JPS5953834B2 - ビフイズス菌増殖促進物質 - Google Patents
ビフイズス菌増殖促進物質Info
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- JPS5953834B2 JPS5953834B2 JP57083269A JP8326982A JPS5953834B2 JP S5953834 B2 JPS5953834 B2 JP S5953834B2 JP 57083269 A JP57083269 A JP 57083269A JP 8326982 A JP8326982 A JP 8326982A JP S5953834 B2 JPS5953834 B2 JP S5953834B2
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- JP
- Japan
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- sucrose
- fructofuranosyl
- bifidobacteria
- enzyme
- nisdose
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Dairy Products (AREA)
- General Preparation And Processing Of Foods (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はビフィズス菌増殖促進物質に関する。
ビフィズス菌は母乳栄養児の腸内細菌の大部分を占める
細菌として良く知られている。
細菌として良く知られている。
この菌の生理学的意義については多数の報告があり、腸
内腐敗菌による腐敗の抑制作用、独性アミンの産生防止
作用、乳酸や酢酸などの有機酸生成による病原菌の生育
抑制作用等が広く知られている。
内腐敗菌による腐敗の抑制作用、独性アミンの産生防止
作用、乳酸や酢酸などの有機酸生成による病原菌の生育
抑制作用等が広く知られている。
ビフィズス菌がこのような作用を有していることから、
成人を含めた人の健康維持、増進を目的として腸内のビ
フイス゛ス菌数を増加させるために種々のビフィズス菌
製剤や醗酵乳製品などが提案されている。
成人を含めた人の健康維持、増進を目的として腸内のビ
フイス゛ス菌数を増加させるために種々のビフィズス菌
製剤や醗酵乳製品などが提案されている。
しかしながら、ビフィズス菌をこのようにして体内に摂
取しても、一般的にはビフィズス菌は定着せず、摂取を
中止すればビフィズス菌は糞便中に検出されなくなるこ
とか゛多い。
取しても、一般的にはビフィズス菌は定着せず、摂取を
中止すればビフィズス菌は糞便中に検出されなくなるこ
とか゛多い。
腸内におけるビフィズス菌の増殖に必要な因子として最
も重要なものは糖類であると考えられ、古くはラクチュ
ロースが有効であるとされていた。
も重要なものは糖類であると考えられ、古くはラクチュ
ロースが有効であるとされていた。
ラクチュロースは難消化性の糖であり、これを摂取した
場合、体内にはほとんど吸収されず大腸に至り、腸内細
菌によって資化される。
場合、体内にはほとんど吸収されず大腸に至り、腸内細
菌によって資化される。
しかしながら、腸内にはビフィズス菌のほかに大腸菌、
クロストリディウム等多種多様な腸内細菌が存在してお
り、ラクチュロースはこれら腸内細菌によって非選択的
に資化されるため、ビフィズス菌のみを選択的に増殖さ
せることは困難であった。
クロストリディウム等多種多様な腸内細菌が存在してお
り、ラクチュロースはこれら腸内細菌によって非選択的
に資化されるため、ビフィズス菌のみを選択的に増殖さ
せることは困難であった。
本発明者らは、腸内においてビフィズス菌を選択的に増
殖させる糖源について鋭意研究を重ねた結果、シューク
ロースにフラクトースが1〜4分子結合したフラクトオ
リゴ糖が生体内で消化吸収されないことを見出した(特
願昭56−136130号〈特開昭58−40065号
〉)。
殖させる糖源について鋭意研究を重ねた結果、シューク
ロースにフラクトースが1〜4分子結合したフラクトオ
リゴ糖が生体内で消化吸収されないことを見出した(特
願昭56−136130号〈特開昭58−40065号
〉)。
さらに、これら糖類の腸内細菌による資化性を検討した
ところ、このフラクトオリゴ糖はビフィズス菌により選
択的に資化されることから、腸内でのビフィズス菌の選
択的増殖因子となり得ることを見出し、本発明を完成し
たのである。
ところ、このフラクトオリゴ糖はビフィズス菌により選
択的に資化されることから、腸内でのビフィズス菌の選
