JPH0767634A - 不活化病原体の鶏用経口ワクチン - Google Patents
不活化病原体の鶏用経口ワクチンInfo
- Publication number
- JPH0767634A JPH0767634A JP21433893A JP21433893A JPH0767634A JP H0767634 A JPH0767634 A JP H0767634A JP 21433893 A JP21433893 A JP 21433893A JP 21433893 A JP21433893 A JP 21433893A JP H0767634 A JPH0767634 A JP H0767634A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- inactivated
- vaccine
- oral vaccine
- chicken
- virus
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】 不活化病原体を用いて、鶏の感染症の予防に
有効な免疫誘導を与えることができる経口ワクチンを提
供する。 【構成】 ホルマリンにより不活化した鶏伝染性ファブ
リキウス嚢病ウイルスを主成分として経口ワクチンを製
造する。
有効な免疫誘導を与えることができる経口ワクチンを提
供する。 【構成】 ホルマリンにより不活化した鶏伝染性ファブ
リキウス嚢病ウイルスを主成分として経口ワクチンを製
造する。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、不活化病原体を用い
て、鶏の感染症の予防に有効な免疫誘導を与えることが
できる経口ワクチンに関するものである。
て、鶏の感染症の予防に有効な免疫誘導を与えることが
できる経口ワクチンに関するものである。
【0002】
【発明の背景及び従来の技術】鶏の感染症は、生又は不
活化された病原体のワクチンにより予防されている。そ
の投与方法は、生ワクチンでは種々の方法が採用されて
いるが、不活化ワクチンでは通常、注射による方法が採
用されていて、経口投与による方法は用いられていな
い。また鶏の感染症に対する経口ワクチンは、具体的な
鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウイルス、ニューカッスル
病ウイルス、ヘモフィルスパラガリナラムA型について
は勿論のこと、一般的にも未だ全く提供されていない。
活化された病原体のワクチンにより予防されている。そ
の投与方法は、生ワクチンでは種々の方法が採用されて
いるが、不活化ワクチンでは通常、注射による方法が採
用されていて、経口投与による方法は用いられていな
い。また鶏の感染症に対する経口ワクチンは、具体的な
鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウイルス、ニューカッスル
病ウイルス、ヘモフィルスパラガリナラムA型について
は勿論のこと、一般的にも未だ全く提供されていない。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】しかし、不活化ワクチ
ンを用いた注射による投与は、1個体ずつ行わなければ
ならないため非常に手間がかかるという問題がある他、
また針を刺すという行為から鶏にストレスを与えること
になり、経済的な負担が大きいという問題がある。
ンを用いた注射による投与は、1個体ずつ行わなければ
ならないため非常に手間がかかるという問題がある他、
また針を刺すという行為から鶏にストレスを与えること
になり、経済的な負担が大きいという問題がある。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】本発明者は以上のよう
な従来技術の状況において、経口的な投与よって、鶏の
感染症に対する有効な免疫を誘導することができる不活
化経口ワクチンを提供することを目的としてなされたも
のである。
な従来技術の状況において、経口的な投与よって、鶏の
感染症に対する有効な免疫を誘導することができる不活
化経口ワクチンを提供することを目的としてなされたも
のである。
【0005】
【課題を解決するための手段】上記目的を実現した本発
明よりなる経口ワクチンの特徴の一つは、ホルマリンに
より不活化した鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウイルスを
主成分とするところにある。
明よりなる経口ワクチンの特徴の一つは、ホルマリンに
より不活化した鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウイルスを
主成分とするところにある。
【0006】また本発明の経口ワクチンの他の特徴は、
ホルマリン又はβ−プロピオラクトンにより不活化した
ニューカッスル病ウイルスを主成分とするところにあ
る。
ホルマリン又はβ−プロピオラクトンにより不活化した
