JPH0630618B2 - シアリル化されたLewisxエピト−プ,抗体及び診断 - Google Patents

シアリル化されたLewisxエピト−プ,抗体及び診断

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JPH0630618B2
JPH0630618B2 JP60133139A JP13313985A JPH0630618B2 JP H0630618 B2 JPH0630618 B2 JP H0630618B2 JP 60133139 A JP60133139 A JP 60133139A JP 13313985 A JP13313985 A JP 13313985A JP H0630618 B2 JPH0630618 B2 JP H0630618B2
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Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 腫瘍関連抗原に向けられたモノクローナル抗体について
今まで多くの報告がある。しかしながら、これらのうち
少数の抗体のみが血清中の腫瘍関連抗原を検出するため
に有用であると知られている。大部分、抗原が腫瘍性組
織に関連しているが、隣接の正常組織には関連しないこ
とが見出される場合において、その抗原は他の部位では
正常組織に存在していることがその後見出される。従っ
て、多くの場合誤った陽性の程度が診断として抗原の検
出に対してどんな価値をも破壊する。
技術の現状において、生理液体中の抗原の検出が癌の完
全な予言者であることは必要でない。
腫瘍が取り除かれる多くの場合、腫瘍の効果的除去又は
腫瘍が引き続き存在しているかの診断として、特異エピ
トピックマーカーの生理液体中における存在の変化をだ
れでもがモニターすることができる。他の場合におい
て、確実に腫瘍状態を見分けるために2又はそれ以上の
マーカーが使用されるかも知れない。さらに他の場合に
おいて、腫瘍を見分けるために、マーカーが正常な細胞
と比較して腫瘍細胞の表面上に、十分に多く分布するこ
とのみが必要であるということが想像される。
従って、腫瘍に関する特異エピトープを定義することが
できることは非常に価値があり、このエピトープとは、
生理液体(たとえば血液又は血清)における腫瘍の診断
を、合理的な正確さで可能にし、この場合、マーカーは
単独で又は、他のマーカーと接合において用いられる。
〔従来の技術〕
コプロウスキィ,など.,ランセット(Lancet)(198
2)|:1332〜1333は、消化管癌の指標として
のLewis血液型の診断に関する19−9と称するモノク
ローナル抗体を報告している。この抗体は、結腸癌患者
からの血清の約60%と反応する。マグナニ,など.,キ
ャンサー リサーチ(Cancer Research)(1983)
:5489〜92は、19−9が結合する抗原が、癌
患者の血清中に放出されるムチン上に存在するエピトー
プ又はリアリレイトLewisa構造であることを報告した。
バスト,など.,ニュー イングランド ジャーナル
オブ メディスン(New England Journal of Medicine)
(1983)309:883〜887は、高分子量グリ
コタンパク質でありそして卵巣癌腫をもつ患者の血清中
に82%見出されるCA125と称する抗原と反応する
モノクローナル抗体を報告している。ラウバラ,ジャー
ナル オブ ザ バイオロジカル ケミストリイ(Journ
al of the Biological Chemistry)(1976)25
:7517〜7520は、ヒト腎臓の新しいガングリ
オシドとしてラクト−N−フコペンタオースIIIのシア
リル化(Sialylated)誘導体(これはシアリル(Lexと呼
ばれる)を公表している。
新生物におけるシアリル化(Sialylation)の重要性は多
くの報告の主題であった。たとえば次の文献を参照のこ
と:ウオレン,など.,プロヌィーディング オブ ザ
ナショナル アカデミィ オブ サイアンス オブ
USA(Proceedings of the National Academy of Sei
ences of the USA)(1972)69:1838〜184
2;ヴァンビーク,など.,ブリティッシュ ジャーナ
ル オブ キャンサー(British Journal of Cancer)
(1977)36:157〜165;ウォレン,な
ど.,バイオケミカバイオフィジカアクタ(Biochemica
et Biophysica Acta)(1978)516:97〜12
7;グリック,バイオケミストリイ(Biochemistyy)(197
9)18:2525〜2532;及びユージィースウォレ
ン及びタオ,バイオケミカル アンド バイオフィジカ
ル リサーチ コミュニケーション (Biochemical and Biophysical Research Communicatio
