JPS63196300A - Determination of alpha-amylase activity - Google Patents

Determination of alpha-amylase activity

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JPS63196300A
JPS63196300A JP2894387A JP2894387A JPS63196300A JP S63196300 A JPS63196300 A JP S63196300A JP 2894387 A JP2894387 A JP 2894387A JP 2894387 A JP2894387 A JP 2894387A JP S63196300 A JPS63196300 A JP S63196300A
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formula
inositol
amylase activity
glucose
sample
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Yoshisuke Ogawa
小川 善資
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Abstract

PURPOSE:To enable accurate determination of alpha-amylase activity in a specimen, by contacting a specimen with a substrate containing maltooligosaccharide in the presence of glucosidase and contacting isolated inositol with an inositol dehydrogenase. CONSTITUTION:A specimen is made to contact with a substrate containing a maltooligosaccharide of formula I [A is group of formula II (R1-R4 are H, etc.; X1-X4 are O, etc.), etc.; I is inositol residue, etc.; G is glucose residue; n is integer of 3-15] in the presence of glucosidase to isolate inositol or its derivative. The inositol is made to contact with inositol dehydrogenase in the presence of NAD to produce NADH. The change in absorbance of the NADH is measured to determine the amount of inositol, from which alpha-amylase activity can be calculated.

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発面唸α−アミラーゼ活性測定方法に関するものであ
る。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Field of Industrial Application] The present invention relates to a method for measuring α-amylase activity.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

急性すい炎、耳下腺炎等の診断のために血清や尿中のα
−アミラーゼ活性を測定する手法がある。
α in serum and urine for diagnosis of acute pancreatitis, parotitis, etc.
-There are methods to measure amylase activity.

アミラーゼ活性測定用基質として、従来はでんぷんが用
いられてきたが、精度の点で難点があった。
Starch has conventionally been used as a substrate for measuring amylase activity, but there have been drawbacks in terms of accuracy.

近年、でんぷんにかわって、マルトペンタオース(G5
)を代表とするマルトオリゴ塘がアミラーゼ活性測定用
基質として採用されつつある。
In recent years, maltopentaose (G5
) is increasingly being adopted as a substrate for measuring amylase activity.

α−アミラーゼの共役酵素としてα−グルコシダーゼを
用いると、次の方法によりてα−アミラーゼの活性を測
定することができる。
When α-glucosidase is used as the conjugate enzyme for α-amylase, the activity of α-amylase can be measured by the following method.

c 5  d−ZコE?−−tz→マルトース(G2)
+ツル上トリオース(G3)cz+03!!上ニア42
己?望t=j(−5a 1ここに生成したグルコース(
Gl )は、例えばグルコースオキシダーゼ/パーオキ
シダーゼ/色素系又はヘキソキナーゼ/水人ホグルコム
ターゼ/グルコース−6−ホスフェートデヒドロゲナー
ゼ/NADH系等により定量される。
c 5 d-ZkoE? --tz→maltose (G2)
+Triose on the vine (G3) cz+03! ! upper near 42
Myself? Desired t=j(-5a 1 Glucose produced here (
Gl ) is quantified, for example, by a glucose oxidase/peroxidase/dye system or a hexokinase/hydrophoglucomutase/glucose-6-phosphate dehydrogenase/NADH system.

更に最近、還元末端のグルコースにアグリゴントシてパ
ラニトロフェノール等のフェノール系化合物を導入し、
アブリボンを遊離させてそのスペクトル吸収を測定する
ことによりα−アミラーゼ活性を測定する方法も提案さ
れている(fF公昭57−53079)。
Furthermore, recently, phenolic compounds such as para-nitrophenol have been introduced into the reducing terminal glucose,
A method has also been proposed for measuring α-amylase activity by releasing Alibibbon and measuring its spectral absorption (fF Publication No. 57-53079).

