JPH057463A - Feed for aquatic animal and method for culturing aquatic animal - Google Patents

Abstract

PURPOSE:To obtain a means capable of preventing or suppressing cannibalism of cultured aquatic animal such as fishes or crustacea and simultaneously promoting growth of the animal. CONSTITUTION:Tryptophan or a tryptophan derivative is added to a feed or water for culturing. Thereby cannibalism of fishes or crustacea is suppressed and simultaneously growth of the animal is promoted.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【０００１】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、水生動物用飼料及び水
生動物の養殖方法に関する。特には、トリプトファン又
はその誘導体によって養殖水生動物の共食いを防止ない
し抑制し、更には成長を促進させる技術に関する。TECHNICAL FIELD The present invention relates to a feed for aquatic animals and a method for culturing aquatic animals. In particular, it relates to a technique for preventing or suppressing cannibalism of cultured aquatic animals by tryptophan or a derivative thereof and further promoting growth.

【０００２】[0002]

【従来の技術】魚類や甲殻類などの水生動物には、自然
界において共食いがしばしば観察される。魚類や甲殻類
の養殖においても、養殖魚（又は養殖甲殻類）相互の共
食いが問題となっている。更に、養殖魚（又は養殖甲殻
類）が相互に噛み合うので細菌に侵され易くなり、結局
死亡する個体が増えるという問題もある。これらの共食
い及び噛み合い（以下、本明細書では共食い及び噛み合
いの両者を含めて「共食い」として説明する）により、
出荷個数の減少や商品価値の低下が起こるので、これを
防止ないし抑制する方法が望まれているが、現在のとこ
ろこれを満足することのできる方法は見出されていな
い。2. Description of the Related Art Cannibalism is often observed in nature in aquatic animals such as fish and crustaceans. In the aquaculture of fish and crustaceans, mutual cannibalism of cultured fish (or cultured crustaceans) has become a problem. Further, there is a problem that cultured fish (or cultured crustaceans) are intermeshed with each other, so that they are easily affected by bacteria, and eventually many individuals die. By these cannibalization and engagement (hereinafter, described as "cannibalism" including both cannibalization and engagement in the present specification),
Since a decrease in the number of products shipped and a decrease in commercial value occur, a method for preventing or suppressing this is desired, but at present, no method has been found that can satisfy this.

【０００３】[0003]

【発明が解決しようとする課題】本発明者は、養殖魚
（又は養殖甲殻類）における前記の共食いの問題を解決
するために種々研究を行ったところ、トリプトファン又
はその誘導体を魚類又は甲殻類に与えると共食いを有効
に防止ないし抑制することができると共に、成長を促進
する効果を有することを見出した。本発明は、かかる知
見に基づくものである。The present inventor has conducted various studies to solve the above-mentioned cannibalism problem in cultured fish (or cultured crustaceans), and found that tryptophan or a derivative thereof was added to fish or crustaceans. It has been found that when given, it can effectively prevent or suppress cannibalism and has an effect of promoting growth. The present invention is based on such findings.

【０００４】[0004]

【課題を解決するための手段】従って、本発明は、トリ
プトファン又はトリプトファン誘導体を含むことを特徴
とする、水生動物用飼料に関する。更に、本発明は、ト
リプトファン又はトリプトファン誘導体の存在下に水生
動物を飼育することを特徴とする、水生動物の養殖方法
にも関する。The present invention therefore relates to a feed for aquatic animals, characterized in that it contains tryptophan or a tryptophan derivative. Furthermore, the present invention also relates to a method for culturing aquatic animals, which comprises breeding aquatic animals in the presence of tryptophan or a tryptophan derivative.

【０００５】本発明が対象とする水生動物は、例えば魚
類及び甲殻類であって、養殖されるものである限り特に
制限されるものではない。魚類としては、例えば、フ
グ、ヒラメ、タイ、ハマチ、テラピア、ハタ、ウナギ、
コイ、マス、ドジョウ、ナマズ、金魚等がある。また、
甲殻類としては、例えば、オニテナガエビ、クルマエ
ビ、イセエビ，ロブスター、ワタリガニ、ウシエビ、タ
イショウエビなどを挙げることができる。更に、その他
の水性動物としては、スッポンを挙げることができる。The aquatic animals targeted by the present invention are, for example, fish and crustaceans, and are not particularly limited as long as they are cultured. Examples of fish include puffer fish, flounder, Thailand, yellowtail, tilapia, grouper, eel,
There are carp, trout, loach, catfish and goldfish. Also,
Examples of the crustaceans include shrimp, shrimp, lobster, lobster, blue crab, shrimp, sea shrimp and the like. Furthermore, as another aquatic animal, a turtle can be mentioned.

