JPH0650991B2 - NAGase活性測定用試薬および測定方法 - Google Patents
NAGase活性測定用試薬および測定方法Info
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- JPH0650991B2 JPH0650991B2 JP62146143A JP14614387A JPH0650991B2 JP H0650991 B2 JPH0650991 B2 JP H0650991B2 JP 62146143 A JP62146143 A JP 62146143A JP 14614387 A JP14614387 A JP 14614387A JP H0650991 B2 JPH0650991 B2 JP H0650991B2
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- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
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- G01N2333/924—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
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- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 本発明は腎臓障害を鋭敏に反映するN−アセチル−β−
D−グルコサミニダーゼ(以下、NAGaseという)
の活性測定用試薬およびそれを用いた測定方法を提供す
る。
D−グルコサミニダーゼ(以下、NAGaseという)
の活性測定用試薬およびそれを用いた測定方法を提供す
る。
従来技術 NAGase活性測定用基質としては、4−メチルウン
ベリフェリル N−アセチル−β−D−グルコサミニド
(4-Methylumbelliferyl N-acetyl-β-D-glucosaminid
e:4MU−NAG)、バラニトロフェニル N−アセ
チル−β−D−グルコサミニド(PNP−NAG)が古
くから知られていたが、これらは各検体毎に基質ブラン
ク及び尿ブランクが必要であったり、尿中阻害物質の影
響を受け易い、反応に長時間を要する等の欠点がある。
ベリフェリル N−アセチル−β−D−グルコサミニド
(4-Methylumbelliferyl N-acetyl-β-D-glucosaminid
e:4MU−NAG)、バラニトロフェニル N−アセ
チル−β−D−グルコサミニド(PNP−NAG)が古
くから知られていたが、これらは各検体毎に基質ブラン
ク及び尿ブランクが必要であったり、尿中阻害物質の影
響を受け易い、反応に長時間を要する等の欠点がある。
また、メタクレゾールスルホンフタイレン(以下、MC
Pという)の呈色物質とするソジオ−メタクレゾールス
ルホンフタイレニル N−アセチル−β−D−グルコサ
ミニド(以下、MCP−NAGという)が開発され、こ
れらの欠点を解決する基質として特開昭58−994に
開示されているが、基質ブランクが必要であり、またア
ルカリ試薬で一旦酵素反応を停止させなければNAGa
se活性を測定できない(ワンポイント測定法)等の欠
点があった。
Pという)の呈色物質とするソジオ−メタクレゾールス
ルホンフタイレニル N−アセチル−β−D−グルコサ
ミニド(以下、MCP−NAGという)が開発され、こ
れらの欠点を解決する基質として特開昭58−994に
開示されているが、基質ブランクが必要であり、またア
ルカリ試薬で一旦酵素反応を停止させなければNAGa
se活性を測定できない(ワンポイント測定法)等の欠
点があった。
最近、2−クロロ−4−ニトロフェニル−N−アセチル
−β−D−グルコサミニド(以下、CNP−NAGとい
う)が開発され、反応を停止することなくNAGase
活性を測定する(連続測定法)試薬が特開昭61−11
2092に開示されている。これは反応速度を連続的に
測定して酵素活性を測定する方法で自動測定が容易であ
る。しかし、CNP−NAGは水に難溶性である為、界
面活性剤を添加しても、尚、使用時に基質を完全に溶解
するのに数分を要する等の欠点がある。また、微量のN
AGaseの測定には長時間を要する等の欠点もある。
−β−D−グルコサミニド(以下、CNP−NAGとい
う)が開発され、反応を停止することなくNAGase
活性を測定する(連続測定法)試薬が特開昭61−11
2092に開示されている。これは反応速度を連続的に
測定して酵素活性を測定する方法で自動測定が容易であ