〔発明が解決しようとする問題点〕[Problem that the invention seeks to solve]

しかしながら、前述のマルトオリゴ糖をアミラーゼ活性
測定用基質として用いる場合には、試料である血清や尿
中に内因性のグルコースやマルトースが存在するため、
その影響を受け、測定誤差が生じることになる。従って
、マルトオリゴ糖を基質として用いる場合には試料中の
グルコース等を予めヘキソキナーゼ等を用いて処理する
必要がありた。
However, when using the above-mentioned malto-oligosaccharide as a substrate for measuring amylase activity, endogenous glucose and maltose are present in the sample serum or urine.
Due to this influence, measurement errors will occur. Therefore, when maltooligosaccharide is used as a substrate, it is necessary to treat glucose and the like in the sample with hexokinase or the like in advance.

一方、アブリボンとしてフェノール系化合物を用いた場
合には、遊離した発色基は試料中の共存物質により作用
を受け、吸光度が変動しやすくなり、その結果、測定精
度が劣る場合があった。
On the other hand, when a phenolic compound is used as the abribon, the free chromogenic group is affected by the coexisting substances in the sample, making the absorbance more likely to fluctuate, resulting in poor measurement accuracy.

本発明者は、これら従来技術の問題点を解決するために
研究を行ない、その結果、先にフルクトース等の単種類
を還元末端に転位させたマルトオリゴ糖を用いたα−ア
ミラーゼ活性測定方法を完成し、出願したl願昭6l−
277702)。
The present inventor conducted research to solve the problems of these conventional techniques, and as a result, completed a method for measuring α-amylase activity using a maltooligosaccharide in which a single type, such as fructose, was first rearranged to the reducing end. and filed an application in 1986.
277702).

しかし、この方法ではNADH−+NADの退色反応を
利用するものであり、発色反応と比べると感度や精度の
点で若干劣る場合がありた。
However, this method utilizes a fading reaction of NADH-+NAD, and is sometimes slightly inferior in sensitivity and accuracy compared to a coloring reaction.

本発明は、先願発明を更に改良すべく、研究を継続した
結果、完成されたもので、下記の一般式(Hで表わされ
るマルトオリゴ糖を含む基質と試料とをグルコシダーゼ
の共存下に接触させ、遊離するイノシトール又はその誘
導体をNADの存在下、イノシトール脱水素酵素と接触
させることにより、試料中のα−アミラーゼ活性を測定
することを特徴とするα−アミラーゼ活性測定方法であ
る。
The present invention was completed as a result of continued research in order to further improve the prior invention. is a method for measuring α-amylase activity, which comprises measuring α-amylase activity in a sample by contacting liberated inositol or its derivative with inositol dehydrogenase in the presence of NAD.

k−Gn−1tI) 〔ここでAは C)Is−Xs−鳥 を、■はイノシトール又はその誘導体を、Gはグルコー
スを、nは3〜15の整数をそれぞれ表わす。
k-Gn-1tI) [Here, A represents C) Is-Xs-bird, ■ represents inositol or its derivative, G represents glucose, and n represents an integer from 3 to 15, respectively.

(「1式又は[相]式において、R1〜R4は水素原子
、低級アルキル基、又は(CHz ) y COOM 
(7はO〜z t Mは水素原子又はアルカリ金属を表
わす。〕を、X、〜X4は酸素原子又はイオウ原子をそ
れぞれ表わす。〕 本発明会提供されるα−アミラーゼ活性測定用基質であ
る一般式中で表わされるマルトオリゴ糖において、非還
元末端であるAは未置換グルコースでもよいし、グルコ
ースの4位及び/又は6位を置換したものでよい(前記
「式)。さらにグルコースの4位と6位が−緒になりて
アルキレン橋を形成していてもよい(前記■式)。
(In the formula 1 or [phase] formula, R1 to R4 are hydrogen atoms, lower alkyl groups, or (CHz) y COOM
(7 represents O~z t M represents a hydrogen atom or an alkali metal), and X and ~X4 represent an oxygen atom or a sulfur atom, respectively.] Substrate for measuring α-amylase activity provided by the present invention group In the malto-oligosaccharide represented by the general formula, A, which is the non-reducing end, may be unsubstituted glucose or may be substituted at the 4-position and/or 6-position of glucose (formula above). and the 6th position may be joined together to form an alkylene bridge (formula ① above).