択的増殖因子となり得ることを見出し、本発明を完成し
たのである。
すなわち本発明は、シュークロースにフラクトースが1
〜4分子結合したフラクトオリゴ糖を主成分とするビフ
ィズス菌増殖促進物質に関するものである。
〜4分子結合したフラクトオリゴ糖を主成分とするビフ
ィズス菌増殖促進物質に関するものである。
本発明で用いるフラクトオリゴ糖は、シュークロースに
フラクトシルトランスフェラーゼを作用させて得られる
オリゴ糖類、すなわちシュークロースにフラクト−スが
1分子結合した物質(以下GF2と称する。
フラクトシルトランスフェラーゼを作用させて得られる
オリゴ糖類、すなわちシュークロースにフラクト−スが
1分子結合した物質(以下GF2と称する。
)、シュークロースにフラクトースが2分子結合した物
質(以下、GF3と称する。
質(以下、GF3と称する。
)、シュークロースにフラン1ヘースが3分子結合した
物質(以下、GF4と称する。
物質(以下、GF4と称する。
)およびシュークロースにフラン1ヘースが4分子結合
した物質(以下GF5と称する。
した物質(以下GF5と称する。
)である。これらのオリゴ糖は、シュークロースにフラ
ノ1〜ジルトランスフエラーゼを作用させて得られる転
移糖組成物からたとえは勿−ボンクロマトグラフィー、
イオン交換クロマトグラフィー等の手段により単離精製
することができる。
ノ1〜ジルトランスフエラーゼを作用させて得られる転
移糖組成物からたとえは勿−ボンクロマトグラフィー、
イオン交換クロマトグラフィー等の手段により単離精製
することができる。
ここで用いかれるフラクトシルI・ランスフェラーゼは
主としてシュークロースに作用してフラクトースとグル
コースとのβ−1,2結合を切断した後、そのフラクト
ースをシュークロースに転移してGF2を生じ、さらに
GF2にフラクトースを転移してGF3を生成する等の
作用を有している。
主としてシュークロースに作用してフラクトースとグル
コースとのβ−1,2結合を切断した後、そのフラクト
ースをシュークロースに転移してGF2を生じ、さらに
GF2にフラクトースを転移してGF3を生成する等の
作用を有している。
この酵素はアスペルギルス(Aspergillus)
属(アスペルギルス・ニガー(Aspergillus
niger)ACE−2−1、FERM −P588
6等)、ペニシリウム(Penicillium)属(
ペニシリウム・ニグリカンス(Penicillum
nigricans)等)、フザリウム(Fusari
um)属(フザリウム・リニ(Fusariumlin
i IAM5008 )等)、ダレオスポリウム(Gl
oeosporium )属(ダレオスポリウム・カキ
(Gloeosporium kaki IAM5Ql
l)等)、オーレオバシデウム(Aureobasid
ium)属(オーレオハシデウム・プルランス・パル・
メラニゲナム(Aureobasidium pull
ulans var melanigenumA−8、
ATCC20612)等)などのカビ、サツカロミセス
(Saccharomyces)属(サツカロミセス・
セレビシェ(Saccharomyces cerev
issiae)等)、ロドトルラ(Rhodotoru
lla)属(ロドトルラ・グルチs−ス(Rhodot
orulla glusinis)等)、ピヒア(Pi
chia)属(ピヒア・ミソ(Pichiamiso)
等)、ハンセヌラ(Hansenula)属(ハンセヌ
ラ・ミソ(Hansenula m1so)等)、キャ
ンテ゛イタ゛(Candida)属(キャンテ゛イタ゛
・トロピカリス(Candida tropicali
s)等)などの酵母等の微生物起源の酵素やアスパラガ
ス、キクイモ等の植物起源の酵素が用いられる。
属(アスペルギルス・ニガー(Aspergillus
niger)ACE−2−1、FERM −P588
6等)、ペニシリウム(Penicillium)属(
ペニシリウム・ニグリカンス(Penicillum
nigricans)等)、フザリウム(Fusari
um)属(フザリウム・リニ(Fusariumlin
i IAM5008 )等)、ダレオスポリウム(Gl
oeosporium )属(ダレオスポリウム・カキ
(Gloeosporium kaki IAM5Ql
l)等)、オーレオバシデウム(Aureobasid
ium)属(オーレオハシデウム・プルランス・パル・
メラニゲナム(Aureobasidium pull
ulans var melanigenumA−8、
ATCC20612)等)などのカビ、サツカロミセス
(Saccharomyces)属(サツカロミセス・
セレビシェ(Saccharomyces cerev
issiae)等)、ロドトルラ(Rhodotoru