る。しかし、CNP−NAGは水に難溶性である為、界
面活性剤を添加しても、尚、使用時に基質を完全に溶解
するのに数分を要する等の欠点がある。また、微量のN
AGaseの測定には長時間を要する等の欠点もある。
解決すべき問題点 本発明者らは以上の点に鑑み、水に易溶性の取り扱い易
い基質を見出すべく研究を重ねた結果、本発明を完成し
た。本発明が提供する測定用試薬は、尿ブランクを必要
とせず、連続測定が可能である。また、非常に高感度で
ある為、微量のNAGaseでも短時間で正確に測定で
きる。
い基質を見出すべく研究を重ねた結果、本発明を完成し
た。本発明が提供する測定用試薬は、尿ブランクを必要
とせず、連続測定が可能である。また、非常に高感度で
ある為、微量のNAGaseでも短時間で正確に測定で
きる。
問題点を解決する為の手段 本発明で使用するソジオ−3,3′−ジクロロフエノール
スルホンフタレイニル N−アセチル−β−D−グルコ
サミニド(以下、CPR−NAGという)は3,3′−ジ
クロロフエノールスルホンフタレイン(クロロフェノー
ルレッド:CPRと略記する)と1−クロロ−1−デオ
キシ−2,3,4,6−テトラアセチル−α−D−グルコサミ
ンとから特開昭58−994記載の方法に従って、容易
に合成することができる。
スルホンフタレイニル N−アセチル−β−D−グルコ
サミニド(以下、CPR−NAGという)は3,3′−ジ
クロロフエノールスルホンフタレイン(クロロフェノー
ルレッド:CPRと略記する)と1−クロロ−1−デオ
キシ−2,3,4,6−テトラアセチル−α−D−グルコサミ
ンとから特開昭58−994記載の方法に従って、容易
に合成することができる。
該CPR−NAGは水に任意の割合で速やかに溶解する
ので、前記CNP−NAGの様に界面活性剤等の特別な
添加剤を必要としない。従って、基質溶液を極めて短時
間で調製することができる。
ので、前記CNP−NAGの様に界面活性剤等の特別な
添加剤を必要としない。従って、基質溶液を極めて短時
間で調製することができる。
基質化合物の分解は、酵素活性の測定限界を低下させる
ことに成る為、基質化合物の安定化は重要な課題であ
る。本発明で使用するCPR−NAGは、格別の安定化
剤を添加しなくもかなり安定であり、その儘、製剤化し
うる。また、冷暗所で保存すれば、測定限界を低下させ
ること無く、相当期間保存しうる。更に長期間の安定性
を欲すれば、安定化剤としてホウ砂を少量添加すること
ができる。ホウ砂の添加量は、CPR−NAG1重量部
に対して約0.02〜約2.0重量部、更に好ましくは約0.6〜
約1.2重量部である。
ことに成る為、基質化合物の安定化は重要な課題であ
る。本発明で使用するCPR−NAGは、格別の安定化
剤を添加しなくもかなり安定であり、その儘、製剤化し
うる。また、冷暗所で保存すれば、測定限界を低下させ
ること無く、相当期間保存しうる。更に長期間の安定性
を欲すれば、安定化剤としてホウ砂を少量添加すること
ができる。ホウ砂の添加量は、CPR−NAG1重量部
に対して約0.02〜約2.0重量部、更に好ましくは約0.6〜
約1.2重量部である。
また試薬の製剤化に際しては、基質試薬と緩衝剤とを別
々の製剤として調製してもよいし、これらを一個の製剤
としてもよい。製剤の美観や安定性を考慮すれば、これ
らは凍結乾燥品とするのが好ましい。
々の製剤として調製してもよいし、これらを一個の製剤
としてもよい。製剤の美観や安定性を考慮すれば、これ
らは凍結乾燥品とするのが好ましい。
本来、NAGaseの活性は反応pHが約4.5〜約5.0の時
に極大となるが、該CPRを発色物質として使用すれ
ば、反応速度は見かけ上pH約6.25付近で最大になる。従
って、使用する緩衝剤はNAGaseの反応pHを約4.5
〜約8.0に保つことができれば全て使用される。更に好
ましくは、該pHが約6.0〜約6.5、最も好ましくは約6.2
〜約6.3である緩衝剤を使用する。例えば、クエン酸、
ホウ砂/クエン酸、クエン酸/リン酸、リン酸、ホウ砂
/リン酸、バルビタール・ナトリウム/酢酸ナトリウ
ム、グッド緩衝剤等が例示され、適宜、精製水に溶解し
て使用する。
に極大となるが、該CPRを発色物質として使用すれ
ば、反応速度は見かけ上pH約6.25付近で最大になる。従
って、使用する緩衝剤はNAGaseの反応pHを約4.5
〜約8.0に保つことができれば全て使用される。更に好
ましくは、該pHが約6.0〜約6.5、最も好ましくは約6.2
〜約6.3である緩衝剤を使用する。例えば、クエン酸、
ホウ砂/クエン酸、クエン酸/リン酸、リン酸、ホウ砂
/リン酸、バルビタール・ナトリウム/酢酸ナトリウ
ム、グッド緩衝剤等が例示され、適宜、精製水に溶解し
て使用する。
前記MCP−NAGの測定法では、酵素反応を充分に進
