JPS589060A - 電気泳動法による細胞の検査方法 - Google Patents
電気泳動法による細胞の検査方法Info
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- JPS589060A JPS589060A JP56107399A JP10739981A JPS589060A JP S589060 A JPS589060 A JP S589060A JP 56107399 A JP56107399 A JP 56107399A JP 10739981 A JP10739981 A JP 10739981A JP S589060 A JPS589060 A JP S589060A
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- G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
- G01N27/416—Systems
- G01N27/447—Systems using electrophoresis
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は電気泳動法による細胞物に白血球。
リンパ球の検査方法に係る。
最近、細胞性免疫を検査する一手段として細胞電気泳動
法が注目され始めている。
法が注目され始めている。
細胞電気泳動法の一方法は、サボｐヴイック勢の方法で
ある（ Ｄ、 ８ａｂｏｌｏｖｌｅ ＠ｔ ａｌ、 ＊
”Ｃｅ１ｌＫ１＠ｃｔｒｏｐｈｏｒ＠ｓｌｓ ： Ｃ
ｌ１ｎｉｃａｌ ＡｐｐＨｃａｔｉｏｎ ａｎｄＭ＠ｔ
ｈｏｄｏｌｏｇｙｓ ” ＩＮ８ＫＲＭ ８７ｍＰ＠１
１ｕｍＡ１１＊１９７９年）、仁の方法祉手動式で一定
に長時間を要し、生きた細胞を多数測定するに°は好ま
しいものではない。
ある（ Ｄ、 ８ａｂｏｌｏｖｌｅ ＠ｔ ａｌ、 ＊
”Ｃｅ１ｌＫ１＠ｃｔｒｏｐｈｏｒ＠ｓｌｓ ： Ｃ
ｌ１ｎｉｃａｌ ＡｐｐＨｃａｔｉｏｎ ａｎｄＭ＠ｔ
ｈｏｄｏｌｏｇｙｓ ” ＩＮ８ＫＲＭ ８７ｍＰ＠１
１ｕｍＡ１１＊１９７９年）、仁の方法祉手動式で一定
に長時間を要し、生きた細胞を多数測定するに°は好ま
しいものではない。
他の方法は、スタイナー等のレーザードツプラー法であ
る（ Ｄ、 ８ｔ＠１ｎｏｒ ＠ｔ ａｌ、 ｅ Ｅｕ
ｒｏｐ＠ａｎＪｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃａｎｃ＠ｒ、
１５１２７５〜１２８０ （１９７９） ）ｅこの方法
でも、電気泳動パターンの分離能の点で充分満足すべき
もので紘ない。
る（ Ｄ、 ８ｔ＠１ｎｏｒ ＠ｔ ａｌ、 ｅ Ｅｕ
ｒｏｐ＠ａｎＪｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃａｎｃ＠ｒ、
１５１２７５〜１２８０ （１９７９） ）ｅこの方法
でも、電気泳動パターンの分離能の点で充分満足すべき
もので紘ない。
以上のような状況の下で、高性能且つ迅速な測定が可能
である装置及び方法の開発が望まれていた。
である装置及び方法の開発が望まれていた。
本発＠蝶、細胞特に末梢血又はリンパ系組織中のリンパ
球の電気泳動度を全自動型電気泳動装置を用いて一定し
