JPS58201985A - グルコ−ス脱水素酵素の生産方法 - Google Patents
グルコ−ス脱水素酵素の生産方法Info
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- JPS58201985A JPS58201985A JP58080002A JP8000283A JPS58201985A JP S58201985 A JPS58201985 A JP S58201985A JP 58080002 A JP58080002 A JP 58080002A JP 8000283 A JP8000283 A JP 8000283A JP S58201985 A JPS58201985 A JP S58201985A
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- C12P13/007—Carnitine; Butyrobetaine; Crotonobetaine
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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- C12N9/0006—Oxidoreductases (1.) acting on CH-OH groups as donors (1.1)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
3−デヒドロカルニチンの非対称還元によるし一力ルニ
ヂンの生産方法はフランス特許第2398046号に記
載されている。この15FPiは、例えばAurich
および coll、 Hoppe−3eyker −s
Z、 Physiol、 Chea+ 、第349
巻、1310頁(1968年)にその化学合成法が記載
されている3−デヒドロカルニチンまたはそれらの塩の
1つを、下記の成分の水性培地において同時作用に付す
ことより成る。すなわl5a)カルニチン脱水素酵素 b)デヒドロカルニチンの還元用カルニチン脱水素酵素
により用いられる助酵素。この助酵素はニコチンアミド
アデニンジヌクレオヂドであり、これは酸化形fil(
NADH)で存在しても還元形態(NHD)−1)t’
存在してもよい。
ヂンの生産方法はフランス特許第2398046号に記
載されている。この15FPiは、例えばAurich
および coll、 Hoppe−3eyker −s
Z、 Physiol、 Chea+ 、第349
巻、1310頁(1968年)にその化学合成法が記載
されている3−デヒドロカルニチンまたはそれらの塩の
1つを、下記の成分の水性培地において同時作用に付す
ことより成る。すなわl5a)カルニチン脱水素酵素 b)デヒドロカルニチンの還元用カルニチン脱水素酵素
により用いられる助酵素。この助酵素はニコチンアミド
アデニンジヌクレオヂドであり、これは酸化形fil(
NADH)で存在しても還元形態(NHD)−1)t’
存在してもよい。
C)ニコチンアミドアデニトtクレオチドの酸化形態の
還元の化学系(または化学養剤)または酵素系(または
酵素剤)。この系はあらゆる場合に還元剤(R)を含み
、その他に酵素還元の系の場合WII素(E)を含む。
還元の化学系(または化学養剤)または酵素系(または
酵素剤)。この系はあらゆる場合に還元剤(R)を含み
、その他に酵素還元の系の場合WII素(E)を含む。
し−力ルニチンの調整反応の使用条件は前記フランス特
許に記載されている。
許に記載されている。
NADHの種々の還元系<NADHの再生系とも呼ばれ
る)は特に酵素系について(この場合還元剤Rと酵素E
の化合物)の既に引用したフランス特許に記載されてい
る。最良の結果は還元剤がグルコースであり、酵素がグ
ルコース脱水素酵素(E、C,1,1,[,47)であ
る系を用いて得られた。
る)は特に酵素系について(この場合還元剤Rと酵素E
の化合物)の既に引用したフランス特許に記載されてい
る。最良の結果は還元剤がグルコースであり、酵素がグ
ルコース脱水素酵素(E、C,1,1,[,47)であ
る系を用いて得られた。
NAD4の還元反応はしたがって次のように表わすこと
ができる。
ができる。
グルコース脱水素酵素
グルコース→−NAD+
(R) (E)
グルカノラクトン + NADH十 H+しかしながら
この系を利用しく良好な成輪を得るには、精製グルコー