一般式(11において、還元末端となる■はイノシトー
ル又はその誘導体である。■がイノシトールであること
によって前述の通り内因性のグルコースと区別すること
ができる。
In the general formula (11), the reducing terminal (■) is inositol or a derivative thereof. By the fact that (■) is inositol, it can be distinguished from endogenous glucose as described above.

一般式(I)において、A−Gnは具体的にはマルトペ
ンタオース(G5)%マルトオクタツース(G8)、マ
ルトデカオース(GIO)、マルトヘキサデカオース(
Gl 6 )等が例示される。このうち、05〜G8は
水溶性に優れl るうえに、2種のアイ妙エンザイムの作用を均等に受け
る可能性が高いため、基質として好ましい。
In general formula (I), A-Gn is specifically maltopentaose (G5)% maltooctatose (G8), maltodecaose (GIO), maltohexadecose (
Gl 6 ), etc. are exemplified. Among these, 05 to G8 are preferable as substrates because they have excellent water solubility and are likely to be equally affected by the two types of enzymes.

一般式+13において、Aは前述のとおり、未修飾され
たグルコースを含むものである。無修飾の場合でも本−
発明の基質は従来の基質に比べて、はるかに精度よくα
−アミラーゼ活性を測定し得るものであるが、下記の理
由により修飾グルコースが好ましい。
In general formula +13, A includes unmodified glucose as described above. Book even if unqualified
The substrate of the invention has much higher accuracy than conventional substrates.
- Although amylase activity can be measured, modified glucose is preferred for the following reasons.

即ち、マルトオリゴ糖から成る基質において、非還元末
端がグルコースそのものであると、α−アミラーゼ活性
測定時に使用する共役酵素であるグルコシダーゼが一部
の非還元末端のグルコースを切断し、α−アミラーゼ活
性測定に誤差を与えてしまうのである。
That is, in a substrate consisting of maltooligosaccharide, if the non-reducing end is glucose itself, glucosidase, which is the conjugate enzyme used for α-amylase activity measurement, will cleave some of the glucose at the non-reducing end, and the α-amylase activity measurement will be interrupted. This gives an error.

修飾された非還元末端としては第1表に示したような置
換基を導入したものが例示される。
Examples of modified non-reducing terminals include those introduced with substituents as shown in Table 1.

第1表 一般式(Ilで表わされる化合物のうち、α−アミラー
ゼ活性測定用基質としてもっとも好ましいのは次の■]
式で表わされる化合物である。
Table 1 General formula (Among the compounds represented by Il, the following ■ is the most preferable as a substrate for measuring α-amylase activity]
It is a compound represented by the formula.

(Zl−Z、は水素原子又はリン酸基を表わす。)N式
の化合物を以下MeGsiと略すことがある。
(Zl-Z represents a hydrogen atom or a phosphoric acid group.) The compound of formula N may be hereinafter abbreviated as MeGsi.

一般式(I)のマルトオリゴ糖の製造方法の一例を述べ
る。
An example of a method for producing maltooligosaccharide of general formula (I) will be described.

先ず、サイクロデキストリン(α、β、γのいずれでも
よい。)とイノジ−トールとをサイクロデキストリング
ルカノトランスフェラーゼの共存下に反応させる。その
結果、サイクロデキストリンが開環し、その還元末端に
イノシトールが転移し、新たな還元末端がイノシトール
となる。もつとも、この際デキストリンの分断も行なわ
れるので得られるデキストリンは原料のサイクロデキス
トリンのグルコース数のものに限られず、それ以下のグ
ルコース数のものも生成する。マルトオリゴ糖のグルコ
ース数が、この操作で所望のものよりも少なければ、マ
ルトース以上のオリゴ糖と、得られた転位デキストリン
とを再度サイクロデキストリングルカノトランスフェラ
ーゼの共存下に反応させればよい。
First, cyclodextrin (any of α, β, and γ) and inoditol are reacted in the presence of cyclodextrin glucanotransferase. As a result, the cyclodextrin opens, inositol is transferred to its reducing end, and the new reducing end becomes inositol. However, since the dextrin is also split at this time, the obtained dextrin is not limited to the number of glucose in the cyclodextrin used as the raw material, but also those having a lower number of glucose are also produced. If the number of glucose in the malto-oligosaccharide is lower than desired in this operation, the oligosaccharide containing more than maltose and the obtained rearranged dextrin may be reacted again in the presence of cyclodextrin glucanotransferase.