、電気泳動バメーンの変化から細胞の状態変化を検査す
る方法を＊撫することを間約とする。
球の電気泳動度を全自動型電気泳動装置を用いて一定し
、電気泳動バメーンの変化から細胞の状態変化を検査す
る方法を＊撫することを間約とする。
本発明によると、非常に分離能の良い電気泳動法でリン
パ球の電気泳動度を測定することＫよル。
パ球の電気泳動度を測定することＫよル。
その電気線動パターンの変化から従来得られなかつた情
報を得られる。
報を得られる。
本発明は以下の点を主たる轡黴とする。
（１） 短時間に多数の細胞が測定でき得ること。
（２）電界を反転し１個々の細胞の平均電気泳動度を測
定できるので測定値の精度が高いこと、（３１血小板、
混入物等微小浮遊物、凝集した細胞勢は一定されないこ
と、 （４）泳動用細胞浮遊液として生理的条件のメディウム
（イオン強度１−０．１！Ｓ）を使用することができる
こと。
定できるので測定値の精度が高いこと、（３１血小板、
混入物等微小浮遊物、凝集した細胞勢は一定されないこ
と、 （４）泳動用細胞浮遊液として生理的条件のメディウム
（イオン強度１−０．１！Ｓ）を使用することができる
こと。
４１に、（４）にりいて、これｔでの報告では装置上及
び一定上の問題から細胞浮遊液の電気伝導度を下けるた
めに生理的条件よυも低い条件（１−０，００５〜０．
１）での測定例が多いが、生きた細胞を一定するという
観点からみて、生理的条件を満泳動装置（Ｐａｒｍｏｑ
ｕａｎｔ−１ｍ東独カールツアイス゛社製、以下ＰＱ−
１と略称する）は電界反転によｐ多数Ｏ細胞について個
々ＯＩ／ＡｊＩＩＩＯ平均電気泳動度を正確Ｋ１１ｌ定
し、これから泳動度に対するヒストグラムを求めるもＯ
であるが１画像魁理の関係で試料Ｏ細胞員度を０、Ｓ〜
２０Ｘ１０・個／ｄ、且つ細胞浮遊液のイオン強度を０
．１１〜０．２１好ましくは０．１３〜０．１７の範１
１に調整する。
び一定上の問題から細胞浮遊液の電気伝導度を下けるた
めに生理的条件よυも低い条件（１−０，００５〜０．
１）での測定例が多いが、生きた細胞を一定するという
観点からみて、生理的条件を満泳動装置（Ｐａｒｍｏｑ
ｕａｎｔ−１ｍ東独カールツアイス゛社製、以下ＰＱ−
１と略称する）は電界反転によｐ多数Ｏ細胞について個
々ＯＩ／ＡｊＩＩＩＯ平均電気泳動度を正確Ｋ１１ｌ定
し、これから泳動度に対するヒストグラムを求めるもＯ
であるが１画像魁理の関係で試料Ｏ細胞員度を０、Ｓ〜
２０Ｘ１０・個／ｄ、且つ細胞浮遊液のイオン強度を０
．１１〜０．２１好ましくは０．１３〜０．１７の範１
１に調整する。
しかしながら、本発明に係る一定装置としては、上述の
全自動顕微鏡製電気泳動装置に＠定されるものではなく
、上記４点が満足畜れる一定装置であればレーザード°
ツプラー法、レーザーグレーテインダ法、フリー７ｍ−
法勢も使用可能である。
全自動顕微鏡製電気泳動装置に＠定されるものではなく
、上記４点が満足畜れる一定装置であればレーザード°
ツプラー法、レーザーグレーテインダ法、フリー７ｍ−
法勢も使用可能である。
上記の装置で得られ良電気泳動パターンによる検査法を
、０３Ｈ／Ｈ＠’ｔウス胸腺リンパ球の正常細胞とｌ１
ｌＩＩｌ腫瘍Ｘ Ｓ ５６＄ ０１１［１１Ｏ１１１１
１Ｋ）イテ詳述する。
、０３Ｈ／Ｈ＠’ｔウス胸腺リンパ球の正常細胞とｌ１