ス脱水素酵素の使用が必要であった。この条件は1業的
には使用しえない。酵素すなわちこの場合グル:1−ス
脱水素酵素の精製の費用は一般に非常に^い。粗抽出物
の使用(づなわち求める酵素活性を有する微生物の懸濁
液の破壊および例えば遠心分離による細菌細胞破片の除
去の後で得られるw4製物の使用)またはグルコース脱
水素酵素の酵素活性を有するほとんど精製されていない
抽出物の使用は、従ってかなりこの費用を減じることが
できる。不都合なことに、あまりに大量な粗抽出物の使
用が要求されているにしてはあまりに粗抽出物の活性が
低いという事実によっ°【、またそれ自体酵素であって
もよくかつ当該合成に対して不11な作用をあれこれと
及ぼす種々の化合物がこれらの抽出物に存在するという
事実によって、この使用は多くの場合不可能であること
が証明されている。
この系を利用しく良好な成輪を得るには、精製グルコー
ス脱水素酵素の使用が必要であった。この条件は1業的
には使用しえない。酵素すなわちこの場合グル:1−ス
脱水素酵素の精製の費用は一般に非常に^い。粗抽出物
の使用(づなわち求める酵素活性を有する微生物の懸濁
液の破壊および例えば遠心分離による細菌細胞破片の除
去の後で得られるw4製物の使用)またはグルコース脱
水素酵素の酵素活性を有するほとんど精製されていない
抽出物の使用は、従ってかなりこの費用を減じることが
できる。不都合なことに、あまりに大量な粗抽出物の使
用が要求されているにしてはあまりに粗抽出物の活性が
低いという事実によっ°【、またそれ自体酵素であって
もよくかつ当該合成に対して不11な作用をあれこれと
及ぼす種々の化合物がこれらの抽出物に存在するという
事実によって、この使用は多くの場合不可能であること
が証明されている。
この不利な作用の原因は様々であるがしばしば併合的な
ものであって、必ずしも知られているわけではない。例
えば粗抽出物の存在の結果おこる反応において用いられ
る酵素および助酵素の非常に急速な不活性化、存在する
基質からの種々の生成物の合成、抽出物中に含まれる生
成物によるし一カルニチンの合成の阻害などを挙げるこ
とができる。
ものであって、必ずしも知られているわけではない。例
えば粗抽出物の存在の結果おこる反応において用いられ
る酵素および助酵素の非常に急速な不活性化、存在する
基質からの種々の生成物の合成、抽出物中に含まれる生
成物によるし一カルニチンの合成の阻害などを挙げるこ
とができる。
粗酵素抽出物の使用のもう1つの不都合は、使用される
粗抽出物中に含まれる不純物の存在の結果り一力ルニチ
ンの精製が困難であることである。
粗抽出物中に含まれる不純物の存在の結果り一力ルニチ
ンの精製が困難であることである。
本出願人はグルコース脱水素酵素の安定か)活性内相抽
出物の調製と、し−力ルニブンの合成用としてのその利
用を可能にする条例を発見した。
出物の調製と、し−力ルニブンの合成用としてのその利
用を可能にする条例を発見した。
本発明のh法の発見に導く実験を以トに飲約した。
グルコース脱水素酵素の活性をバシルス・サブチリス(
B acillus 5ubtilis)種に属する
種々の細菌株に由来する酵素抽出物において測定した。
B acillus 5ubtilis)種に属する
種々の細菌株に由来する酵素抽出物において測定した。
ある種の胞子形成突然変異体(生育終r時に不完全な発
達をした胞子を形成する突然変異体)は、野生株(so
、uchOda sauvage )の活性よりはる
かに高いグルコース脱水素酵素活性を1iすることが認
められた。類似の結果が、バシルス・セレウス(Bac
illus cereus)のような他のバシルス秤
に属する菌株を用いた場合でも認められる。しかしなが
ら多くの場合酵素抽出物の安定性は悪く、グルコース脱
水素酵素は数時間でその活性の大部分を失うが、一方精
製後の同じ酵素の安定性ははるかに良好であった。′こ
の不安定性の理由は明らかにされなかったが、これはグ
ルコース脱水素酵素のようなWI素をこれら酵素のペプ
チド結合のあるものを加水分解することによって不活性
化するプロテアーゼの存在に少なくとも1部基づいてい
る司異体の場合、粗抽出物におけるグルコース脱水素酵
素は高い活性と前2の場合より良好な安定性とを有する
ことが今や発見された。この突然変異体は実験室の保存
菌株であるバシルス・メガテリウムI FPl 80か
ら得られた。この菌株は’ B ergey ′s