【０００６】トリプトファンが家畜類（例えば、ウシ、
ブタ又はニワトリ）に対して精神安定作用を有すること
は知られているが、これを水産養殖に利用することは従
来知られておらず、特に、養殖魚（又は甲殻類）の共食
い防止あるいは抑制に効果があることは、本発明者が初
めて見出したものである。Tryptophan is used in livestock (eg bovine,
It is known that it has a tranquilizing effect on pigs or chickens, but its use in aquaculture has not been known so far, and in particular, it prevents or suppresses cannibalism of cultured fish (or crustaceans). The present invention has been found for the first time to have the effect.

【０００７】本発明によれば、トリプトファン又はトリ
プトファン誘導体を飼料に含有させるか、あるいは養殖
用水に溶解させることによって魚類又は甲殻類に与える
ことができる。本発明で用いるトリプトファンはＬ体だ
けでなく、Ｄ体であることもできる。トリプトファン誘
導体としては、例えば、５─ヒドロキシトリプトファ
ン、インドールピルビン酸、又はトリプトファンの二量
体若しくは三量体、更にはトリプトファン（Ｔｒｐ）と
他のアミノ酸〔例えば、グリシン（Ｇｌｙ）、グルタミ
ン酸（Ｇｌｕ）又はアラニン（Ａｌａ）〕１〜２個との
ペプチド（特には、Gly-Trp 、Trp-Gly 、Ala-Trp、Glu
-Trp ）を挙げることができる。According to the present invention, tryptophan or a tryptophan derivative can be fed to fish or crustaceans by containing it in feed or dissolving it in aquaculture water. The tryptophan used in the present invention can be not only the L-form but also the D-form. Examples of the tryptophan derivative include 5-hydroxytryptophan, indolepyruvate, or a dimer or trimer of tryptophan, and tryptophan (Trp) and other amino acids [eg, glycine (Gly), glutamic acid (Glu) or Alanine (Ala)] 1-2 peptides (especially Gly-Trp, Trp-Gly, Ala-Trp, Glu
-Trp).

【０００８】トリプトファン又はトリプトファン誘導体
の有効量は対象とする水生動物の種類により多少の差異
があるが、一般には、トリプトファン又はトリプトファ
ン誘導体０．０１〜１０重量％、好ましくは０．０５〜
５重量％を含有させた飼料を用いるのが好ましい。含有
量が０．０１重量％未満であると共食い防止効果が弱く
なり、１０重量％を越えると生残率が低下したり投与量
の増加に伴う共食い防止効果や成長効果が得られない。
飼料としては、対象とする魚類用又は甲殻類用として従
来から公知の任意の飼料を用いることができる。The effective amount of tryptophan or tryptophan derivative varies depending on the type of aquatic animal to be treated, but generally 0.01 to 10% by weight of tryptophan or tryptophan derivative, preferably 0.05 to
It is preferable to use a feed containing 5% by weight. If the content is less than 0.01% by weight, the cannibalism-preventing effect is weakened, and if it exceeds 10% by weight, the survival rate is lowered and the cannibalism-preventing effect and the growth effect due to the increase of the dose cannot be obtained.
As the feed, any feed conventionally known for the target fish or shellfish can be used.

【０００９】また、トリプトファン又はトリプトファン
誘導体を飼育水に溶解させる場合にも、対象とする水生
動物の種類により多少の差異があるが、一般には、飼育
水中にトリプトファンを０．０１ppm 〜１０００ppm 、
好ましくは１．０ppm 〜１００ppm で存在させる。存在
量が１０００ppm を越えても存在量の増加に伴う共食い
防止効果の向上が得られないので経済的に不利になり、
存在量が０．０１ppmより少ないと共食い防止効果が弱
くなる。Also, when tryptophan or a tryptophan derivative is dissolved in breeding water, there are some differences depending on the kind of the aquatic animal to be treated, but in general, tryptophan in the breeding water is 0.01 ppm to 1000 ppm,
It is preferably present at 1.0 ppm to 100 ppm. Even if the abundance exceeds 1000 ppm, the cannibalism prevention effect cannot be improved with the increase of the abundance, which is economically disadvantageous.
If the amount is less than 0.01 ppm, the effect of preventing cannibalism becomes weak.