ns)(1980)95:1452〜1460.癌細胞に
対して生ずる多くのモノクローナル抗体はシアリル化さ
れたLewisa〔マグナニ,など.,ジャーナル オブ ザ
バイオロジカル ケミストリイ(Journal of the Biol
ogical Chemistry)(1982)257:14365〜
14369;〕;Lewisb〔ブロックハウス,など.,イ
ビド(ibid)(1981)256:13223〜1322
5〕;及びLewisx〔ハコモリ,など.,バイオケミカル
アンド バイオフイズィカル リサーチ コミュニィ
ケーション (Biochemical and Biophysical Research Communicatio
ns)(1981)100:1578〜1586〕のような末
端炭水化物構造に対してその主たる活性を持つものとし
て報告されている。
〔発明の要約〕
血清中のシアリル化されたLexエピトープ又は構造を含
む分子の検出が診断として使用される。シアリル化され
たLex(構造)に対するモノクローナル抗体は、種々の
用途において、すなわち診断及び治療におけるin vitro
及びin vivoの両者において使用されうる。モノクロー
ナル抗体を産生するハイブリドマは、他の細胞を形質転
換し、その細胞をモノクローナル抗体産生性にするため
に、又は免疫グロブリンの発現のための遺伝子源として
用いられることができる。
〔特定の実施態様の説明〕
新しい方法及び組成物が、次のような構造、 を持ち、そして/又はCSLEX1と命名されたモノクローナ
ル抗体に結合しているエピトープの存在の検出のために
提供される。このエピトープは腫瘍細胞、及び相当数の
正常組織上に高発生率で存在していることが見出され
る。
エピトープはLewisx構造のシアリル化型であることによ
って特徴づけられている。それは一般的にCSLEX1抗体に
よる、細胞性テストによって決定されるように顆粒球上
に見つけられるがしかし、同じ細胞毒性テストによって
明らかなように、リンパ球、単球、血小板及び赤血球細
胞に関連していることは見出されない。それは、またほ
とんどの白血病−リンパ腫系上でも、明らかでない。
シアリル化されたLexエピトープは、正常組織及び食堂
の腺と粘膜、いくらか膵臓の腺房細胞及び結腸の深陰窩
の限定部位、及びHenleの近位細管及び下降係蹄におい
て見出すことができる。抗原は、胃、肺、脳、胸腺、皮
膚、卵巣、子宮、副腎、及び筋肉のテストされた正常組
織においては検出されない。
シアリル化されたLexエピトープは、胃、結腸及び膵臓
の腺癌を含むいろいろな癌、並びに食道、胸、及び卵巣
の腫瘍上に存在する。
エピトープは、またCFU-C上のCSLEX1抗体の効果によっ
て立証されているように、顆粒球の前駆細胞上に見つけ
られる。
シアロシル ラクト フコペンタオシル(III)セラミド
及びシアロシルジフコシル ガングリオシド(VIB)とし
てシアリレイトLex構造は、検出されそして、他の多く
のガングリオシド類、セラミド類及びグロボシド類から
区別され得る。
シアリル化されたLex構造はヒト腎臓に存在するグリコ
リピッド上で検出された(ラウバラ,ジャーナル オブ
ザ バイオロジカル ケミストリ(Journal of the Bi
ological Chemistry)(1976)251:7517〜752
0)。そしてプロナーゼによる活性の部分的低下及び結
腸腺癌における管の管腔含有物中におけるそのムチンの
存在によって明確なようにたぶんムチン上に存在する。
シアリル化された型のLexは、広く種々の方法において
用いられ得る。シアリル化されたLexに対するポリクロ
ーンナル抗血清の生成のための又は好ましくはシアリル
化されたLexに対するモノクローンナル抗体のための免
疫原を得るための抗原と接合したパプテンとして、それ
を用いることができる。この抗体はIgM,IgG又はIgA、特
にIgM又はIgGである。抗体は、血液中に存在する補体又
は他の細胞溶解活性との組み合せにおいて、細胞毒性又
は非細胞毒性を示すかも知れない。
シアリル化されたLexは、診断検定において試薬として
使用のために修飾することができる。すなわち検出可能
なシグナルを供給するラベルに、受容体(たとえば抗
体)を通して共有的に又は非共有的にハプテンが接合さ
れる。例示的ラベルは、放射性同位元素(たとえば3H,
125I,131I);螢光物(たとえばフルオレスセイン,フ
ィコビリタンパク質,稀土類キレート,ダンシル,ロダ
ミン、等);酵素基質及び酵素阻害物質;酵素(たとえ
ばホースラディシュ パーオキシダーゼ,グルコース
オキシダーゼ,グルコース−6−ホスフェートデヒドロ
ジナーゼ,アセチルコリン−エステラーゼ、等);粒子
(たとえば、デキストラン,アガローズ,金属粒子,磁
気粒子,ポリスチレン粒子、等)もしくは、同様の物を
含んでいる。種種のラベルにハプテンを接合する方法
は、広く文献に記載されている。たとえば、アメリカ特