manual of determinative
bacteriology”第8版(19741、
l he VJ illiams & W 1l
kins Company。
達をした胞子を形成する突然変異体)は、野生株(so
、uchOda sauvage )の活性よりはる
かに高いグルコース脱水素酵素活性を1iすることが認
められた。類似の結果が、バシルス・セレウス(Bac
illus cereus)のような他のバシルス秤
に属する菌株を用いた場合でも認められる。しかしなが
ら多くの場合酵素抽出物の安定性は悪く、グルコース脱
水素酵素は数時間でその活性の大部分を失うが、一方精
製後の同じ酵素の安定性ははるかに良好であった。′こ
の不安定性の理由は明らかにされなかったが、これはグ
ルコース脱水素酵素のようなWI素をこれら酵素のペプ
チド結合のあるものを加水分解することによって不活性
化するプロテアーゼの存在に少なくとも1部基づいてい
る司異体の場合、粗抽出物におけるグルコース脱水素酵
素は高い活性と前2の場合より良好な安定性とを有する
ことが今や発見された。この突然変異体は実験室の保存
菌株であるバシルス・メガテリウムI FPl 80か
ら得られた。この菌株は’ B ergey ′s
manual of determinative
bacteriology”第8版(19741、
l he VJ illiams & W 1l
kins Company。
I3altimore、第529頁に記載されているよ
うなバシルス・メガテリウム種に対応づる特徴を有する
温度耐性の内生胞子を形成する稈薗形の好気性細菌であ
る。生育を終えその胞子形成を行なったバシルス・メガ
テリウムI F P 180の培養を新しいグルコース
培地上に連続的に植菌した。数回の連続的な植菌を受け
た培養物から彎た酵素抽出物のグルコース脱水素酵素活
性がかなり増加したことが、認められた。従って例えば
12回の連続的植菌固体培地上への拡散後、]ロニーの
分離によって培養物を精製した。得られた新しい菌株を
バシルス・メガテリウムIF P 188と名付ける。
うなバシルス・メガテリウム種に対応づる特徴を有する
温度耐性の内生胞子を形成する稈薗形の好気性細菌であ
る。生育を終えその胞子形成を行なったバシルス・メガ
テリウムI F P 180の培養を新しいグルコース
培地上に連続的に植菌した。数回の連続的な植菌を受け
た培養物から彎た酵素抽出物のグルコース脱水素酵素活
性がかなり増加したことが、認められた。従って例えば
12回の連続的植菌固体培地上への拡散後、]ロニーの
分離によって培養物を精製した。得られた新しい菌株を
バシルス・メガテリウムIF P 188と名付ける。
これは母菌株のバシルス・メガテリウムl F r’
180と似ている特徴を示(が、はるかに低い胞子形成
率と明らかに^いグルコース脱水素酵素活性によりこれ
とは異なる。これにより、無胞子性の突然変異体の選別
を有利にするために知られ1i4(J、r)。
180と似ている特徴を示(が、はるかに低い胞子形成
率と明らかに^いグルコース脱水素酵素活性によりこれ
とは異なる。これにより、無胞子性の突然変異体の選別
を有利にするために知られ1i4(J、r)。
△ubert 、 J、 Millel 、 E、Pi
neauおよびG、Milhaud、B 1ochi(
Biophys、 Acta 。
neauおよびG、Milhaud、B 1ochi(
Biophys、 Acta 。
51巻、(1961年)第529〜537頁)かつ上記
のように行なわれた植菌が、その他に高いグルコース脱
水素酵素活性を有するという特性を示すような突然変異
体を得ることに効果的に導かれたと結論できた。IFP
188株はATCC寄託番号第39118号である。
のように行なわれた植菌が、その他に高いグルコース脱
水素酵素活性を有するという特性を示すような突然変異
体を得ることに効果的に導かれたと結論できた。IFP
188株はATCC寄託番号第39118号である。
従って本発明の方法は、生育を終えかつイの胞子形成を
行なったバシルス・メガテリウム株のグルコース培地上
の連続的植菌により得られたバシルス・メガツリウムの
突然変異体11” l’188(ATCC寄託番号第3
9118号)の培養によるグルコース脱水素酵素のII
J3fiから成る。
行なったバシルス・メガテリウム株のグルコース培地上
の連続的植菌により得られたバシルス・メガツリウムの
突然変異体11” l’188(ATCC寄託番号第3