ニューカッスル病ウイルスを主成分とするところにあ
る。
【0007】更に又本発明の経口ワクチンの特徴は、チ
メロサールにより不活化したヘモフィルスパラガリナラ
ムA型を主成分とするところにある。不活化剤としては
上記チメロサールに代えてホルマリン、β−プロピオラ
クトン、マーゾニンを用いることもできる。
メロサールにより不活化したヘモフィルスパラガリナラ
ムA型を主成分とするところにある。不活化剤としては
上記チメロサールに代えてホルマリン、β−プロピオラ
クトン、マーゾニンを用いることもできる。
【0008】不活化病原体を経口的に投与するところに
ある。
ある。
【0009】本発明の別の特徴は、上記した各経口ワク
チンの主成分である不活化病原体を、15mg/ml〜
60mg/ml、好ましくは30mg/ml程度の重曹
が添加された燐酸緩衝液に浮遊させて、免疫の効率を向
上させた経口ワクチンを提供するところにある。
チンの主成分である不活化病原体を、15mg/ml〜
60mg/ml、好ましくは30mg/ml程度の重曹
が添加された燐酸緩衝液に浮遊させて、免疫の効率を向
上させた経口ワクチンを提供するところにある。
【0010】
【実施例】以下本発明の実施例に基づいて説明するが、
本発明がこの実施例に限定されないことは言うまでもな
い。
本発明がこの実施例に限定されないことは言うまでもな
い。
【0011】実施例1濃縮後不活化鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウイルス(I
BDV)IQ株経口ワクチンの製造 ニワトリ胚繊維芽細胞にIBDV、IQ株(下記参照)
を接種して細胞変性の極期に培養上清を集めた。このウ
イルス液10LをコントロンTST28.38ローター
にて17000rpm,90分遠心し、その沈澱を燐酸
緩衝食塩液(PBS、pH7.2)50mlに浮遊させ
た。次ぎに0.2%になるようにホルマリンを加え、3
7℃で48時間不活化し、その後、使用まで4℃の冷蔵
庫に保存した。 (IBDV、IQ株;細胞順化株) 日生研IBD不活化ワクチン(商品名;日生研株式会社
製)に使用されている株 実施例2不活化IBDV、IQ株経口ワクチンの製造 ニワトリ胚繊維芽細胞にIBDV、IQ株を接種して細
胞変性の極期に培養上清を集めた。このウイルス液にホ
ルマリンを0.2%になるように加え、38℃で48時
間不活化し、その後、使用まで4℃の冷蔵庫に保存し
た。
BDV)IQ株経口ワクチンの製造 ニワトリ胚繊維芽細胞にIBDV、IQ株(下記参照)
を接種して細胞変性の極期に培養上清を集めた。このウ
イルス液10LをコントロンTST28.38ローター
にて17000rpm,90分遠心し、その沈澱を燐酸
緩衝食塩液(PBS、pH7.2)50mlに浮遊させ
た。次ぎに0.2%になるようにホルマリンを加え、3
7℃で48時間不活化し、その後、使用まで4℃の冷蔵
庫に保存した。 (IBDV、IQ株;細胞順化株) 日生研IBD不活化ワクチン(商品名;日生研株式会社
製)に使用されている株 実施例2不活化IBDV、IQ株経口ワクチンの製造 ニワトリ胚繊維芽細胞にIBDV、IQ株を接種して細
胞変性の極期に培養上清を集めた。このウイルス液にホ
ルマリンを0.2%になるように加え、38℃で48時
間不活化し、その後、使用まで4℃の冷蔵庫に保存し
た。
【0012】実施例3不活化IBDV、91−6株経口ワクチンの製造 5週齢のSPFラインMニワトリに91−6株IBDV
(下記参照)を経口的に接種し、感染ニワトリのファブ
リキウス嚢を取り出し、細切した後、等量のPBS(前
出)を加えてホモジナイズし、遠心にて組織の破片等を
除いた上清に0.2%になるようにホルマリンを加え、
37℃で48時間不活化し、その後、使用まで4℃の冷
蔵庫に保存した。 (91−6株;高度病原性株) [Z.Lin ,A.Kato,Y.Otaki ,T.Nakamura,E.Sasmaz,
and S.Ueda. Sequencecomparisons of a highly virul
ent infectious bursal disease virusprevalent in Ja
pan. Avian Diseases. 37:315-323,1993. T.Nakamura,A.Kato,Z.Lin ,T.Nunoya,Y.Otaki ,an
d S.Ueda. A rapidquantitative method for detecti
ng infectious bursal disease virus usingpolystyren
e latex microsepheres. J.Virol. Mehods,43:123-13
0,1993 ] 実施例4不活化ニューカッスル病ウイルス(NDV)経口ワクチ
ンの製造 発育鶏卵に佐藤株NDV(下記参照)を接種し、感染し
た胎児を取り出して、細切し、4倍量のPBS(前出)
加えてホモジナイズし、濾紙にて組織の破片等を除去し
た液に、0.3%になるようにホルマリンを加え、37