許番号3,817,837;4,134,791;及び 4,220,722を参照のこと。結合の部位は、シアリル化さ
れたラクト−N−フコペンタオースIIIである必要はな
いが、しかしLex抗原に接触した基(たとえばホスフォ
リピッド,結合基、もしくは同様の物)に接触した基を
通して、結合されるかも知れない。
すでに指摘したようにハプテンは、抗体を誘発するだろ
うイムノゲンを供給する抗原と接合することができる。
一方、ハプテンを担持する細胞(元のままの又はフラグ
メントとしていづれかの)は、適切な背推動物において
免疫反応を誘発するために、使用され得る。特に、通常
の技法(コフラー及びミルスティン,ネイチュアー(Nat
ure)(1975)256:495〜497)に従ってパ
プテンに対して特異なモノクローナル抗体を産生するこ
とが望ましいだろう。どの種かが、モノクローナル抗体
を調製するために用いられる場合、最とも便利であり及
び有用に利用可能な融合パートナーを持つので、大部分
マウスが使用されるだろう。しかしながら、人間の治療
において又は人間においてインビボイメージングにおい
て使用のために、ヒトモノクローナル抗体を調製するこ
とが望ましいかも知れない。例示的なヒト融合パートナ
ーは、1981年3月26日に提出された出願番号247,
652及び1982年1月27日に公表されたヨーロッパ
特許出願0044722に見い出される。宿主の免疫
化、融合、クローン化、選択及びモノクローナル抗体の
単離のための技法は、十分に確立されていてそしてさら
にここで説明する必要はない。この目的のために、この
開示を引用によりこの明細書中に組み入れる。
モノクローナル抗体は診断、治療、インビボイメージン
グ、もしくは同様の事に使用される。特定の使用に依存
して、抗体は、独自に又は、共有的に又は非共有的に抗
体に接合した他の物質と共に用いることができる。ハプ
テンと共に使用のために、すでに記載したのと同タイプ
のラベルを、診断検定において用いるために、抗体と共
に使用することができる。インビトロイメージングのた
めに、ここで記載されたもの以外の放射性核種(特にテ
クネチウム,ヨードもしくは同様の物)が使用されるだ
ろう。
使用されるラベル化は通常の技法に従いそして抗体当り
のラベルの数は、ラベルの性質、所望のシグナルの感
度、ラベル化の目的、及び同様の事に依存して変わるだ
ろう。血液,血清又は血漿中のシアリル化されたLex
プテンを含む分子の検出のための多くの種々の診断検定
においてモノクローナル抗体が使用される。多くの検定
は、広範囲ないろいろのハプテン(これはこの発明にお
いて適用される)の検出のために抗体とともに使用する
方法に開発されてる。上で引用したアメリカ特許を参照
のこと。
調製されるハイブリドマは、種々の方法において、たと
えば特定の抗体についての遺伝子コード源として所望の
抗体を作る新ハイブリドマを付与する他の融合パートナ
ーとの融合のために、ハイブリドマ以外のものによる抗
体の製造法を開発するために使用するために、又はハイ
ブリドマの結合部位が検定に使用される場合の試薬とし
ての使用目的のために使用することができる。
完全な抗体を、使用する必要はなく、むしろ単にフラグ
メント(たとえばFab,(Fab′),Fvv2もしくは同様の
もの)が使用される。
ネズミモノクローナルIgM(CSLEX1と命名された)が特に
興味の対照である。
次の例は、限定的でなく、例示的に提供される。
実験方法及び材料 免疫化及び体細胞の雑種形成 生後4〜6週間の雌のBALB/cマウスを、フロイント完全
アジュバント中に乳化された胃腺癌組織(32−OP−
T−ST)からの0.5mg膜タンパク質を用いて皮下に免
疫化した。同量の膜タンパク質による2回の追加粘液注
入を、2週間隔で行なった。3日後、脾臓細胞の融合
を、脾臓ブラスト細胞のPercollグラジィエント濃縮を
使用しながら、Kohler及びMllateinの修飾された方法に
よって骨髄腫P3−X63−Ag8.653(カーニイ,な
ど.,ジャーナル オブ ザ イミュノロジイ(Journal
of the Immunology)(1979)123:1548〜
1550)と共に行なった。
融合の後2週間、上清液を、ELISA及び微細胞毒性テス
トによって、抗体生成について分析した。138の肉眼
的なクローンを、融合の後同定し、これらのうち17個
は、免疫組織と反応するが、しかし正常な胃及び結腸と
は反応しない。このハイブリドクローンを、限界希釈法
によって二度サブクローンし、そしてBALB/cマウス中に
継代接種し、腹水を生成せしめた。
組織.いろいろな器管からのヒト腫瘍組織を手術で得、
そして−80℃で保存した。正常なヒト組織を、死体腎
臓提供者及び腫瘍性疾患を有しない患者の死体解剖から
得、その次即座にイソペンタンドライアイスの混合物中
で冷凍しそして−80℃に保存した。
細胞系.胃癌細胞系(H.ホンジョーによって確立され
たMKN1,MKN28,MKN45、及びMKN74並びにM.セキグチに
よって確立されたKATO-III)を、日本の新潟大学(H.