ｌＩＩｌ腫瘍Ｘ Ｓ ５６＄ ０１１［１１Ｏ１１１１
１Ｋ）イテ詳述する。
第１１１１ｍ乃至−にその結果を示す、横軸は電気泳動
度を表し 横軸は制度を表す、ａは正常Ｓ＋麿。
度を表し 横軸は制度を表す、ａは正常Ｓ＋麿。
ｂ、Ｑ及びｄは夫々移殖後５日、１０日及び１５日の調
定結果である。
定結果である。
第１図から明らかなように、担癌マウスは５日後にメイ
ンピークの変化が認められ、１０日及び１５日１１には
正常細胞の泳動パターンとは全く異なるパターンを示し
た。
ンピークの変化が認められ、１０日及び１５日１１には
正常細胞の泳動パターンとは全く異なるパターンを示し
た。
電気泳動パターンを数値化する方法としては。
メインビークの位置（泳動度）％電気泳動度をいくつか
に区分けし九領域に属する細胞の比率又は平均泳動度な
どがある。
に区分けし九領域に属する細胞の比率又は平均泳動度な
どがある。
第１Ｅａの泳動パターンから大ピークと小ピークの境界
０．７０ ａｍ／ ｌ＠ｌｌ ／Ｖ ／ｅｓ以上の細胞
は全体の２０．５−であった、これに対し第１１Ｑｂ、
・及び４社大々２４．２％、５１．９９１及び６８．４
％であ〕、癌移殖後の経過日数とともに泳動度の大きい
（０，７０ａｔ／ ｓｅｅ ／Ｖ／ａｍ以上）細胞の比
率が正常細胞のそれよ〕４饅〜４８−増加した。又、上
記の０．７０国／ｙｒ＠ｅ／Ｖ／ｌｓ以上の細胞の比率
を正常細胞のそれで割ると夫々１．１８．２．４９及び
３．３４となつえ、尚、大ビータと小ピークの境界の電
気泳動度及び正常動物の高泳動度の細胞の比率は動物の
種、系統１遍令＊によって着干異なる。
０．７０ ａｍ／ ｌ＠ｌｌ ／Ｖ ／ｅｓ以上の細胞
は全体の２０．５−であった、これに対し第１１Ｑｂ、
・及び４社大々２４．２％、５１．９９１及び６８．４
％であ〕、癌移殖後の経過日数とともに泳動度の大きい
（０，７０ａｔ／ ｓｅｅ ／Ｖ／ａｍ以上）細胞の比
率が正常細胞のそれよ〕４饅〜４８−増加した。又、上
記の０．７０国／ｙｒ＠ｅ／Ｖ／ｌｓ以上の細胞の比率
を正常細胞のそれで割ると夫々１．１８．２．４９及び
３．３４となつえ、尚、大ビータと小ピークの境界の電
気泳動度及び正常動物の高泳動度の細胞の比率は動物の
種、系統１遍令＊によって着干異なる。
又、第１図ａ（正常縁Ｉｔ）０電気泳動パターンの２つ
のピークの平均泳動度は夫々０．５２ａ＋／ｓ・・／
Ｖ ／ａｍ及び０．１１３５＋／ ｓ＠ａ ／Ｖ／ａｍ
テあ）、同様に第１図す、ｅ及びｄについて２つのピー
クの平均泳動度は夫々［０，５Ｂ、 ０．９７）、 （
０，６２，０，９８）及び（０，６Ｂ、 １．０３ ）
であり九。２つのピークについて正常細胞の値で割ると
、夫々（１，１２，１，０２）。
のピークの平均泳動度は夫々０．５２ａ＋／ｓ・・／
Ｖ ／ａｍ及び０．１１３５＋／ ｓ＠ａ ／Ｖ／ａｍ
テあ）、同様に第１図す、ｅ及びｄについて２つのピー
クの平均泳動度は夫々［０，５Ｂ、 ０．９７）、 （
０，６２，０，９８）及び（０，６Ｂ、 １．０３ ）
であり九。２つのピークについて正常細胞の値で割ると
、夫々（１，１２，１，０２）。
（１，１９，１，０３）及び（１，３１，１，０８）と
なシ、泳動度の小さいピークは１．１２〜１．３１、泳
動度の大きいビータは１．０２〜１．０８といずれも泳
動度の大きい側ヘシフトしていた。