【００１０】対象とする魚類又は甲殻類に対してトリプ
トファン又はトリプトファン誘導体を与えるには、飼料
への含有、又は養殖用水への溶解のいずれか一方の手段
を採用するだけでなく、両者を併用することもできる。In order to give tryptophan or a tryptophan derivative to the target fish or crustacean, not only the means of inclusion in feed or the dissolution in aquaculture water is adopted, but both are used in combination. You can also

【００１１】[0011]

【実施例】以下、実施例によって本発明を更に具体的に
説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定され
るものではない。以下の実施例において特に断らない限
り、％は重量％である。例１ 孵化後８日のナマズ〔日本産ナマズ；Parasilurus asot
us(Linne) 〕（平均体重０．３ｇ）をガラス水槽（６０
×３０×３０cm）中に入れて飼育し、トリプトファンに
よる共食い防止効果を調べた。即ち、Ｌ−トリプトファ
ン（関東化学製）を各種の濃度（１日目及び２日目は表
１に記載の濃度、そして３日目以後はそれらの１／３の
濃度）で飼育水中に溶解させ、止水及び通気条件下で水
温１９〜２２℃にて各群１００尾を飼育し、７日後の生
残尾数を計数した。飼料としては、新鮮魚貝類を主原料
とするペースト状ウナギ餌付け用飼料を、魚体重１ｇ当
たり０．３ｇ用いた。結果を表１に示す。The present invention will be described in more detail with reference to the following examples, but the present invention is not limited to these examples. In the following examples,% is% by weight unless otherwise specified. Example 1 Catfish 8 days after hatching [catfish from Japan; Parasilurus asot
us (Linne)] (average weight 0.3g) in a glass tank (60
(30 × 30 cm) and bred to examine the cannibalism-preventing effect of tryptophan. That is, L-tryptophan (manufactured by Kanto Chemical Co., Inc.) was dissolved in breeding water at various concentrations (concentrations shown in Table 1 on the first and second days, and 1/3 of those on the third and subsequent days). Under the conditions of still water and aeration, 100 fish in each group were bred at a water temperature of 19 to 22 ° C., and the number of surviving fish after 7 days was counted. As the feed, 0.3 g per 1 g of fish weight was used as a paste-like eel feeding feed mainly composed of fresh fish and shellfish. The results are shown in Table 1.

【００１２】例２ 供試魚として孵化後２３日の前記例１と同様の日本産ナ
マズ（平均体重０．４ｇ）を用い、前記例１と同様の試
験を実施した。即ち、４個のガラス水槽（６０×３０×
３０cm）中に各群５０尾のナマズを入れ、Ｌ−トリプト
ファン（関東化学製）１０ppm を飼育水中に溶解させ、
止水及び通気条件下で、水温１９〜２２℃にて飼育し、
３〜５日後の生残尾数を計数した。飼料としては、前記
例１と同様のペースト状ウナギ餌付け用飼料を、魚体重
１ｇ当たり０．３ｇ用いた。結果を表２に示す。 Example 2 As a test fish, the same Japanese catfish (average weight 0.4 g) as in Example 1 on the 23rd day after hatching was used and the same test as in Example 1 was performed. That is, four glass water tanks (60 x 30 x
50 cm of catfish in each group were placed in 30 cm) and 10 ppm of L-tryptophan (manufactured by Kanto Kagaku) was dissolved in the breeding water,
Under static and aerated conditions, breed at a water temperature of 19-22 ° C,
The number of surviving fish after 3 to 5 days was counted. As the feed, the same paste-like eel feeding feed as in Example 1 was used at 0.3 g per 1 g of fish weight. The results are shown in Table 2.

【００１３】例３ 孵化後２４日の前記例１と同様の日本産ナマズ〔計２０
０尾（５０尾×４群）：平均体重０．６ｇ〕を、それぞ
れ４個のガラス水槽（６０×３０×３０cm）中に入れて
飼育し、トリプトファンによる共食い防止効果を調べ
た。即ち、前記例１と同様のペースト状ウナギ餌付け用
飼料にＬ−トリプトファン（関東化学製）を表３に記載
の濃度で添加し、得られた飼料を各水槽に対して１日当
たり魚体重の８．３％に相当する量で与えた。飼育は、
流水（２リットル／分）下で通気しながら、水温２４℃
にて２１日間行った。但し、５日目、１２日目及び１９
日目には給餌を行わなかった。結果を表３に示す。 Example 3 Japanese catfish similar to that of Example 1 24 days after hatching (total 20)
0 fish (50 fish x 4 group): average body weight of 0.6 g] was put in each of four glass water tanks (60 x 30 x 30 cm) and bred, and the effect of preventing cannibalism by tryptophan was examined. That is, L-tryptophan (manufactured by Kanto Kagaku Co., Ltd.) was added to the same paste-like eel feeding feed as in Example 1 at the concentration shown in Table 3, and the obtained feed was added to each aquarium at 8 fish body weight per day. It was given in an amount corresponding to 0.3%. Breeding
While ventilating under running water (2 liters / minute), water temperature 24 ℃
I went there for 21 days. However, 5th day, 12th day and 19th
No feeding was done on the day. The results are shown in Table 3.

【００１４】例４ 孵化後３６日の例１と同様の日本産ナマズ〔計２００尾
（５０尾×４群）：平均体重１．２ｇ〕を、それぞれ４
個のガラス水槽（６０×３０×３０cm）中に入れて飼育
し、トリプトファンによる共食い防止効果を調べた。即
ち、前記例３と同様のウナギ餌付け用飼料にＬ−トリプ
トファン（関東化学製）を表４記載の各濃度で添加し、
得られた飼料を各水槽に対して１日当たり魚体重の８．
３％に相当する量で与えた。飼育は、流水（２リットル
／分）下で通気しながら、水温２４℃にて７日間行っ
た。但し、７日目には給餌を行わなかった。結果を表４
に示す。 Example 4 Japanese catfish similar to Example 1 36 days after hatching (total of 200 fish (50 fish x 4 groups): average body weight 1.2 g) were each taken 4 times.
They were placed in individual glass water tanks (60 × 30 × 30 cm) and bred, and the cannibalism-preventing effect of tryptophan was examined. That is, L-tryptophan (manufactured by Kanto Kagaku) was added to the same eel feed as in Example 3 at each concentration shown in Table 4,
The obtained feed was used for each aquarium to obtain the fish weight of 8.
It was given in an amount corresponding to 3%. Breeding was carried out for 7 days at a water temperature of 24 ° C. while aerating under running water (2 liters / minute). However, feeding was not performed on the 7th day. The results are shown in Table 4.
Shown in.

【００１５】例５ 孵化後４６日の例１と同様の日本産ナマズ〔計１６０尾
（２０尾×８群）：平均体重２．１ｇ〕を、それぞれ８
個のガラス水槽（６０×３０×３０cm）中に入れて飼育
し、トリプトファンによる共食い防止効果を調べた。実
験は、８群を２群ずつ４区に分け、各区に濃度の異なる
トリプトファンを含む試料を与えた。即ち、前記例３と
同様のウナギ餌付け用飼料にＬ−トリプトファン（関東
化学製）を表５記載の各濃度で添加し、得られた飼料を
各水槽に対して１日当たり魚体重の８．３％に相当する
量で与えた。飼育は、流水（２リットル／分）下で通気
しながら、水温２４℃にて１０日間行った。但し、４日
目には給餌を行わなかった。結果を表５に示す。数値は
各区２群の平均値である。 Example 5 Japanese catfish similar to that in Example 1 46 days after hatching (total 160 fish (20 fish x 8 groups): average body weight 2.1 g) were used for 8 times each.
They were placed in individual glass water tanks (60 × 30 × 30 cm) and bred, and the cannibalism-preventing effect of tryptophan was examined. In the experiment, 8 groups were divided into 4 groups with 2 groups, and samples containing tryptophan with different concentrations were given to each group. That is, L-tryptophan (manufactured by Kanto Kagaku) was added to the same eel feeding feed as in Example 3 at each concentration shown in Table 5, and the obtained feed was fed to each aquarium at 8.3 fish weight per day. It is given in an amount corresponding to%. Breeding was performed at a water temperature of 24 ° C. for 10 days while aerating under running water (2 liters / minute). However, feeding was not performed on the 4th day. The results are shown in Table 5. The numerical value is the average value of 2 groups in each ward.

【００１６】例６ 以下の例６〜例８の実験では、海水１０リットルを含む
アクリル樹脂製水槽（縦３５cm×横２０cm×深さ２４c
m）中にて軽いエアレーションをかけながら、トリプト
ファン含有飼料を用いて、ヒラメ（Paralichthys oliva
ceus）の稚魚を飼育し、トリプトファン含有飼料を与え
た場合の効果を調べた。実験期間中は、水槽内の海水の
半量を毎日取り替えた。また、使用した海水は、三重県
浜島町で取水した海水を供試魚入手先の海水の塩分濃度
（例６＝２９．５％；例７＝２９．５％；例８＝３３．
０％）と同じになるように調整したものである。トリプ
トファン含有飼料の調製及び給餌は、海産魚用初期飼料
（日本農産工業、３，４号）にＬ─トリプトファン（関
東化学製）を各種の濃度で混合させ、少量の水を滴下し
て飼料に吸着させ、およその飽食量（魚体重の４〜５％
相当量）を１日２回に分けて給餌することによって行っ
た。また、各実験区の生残率は、２回の繰り返し実験の
結果から求めた。[0016] In Experimental example 6 The following Example 6 Example 8, the acrylic resin water tank containing 10 liters seawater (vertical 35 cm × horizontal 20 cm × depth 24c
flounder (Paralichthys oliva) using tryptophan-containing feed with light aeration in
Ceus) fry were bred and the effect of feeding a feed containing tryptophan was examined. During the experiment, half of the seawater in the aquarium was replaced every day. The seawater used was seawater taken in Hamashima-cho, Mie Prefecture. The salinity of the seawater from which the sample fish was obtained (Example 6 = 29.5%; Example 7 = 29.5%; Example 8 = 33.
It was adjusted to be the same as (0%). Preparation and feeding of tryptophan-containing feed is carried out by mixing L-tryptophan (Kanto Kagaku) at various concentrations with an initial feed for marine fish (Nippon Nosan Kogyo, No. 3, 4) and adding a small amount of water to the feed. Adsorbed and consumed approximately (4-5% of fish weight)
(Corresponding amount) was divided into twice a day and fed. The survival rate of each experimental plot was calculated from the results of two repeated experiments.

【００１７】本例では、各実験区において孵化後４６日
の大型ヒラメ稚魚〔全長１９．５〜２７．０mm（平均２
３．５mm）；体重９０〜１６０mg（平均１００mg）〕５
０尾と小型ヒラメ稚魚〔全長１９．５〜２０．０mm（平
均１９．８mm）；体重７０〜８０mg（平均７２mg）〕５
０尾を７日目までは別々の水槽で飼育し（各実験区でほ
ぼ同数の魚が生残した）、８日目から同じ水槽に移し
て、以後２４日目まで飼育し、トリプトファンの効果を
調べた。実験は水温１７．０±０．６℃で行った。実験
開始から８日目以後の結果を表６に示す。なお、表６に
おいて、供試魚数の欄に記載の数値は実験開始から７日
目の各区の生残数である。In this example, large flounder fry [total length 19.5 to 27.0 mm (average 2
3.5 mm); body weight 90-160 mg (average 100 mg)] 5
0 fish and small flounder fry [total length 19.5 to 20.0 mm (average 19.8 mm); body weight 70 to 80 mg (average 72 mg)] 5
The 0 fish were kept in separate aquariums until the 7th day (almost the same number of fish survived in each experimental group), transferred to the same aquarium from the 8th day, and raised until the 24th day thereafter, and the effect of tryptophan I checked. The experiment was conducted at a water temperature of 17.0 ± 0.6 ° C. The results after 8 days from the start of the experiment are shown in Table 6. In addition, in Table 6, the numerical value described in the column of the number of test fish is the number of survivors in each plot on the 7th day from the start of the experiment.

【００１８】例７ 本例では供試魚数を多くして共食い強度を大きくし、そ
れに対するトリプトファンの効果を調べた。具体的に
は、各実験区において孵化後８０日の大型ヒラメ稚魚と
小型ヒラメ稚魚とを半数ずつ混合し〔全長１６．２〜２
８．５mm（平均２３．６mm）；体重５０〜１９０mg（平
均１２４mg）〕、計２００尾を１０日間にわたって飼育
してトリプトファンの効果を調べた。実験は水温１７．
０±０．６℃で行った。実験開始から１０日目までの結
果（２実験区の合計）を表７に示す。 Example 7 In this example, the number of test fish was increased to increase the cannibalism, and the effect of tryptophan on it was examined. Specifically, in each experimental section, large-sized flounder fry 80 days after hatching and small flounder fry were mixed in half by half [total length 16.2-2.
8.5 mm (average 23.6 mm); body weight 50 to 190 mg (average 124 mg)], a total of 200 fish were bred for 10 days to examine the effect of tryptophan. The water temperature was 17.
Performed at 0 ± 0.6 ° C. Table 7 shows the results (total of 2 experimental plots) from the start of the experiment to the 10th day.

【００１９】例８ 本例では４種のトリプトファン含有ペプチドの効果を調
べた。４種のペプチドは、グリシルトリプトファン（Gl
y-Trp ）、トリプトフィルグリシン（Trp-Gly）、アラ
ニルトリプトファン（Ala-Trp ）及びグルタミルトリプ
トファン（Glu-Trp ）であり、これらペプチド０．５％
を含有する飼料を用いた。供試魚は孵化後４７日のもの
で、各実験区で選別前の大小混合群１００尾〔全長２
２．０〜３３．５mm（平均２８．６mm）；体重９０〜２
６０mg（平均２００mg）〕を用い、１７日間の生残率を
調べた。実験は水温１８．８±０．４℃で行った。結果
（２実験区の合計）を表８に示す。 Example 8 In this example, the effect of four tryptophan-containing peptides was investigated. The four peptides are glycyltryptophan (Gl
y-Trp), tryptophyllglycine (Trp-Gly), alanyltryptophan (Ala-Trp) and glutamyltryptophan (Glu-Trp), 0.5% of these peptides
The feed containing was used. The test fish were 47 days after hatching, and 100 fish of each mixed size group before and after selection [total length 2
2.0-33.5 mm (average 28.6 mm); weight 90-2
60 mg (average 200 mg)] was used to examine the survival rate for 17 days. The experiment was conducted at a water temperature of 18.8 ± 0.4 ° C. The results (total of 2 experimental plots) are shown in Table 8.

【００２０】例９ 本例では、孵化後約１２０日のトラフグ（Takifugu rub
ripes ）の稚魚に対してトリプトファン含有飼料を与え
た場合の効果を調べた。具体的には、各実験区でトラフ
グ稚魚１０尾を、海水１０リットルを含む水槽（縦４０
cm×横２５cm×深さ２５cm）中にてエアレーションをか
けながら、換水率２リットル／分の飼育条件で、トリプ
トファン０％（対照）、０．１％及び０．５％を添加し
た飼料（イトミン；日本農産工業製）を用い、１日当り
総魚体重の約１０％の量で給餌し、実験開始前と１週間
経過後の体長（口先から尾の付け根までの距離）、体
重、尾長（付け根から先端までの距離）及び臀鰭長（付
け根から先端までの距離）を測定し、結果を表９〜表１
１に示した。なお、トリプトファンの添加量は、前記飼
料の水分含有量を８０％と仮定し、乾物重量に対する添
加量で表示した。また、実験は水温１８〜２２℃で行っ
た。 Example 9 In this example, Takifugu rub approximately 120 days after hatching
The effect of feeding tryptophan-containing feed to juvenile ripes) was investigated. Specifically, in each experimental area, 10 juvenile troughfish were placed in an aquarium containing 10 liters of seawater (vertical 40
cm × width 25 cm × depth 25 cm), while feeding aeration, with a feed rate of 2 l / min of water exchange rate, tryptophan 0% (control), 0.1% and 0.5% added feed (itomin) (Nippon Agricultural Industry Co., Ltd.) was fed with an amount of about 10% of the total fish weight per day, and the body length (distance from the tip of the mouth to the base of the tail), weight, and tail length (the base) before the start of the experiment and after 1 week To the tip) and anal fin length (distance from the root to the tip), and the results are shown in Tables 9 to 1.
Shown in 1. The amount of tryptophan added was expressed as the amount added with respect to the dry matter weight, assuming that the water content of the feed was 80%. The experiment was conducted at a water temperature of 18 to 22 ° C.

【００２１】例１０ 本例では、孵化後１８０日のトラフグに対してトリプト
ファン含有飼料を与えた場合の効果を調べた。具体的に
は、各実験区でトラフグ２０尾を、海水４００リットル
を含む５００リットルの水槽中にてエアレーションをか
けながら、換水率１５リットル／分の飼育条件で、トリ
プトファン０％（対照）、０．１％、０．５％及び１．
０％を添加したネリ餌（日本農産工業製）を用い、１日
当り総魚体重の約１０％の量で給餌し、実験開始前と３
１日経過後の体重及び生残尾数を測定した。結果を表１
２及び表１３に示す。また、実験は水温１８〜２２℃で
行った。 Example 10 [0021] In this example, the effect of feeding a tryptophan-containing feed to troughs 180 days after hatching was examined. Specifically, 20 troughfish in each experimental section were aerated in a 500-liter aquarium containing 400 liters of seawater, and a tryptophan 0% (control), 0% under a breeding condition of a water exchange rate of 15 liters / minute. .1%, 0.5% and 1.
Neri bait (manufactured by Nippon Nosan Kogyo Co., Ltd.) supplemented with 0% was fed at an amount of about 10% of the total fish weight per day.
The body weight and the number of surviving tails after one day were measured. The results are shown in Table 1.
2 and Table 13. The experiment was conducted at a water temperature of 18 to 22 ° C.

【００２２】例１１ 本例では、孵化後約５０日のオニテナガエビ（Machro b
rachium ）に対してトリプトファン含有飼料を与えた場
合の効果を調べた。具体的には、各実験区でオニテナガ
エビ４０尾、８０尾又は１２０尾を、淡水６リットルを
含む１０リットルの円形水槽中にてエアレーションをか
けながら、換水率３リットル／日の飼育条件で、トリプ
トファン０％（対照）、０．１％、０．５％及び１．５
％を添加した配合飼料（カゼインを主成分とする）を用
い、１日当りエビ総体重の約４％の量で給餌し、１２日
間の生残率又は生残数の変化を測定し、結果を図１（飼
育密度４０尾／水槽）、図２（飼育密度８０尾／水槽）
及び図３（飼育密度１２００尾／水槽）に示した。図１
及び図２において生残率は、トリプトファン添加群の生
残数を対照群の生残数で除した商を１００倍したもので
ある。なお、各実験は水温２８℃で行った。図１〜図３
において、ａはトリプトファン０％含有飼料、ｂはトリ
プトファン０．１％含有飼料、ｃはトリプトファン０．
５％含有飼料、そしてｄはトリプトファン１．５％含有
飼料である。 Example 11 In this example, about 50 days after hatching, the green shrimp (Machro b.
The effect of feeding a diet containing tryptophan to rachium) was investigated. Specifically, while aerating 40, 80, or 120 shrimp shrimp in each experimental section in a 10-liter circular water tank containing 6 liters of fresh water, under a breeding condition of 3 liters / day of water exchange rate, Tryptophan 0% (control), 0.1%, 0.5% and 1.5
% Of compounded feed (casein is the main component) was added to the shrimp per day at an amount of about 4%, and the survival rate or change in the survival number for 12 days was measured. Figure 1 (brooding density 40 fish / water tank), Figure 2 (breeding density 80 fish / water tank)
3 and FIG. 3 (rearing density 1200 fish / water tank). Figure 1
In addition, in FIG. 2, the survival rate is 100 times the quotient obtained by dividing the survival number of the tryptophan-added group by the survival number of the control group. Each experiment was conducted at a water temperature of 28 ° C. 1 to 3
A is a feed containing 0% tryptophan, b is a feed containing 0.1% tryptophan, and c is a feed containing 0.
5% feed, and d is tryptophan 1.5% feed.

【００２３】例１２ 本例では、孵化後約６０日のオニテナガエビをトリプト
ファン含有水中で飼育する場合の効果を調べた。具体的
には、各実験区でオニテナガエビ４０尾を淡水６リット
ルを含む１０リットルの円形水槽中にてエアレーション
をかけながら、換水率３リットル／日の飼育条件で、ト
リプトファン０ppm （対照）、１０ppm、１００ppm 及
び5,000ppmを含有する淡水を用い、７日間の生残数を測
定した。なお、配合飼料（カゼインを主成分とする）を
１日当りエビ総体重の約４％の量で給餌した。結果を図
４に示す。図４において線１はトリプトファン０ppm 含
有淡水使用の場合（対照）、線２はトリプトファン１０
ppm 含有淡水使用の場合、線３はトリプトファン１００
ppm 含有淡水使用の場合、そして線４はトリプトファン
5,000ppm含有淡水使用の場合をそれぞれ示す。なお、各
実験は水温２８℃で行った。 Example 12 In this example, the effect of breeding the shrimp, Prawn shrimp about 60 days after hatching, in tryptophan-containing water was examined. Specifically, in each experimental section, 40 agar shrimp were aerated in a 10-liter circular aquarium containing 6 liters of fresh water, and tryptophan 0 ppm (control), 10 ppm under a breeding condition of a water exchange rate of 3 liters / day. The survival number for 7 days was measured using fresh water containing 100 ppm and 5,000 ppm. The compounded feed (mainly containing casein) was fed in an amount of about 4% of the total shrimp body weight per day. The results are shown in Fig. 4. In FIG. 4, line 1 is the case of using fresh water containing 0 ppm tryptophan (control), line 2 is tryptophan 10
Line 3 shows tryptophan 100 when using ppm-containing fresh water.
When using ppm fresh water, and line 4 is tryptophan
The case of using fresh water containing 5,000 ppm is shown below. Each experiment was conducted at a water temperature of 28 ° C.

【００２４】例１３ 本例では、クルマエビ（Peneus japonicus）に対して、
グリシルトリプトファン（Gly-Trp ）及びトリプトフィ
ルグリシン（Trp-Gly ）を飼育水に添加して脱皮数を調
べた。具体的には、孵化後２０日のクルマエビ（平均体
長約５mm）各群１２尾（計３群）を、海水２００mlを含
む５００mlビーカー（底面直径８cm）中にてエアレーシ
ョンをかけながら、１日当りエビ１尾につき孵化後４日
目のアルテミア５〜１０尾を与えた。６日目の結果を表
１４及び表１５に示す。なお、各実験は水温２８℃で行
った。 Example 13 In this example, for prawns (Peneus japonicus),
Glycyltryptophan (Gly-Trp) and tryptophyllglycine (Trp-Gly) were added to the breeding water and the number of molt was examined. Specifically, 12 days after hatching, prawns (average body length of about 5 mm) 12 per group (3 groups in total) are aerated in a 500 ml beaker (bottom diameter 8 cm) containing 200 ml of seawater per day. 5-10 Artemias on the 4th day after hatching were given to each. The results on day 6 are shown in Tables 14 and 15. Each experiment was conducted at a water temperature of 28 ° C.

【００２５】例１４ 本例では、クルマエビを、トリプトフィルグリシン（Tr
p-Gly ）、アラニルトリプトファン（Ala-Trp ）及びＬ
─トリプトファン含有海水中で飼育し、死亡数又は共食
い数を調べた。具体的には、孵化後２０日のクルマエビ
（平均体長約５mm）各群１２尾（計３群）を、海水２０
０mlを含む５００mlビーカー（底面直径８cm）中にてエ
アレーションをかけながら、各種濃度でトリプトファン
又はその誘導体を含有する海水中で６日間飼育した。６
日目の結果を表１６〜表１８に示す。なお、各実験は水
温２８℃で行った。 Example 14 In this example, prawns were treated with tryptophyllglycine (Tr
p-Gly), alanyltryptophan (Ala-Trp) and L
-The animals were bred in tryptophan-containing seawater and examined for mortality or cannibalism. Specifically, 12 prawns (average body length of about 5 mm) 12 days after hatching each group (total 3 groups) were treated with seawater 20
The mixture was aerated in a 500 ml beaker (bottom diameter 8 cm) containing 0 ml while being aerated in seawater containing tryptophan or its derivative at various concentrations for 6 days. 6
The results on the day are shown in Tables 16-18. Each experiment was conducted at a water temperature of 28 ° C.

【００２６】[0026]

【発明の効果】本発明によれば、水生動物（特には、養
殖魚又は養殖甲殻類）の共食いを有効に抑制すると共
に、成長の促進をはかることができる。INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, cannibalism of aquatic animals (particularly, cultured fish or cultured crustaceans) can be effectively suppressed and growth can be promoted.

【００２７】[0027]

【表１】 [Table 1]

【００２８】[0028]

【表２】 [Table 2]

【００２９】[0029]

【表３】 [Table 3]

【００３０】[0030]

【表４】 [Table 4]

【００３１】[0031]

【表５】 [Table 5]

【００３２】[0032]

【表６】 [Table 6]

【００３３】[0033]

【表７】 [Table 7]

【００３４】[0034]

【表８】 [Table 8]

【００３５】[0035]

【表９】 [Table 9]

【００３６】[0036]

【表１０】 [Table 10]

【００３７】[0037]

【表１１】 [Table 11]

【００３８】[0038]

【表１２】 [Table 12]

【００３９】[0039]

【表１３】 [Table 13]

【００４０】[0040]

【表１４】 [Table 14]

【００４１】[0041]

【表１５】 [Table 15]

【００４２】[0042]

【表１６】 [Table 16]

【００４３】[0043]

【表１７】 [Table 17]

【００４４】[0044]

【表１８】 [Table 18]

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図１】オニテナガエビの共食いに対するトリプトファ
ンの影響を低飼育密度で調べた結果を示すグラフであ
る。FIG. 1 is a graph showing the results of examining the effect of tryptophan on the cannibalism of Shrimp lobster at a low breeding density.

【図２】オニテナガエビの共食いに対するトリプトファ
ンの影響を中程度の飼育密度で調べた結果を示すグラフ
である。FIG. 2 is a graph showing the results of investigating the effect of tryptophan on the cannibalism of Shrimp lobster at a medium rearing density.

【図３】オニテナガエビの共食いに対するトリプトファ
ンの影響を高飼育密度で調べた結果を示すグラフであ
る。FIG. 3 is a graph showing the results of examining the effect of tryptophan on the cannibalism of Shrimp lobster at high breeding density.

【図４】トリプトファン含有飼育水中においけるオニテ
ナガエビの生残数の変化を示すグラフである。FIG. 4 is a graph showing changes in the number of surviving shrimp shrimp in the tryptophan-containing breeding water.

─────────────────────────────────────────────────────
─────────────────────────────────────────────────── ───

【手続補正書】[Procedure amendment]

【提出日】平成３年１１月２８日[Submission date] November 28, 1991

【手続補正２】[Procedure Amendment 2]

【補正対象書類名】図面[Document name to be corrected] Drawing

【補正対象項目名】図４[Name of item to be corrected] Fig. 4

【補正方法】変更[Correction method] Change

【補正内容】[Correction content]

【図４】 [Figure 4]

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 鈴木 弘 静岡県藤枝市大州４丁目８番地の６ (72)発明者 柏木 正章 三重県津市南新町13番１号 合同宿舎古河 住宅 １−104 (72)発明者 手島 新一 鹿児島県鹿児島市下荒田４丁目50−６−44   ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continued front page    (72) Inventor Hiroshi Suzuki             6-8-4 Oshu, Fujieda City, Shizuoka Prefecture (72) Inventor Masaaki Kashiwagi             Furukawa, 13-1, Minamishinmachi, Tsu City, Mie Prefecture             Housing 1-104 (72) Inventor Shinichi Teshima             Kagoshima Prefecture Kagoshima City Shimoarata 4-chome 50-6-44

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項１】 トリプトファン又はトリプトファン誘導
体を含むことを特徴とする、水生動物用飼料。1. A feed for aquatic animals, which comprises tryptophan or a tryptophan derivative. 【請求項２】 トリプトファン又はトリプトファン誘導
体の存在下に水生動物を飼育することを特徴とする、水
生動物の養殖方法。2. A method for culturing aquatic animals, which comprises breeding aquatic animals in the presence of tryptophan or a tryptophan derivative.