JPH07289267A - Method for enhancing expression - Google Patents

Method for enhancing expression

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JPH07289267A
JPH07289267A JP6107406A JP10740694A JPH07289267A JP H07289267 A JPH07289267 A JP H07289267A JP 6107406 A JP6107406 A JP 6107406A JP 10740694 A JP10740694 A JP 10740694A JP H07289267 A JPH07289267 A JP H07289267A
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JP
Japan
Prior art keywords
protein
icd
sequence
gene
plasmid
Prior art date
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Application number
JP6107406A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Koji Uchida
田 浩 二 内
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Oriental Yeast Co Ltd
Original Assignee
Oriental Yeast Co Ltd
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Publication date
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Publication of JPH07289267A publication Critical patent/JPH07289267A/en
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Abstract

PURPOSE:To efficiently enhance the expression of a protein, increase the yield of the protein, reduce the scale of production equipment, shorten the production process and mass-produce a high-purity protein by removing a pre-sequence part from a structural gene and using the resultant gene. CONSTITUTION:This method for enhancing the expression of a protein is to remove a pre-sequence part from a structural gene, further modify a base sequence capable of coding an amino acid next to an initiation codon and use the resultant gene. Furthermore, a DNA fragment obtained by removing the pre-sequence from a gene sequence of a precursor protein to be an active type with an organelle is preferably joined to a plasmid and the resultant plasmid is preferably further transduced into a host cell and cultured to express the protein.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、発現増強方法に関する
ものであって、組換え型タンパク質を大量生産する新規
システムに関するものである。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for enhancing expression, and to a novel system for mass-producing a recombinant protein.

【0002】本発明によれば、遺伝子操作の手法により
各種のタンパク質、酵素を効率よく大量生産することが
でき、例えば本発明によって大量生産が可能となったイ
ソクエン酸脱水素酵素(以下、iCDということもあ
る)は、試薬として利用できるだけでなく、肝障害等の
臨床検査薬として利用することができ、本発明は医療や
生化学の技術分野において多大の貢献をなすものであ
る。
According to the present invention, various proteins and enzymes can be efficiently mass-produced by a genetic engineering method. For example, isocitrate dehydrogenase (hereinafter referred to as iCD) which has been mass-produced by the present invention is possible. Can be used not only as a reagent but also as a clinical test drug for liver disorders and the like, and the present invention makes a great contribution in the technical fields of medicine and biochemistry.

【0003】[0003]

【従来の技術】iCDは、生体細胞内に微量存在してお
り、現在においては、ウシ心筋、ブタ心筋、酵母等を起
源とし、抽出法によって製造されている。また、パン酵
母由来のiCDについては、遺伝子の配列及び酵母での
発現が確認されている(TheJournal of
Biological Chemistry,266
(4),pp.2339−2345,1991)。
2. Description of the Related Art iCD is present in living cells in a trace amount, and is currently produced from bovine cardiac muscle, porcine cardiac muscle, yeast, etc. by an extraction method. Regarding baker's yeast-derived iCD, the gene sequence and expression in yeast have been confirmed (The Journal of
Biological Chemistry, 266
(4), pp. 2339-2345, 1991).

【0004】このように、iCDは公知物質ではあるが
抽出法によってごく少量生産されているにすぎず、これ
を効率よく大量生産する方法は知られていないし、まし
てや遺伝子工学技術を応用してパン酵母iCDを増産す
ることなどは全く知られていない。
Thus, although iCD is a known substance, it is only produced in a very small amount by the extraction method, and there is no known method for efficiently producing it in large quantities, let alone applying genetic engineering technology to bread. Nothing is known about increasing production of yeast iCD.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、このような
技術の現状に鑑み、iCDを効率よく大量生産するシス
テムを開発する目的でなされたものである。また本発明
は、iCDのみでなく他のタンパク質も増産するシステ
ムを開発する目的でもなされたものである。
SUMMARY OF THE INVENTION In view of the current state of the art, the present invention has been made for the purpose of developing a system for efficiently mass-producing iCDs. The present invention was also made for the purpose of developing a system for increasing the production of not only iCD but also other proteins.

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】本発明は、上記目的を達
成するためになされたものであって、菌体内で複製する
プラスミドに目的とするタンパク質の遺伝子を挿入し発
現させることによって生産量を増加させることを基本と
する遺伝子工学技術を利用するのが最も良いとの観点に
たった。
Means for Solving the Problems The present invention has been made in order to achieve the above-mentioned object, and the amount of production can be increased by inserting a gene of a target protein into a plasmid replicating in the cells and expressing it. From the viewpoint that it is best to use the genetic engineering technology based on increasing the number.