行させた後、アルカリ試薬を添加して酵素を失活させる
と共に、生成したアグリコン(MCP)を発色させなけ
ればならない。この方法では操作が1つ増すばかりでな
く、反応の進行を呈色によって知ることができないの
で、反応不充分でアルカリ試薬を添加した場合には、再
度測定を行なわなければならない。
行させた後、アルカリ試薬を添加して酵素を失活させる
と共に、生成したアグリコン(MCP)を発色させなけ
ればならない。この方法では操作が1つ増すばかりでな
く、反応の進行を呈色によって知ることができないの
で、反応不充分でアルカリ試薬を添加した場合には、再
度測定を行なわなければならない。
一方、本発明測定用試薬に於ては、酵素反応を吸光度変
化として直接追跡できるので、操作が簡便であるのみな
らず、前記のようなミスは生じない。更に、最近の自動
測定器の多くは、連続測定用に設計されており、測定の
自動化が容易である。
化として直接追跡できるので、操作が簡便であるのみな
らず、前記のようなミスは生じない。更に、最近の自動
測定器の多くは、連続測定用に設計されており、測定の
自動化が容易である。
(測定原理) pH約4.5〜約8.0の緩衝液中で、基質化合物CPR−NA
GはNAGaseにより加水分解されてCPRを生成す
る。CPRのpKaは約5.8であり、生成したCPRは直ち
に赤紫色(λmax=575nm)を呈す。単位時間後の吸光度
差からNAGase活性を求める。
GはNAGaseにより加水分解されてCPRを生成す
る。CPRのpKaは約5.8であり、生成したCPRは直ち
に赤紫色(λmax=575nm)を呈す。単位時間後の吸光度
差からNAGase活性を求める。
(連続測定法測定操作) 基質溶液(2〜6mM、pH約4.5〜約8.0)1.0mlに検体*
50μlを加えて、37℃にて恒温セルホルダー付分光
光度計で検体添加t1分後とt2分後の575nmにおける吸
光度A1及びA2をそれぞれ測定する。
50μlを加えて、37℃にて恒温セルホルダー付分光
光度計で検体添加t1分後とt2分後の575nmにおける吸
光度A1及びA2をそれぞれ測定する。
注)検体: ヒトまたは動物由来の尿または血清であり、採取後直ち
に測定するのが好ましい。しかし、長時間保存するとき
は2N塩酸または2N水酸化カリウムを用いてpHを6.5
に調整しておく。こうすれば、検体中のNAGase活
性は室温で約1日、−20℃で約4ヶ月間安定である。
に測定するのが好ましい。しかし、長時間保存するとき
は2N塩酸または2N水酸化カリウムを用いてpHを6.5
に調整しておく。こうすれば、検体中のNAGase活
性は室温で約1日、−20℃で約4ヶ月間安定である。
(酵素活性の定義) 測定条件下、1分間に1μMのCPRを生成させるNA
Gaseの量を1 IU/とする。
Gaseの量を1 IU/とする。
(酵素活性の求め方) NAGase活性は次式より算出される。
ΔA=A2−A1 ε=CPRの測定pH、測定波長における吸光係数(cm2
/μM) d=光路長(cm) Δt(t2−t1)は通常1〜20分、特に5〜10分が好
ましい。
/μM) d=光路長(cm) Δt(t2−t1)は通常1〜20分、特に5〜10分が好
ましい。
以下の諸実施例、諸実験例により本発明を更に詳しく説
明するが、これらは何等、本発明を限定するものではな
い。
明するが、これらは何等、本発明を限定するものではな
い。
参考例1 3,3′−ジクロロフエノールスルホンフタレイニル N
−アセチル−β−D−グルコサミニド ペンタアセテー
ト(1)の製造 クロロフエノールレツド(1.4g,3.3mmol)のメタノール
(4ml)溶液に0.9717Mのナトリウムメチラート(6.8ml,
3.3×2mmol)を加えて15分間攪拌した後、35℃以下
でメタノールを減圧留去する。残渣にトルエンを加えて
摩砕したのち減圧乾固する。同操作を更に2回繰り返
し、次いで減圧乾燥する。
−アセチル−β−D−グルコサミニド ペンタアセテー
ト(1)の製造 クロロフエノールレツド(1.4g,3.3mmol)のメタノール
(4ml)溶液に0.9717Mのナトリウムメチラート(6.8ml,
3.3×2mmol)を加えて15分間攪拌した後、35℃以下
でメタノールを減圧留去する。残渣にトルエンを加えて
摩砕したのち減圧乾固する。同操作を更に2回繰り返
し、次いで減圧乾燥する。
この様にして得た二ナトリウム塩をDMF(7ml)に溶
解し、アセトクロログルコサミン(1.1g,3mmol)を加え
て21時間攪拌する。これにアンバーライト IRC-50
(10ml)を加えて30分攪拌した後、濾過し、メタノ
ールで洗浄する。濾液および洗液を合し、減圧乾固す
る。
