JPWO2017135348A1 - 標的dnaの測定方法 - Google Patents
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Abstract
(1)溶液中においてゲノムDNAを制限酵素で切断して、(a)標的DNAからなる完全切断DNA断片、(b)標的DNAを含む不完全切断DNA断片、及び(c)標的DNAを含まないDNA断片を含有する混合液を得ること;
(2)(b)のDNA断片を前記混合液から除去して、(a)のDNA断片、及び(c)のDNA断片を含有する溶液を得ること;並びに
(3)前記(2)で得られた溶液において標的DNAを解析すること。
Description
例えば、制限酵素によるゲノムDNA切断反応後に標的DNA中に存在する修飾核酸塩基を検出する場合、標的DNA中に存在する修飾核酸塩基のみならず、ゲノムDNAにおいて標的DNAの5’又は3’末端側にある1以上の未切断部位を介して標的DNAに連結する非標的DNA中に存在する修飾核酸塩基もまた検出されるおそれがある。
また、当該非標的DNAの少なくとも一部の領域が標的DNAと対合し得る場合、単一鎖内において非標的DNAが標的DNAと効率良く相補結合し得ることから、核酸プローブを用いた標的DNAの解析に支障をきたすおそれがある。
〔1〕以下を含む、標的DNAの測定方法:
(1)溶液中においてゲノムDNAを制限酵素で切断して、(a)標的DNAからなる完全切断DNA断片、(b)標的DNAを含む不完全切断DNA断片、及び(c)標的DNAを含まないDNA断片を含有する混合液を得ること;
(2)(b)標的DNAを含む不完全切断DNA断片を前記混合液から除去して、(a)標的DNAからなる完全切断DNA断片、及び(c)標的DNAを含まないDNA断片を含有する溶液を得ること;並びに
(3)前記(2)で得られた溶液において標的DNAを解析すること。
〔2〕前記除去が非標的DNAに特異的な核酸プローブを用いて行われる、〔1〕の方法。
〔3〕非標的DNAに特異的な核酸プローブが以下の核酸プローブである、〔2〕の方法:
(1)5’隣接DNAに特異的な核酸プローブ;
(2)3’隣接DNAに特異的な核酸プローブ;又は
(3)5’隣接DNAに特異的な核酸プローブ、及び3’隣接DNAに特異的な核酸プローブの組み合わせ。
〔4〕前記解析が標的DNAに特異的な核酸プローブを用いて行われる、〔1〕〜〔3〕のいずれかの方法。
〔5〕標的DNA中の修飾核酸塩基が解析される、〔1〕〜〔4〕のいずれかの方法。
〔6〕修飾核酸塩基がメチルシトシンである、〔5〕の方法。
〔7〕前記解析が、イムノアッセイ、質量分析、電気化学分析、高速液体クロマトグラフィー分析、又はナノポア分析により行われる、〔1〕〜〔6〕のいずれかの方法。
(1)溶液中においてゲノムDNAを制限酵素で切断して、(a)標的DNAからなる完全切断DNA断片、(b)標的DNAを含む不完全切断DNA断片、及び(c)標的DNAを含まないDNA断片を含有する混合液を得ること;
(2)(b)標的DNAを含む不完全切断DNA断片を前記混合液から除去して、(a)標的DNAからなる完全切断DNA断片、及び(c)標的DNAを含まないDNA断片を含有する溶液を得ること;並びに
(3)前記(2)で得られた溶液において標的DNAを解析すること。
本発明で用いられるゲノムDNAは、任意の生物学的サンプルから得られるものである。このような生物学的サンプルが由来する生物としては、例えば、哺乳動物(例、ヒト、サル、マウス、ラット、ウサギ、ウシ、ブタ、ウマ、ヤギ、ヒツジ)、鳥類(例、ニワトリ)等の動物、昆虫、微生物、植物、菌類、魚類、ウイルスが挙げられる。生物学的サンプルはまた、血液自体又は血液に由来するサンプルである血液関連サンプル(例、全血、血清、血漿)、唾液、尿、乳汁、組織又は細胞抽出液、あるいはこれらの混合物であってもよい。生物学的サンプルはさらに、疾患(例、癌、白血病)に罹患している哺乳動物、又は疾患に罹患している可能性がある哺乳動物に由来するものであってもよい。ゲノムDNAは、このような生物学的サンプルから、任意の方法(例、ゲノムDNA抽出法)により適宜入手することができる。
(a)標的DNAからなる完全切断DNA断片;
(b)標的DNAを含む不完全切断DNA断片;及び
(c)標的DNAを含まない種々のDNA断片。