【0007】そして、iCDについては、本発明におい
て対象としているiCDは、ミトコンドリアに局在する
NADP特異型酵素であって、細胞質内でまず前駆体が
発現され、これがミトコンドリアに輸送されることによ
って成熟型(活性型)のiCDとなるが、通常このよう
な場合には、菌体内で複製するプラスミドにiCD前駆
体の塩基配列をもつDNA断片を挿入する。
Regarding iCD, the iCD of the present invention is a NADP-specific enzyme localized in mitochondria, and a precursor is first expressed in the cytoplasm and then matured by being transported to mitochondria. In this case, a DNA fragment having the base sequence of the iCD precursor is inserted into a plasmid that replicates in the cell.

【0008】上記のように、iCDは、前駆体がミトコ
ンドリアに輸送されてはじめて成熟型(活性型)に変わ
るのであるが、このiCD前駆体をミトコンドリアに到
達せしめるためには、プレ配列(通過配列)を必要と
し、したがって、iCD前駆体には、(つまりiCD遺
伝子の全塩基配列には)成熟型(活性型)iCDのN末
端側にプレ配列が包含されているのである。
As described above, iCD is transformed into a mature form (active form) only after the precursor is transported to mitochondria. In order to make the iCD precursor reach mitochondria, a presequence (passage sequence) is used. Therefore, the iCD precursor contains a pre-sequence on the N-terminal side of mature (active) iCD (that is, in the entire nucleotide sequence of the iCD gene).

【0009】本発明者らは、前駆体を活性型に変えるの
に必須の配列であるプレ配列に着目し、全く発想を逆転
して、活性化に必須であるこのプレ配列をあえてiCD
前駆体の塩基配列から除去し、得られた残りの配列をプ
ラスミドに連結し、このプラスミドでパン酵母を形質転
換し、形質転換体を培養したところ、全く予期せざるこ
とに従来の50〜100倍というきわめて著量のiCD
が生産されることを新たに発見し、この新知見を基礎と
して更に検討の結果、本発明の完成に至ったものであ
る。
The present inventors have paid attention to a pre-sequence which is an essential sequence for converting a precursor into an active form, and have the idea completely reversed, and this pre-sequence which is essential for activation is dared to
When the base sequence of the precursor was removed, the remaining sequence obtained was ligated to a plasmid, baker's yeast was transformed with this plasmid, and the transformant was cultured. Extremely large amount of iCD
Was newly produced, and as a result of further studies based on this new finding, the present invention has been completed.

【0010】すなわち本発明は、構造遺伝子からプレ配
列(通過配列)部分を除去した遺伝子を用いることを特
徴とするタンパク質の発現増強システムを基本的技術思
想とするものである。
That is, the present invention has as its basic technical idea a protein expression enhancing system characterized by using a gene obtained by removing a pre-sequence (passage sequence) from a structural gene.

【0011】本発明を実施するには、プレ配列を除いた
遺伝子を用いるほかは遺伝子工学技術として知られてい
る一般的手法によればよく、例えばプレ配列を除いたi
CD遺伝子を発現ベクターへ連結して組換えDNAを作
製し、これを酵母等の宿主細胞に移入し、得られた形質
転換体を培養して、iCDを発現させればよい。したが
って、従来用いられている装置や手法をそのまま使用す
ることができ、これらの改変等の必要がない点でも本発
明は卓越している。
In order to carry out the present invention, a general method known as a genetic engineering technique may be used except that a gene excluding the pre-sequence is used.
The CD gene may be ligated to an expression vector to prepare a recombinant DNA, which is then transferred into a host cell such as yeast, and the resulting transformant is cultured to express iCD. Therefore, the present invention is excellent in that the devices and methods that have been conventionally used can be used as they are without any modification or the like.

【0012】本発明においては、iCD遺伝子(前駆体
タンパク質遺伝子、構造遺伝子)からプレ配列を除去し
た遺伝子を用いることによりiCDの発現量を大幅に上
昇せしめることができる。しかしながら、iCD遺伝子
からプレ配列を除き、更に開始コドンの次のアミノ酸を
改変したDNA断片を用いると、更にiCDの発現量を
増強することができる。
In the present invention, the expression level of iCD can be significantly increased by using a gene obtained by removing the presequence from the iCD gene (precursor protein gene, structural gene). However, the expression level of iCD can be further enhanced by removing the presequence from the iCD gene and using a DNA fragment in which the amino acid next to the start codon is modified.

【0013】また本発明は、iCDの発現増強のみでな
く、ミトコンドリア、リソソーム、等オルガネラで活性
型となる前駆体タンパク質等各種のタンパク質の発現増
強にも広く適用することができる。
Further, the present invention can be widely applied not only to enhance the expression of iCD, but also to enhance the expression of various proteins such as precursor proteins that are active in organelles such as mitochondria, lysosomes.

