JPH0734699U - Aerobic culture container - Google Patents
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Abstract
(57)【要約】 （修正有）
【目的】 セルロース生産菌（酢酸菌）等の好気性微生
物の静置培養を、効率よく行うため、空気に直接触れる
培養容器上面の培地表面からだけでなく、容器底面およ
び側壁面からも酸素の供給を受け、全ての液面から培養
が進行するような容器であって、且つ容器自体の大量生
産が可能な好気培養容器を提供する。
【構成】 多孔質材料または繊維質材料からなる通気性
容器２の内面に、酸素透過係数が１×10-8cm3(STP)・cm/
cm2・sec・cmHg以上の非多孔質膜３を少なくとも１層形成
してなることを特徴とする好気培養容器１。
(57) [Summary] (Modified) [Purpose] In order to efficiently perform static culture of aerobic microorganisms such as cellulose-producing bacteria (acetic acid bacteria), not only from the surface of the culture medium directly in contact with the air, but also from the medium surface. Provided is an aerobic culture container which is supplied with oxygen from the bottom surface and side wall surface of the container and in which culture proceeds from all liquid surfaces, and which is capable of mass production of the container itself. [Constitution] The oxygen permeability coefficient is 1 × 10 −8 cm 3 (STP) · cm / on the inner surface of the breathable container 2 made of a porous material or a fibrous material.
An aerobic culture vessel 1 comprising at least one layer of a non-porous membrane 3 of cm 2 · sec · cmHg or more.
Description
【０００１】[0001]
本考案は、セルロース生産菌（酢酸菌）等の好気性微生物の静置培養を効率よ く行なうための改良された好気培養容器に関する。 The present invention relates to an improved aerobic culture container for efficiently performing stationary culture of aerobic microorganisms such as cellulose-producing bacteria (acetic acid bacteria).
【０００２】[0002]
最近、微生物により生産されたセルロース（以下、バイオセルロースと呼ぶ） が注目されている。バイオセルロースは、食用酢原料と同様に酢酸菌により生産 される。バイオセルロースの合成酵素は酢酸菌の菌体表面付近にあり、ここから 分子レベルに近い微小セルロースが発生し、これがリボンのようにより合わさっ て結晶化したセルロース繊維が菌体細胞外に排出される。 バイオセルロースの特徴は、繊維径が20〜50nmという超極細で、高純度であり 、結晶化度や配向性が高く、天然セルロースと比べ、剛性等の機械的特性が優れ ているなどの特徴がある。この特徴をさらに述べると、機械的特性をヤング率で 比較すると、天然セルロースや合成樹脂、合成繊維が 300〜500kgf/mm2であるの に対して、バイオセルロースは3,000kgf/mm2という高い値を示し、このフィルム をヘッドホンの音響振動板に用いると、高音域がよく聞こえ、かつ金属板のよう な残響も少ないため、低音域から高音域までカバーできる理想的な材料となる。 製紙原料として天然セルロース（パルプ）に混ぜると紙の強度が増し、薄くても 破れにくい紙ができ、且つパルプ使用量が減るため森林保全即ち環境保全にも役 立つ。また、不純物を含まないため、食品分野ではこれを原料の一部とする溶け にくいアイスクリームを作ることができ、医療分野では栄養剤や火傷の創傷被覆 剤への応用も可能である。Recently, attention has been paid to cellulose produced by microorganisms (hereinafter referred to as biocellulose). Biocellulose is produced by acetic acid bacteria like the raw material for edible vinegar. The biocellulose synthase is located near the cell surface of the acetic acid bacterium, and microcellulose near the molecular level is generated from this, and the cellulose fibers that are crystallized by combining like microfibers are discharged outside the cell of the cell. The characteristics of biocellulose include ultrafine fibers with a diameter of 20 to 50 nm, high purity, high crystallinity and orientation, and superior mechanical properties such as rigidity compared to natural cellulose. is there. Further by way of this feature, a comparison of mechanical properties in Young's modulus, natural cellulose or synthetic resin, while the synthetic fibers are 300~500kgf / mm 2, biocellulose is as high as 3,000kgf / mm 2 value When this film is used for the acoustic diaphragm of headphones, it can be heard in the high range well and has little reverberation like a metal plate, making it an ideal material that can cover from the low range to the high range. When mixed with natural cellulose (pulp) as a raw material for papermaking, the strength of the paper increases, making paper that is not easily torn even if it is thin, and reducing the amount of pulp used helps forest conservation, that is, environmental protection. In addition, since it does not contain impurities, it can be used to make ice cream that is difficult to melt in the food field, and can be applied to nutritional supplements and wound dressings for burns in the medical field.