9118号)の培養によるグルコース脱水素酵素のII
J3fiから成る。
バシルス菌株の培養のために用いられ/j栄拾培地の組
成が、これらの培養から得られた酵素調製物のグルコー
ス脱水素活性に対してかなり影響を及ぼすこともまた認
められた。グルコースが1〜40Q/1の濃廉ぐ培地中
に存在することがグルコース脱水素lfy索の良好な活
性を得るために不可欠であることが確かめられた。一般
的には例えば大豆のペプトン、カゼインの氷解物、とう
もろこしの浸漬液(コーンスミイーブリカー”corn
5teep 1iquor ” ) 、肉のにtス
などのようなアミノ酸源の添加を行なうと、良好な成育
および高い酵素活性を得るのに有利である。Chate
lainおよびF argett、 C、R。
成が、これらの培養から得られた酵素調製物のグルコー
ス脱水素活性に対してかなり影響を及ぼすこともまた認
められた。グルコースが1〜40Q/1の濃廉ぐ培地中
に存在することがグルコース脱水素lfy索の良好な活
性を得るために不可欠であることが確かめられた。一般
的には例えば大豆のペプトン、カゼインの氷解物、とう
もろこしの浸漬液(コーンスミイーブリカー”corn
5teep 1iquor ” ) 、肉のにtス
などのようなアミノ酸源の添加を行なうと、良好な成育
および高い酵素活性を得るのに有利である。Chate
lainおよびF argett、 C、R。
+l0bd 、3eances Δcad 、 3c
i、 、 l)シリーズ1976年、283鵞(13)
、第1563〜1566真に記載されているバシルス・
メガミリラム突然変異体KM59、これは燐酸塩の欠乏
という条件Fでしかグルコース脱水素Mlを生じないも
のであるが、これとは逆にIFPI88株は過剰な燐酸
塩の存在トで培養された時て゛さえ、高いグルコース脱
水素酵素活性を有りる。
i、 、 l)シリーズ1976年、283鵞(13)
、第1563〜1566真に記載されているバシルス・
メガミリラム突然変異体KM59、これは燐酸塩の欠乏
という条件Fでしかグルコース脱水素Mlを生じないも
のであるが、これとは逆にIFPI88株は過剰な燐酸
塩の存在トで培養された時て゛さえ、高いグルコース脱
水素酵素活性を有りる。
培地中へのグルコース添加は培養の初めにただ1度で行
なうことができる。ある場合には最高の酵素活性は発酵
の間グルコースの漸次添加により得られた。
なうことができる。ある場合には最高の酵素活性は発酵
の間グルコースの漸次添加により得られた。
培養におけるグルコースの割合は好ましくは1〜40a
/dである。好ましい培地は少なくとも1g/lのグル
コースと少なくとbl。
/dである。好ましい培地は少なくとも1g/lのグル
コースと少なくとbl。
lのとうもろこしの浸漬液とを含む。
バシルス・メガテリウムI F P 188の培養から
、遠心分離によって細菌を採集しついでこれらの細菌の
Il衝液中懸濁液を、超合波処理、ガラス球を用いての
粉砕などのような既知の技術によっC破壊することによ
り、^いグルコース脱水素酵素活性を右づる粗酵素抽出
物を調製する。細胞破片を除去するために、破壊された
細胞懸濁液の遠心分子lu、L−カルニチンの合成のた
めに用いられるグルコース脱水素酵素の粗酵素抽出物を
得る。
、遠心分離によって細菌を採集しついでこれらの細菌の
Il衝液中懸濁液を、超合波処理、ガラス球を用いての
粉砕などのような既知の技術によっC破壊することによ
り、^いグルコース脱水素酵素活性を右づる粗酵素抽出
物を調製する。細胞破片を除去するために、破壊された
細胞懸濁液の遠心分子lu、L−カルニチンの合成のた
めに用いられるグルコース脱水素酵素の粗酵素抽出物を
得る。
1FP18B菌株から冑た粗抽出物中のグルコース脱水
素酵素の安定性を調べた結束、安定性は良好であり、前
に調べたバシルス菌種から得た抽出物の安定性より明ら
かに良いことが認められた。さらに、この安定性は0.
1〜1MのS度のグル」−スの存在によって明らかに改
善されていることが認められた。サッカ[1−ス、フル
クトース、マンニt=−ルあるいtよグリセロールのよ
うなぞの他の糖や多価アルコールは安定化効果が非常に
劣る。結局酵素の安定性はpH6〜7で良好であるがp
H7,5では劣る。
素酵素の安定性を調べた結束、安定性は良好であり、前
に調べたバシルス菌種から得た抽出物の安定性より明ら
かに良いことが認められた。さらに、この安定性は0.