lla)属(ロドトルラ・グルチs−ス(Rhodot
orulla glusinis)等)、ピヒア(Pi
chia)属(ピヒア・ミソ(Pichiamiso)
等)、ハンセヌラ(Hansenula)属(ハンセヌ
ラ・ミソ(Hansenula m1so)等)、キャ
ンテ゛イタ゛(Candida)属(キャンテ゛イタ゛
・トロピカリス(Candida tropicali
s)等)などの酵母等の微生物起源の酵素やアスパラガ
ス、キクイモ等の植物起源の酵素が用いられる。
微生物起源のフラクトシルトランスフェラーゼは適当な
培地、たとえは゛シュークロース5.0%、ペプトン1
.0%、肉エキス0.7%、NaC10,3%を含有す
る培地にそれぞれの微生物の至適温度、すなわち25〜
30℃で24〜96時間培養し、培養終了後、培養液か
ら濾過または遠心分離等の手段で分離して得られる菌体
、または菌体を除去した培養濾液、さらにはこの培養濾
液より限外濾過法、硫安塩析法、溶剤性でん法、ゲル濾
過法、イオン交換クロマト法等の酵素精製に関する常法
によって精製純化した酵素を用いることができる。
培地、たとえは゛シュークロース5.0%、ペプトン1
.0%、肉エキス0.7%、NaC10,3%を含有す
る培地にそれぞれの微生物の至適温度、すなわち25〜
30℃で24〜96時間培養し、培養終了後、培養液か
ら濾過または遠心分離等の手段で分離して得られる菌体
、または菌体を除去した培養濾液、さらにはこの培養濾
液より限外濾過法、硫安塩析法、溶剤性でん法、ゲル濾
過法、イオン交換クロマト法等の酵素精製に関する常法
によって精製純化した酵素を用いることができる。
また、植物起源の酵素は植物組織を摩砕等の物理的手段
により破壊した後、酵素を抽出し、その抽出液または抽
出液から常法で一精製した酵素を用いることができる。
により破壊した後、酵素を抽出し、その抽出液または抽
出液から常法で一精製した酵素を用いることができる。
シュークロースにこれらのフラクトシルトランスフェラ
ーゼを作用させるときの工業的転移反応条件によって種
々検討の結果、以下の条件で実施することが好ましい。
ーゼを作用させるときの工業的転移反応条件によって種
々検討の結果、以下の条件で実施することが好ましい。
すなわち、転移反応時のシュークロース濃度を5〜70
%、好ましくは30〜60%とする。
%、好ましくは30〜60%とする。
また反応世、反応温度は酵素の起源により異なるが、1
f(4,0〜7.0、温度25〜65℃、好ましくは5
0〜60℃とする。
f(4,0〜7.0、温度25〜65℃、好ましくは5
0〜60℃とする。
酵素使用量についてはシュークロース1g当り5〜20
0単位、好ましくは2.0〜80単位とする。
0単位、好ましくは2.0〜80単位とする。
ここで酵素の単位は、5%シュークロース溶液1.Om
L IH5,0の緩衝液1. Omlに酵素液0.5m
lを添加し、40℃で60分間反応させたとき、反応液
2.5ml中に60分間に1μmoleのグルコースを
生成する酵素量を1単位として表示する。
L IH5,0の緩衝液1. Omlに酵素液0.5m
lを添加し、40℃で60分間反応させたとき、反応液
2.5ml中に60分間に1μmoleのグルコースを
生成する酵素量を1単位として表示する。
転移反応終了後、加熱した酵素を失活させ、活性炭によ
り脱色し、さらにイオン交換樹脂で脱塩した後、濃縮し
て目的物を得る。
り脱色し、さらにイオン交換樹脂で脱塩した後、濃縮し
て目的物を得る。
転移組成物の分析は、たとえば゛マイクロホンタ゛パッ
クCHカラム(ウォーターズ・リミテッド製)を用い、
アセトニトリル:水(80: 20 (V/V)の溶剤
系を用いた高速液体クロマトグラフィー法で行なうこと
ができる。
クCHカラム(ウォーターズ・リミテッド製)を用い、
アセトニトリル:水(80: 20 (V/V)の溶剤
系を用いた高速液体クロマトグラフィー法で行なうこと
ができる。
このようにして得られた組成物の組成は、たとえばグル
コース30%、シュークロース11%、GF228%、
GF325%、GF45%、GF51%であるが、それ
ぞれの構成糖の組成は反応条件により種々の値をとり得
る。
コース30%、シュークロース11%、GF228%、
GF325%、GF45%、GF51%であるが、それ
ぞれの構成糖の組成は反応条件により種々の値をとり得
る。
本発明に用いるGF2.GF3.GF4.GF5または
これらの混合物は、たとえば上記組成物を活性炭を充填
したカラムに加え、水および水とエタンールの混合溶液
で順次溶出することによって得ることができる。
これらの混合物は、たとえば上記組成物を活性炭を充填
したカラムに加え、水および水とエタンールの混合溶液
で順次溶出することによって得ることができる。