【０００３】 さて、微生物は水、無機物及び、窒素化合物、アミノ酸等の有機物から構成さ れ、後述する必須元素からなる培地を、微生物の主要栄養素として繁殖するが、 酸素は微生物の吸収（呼吸）と密接な関係があり、微生物の種類により、遊離の 酸素を利用するものと、酸素含有化合物の形で利用するものとが存在する。また 、酸素が存在すると生育しない微生物と、酸素が生育に絶対必要な微生物とに分 類される。 すなわち、酸素のない環境でのみ生育する酪酸菌や破傷風菌、ボトリヌス菌等 は、嫌気性微生物と呼ばれ、これらは炭水化物やタンパク質などの酸素を含む化 合物の分解によって間接的に酸素を利用して生育する。 乳酸菌、大腸菌、酵母等は、酸素の存在下ではこれを利用して発育するが酸素 非存在下でも発育できるもので、酸素の存在下では呼吸により、非存在下では発 酵によりエネルギーを獲得するものでこれらは、好気嫌気性菌と呼ばれる。 また生育にあたり酸素を絶対に必要とし、酸素が欠乏すると生育が完全に停止 するカビ等の微生物は好気性微生物と呼ばれる。好気性微生物は酸素の存在下で のみ呼吸によりエネルギーを獲得できるもので、これは培地の表面に生育する性 質があるため、ペニシリン（ペニシリウム・ノタツム菌により生産される）を生 産するような場合は、タンク内の培地中に大量の無菌空気（酸素）を吹き込んで 、ペニシリン生産菌を培地内に均一に増殖させる所謂「通気撹拌培養法」を用い て効率を高めるようにしている。なお、撹拌は培地中への酸素の溶解を促進させ るために行っている。Microorganisms are composed of water, inorganic substances, and organic substances such as nitrogen compounds and amino acids, and a medium consisting of the essential elements described later propagates as the main nutrients for the microorganisms, but oxygen is absorbed by the microorganisms (respiration). Depending on the type of microorganism, there are those that utilize free oxygen and those that utilize it in the form of oxygen-containing compounds. In addition, microorganisms that do not grow in the presence of oxygen and microorganisms that oxygen is absolutely necessary for growth are classified. That is, butyric acid bacteria, tetanus bacteria, and Botrynus bacteria that grow only in an oxygen-free environment are called anaerobic microorganisms, and they indirectly utilize oxygen by degrading oxygen-containing compounds such as carbohydrates and proteins. And grow. Lactic acid bacteria, Escherichia coli, yeasts, etc. grow in the presence of oxygen, but can grow even in the absence of oxygen. Energy is acquired by respiration in the presence of oxygen and by fermentation in the absence of oxygen. These are called aerobic and anaerobic bacteria. Microorganisms such as molds that absolutely require oxygen for growth and whose growth completely stops when oxygen is deficient are called aerobic microorganisms. Aerobic microorganisms can acquire energy by respiration only in the presence of oxygen, and because they have the property of growing on the surface of the medium, they produce penicillin (produced by Penicillium notatum). In this case, a large amount of sterile air (oxygen) is blown into the medium in the tank so that the penicillin-producing bacteria are uniformly grown in the medium, which is a so-called “aeration and agitation culture method” to increase the efficiency. The stirring is performed to accelerate the dissolution of oxygen in the medium.
【０００４】[0004]
微生物は、９種類の多量必須元素（Ｈ，Ｃ，Ｏ，Ｎ，Ｐ，Ｋ，Ｓ，Ｃａ，Ｍｇ ）と７種類の微量必須元素（Ｆｅ，Ｍｎ，Ｃｕ，Ｚｎ，Ｍｏ，Ｂ，Ｃｌ）を水、 ＣＯ2 、無機塩や、有機化合物や糖類の形で与えられ生育する。このような微生 物の栄養素の混合物を培地といい、通常、混合物の水溶液（液体培地）とするか または寒天などで固化した固体培地とする。 例えば、カルス培養のように植物細胞培養に使われるＭＳ（Murashige-Skoog ）培地は、水及び、ＫＮＯ3 、ＮＨ4 ＮＯ3 等の無機成分多量要素、ＦｅＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ、Ｎａ2 ・ＥＤＴＡ等の無機成分微量要素、ミオイノシトール、チミ ン塩酸塩等のビタミン類、及び炭素源としてシュークロースより構成される。 セルロースは、β−Ｄ−グルコピラノースがβ−１，４−グルコシド結合した ポリサッカライドであるが、食酢工場の醸造中の「もろみ」の表面に浮いたゲル 状物質を採取して得られる「コンニャク菌」と呼ばれる酢酸菌の一種であるアセ トバクター・キシリヌム菌やアセトバクター・パストリアヌス菌を、グルコース を始めとする単糖類やシュークロース等を炭素源とする培地で培養すると、菌体 細胞外にバイオセルロースを排出する。アセトバクター・キシリヌム菌やアセト バクター・パストリアヌス菌を次のような複合培地、すなわち水100cm3中に、Ｄ −グルコース１g ，ペプトン１g ，酵母エキス 0.3g ，ＮａＣｌ 0.2g ，Ｎａ2 ＨＰＯ4 （リン酸２ソーダ） 0.14g，クエン酸 0.035g からなる培地により静置 培養すると、菌は栄養源を細胞内に取り込み原形質の合成を行うための誘導期間 を経て、指数関数的に増殖する。バイオセルロース生産量もそれに従って増加す る。 セルロース・フィブリル（繊維）の成長速度は、培地 pH6.8、温度28℃で最大 となり、毎分 2.6μｍ、この値はグルコースが毎分 5,000個セルロース結合でつ ながることを意味している。