ワタナベ教授)の第1病理学課から得た。胃癌系MK−
92はS.ムカイ及びY.クロス(日本大学,日本)に
よって確立された。肺及び結腸癌系(PC−1,PC−
3,PC−6,PC−7,PC−8,PC−9,PC−
10,PC−12,PC−13,PC−14,QG−5
6及びC−1)を、Y.ハヤタ(東京医科大学,日本)
及びK.タナカ(九州大学,日本)から得た。結腸細胞
系M−7609を、M.フクシマ(弘前大学,日本)か
ら得た。食道癌系(TE−1及びSH1)は、T.ニシ
ヒラ(東北大学,日本)及びイイズカ(国立癌センタ
ー,日本)によって確立された。この研究において使用
される他の細胞系を、American type Culture Collecti
onから得た。すべての細胞系を15%の子牛の胎児血清
(FCS)、ペニシリン及びストレプトマイシンによって補
われたRPMI-1640培地での培養によって維持した。
膜調製法.粗膜分画を、冷凍組織から分離した。要約す
れば、検体を、1mMフェニルメチルスルフォニルフルオ
ライド(PMSF)及び2mM塩化カルシウムを含む、pH7.4
で、4℃のPBS中で、解凍した。細かくした後、細胞
を、細胞破壊ボンベにおいて破壊し、次に破壊された細
胞の分別遠心分離を行なった。この粗膜分画を、PBS中
に再懸濁しそして−80℃で保存した。
ELISAによるモノクローナル抗体のスクリーニング ミクロ−ELISAテストのために、テラサキ組織培養平板
(Falcon)を種々の膜分画(pH9.6の重炭酸塩緩衝液にお
いて25μg/mで)により4℃で1晩被覆した。PB
S-0.05%Tween20中で洗浄の後、ウエルを重炭酸塩緩衝
液中、1%オバルブミンにより、37℃で1時間被覆オ
バルブミンの除去の後、5μのサンプルを添加しそし
て37℃で2時間インキュベートした。3回の洗浄(PB
S-0.05%Tween20により)の後、5μのパーオキシ
ダーゼでラベルされたヤギ抗マウスIg(IgG+IgM)(KPLラ
ボラトリイズ)を、反応させるために37℃で1時間放
置した。5回の洗浄の後、5μのO−フェニレンジア
ミンを、室温で添加し15分間置いた。この反応を2.5
M硫酸で止められた。光学濃度を、DynatechTR200
リーダーにより492nmで測定した。
マイクロサイトトキシティテスト 補体依存のマイクロサイトトキシティテストを、標準ミ
クロ技法(テラサキ、など、アメリカンジャーナル オ
ブ クリニカル パソロジイ(American Journal of Cli
nical Pathelegy)(1978)69:103〜120)
により実施した。要約すれば、1μの抗体を、約15
00目標細胞と30分間インキュベートし、次にウサギ
補体と共に25℃で1時間インキュベートした。生存
は、染料排除によって査定された。
間接的免疫螢光検定 50μのおおまかに希釈した抗体と、細胞を室温で3
0分間反応することによって、間接的免螢光法を実施し
た。PBS-0.01%ナトリウムアジドによる3回の洗浄の
後、細胞を、FITC−接合されたヤギ抗マウスIgMの50
μ中において、4℃で、30分間インキュベートし、
次に3回洗浄した。細胞を螢光顕微鏡法により試験し、
10〜20μg/mのマウス骨髄種IgMを負対照とし
て用いた。
イムパーオキシターゼ染色法 イムパーオキシターゼ染色法によって、反応性抗原の免
疫化学的局在定位を検査するために正常な及び腫瘍性の
新鮮な組織を用いた。Tris−緩衝溶液(TBS)中、4%ホ
ルマリンにおいて、1.5〜5分間固定され、低温槽で製
造された組織断片を、1%ウシ血清アルブミン(BSA)を
含むTBS中に希釈されたモノクローナル抗体と共に室温
で1時間培養した。5〜10μg/mのマウス骨髄種
IgMを、負対照として用いた。PBS中で洗浄の後1:10
0に希釈された、ヤギ抗マウスIgG+IgM(KPLラボラトリ
イズ)のパーオキシターゼ接合F(ab′)を、室温で4
5分間組織断片に加えた。PBS中で洗浄の後、pH5.2及び