1〜1MのS度のグル」−スの存在によって明らかに改
善されていることが認められた。サッカ[1−ス、フル
クトース、マンニt=−ルあるいtよグリセロールのよ
うなぞの他の糖や多価アルコールは安定化効果が非常に
劣る。結局酵素の安定性はpH6〜7で良好であるがp
H7,5では劣る。
p118かそれ以、1のようなよりアルカリ竹のpF(
では安定性は悪い。上に記載した安定性の条件は有利に
は1−−カルニチンの合成に用いられる。
では安定性は悪い。上に記載した安定性の条件は有利に
は1−−カルニチンの合成に用いられる。
本発明はグルコ−ス脱水素酵素の粗酵素抽出物の使用に
制限されるものではない。所望であマV れば硫酸アン七ニウム、神々の型のり[1市)グラノィ
ー(イオン交換、ゲル上透過、親和力)などを用いての
選択的沈澱のような酵素の精製の既知方法の使用によっ
て、上に記載した粗抽出物から冑たグルコース脱水素酵
素のF8製抽出物をもし一カルニチンのこの合成用に使
用ηることができるからである。
制限されるものではない。所望であマV れば硫酸アン七ニウム、神々の型のり[1市)グラノィ
ー(イオン交換、ゲル上透過、親和力)などを用いての
選択的沈澱のような酵素の精製の既知方法の使用によっ
て、上に記載した粗抽出物から冑たグルコース脱水素酵
素のF8製抽出物をもし一カルニチンのこの合成用に使
用ηることができるからである。
実施例1
バシルス・メガテリウム株(I FF)1 B 0菌株
)を11につきグルアl−ス2.5o 、K21−IP
O42,5a 、塩化ナトリウム5g、カゼインの三重
(trypt 1que )氷解物17g、人〜ンのパ
パイン・ペプトン3gを含有する培地上で培養し、11
5℃で30分間の滅S後D117.0に調整する。これ
らの条件は行なわれる培養の燐Fll塩に制限を加える
ようなものではな(1゜30℃で24時間の培養後細胞
を採集し、燐酸カリウム緩衝液100111 M (1
)h7.5>中に懸濁させ、ついで細胞懸濁液の冷間(
Oへ一10℃)超音波処理(10回15秒)ついで遠心
分頗による細胞破片の除去によって酵素抽出物をw4賀
した。グルコース脱水素酵素の酵素活性をこのようにし
て得られた抽出物において測定すると抽出物のプロフィ
ン1mOにつき0.08511位であつIこ。酵素単位
((〕)は実験条fl T−において1分につき1マイ
クロモルのグルコースの変換を可能にする酵素の量とし
て定義する。
)を11につきグルアl−ス2.5o 、K21−IP
O42,5a 、塩化ナトリウム5g、カゼインの三重
(trypt 1que )氷解物17g、人〜ンのパ
パイン・ペプトン3gを含有する培地上で培養し、11
5℃で30分間の滅S後D117.0に調整する。これ
らの条件は行なわれる培養の燐Fll塩に制限を加える
ようなものではな(1゜30℃で24時間の培養後細胞
を採集し、燐酸カリウム緩衝液100111 M (1
)h7.5>中に懸濁させ、ついで細胞懸濁液の冷間(
Oへ一10℃)超音波処理(10回15秒)ついで遠心
分頗による細胞破片の除去によって酵素抽出物をw4賀
した。グルコース脱水素酵素の酵素活性をこのようにし
て得られた抽出物において測定すると抽出物のプロフィ
ン1mOにつき0.08511位であつIこ。酵素単位
((〕)は実験条fl T−において1分につき1マイ
クロモルのグルコースの変換を可能にする酵素の量とし
て定義する。
IFP180菌株から天然の胞子形成突然変異体を、土
に記載した培地上への連続的植菌によって選別した。5
回の植菌後、培養物のグルー1−ス脱水素酵素活性が改
善されたことが認められた。植菌を20回まで続行して
行なわれた異なる連続培養の固体培地上への拡散によっ
て単離された二1[]ニーを轡た。ついでこれらの]L
に一を培養し、当初の菌株I F P 180と同じ条
件下で処理し、グルコース脱水素酵素の酵素活性を、得
られた抽出物においC測定した。
に記載した培地上への連続的植菌によって選別した。5
回の植菌後、培養物のグルー1−ス脱水素酵素活性が改
善されたことが認められた。植菌を20回まで続行して
行なわれた異なる連続培養の固体培地上への拡散によっ
て単離された二1[]ニーを轡た。ついでこれらの]L
に一を培養し、当初の菌株I F P 180と同じ条
件下で処理し、グルコース脱水素酵素の酵素活性を、得
られた抽出物においC測定した。
Iこん白質1moにつき0.5011である最良の酵素
活性を、IFP188M株と名付けたこれら]Oニーの
1つの培養物から得た。さらに11’ l) 188菌
株は非常に低い胞r形成率(0゜4%以下)を有し、従
って胞子形成突然変異体を成すことが認められた。巨大
菌突然変異体IFP 188を後の実験におけるグル:
1−ス脱水素酵素の製造用に取っておいた。