Microorganisms consist of 9 kinds of essential elements (H, C, O, N, P, K, S, Ca, Mg) and 7 kinds of trace essential elements (Fe, Mn, Cu, Zn, Mo, B, Cl). Are grown in the form of water, CO 2 , inorganic salts, organic compounds and sugars. Such a mixture of nutrients of micro organisms is called a medium, and usually an aqueous solution (liquid medium) of the mixture or a solid medium solidified with agar or the like is used. For example, MS (Murashige-Skoog) medium used for plant cell culture such as callus culture contains water and a large amount of inorganic components such as KNO 3 , NH 4 NO 3 , FeSO 4 .7H 2 O, Na 2 .EDTA. It is composed of trace elements of inorganic components such as, vitamins such as myo-inositol and thymine hydrochloride, and sucrose as a carbon source. Cellulose is a polysaccharide in which β-D-glucopyranose is linked to β-1,4-glucoside, but it is obtained by collecting the gel-like substance floating on the surface of “moromi” during brewing at a vinegar factory, “konjac”. When Acetobacter xylinum or Acetobacter pastorianus, which is a type of acetic acid bacterium called `` bacteria '', is cultured in a medium containing glucose and other monosaccharides or sucrose as a carbon source, the bio-cells will be extracellular. Discharge the cellulose. Acetobacter xylinum and Acetobacter pastorianus were mixed in the following complex medium, namely 100 cm 3 of water, with 1 g of D-glucose, 1 g of peptone, 0.3 g of yeast extract, 0.2 g of Na 2 HPO 4 (phosphate). 2 Soda) When statically cultivated in a medium consisting of 0.14 g of citric acid and 0.035 g of citric acid, the bacterium grows exponentially after an induction period for incorporating a nutrient source into the cell and synthesizing a protoplast. Biocellulose production will increase accordingly. The growth rate of cellulose fibrils was highest at pH 6.8 and 28 ° C in the medium, and was 2.6 μm / min, which means that 5,000 glucose units per minute are bound by cellulose bonds. .
【０００５】 さて、このセルロース生産菌（酢酸菌）は、好気性微生物であり、ビーカー、 シャーレ等のガラス容器で静置培養すると、空気と接する培地表面にバイオセル ロース膜が生じる。このバイオセルロースの平均重合度は 2,000〜6,000 であり 、綿繊維の１次細胞壁を形成するセルロースの平均重合度に相当し、またバイオ セルロース膜の基本構造は、直径約４nmのミクロフィブリルであり、１菌体が生 産するフィブリルは複数のミクロフィブリルからできており、これが多数集まっ て膜を形成している。 このバイオセルロース膜は、培地表面から下方へ向かって、１日当り１mm前後 の速度で成長が進行する。このようなガラス容器を用いた静置培養では、図３に 示すようにガラス容器は底面及び側壁面が気体透過性ゼロであり、空気と接する 面は上面（培地表面）に限られるため、バイオセルロースの生成は培地表面から 下方に（矢印６）向かってなされ、バイオセルロースの生産効率が極めて劣ると いう欠点がある。 これに対して、前記ペニシリンの例のように通気撹拌培養すると酸素が効率的 に培地全体に均一に溶解し菌体の増殖速度も大きくなり、従って生産効率は上が るが、不都合なことにこの方法をバイオセルロ−ス生産に適用すると生成したバ イオセルロ−スが切れ切れになったり、器壁に付着し回収困難になるという欠点 があり、そのため従来より静置培養以外に方法がなく、効率の高い培養方法の出 現が望まれていた。By the way, this cellulose-producing bacterium (acetic acid bacterium) is an aerobic microorganism, and when it is statically cultivated in a glass container such as a beaker or a petri dish, a biocellulose film is formed on the surface of the medium in contact with air. The average degree of polymerization of this biocellulose is 2,000 to 6,000, which corresponds to the average degree of polymerization of the cellulose that forms the primary cell wall of the cotton fiber, and the basic structure of the biocellulose membrane is microfibrils with a diameter of about 4 nm. The fibrils produced by one microbial cell are composed of multiple microfibrils, and many of them assemble to form a membrane. This biocellulose membrane grows downward from the surface of the medium at a rate of about 1 mm per day. In static culture using such a glass container, the bottom surface and side wall surface of the glass container have zero gas permeability as shown in FIG. 3, and the surface in contact with air is limited to the upper surface (medium surface). Cellulose is produced downward from the medium surface (arrow 6), and there is a drawback that the production efficiency of biocellulose is extremely poor. On the other hand, when aeration and agitation culture is performed as in the case of the above-mentioned penicillin, oxygen is efficiently and uniformly dissolved in the entire medium, and the growth rate of the microbial cells is increased. Therefore, although the production efficiency is increased, it is disadvantageous. When this method is applied to biocellulosic production, it has the drawback that the biocellulose produced will be cut off or will adhere to the vessel wall and will be difficult to collect. It was desired to develop a high culture method.
