JPS6367865B2 - - Google Patents

Description

【発明の詳細な説明】

本発明は、免疫化学的試薬に関するものであ
る。 近年、医学、生化学、衛生学および疫学等の
種々の分野において、微量物質とくに抗原および
抗体を定量することが極めて重要な課題となつて
いる。 従来、この様な方法としては、抗原または抗体
を感作させたラテツクスを、ガラス板上で抗体ま
たは抗原と反応させ、その凝集状態を肉眼で観察
する方法が広く用いられているが、この方法では
精度良く定量を行うことは困難である。 また、上記ラテツクスを用いて抗原および抗体
を定量する方法として、近年、抗原または抗体を
感作させたラテツクスを抗体または抗原と反応さ
せると、該ラテツクス粒子が凝集する現象を利用
して、ラテツクスの上澄み液の濁度の減少率を光
学的に測定する方法が提案されている〔たとえ
ば、クロアチアケミカアクタ（CROATIA
CHEMICA ACTA）第42巻、457−466頁、1970
年、ユーゴスラビア国；ユーロピアンジヤーナル
オブバイオケミストリー（European Journal of
Biochemistry）第20巻、４号、558−560頁、
1971年、ドイツ国およびイムノケミストリー
（Immunochemistry）第12巻、349−351頁、1975
年、イギリス国参照〕が、これらの方法は精度お
よび再現性が十分とはいえず、未だ実用化されて
いない。 さらに、特定の粒径の担体を用い、特定の波長
の光により測定する方法も提案されている〔たと
えば、特開昭53−24015号公報参照〕。 しかしながら、これらの抗原または抗体を感作
させた微粒子を用い、高感度で抗体または抗原を
測定するための試薬には、感作粒子の分散性が悪
くなり非特異性凝集反応を起し易く、また保存中
に感度が大きく変化して検出力や精度を著しく損
なうことがあるという共通した難点がある。 本発明者らは、これらの難点のない免疫反応用
感作粒子試薬を開発すべく検討し、感作粒子を分
散させる媒体が重要であることを見出し、本発明
に到達した。 すなわち、本発明の要旨は、抗原または抗体を
感作させた微粒子担体を、電気伝導度5.0ｍ／
cm以下の水性媒体に懸濁させてなる免疫反応用感
作粒子試薬に存する。 以下、本発明を詳細に説明する。 本発明試薬に含まれる微粒子担体は、通常水性
媒体に実質的に不溶性の粒子である。このような
微粒子担体の材質としては、有機高分子物質、た
とえばポリスチレン、スチレン−ブタジエン共重
合体、ポリアクリル酸エステル、ポリメタクリル
酸エステル、アクリロニトリル−ブタジエン−ス
チレン共重合体やこれらの重合体中にアクリル
酸、メタクリル酸、アクリルアミド等を共重合さ
せてカルボキシル基またはアミド基等を導入した
活性化した重合体のラテツクス；シリカ、シリカ
−アルミナ、アルミナ等の無機酸化物；鉱物粉
末；金属粉末；血球あるいはブドウ球菌、連鎖球
菌等の球菌型の細菌、霊菌またはリケツチアおよ
びそれらの破片等が挙げられる。 これらの微粒子担体の大きさは、その平均粒径
が通常0.05〜1.2μｍ、好ましくは0.1〜1.0μｍ、特
に好ましくは0.2〜0.8μｍである。微粒子担体の
粒径が大きすぎると測定範囲が狭くなつたり、あ
るいはより不安定となるし、また微粒子担体の粒
径が小さすぎると試薬調製上、経済的損失が大き
く、さらに感度もあげにくくなるので、何れも好
ましくない。 本発明試薬の微粒子担体に担持される抗原とし
ては、たとえば蛋白質、ポリペプチド、ステロイ