℃で48時間不活化し、その後、使用まで4℃の冷蔵庫
に保存した。 (佐藤株NDV;強毒株) [ネオ日生研ニューカスル不活化ワクチン(商品名;日
生研株式会社製)に使用されている株] 実施例5不活化後濃縮NDV経口ワクチンの製造 実施例4の不活化ウイルス5L液をベックマンタイプ1
9ローターで18500rpm,150分遠心し、その
沈澱を50mlのPBS(前出)で浮遊し、その後、使
用まで4℃の冷蔵庫に保存した。
(下記参照)を経口的に接種し、感染ニワトリのファブ
リキウス嚢を取り出し、細切した後、等量のPBS(前
出)を加えてホモジナイズし、遠心にて組織の破片等を
除いた上清に0.2%になるようにホルマリンを加え、
37℃で48時間不活化し、その後、使用まで4℃の冷
蔵庫に保存した。 (91−6株;高度病原性株) [Z.Lin ,A.Kato,Y.Otaki ,T.Nakamura,E.Sasmaz,
and S.Ueda. Sequencecomparisons of a highly virul
ent infectious bursal disease virusprevalent in Ja
pan. Avian Diseases. 37:315-323,1993. T.Nakamura,A.Kato,Z.Lin ,T.Nunoya,Y.Otaki ,an
d S.Ueda. A rapidquantitative method for detecti
ng infectious bursal disease virus usingpolystyren
e latex microsepheres. J.Virol. Mehods,43:123-13
0,1993 ] 実施例4不活化ニューカッスル病ウイルス(NDV)経口ワクチ
ンの製造 発育鶏卵に佐藤株NDV(下記参照)を接種し、感染し
た胎児を取り出して、細切し、4倍量のPBS(前出)
加えてホモジナイズし、濾紙にて組織の破片等を除去し
た液に、0.3%になるようにホルマリンを加え、37
℃で48時間不活化し、その後、使用まで4℃の冷蔵庫
に保存した。 (佐藤株NDV;強毒株) [ネオ日生研ニューカスル不活化ワクチン(商品名;日
生研株式会社製)に使用されている株] 実施例5不活化後濃縮NDV経口ワクチンの製造 実施例4の不活化ウイルス5L液をベックマンタイプ1
9ローターで18500rpm,150分遠心し、その
沈澱を50mlのPBS(前出)で浮遊し、その後、使
用まで4℃の冷蔵庫に保存した。
【0013】実施例6不活化鶏伝染性コリーザ(IC、Haemophilus paragall
inarum)A型経口ワクチンの製造 ヘモフィルスパラガリナラム(Haemophilus paragallin
arum) A型の221株(下記参照)を倍地にて37
℃,20時間培養した後、8000rpmで30分遠心
し,その沈澱を、菌数が2.5×1010になるようにP
BS(前出)に浮遊し、0.01%になるようにチメロ
サールを加えて不活化し、その後、使用まで4℃の冷蔵
庫に保存した。 (221株) [日生研コリーザワクチン(商品名;日生研株式会社
製)に使用されている株 Otauki,K. and Y.Iritani. Preparation and immunolo
gical response to anew mixed vaccine composed of i
nactivated Newcastle disease virus ,inactivated i
nfectious bronchitis virus ,and inactivated Haemo
philusgallinarum. Avian Diseases. 18:297-304,197
4] 以上のようにして製造した各経口ワクチンについて、以
下の試験を行なった。なお、実験例1〜3については不
活化後ラテックス凝集価を下記方法に準拠して測定す
ると共に、IBDVに対する抗体価を下記方法に準拠
して測定した。 IBDVのラテックス凝集反応による抗原量の測定
法 [T.Nakamura,A.Kato,Z.Lin ,T.Nunoya,Y.Otaki, a
nd S.Ueda A rapidquantitative method for detecti
ng infectious bursal disease virus usingpolystyren
e latex microsepheres. J.Virol. Mehods,43:123-13
0,1993 ] IBDVのラテックス凝集阻害反応による抗体価の
測定法 [T.Nakamura,Y.Otaki ,Z.Lin, and A.Kato. Rapid a
nd quantitative assaysystem for measuring anti-inf
ectious bursal disease virus antibody usingmonoclo
nal antibody bound polystylene latex microspheres.