0.01%H2O2で、0.02M酢酸ナトリウム緩衝液中、0.021
%w/v3−アミノ−9−エチルカルボゾル(Sigma Ch
emical)において、6分間スライドを処理し、次に、ヘ
マトキシリンにより対比染色しそしてグリセロール/PB
Sにおいて固定した。
酵素処理 プロナーゼ(60μg/0.1m、Calbiochem-Behring,
San Diego.CA),トリプシン (500μg/0.1m,Werchington Biochemical,Fre
ehold,NJ),フィシン(10μg/0.1m,Sigma Chem
ical,St.Louis,MO),ノイラミニダーゼ(0.5IU/m,
0.1IU/m,0.02IU/m,V,Chorea,Calbiochemから
の)、及び過ヨウ素酸ナトリウム(5mM)を使用して、
標準ELISA技法によって、免疫化用胃腺癌組織の酵素処
理を行なった。この酵素反応は、37℃で1時間行っ
た。
イムパーオキシターゼによるノイラミニターゼ処理も、
ノイラミニターゼ(アースロバクターウレアファシエン
ス(Arthrobactor ureafaciens)由来,Calbiochem)を用
いて、37℃、2時間のインキュベートにより行なっ
た。
CFU-C検定 CFU-C検定のために、10%FCSを含むRPMI1640培地中3
×10/mでの骨髄細胞懸濁液50μを、いろい
ろな希釈のモノクローナル抗体の溶液25μと共に3
7℃で30分間インキュベートした。正常のウサギ血清
を、補体源として添加しそして60分間続けてインキュ
ベートした。この処理された細胞(1×10)を、2
0%FCS,20%PHA-LCM(フィトヘムアダルチニン)及
び0.3%寒天を含むα培地と共に混合しそして次にミク
ロプレート上に置いた。5%の二酸化炭素空気中、37
℃で10日間の培養の後コロニーにつき40細胞以上を
有するコロニーの数を計数した。この結果は対照と比較
してコロニー形成細胞の%回収として表した。
固層放射免疫測定法 決定は、カアーニギ,など.,キャンサー リサーチ(C
ancer Research)(1983)43:4997〜500
5により記載された方法によりなされた。おのおののウ
エルを、10ngの糖脂質、並びに50ngのレシチン及び
30ngのクロレステロールにより被覆した。この固層放
射免疫測定法において使用される種々の糖脂質の構造並
びに、下記のTLC免疫染色検定において使用される種々
の糖脂質の構造は、第6表に示されている。
TLC免疫染色法 TLC免疫染色法を、マグナニ,など.,アナライティカ
ルバイオケミストリイ(Analytical Biochemistry)(1
980)109:399〜402の方法を用いて、Bake
rのHPTLCミニープレート(5×6cm)上で行なった。抗
体を300倍に希釈しそして非特異染色を最小にするため
にTLCプレート上に適用した。
結果 正常な末梢血液細胞及び白血病−リンパ種系に対する反
応性 第1表に示めされるように正常なパネル細胞及び白血病
−リンパ腫系によりCSLEX1モノクローナル抗体の細胞毒
活性を検査した。
IgM抗体(腹水力価1:10)は、テストされる顆粒
球に対して細胞毒性を示し、そしてテストされるリンパ
球、単球、血小板、及び赤血球に対して、非サイトトキ
シィーであった白血病−リンパ腫系において、それは、
2つの細胞系、検定されるAPL系(HL-60)及び組織球リン
パ腫系(U-937)だけに反応性を示すが、しかし、検定さ
れるT-ALL系(8402,CEM,MOLT-4,HPB-MLT),B−リ
ンパ腫系(Daudi,Ramos,Raji,Wel)、及びCALL系(KM
−3,Reh)には反応性を示さなかった。これらの白血
病−リンパ腫系に対するCSLEX1の免疫螢光法は同一の結
果を得た。
種々の固形腫瘍細胞系に対する反応性 34の種々の腫瘍細胞系が、第2表に示されるように、
ミクロサイトキシティー、免疫螢光法及び免疫パーオキ