標的DNAを含む不完全切断DNA断片の除去は、不完全切断DNA断片中の非標的DNAを利用して行うことができる。例えば、このような除去は、非標的DNAに特異的な核酸プローブを用いた不完全切断DNA断片の除去、又は標的DNA及び非標的DNAの総和の分子量に基づく分画による不完全切断DNA断片の除去により行うことができる。
異種核酸プローブとは、標的DNAの主鎖構造(糖部分及びリン酸部分から構成される構造)と異なる主鎖構造を、主鎖構造の一部又は全体として有する核酸プローブを意味する。異種核酸プローブとしては、例えば、RNAプローブ(例、2’位にヒドロキシル基を有する天然リボヌクレオチドから構成されるノーマルRNAプローブ、及び2’位のヒドロキシル基がメチル基等のアルキル基で修飾されているリボヌクレオチドから構成される修飾RNAプローブ)、ペプチド核酸(PNA)プローブ、ロック型核酸(LNA)プローブ又は架橋型核酸(BNA)プローブ、ホスホロチオエート(S化)核酸プローブ、並びにこのような2以上の核酸プローブが連結したキメラ型核酸プローブ、このような1以上の核酸プローブとDNAプローブが連結したキメラ型核酸プローブが挙げられる。
低コストの観点から、非標的DNAに特異的な核酸プローブは、DNAプローブであってもよい。
(i)5’隣接DNAに特異的な核酸プローブ;
(ii)3’隣接DNAに特異的な核酸プローブ;
(iii)5’隣接DNAに特異的な核酸プローブ、及び3’隣接DNAに特異的な核酸プローブの組み合わせ。
5’隣接DNAとは、ゲノムDNAにおいて標的DNAの5’末端側にある制限酵素認識部位(未切断部位)を介して標的DNAに隣接する非標的DNA(制限酵素切断単位)を意味する(例、図1を参照)。したがって、5’隣接DNAに特異的な核酸プローブとは、このような5’隣接DNAの一部又は全部に相補的な核酸プローブを意味する。
3’隣接DNAとは、ゲノムDNAにおいて標的DNAの3’末端側にある制限酵素認識部位(未切断部位)を介して標的DNAに隣接する非標的DNA(制限酵素切断単位)を意味する(例、図1を参照)。したがって、3’隣接DNAに特異的な核酸プローブとは、このような3’隣接DNAの一部又は全部に相補的な核酸プローブを意味する。
このような5’隣接DNA及び/又は3’隣接DNAを用いることで、標的DNAを含む不完全切断DNA断片を効率良く除去することができる。
5’隣接DNA及び3’隣接DNAは、DNAプローブ又は異種核酸プローブであるが、低コストの観点から、DNAプローブであってもよい。
(2−1)非標的DNAに特異的な核酸プローブを混合液に合わせること;
(2−2)混合液をインキュベートして、上記核酸プローブ及び上記(b)のDNA断片を含むハイブリダイゼーション複合体を得ること;
(2−3)混合液から又は混合液中でハイブリダイゼーション複合体を分離して、上記(a)及び(c)のDNA断片を含む溶液を得ること。
標的DNAの解析は、任意の方法により行うことができる(例、国際公開第2015/025862号;国際公開第2015/025863号;国際公開第2015/025864号;国際公開第2015/108177号;DNA Research 13,37−42(2006);Analytical Chemistry 77(2),504−510(2005);Analytical Chemistry 83,7595−7599(2011);Nucleic Acids Research 34(8),e61(2006);Scientific Reports 501(2),srep00501(2012))。例えば、標的DNAに特異的な核酸プローブを用いて、標的核酸を捕捉した後に、標的DNAが解析されてもよい。
(1−1)ゲノムDNAの切断
1.8μgのヒトゲノムDNA(Clontech社製)と3unitsの制限酵素XspI(タカラバイオ社製)を、反応Buffer(20mM Tris−HCl(pH=8.5)、10mM MgCl2、1mM DTT、100mM KCl)20μL中に溶解させ、37℃で0分、又は20分、40分、60分反応させることで、制限酵素XspIにより切断されたゲノムDNAを得た。
上記で得られた制限酵素切断ゲノムDNAを、制限酵素XspIの切断部位を挟む領域に設計されたPrimerセットを使用したリアルタイムPCR増幅により、制限酵素によって切断された割合を測定した。
Premix PCR試薬(KOD SYBR qPCR Mix:TOYOBO社製):12.5μL
Forward Primer(10μM):0.5μL
Reverse Primer(10μM):0.5μL
50x ROX reference dye:0.05μL
25倍希釈した制限酵素切断ゲノムDNA:2μL