なお、非還元末端のグルコースは、前述の通り、その4
位及び/又は6位が修飾されている方が測定誤差が少な
くなるので好ましいものであるが、非還元末端の4位及
び/又は6位を修飾する場合には、上述の方法で得られ
たイノシトール転移マルトオリゴ塘を酸触媒の存在下に
ジメトキシトルエンやジメトキシプロパンと反応させる
。その結果、■式で示される非還元末端が得られる。
As mentioned above, the non-reducing terminal glucose is
It is preferable that the 4th and/or 6th positions of the non-reducing end are modified, as this reduces measurement errors. The inositol-transferred maltooligotox is reacted with dimethoxytoluene or dimethoxypropane in the presence of an acid catalyst. As a result, a non-reducing end represented by the formula (2) is obtained.

一方、■式で示される非還元末端を導入する場合には、
■式の化合物の6位及び/又は4位を触媒存在下にOH
とし、次いで、ハロゲン化アルキルを反応させ、接触還
元すればよい。
On the other hand, when introducing a non-reducing end represented by the formula ■,
OH in the presence of a catalyst at the 6th and/or 4th positions of the compound of formula
and then react with an alkyl halide to carry out catalytic reduction.

また、X1〜X4のいずれかをイオウ原子にしたい場合
には■弐又は1■式の化合物をスルホン酸エステル化し
、メルカプタン類を反応させればよい。なお、サイクロ
デキストリンのかわりに市販のマルトオリゴ糖を用いて
もよい。
Furthermore, if any of X1 to X4 is desired to be a sulfur atom, the compound of formula (2) or (1) may be converted into a sulfonic acid ester and reacted with a mercaptan. Note that a commercially available maltooligosaccharide may be used instead of cyclodextrin.

前述の反応で用い北サイクロデキストリングルカノトラ
ンスフェラーゼはバチルス・マセランス、バチルス・メ
ガテリウム、バチルス・サーキュランス及ヒバチルス・
オーペンシス等を起源とするものを使用できる。
The northern cyclodextrin glucanotransferases used in the aforementioned reactions were Bacillus macerans, Bacillus megaterium, Bacillus circulans, and Hibacillus.
Those originating from Orpensis etc. can be used.

反応液から所望のマルトオリゴ糖を分離精製する手段と
してはGPC,イオン交換クロマトグラフィー、合成吸
着剤による方法等が挙げられる。
Examples of means for separating and purifying the desired maltooligosaccharide from the reaction solution include GPC, ion exchange chromatography, and a method using a synthetic adsorbent.

次に、(IJ式で示される基質を用いて試料中のα−ア
ミラーゼ活性を測定する方法を述べる。
Next, a method for measuring α-amylase activity in a sample using a substrate represented by the formula (IJ) will be described.

体液等の試料に基質及び共役酵素として、グルコシダー
ゼを加えると下記のように反応が進む。
When glucosidase is added as a substrate and a conjugate enzyme to a sample such as a body fluid, the reaction proceeds as shown below.

MeG、 l ” ”−”  MeG1+G、 ■c、
 I  aゴ竺で1−2G、+1 ここで遊離したイノシトール又はその誘導体はイノシト
ール脱水素酵素(IDH)と、NAL)共存下に反応さ
せることによりNADHを生成させ、その吸光度の変化
によりイノシトール量が測定できる。
MeG, l ” ”-” MeG1+G, ■c,
1-2G, +1 The liberated inositol or its derivative is reacted with inositol dehydrogenase (IDH) in the presence of NAL to generate NADH, and the amount of inositol is determined by the change in absorbance. Can be measured.