【0014】ミトコンドリアのマトリックスタンパク質
前駆体としては、既述したiCD(イソクエン酸脱水素
酵素)のほか、例えば、クエン酸合成酵素、フマラー
ゼ、アコニターゼ、L−リンゴ酸脱水素酵素、α−ケト
グルタル酸脱水素酵素、L−グルタミン酸脱水素酵素、
アスパラギン酸トランスアミナーゼ、δ−アミノレブリ
ン酸合成酵素、等が挙げられ、いずれも、本発明を適用
することが可能である。
Examples of the mitochondrial matrix protein precursor include, in addition to the above-mentioned iCD (isocitrate dehydrogenase), for example, citrate synthase, fumarase, aconitase, L-malate dehydrogenase, α-ketoglutarate dehydration. Elementary enzyme, L-glutamate dehydrogenase,
Examples thereof include aspartate transaminase, δ-aminolevulinic acid synthase, and the like, and the present invention can be applied to any of them.

【0015】本発明においては、上記したミトコンドリ
アのマトリックスタンパク質のみを対象とするのではな
く、更に、ミトコンドリアに含まれる種々の区画に含ま
れるタンパク質、葉緑体のタンパク質、核タンパク質、
ペルオキシソームタンパク質、小胞体を通過するタンパ
ク質(小胞体タンパク質、ゴルジ体タンパク質、リソソ
ームタンパク質、液胞タンパク質等)も対象として含ま
れる。
In the present invention, not only the above-mentioned mitochondrial matrix proteins are targeted, but further, proteins contained in various compartments contained in mitochondria, chloroplast proteins, nuclear proteins,
Peroxisomal proteins and proteins that pass through the endoplasmic reticulum (endoplasmic reticulum proteins, Golgi proteins, lysosomal proteins, vacuolar proteins, etc.) are also included in the target.

【0016】ミトコンドリアに含まれる種々の区画に含
まれるタンパク質としては、内膜(C側)タンパク質
(例えばチトクロムc1等)、内膜(内在性)タンパク
質(例えばチトクロム酸化酵素IV等)、内膜(外側に
局在下する)タンパク質(例えばチトクロムbc1複合
体;膜間部(膜間腔)タンパク質(例えばチトクロムb
2、アデニル酸キナーゼ、ヌクレオチド二リン酸キナー
ゼ、チトクロムcペルオキシダーゼ等);外側タンパク
質(例えば70kDaタンパク質等)が例示される。
Proteins contained in various compartments contained in mitochondria include inner membrane (C side) protein (eg cytochrome c 1 etc.), inner membrane (endogenous) protein (eg cytochrome oxidase IV etc.), inner membrane Proteins (localized outside) such as cytochrome bc 1 complex; intermembrane (intermembrane space) proteins (such as cytochrome b)
2 , adenylate kinase, nucleotide diphosphate kinase, cytochrome c peroxidase and the like); and external proteins (for example, 70 kDa protein and the like).

【0017】葉緑体のタンパク質としては、ストローマ
タンパク質(例えばRubiscoの小サブユニット
等);チラコイド膜タンパク質(例えば集光性クロロフ
ィルa/b結合タンパク質等);チラコイドのストロー
マ側表面タンパク質(例えばフェレドキシン等);チラ
コイドタンパク質(例えばプラストシアニン、チトクロ
ムf等)が例示される。
Examples of chloroplast proteins include stroma proteins (eg, small Rubisco subunits); thylakoid membrane proteins (eg, light-harvesting chlorophyll a / b binding proteins); thylakoid stroma-side surface proteins (eg, ferredoxin). ); Thylakoid proteins (eg, plastocyanin, cytochrome f, etc.) are exemplified.

【0018】以下、本発明の実施例について述べる。Examples of the present invention will be described below.

【0019】[0019]

【実施例1】 (1)発現ベクターの構築 ARS1(酵母染色体由来の自律複製配列1(酵母菌染
色体の複製開始点))、REP3(2μmDNA(酵母
菌の内在性プラスミド)由来のプラスミド安定化配
列)、URA3(マーカー遺伝子:オロチジン−5−リ
ン酸デカルボキシラーゼ遺伝子)、GPDプロモーター
(グリセルアルデヒド−3−リン酸デヒドロゲナーゼ遺
伝子由来のプロモーター)、クローニング部位、PGK
ターミネーター(3−ホスホグリセリン酸キナーゼ遺伝
子由来のターミネーター)から構成されるDNA断片を
PCRによって作製した。これをプラスミドpUC19
BglIIへ連結して、発現ベクターYRp1G(図
1)を構築した。YRp1Gの全塩基配列(5763b
p)を図2、図3に示す。
Example 1 (1) Construction of Expression Vector ARS1 (autonomous replication sequence 1 from yeast chromosome (origin of replication of yeast chromosome)), REP3 (2 μm DNA (yeast endogenous plasmid) -derived plasmid stabilizing sequence) ), URA3 (marker gene: orotidine-5-phosphate decarboxylase gene), GPD promoter (promoter derived from glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase gene), cloning site, PGK
A DNA fragment composed of a terminator (terminator derived from 3-phosphoglycerate kinase gene) was prepared by PCR. This is plasmid pUC19
The expression vector YRp1G (FIG. 1) was constructed by ligating to BglII. Full base sequence of YRp1G (5763b
p) is shown in FIGS.