なシ、泳動度の小さいピークは１．１２〜１．３１、泳
動度の大きいビータは１．０２〜１．０８といずれも泳
動度の大きい側ヘシフトしていた。
本発明の方法と従来の方法とを比較するために。
腫瘍重量、遅延型足踏反応、抗体産生能及びリンパ球細
胞障書の測定結果な鮪２図（１）乃至（４１に示す。
胞障書の測定結果な鮪２図（１）乃至（４１に示す。
第２図で、横軸は経時日でおり、縦軸は夫々腫瘍重量、
遅延型足踏反応における厚みの増加、抗体産生能（力価
）及びリンパ球細胞障害（細胞毒性）を表す、第２図か
ら明らかなように、５〜１０日目から生ずる電気泳動パ
ターンと対応して異常値が表れてくることがわかる。
遅延型足踏反応における厚みの増加、抗体産生能（力価
）及びリンパ球細胞障害（細胞毒性）を表す、第２図か
ら明らかなように、５〜１０日目から生ずる電気泳動パ
ターンと対応して異常値が表れてくることがわかる。
以上の事実は各種実験動物に於ても同様に認められ、い
ずれも担癌によって高泳動度の細胞の比率は正常細胞の
それに比較して４〜７０９１増加し友。
ずれも担癌によって高泳動度の細胞の比率は正常細胞の
それに比較して４〜７０９１増加し友。
又、担癌細胞の高泳動度の細胞の比率を正常細胞のそれ
で割った値はｌ、０５〜８．００であった。
で割った値はｌ、０５〜８．００であった。
同様に担癌細胞のピークの平均泳動度を対応する正常細
１のピークの平均泳動度で割り九値は１．０２〜１．６
０であった。
１のピークの平均泳動度で割り九値は１．０２〜１．６
０であった。
これらＯことから本発明は従来の免疫能一定結果と嵐い
対応を示し、その迅速さからよシ優れた以上胸腺リンパ
球について述べたが、末梢血リンパ球についても担癌に
よって電気振動パターンの変化がみられるが、胸腺リン
パ球の場合とは逆に担癌によって泳動度の低い細胞の比
率が増加する傾向がみられ、電気泳動パターンのピーク
から２つの群に分けえ場合、高泳動度の比率が４１１１
〜７０−低下した。
対応を示し、その迅速さからよシ優れた以上胸腺リンパ
球について述べたが、末梢血リンパ球についても担癌に
よって電気振動パターンの変化がみられるが、胸腺リン
パ球の場合とは逆に担癌によって泳動度の低い細胞の比
率が増加する傾向がみられ、電気泳動パターンのピーク
から２つの群に分けえ場合、高泳動度の比率が４１１１
〜７０−低下した。
又、担癌の高泳動度の細胞の比率を正常細胞のそれで割
った値はＯ，ＳＯ〜０．９５であった。同１１に担癌の
ピータの平均泳動度を対応する正常細胞のピークの平均
泳動度で割った値は０．６０〜１．００であった。
った値はＯ，ＳＯ〜０．９５であった。同１１に担癌の
ピータの平均泳動度を対応する正常細胞のピークの平均
泳動度で割った値は０．６０〜１．００であった。
本発明の方法は、上記Ｏ如（動物Ｏ免疫担轟細胞ＯＩＩ
定に有用であるのみならず、人間に関しても有力な検査
手段となる。
定に有用であるのみならず、人間に関しても有力な検査
手段となる。
以下実施例について本ｇ１１＠を更に詳述する。
実施例Ｉ
ＩＣＲマウス（９，８遍令）左腋下部位に腫瘍細ｍｌ（
Ｓａｒ＠ａｍ −１８０）を１０個移植後、２５日Ｉに
屠殺、胸腺細胞を摘出、ビンセットで細膓を単一、メッ
シユを通して遊離細胞を得た。低脹処履により赤血球を
除去、ＩＣａｆｌｊｓ ＭＩＭで２回洗浄後、細胞一度