活性を、IFP188M株と名付けたこれら]Oニーの
1つの培養物から得た。さらに11’ l) 188菌
株は非常に低い胞r形成率(0゜4%以下)を有し、従
って胞子形成突然変異体を成すことが認められた。巨大
菌突然変異体IFP 188を後の実験におけるグル:
1−ス脱水素酵素の製造用に取っておいた。
グルコース脱水素酵素の安定性をこの菌株IFP188
の酵素抽出物において測定した。これらの実験において
抽出物を濾過により滅菌し、pH7,0の燐酸カリウム
緩衝液中に30℃に保持した。これらの条件下に保持し
た抽出物のグルコース脱水素酵素活性を周期的に測定し
たが、約15時間の半減期(M素活性の半分を失うのに
要する時間)という結果が得られた。
の酵素抽出物において測定した。これらの実験において
抽出物を濾過により滅菌し、pH7,0の燐酸カリウム
緩衝液中に30℃に保持した。これらの条件下に保持し
た抽出物のグルコース脱水素酵素活性を周期的に測定し
たが、約15時間の半減期(M素活性の半分を失うのに
要する時間)という結果が得られた。
グルコース0.6Mの添加は粗抽出物中の酵素の安定性
をかなり増す。己れは上記の条R’Fにおいて21日間
で活性の損失は全く電、められなかったからである。グ
ルコースの安定化効果はグルコースの濃度による。0.
2Mの濃度においで半減期は40〜50時間である。0
.4Mにおいては約12日である。
をかなり増す。己れは上記の条R’Fにおいて21日間
で活性の損失は全く電、められなかったからである。グ
ルコースの安定化効果はグルコースの濃度による。0.
2Mの濃度においで半減期は40〜50時間である。0
.4Mにおいては約12日である。
比較としてはバシルス・サブチリスを用いて得られたグ
ルコース脱水素酵素の抽出物は0゜045単位/抽出物
のたん白質mgの活性しかなかった。
ルコース脱水素酵素の抽出物は0゜045単位/抽出物
のたん白質mgの活性しかなかった。
バシルス・勺ブチリスの最良の突然変異体の活性は0.
085u/たん白質mg以上ではなかった。バシルス・
サブチリスの野生菌株およびそれらの突然変異体はすべ
て2へ・6時間のY減期を有していた。
085u/たん白質mg以上ではなかった。バシルス・
サブチリスの野生菌株およびそれらの突然変異体はすべ
て2へ・6時間のY減期を有していた。
実施例2
大豆のパパイン・ペプトン301Jz#を含杓する培地
を含む20/の発酵装置内でバシルス初の滅菌を実施例
1のように行なった。p 1]を1ONアンモニアの添
加によってtll17.3に緒持した。培地11につき
空気0.5//分の注入により培地の通気を行なった。
を含む20/の発酵装置内でバシルス初の滅菌を実施例
1のように行なった。p 1]を1ONアンモニアの添
加によってtll17.3に緒持した。培地11につき
空気0.5//分の注入により培地の通気を行なった。
20時時間軸胞を採集し、酵素抽出物を実施例1のよう
に調製した。たん白質1111[Jにつき0.002u
のグル」−ス脱水素酵素活性が、このような抽出物にお
いて測定された。
に調製した。たん白質1111[Jにつき0.002u
のグル」−ス脱水素酵素活性が、このような抽出物にお
いて測定された。
培地が大豆のパパイン・ペプトンの他に100 /Iの
グJレニ]−スを含むということを除いてした酵素抽出
物は、たん白質111gにつき0゜42uのグル」−ス
脱水素酵素活性を有していた。
グJレニ]−スを含むということを除いてした酵素抽出
物は、たん白質111gにつき0゜42uのグル」−ス
脱水素酵素活性を有していた。
実施例3
16/の容積の培養培地が都市水道から成り、ぞの中に
培養の間ずっと1000 / kgのトウモロコシの浸
漬液(コーンステーブリカー”cornsteep
l 1quor” ) 400 Q / kgのグル]
−スを注入したことを除いて実施例2と同様に、IFP
188#i株のもう1つの培養を行なった。
培養の間ずっと1000 / kgのトウモロコシの浸
漬液(コーンステーブリカー”cornsteep
l 1quor” ) 400 Q / kgのグル]
−スを注入したことを除いて実施例2と同様に、IFP
188#i株のもう1つの培養を行なった。
この混合物の注入速度は501111/時であった。。
20時間の生育後採集して得られた細胞を用い(m製し
た酵素抽出物はたん白質1111Jにつき0.60uの
グルニ]−ス脱水JP!酵素活性をlj L/でいた。
た酵素抽出物はたん白質1111Jにつき0.60uの
グルニ]−ス脱水JP!酵素活性をlj L/でいた。
実施例4
実施例3において調製したグルー1〜ス脱水素酵素の酵
素抽出物をF記の条何下でL−力ルニブンの合成を行な
うために用いた。1/につさミリモル(mM)で示した
濃度の上記の成分ηなわら燐酸アンモニウム50mM(