Total:25μL
Forward Primer配列は5’−TCT AGA CCC CGC CCC ACG−3’(配列番号1)、Reverse Primer配列は5’−CTG CAG GAC CAC TCG AGG CTG−3’(配列番号2)であり、北海道システムサイエンス社により人工合成されたものを使用した。
(1)98℃、2分
(2)98℃、10秒
(3)68℃、1分
(2−1)ゲノムDNAの切断
1.8μgのヒトゲノムDNA(Clontech社製)と3unitsの制限酵素XspI(タカラバイオ社製)を、反応Buffer(20mM Tris−HCl(pH=8.5)、10mM MgCl2、1mM DTT、100mM KCl)20μL中に溶解させ、37℃で20分反応させることで、制限酵素XspIにより切断されたゲノムDNAを得た。
標的DNAを捕捉するためのプローブ核酸(標的DNAに特異的な核酸プローブ)のヌクレオチド配列は、5’−UGC AGG ACC ACU CGA GGC UGC CAC−3’(配列番号3;核酸の主鎖は2’−O−メチル化RNA、5’末端はビオチン標識)であり、北海道システムサイエンス社により人工合成されたものを使用した。
Premix PCR試薬(KOD SYBR qPCR Mix:TOYOBO社製):12.5μL
Forward Primer(10μM):0.5μL
Reverse Primer(10μM):0.5μL
50x ROX reference dye:0.05μL
磁性粒子に捕捉したDNAサンプル:2μL
Total:25μL
(1)98℃、2分
(2)98℃、10秒
(3)68℃、1分
(3−1)ゲノムDNAの切断
1.8μgのヒトゲノムDNA(Clontech社製)と3unitsの制限酵素XspI(タカラバイオ社製)を、反応Buffer(20mM Tris−HCl(pH=8.5)、10mM MgCl2、1mM DTT、100mM KCl)20μL中に溶解させ、37℃で20分反応させることで、制限酵素XspIにより処理したゲノムDNAを得た。
標的DNAを捕捉するためのプローブ核酸(標的DNAに特異的な核酸プローブ)のヌクレオチド配列は5’−UGC AGG ACC ACU CGA GGC UGC CAC−3’(配列番号3;核酸の主鎖は2’−O−メチル化RNA、5’末端はビオチン標識)であり、北海道システムサイエンス社により人工合成されたものを使用した。制限酵素により未切断の標的DNAを捕捉するためのプローブ核酸(ポリアデニンを有する、非標的DNAに特異的な核酸プローブ)のヌクレオチド配列は5’−GTG GGG CGG GGT CTA GAG AAA AAA AAA AAA AAA AAA AAA AAA AAA AAA−3’(配列番号6)であり、北海道システムサイエンス社により人工合成されたものを使用した。
上記で得られた溶液の上清(標的DNAを含む不完全切断DNA断片が除去)に375μg/mLのストレプトアビジンでコートされた磁性粒子(JSR社製Magnosphere MS300/Streptavidin)を50μL加え、37℃で30分反応させることで、磁性粒子上に核酸のハイブリッドを固定化した。この磁性粒子を、250μLのTBS−Tで2回洗浄し、20μLの蒸留水を加えて懸濁させた後、制限酵素XspIの切断部位を挟む領域に設計されたPrimerセット及び切断部位を挟まない領域に設計されたPrimerセットを使用したリアルタイムPCR増幅により、磁性粒子に捕捉されたDNA量及び制限酵素XspIにより未切断のDNA量を測定した。
Premix PCR試薬(KOD SYBR qPCR Mix:TOYOBO社製):12.5μL
Forward Primer(10μM):0.5μL
Reverse Primer(10μM):0.5μL
50x ROX reference dye:0.05μL
磁性粒子に捕捉したDNAサンプル:2μL
Total:25μL
(1)98℃、2分
(2)98℃、10秒
(3)68℃、1分
(1)ゲノムDNAの切断
溶液中においてゲノムDNAを制限酵素で切断して、以下のDNA断片を含有する混合液を得る(例、図1を参照)。
(a)標的DNAからなる完全切断DNA断片
(b)標的DNAを含む不完全切断DNA断片
(c)標的DNAを含まない種々のDNA断片
(2−1)非標的DNAに特異的な核酸プローブとして5’隣接DNAプローブ及び/又は3’隣接DNAプローブ(磁性粒子に固定)、標的DNAに特異的な核酸プローブとして2’−O−メチル化RNAプローブ(5’末端はビオチン標識)を混合液に添加する。