４０６〜１０’＠／ｄになるようにイーグル箪に懸濁し
た。
Ｓａｒ＠ａｍ −１８０）を１０個移植後、２５日Ｉに
屠殺、胸腺細胞を摘出、ビンセットで細膓を単一、メッ
シユを通して遊離細胞を得た。低脹処履により赤血球を
除去、ＩＣａｆｌｊｓ ＭＩＭで２回洗浄後、細胞一度
４０６〜１０’＠／ｄになるようにイーグル箪に懸濁し
た。
別ＫＬＩＳｕｎｌｔと謙るようにヘパリンナトリウムｌ
ｌＩＣＮ＠マ・社製）を注射筒にと〉、壁画を漏らした
後、腹部大静脈よ〕静脈血を採取した。直ちにＨＢＳＩ
Ｅｉ （Ｈａｍｓ ’ Ｂａ１ａｎａ＠ｄ ８ａｌｔ
５ｏｌｕｔｉｏｎ ）で２倍に希釈し、よ〈Ｉ＆和した
後、試験管中のＦｌ・ａｌｌ −ＰａｑｔＩ＠ＩＩ （
Ｐｈａｎｍｅｉａ Ｆ１ｎ＊ ｃｈｍｉｃａ１社製、フ
ィコール ４０Ｇ、ジアドリゾエートナトリウムの混合
＊を比重１．０７７）３ｍｊＯ上層に約１ｓｌｌＪを外
画を乱さないように重層した。４００Ｇ ３０分間達
６し、Ｆｉ＊ｏｌｌ −Ｐａｑｕ・液と血漿との憂面に
あるリンパ球゛層をパスツールピペットにて採取し、Ｈ
８８ｇを用いて２１１０Ｇ １０分間、遠心洗浄した
。更にＨＢ８８を用いて１回、Ｅａｇｌ＠ｓ’ ＭＥＭ
にて１回、１８００ １０分間遠心洗浄を行った。上清
除去後５〜ｌ０ＸＩＯ個／―の細胞ａｌｌ変となるよう
に陶ｌ・・／ ＭＩＭを加えた。
ｌＩＣＮ＠マ・社製）を注射筒にと〉、壁画を漏らした
後、腹部大静脈よ〕静脈血を採取した。直ちにＨＢＳＩ
Ｅｉ （Ｈａｍｓ ’ Ｂａ１ａｎａ＠ｄ ８ａｌｔ
５ｏｌｕｔｉｏｎ ）で２倍に希釈し、よ〈Ｉ＆和した
後、試験管中のＦｌ・ａｌｌ −ＰａｑｔＩ＠ＩＩ （
Ｐｈａｎｍｅｉａ Ｆ１ｎ＊ ｃｈｍｉｃａ１社製、フ
ィコール ４０Ｇ、ジアドリゾエートナトリウムの混合
＊を比重１．０７７）３ｍｊＯ上層に約１ｓｌｌＪを外
画を乱さないように重層した。４００Ｇ ３０分間達
６し、Ｆｉ＊ｏｌｌ −Ｐａｑｕ・液と血漿との憂面に
あるリンパ球゛層をパスツールピペットにて採取し、Ｈ
８８ｇを用いて２１１０Ｇ １０分間、遠心洗浄した
。更にＨＢ８８を用いて１回、Ｅａｇｌ＠ｓ’ ＭＥＭ
にて１回、１８００ １０分間遠心洗浄を行った。上清
除去後５〜ｌ０ＸＩＯ個／―の細胞ａｌｌ変となるよう
に陶ｌ・・／ ＭＩＭを加えた。
試料懸濁箪２−をＰＱ−ＩＫ注入し、Ｄａｒｋ Ｆｉｅ
ｌｄ照明法、対物レンズ２５倍、泳動電＠ １ Ｇ ｍ
、完全自動棚定法によシミ気泳―測定を行った。
ｌｄ照明法、対物レンズ２５倍、泳動電＠ １ Ｇ ｍ
、完全自動棚定法によシミ気泳―測定を行った。
結果はプリンターにヒストグラム及び平均泳動度を打出
させ丸。
させ丸。
同様に癌を移植しない！ウスについても測定しえ。
第３１１ ｍに示しえように正常マウス０ＩＩＩＩＩり
ンバ球の電気泳動パターン社Ｏ０・−／−・Ｖ′ｖ／１
２１ＩＫ大ピーク、ＯＳ偏／ Ｉ＠（１／Ｖ／−に小ピ
ークを有する二峰性Ｏパターンになるのに対し、第３１
１ｂに示したようＫｍｍママウスは泳動度の大きい側に
ピークがシフトしブロードなパター／となった。
ンバ球の電気泳動パターン社Ｏ０・−／−・Ｖ′ｖ／１
２１ＩＫ大ピーク、ＯＳ偏／ Ｉ＠（１／Ｖ／−に小ピ
ークを有する二峰性Ｏパターンになるのに対し、第３１
１ｂに示したようＫｍｍママウスは泳動度の大きい側に
ピークがシフトしブロードなパター／となった。