pH7,0)、NAD” 1m M、グルコース600
m M、力ルニヂン脱水素酵素(フランス特許第239
8046号の実施例1に記載されたようにして調製した
もの)450甲位(すなわら酵素抽出物1011/)お
よびグルコース脱水素酵素150単位(すなわち粗酵素
抽出物101/)を含有づる培地5001Iを含む、サ
ーモスタットで25℃に保たれている21反応器を用い
た。ついぐデヒドロカルニチン・臭化水素塩(8!縮塩
酸の添加によりDHo、5にしであるもの)を11につ
き8001M含む溶液を注入した。注入速度は5m//
時であった。I)Hは2Nアン1−7の添加により11
M7.0に維持した。この7ン七ニア添加は自apt+
メーター滴定器を用いて管埋された。WI素的方法によ
り支吊された形成[−一力ルニチンの鰻は、48時間後
30 。
素抽出物をF記の条何下でL−力ルニブンの合成を行な
うために用いた。1/につさミリモル(mM)で示した
濃度の上記の成分ηなわら燐酸アンモニウム50mM(
pH7,0)、NAD” 1m M、グルコース600
m M、力ルニヂン脱水素酵素(フランス特許第239
8046号の実施例1に記載されたようにして調製した
もの)450甲位(すなわら酵素抽出物1011/)お
よびグルコース脱水素酵素150単位(すなわち粗酵素
抽出物101/)を含有づる培地5001Iを含む、サ
ーモスタットで25℃に保たれている21反応器を用い
た。ついぐデヒドロカルニチン・臭化水素塩(8!縮塩
酸の添加によりDHo、5にしであるもの)を11につ
き8001M含む溶液を注入した。注入速度は5m//
時であった。I)Hは2Nアン1−7の添加により11
M7.0に維持した。この7ン七ニア添加は自apt+
メーター滴定器を用いて管埋された。WI素的方法によ
り支吊された形成[−一力ルニチンの鰻は、48時間後
30 。
5gであった。
以上
特許出願人 アンスティiユ・7ランセ・アコ外4名
第1頁の続き
0発 明 者 ヤン・ル・パンリュ
フランス国イブリーヌ県シャド
ウ(78400)アレ・アンビル・
トラン8番地
Claims (6)
- (1)バシルス(B acillus )菌株を培地中
で培養しかつ得られた酵素を抽出することより成るグル
コース脱水素酵素の生産方法において、バシルス菌株が
、生育を終えかつ胞子形成をへの連続的植菌により得ら
れた突然変位体1FP18B (ATCC寄託番号第3
9118号)であることを特徴とする方法。 - (2)培養が1〜40a/lの濃度のグルコースの存在
下において行なわれる、特許請求の範囲第1項記載の方
法。 - (3)培養が少なくとも1g/lのグルコースと少なく
とも1Q/lのとうもろこしの浸漬液とを同時に含む培
地において′行なわれる、特許請求の範囲第1または2
項記載の方法。 - (4)培養の間にグルコースが漸次導入される、′特許
請求の範囲第1〜3項のうちのいずれが1項記載の方法
。 - (5)3−デヒドロカルニチンを水性培地において下記
の成分すなわち a)カルニチン脱水素酵素 b)ニコヂンアミドアデニンジヌクレオヂドおよび C)グルコースおよびグルコース脱水素酵素 の同時作用に付4ととより成る、[−カルニチンの酵素
合成反応に使用するために1.特許請求の範囲第1〜4
項のうちのいずれか1項記載の方法によってグルコース
脱水素酵素を得る方法。 - (6)グルコース脱水素酵素が粗抽出物の形で使用され
る、特許請求の範囲第5項記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR8208036 | 1982-05-06 | ||
FR8208036A FR2526442B1 (fr) | 1982-05-06 | 1982-05-06 | Production de glucose deshydrogenase et utilisation de l'enzyme obtenu dans la synthese enzymatique de la l-carnitine |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS58201985A true JPS58201985A (ja) | 1983-11-25 |
JPH0420597B2 JPH0420597B2 (ja) | 1992-04-03 |
Family
ID=9273858
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58080002A Granted JPS58201985A (ja) | 1982-05-06 | 1983-05-06 | グルコ−ス脱水素酵素の生産方法 |