Avian Diseases ,37:1993 ] 試験例1:不活化濃縮IBDV経口ワクチンの抗体誘導
能及び感染防御試験 濃縮不活化前ウイルス価が107.8 PFU/ml(不活
化後のラテックス凝集価が32/0.0lml)の実施
例1のウイルス液の原液0.3mlを重曹(NaHCO
3 )を1ml当り30mg含んだ燐酸緩衝生理食塩液
(PBS、重曹添加前pH7.2、添加後pH8.2、
以下同じ)で希釈し5mlとして、SPFニワトリ(ラ
インM、3週齢)に1週間隔で3回経口的に投与した。
同様のウイルス原液0.3mlを等量の完全フロインド
アジュバントと混合乳化し、1週間隔で3回筋肉内に注
射した。最終免疫2週後に採血し、血清の抗体価をラテ
ックス凝集阻害反応で測定した。採血直後にIBDV、
I株(下記参照)(103.8EID50)を経口投与攻撃
してファブリキウス嚢の病変を組織学的に調ベた。結果
を表1に示す。
inarum)A型経口ワクチンの製造 ヘモフィルスパラガリナラム(Haemophilus paragallin
arum) A型の221株(下記参照)を倍地にて37
℃,20時間培養した後、8000rpmで30分遠心
し,その沈澱を、菌数が2.5×1010になるようにP
BS(前出)に浮遊し、0.01%になるようにチメロ
サールを加えて不活化し、その後、使用まで4℃の冷蔵
庫に保存した。 (221株) [日生研コリーザワクチン(商品名;日生研株式会社
製)に使用されている株 Otauki,K. and Y.Iritani. Preparation and immunolo
gical response to anew mixed vaccine composed of i
nactivated Newcastle disease virus ,inactivated i
nfectious bronchitis virus ,and inactivated Haemo
philusgallinarum. Avian Diseases. 18:297-304,197
4] 以上のようにして製造した各経口ワクチンについて、以
下の試験を行なった。なお、実験例1〜3については不
活化後ラテックス凝集価を下記方法に準拠して測定す
ると共に、IBDVに対する抗体価を下記方法に準拠
して測定した。 IBDVのラテックス凝集反応による抗原量の測定
法 [T.Nakamura,A.Kato,Z.Lin ,T.Nunoya,Y.Otaki, a
nd S.Ueda A rapidquantitative method for detecti
ng infectious bursal disease virus usingpolystyren
e latex microsepheres. J.Virol. Mehods,43:123-13
0,1993 ] IBDVのラテックス凝集阻害反応による抗体価の
測定法 [T.Nakamura,Y.Otaki ,Z.Lin, and A.Kato. Rapid a
nd quantitative assaysystem for measuring anti-inf
ectious bursal disease virus antibody usingmonoclo
nal antibody bound polystylene latex microspheres.
Avian Diseases ,37:1993 ] 試験例1:不活化濃縮IBDV経口ワクチンの抗体誘導
能及び感染防御試験 濃縮不活化前ウイルス価が107.8 PFU/ml(不活
化後のラテックス凝集価が32/0.0lml)の実施
例1のウイルス液の原液0.3mlを重曹(NaHCO
3 )を1ml当り30mg含んだ燐酸緩衝生理食塩液
(PBS、重曹添加前pH7.2、添加後pH8.2、
以下同じ)で希釈し5mlとして、SPFニワトリ(ラ
インM、3週齢)に1週間隔で3回経口的に投与した。
同様のウイルス原液0.3mlを等量の完全フロインド
アジュバントと混合乳化し、1週間隔で3回筋肉内に注
射した。最終免疫2週後に採血し、血清の抗体価をラテ
ックス凝集阻害反応で測定した。採血直後にIBDV、
I株(下記参照)(103.8EID50)を経口投与攻撃
してファブリキウス嚢の病変を組織学的に調ベた。結果
を表1に示す。
【0014】
【表1】
【0015】表1によれば、本発明の不活化ワクチンを
経口投与された全てのニワトリで明かな抗体産生が認め
られ、かつ感染防御(ファブリキウス嚢の組織病変が観
察されない)することがわかった。 (I株;病原性株) [T.Nunoya,Y.Otaki ,M.Tajima,M.Hiraga,and T.Sa
ito. Occurrence ofacute infectious bursal diseas
e with high mortality in Japan andpathogenicity of
field isolates in specific-pathogen-free chicken
s.Avian Diseaes ,36:597-609,1992。 Z.Lin ,A.Kato,Y.Otaki ,T.Nakamura,E.Sasmaz,an
d S.Ueda. Sequencecomparisons of a highly virulen
t infectious bursal disease virusprevalent in Japa
n. Avian Diseases. 37:315-323,1993] 試験例2:不活化IBDV経口ワクチンの投与回数及び