ド、多糖類、脂質、花粉、塵あるいはハプテン
等、種々のものが挙げられる。抗体としては、た
とえば上記した抗原に対する抗体である蛋白質が
挙げられる。 これらの微粒子担体の濃度は、通常、最終濃度
で0.03〜0.3％好ましくは0.05〜0.2％である。微
粒子担体の濃度が高すぎると、本発明試薬を使用
する測定装置が複雑となり、また格別の効果もな
く、また低すぎても感度が低く、反応性が弱くな
るので何れも好ましくない。 前記微粒子担体への抗原または抗体感作には、
周知の方法、すなわち抗原または抗体の、微粒子
担体への物理的吸着もしくは抗原または抗体と微
粒子担体との化学的結合のいずれも用いられる
し、この両者を併用してもさしつかえない。 抗体に感作させる抗原または抗体の量は、その
種類や試薬の目的とする測定の精度等の種々の条
件により、適宜選択される。 抗原または抗体を感作させた微粒子担体は、水
性媒体への懸濁に先立ち安定剤で処理してもよ
い。このような安定剤としては、目的とする免疫
反応に関与しないアミノ酸、ポリペプチド、蛋白
質等が用いられ、とくに血清アルブミンが好適で
ある。安定剤による処理は、従来周知の方法によ
り行うことができる。安定剤処理は、保存および
反応時の安定性の点で好ましく、とくに担体に抗
原または抗体を物理的に吸着させた場合にその効
果が大きい。 抗原または抗体を感作させた担体を懸濁させる
水性媒体の電気電導度が5.0ｍ／cm以下である
ことが必要であり、好ましくは2.5ｍ／cm以下、
最も好ましくは1.0ｍ／cm以下である。電気伝
導度が高すぎると、不安定となり測定の精度が低
下する。 水性媒体としては、たとえば水や緩衝液が挙げ
られ、これらは安定剤、防腐剤、キレート剤、界
面活性剤等の添加物を含んでいてもよい。緩衝液
としては、グリシン緩衝液、ホウ酸塩緩衝液、ト
リス〔トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタ
ン〕−塩酸緩衝液、トリス−マレート緩衝液、ア
ンモニア緩衝液等が挙げられる。 安定剤としては、例えば前記したようなものが
挙げられ、通常その濃度は0.001〜１％、好まし
くは0.05〜0.6％である。 防腐剤としては、たとえばアジ化ナトリウム、
メルチオレートが好適である。 キレート剤としては、たとえばエチレンジアミ
ンテトラ酢酸、ニトリロトリ酢酸およびシクロヘ
キサンジアミンテトラ酢酸等が好適である。 界面活性剤としては、一般にノニオン界面活性
剤が好ましい。 水性媒体のPHは、通常５〜10、好ましくは６〜
9.5、最も好ましくは6.5〜8.5である。水性媒体の
PHが低すぎると感度は上昇するが、不安定となる
ことがあり、また水性媒体のPHが高すぎると感度
が低くなり、保存上も不安定となることがあるの
で好ましくない。 抗原または抗体を感作させた微粒子担体を水性
媒体に懸濁させる濃度は、通常0.01〜20％、好ま
しくは0.05〜10％である。濃度が低すぎると安定
性が低くなり、使用上も不便となり制約されるこ
とがあるし、また濃度が高すぎても安定性が減少
し、不都合であるので好ましくない。 本発明試薬は、例えば製造例にも示したような
方法で、すなわち前記したような微粒子担体に、
周知の方法で抗原または抗体を感作させ、必要に
応じて安定剤処理し、これを前記したような水性
媒体に、周知の方法で懸濁することにより製造で
きる。 本発明に係る試薬は、種々の免疫反応の測定方
法、たとえばスライド上または試験管で反応させ