シターゼ染色法によって反応性について検出された。CS
LEX1は、2つの胃癌系(KATO-III及びMKN28),1つの肺
腺癌系(PC−3),3つの肺鱗状細胞癌系(PC−
1,PC−9,QG−56),5つの結腸腺癌系(C−
1,M7609,COLO205,WiDr,COLO320),2
つの肺癌系(SK−BR−2III及びBT−20),及
び1つの食道腫瘍系(TE−1)により生じる。34細
胞系のうち合計14(41%)と共に陽性反応を示し
た。特に高頻度の陽性反応性は、結腸腺癌系に観察され
た(7のうち6又は71%)。
正常及び悪性組織におけるCSLEX1抗原の組織分布 免疫パーオキシダーゼ染色法によって、CSLEX1抗体反応
性抗原の組織分布は、第3表に与えられている。正常組
織の強い陽性染色は、食道腺及び食道粘膜において、並
びに腎臓のHenleの近位細管及び下降係蹄において観察
される。弱い染色は、結腸の深陰窩のひじょうに限定さ
れた部分に、膵臓の腺房細胞に、肝臓の肝細胞及びKupf
fer細胞、及び顆粒球において観察された。抗原は、検
定される胃,肺(肺胞のマクロファージを除く)、脳,
胸腺,皮膚,卵巣,子宮,副腎,筋肉、もしくは結合組
織において検出されなかった。
74の種々のテストされた腫瘍組織が第4表に示されて
いる。驚くことに、CSLEX1抗体によって認識される抗原
が多くの癌において検出することができた−17の胃腺
癌のうち16,17の結腸腺癌のうち13,16の肺腫瘍
のうち10、4の食道腫瘍のうち2、3の膵臓腺癌のう
ち3、8の胸腫瘍のうち2、及び6の卵巣腫瘍のうち3
である。マウス骨髄腫IgM(5〜10μg/m)は、
コントロールとして用いられそしてこれらの組織のどれ
とも反応しなかった。すべてのサンプルは腫瘍組織だけ
を含んでいたが、しかし、17の結腸腺癌サンプルのう
ち6が腫瘍組織及び隣接の正常組織を含んでいた。これ
らの6のサンプルのうち5において、正常の組織部が染
色されなかった。陽性に反応する結腸腺癌サンプルの癌
性部は、管癌の先端の細胞質及び管腔含有物において染
色を示した。ムチンレイクを含む4の胃サンプルのうち
3及び8の結腸サンプルのうち8が、だいぶムチン上の
抗原の存在によって、この抗体と陽性反応を示した。CS
LEX1による腫瘍組織の高頻度の陽性染色は癌細胞の分化
度には関係なく、腺癌、たとえば胃,結腸、及び肺にお
いて観察された。陽性染色性は、またいくらかの鱗状細
胞癌サンプル中において観察された。CSLEX1抗体は、テ
ストされる74腫瘍のうち50(68%)と反応した。
CSLEX1反応性抗原の酵素処理 ノイラミニダーゼ及びナトリウムパーヨーデイト免疫性
胃腺癌の処理は、CSLEX1の結合を完全に減じた。プロナ
ーゼによる処理は、一部、結合を減少させた(第5−A
表)。これらの結果は、免疫性組織上の抗原がシアリル
化された糖タンパク質であることを示唆する。
CSLEX1を有する正常な腎臓管及び食道組織のイムノパー
オキシダーゼ染色法は、ノイラミニダーゼ処理によって
廃止された(第5−B表)。
Lexに対して向けられた抗体(CSLEX1)によって検出され
る抗原は、ノイラミニダーゼ処理によって、影響されな
かった。
CFU-C検定 モノクローナル抗体がCFU-C上に効果を持っていた。CFU
-Cの回収率は、ウサギ補体による処理の後、1:10
の希釈で28%であった。これは、CSLEX1がCFU-C、す
なわち顆粒球の前駆体と反応するということを示してい
る。
種々のガングリオシドとのCSLEX1の反応性 異なった抗体希釈度でのガングリオシドとの反応性を、
固層イムノラジオアッセイによって決定した。シアロシ
ルラクトフコペンタオシル(III)セラミド(Rauvala)及
びシアロシルジフコシルガングリオシド(6B)と、抗
体は反応したが、テストされた他の物とは反応しなかっ
た。CSLEX1抗体によるガングリオシドのTLC免疫染色パ
ターンも、決定した。CSLEX1は、6Bガングリオシド及