重曹の効果の検討 不活化前ウイルス価が約107.3 EID50/ml(不活
化後のラテックス凝集価が64/0.0lml)の実施
例3のウイルス液の原液0.25mlを重曹(NaHC
03 )を1ml当り30mg含んだ燐酸緩衝生理食塩液
(PBS、pH7.2)で希釈し5mlとして、SPF
ニワトリ(ラインM、3週齢)に1〜3回経口的に投与
した。3回の場合は1週間隔で、2回の場合は1週間隔
(0及びl週目:A)と2週間隔(0及び2週目:B)
でワクチンを投与した。陽性対照として市販の不活化ワ
クチンを1回筋肉内に注射した。初回免疫4週後に採血
し、血清の抗体価をラテックス凝集阻害反応で測定し
た。採血直後にIBDV、90−11株(下記参照)
(104.5 EID50)を経口投与攻撃して生死及びファ
ブリキウス嚢の病変を組織学的に調べた。結果を表2に
示す。
経口投与された全てのニワトリで明かな抗体産生が認め
られ、かつ感染防御(ファブリキウス嚢の組織病変が観
察されない)することがわかった。 (I株;病原性株) [T.Nunoya,Y.Otaki ,M.Tajima,M.Hiraga,and T.Sa
ito. Occurrence ofacute infectious bursal diseas
e with high mortality in Japan andpathogenicity of
field isolates in specific-pathogen-free chicken
s.Avian Diseaes ,36:597-609,1992。 Z.Lin ,A.Kato,Y.Otaki ,T.Nakamura,E.Sasmaz,an
d S.Ueda. Sequencecomparisons of a highly virulen
t infectious bursal disease virusprevalent in Japa
n. Avian Diseases. 37:315-323,1993] 試験例2:不活化IBDV経口ワクチンの投与回数及び
重曹の効果の検討 不活化前ウイルス価が約107.3 EID50/ml(不活
化後のラテックス凝集価が64/0.0lml)の実施
例3のウイルス液の原液0.25mlを重曹(NaHC
03 )を1ml当り30mg含んだ燐酸緩衝生理食塩液
(PBS、pH7.2)で希釈し5mlとして、SPF
ニワトリ(ラインM、3週齢)に1〜3回経口的に投与
した。3回の場合は1週間隔で、2回の場合は1週間隔
(0及びl週目:A)と2週間隔(0及び2週目:B)
でワクチンを投与した。陽性対照として市販の不活化ワ
クチンを1回筋肉内に注射した。初回免疫4週後に採血
し、血清の抗体価をラテックス凝集阻害反応で測定し
た。採血直後にIBDV、90−11株(下記参照)
(104.5 EID50)を経口投与攻撃して生死及びファ
ブリキウス嚢の病変を組織学的に調べた。結果を表2に
示す。
【0016】
【表2】
【0017】表2によれば、本発明の不活化ワクチンを
2回以上経口投与された全てのニワトリで明かな抗体産
生が認められ、かつ感染防御(ファブリキウス嚢の組織
病変が観察されない)することがわかった。また市販ワ
クチンと同等以上の抗体価が誘導されることが明かとな
った。1回経口投与群でも5羽中4羽で抗体が上昇し、
かつ感染防御した。重曹非添加のワクチン投与でも強い
抵抗生が認められたが、抗体価は添加ワクチンより低か
った。即ち重曹の効果が認められた。投与回数では1週
間隔3回投与群と2週間隔2回投与群の抗体価がほぼ同
等であった。 (90−11株;高度病原性株) [T.Nunoya,Y.Otaki ,M.Tajima,M.Hiraga,and T.Sa
ito. Occurrence ofacute infectious bursal disease
with high mortality in Japan andpathogenicity of f
ield isolates in specific-pathogen-free chickens.A
vian Diseaes ,36:597-609,1992。 T.Nakamura,Y.Otaki ,and T.Nunoya. Immunosuppre
ssive effct of ahighly virulent infectious bursal
disease virus isolated in Japan.Avian Diseases. 3
6:891-896,1992] 試験例3:不活化IBDV経口ワクチンの抗原量の検討 不活化前ウイルス価が約107.3 EID50/ml(不活
化後のラテックス凝集価が64/0.0lml)の実施
例3のウイルス液の原液をそれぞれ0.25ml、1/
4×0.25ml、1/16×0.25mlおよび1/
64×0.25mlを重曹を1ml当り30mg含んだ
PBSで希釈し5mlとして、SPFニワトリ(ライン
M、3週齢)に2週間隔で2回投与した。また不活化前
ウイルス価が107.1 PFU/mlの実施例2のウイル
ス液の原液1mlを重曹を1ml当り30mg含んだP
BSで希釈し5mlとして、SPFニワトリ(ライン
M、3週齢)に2週間隔で2回投与した。陽性対照とし
て市販の不活化ワクチンを2回筋肉内に注射した。初回
免疫4週後に採血し、血清の抗体価をラテックス凝集阻
害反応で測定した。採血直後にIBDV、90−11株
(104.5 EID50)を経口投与攻撃して生死及びファ