〔作  用〕[For production]

一般式II)で表わされる本発明で用いる基質は試料中
のα−アミラーゼ及び共役酵素のグルコシダーゼにより
切断されてイノシトール又はその誘導体を生じる。この
イノシトール類を例えばIDH等で脱水素することによ
り、NAD−+NADI(の発色反応を起こさせ、生成
し九NADH量を測定することによりα−アミラーゼ活
性を測定することができる。
The substrate used in the present invention represented by general formula II) is cleaved by α-amylase in the sample and glucosidase, which is a conjugating enzyme, to produce inositol or a derivative thereof. By dehydrogenating these inositols with, for example, IDH, a coloring reaction of NAD-+NADI (NAD-+NADI) is caused, and α-amylase activity can be measured by measuring the amount of NAD-NADH produced.

以下に実施例t−揚げて本発明を更に説明する。The present invention will be further explained with reference to Example t below.

〔実 施 例〕〔Example〕

実施例1 a、 Iの製造 β−サイクロデキストリン209−とイノシトール20
5F−を溶解した液中に、バチルス・オーペンシスを起
源とするサイクロデキストリングルカノトランスフェラ
ーゼft2001L// を基質添加後、60CpH6
,oの条件下で25時間反応させた。
Example 1 a, Preparation of I β-cyclodextrin 209- and inositol 20
After adding a substrate of cyclodextrin glucanotransferase ft2001L, which originated from Bacillus opensis, to the solution containing 5F-, 60CpH6
, o for 25 hours.

次いで、この反応液をシリカ充填カラムによりクロマト
分離し、G、Iを8.8y−得た。
Next, this reaction solution was chromatographically separated using a silica-packed column to obtain 8.8y of G and I.

次に、このG、1854と市販のG4オリゴ糖125L
とを4oomlのバッファ液(pH6,0)に溶解させ
、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ2
oom/P基質を添加し、37Cで20分間反応させた
。次いで再度クロマト分離したところG、Iが1.8)
得られ友。
Next, this G, 1854 and commercially available G4 oligosaccharide 125L
and cyclodextrin glucanotransferase 2 were dissolved in 4 ooml of buffer solution (pH 6,0).
oom/P substrate was added and reacted at 37C for 20 minutes. Then, when chromatographic separation was performed again, G and I were 1.8)
A friend gained.

α−アミラーゼ活性測定例 試薬I 上記で得られた基質   1 m o l/I3(最終
濃度)α−グルコシダーゼ    25UAnl(〃)
イノシト−欠デ?ト5クシーービ     40UAl
(tt    )NAD              
  4,0’mmaV13c    ”    )PI
PEC−(y)7−(pI(7,0) 1oommol
/#(〃   )上記試薬800μlに、α−アミラー
ゼ活性が55 mTJ/ml及び220 mU/ntl
である検体血清100μmを加えて37Cで10分間イ
ンキュベーションしなから34o」で吸光度変化を測定
した。
α-amylase activity measurement example Reagent I Substrate obtained above 1 mol/I3 (final concentration) α-glucosidase 25 UAnl (〃)
Inosito - Missing De? To5Kushibi 40UAl
(tt)NAD
4,0'mmaV13c'')PI
PEC-(y)7-(pI(7,0) 1oommol
/#(〃) 800 μl of the above reagent contains α-amylase activity of 55 mTJ/ml and 220 mU/ntl.
100 μm of sample serum was added and incubated at 37C for 10 minutes, and then the change in absorbance was measured at 34o.

結果を図に示す。The results are shown in the figure.

図から本発明においては4分以降にお いて、いずれの濃度でも良好な直線関係が得られている
ことがわかる。
From the figure, it can be seen that in the present invention, a good linear relationship is obtained at any concentration after 4 minutes.

実施例2 実施例2において、各検体血清にさら にグルコースを100 m97m1添加した他は同様の
手順で測定を行なった。
Example 2 Measurements were carried out in the same manner as in Example 2, except that 100 m97 ml of glucose was further added to each sample serum.