(2−2)混合液をインキュベートして、ハイブリダイゼーション複合体を形成する。
(2−3)混合液中の磁性粒子を集磁した後、混合液の上清(磁性粒子を含まない)を回収する。本上清を、上記(b)のDNA断片の量が低減された、上記(a)及び(c)のDNA断片を含む溶液として用いる。本溶液中では、上記(a)のDNA断片は、2’−O−メチル化RNAプローブとハイブリダイゼーション複合体を形成している。
(3−1)上記(2)で得られた溶液を、ビオチンと親和性を有するストレプトアビジンが固定されたマルチウェルプレートに移す。そうすると、上記(a)のDNA断片及び2’−O−メチル化RNAプローブを含むハイブリダイゼーション複合体がマルチウェルプレートに固定されるので、標的DNAを固相に捕捉することができる。
(3−2)固相に捕捉された標的DNA中のメチルシトシンを、イムノアッセイ(例、国際公開第2015/025862号;国際公開第2015/025863号;国際公開第2015/025864号;国際公開第2015/108177号;DNA Research 13,37−42(2006))により解析する。
(1)ゲノムDNAの切断
実施例1(1)と同様の方法により行う。
(2)上記(b)のDNA断片の除去
実施例1(2)と同様の方法により行う。
(3)標的DNAの解析
(3−1)実施例1(3−1)と同様の方法により行う。
(3−2)固相に捕捉された標的DNAをエンドヌクレアーゼまたは/およびエキソヌクレアーゼにより分解する。そうすると、上記(a)のDNA断片がモノマー塩基(ヌクレオチド)に分解された溶液を回収することができる。
(3−3)モノマー塩基に分解された標的DNA中に含まれるメチルシトシンを、質量分析(例、Analytical Chemistry 77(2),504−510(2005))、電気化学分析(例、Analytical Chemistry 83,7595−7599(2011))、または高速液体クロマトグラフィー分析(例、Nucleic Acids Research 34(8),e61(2006))により解析する。
(1)ゲノムDNAの切断
実施例1(1)と同様の方法により行う。
(2)上記(b)のDNA断片の除去
実施例1(2)と同様の方法により行う。
(3)標的DNAの解析
(3−1)実施例1(3−1)と同様の方法により行う。
(3−2)固相に捕捉された標的DNAをアルカリ性水溶液(例、50mM NaOH水溶液)による処理、または加熱処理(例、95℃、2分間)により固相上から解離することで、上記(a)のDNA断片を含む溶液を得ることができる。
(3−3)固相上から解離された標的DNA中に含まれるメチルシトシンを、ナノポア分析(例、Scientific Reports 501(2),srep00501(2012))により解析する。
Claims (7)
- 以下を含む、標的DNAの測定方法:
(1)溶液中においてゲノムDNAを制限酵素で切断して、(a)標的DNAからなる完全切断DNA断片、(b)標的DNAを含む不完全切断DNA断片、及び(c)標的DNAを含まないDNA断片を含有する混合液を得ること;
(2)(b)標的DNAを含む不完全切断DNA断片を前記混合液から除去して、(a)標的DNAからなる完全切断DNA断片、及び(c)標的DNAを含まないDNA断片を含有する溶液を得ること;並びに
(3)前記(2)で得られた溶液において標的DNAを解析すること。 - 前記除去が非標的DNAに特異的な核酸プローブを用いて行われる、請求項1記載の方法。
- 非標的DNAに特異的な核酸プローブが以下の核酸プローブである、請求項2記載の方法:
(1)5’隣接DNAに特異的な核酸プローブ;
(2)3’隣接DNAに特異的な核酸プローブ;又は
(3)5’隣接DNAに特異的な核酸プローブ、及び3’隣接DNAに特異的な核酸プローブの組み合わせ。 - 前記解析が標的DNAに特異的な核酸プローブを用いて行われる、請求項1〜3のいずれか一項記載の方法。
- 標的DNA中の修飾核酸塩基が解析される、請求項1〜4のいずれか一項記載の方法。
- 修飾核酸塩基がメチルシトシンである、請求項5記載の方法。
- 前記解析が、イムノアッセイ、質量分析、電気化学分析、高速液体クロマトグラフィー分析、又はナノポア分析により行われる、請求項1〜6のいずれか一項記載の方法。
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