ブリキウス嚢の病変を組織学的に調べた。結果を第3表
に示す。
2回以上経口投与された全てのニワトリで明かな抗体産
生が認められ、かつ感染防御(ファブリキウス嚢の組織
病変が観察されない)することがわかった。また市販ワ
クチンと同等以上の抗体価が誘導されることが明かとな
った。1回経口投与群でも5羽中4羽で抗体が上昇し、
かつ感染防御した。重曹非添加のワクチン投与でも強い
抵抗生が認められたが、抗体価は添加ワクチンより低か
った。即ち重曹の効果が認められた。投与回数では1週
間隔3回投与群と2週間隔2回投与群の抗体価がほぼ同
等であった。 (90−11株;高度病原性株) [T.Nunoya,Y.Otaki ,M.Tajima,M.Hiraga,and T.Sa
ito. Occurrence ofacute infectious bursal disease
with high mortality in Japan andpathogenicity of f
ield isolates in specific-pathogen-free chickens.A
vian Diseaes ,36:597-609,1992。 T.Nakamura,Y.Otaki ,and T.Nunoya. Immunosuppre
ssive effct of ahighly virulent infectious bursal
disease virus isolated in Japan.Avian Diseases. 3
6:891-896,1992] 試験例3:不活化IBDV経口ワクチンの抗原量の検討 不活化前ウイルス価が約107.3 EID50/ml(不活
化後のラテックス凝集価が64/0.0lml)の実施
例3のウイルス液の原液をそれぞれ0.25ml、1/
4×0.25ml、1/16×0.25mlおよび1/
64×0.25mlを重曹を1ml当り30mg含んだ
PBSで希釈し5mlとして、SPFニワトリ(ライン
M、3週齢)に2週間隔で2回投与した。また不活化前
ウイルス価が107.1 PFU/mlの実施例2のウイル
ス液の原液1mlを重曹を1ml当り30mg含んだP
BSで希釈し5mlとして、SPFニワトリ(ライン
M、3週齢)に2週間隔で2回投与した。陽性対照とし
て市販の不活化ワクチンを2回筋肉内に注射した。初回
免疫4週後に採血し、血清の抗体価をラテックス凝集阻
害反応で測定した。採血直後にIBDV、90−11株
(104.5 EID50)を経口投与攻撃して生死及びファ
ブリキウス嚢の病変を組織学的に調べた。結果を第3表
に示す。
【0018】
【表3】
【0019】表3によれば、本発明の実施例2の不活化
ワクチンを2回投与された全てのニワトリで明かな抗体
産生が認められ、かつ5羽中4羽で感染防御することが
わかつた。また実施例3の不活化ワクチンでは1回当り
の投与量を1/4×0.25mlにしても市販ワクチン
と同等程度の抗体価が誘導され、かつ全てのニワトリが
感染防御することが明かとなった。
ワクチンを2回投与された全てのニワトリで明かな抗体
産生が認められ、かつ5羽中4羽で感染防御することが
わかつた。また実施例3の不活化ワクチンでは1回当り
の投与量を1/4×0.25mlにしても市販ワクチン
と同等程度の抗体価が誘導され、かつ全てのニワトリが
感染防御することが明かとなった。
【0020】試験例4:不活化NDV経口ワクチンの感
染防御試験 不活化前ウイルス価が109.1 EID50/mlの実施例
4のウイルス液の原液2.5重曹を1ml当り60mg
含んだPBSで希釈し5mlとして、SPFニワトリ
(ラインM、30日齢)に2週間隔で2回投与した。ま
た実施例5のウイルス液の原液2.5mlを重曹を1m
l当り60mg含んだPBSで希釈し5mlとして、S
PFニワトリに同様に投与した。陽性対照として市販の
不活化ワクチンを2回筋肉内に注射した。初回免疫4週
後に採血し、血清の抗体価を、ニューカッスル病ウイル
ス赤血球凝集素(日生研株式会社製)を用いて赤血球凝
集阻害反応で測定した。採血直後にNDV佐藤株(10
4.5 EID50)を筋肉内接種攻撃して生死を調べた。結
果を表4に示す。
染防御試験 不活化前ウイルス価が109.1 EID50/mlの実施例
4のウイルス液の原液2.5重曹を1ml当り60mg
含んだPBSで希釈し5mlとして、SPFニワトリ
(ラインM、30日齢)に2週間隔で2回投与した。ま
た実施例5のウイルス液の原液2.5mlを重曹を1m
l当り60mg含んだPBSで希釈し5mlとして、S
PFニワトリに同様に投与した。陽性対照として市販の
不活化ワクチンを2回筋肉内に注射した。初回免疫4週
後に採血し、血清の抗体価を、ニューカッスル病ウイル
ス赤血球凝集素(日生研株式会社製)を用いて赤血球凝
集阻害反応で測定した。採血直後にNDV佐藤株(10
4.5 EID50)を筋肉内接種攻撃して生死を調べた。結
果を表4に示す。
【0021】
【表4】
【0022】表4によれば、実施例4及び5のワクチン
を経口投与されたニワトリでは部分的ではあるが抗体産
生が認められ、かつ感染防御することがわかった。
を経口投与されたニワトリでは部分的ではあるが抗体産
生が認められ、かつ感染防御することがわかった。
【0023】試験例5:不活化IC経口ワクチンの感染
防御試験 菌数が2.5×l010mlの実施例6の菌液の原液のそ
れぞれ0.4ml、0.04ml及び0.004ml
(順に1010、109 、及び108 の菌が含まれてい
る)を重曹を1ml当り30mg含んだPBSで希釈し