Country Status (7)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0095950B1 (ja) |
JP (1) | JPS58201985A (ja) |
AT (1) | ATE22702T1 (ja) |
CA (1) | CA1205032A (ja) |
DE (1) | DE3366707D1 (ja) |
ES (1) | ES8407094A1 (ja) |
FR (1) | FR2526442B1 (ja) |
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FR2583432B1 (fr) * | 1985-06-13 | 1988-11-04 | Inst Francais Du Petrole | Procede de production enzymatique de l-a-aminoacides a partir d'a-cetoacides |
FR2596756B1 (fr) * | 1986-04-04 | 1988-07-22 | Elf Aquitaine | Procede de purification de la carnitine |
US4877733A (en) * | 1986-05-02 | 1989-10-31 | Toyo Jozo Kabushiki Kaisha | Glucose dehydrogenase and its production |
DE3711881A1 (de) * | 1987-04-08 | 1988-10-27 | Merck Patent Gmbh | Verfahren zur herstellung von glucosedehydrogenase aus bacillus megaterium |
FR2621325B1 (fr) * | 1987-10-02 | 1990-03-30 | Elf Aquitaine | Procede perfectionne de preparation de l-carnitine |
CN105505787A (zh) * | 2015-12-25 | 2016-04-20 | 青岛蔚蓝生物集团有限公司 | 一种产葡萄糖转苷酶的黑曲霉突变菌株 |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2398046A1 (fr) * | 1977-07-18 | 1979-02-16 | Inst Francais Du Petrole | Synthese enzymatique de la l-carnitine |
-
1982
- 1982-05-06 FR FR8208036A patent/FR2526442B1/fr not_active Expired
-
1983
- 1983-04-18 EP EP83400758A patent/EP0095950B1/fr not_active Expired
- 1983-04-18 AT AT83400758T patent/ATE22702T1/de not_active IP Right Cessation
- 1983-04-18 DE DE8383400758T patent/DE3366707D1/de not_active Expired
- 1983-04-29 ES ES521943A patent/ES8407094A1/es not_active Expired
- 1983-05-06 JP JP58080002A patent/JPS58201985A/ja active Granted
- 1983-05-06 CA CA000427564A patent/CA1205032A/fr not_active Expired
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES521943A0 (es) | 1984-08-16 |
ES8407094A1 (es) | 1984-08-16 |
EP0095950B1 (fr) | 1986-10-08 |
CA1205032A (fr) | 1986-05-27 |
EP0095950A1 (fr) | 1983-12-07 |
JPH0420597B2 (ja) | 1992-04-03 |
ATE22702T1 (de) | 1986-10-15 |
FR2526442A1 (fr) | 1983-11-10 |
FR2526442B1 (fr) | 1985-09-27 |
DE3366707D1 (en) | 1986-11-20 |
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