解し、アセトクロログルコサミン(1.1g,3mmol)を加え
て21時間攪拌する。これにアンバーライト IRC-50
(10ml)を加えて30分攪拌した後、濾過し、メタノ
ールで洗浄する。濾液および洗液を合し、減圧乾固す
る。
残渣をピリジン(20ml)に溶解後、無水酢酸(10m
l)を加えて室温にて一夜放置する。反応混液を減圧濃
縮し、トルエンを加えて更に減圧濃縮する。残渣をカラ
ムクロマトグラフイー(水3%含有SiO210g,0.063-
0.2mmφ)に付してジクロルメタンの画分(160ml)
から2.1gの無色あめ状物を得る。これを更にカラムク
ロマトグラフイー(ローバーカラムB,溶媒系:酢酸エ
チル)に付して第4〜9画分(15g/画分)を集め、
目的物を0.98g得る。これを酢酸エチル/エーテルより
再結晶して標題化合物(1)0.8g(収率36.9%)を得る。
mp142〜143℃。
l)を加えて室温にて一夜放置する。反応混液を減圧濃
縮し、トルエンを加えて更に減圧濃縮する。残渣をカラ
ムクロマトグラフイー(水3%含有SiO210g,0.063-
0.2mmφ)に付してジクロルメタンの画分(160ml)
から2.1gの無色あめ状物を得る。これを更にカラムク
ロマトグラフイー(ローバーカラムB,溶媒系:酢酸エ
チル)に付して第4〜9画分(15g/画分)を集め、
目的物を0.98g得る。これを酢酸エチル/エーテルより
再結晶して標題化合物(1)0.8g(収率36.9%)を得る。
mp142〜143℃。
IRνmax(Nujol):3265,3090,1750,1663,1604,1556,1352c
m-1. NMR(90MHz,CDCl3)δ:1.85(3H,s),2.00(9H,s),2.32(3H,
s). 元素分析C35H33NO14Cl2S・1/2H2Oとして、 (計算値) C;52.32,H;4.27,N;1.74,Cl;8.83,S;3.99. (実測値) C;52.33,H;4.25,N;1.73,Cl;8.34,S;3.84. 参考例2 ソジオ−3,3′−ジクロロフエノールスルホンフタレイ
ニル N−アセチル−β−D−グルコサミニド(2)の製
造 参考例1で得た化合物(1)2.057g(2.56mmol)をメタノ
ール18mlに溶解し、0.9717Mのナトリウムメチラート
5.3ml(2.58×2mmol)を加えて、窒素気流中で3時間反
応させる。反応液にアンバーライト IRC-50(10ml)
を加えて1時間攪拌した後、濾過し、メタノールで洗浄
する。濾液および洗液を合し、35℃以下で減圧乾固す
る。得られた黄色泡状物を5mlの水に溶解し、これをD
EAE−セフアロース CL-6B(10ml、フアルマシア
社製)のカラムに通じて、流出液を集める。流出液を凍
結乾燥して目的化合物(2)1.735g(収率98.1%)を非晶
状粉末として得る。
m-1. NMR(90MHz,CDCl3)δ:1.85(3H,s),2.00(9H,s),2.32(3H,
s). 元素分析C35H33NO14Cl2S・1/2H2Oとして、 (計算値) C;52.32,H;4.27,N;1.74,Cl;8.83,S;3.99. (実測値) C;52.33,H;4.25,N;1.73,Cl;8.34,S;3.84. 参考例2 ソジオ−3,3′−ジクロロフエノールスルホンフタレイ
ニル N−アセチル−β−D−グルコサミニド(2)の製
造 参考例1で得た化合物(1)2.057g(2.56mmol)をメタノ
ール18mlに溶解し、0.9717Mのナトリウムメチラート
5.3ml(2.58×2mmol)を加えて、窒素気流中で3時間反
応させる。反応液にアンバーライト IRC-50(10ml)
を加えて1時間攪拌した後、濾過し、メタノールで洗浄
する。濾液および洗液を合し、35℃以下で減圧乾固す
る。得られた黄色泡状物を5mlの水に溶解し、これをD
EAE−セフアロース CL-6B(10ml、フアルマシア
社製)のカラムに通じて、流出液を集める。流出液を凍
結乾燥して目的化合物(2)1.735g(収率98.1%)を非晶
状粉末として得る。
元素分析C27H24NO10Cl2SNa・MeOH・1/2H2Oとして、 (計算値) C;49.24,H;4.28,N;2.03,Cl;10.26,S;4.64. (実測値) C;48.87,H;4.61,N;2.05,Cl;9.81,S;4.38. 実施例1 CPR−NAGを50mMホウ砂含有の水溶液で30mM濃
度に溶解し、20mlガラスバイアルに2mlずつ分注した
後、凍結乾燥して基質試薬とする。
度に溶解し、20mlガラスバイアルに2mlずつ分注した
後、凍結乾燥して基質試薬とする。
クエン酸二カリウム塩502.9gとクエン酸三カリウム塩1
014.0gを粉砕後、混合して粒度を揃えて粉末充填機で3