5mlとして、SPFニワトリ(ラインM、6週齢)に
2週間隔で2回経口投与した。。陽性対照として不活化
ワクチンを1回筋肉内に注射した。初回免疫4週後に採
血し、血清の抗体価を、コリーザA型HA抗原「NP」
(日本ファマシー株式会社製)を用いて赤血球凝集阻害
反応で測定した。採血直後にヘモフィルスパラガリナラ
ム A型221株(菌数3×l06 )を点鼻接種攻撃
し、1週間観察した。発症は鼻汁あるいは顔面の腫脹に
て判定した。菌分離は鼻汁を出したニワトリについては
鼻汁より行い、鼻汁を出さなかったニワトリ及び鼻汁か
ら菌分離されなかったニワトリについては攻撃1週後に
眼窩下洞よりスワブを採取して行った。結果を表5に示
す。
防御試験 菌数が2.5×l010mlの実施例6の菌液の原液のそ
れぞれ0.4ml、0.04ml及び0.004ml
(順に1010、109 、及び108 の菌が含まれてい
る)を重曹を1ml当り30mg含んだPBSで希釈し
5mlとして、SPFニワトリ(ラインM、6週齢)に
2週間隔で2回経口投与した。。陽性対照として不活化
ワクチンを1回筋肉内に注射した。初回免疫4週後に採
血し、血清の抗体価を、コリーザA型HA抗原「NP」
(日本ファマシー株式会社製)を用いて赤血球凝集阻害
反応で測定した。採血直後にヘモフィルスパラガリナラ
ム A型221株(菌数3×l06 )を点鼻接種攻撃
し、1週間観察した。発症は鼻汁あるいは顔面の腫脹に
て判定した。菌分離は鼻汁を出したニワトリについては
鼻汁より行い、鼻汁を出さなかったニワトリ及び鼻汁か
ら菌分離されなかったニワトリについては攻撃1週後に
眼窩下洞よりスワブを採取して行った。結果を表5に示
す。
【0024】
【表5】
【0025】表5によれば、実施例6のワクチンを1羽
1回当たり1010菌経口投与されたニワトリでは6羽中
5羽で抗体の上昇が認められ、6羽全てが感染防御する
ことが明かとなった。
1回当たり1010菌経口投与されたニワトリでは6羽中
5羽で抗体の上昇が認められ、6羽全てが感染防御する
ことが明かとなった。
【0026】
【発明の効果】以上のように、本発明の不活化経口ワク
チンを用いて、従来の不活化ワクチンの注射による免疫
と同等の免疫誘導を得ることができる効果がある。
チンを用いて、従来の不活化ワクチンの注射による免疫
と同等の免疫誘導を得ることができる効果がある。
【0027】したがって、従来、いずれも注射によって
筋肉内に投与されていた鶏伝染性ファブリキウス嚢病、
ニューカッスル病、及び鶏伝染性コリーザの不活化ワク
チンは、本発明の不活化経口ワクチンの経口投与によっ
てそれぞれの病原体に対する抗体を誘導して、感染症を
有効に予防することができ、鶏にストレスを与えず、か
つ省力化した投与が可能となる効果が得られる。
筋肉内に投与されていた鶏伝染性ファブリキウス嚢病、
ニューカッスル病、及び鶏伝染性コリーザの不活化ワク
チンは、本発明の不活化経口ワクチンの経口投与によっ
てそれぞれの病原体に対する抗体を誘導して、感染症を
有効に予防することができ、鶏にストレスを与えず、か
つ省力化した投与が可能となる効果が得られる。
Claims (3)
- 【請求項1】 不活化した鶏伝染性ファブリキウス嚢病
ウイルスを主成分とする鶏伝染性ファブリキウス嚢病の
予防用経口ワクチン。 - 【請求項2】 不活化したニューカッスル病ウイルスを
主成分とするニューカッスル病の予防用経口ワクチン。 - 【請求項3】 不活化したヘモフィルスパラガリナラム
A型を主成分とする鶏伝染性コリーザA型の予防用経口
ワクチン。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21433893A JPH0767634A (ja) | 1993-08-30 | 1993-08-30 | 不活化病原体の鶏用経口ワクチン |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21433893A JPH0767634A (ja) | 1993-08-30 | 1993-08-30 | 不活化病原体の鶏用経口ワクチン |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0767634A true JPH0767634A (ja) | 1995-03-14 |
Family
ID=16654112
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP21433893A Pending JPH0767634A (ja) | 1993-08-30 | 1993-08-30 | 不活化病原体の鶏用経口ワクチン |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0767634A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6084670A (en) * | 1997-03-11 | 2000-07-04 | Nihon Kohden Corporation | Particle analyzer and composite lens formed by integrally joining plural lens elements of different focal points |
JP2019214555A (ja) * | 2018-06-06 | 2019-12-19 | 株式会社ManaHS | ウイルス感染症予防用組成物 |