たとえばGF2は水で溶出した後、5%(V/V)エタ
ノール水溶液で溶出することによりまたGF3は次いで
10%(V/V)エタノール水溶液で溶出することによ
り、GF4.GF5は20%(■/V)エタノール水溶
液で溶出することにより得られ、GF2.GF3.GF
4.GF5の混合物はグルコース、シュークロース、フ
ラクトオリゴ糖を含む上記組成物を活性炭カラムに添加
した後、水を通液することによりグルコースとシューク
ロースを除去しさらに20%(V/V)エタノール水溶
液で溶出することによって得られる。
ノール水溶液で溶出することによりまたGF3は次いで
10%(V/V)エタノール水溶液で溶出することによ
り、GF4.GF5は20%(■/V)エタノール水溶
液で溶出することにより得られ、GF2.GF3.GF
4.GF5の混合物はグルコース、シュークロース、フ
ラクトオリゴ糖を含む上記組成物を活性炭カラムに添加
した後、水を通液することによりグルコースとシューク
ロースを除去しさらに20%(V/V)エタノール水溶
液で溶出することによって得られる。
フラクトオリゴ糖のGF2としては0−β−D−フラク
トフラノシル−(2→1)−〇−β−フラクトフラノシ
ル−(2→1)−α−Dグルコピラノシド、O−β−D
−フラクトフラノシル−(2→6)−〇−βグルコピラ
ノシル−(1→2)−β−D−フラクトフラノシド、0
−β−D−フラクトフラノシル−(2→6) −〇−β
−フラクトフラノシル−(2→1)−α−D−グルコピ
ラノシド等があり、GF3としては〇−β−D−フラク
トフラノシルー(2→〔1−O−β−D−フラクトフラ
ノシルー2〕2→1)−α−D−グルコピラノシド、O
−β−D−フラクトフラノシル−(2→6)−〇−β−
D−フラクトフラノシルー(2→2)) −〇−α−D
−グルコピラノシルー(1→2)−β−D−フラクトフ
ラノシド等があり、GF4としては〇−β−D−フラク
I・フラノシル−(2→〔1−0−β−D−フラクトフ
ラノシルー2〕3→1)−α−D−グルコピラノシド等
があり、GF5としては0−β−D−フラクトフラノシ
ル−(2→〔1−0−β−D−フラクトフラノシルー2
〕4→1)−α−D−グルコピラノシド等がある。
トフラノシル−(2→1)−〇−β−フラクトフラノシ
ル−(2→1)−α−Dグルコピラノシド、O−β−D
−フラクトフラノシル−(2→6)−〇−βグルコピラ
ノシル−(1→2)−β−D−フラクトフラノシド、0
−β−D−フラクトフラノシル−(2→6) −〇−β
−フラクトフラノシル−(2→1)−α−D−グルコピ
ラノシド等があり、GF3としては〇−β−D−フラク
トフラノシルー(2→〔1−O−β−D−フラクトフラ
ノシルー2〕2→1)−α−D−グルコピラノシド、O
−β−D−フラクトフラノシル−(2→6)−〇−β−
D−フラクトフラノシルー(2→2)) −〇−α−D
−グルコピラノシルー(1→2)−β−D−フラクトフ
ラノシド等があり、GF4としては〇−β−D−フラク
I・フラノシル−(2→〔1−0−β−D−フラクトフ
ラノシルー2〕3→1)−α−D−グルコピラノシド等
があり、GF5としては0−β−D−フラクトフラノシ
ル−(2→〔1−0−β−D−フラクトフラノシルー2
〕4→1)−α−D−グルコピラノシド等がある。
なお、GF2のうちの〇−β−D−フラクトフラノシル
ー(2→1) −0−β−フラクトフラノシル−(2→
1)−α−D−グルコピラノシド(以下、1−ゲスドー
スと称する。
ー(2→1) −0−β−フラクトフラノシル−(2→
1)−α−D−グルコピラノシド(以下、1−ゲスドー
スと称する。
)、GF3のうちの〇−β−D−フラクトフラノシルー
(2→〔1−0−β〜D−フラクトフラノシルー2〕2
→1)−α−D−グルコピラノシド(以下、ニス1〜−
スと称する。
(2→〔1−0−β〜D−フラクトフラノシルー2〕2
→1)−α−D−グルコピラノシド(以下、ニス1〜−
スと称する。
)、GF4の0−β−D−フラクトフラノシル−(2→
〔1−〇−β−D−フラクトフラノシルー2〕3→1)
−α−D−グルコピラノシド(以下、IF−フラクトフ
ラノシル−ニスドースと称する。
〔1−〇−β−D−フラクトフラノシルー2〕3→1)
−α−D−グルコピラノシド(以下、IF−フラクトフ
ラノシル−ニスドースと称する。
)およびGF5の〇−β−D−フラクトフラノシルー(
2→〔1−0−β−D−フラク)・フラノシル−2〕4
→1)−α−D−グルコピラノシド(以下、IF−(フ
ラクトフラノシル)2−ニスドースと称する。
2→〔1−0−β−D−フラク)・フラノシル−2〕4
→1)−α−D−グルコピラノシド(以下、IF−(フ
ラクトフラノシル)2−ニスドースと称する。