て肉眼で観察する方法や光学セル中で反応させて
光学的に測定する方法に用いる試薬またはその保
存原液として好適である。 この試薬を用いて、免疫反応の測定を行うに
は、以下に述べるような方法によればよい。 まず、必要があれば本発明に係る試薬を、緩衝
液により希釈し、抗原または抗体を感作させた担
体の濃度を、免疫反応の測定に好都合なように調
整する。その濃度は、測定すべき抗原や抗体の種
類、濃度、反応性その他の種々の条件により相異
するので、適宜条件を決定する必要があるが、一
般的には、免疫反応を光学的に測定しようとする
場合には、通常最終濃度が0.03重量％以上、好ま
しくは0.05〜１重量％、特に好ましくは0.1〜0.5
重量％であるのがよい。また、免疫反応を肉眼で
観察しようとする場合には、通常、最終濃度で
0.05〜0.8％、好ましくは0.1〜0.5％である。 希釈に用いられる緩衝液としては、グリシン緩
衝液、ホウ酸塩緩衝液、トリス−塩酸緩衝液、ト
リス−マレート緩衝液、アンモニア緩衝液等が挙
げられる。 緩衝液のPHは通常7.6〜9.6、好ましくは8.0〜
9.0とする。緩衝液のPHが低すぎると感度は高く
なるが、凝集傾向を示し不安定となることがある
し、またPHが高すぎると感度が低くなり、高温で
の保存性が低下することもあるので好ましくな
い。 このようにして得られる試薬を用いて、常法に
より免疫反応を測定することができる。 すなわち、たとえば肉眼により免疫反応を観察
する場合には、スライド上もしくは試験管中に、
所定量の試薬、および抗原または抗体を含む被検
液を混合し、感作粒子の凝集を観察する。 また、免疫反応を光学的に測定しようとする場
合には、所定量の試薬、および抗原または抗体を
含む被検液を混合し、光学セル中で光の透過率、
散乱光または濁度の変化を測定する。 光の透過率により、上記の測定を行なう場合に
は、光の波長は、通常、担体の平均粒径の1.1倍
以上、好ましくは1.5倍以上、最も好ましくは２
倍以上であり、通常600〜2400nm、好ましくは
800〜1800nmである。光の波長が短かすぎると、
光の透過率を上げるため微粒子担体の濃度をうす
く、かつ分散性の極めて良好な試薬が必要で感度
を上げることが困難であり反応の逆転がおこつた
りし、また長すぎても感度が悪くなるので好まし
くない。 光は単色光、多色光のいずれでもよい。 光の透過率測定に用いる光学セルの厚さは、通
常0.2〜10mmである。 透過率の測定は、吸光度が一定の値に達するま
での時間を測定する方法や一定の時間内の吸光度
増加を測定する方法によればよい。 散乱光により、上記の測定を行なう場合にも、
上記の透過率の場合と同様に行なうことができ
る。 本発明に係る試薬は、各種検体中の抗原または
抗体の量を再現性および精度のいずれも良好に測
定することのできる免疫反応用感作粒子試薬であ
る。さらに、従来の製法では困難であつた、試薬
を凍結後再融解させて反応に使用することもで
き、凍結乾燥しても再使用可能である。 以下に実施例を挙げて、本発明をさらに詳細に
説明するが、本発明はその要旨を超えない限り、
以下の実施例により限定を受けるものではない。 実施例 １ アルフアフエトプロテインに対する抗体グロブ
リンを、ラテツクス粒子（粒径0.220μｍダウケミ
カル社製品）当り800〜1500個相当量となるよう
に0.1Mグリシン緩衝液（PH8.8）に溶解し、等量
のラテツクス−グリシン緩衝液（PH8.8）と室温
で撹拌下に混合し、充分感作させる。遠心分離
後、上澄を除去し、適当量の牛血清アルブミンで