【０００６】[0006]
本考案は、セルロース生産菌（酢酸菌）等の好気性微生物の静置培養を、効率 よく行うための改良された培養容器に関するものであり、図１に示すように、多 孔質材料または繊維質材料からなる通気性容器２の内面に、酸素透過係数が１× 10-8cm3(STP)・cm/cm2・sec・cmHg以上の非多孔質膜３を少なくとも１層形成してな ることを特徴とする好気培養容器１である。The present invention relates to an improved culture container for efficiently performing stationary culture of aerobic microorganisms such as cellulose-producing bacteria (acetic acid bacteria), and as shown in FIG. At least one layer of non-porous film 3 having an oxygen permeability coefficient of 1 × 10 −8 cm 3 (STP) · cm / cm 2 · sec · cmHg or more is formed on the inner surface of the air-permeable container 2 made of a high quality material. It is an aerobic culture container 1 characterized by the following.
【０００７】 本考案の好気培養容器を用いて、好気性微生物の培養を行うと、図１の培地４ は容器上面の培地表面からだけでなく、容器底面および側壁面からも酸素の供給 を受けるため、全ての培地面から培養が進行する（矢印６）利点がある。 なお、本考案の好気培養容器の形状は、図２（ａ）に示すようなガラス容器と 同じ円筒状のみならず、図２（ｂ）に示すような二重円筒状としたり、空気と触 れる容器壁面を凸凹異形状とすることにより、単位時間あたりの酸素透過量を大 きくし、培養効果を高めることができる。 本考案における多孔質材料は、石灰石質、白雲石質、長石質等を原料とする素 焼き陶器、または硫酸カルシウム二水和物すなわち石膏、又はアルミナ、シリカ 、ジルコニア、マグネシア、酸化スズ、酸化鉄、酸化チタン、リン酸化合物、黒 鉛、窒化珪素、炭化珪素、窒化アルミニウム等のセラミックス焼結体等が挙げら れる。 本考案における繊維質材料としては、木材パルプ、リンターパルプ、コウゾ／ ミツマタ、ポリオレフィンなどから作られる洋紙、和紙、合成紙等の紙、または 絹、木綿、麻、羊毛、ビスコースレーヨン、酢酸セルロース、ポリアミド、ポリ エチレンテレフタレート、ポリアクリロニトリル、炭素繊維、ガラス繊維等の有 機質繊維や無機質繊維からなる織布または不織布が挙げられる。When aerobic microorganisms are cultured using the aerobic culture container of the present invention, the medium 4 in FIG. 1 is supplied with oxygen not only from the medium surface on the upper surface of the container but also from the bottom surface and side wall surface of the container. Therefore, there is an advantage that the culture proceeds from all the medium surfaces (arrow 6). The shape of the aerobic culture container of the present invention is not limited to the same cylindrical shape as the glass container as shown in FIG. 2 (a), but may be a double cylindrical shape as shown in FIG. By making the wall surface of the container that can be touched uneven, the oxygen permeation amount per unit time can be increased and the culture effect can be enhanced. The porous material in the present invention includes calcinated earthenware made from limestone, dolomite, feldspar, etc., or calcium sulfate dihydrate or gypsum, or alumina, silica, zirconia, magnesia, tin oxide, iron oxide. , Titanium oxide, phosphoric acid compounds, black lead, silicon nitride, silicon carbide, ceramics sintered bodies such as aluminum nitride, and the like. The fibrous material used in the present invention includes papers such as wood pulp, linter pulp, Kozo / Mitsumata, and polyolefin, Japanese paper, Japanese paper, synthetic paper, or silk, cotton, hemp, wool, viscose rayon, cellulose acetate, Woven or non-woven fabrics made of organic or inorganic fibers such as polyamide, polyethylene terephthalate, polyacrylonitrile, carbon fiber, glass fiber and the like can be mentioned.
【０００８】 ガラス容器を用いた微生物培養では、容器及び培地などを滅菌して、培養を行 っている。これは高圧滅菌器（オートクレーブ）を用い、 110℃〜 120℃で15〜 20分間加熱殺菌を行う。従って繰返し使用する場合には、耐熱性の点から多孔質 セラミックスを使用するのがよいが、使い捨ての場合には、化学用濾紙等の紙材 料の使用が好ましい。 この通気性容器の寸法は、現在培養容器に用いられているシャーレ、ビーカー 、フラスコ等のガラス容器と同様の寸法とすればよいが、この厚さは薄すぎると 強度的に劣って取り扱い困難となり、厚すぎると通気性が悪くなるため、 0.1mm から２mmの範囲、好ましくは 0.2〜１mmの範囲とするのがよい。In culturing microorganisms using a glass container, the container and the medium are sterilized before the culture. Using a high-pressure sterilizer (autoclave), heat sterilize at 110 ° C to 120 ° C for 15 to 20 minutes. Therefore, when repeatedly used, it is preferable to use porous ceramics from the viewpoint of heat resistance, but when disposable, it is preferable to use paper materials such as chemical filter paper. The dimensions of this air-permeable container may be the same as those of glass containers such as petri dishes, beakers, and flasks currently used in culture containers, but if this thickness is too thin, it will be inferior in strength and difficult to handle. If it is too thick, the air permeability will deteriorate, so the thickness is preferably in the range of 0.1 mm to 2 mm, preferably 0.2 to 1 mm.