-
1993
- 1993-08-30 JP JP21433893A patent/JPH0767634A/ja active Pending
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6084670A (en) * | 1997-03-11 | 2000-07-04 | Nihon Kohden Corporation | Particle analyzer and composite lens formed by integrally joining plural lens elements of different focal points |
US6157500A (en) * | 1997-03-11 | 2000-12-05 | Nihon Kohden Corporation | Particle analyzer and composite lens formed by integrally joining plural lens elements of different focal points |
US6409141B1 (en) | 1997-03-11 | 2002-06-25 | Nihon Kohden Corporation | Particle analyzer and composite lens formed by integrally joining plural lens elements of different focal points |
JP2019214555A (ja) * | 2018-06-06 | 2019-12-19 | 株式会社ManaHS | ウイルス感染症予防用組成物 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0329264B1 (en) | Veterinary vaccines | |
US4567043A (en) | Canine corona virus vaccine | |
JP3650634B2 (ja) | 家禽用ワクチン | |
BRPI0720667A2 (pt) | Métodos de administração de vacina | |
CA2078605C (en) | Chicken anaemia agent vaccine | |
US6951650B1 (en) | Antigenic class of avian reoviruses | |
JPH07121873B2 (ja) | 鳥感染性気管支炎ワクチン | |
EP2356143A1 (en) | Vaccine compositions | |
JPH0767634A (ja) | 不活化病原体の鶏用経口ワクチン | |
JP2521226B2 (ja) | 犬用多種混合ワクチン | |
US11541115B2 (en) | Triple vaccine against avibacterium paragallinarum and avian encephalomyelitis virus and fowl pox virus | |
US3562387A (en) | Mink virus enteritis vaccine and method for the production thereof | |
AU620819B2 (en) | Vaccine for protection of cats against feline infectious peritonitis | |
WO2014061914A1 (ko) | 전염성기관지염 바이러스 k40/09주 및 이를 이용한 전염성 기관지염 백신 | |
JPH05194266A (ja) | ネコの呼吸器疾患ワクチン | |
Coria | Protective effect of an inactivated avian coronavirus vaccine administered by aerosol | |
JPH07228542A (ja) | 不活化病原体の鶏用気管内投与ワクチン | |
WO2023230479A1 (en) | Combined vaccine containing infectious bronchitis virus attenuated massachusetts and recombinant lasota virus expressing arkansas spike | |
JP2023506304A (ja) | 経口呼吸器ワクチン | |
US20030175302A1 (en) | Avian pneumovirus vaccine | |
van den Ende | Active immunization against virus diseases in man | |
MXPA96005503A (en) | Improved vaccine of sinbotial virus respiratory debovino (brsv) live, modification | |
JPS6391329A (ja) | A型肝炎ワクチン | |
NL8005083A (nl) | Infectieuze bronchitis vaccins voor pluimvee en werkwijze voor het bereiden van dergelijke vaccins. |