又、第４図１及びｂに示し九ように末梢血リンパ球の電
気泳動パターンの場合、正常細ａｍ（第４１１１ｍ）に
比べて担癌細ｊｉ！Ｉ（第４図ｂ）では泳動度Ｑ低い細
胞の比率が増えパターンはプｐ−ドになっていた。
気泳動パターンの場合、正常細ａｍ（第４１１１ｍ）に
比べて担癌細ｊｉ！Ｉ（第４図ｂ）では泳動度Ｑ低い細
胞の比率が増えパターンはプｐ−ドになっていた。
実施例２
ＩＣＲｆｆクス（♀、８遍令）の腹腔内に腫瘍細胞８ａ
ｒｅｍａ −１８０及びＥｒｈｒｌｅｈを夫々５Ｘ１Ｇ
’個移植し、８日後の胸腺リンパ球を実施例１と同様の
方法によって採堆し泳動測定を行った。
ｒｅｍａ −１８０及びＥｒｈｒｌｅｈを夫々５Ｘ１Ｇ
’個移植し、８日後の胸腺リンパ球を実施例１と同様の
方法によって採堆し泳動測定を行った。
正常マウス（第！Ｓ図ａ）に比較して、８ａｒｅａｍ−
１８０（第５図ｂ ） 、 Ｅｒｈｒｉｃｈ （第５図
ａ）とも泳Ｉ１１度の高い＃ｌ胞の割合が増加し、パタ
ーンがブロードになった。
１８０（第５図ｂ ） 、 Ｅｒｈｒｉｃｈ （第５図
ａ）とも泳Ｉ１１度の高い＃ｌ胞の割合が増加し、パタ
ーンがブロードになった。
実施例３
Ｃ３Ｈ／Ｈ・マウス（８，８週令）腹腔内に腫瘍細胞Ｍ
Ｈ−１３４及びＭＨ−１０２を夫々１０６個移植し、Ｍ
Ｈ−１３４移植！ウスは６日月ＭＨ−１０２移植！ウス
社８日目に実施例１と同様に胸腺リンパ球及び末梢血リ
ンパ球を採取し、電気泳動測定を行った。
Ｈ−１３４及びＭＨ−１０２を夫々１０６個移植し、Ｍ
Ｈ−１３４移植！ウスは６日月ＭＨ−１０２移植！ウス
社８日目に実施例１と同様に胸腺リンパ球及び末梢血リ
ンパ球を採取し、電気泳動測定を行った。
胸腺リンパ球の場合を１ｓ６図、末梢血リンパ球の場合
を第７図に示した。第６図及び第１図で、１は正常細胞
、ｂａＭＨ−１３４、ｅａＭＨ−１０２である。図から
明らかなように、正常細ｊｌＩＯ電気泳動パターンに比
べて担癌マウスのパターンの変化の傾向は実施例１と同
様であった。
を第７図に示した。第６図及び第１図で、１は正常細胞
、ｂａＭＨ−１３４、ｅａＭＨ−１０２である。図から
明らかなように、正常細ｊｌＩＯ電気泳動パターンに比
べて担癌マウスのパターンの変化の傾向は実施例１と同
様であった。
実施例４
ＣＢ ？ＢＬ／６Ｙ？ｘ（８、’８１１令） 皮下ＫＩ
ＩＪＩＪｌｌ胞−ルイス肺瘉、Ｃａ −７５５及びＢ−
１８を夫々１０＠個移植し、実施例１と同様に９８目に
胸腺リンパ球及び１５日ｌｉＫ末梢血リンパ球を採取し
、電気泳動測定を行った。
ＩＪＩＪｌｌ胞−ルイス肺瘉、Ｃａ −７５５及びＢ−
１８を夫々１０＠個移植し、実施例１と同様に９８目に
胸腺リンパ球及び１５日ｌｉＫ末梢血リンパ球を採取し
、電気泳動測定を行った。
胸腺リンパ球の場合を第８図（ａは正常細胞、ｂはルイ
ス肺癌）、末梢血リンパ球の場合を第９図（ａは正常細
胞、ｂはＣｍ−７５１Ｓ、ａｌｄＢ−１６）橿七ヒーー
ー÷に示した。実施例１と同様の変化がみられた。
ス肺癌）、末梢血リンパ球の場合を第９図（ａは正常細
胞、ｂはＣｍ−７５１Ｓ、ａｌｄＢ−１６）橿七ヒーー
ー÷に示した。実施例１と同様の変化がみられた。
実施例５
採血量１−につ１２．５圃ｉｔとなるようにヘパリンナ
トリウム液（Ｎｏｖｏ社製）を注射筒に取如実施例１と
同様にリンパ球を採取、分離し、イーグル液を加えて５
