에 있어서,
    상기 시스테아민 화합물은 시스테아민, 시스테아민 하이드로클로라이드, 시스타민 및 시스타민 디하이드로클로라이드로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상인, 제조방법.
  13. 제8항에 있어서,
    상기 화학식 2를 갖는 화합물은 하기 화학식 4를 갖는 화합물의 카르복실기와 하기 화학식 5를 갖는 화합물의 아민기를 유기용매에서 반응시켜 제조된 것인 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법:
    [화학식 4]
    Figure 112010044236295-pat00030

    상기 화학식 4에서, n은 50 내지 10,000의 정수이다.
    [화학식 5]
    Figure 112010044236295-pat00031

  14. 제13항에 있어서,
    상기 유기 용매는 디메틸설폭사이드(dimethyl sulfoxide, DMSO), 디메틸포름아미드(dimethylformamide, DMF), 디메틸아세트아미드(dimethylacetamide), N-메틸-2-피롤리돈(N-methyl-2-pyrrolidone, NMP), 및 헥사메틸포스포아미드(hexamethylphosphoramide, HMPA)로 이루어진 군에서 선택되는 것인 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법.
  15. 제8항에 있어서,
    상기 화학식 3을 갖는 화합물은 히알루론산을 디비닐술폰과 수용액에서 반응시켜 제조된 것인 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법.
  16. 제8항에 있어서,
    상기 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드는 펩타이드 말단에 시스테인을 도입한 것인 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법.
  17. 제8항에 있어서,
    상기 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드는 엑센딘 4(Exendin 4)의 N-말단에 시스테인을 도입하여 제조된 것인 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법.
  18. 제8항에 있어서,
    상기 말단 티올기를 갖는 수용성 펩타이드를 상기 히알루론산 유도체 한 분자당 3 내지 60분자로 결합시키는 히알루론산-펩타이드 컨쥬게이트 제조방법.
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