【０００９】 これらの多孔質材料や繊維質材料は、通気性材料であって、次に述べる気体透 過係数は、10-4cm3(STP)・cm/cm2・sec・cmHg以上、すなわち市販の気体透過率測定 器の測定範囲を超えた値を示す。 気体透過係数は、非多孔質膜について定義された、所定の温度で特定の膜と特 定の気体の系の定数である。即ち、非多孔質膜の両側に圧力差がある場合、高圧 側（ｐ1 ）から低圧側（ｐ2 ）へ気体が移動（透過）する現象がみられるが、こ の透過機構は、気体が膜に接したとき直ちに膜表面に気体が溶解する。気体 の溶解によって生じた濃度勾配によって気体が膜の中に拡散して行き、膜の他の 面に到達する。一定時間を経過すると、膜中の気体の濃度勾配は一定となり、 この状態では気体が他の面から脱着して行く速度は一定となる。 厚さ△ｘ（ｃｍ）、表面積Ａ（ｃｍ2 ）の非多孔質膜を通して時間ｔ（ｓｅｃ ）の間に移動する気体の流量Ｑ（ｃｍ3 ／ｓｅｃ）は、フィックの拡散式（第２ 法則） Ｍ／Ａ・ｔ＝−Ｄ・ｄＣ／ｄｘ…（１） を解くことによって得られる。ここでＭは移動する気体の質量（ｇ）、Ａは膜表 面積（ｃｍ2 ）、Ｄは拡散係数（ｃｍ2 ／ｓｅｃ）、Ｃは気体濃度（ｇ／ｃｍ3 ）を示す。 Ｑ＝Ｐ・（ｐ1 −ｐ2 ）・Ａ／△ｘ…（２） （２）式において、Ｐは気体透過係数であり、単位cm3(STP)・cm/cm2・sec・cmHgで ある、Ｑは気体流量〔cm3(STP)/sec〕、△ｘは膜の厚さ（ｃｍ）、Ａは膜の表面 積（ｃｍ2 ）、（ｐ1 −ｐ2 ）は圧力差（ｃｍＨｇ）である。なおＳＴＰは標準 状態（ 273Ｋ、１気圧）を示す。These porous materials and fibrous materials are breathable materials, and the gas permeability coefficient described below is 10 −4 cm 3 (STP) · cm / cm 2 · sec · cmHg or more, that is, The value exceeds the measurement range of a commercially available gas permeability measuring instrument. The gas permeability coefficient is a constant defined for a non-porous membrane for a particular membrane and a particular gas system at a given temperature. That is, when there is a pressure difference on both sides of the non-porous membrane, there is a phenomenon in which gas moves (permeates) from the high pressure side (p 1 ) to the low pressure side (p 2 ). The gas dissolves immediately on the surface of the film when it comes into contact with the film. The concentration gradient created by the dissolution of the gas causes the gas to diffuse into the membrane and reach the other side of the membrane. After a certain period of time, the concentration gradient of the gas in the film becomes constant, and in this state, the speed at which the gas desorbs from the other surface becomes constant. The flow rate Q (cm 3 / sec) of the gas moving during the time t (sec) through the non-porous film having the thickness Δx (cm) and the surface area A (cm 2 ) is determined by Fick's diffusion formula (second law). ) M / A · t = −D · dC / dx (1) Here, M is the mass of the moving gas (g), A is the membrane surface area (cm 2 ), D is the diffusion coefficient (cm 2 / sec), and C is the gas concentration (g / cm 3 ). Q = P · (p 1 −p 2 ) · A / Δx… (2) In the equation (2), P is the gas permeability coefficient, and the unit is cm 3 (STP) · cm / cm 2 · sec · cmHg. Yes, Q is the gas flow rate [cm 3 (STP) / sec], Δx is the film thickness (cm), A is the film surface area (cm 2 ), and (p 1 -p 2 ) is the pressure difference (cmHg). ). Note that STP indicates a standard state (273K, 1 atm).
【００１０】 文献等によれば非多孔質膜の気体透過係数は、10-7〜10-10cm3(STP)・cm/cm2・s ec・cmHg の範囲にあり、例えば天然ゴムの場合、25℃において酸素透過係数Ｐｏ2 は23.4×10-10cm3(STP)・cm/cm2・sec・cmHg 〔以下×10-10cm3(STP)・cm/cm2・sec・ cmHg をbarrelで表す〕、窒素透過係数ＰN2（以下N2はＰの添字）は 9.5barrel 、ポリ塩化ビニルの場合、25℃においてＰｏ2 は0.044barrel 、ＰN2は0.0115ba rrelである。According to the literature and the like, the gas permeability coefficient of a non-porous membrane is in the range of 10 −7 to 10 −10 cm 3 (STP) · cm / cm 2 · s ec · cmHg. For example, in the case of natural rubber , The oxygen permeability coefficient Po 2 at 25 ℃ is 23.4 × 10 -10 cm 3 (STP) · cm / cm 2 · sec · cmHg [below × 10 -10 cm 3 (STP) · cm / cm 2 · sec · cmHg represented by barrel], nitrogen permeability coefficient PN 2 (hereinafter N 2 is subscript P) is 9.5Barrel, when the polyvinyl chloride, the Po 2 at 25 ℃ 0.044barrel, PN 2 is 0.0115ba rrel.