03.4mgずつ25mlポリ容器に充填して緩衝剤とする。
014.0gを粉砕後、混合して粒度を揃えて粉末充填機で3
03.4mgずつ25mlポリ容器に充填して緩衝剤とする。
用時、蒸留水20mlを加えて緩衝溶液を調製し、その全
量を基質試薬に加えて測定用試薬溶液(pH6.25)を調製
する。
量を基質試薬に加えて測定用試薬溶液(pH6.25)を調製
する。
実施例2 CPR−NAG30mM、ホウ砂50mMおよび塩化ナトリ
ウム1.5MをBis-Tris*緩衝液500mM(pH6.10)に溶解
し、これを20mlガラスバイアルに2mlずつ分注した
後、凍結乾燥して緩衝剤を含有する測定用試薬とする。
ウム1.5MをBis-Tris*緩衝液500mM(pH6.10)に溶解
し、これを20mlガラスバイアルに2mlずつ分注した
後、凍結乾燥して緩衝剤を含有する測定用試薬とする。
注)*:ビス(2−ヒドロキシエチル)イミノトリス
(ヒドロキシメチル)メタン。
(ヒドロキシメチル)メタン。
用時、蒸留水20mlを加えて測定用試薬溶液(pH6.25)
を調製する。
を調製する。
実験例1 実施例1で調製した測定用試薬溶液(pH6.25)100μ
lを96穴平底マイクロプレートの各穴に取り、各々に
検体10μlずつを加える。マイクロプレート分光光度
計(MCC340型:タイターテック社製)で540nm
における吸光度A1を測定する。室温下で放置し、正確に
10分後、再び540nmにおける吸光度A2を測定する。
lを96穴平底マイクロプレートの各穴に取り、各々に
検体10μlずつを加える。マイクロプレート分光光度
計(MCC340型:タイターテック社製)で540nm
における吸光度A1を測定する。室温下で放置し、正確に
10分後、再び540nmにおける吸光度A2を測定する。
ブランクとして検体の替わりに蒸留水10μlを加えた
ものを前記と同様にして操作して、ブランクの吸光度を
それぞれ求める(ΔB=B2−B1)。
ものを前記と同様にして操作して、ブランクの吸光度を
それぞれ求める(ΔB=B2−B1)。
検体と同様に、活性既知のNAGaseを同様に反応さ
せて検量線を作成し、1分間あたりの吸光度変化からN
AGase活性を求める。
せて検量線を作成し、1分間あたりの吸光度変化からN
AGase活性を求める。
検量線を第1図に示し、従来のMCP−NAGワンポイ
ント測定法(NAGテストシオノギ:商標)との相関関
係を第2図に示す。
ント測定法(NAGテストシオノギ:商標)との相関関
係を第2図に示す。
実験例2 市販のNAGase活性測定用試薬(CNP−NAG連
続測定法)を求め、記載の使用方法に従つて試薬溶液を
調製する。試薬溶液50μlを96穴平底マイクロプレ
ートの各穴に取り、各々に活性既知のNAGase標準
液を10μlずつ加える。マイクロプレート分光光度計
(MCC340型:タイターテック社製)で405nmに
おける吸光度A1を測定する。室温下で放置し、正確に3
0分後、再び405nmにおける吸光度A2を測定して、C
NP−NAG法の検量線(○−○)を作成する。第3
図。
続測定法)を求め、記載の使用方法に従つて試薬溶液を
調製する。試薬溶液50μlを96穴平底マイクロプレ
ートの各穴に取り、各々に活性既知のNAGase標準
液を10μlずつ加える。マイクロプレート分光光度計
(MCC340型:タイターテック社製)で405nmに
おける吸光度A1を測定する。室温下で放置し、正確に3
0分後、再び405nmにおける吸光度A2を測定して、C
NP−NAG法の検量線(○−○)を作成する。第3
図。
実施例1で調製した本発明の測定用試薬溶液(pH6.25)
100μlを96穴平底マイクロプレートの各穴に取
り、各々に検体10μlずつを加える。マイクロプレー
ト分光光度計(MCC340型:タイターテック社製)
で540nmにおける吸光度A1を測定する。室温下で放置
し、正確に10分後、再び540nmにおける吸光度A2を
測定して、CPR−NAG法(本発明)の検量線(●−
●)を作成する。第3図。
100μlを96穴平底マイクロプレートの各穴に取
り、各々に検体10μlずつを加える。マイクロプレー
ト分光光度計(MCC340型:タイターテック社製)
で540nmにおける吸光度A1を測定する。室温下で放置
し、正確に10分後、再び540nmにおける吸光度A2を
測定して、CPR−NAG法(本発明)の検量線(●−
●)を作成する。第3図。
第3図から明らかな様に、本発明による方法は先行技術
のものと比較して、測定感度が約3〜4倍高い。NAG
aseの濃度が非常に低い場合には、感度が低ければ反
応に長時間を費やさなければ正確な測定ができないが、
本発明方法の様に感度が高ければ、短時間で正確な測定