処理する。このようにして得られた感作粒子を防
腐剤を適当量含む電気伝導度が1.5ｍ／cmの緩
衝液に懸濁して保存する。該試薬の測定精度はき
わめて良好である。 この試薬を希釈して、免疫反応の測定を行なつ
た。 希釈はグリシン緩衝液（PH8.6）を使用する。
同時再現性及び日間変動の結果を、表１及び表２
に示す。

【表】 値。

【表】 実施例 ２ Ｃ反応性蛋白（CRP）に対する抗体を0.2Mの
ホウ酸緩衝液（PH8.8）に溶解し、同じ緩衝液に
懸濁させたラテツクス粒子（粒径0.220μｍ、ダウ
ケミカル社製品）に800〜1800個相当量になるよ
う感作させる。ついで牛血清アルブミンで処理し
適当量のほう酸緩衝液（4.0ｍ／cm）に分散さ
せる。得られた試薬の測定精度はきわめて良好で
ある。 実施例 ３ ウサギあるいは山羊の抗ヒトフイブリノゲン抗
体Ｆ（ab′）₂を0.1Mのトリス・マレート緩衝液
（PH8.6）に溶解し同じ緩衝液に懸濁させたラテツ
クス粒子（粒径0.220μｍ、ダウケミカル社製品）
に感度が100nｇ／ml程度になるように感作させ
る。ついで牛血清アルブミンで処理しアジ化ナト
リウムを0.1％含む水溶液1.0ｍ／cm）に懸濁さ
せる。使用時は、希望のラテツクス濃度にトリ
ス・マレート緩衝液（PH8.4）かトリス・塩酸緩
衝液（PH8.4）で希釈し、スライド上で反応させ
るか、あるいは、その水性懸濁液のまま、光学測
定用の試薬としての用に供する。この試薬による
スライド反応では、抗原抗体反応による凝集像と
非凝集像が明瞭に判別できる。 実施例 ４ ヒトIgGに対するヤギ抗体グロブリンを0.1Mの
トリス・マレート緩衝液（PH8.8）に溶解し、同
じ緩衝液に懸濁させたラテツクス粒子（粒径
0.312μｍ、ダウケミカル社製品）に感作させる。
ついで牛血清アルブミンで処理し、最後に約3.0
ｍ／cmの水溶液に懸濁させる。使用時は所望の
濃度に0.1Mのトリス・マレートあるいはトリス
塩酸緩衝液で希釈するか、そのまま使用する。 実施例 ５ ヒトIgAに対するウサギ抗体Ｆ（ab′）₂を0.2Mの
ほう酸緩衝液（PH8.3）に溶解し、以下、実施例
４記載の方法に従つて調製するが、最終懸濁は約
0.5〜0.8ｍ／cmの水溶液で行ない、目的とする
試薬を得る。 実施例 ６ 高度に純化したヒトIgMに対するウサギ抗体と
ラテツクス粒子をPH9.6のグリシン緩衝液中で感
作させる。量的関係は抗体の質及び所望感度によ
る異なる。適当量の牛血清アルブミンで処理後、
約1.2ｍ／cmの水溶液に懸濁させ（この水溶液
には0.05％程度の牛血清アルブミンをあらかじめ
含ませておくこともできる。）、試薬を得る。 実施例 ７ 高度に純化したhCGに対するウサギ抗体Ｆ
（ab′）₂を0.2Mのトリス・塩酸緩衝液（PH8.6）に
溶解し、同じ緩衝液に懸濁させたラテツクス粒子
（粒径0.220μｍ、ダウケミカル社製品）に室温下
で感作させる。適当量の牛血清アルブミンで処理
後、約0.8ｍ／cmの水溶液に懸濁させ保存する。

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １ 抗原または抗体を感作させた微粒子担体を、
   電気伝導度5.0ｍ／cm以下の水性媒体に懸濁さ
   せてなる免疫反応用感作粒子試薬。 ２ 水性媒体の電気伝導度が2.5ｍ／cm以下で
   ある特許請求の範囲第１項記載の試薬。 ３ 微粒子担体の平均粒径が0.05〜1.2μｍである
   特許請求の範囲第１項記載の試薬。