【００１１】 本考案の好気培養容器において、通気性容器の内面に少なくとも１層形成され る、酸素透過係数が１×10-8cm3(STP)・cm/cm2・sec・cmHg以上、すなわち 100barr el以上の非多孔質膜としては、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）（Ｐｏ2 3 52barrel）、ポリ［１−（トリメチルシリル）−１−プロピン］（ＰＭＳＰ）（ Ｐｏ2 773barrel）、ポリ（フマル酸イソプロピルトリメチルシリル）（Ｐｏ2 870barrel）、ポリ（フマル酸ｔ−ブチルトリメチルシリル）（Ｐｏ2 2,300ba rrel）、ポリ（フマル酸シクロヘキシルペンタメチルシロキサン）（Ｐｏ2 920 barrel）、ポリ［イソプロピルトリ（ジメチルシロキサン）］（Ｐｏ2 1,200ba rrel）、ポリ［フマル酸ジ（トリメチルシリル）］（Ｐｏ2 870barrel）、ポリ ［フマル酸（トリメチルシリル）メチレン］（Ｐｏ2 5,500barrel） 等が挙げられるが、この中には、時間の経過とともに酸素透過係数が低下するも のも含まれており、酸素透過係数が経時的に安定しているＰＤＭＳ膜の使用が最 も好ましい。In the aerobic culture container of the present invention, at least one layer is formed on the inner surface of the air-permeable container and has an oxygen permeability coefficient of 1 × 10 −8 cm 3 (STP) · cm / cm 2 · sec · cmHg or more, That is, as a non-porous film having a pressure of 100 barrel or more, polydimethylsiloxane (PDMS) (Po 2 3 52barrel), poly [1- (trimethylsilyl) -1-propyne] (PMSP) (Po 2 773barrel), poly (fumaric acid Isopropyltrimethylsilyl) (Po 2 870barrel), poly (t-butyltrimethylsilyl fumarate) (Po 2 2,300 varrel), poly (cyclohexylpentamethylsiloxane fumarate) (Po 2 920 barrel), poly [isopropyltri (dimethylsiloxane) ] (Po 2 1,200 barrel), poly [di (trimethylsilyl) fumarate] (Po 2 870barrel), poly [(trimethylsilyl) fumarate methylene ] (Po 2 5,500barrel), etc., but some of them include those whose oxygen permeability coefficient decreases with the passage of time, and the oxygen permeability coefficient of a PDMS film that is stable over time is included. Most preferred is the use.
【００１２】 ＰＤＭＳは、工業的にはシリコーンゴムと呼ばれ、側鎖官能基の種類によって 、ジメチルシリコーンゴム（ＭＱ）、ビニル基を導入しＭＱの加硫特性、圧縮永 久歪、機械的強度、耐熱性等を改善したメチルビニルシリコーンゴム（ＶＭＱ） 、フェニル基を導入し耐寒性を改善したフェニルシリコーンゴム（ＰＶＭＱ）、 γ−トリフロロプロピル基を導入し耐油性、耐溶剤性を改善したフロロシリコー ンゴム（ＦＶＭＱ）に分類されるがＶＭＱ膜の使用が最も好ましい。PDMS is industrially called silicone rubber. Depending on the type of side chain functional group, dimethyl silicone rubber (MQ) or vinyl group is introduced to introduce vulcanization characteristics of MQ, permanent compression strain, and mechanical strength. , Methyl vinyl silicone rubber (VMQ) with improved heat resistance, phenyl silicone rubber (PVMQ) with phenyl group introduced to improve cold resistance, and γ-trifluoropropyl group introduced to improve oil resistance and solvent resistance Although it is classified as fluorosilicone rubber (FVMQ), the use of VMQ membrane is most preferable.
【００１３】 なお、考案者らの研究によれば、シリコーンゴムにシリカライトR と呼ばれる 特殊ゼオライト粉末を配合することにより、酸素透過係数がシリコーンゴムの数 倍向上するという知見も得られており、このような複合樹脂膜も好ましい。しか し、このような粉末を充填するときは、多孔質になりやすく、培地の液漏れが起 こりやすいため、微細孔の発生には十分注意する必要がある。According to the research conducted by the inventors, it has been found that the oxygen permeability coefficient is several times higher than that of silicone rubber by adding a special zeolite powder called silicalite R to silicone rubber, Such a composite resin film is also preferable. However, when such a powder is filled, it tends to be porous and liquid leakage of the medium is likely to occur, so it is necessary to pay sufficient attention to the generation of micropores.