ができるので便利である。
のものと比較して、測定感度が約3〜4倍高い。NAG
aseの濃度が非常に低い場合には、感度が低ければ反
応に長時間を費やさなければ正確な測定ができないが、
本発明方法の様に感度が高ければ、短時間で正確な測定
ができるので便利である。
第1図は、活性既知のNAGaseから求めた本発明試
薬の検量線であり、NAGase活性と生成するCPR
との関係を示す。横軸はNAGase濃度(IU/)を
示し、縦軸は生成するCPRの量を吸光度(ΔA540nm/
分)で示す。 第2図は、MCP−NAG法と本発明方法(CPR−N
AG法)の相関関係を示す。横軸はMCP−NAG法に
よるMAGase濃度(IU/)を示し、縦軸はCPR
−NAG法によるNAGase濃度(IU/)を示す。 直線回帰 Y=0.97x+1.84 相関係数 r=0.99 第3図は、本発明方法(CPR−NAG法)および先行
技術の方法(CNP−NAG法)によるそれぞれのNA
Gase検量線を示す図。横軸はNAGase濃度(IU
/)を示し、縦軸は30分あたりの吸光度変化を示
す。図中、●−●はCPR−NAG法(ΔA540nm/分)
を、○−○はCNP−NAG法(ΔA405nm/分)を示
す。
薬の検量線であり、NAGase活性と生成するCPR
との関係を示す。横軸はNAGase濃度(IU/)を
示し、縦軸は生成するCPRの量を吸光度(ΔA540nm/
分)で示す。 第2図は、MCP−NAG法と本発明方法(CPR−N
AG法)の相関関係を示す。横軸はMCP−NAG法に
よるMAGase濃度(IU/)を示し、縦軸はCPR
−NAG法によるNAGase濃度(IU/)を示す。 直線回帰 Y=0.97x+1.84 相関係数 r=0.99 第3図は、本発明方法(CPR−NAG法)および先行
技術の方法(CNP−NAG法)によるそれぞれのNA
Gase検量線を示す図。横軸はNAGase濃度(IU
/)を示し、縦軸は30分あたりの吸光度変化を示
す。図中、●−●はCPR−NAG法(ΔA540nm/分)
を、○−○はCNP−NAG法(ΔA405nm/分)を示
す。
Claims (7)
- 【請求項1】下記試薬aおよびbより成り、実質的にア
ルカリ試薬を含まないN−アセチル−β−D−グルコサ
ミニダーゼ活性測定用試薬。 a.次式: で示されるソジオ−3,3′−ジクロロフエノールスルホ
ンフタレイニル N−アセチル−β−D−グルコサミニ
ドを含有する基質試薬、 b.緩衝剤。 - 【請求項2】前記試薬aおよびbが、それぞれ別々の容
器に充填されている特許請求の範囲第1項記載の測定用
試薬。 - 【請求項3】基質試薬aがソジオ−3,3′−ジクロロフ
エノールスルホンフタレイニル N−アセチル−β−D
−グルコサミニドとホウ砂との凍結乾燥品である特許請
求の範囲第2項記載の測定用試薬。 - 【請求項4】前記試薬aおよびbが、一の容器に充填さ
れている特許請求の範囲第1項記載の測定用試薬。 - 【請求項5】該測定用試薬がソジオ−3,3′−ジクロロ
フエノールスルホンフタレイニル N−アセチル−β−
D−グルコサミニド、ホウ砂および緩衝剤の凍結乾燥品
である特許請求の範囲第4項記載の測定用試薬。 - 【請求項6】次式: で示されるソジオ−3,3′−ジクロロフエノールスルホ
ンフタレイニル N−アセチル−β−D−グルコサミニ
ドを含有する試薬に緩衝剤を加えてpH6.0〜pH6.5の基質
溶液を調製し、これに検体を加えて遊離する3,3′−ジ
クロロフエノールスルホンフタレインを比色定量するこ
とを特徴とする実質的にアルカリ試薬を使用しないN−
アセチル−β−D−グルコサミニダーゼ活性の測定方
法。 - 【請求項7】単位時間あたりの吸光度の変化量を測定す
ることを特徴とする特許請求の範囲第6項記載の測定方
法。
Priority Applications (8)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62146143A JPH0650991B2 (ja) | 1987-06-11 | 1987-06-11 | NAGase活性測定用試薬および測定方法 |
EP19880109201 EP0294804B1 (en) | 1987-06-11 | 1988-06-09 | Method for determination of nagase and reagent therefor |
DE88109201T DE3884466T2 (de) | 1987-06-11 | 1988-06-09 | Verfahren zur Bestimmung der NAGase und Reagens dafür. |