)は後記実施例1に示すように腸内細菌による資化性を
検討した結果、ビフィズス菌によって選択的に資化され
るので、特に好ましいものである。
検討した結果、ビフィズス菌によって選択的に資化され
るので、特に好ましいものである。
) このようにシュークロースにフラクトシルトランス
フェラーゼを作用させて得られるフラクトオリゴ糖は、
腸内におけるビフィズス菌増殖促進物質として有効であ
り、この物質は目的に応じて液状、粉抹状など所望の形
態にすることができ、こiれらの形態のものをそのま・
本発明の目的に用いることもできるし、また一般の飲食
品類に希望する量を添加して用いることができる。
フェラーゼを作用させて得られるフラクトオリゴ糖は、
腸内におけるビフィズス菌増殖促進物質として有効であ
り、この物質は目的に応じて液状、粉抹状など所望の形
態にすることができ、こiれらの形態のものをそのま・
本発明の目的に用いることもできるし、また一般の飲食
品類に希望する量を添加して用いることができる。
さらにまたビフィズス菌を含有する錠菓、醗酵乳、散剤
、錠剤等に添加して用いることができる。
、錠剤等に添加して用いることができる。
1 次に、本発明を実施例により詳しく説明する。
実施例 1
オーレオバシデイウム・プルランス・パール・メラノゲ
ナムA−8株(FERM−P5885)を三角フラスコ
中のブイヨン2%、シュークロース5%1を含む培地3
00m1に植菌し、28℃で24時間培養し、これを種
培養液とした。
ナムA−8株(FERM−P5885)を三角フラスコ
中のブイヨン2%、シュークロース5%1を含む培地3
00m1に植菌し、28℃で24時間培養し、これを種
培養液とした。
301ジャーファーメンタ−にシュークロース1.0冗
ペプトン1.0%、肉エキス0.7%、NaC10,3
%、CoC1□・6H200,1%を含む培地(IH6
,5) 201を□入れ、120℃で30分殺菌した後
、上記糖培養液300m1を無菌的に植菌し、28℃で
24時間培養した。
ペプトン1.0%、肉エキス0.7%、NaC10,3
%、CoC1□・6H200,1%を含む培地(IH6
,5) 201を□入れ、120℃で30分殺菌した後
、上記糖培養液300m1を無菌的に植菌し、28℃で
24時間培養した。
なお、通気攪拌条件は240rpm、5QVVmである
。
。
培養液を遠心分離し、フラクトシルトランスフェラーゼ
を含有する粗酵素菌体400gを得た。
を含有する粗酵素菌体400gを得た。
この粗酵素は12000単位/gの活性を有していた。
シュークロース150kgに水1001を加えてシュー
クロースを溶解したのち坦を6.0とし、上記フラクト
シル1〜ランスフエラーゼの粗酵素菌体375gを添加
して60℃で48時間反応させた。
クロースを溶解したのち坦を6.0とし、上記フラクト
シル1〜ランスフエラーゼの粗酵素菌体375gを添加
して60℃で48時間反応させた。
次いで、′100℃で10分間加熱して酵素反応を停止
させ、これを濾過することによって菌体を除いた。
させ、これを濾過することによって菌体を除いた。
しかる後、炉液を常法により活性炭で脱色し、さらにイ
オン交換樹脂で脱塩した。
オン交換樹脂で脱塩した。
このようにして得た組成物の固形分当りの糖組成は次の
通りであった。
通りであった。
フラノI・−ス1%、グルコース36%、シュークロー
ス10%、■−ケスドース23%、ニスドース24%、
IF−フラクトフラノシルーニスト−4%、1F−(フ
ック1〜フラノシル)2−ニス1〜−ス2%。
ス10%、■−ケスドース23%、ニスドース24%、
IF−フラクトフラノシルーニスト−4%、1F−(フ
ック1〜フラノシル)2−ニス1〜−ス2%。
上記組成物1.2kgを401の活性炭カラムに充填し
、5V=1で8001の水を通液後、2801の5%エ
タノール、次いで2801の10%エタノール、さらに
201の20%エタノールで゛溶出し、GF2B。
、5V=1で8001の水を通液後、2801の5%エ
タノール、次いで2801の10%エタノール、さらに
201の20%エタノールで゛溶出し、GF2B。
GF3.GF4のみを含む両分を得、濃縮したのち凍。
結乾燥を行なってGF2,50g、GF340g、GF
410g 、 GFslgを得た。
410g 、 GFslgを得た。
これらの物質の化学構造についてグルコースとフラクト
ースの構成比率、ガスクロマド質量分析等の手段により
検討した結果、GF2は1−ケスドース、GF3はニス
ドース、。
ースの構成比率、ガスクロマド質量分析等の手段により
検討した結果、GF2は1−ケスドース、GF3はニス
ドース、。
GF4はIF−フラクトフラノシル−ニスド−ス、GF
5はIF−(フラクトフラノシル)2−ニス1ヘースで
゛あることが明らかとなった。