【００１４】 本考案の好気培養容器において、通気性容器の内面に形成される非多孔質膜の 厚さは、これが薄すぎると微細孔の発生により培地の液漏れが発生しやすく、こ れが厚すぎると単位時間あたりの気体透過量が低下するため、１μｍ〜 100μｍ の範囲、好ましくは５〜30μｍの範囲とするのがよい。 また本考案において、通気性容器の内面に形成された高酸素透過性の非多孔質 膜の内面に、さらに絹由来のフィブロイン膜を数十nmオーダーで形成することも 考えられるが、これは動物細胞培養の場合も考慮し、生体不活性のシリコーンゴ ム膜では動物細胞の足掛かりが無く、フィブロイン膜が足掛かりとなることが知 られているためである。このフィブロイン膜は厚くても40nm程度のため、シリコ ーンゴム膜の酸素透過係数に影響を与えないことを、考案者らは実験的に確認済 みである。In the aerobic culture container of the present invention, if the thickness of the non-porous membrane formed on the inner surface of the air permeable container is too thin, the liquid leakage of the medium is likely to occur due to the generation of fine pores. If it is too thick, the amount of gas permeation per unit time will decrease, so the range is 1 μm to 100 μm, preferably 5 to 30 μm. Further, in the present invention, it is conceivable to further form a silk-derived fibroin film on the inner surface of the highly oxygen-permeable non-porous membrane formed on the inner surface of the breathable container in the order of several tens of nm. This is because it is known that in the case of cell culture, a bio-inactive silicone rubber membrane does not have a foothold on animal cells, and a fibroin membrane serves as a foothold. The authors have confirmed experimentally that this fibroin membrane does not affect the oxygen permeability coefficient of the silicone rubber membrane because it is about 40 nm thick.
【００１５】[0015]
メチルビニルシリコーンゴム・ＫＥ−1551［信越化学工業（株）製商品名］を 、厚さ30μｍにカレンダーロールシーティングを行い、これを厚さ0.39mmの定性 濾紙・ワットマンNo. ３（米ワットマン社製商品名）の片面にラミネートし、プ レス成形により、接着させた。このシリコーンゴム膜ラミネート濾紙の酸素透過 係数を、加圧式ガス透過率測定機・GASPERM-100 ［日本分光工業（株）製商品名 ］により、25℃において、圧力１kgf/cm2 の条件で測定したところ、 460barrel という実測値が得られた。同様に、上記の定性濾紙単独について同一条件で酸素 透過係数を測定したところ、本測定機の測定限界（106 barrel）を超え、測定不 能であった。 このシリコーンゴム膜ラミネート濾紙を用い、シリコーンゴム膜を内側として 直径45mm×深さ50mmのシャーレ（内容積 48cm3）を製作した。 次に、上記シリコーンゴム薄膜ラミネート濾紙製シャーレを使用して、Ｄ−グ ルコース 20g/ Ｌ、ペプトン５g/Ｌ、酵母エキス５g/Ｌ、Ｎａ2 ＨＰＯ4 2.7g/ Ｌ、クエン酸 1.15g／Ｌの水溶液（pH 6.8）50cm3 を培地として、アセトバクタ ー・パストリアヌス菌の培養実験を５日間行った。この培地は上記シャーレ中に 約31mmの深さで静置され、空気と直接触れる液表面と容器底面の面積はそれぞれ 16cm2 、容器側壁面と接触する面積43cm2 であった。 この結果、液表面には 0.075g 、底部には0.05g 、側壁面には0.13g のバイオ セルロースが生成した。これを、従来通りシャーレ上面（培地表面）のみの単位 面積当りのバイオセルロース生成速度に換算すると、約 31.9g/m2 ・日となった 。 比較のために、上記と同一寸法のガラス製シャーレを使用し、上と同じ培養実 験を行ったところ、バイオセルロースは培地表面にのみ生成し、生成量は 0.075 g であり、これを培地表面単位面積当りに換算すると、約9.4g/m2 ・日となり、 本考案の好気培養容器は従来のガラス製培養容器と比べ約３倍の生産効率を示す ことが確認できた。Methyl vinyl silicone rubber, KE-1551 (trade name, manufactured by Shin-Etsu Chemical Co., Ltd.) was calendered to a thickness of 30 μm and calendered to a thickness of 0.39 mm. Qualitative filter paper, Whatman No. 3 It was laminated on one side of the product name) and adhered by press molding. The oxygen permeability coefficient of this silicone rubber membrane laminated filter paper was measured at 25 ° C. under a pressure of 1 kgf / cm 2 by a pressure type gas permeability measuring instrument, GASPERM-100 [trade name of JASCO Corporation]. However, the measured value of 460barrel was obtained. Similarly, when the oxygen permeation coefficient was measured for the above qualitative filter paper alone under the same conditions, the measurement limit (10 6 barrel) of this measuring machine was exceeded and measurement was impossible. Using this silicone rubber membrane laminated filter paper, a petri dish (inner volume 48 cm 3 ) having a diameter of 45 mm and a depth of 50 mm was produced with the silicone rubber membrane inside. Next, using the petri dish made of the silicone rubber thin film laminated filter paper, D-glucose 20 g / L, peptone 5 g / L, yeast extract 5 g / L, Na 2 HPO 4 2.7 g / L, citric acid 1.15 g / L The culture experiment of Acetobacter pastorianus was carried out for 5 days using 50 cm 3 of the above aqueous solution (pH 6.8) as a medium. This medium was allowed to stand still in the dish at a depth of about 31 mm, and the area of the liquid surface in direct contact with air and the area of the bottom surface of the container were 16 cm 2 , and the area in contact with the side wall surface of the container was 43 cm 2 . As a result, 0.075 g of biocellulose was produced on the liquid surface, 0.05 g on the bottom and 0.13 g on the side wall. Converting this to the biocellulose production rate per unit area on the upper surface of the dish (medium surface) as usual, it was approximately 31.9 g / m 2 · day. For comparison, a glass dish with the same dimensions as above was used and the same culture experiment as above was performed.Biocellulose was produced only on the surface of the medium, and the amount produced was 0.075 g. When converted per unit area, it was approximately 9.4 g / m 2 · day, and it was confirmed that the aerobic culture container of the present invention exhibits about three times the production efficiency as compared with the conventional glass culture container.