〜ｌ０ＸＩＯ個／ｄの試料を作成した。
トリウム液（Ｎｏｖｏ社製）を注射筒に取如実施例１と
同様にリンパ球を採取、分離し、イーグル液を加えて５
〜ｌ０ＸＩＯ個／ｄの試料を作成した。
健常人６例（ａ：３５オ♂、ｂ：ａｏ才♂、Ｃ；２５才
♀、ｄ：１８才♀、・：１９オ♂、ｆ：４０才♀）の末
梢血から前述の方法でリンパ球を得、ＰＱ−１を用いて
細胞電気泳動を行った。第１０図に示したように、６例
と４０．８ ｔｓ／ Ｉ＠＠／Ｖ／二及び１−０ ”／
＠ｅｅ ／Ｖ ／ａｍに二峰性のピークを示す電気泳
動パターンが得られた。
♀、ｄ：１８才♀、・：１９オ♂、ｆ：４０才♀）の末
梢血から前述の方法でリンパ球を得、ＰＱ−１を用いて
細胞電気泳動を行った。第１０図に示したように、６例
と４０．８ ｔｓ／ Ｉ＠＠／Ｖ／二及び１−０ ”／
＠ｅｅ ／Ｖ ／ａｍに二峰性のピークを示す電気泳
動パターンが得られた。
実施例６
実施例５と同様に、＆：結腸癌患者（４９才６）、ｂ＝
直腸癌患者（６８オ♂）、儂：胃癌患者（７２オ♂）、
ｄ；乳癌患者（５０才♀）、・；食道癌再発患者（４９
オ♂）、ｆ：乳癌再発患者（５０才♀）、ｇ：膵癌再発
患者（６２オ８）７例から末梢リンパ球を得、ＰＱ−１
を用いて細胞電気泳動を行った。第１１図に示したよう
に、健常人とは全く異な〉、電気泳動度の小さいリンパ
球が増加し、パターンの乱れが生じた。
直腸癌患者（６８オ♂）、儂：胃癌患者（７２オ♂）、
ｄ；乳癌患者（５０才♀）、・；食道癌再発患者（４９
オ♂）、ｆ：乳癌再発患者（５０才♀）、ｇ：膵癌再発
患者（６２オ８）７例から末梢リンパ球を得、ＰＱ−１
を用いて細胞電気泳動を行った。第１１図に示したよう
に、健常人とは全く異な〉、電気泳動度の小さいリンパ
球が増加し、パターンの乱れが生じた。
代理人 川 口 幌 雄
’ＩＫ ＊ｈ ／ＩＩ （ｃｍ／ｓ＠ｃ／ｖ／ｃｍ）（
３） 、、、 （４）日
日０ ０２０
４０６ ０１１１．０ １．２ ＋４１Ｋ１７０＊
（ｃｍ／ｓｅｃ／ｖ／ｃｍ）Ａｔ！ｌ嵐（ｃｍ／ｕｃ／
ｖ／ｃｍ） −泳勧歳（ｃｍ７ｓｅｃ７ｖ７ｃｍ） 珠動＊ １ｃｍｌ５＠ｃ７ｖ７ｃｍ） ｊ水勧度（ｃｍ７ｓｅｃ７ｖ７ｃｍ ）濠動ｒＩＬ（ｃ
ｍ７ｓｅｃ７ｖ７ｃｍ） ｊＯＧ２０．４．０．６０
．８ １ＯＬ２ １．４Ａ重カ度（ｃｍ／ｓ＠ｃ／ｖ／
ａｎ） ＯＧ２０４ Ｇ６０８ ＩＤ １２ Ｌ４派勧良（
ｃｍ７’露／ｖ／ｃｍ）
３） 、、、 （４）日
日０ ０２０
４０６ ０１１１．０ １．２ ＋４１Ｋ１７０＊
（ｃｍ／ｓｅｃ／ｖ／ｃｍ）Ａｔ！ｌ嵐（ｃｍ／ｕｃ／
ｖ／ｃｍ） −泳勧歳（ｃｍ７ｓｅｃ７ｖ７ｃｍ） 珠動＊ １ｃｍｌ５＠ｃ７ｖ７ｃｍ） ｊ水勧度（ｃｍ７ｓｅｃ７ｖ７ｃｍ ）濠動ｒＩＬ（ｃ
ｍ７ｓｅｃ７ｖ７ｃｍ） ｊＯＧ２０．４．０．６０
．８ １ＯＬ２ １．４Ａ重カ度（ｃｍ／ｓ＠ｃ／ｖ／
ａｎ） ＯＧ２０４ Ｇ６０８ ＩＤ １２ Ｌ４派勧良（
ｃｍ７’露／ｖ／ｃｍ）
Claims (1)
- 末梢血又はリンパ系組織中のリンパ球を全自動型電気泳
動装置を用いて電気泳動度をＩｌｌ定し、測定パターン
の変化よシ細胞の状態を検査する事を畳徴とする細胞の
検査方法。
Priority Applications (7)
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|---|---|---|---|