【0020】PCRは常法にしたがって行い、プライマ
ー配列としては、図10に記載した配列を使用した。
PCR was carried out according to a conventional method, and the sequences shown in FIG. 10 were used as the primer sequences.

【0021】またPCRで作製したDNA断片は、mP
CR法(Analytical Biochemist
ry,202,pp.159−161,1992)によ
って連結した。
Further, the DNA fragment prepared by PCR is
CR method (Analytical Biochemist
ry, 202, pp. 159-161, 1992).

【0022】プラスミドpUC19U BglIIは、
文献(Molecular&General Gene
tics,237,pp.327−333,1993)
に記載されているものを使用した。
The plasmid pUC19U BglII is
Literature (Molecular & General Gene
tics, 237, pp. 327-333, 1993).
The one described in was used.

【0023】このようにして構築された新規発現ベクタ
ーYRp1Gは、PCRを駆使することによって必要の
ない配列が最大限除去されていることで、従来のベクタ
ーとは作製法を異にしている。そして、サイズが小さい
という特徴のほか、染色体に組み込まないでも、プラス
ミドとして酵母内で安定に維持されるという特徴を有す
るため、きわめて汎用性の高い有用な発現ベクターとし
て広く利用することができる。
The novel expression vector YRp1G constructed in this way differs from conventional vectors in that the unnecessary sequences are maximally removed by making full use of PCR. In addition to its small size, it has the characteristic of being stably maintained as a plasmid in yeast even if it is not integrated into a chromosome, and thus can be widely used as a very versatile and useful expression vector.

【0024】(2)iCD遺伝子の構造 iCD遺伝子は既述のように既知である。その制限酵素
地図は図4に示すとおりであり、その全塩基配列とアミ
ノ酸配列は図5、図6に示すとおりである。なお図中、
網かけしたPheは成熟型(活性型)iCDのN末端で
あり、開始コドンATG(Met)からTTC(Ph
e)の前までの配列が、プレ配列(ミトコンドリアにタ
ーゲティングするプレ配列)である。
(2) Structure of iCD gene The iCD gene is known as described above. The restriction enzyme map is shown in FIG. 4, and the entire base sequence and amino acid sequence are shown in FIGS. 5 and 6. In the figure,
The shaded Phe is the N-terminus of the mature (active) iCD, and the start codon ATG (Met) to TTC (Ph
The sequence before e) is the presequence (presequence that targets mitochondria).

【0025】(3)iCDの発現(1) パン酵母の染色体DNAからPCRによってiCD遺伝
子を単離した。これを先に作製した発現ベクターYRp
1Gへ連結して、組換えDNA(YRp1G−iC
1)を作製し、Saccharomyces cer
evisiaeの実験室パン酵母株S.cerevis
iae YPH500(米国、カリフォルニア大からの
分譲株)へ移入した。その組換え体S.cerevis
iaeYPH500(YRp1G−iCD1)をフラス
コ培養した結果、非組換え酵母の場合に比して、そのi
CDの発現量は約8倍に増加した(図7)。
(3) Expression of iCD (1) The iCD gene was isolated from the chromosomal DNA of baker's yeast by PCR. Expression vector YRp prepared previously
Recombinant DNA (YRp1G-iC
D 1 ) was prepared and Saccharomyces cer
E. vivisae laboratory baker's yeast strain S. cerevis
Transferred to iae YPH500 (sold from the University of California, USA). The recombinant S. cerevis
As a result of flask culture of iaeYPH500 (YRp1G-iCD 1 ), the i
The expression level of CD was increased about 8-fold (Fig. 7).

【0026】(4)iCDの発現(2) 更にiCD遺伝子のプレ配列(mitochondri
al targeting presequence)
を除去することにより、下記の表1、表2、表3で示さ
れる配列表の配列番号1に示されるDNA配列を得、こ
れを先に作製した発現ベクターYRp1Gへ連結して、
組換えDNA(YRp1G−iCD2)を作製し、上記
と同様に処理してiCDの発現をみた結果、非組換え酵
母の場合に比して、そのiCDの発現量は約40倍に増
加した。
(4) Expression of iCD (2) Furthermore, a presequence of the iCD gene (mitochondri)
al targeting pressure)
Is removed to obtain the DNA sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listings shown in Table 1, Table 2 and Table 3 below, which is ligated to the expression vector YRp1G prepared above,
As a result of producing recombinant DNA (YRp1G-iCD 2 ) and treating it in the same manner as described above and observing the expression of iCD, the expression amount of iCD was increased about 40 times as compared with the case of non-recombinant yeast. .