びRauvalaのガングリオシドの両方と反応したが、しか
し、シアロシルLaa分画とも他のガングリオシドとも反
応しなかった。
第6表は、CSLEX1抗体に対してテストされたフコガング
リオシドを示している。モノクローナル抗体は、シアロ
シルLewisxハプテンを含む、最初の2つのガングリオシ
ドと反応したことが見られる。この抗体は、第6表に示
されたようにわずかに異なった化学構造をもつ類似の誘
導体とは反応しなかった。
赤血球凝集テストを、2倍に希釈した血清の0.05m及
び1%の敏感にされたオックス赤血球細胞の0.05mを
含んでいるU−型ウェルにおいて実施した。反応性は室
温で2時間のインキュベーションの後、読み取った。感
作された赤血球を添加する前に、患者の血清及びCSLEX1
と共にインキュベートすることにより確認テストを実施
した。第7表を参照のこと。
CSLEX1抗体が、癌患者からの313の血清のうち23%
の血清と反応するが一方、80の正常人からのどの血清
とも反応しないということを、次のデータは証明してい
る。シアリル化されたLeaの場合のように、シアリル化
された形のLexは癌患者の血清中に存在するが、しかし
正常な患者の血清中には存在しない(マグナニイ,キャ
ンサー リサーチ(Cancer Research)(1983)43:54
89〜5492).従って、腫瘍の存在を検出し、腫瘍
をうまく除去するためにモニターに写し、及び、さらに
腫瘍の位置の徴候をもたらすために診断テストにおい
て、CSLEX1抗体は使用され得る。
この発明は、例示の方法及び明確に理解するために例に
よっていく分詳しく記載されたけれども、ある変更及び
改変を行うことができる。
なお、ハイブリドーマCSLEX1は、1984年6月20日
にNO.HB8580としてA.T.C.C.に寄託された。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 (C12P 21/08 C12R 1:91) (72)発明者 フクシマ,キヨヤス アメリカ合衆国,カリフオルニア 90247, ガーデナ,ウエスト ガーデナ ブールバ ード 1619 (72)発明者 ワキサカ,アケミ アメリカ合衆国,カリフオルニア 90504, トーランス,フエアビユー レーン 18224 (72)発明者 イグロ,タカシ アメリカ合衆国,カリフオルニア 90503, トーランス,7,ガーネツト 3730

Claims (8)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】腫瘍状態の存否を調べるための方法であっ
    て、シアリル化されたLex(Lewisx)ハプテンと前記シア
    リル化されたLexハプテンに対するモノクローナル抗体
    との反応により、前記シアリル化されたLexハプテンを
    含む分子の血液中での存在を検出することを含んで成る
    方法。
  2. 【請求項2】前記モノクローナル抗体がCSLEX1である特
    許請求の範囲第1項記載の方法。
  3. 【請求項3】シアリル化されたLexハプテンに対するモ
    ノクローナル抗体。
  4. 【請求項4】前記ハイブリドマCSLEX1から得られた特許
    請求の範囲第3項に記載のモノクローナル抗体。
  5. 【請求項5】検出可能なシグナルをもたらすことができ
    る化合物に接合される特許請求の範囲第3項に記載のモ
    ノクローナル抗体。
  6. 【請求項6】前記ラベルが螢光物である特許請求の範囲
    第3項に記載のモノクローナル抗体。
  7. 【請求項7】前記ラベルが酵素である特許請求の範囲第
    3項に記載のモノクローナル抗体。
  8. 【請求項8】前記ラベルが放射性同位体である特許請求
    の範囲第3項に記載のモノクローナル抗体。
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