| JP56107399A JPS589060A (ja) | 1981-07-09 | 1981-07-09 | 電気泳動法による細胞の検査方法 |
| CA000406283A CA1179632A (en) | 1981-07-09 | 1982-06-29 | Method for examining cells by electrophoresis |
| DE8282303588T DE3275321D1 (en) | 1981-07-09 | 1982-07-08 | Examining cells by electrophoresis |
| EP82303588A EP0070153B1 (en) | 1981-07-09 | 1982-07-08 | Examining cells by electrophoresis |
| DD82241504A DD202600A5 (de) | 1981-07-09 | 1982-07-08 | Verfahren zur untersuchung von zellen durch elektrophorese |
| ES514611A ES514611A0 (es) | 1981-07-09 | 1982-07-09 | "metodo para el examen de celulas por electroforesis". |
| US06/568,951 US4632743A (en) | 1981-07-09 | 1984-04-25 | Method for examining cells by electrophoresis |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56107399A JPS589060A (ja) | 1981-07-09 | 1981-07-09 | 電気泳動法による細胞の検査方法 |
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Family Applications (1)
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- 1982-07-08 DD DD82241504A patent/DD202600A5/de not_active IP Right Cessation
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- 1984-04-25 US US06/568,951 patent/US4632743A/en not_active Expired - Fee Related
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| JPS5578240A (en) * | 1978-12-06 | 1980-06-12 | Zeiss Jena Veb Carl | Method for measuring mobility in electrophoresis of particle |
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