【0027】[0027]

【表1】 [Table 1]

【0028】[0028]

【表2】 [Table 2]

【0029】[0029]

【表3】 [Table 3]

【0030】(5)iCDの発現(3) iCD遺伝子のプレ配列を除き、更にN末端のアミノ酸
がフェニルアラニンではなくアラニンになるように改変
することにより、下記の表4、表5、表6で示される配
列表の配列番号2に示されるDNA配列を得、これを先
に作製した発現ベクターYRp1Gへ連結して、組換え
DNA(YRp1G−iCD3)を作製し、S.cer
evisiae YPH500へ移入した。この組換え
DNAを含むパン酵母S.cerevisiae YP
H500(YRp1G−iCD3)をフラスコ培養した
結果、非組換え酵母の場合に比して、そのiCDの発現
量は約100倍に増加した。
(5) Expression of iCD (3) By removing the pre-sequence of the iCD gene and modifying it so that the N-terminal amino acid is alanine instead of phenylalanine, the following Tables 4, 5 and 6 are obtained. The DNA sequence shown in SEQ ID NO: 2 of the sequence listing shown was obtained and ligated to the expression vector YRp1G prepared above to prepare a recombinant DNA (YRp1G-iCD 3 ). cer
Transferred to Evisiae YPH500. The baker's yeast S. cerevisiae YP
As a result of flask culture of H500 (YRp1G-iCD 3 ), the expression level of iCD increased about 100 times as compared with the case of non-recombinant yeast.

【0031】[0031]

【表4】 [Table 4]

【0032】[0032]

【表5】 [Table 5]

【0033】[0033]

【表6】 [Table 6]

【0034】これらの組換えプラスミドによるイースト
ミトコンドリアiCDの発現をまとめると、下記表7の
とおりである。
The expression of yeast mitochondrial iCD by these recombinant plasmids is summarized in Table 7 below.

【0035】[0035]

【表7】 [Table 7]

【0036】(6)合成選択培地及び栄養培地による生
産 上記により作製した形質転換体S.cerevisia
e YPH500(YRp1G−iCD1)及びS.c
erevisiae YPH500(YRp1G−iC
3)を用い、次のようにしてそれぞれ合成選択培地及
び栄養培地で培養し、iCDを製造した。
(6) Production in synthetic selection medium and nutrient medium The transformant S. cerevisia
e YPH500 (YRp1G-iCD 1) and S. c
erevisiae YPH500 (YRp1G-iC
D 3) used were cultured in each synthetic selection medium and nutrient medium as follows, was prepared ICD.

【0037】合成選択培地は、4%グルコース、0.8
%アルギニン、0.85%カザミノ酸、0.2%アミノ
酸とヌクレオチドの混合物(ウラシルを含まないも
の)、0.67% yeast nitrogen b
ase(Difco社、アミノ酸を含まないもの)、
0.1M HEPES(pH7.0)の組成からなる培
地を用いた。アミノ酸とヌクレオチドの混合物は、文献
(Rose M D,Winston F &Hiete
r P:Methods in yeast gene
tics:a laboratory course
manual,pp179−180,Cold Spr
ing Harbor LaboratoryPres
s,Cold Spring Harbor,New
York(1990)に従って調製した。栄養培地は、
2%グルコース、2%大豆ペプトン(SE50M,De
ltown)、酵母エキス(オリエンタル酵母工業
(株))からなる培地を用いた。50mLの各培地を使
用し、温度30℃で約80時間培養して、菌体の増殖と
iCD活性を測定した。菌体の増殖は培養液の600n
mでの吸光度(OD600)を測定して調べた。菌体抽出
液のiCD活性は、文献(The Journal o
f Biological Chemistry,26
6(4),pp.2339−2345,1991)に従
って、340nmでの吸光度の変化を測定することによ
って行った。酵素の1単位(1U)は、25℃で1分間
当りに1μmol NADPHを増加させる酵素量と定
義する。菌体抽出液は、文献(Ausubel F
M,Brent R,Kingston RE,Moo
re D D,Seidman J G,Smith J
A,Struhl K:Current proto
cols in molecularbiology,
unit 13,13,John Wiley&So
ns,Inc.,New York(1987))に従
って、グラスビーズによって菌体を破砕して調製した。
結果を図8に示す。
Synthetic selection medium is 4% glucose, 0.8
% Arginine, 0.85% casamino acid, 0.2% mixture of amino acids and nucleotides (without uracil), 0.67% yeast nitrogen b
ase (Difco, does not contain amino acids),
A medium having a composition of 0.1 M HEPES (pH 7.0) was used. Mixtures of amino acids and nucleotides are described in the literature (Rose MD, Winston F & Hiete.
r P: Methods in yeast gene
tics: a laboratory course
manual, pp179-180, Cold Spr
ing Harbor Laboratory Pres
s, Cold Spring Harbor, New
Prepared according to York (1990). The nutrient medium is
2% glucose, 2% soybean peptone (SE50M, De
used a medium containing yeast extract (Oriental Yeast Co., Ltd.). Using 50 mL of each medium, the cells were cultured at a temperature of 30 ° C. for about 80 hours, and the proliferation of cells and iCD activity were measured. Cell growth is 600n of culture
The absorbance at m (OD 600 ) was measured and examined. The iCD activity of the microbial cell extract is shown in the literature (The Journal o
f Biological Chemistry, 26
6 (4), pp. 2339-2345, 1991) by measuring the change in absorbance at 340 nm. One unit of enzyme (1 U) is defined as the amount of enzyme that increases 1 μmol NADPH per minute at 25 ° C. The bacterial cell extract is available in the literature (Ausubel F
M, Brent R, Kingston RE, Moo
re DD, Seidman J G, Smith J
A, Struhl K: Current proto
cols in molecular biology,
unit 13, 13, John Wiley & So
ns, Inc. , New York (1987)).
The results are shown in Fig. 8.

【0038】上記結果から明らかなように、プレ配列を
切除したDNA断片を用いた組換え酵母は、プレ配列を
除去しないiCD遺伝子を用いて作製した組換え酵母に
比して、きわめて顕著なiCD発現量を示した。
As is clear from the above results, the recombinant yeast using the DNA fragment with the pre-sequence excised is extremely remarkable as compared with the recombinant yeast produced using the iCD gene which does not remove the pre-sequence. The expression level was shown.

【0039】(7)16L容発酵槽による生産 上記により作製した形質転換体S.cerevisia
e YPH500(YRp1G−iCD3)を用い、次
のようにしてiCDを製造した。
(7) Production in 16 L fermentor The transformant S. cerevisia
e YPH500 using (YRp1G-iCD 3), was prepared ICD as follows.

【0040】前培養として合成選択培地(50mL)で
2日間フラスコ培養した後、16L容発酵槽(NBS
Microferm Fermentor)を使用して
本培養を行なった。本培養は、酵母エキス(オリエンタ
ル酵母工業(株))4%、大豆ペプトン(SE50M,
Deltown)4%、グルコース2%からなる基本培
地(5.5L)を用いて、温度28℃、攪拌速度400
rpm、通気速度5L/minという条件で行った。さ
らに、培養開始後16時間目から91時間目まで、大豆
ペプトン4%、グルコース17.4%からなる添加培地
(4.5L)を1ml/minの速度で連続流加した
(図9)。その結果、1.66kgの湿菌体が得られ、
ダイノミルで菌体を破砕した抽出液のiCDの比活性は
6.8U/mg、総活性は426,000Uであった。
また、精製iCDの比活性を114.1U/mgとする
と、培養液1L当たりのiCDの発現量は373mgと
推定された。
As a preculture, a flask was cultured in a synthetic selection medium (50 mL) for 2 days, and then a 16 L fermenter (NBS was used).
Main culture was performed using a Microferm Fermentor). The main culture was 4% yeast extract (Oriental Yeast Co., Ltd.), soybean peptone (SE50M,
Using basal medium (5.5 L) consisting of 4% Delta) and 2% glucose, temperature 28 ° C., stirring speed 400
It was carried out under the conditions of rpm and aeration rate of 5 L / min. Furthermore, from 16 hours to 91 hours after the start of culture, an additive medium (4.5 L) consisting of 4% soybean peptone and 17.4% glucose was continuously fed at a rate of 1 ml / min (FIG. 9). As a result, 1.66 kg of wet cells were obtained,
The iCD specific activity of the extract obtained by crushing the cells with Dynomill was 6.8 U / mg, and the total activity was 426,000 U.
Further, when the specific activity of the purified iCD was 114.1 U / mg, the expression level of iCD per 1 L of the culture solution was estimated to be 373 mg.

【0041】その結果、従来よりも簡単に高純度の精製
iCDを調製することができ、iCDの製造工程並びに
精製工程の大幅な省力化が可能となった。
As a result, it is possible to prepare a highly purified purified iCD more easily than ever before, and it is possible to greatly reduce the labor of the manufacturing process and the purification process of the iCD.

【0042】[0042]

【発明の効果】生体内において前駆体タンパク質が活性
型に変わるために必須の配列であるプレ配列をあえて切
除することにより、タンパク質の発現を大幅に増加する
ことができる。
EFFECTS OF THE INVENTION By intentionally excising a pre-sequence which is an essential sequence for changing a precursor protein into an active form in vivo, protein expression can be significantly increased.

【0043】また、単にプレ配列を切除するだけでな
く、アミノ末端のアミノ酸(開始コドンの次のアミノ
酸)を改変することにより、更にタンパク質の発現を大
幅に増強することができる。
Further, not only excision of the pre-sequence but also modification of the amino-terminal amino acid (amino acid next to the start codon) can significantly enhance the protein expression.

【0044】したがって本発明によれば、タンパク質の
収率の増加、生産設備のスケールダウン、生産工程の短
縮が図られ、高純度のタンパク質を大量に生産すること
が可能となる。特に、例えば、組換えDNA(YRp1
G−iCD3)を使用した場合、iCDの発現量は従来
の50〜100倍にも達する。
Therefore, according to the present invention, it is possible to increase the yield of protein, scale down the production facility, and shorten the production process, and it is possible to mass-produce high-purity protein. In particular, for example, recombinant DNA (YRp1
When G-iCD 3 ) is used, the expression level of iCD reaches 50 to 100 times that of the conventional method.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】発現ベクターYRp1Gの制限酵素地図を示
す。
FIG. 1 shows a restriction map of the expression vector YRp1G.

【図2】発現ベクターYRp1Gの全塩基配列(576
3bp)その1を示す。
FIG. 2 is the entire nucleotide sequence of the expression vector YRp1G (576
3 bp) No. 1 is shown.

【図3】同その2を示す。FIG. 3 shows the same part 2.

【図4】iCD遺伝子の制限酵素地図を示す。FIG. 4 shows a restriction map of the iCD gene.

【図5】iCD遺伝子の全塩基配列とアミノ酸配列その
1を示す。
FIG. 5 shows the entire nucleotide sequence and amino acid sequence 1 of the iCD gene.

【図6】同その2を示す。FIG. 6 shows the second part.

【図7】S.cerevisiae YPH500(Y
Rp1G−iCD1)によるiCDの生産を示す。
FIG. 7: S. cerevisiae YPH500 (Y
2 shows iCD production by Rp1G-iCD 1 ).

【図8】S.cerevisiae YPH500(Y
Rp1G−iCD1)及び同(YRp1G−iCD3)に
よる合成選択培地及び栄養培地におけるiCDの生産を
示す。
FIG. 8: S. cerevisiae YPH500 (Y
1 shows production of iCD by Rp1G-iCD 1 ) and the same (YRp1G-iCD 3 ) in a synthetic selection medium and a nutrient medium.

【図9】S.cerevisiae YPH500(Y
Rp1G−iCD3)によるiCDの生産を示す。
FIG. 9: S. cerevisiae YPH500 (Y
3 shows iCD production by Rp1G-iCD 3 ).

【図10】PCRに用いたプライマー配列を示す。FIG. 10 shows the primer sequences used in PCR.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:865) (C12N 9/04 C12R 1:865) ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Internal reference number FI technical display location C12R 1: 865) (C12N 9/04 C12R 1: 865)

Claims (18)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 構造遺伝子からプレ配列部分を除去した
遺伝子を用いることを特徴とするタンパク質の発現増強
方法。
1. A method for enhancing protein expression, which comprises using a gene obtained by removing a pre-sequence portion from a structural gene.
【請求項2】 構造遺伝子からプレ配列部分を除去し、
更に開始コドンの次のアミノ酸をコードする塩基配列を
改変した遺伝子を用いることを特徴とするタンパク質の
発現増強方法。
2. A presequence portion is removed from a structural gene,
A method for enhancing protein expression, which comprises using a gene having a modified base sequence encoding the amino acid next to the start codon.
【請求項3】 オルガネラで活性型となる前駆体タンパ
ク質の遺伝子配列の中から、プレ配列を除いたDNA断
片をプラスミドに連結し、更に宿主細胞に導入した後、
これを培養することによってタンパク質を発現させるこ
とを特徴とする請求項1に記載のタンパク質の発現増強
方法。
3. A DNA fragment from which a pre-sequence has been removed from the gene sequence of the precursor protein which is active in organelles is ligated to a plasmid, which is then introduced into a host cell,
The method for enhancing protein expression according to claim 1, wherein the protein is expressed by culturing the protein.
【請求項4】 オルガネラで活性型となる前駆体タンパ
ク質の遺伝子配列の中からプレ配列を除き、開始コドン
の次のアミノ酸を改変したDNA断片をプラスミドに連
結し、更に宿主細胞に導入した後、これを培養すること
によってタンパク質を発現させることを特徴とする請求
項2に記載のタンパク質の発現増強方法。
4. After removing a pre-sequence from the gene sequence of the precursor protein which is active in organelles, ligating a DNA fragment in which the amino acid next to the start codon is modified to a plasmid, and further introducing it into a host cell, The protein expression enhancing method according to claim 2, wherein the protein is expressed by culturing the protein.
【請求項5】 宿主細胞が酵母であることを特徴とする
請求項1〜請求項4のいずれか1項に記載の方法。
5. The method according to any one of claims 1 to 4, wherein the host cell is yeast.
【請求項6】 タンパク質がミトコンドリアのマトリッ
クスタンパク質であることを特徴とする請求項1〜請求
項5のいずれか1項に記載の方法。
6. The method according to any one of claims 1 to 5, wherein the protein is a mitochondrial matrix protein.
【請求項7】 タンパク質が、クエン酸合成酵素、フマ
ラーゼ、アコニターゼ、イソクエン酸脱水素酵素(iC
D)、L−リンゴ酸脱水素酵素、α−ケトグルタル酸脱
水素酵素、L−グルタミン酸脱水素酵素、アスパラギン
酸トランスアミナーゼ、及びδ−アミノレブリン酸合成
酵素からなる群から選ばれるものであることを特徴とす
る請求項6に記載の方法。
7. The protein is citrate synthase, fumarase, aconitase, isocitrate dehydrogenase (iC).
D), L-malate dehydrogenase, α-ketoglutarate dehydrogenase, L-glutamate dehydrogenase, aspartate transaminase, and δ-aminolevulinate synthase. The method according to claim 6, wherein
【請求項8】 タンパク質がミトコンドリアの内膜、膜
間部(膜間腔)、及び/又は外膜タンパク質であること
を特徴とする請求項1〜請求項6のいずれか1項に記載
の方法。
8. The method according to any one of claims 1 to 6, wherein the protein is a mitochondrial inner membrane, an intermembrane portion (intermembrane space), and / or an outer membrane protein. .
【請求項9】 タンパク質が、チトクロム酸化酵素I
V、チトクロムc1、チトクロムbc1複合体;チトクロ
ムb2、アデニル酸キナーゼ、ヌクレオチド二リン酸キ
ナーゼ、チトクロムcペルオキシダーゼ;及び70kD
a蛋白質からなる群から選ばれるものであることを特徴
とする請求項8に記載の方法。
9. The protein is cytochrome oxidase I.
V, cytochrome c 1 , cytochrome bc 1 complex; cytochrome b 2 , adenylate kinase, nucleotide diphosphate kinase, cytochrome c peroxidase; and 70 kD
The method according to claim 8, wherein the method is selected from the group consisting of a protein.
【請求項10】 タンパク質が葉緑体タンパク質である
ことを特徴とする請求項1〜請求項6のいずれか1項に
記載の方法。
10. The method according to any one of claims 1 to 6, wherein the protein is a chloroplast protein.
【請求項11】 タンパク質が、ストローマ、チラコイ
ド、チラコイド膜、及び/又はチラコイドのストローマ
側表面に局在するタンパク質であることを特徴とする請
求項1〜請求項6のいずれか1項に記載の方法。
11. The protein according to claim 1, wherein the protein is a protein localized on the stroma-side surface of stroma, thylakoid, thylakoid membrane, and / or thylakoid. Method.
【請求項12】 タンパク質が核タンパク質及び/又は
ペルオキシソームタンパク質であることを特徴とする請
求項1〜請求項6のいずれか1項に記載の方法。
12. The method according to any one of claims 1 to 6, wherein the protein is a nuclear protein and / or a peroxisomal protein.
【請求項13】 タンパク質が小胞体タンパク質、ゴル
ジ体タンパク質、リソソームタンパク質、及び/又は液
胞タンパク質であることを特徴とする請求項1〜請求項
6のいずれか1項に記載の方法。
13. The method according to any one of claims 1 to 6, wherein the protein is an endoplasmic reticulum protein, a Golgi apparatus protein, a lysosomal protein, and / or a vacuolar protein.
【請求項14】 図1に示される制限酵素地図を有する
プラスミドYRp1G。
14. A plasmid YRp1G having the restriction enzyme map shown in FIG.
【請求項15】 図1に示される制限酵素地図を有し、
前駆体iCDのプレ配列を除いた配列表の配列番号1に
示す遺伝子の配列を組み込んだプラスミドYRp1G−
iCD2
15. Having the restriction enzyme map shown in FIG. 1,
Plasmid YRp1G-incorporating the sequence of the gene shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing excluding the precursor iCD precursor sequence
iCD 2 .
【請求項16】 図1に示される制限酵素地図を有し、
前駆体iCDのプレ配列を除き、開始コドンの次のアミ
ノ酸を改変した配列番号2に示す遺伝子の配列を組み込
んだプラスミドYRp1G−iCD3
16. Having the restriction enzyme map shown in FIG. 1,
Precursor except presequence of ICD, plasmid YRp1G-ICD 3 incorporating the sequence of the gene shown in SEQ ID NO: 2 obtained by modifying the following amino acid initiation codon.
【請求項17】 プラスミドYRp1G−iCD2また
はYRp1G−iCD3を導入したサッカロミセス属菌
形質転換体。
17. Saccharomyces genus transformant transformed with a plasmid YRp1G-ICD 2 or YRp1G-ICD 3.
【請求項18】 プラスミドYRp1G−iCD2また
はYRp1G−iCD3を導入したサッカロミセス属菌
形質転換体を培養することによってiCDを発現させる
ことを特徴とするiCDの製造方法。
18. A method for producing iCD, which comprises expressing the iCD by culturing a Saccharomyces bacterium transformant introduced with the plasmid YRp1G-iCD 2 or YRp1G-iCD 3 .
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6387683B1 (en) 1997-02-07 2002-05-14 Oriental Yeast Co., Ltd. Recombinant yeast PDI and process for production thereof
JP2009510998A (en) * 2005-07-22 2009-03-19 カロビオス・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッド Antibody secretion from bacteria without signal peptide

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