【００１６】[0016]
本考案のような多孔質セラミックスや紙等の通気性容器の内面にシリコーンゴ ム薄膜のような高酸素透過性膜を形成した培養容器を使用して、バイオセルロー ス生産菌などの好気性微生物を静置培養すると、空気に直接触れる容器上の培地 表面からだけでなく、高酸素透過性膜を通して間接的に酸素に触れる容器側壁面 や容器底面の培地からバイオセルロース膜の生成が進行するため、効率の高い静 置培養が可能となる。 本考案の培養容器は、紙などを通気性容器として使用すれば、非常に安価であ り、滅菌せず使い捨てることも可能であり、また通気性容器として多孔質セラミ ックスを用いれば使用の都度加熱滅菌し、繰り返し使用することが可能であるの で経済的である。 また、紙等を通気性容器として使用する場合には、３本ロールリバースコータ ー、コンマコーター等を使用して、前記高酸素透過性膜を紙等と一体化して連続 的に均一に形成することができ、大量生産が可能である。 An aerobic microorganism such as a biocellulosic bacterium is used by using a culture container in which a highly oxygen permeable membrane such as a silicone rubber thin film is formed on the inner surface of a porous ceramic or paper permeable container as in the present invention. When statically cultivated, the production of biocellulose membrane proceeds not only from the surface of the medium on the container that is in direct contact with air, but also from the medium on the side wall and the bottom of the container that are indirectly exposed to oxygen through the highly oxygen permeable membrane. It enables static culture with high efficiency. The culture container of the present invention is very inexpensive if paper or the like is used as a breathable container, can be disposable without sterilization, and can be used if a porous ceramic is used as a breathable container. It is economical because it can be sterilized by heat and used repeatedly. When paper or the like is used as a breathable container, a three-roll reverse coater, comma coater or the like is used to integrally form the high oxygen permeable membrane with the paper or the like and continuously and uniformly form it. And can be mass-produced.
【図１】本考案の好気培養容器とこれを使用した微生物
培養の状況を示す縦断面図である。FIG. 1 is a longitudinal sectional view showing an aerobic culture container of the present invention and a situation of culturing a microorganism using the aerobic culture container.
【図２】（ａ）本考案の好気培養容器の一態様（円筒シ
ャーレ状）を示す斜視図である。 （ｂ）本考案の好気培養容器の一態様（二重円筒シャー
レ状）を示す斜視図である。FIG. 2 (a) is a perspective view showing an embodiment (cylindrical petri dish) of the aerobic culture container of the present invention. (B) It is a perspective view showing an embodiment (double cylindrical petri dish shape) of the aerobic culture container of the present invention.
【図３】従来の培養用ガラス容器とこれを使用した微生
物培養の状況を示す縦断面図である。FIG. 3 is a vertical cross-sectional view showing a conventional culture glass container and a situation of microbial culture using the same.
１ 本考案の好気培養容器、 ２ 通気性容器、 ３ 高酸素透過性の非多孔質膜、 ４ 培地、 ５ 生成したセルロース膜、 ６ セルロース膜の成長方向を示す矢印、 ７ 従来のガラス製培養容器。 1 aerobic culture container of the present invention, 2 aeration container, 3 highly oxygen-permeable non-porous membrane, 4 medium, 5 produced cellulose membrane, 6 arrow showing the growth direction of cellulose membrane, 7 conventional glass culture container.
Claims (1)
気性容器の内面に、酸素透過係数が１×10-8cm3(STP)・c
m/cm2・sec・cmHg以上の非多孔質膜を少なくとも１層形成
してなることを特徴とする好気培養容器。1. An oxygen permeable coefficient of 1 × 10 −8 cm 3 (STP) · c on the inner surface of a breathable container made of a porous material or a fibrous material.
An aerobic culture vessel comprising at least one layer of a non-porous membrane having m / cm 2 · sec · cmHg or more.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP6532693U JPH0734699U (en) | 1993-12-07 | 1993-12-07 | Aerobic culture container |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP6532693U JPH0734699U (en) | 1993-12-07 | 1993-12-07 | Aerobic culture container |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0734699U true JPH0734699U (en) | 1995-06-27 |
Family
ID=13283686
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP6532693U Pending JPH0734699U (en) | 1993-12-07 | 1993-12-07 | Aerobic culture container |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0734699U (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20050106717A1 (en) * | 2003-10-08 | 2005-05-19 | Wilson John R. | Cell culture methods and devices utilizing gas permeable materials |
-
1993
- 1993-12-07 JP JP6532693U patent/JPH0734699U/en active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20050106717A1 (en) * | 2003-10-08 | 2005-05-19 | Wilson John R. | Cell culture methods and devices utilizing gas permeable materials |
| US9255243B2 (en) * | 2003-10-08 | 2016-02-09 | Wilson Wolf Manufacturing Corporation | Cell culture methods and devices utilizing gas permeable materials |
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