ES88109201T ES2059440T3 (es) | 1987-06-11 | 1988-06-09 | Metodo para la determinacion de la actividad de la nagase y reactivo para el mismo. |
AT88109201T ATE95245T1 (de) | 1987-06-11 | 1988-06-09 | Verfahren zur bestimmung der nagase und reagens dafuer. |
AU17596/88A AU618004B2 (en) | 1987-06-11 | 1988-06-10 | Method for determination of nagase and reagent therefor |
KR1019880007050A KR900005623B1 (ko) | 1987-06-11 | 1988-06-11 | Nag 아제의 측정 방법 및 그의 시약 |
US07/723,652 US5155026A (en) | 1987-06-11 | 1991-06-26 | Method for determination of nagase and reagent therefor |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62146143A JPH0650991B2 (ja) | 1987-06-11 | 1987-06-11 | NAGase活性測定用試薬および測定方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63309199A JPS63309199A (ja) | 1988-12-16 |
JPH0650991B2 true JPH0650991B2 (ja) | 1994-07-06 |
Family
ID=15401112
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62146143A Expired - Lifetime JPH0650991B2 (ja) | 1987-06-11 | 1987-06-11 | NAGase活性測定用試薬および測定方法 |
Country Status (8)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5155026A (ja) |
EP (1) | EP0294804B1 (ja) |
JP (1) | JPH0650991B2 (ja) |
KR (1) | KR900005623B1 (ja) |
AT (1) | ATE95245T1 (ja) |
AU (1) | AU618004B2 (ja) |
DE (1) | DE3884466T2 (ja) |
ES (1) | ES2059440T3 (ja) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3345748A1 (de) * | 1983-12-17 | 1985-08-29 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Phenolsulfonphthaleinyl-ss-d-galactoside, verfahren zu deren herstellung sowie deren verwendung zur bestimmung der ss-d-galactosidase |
JPH04221393A (ja) * | 1990-12-20 | 1992-08-11 | Kikkoman Corp | N−アセチル−β−D−グルコサミン誘導体、これを有効成分とするN−アセチル−β−D−グルコサミニダーゼ活性測定用試薬及びこれを用いたN−アセチル−β−D−グルコサミニダーゼ活性の測定方法 |
JP2722874B2 (ja) * | 1991-08-01 | 1998-03-09 | 日東紡績株式会社 | 新規N−アセチル−β−D−グルコサミン誘導体及びこれを基質に用いたN−アセチル−β−D−グルコサミニダーゼ活性測定法 |
US20050187532A1 (en) * | 2004-02-24 | 2005-08-25 | Medex, Inc. | Diaphragm-based reservoir for a closed blood sampling system |