5はIF−(フラクトフラノシル)2−ニス1ヘースで
゛あることが明らかとなった。
次に、腸内細菌によるこれらの物質の資化性を検討した
。
。
なお、検討の際にはそれぞれのフラノ。トオリゴ糖類0
.5%を含む培地に腸内細菌を植菌して37℃で72時
間培養し、菌数の増加を600nmにおける吸光度を測
定することにより求め、グルコースを糖源とした場合の
吸光度を100としたときの比較値で菌の増殖の程度を
示した。
.5%を含む培地に腸内細菌を植菌して37℃で72時
間培養し、菌数の増加を600nmにおける吸光度を測
定することにより求め、グルコースを糖源とした場合の
吸光度を100としたときの比較値で菌の増殖の程度を
示した。
また、資化1性検討用培地としては大腸菌(E、 co
ll)の場合は下記培地Aを、他の腸内細菌については
培地Bを使用した。
ll)の場合は下記培地Aを、他の腸内細菌については
培地Bを使用した。
結果を第1表に示す。表から明らかなように、GF2.
GF3.GF4゜GF5はラクチュロースに比較してビ
フィズス菌に対する資化選択性が高い。
GF3.GF4゜GF5はラクチュロースに比較してビ
フィズス菌に対する資化選択性が高い。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 シュークロースにフラクトースが1〜4分子結合し
たフラクトオリゴ糖を主成分とするビフィズス菌増殖促
進物質。 2 フラクトオリゴ糖がシュークロースにフラクトシル
トランスフェラーゼを作用させて得られるものである特
許請求の範囲第1項記載の物質。 3 フラクトオリゴ糖が1−ケスドース、ニスド−ス、
1F−フラノI・フラノシル−ニスドースおよびIF−
(フラクトフラノシル)2−ニスドースのいずれかであ
る特許請求の範囲第1項記載の物質。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57083269A JPS5953834B2 (ja) | 1982-05-19 | 1982-05-19 | ビフイズス菌増殖促進物質 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57083269A JPS5953834B2 (ja) | 1982-05-19 | 1982-05-19 | ビフイズス菌増殖促進物質 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS58201980A JPS58201980A (ja) | 1983-11-25 |
JPS5953834B2 true JPS5953834B2 (ja) | 1984-12-27 |
Family
ID=13797632
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP57083269A Expired JPS5953834B2 (ja) | 1982-05-19 | 1982-05-19 | ビフイズス菌増殖促進物質 |
Country Status (1)
Country | Link |
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JP (1) | JPS5953834B2 (ja) |
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WO2022248637A1 (en) | 2021-05-27 | 2022-12-01 | Beghin Meiji | Composition and method for balancing immune system and metabolic function in human and/or animal subjects |
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-
1982
- 1982-05-19 JP JP57083269A patent/JPS5953834B2/ja not_active Expired
Cited By (3)
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Also Published As
Publication number | Publication date |
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JPS58201980A (ja) | 1983-11-25 |
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