その結果、図とほとんど同一の結果が 得られた。As a result, the result is almost the same as the one shown in the figure. Obtained.

従って、本発明は内因性のグルコース 等によりては全く影響を受けないことがわかる。Therefore, the present invention provides endogenous glucose It can be seen that there is no influence at all.

〔効 果〕〔effect〕

本発明のマルトオリゴ糖を含む基質は還元末端にイノシ
トール類を転位させたので、試料中に含まれる内因性グ
ルコースやマルトース等の影響を受けることなく正確に
効率よ〈α−アミラーゼ活性を測定することができる。
Since the malto-oligosaccharide-containing substrate of the present invention has inositols transferred to the reducing end, α-amylase activity can be measured accurately and efficiently without being affected by endogenous glucose, maltose, etc. contained in the sample. Can be done.

さらに、非遺元末端に6飾したグルコースを導入すると
、さらに精度が上がる。また、イノシトールをNAD共
存下酵素処理することによりNADHが得られるが、こ
の際の吸光度測定は、試料中の他の夾雑物により影響を
受けず、安定して測定することができる。
Furthermore, introducing a hexa-decorated glucose at the non-primary end further improves accuracy. Furthermore, NADH can be obtained by treating inositol with an enzyme in the presence of NAD, and the absorbance measurement at this time is not affected by other impurities in the sample and can be stably measured.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

図面は本発明の実施例の結果を示す図面である。 The drawings are diagrams showing the results of the embodiments of the present invention.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1)下記の一般式( I )で表わされるマルトオリゴ糖
を含む基質と試料とをグルコシダーゼの共存下に接触さ
せ、遊離するイノシトール又はその誘導体をNAD(ニ
コチン酸アミドアデニンジヌクレオチド)の存在下、イ
ノシトール脱水素酵素と接触させることにより、試料中
のα−アミラーゼ活性を測定することを特徴とするα−
アミラーゼ活性測定方法。 A−Gn−I( I ) 〔ここでAは ▲数式、化学式、表等があります▼(II)又は▲数式、
化学式、表等があります▼(III)を、Iはイノシトー
ル又はその誘導体を、Gはグルコースを、nは3〜15
の整数をそれぞれ表わす。 (II)式又は(III)式において、R_1〜R_4は水
素原子、低級アルキル基、又は(CH_2)yCOOM
〔yは0〜2、Mは水素原子又はアルカリ金属を表わす
〕を、X_1〜X_4は酸素原子又はイオウ原子をそれ
ぞれ表わす。〕 2)( I )式が下式で表わされる特許請求の範囲第1
項記載の測定方法。 ▲数式、化学式、表等があります▼ (Z_1〜Z_5はそれぞれ水素原子又はリン酸基を表
わす。)
[Claims] 1) A substrate containing a maltooligosaccharide represented by the following general formula (I) is brought into contact with a sample in the presence of glucosidase, and the liberated inositol or its derivative is converted into NAD (nicotinamide adenine dinucleotide). ), the α-amylase activity in the sample is measured by contacting it with inositol dehydrogenase.
Amylase activity measurement method. A-Gn-I (I) [Here, A is ▲Mathematical formula, chemical formula, table, etc.▼(II) or ▲Mathematical formula,
There are chemical formulas, tables, etc. ▼ (III), I is inositol or its derivative, G is glucose, n is 3 to 15
each represents an integer. In formula (II) or formula (III), R_1 to R_4 are hydrogen atoms, lower alkyl groups, or (CH_2)yCOOM
[y represents 0 to 2, M represents a hydrogen atom or an alkali metal], and X_1 to X_4 represent an oxygen atom or a sulfur atom, respectively. ] 2) Claim 1 in which formula (I) is represented by the following formula:
Measurement method described in section. ▲There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc.▼ (Z_1 to Z_5 each represent a hydrogen atom or a phosphoric acid group.)
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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US11013342B2 (en) 2018-08-09 2021-05-25 Toyota Boshoku Kabushiki Kaisha Conveyance seat and seat cover for the same

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