CN111850092A (zh) * | 2020-07-01 | 2020-10-30 | 甘肃省地质矿产勘查开发局第三地质矿产勘查院(甘肃遥感地质中心、甘肃地质灾害防治工程勘查设计院、甘肃省地质遗迹评估中心、甘肃省中心实验室) | 基于土壤酶活性测定的土壤生物学活性和生产力评价方法 |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4552841A (en) * | 1981-03-17 | 1985-11-12 | Shionogi & Co., Ltd. | N-Acetyl-β-D-glucosaminides for determining N-acetyl-β-D-glucosaminidase activity |
JPS58994A (ja) * | 1981-03-17 | 1983-01-06 | Shionogi & Co Ltd | 新規N−アセチル−β−D−グルコサミン誘導体およびこれを基質として用いるN−アセチル−β−D−グルコサミニダ−ゼ活性測定法 |
AU1498883A (en) * | 1982-06-21 | 1984-01-05 | State Of Queensland, The | Method for diagnosis of mastitis using enzyme, n-acetyl-b-d -glucosaminidase |
DE3345748A1 (de) * | 1983-12-17 | 1985-08-29 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Phenolsulfonphthaleinyl-ss-d-galactoside, verfahren zu deren herstellung sowie deren verwendung zur bestimmung der ss-d-galactosidase |
JPS61112092A (ja) * | 1984-11-07 | 1986-05-30 | Meiji Seika Kaisha Ltd | 新規グルコサミン誘導体及びこれを基質として用いるN−アセチル−β−D−グルコサミニダ−ゼの活性測定試薬 |
-
1987
- 1987-06-11 JP JP62146143A patent/JPH0650991B2/ja not_active Expired - Lifetime
-
1988
- 1988-06-09 ES ES88109201T patent/ES2059440T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1988-06-09 DE DE88109201T patent/DE3884466T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1988-06-09 EP EP19880109201 patent/EP0294804B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1988-06-09 AT AT88109201T patent/ATE95245T1/de not_active IP Right Cessation
- 1988-06-10 AU AU17596/88A patent/AU618004B2/en not_active Expired
- 1988-06-11 KR KR1019880007050A patent/KR900005623B1/ko not_active IP Right Cessation
-
1991
- 1991-06-26 US US07/723,652 patent/US5155026A/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
AU618004B2 (en) | 1991-12-12 |
EP0294804B1 (en) | 1993-09-29 |
KR900005623B1 (ko) | 1990-07-31 |
DE3884466T2 (de) | 1994-03-17 |
US5155026A (en) | 1992-10-13 |
DE3884466D1 (de) | 1993-11-04 |
EP0294804A2 (en) | 1988-12-14 |
ES2059440T3 (es) | 1994-11-16 |
ATE95245T1 (de) | 1993-10-15 |
AU1759688A (en) | 1988-12-15 |
EP0294804A3 (en) | 1989-09-20 |
JPS63309199A (ja) | 1988-12-16 |
KR890000898A (ko) | 1989-03-17 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |