JPH04221398A - Antibody to non-a, non-b hepatitis virus and immunochemically reactive peptide - Google Patents

Antibody to non-a, non-b hepatitis virus and immunochemically reactive peptide

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JPH04221398A
JPH04221398A JP9153991A JP9153991A JPH04221398A JP H04221398 A JPH04221398 A JP H04221398A JP 9153991 A JP9153991 A JP 9153991A JP 9153991 A JP9153991 A JP 9153991A JP H04221398 A JPH04221398 A JP H04221398A
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JP
Japan
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nanbh
peptide
antibody
arg
test solution
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Application number
JP9153991A
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Japanese (ja)
Inventor
Winand Johannes Antonius Habets
ウイナント・ヨハンネス・アントニウス・ハベツ
Arima Terukatsu
テルカツ・アリマ
Jacob Boundel Pieter
ピーテル・ヤコプ・ブウンデル
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Akzo NV
Original Assignee
Akzo NV
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Publication date
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Abstract

PURPOSE: To provide a peptide immunochemically reactive with an antibody to non A, non B type hepatitis virus (NANBH virus), a detection method of NANBH or anti-NANBH in a testing liquid, and an immunochemical reagent and a test kit to be used in the detection.
CONSTITUTION: The polypeptide includes 15 amino acid sequence, Arg-Thr-Gln- Gln-Arg-Lys-Thr-Lys-Arg-Ser-Thr-Asn-Arg-Arg-Arg as a main component, which is immunochemically reactive without antibody to NANBH.
COPYRIGHT: (C)1992,JPO

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

【0001】0001

【産業上の利用分野】本発明は非A非B型肝炎ウイルス
(NANBHウイルス)に対する抗体と免疫化学反応す
るペプチドに関する。
FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to a peptide that immunochemically reacts with antibodies against non-A, non-B hepatitis virus (NANBH virus).

【0002】本発明は更に、試験液中のNANBH又は
抗NANBHの検出方法、並びにこの検出方法を適用す
るときに使用すべき免疫化学試薬及び試験用キットに関
する。
The present invention further relates to a method for detecting NANBH or anti-NANBH in a test solution, and immunochemical reagents and test kits to be used when applying this detection method.

【0003】0003

【従来の技術】C型肝炎ウイルス(HCV)により引き
起こされ得る又は引き起こされ得ない非A非B型肝炎は
伝達可能な疾病又はウイルス誘発性疾病群である。この
非A非B型肝炎は公知の肝炎ウイルス、即ちA型肝炎ウ
イルス(HAV)、B型肝炎ウイルス(HBV)及びデ
ルタ肝炎ウイルス(HDV)により引き起こされる疾患
並びにサイトメガロウイルス(CMV)又はエプスタイ
ン−バールウイルス(EBV)により誘発される肝炎を
含む他の形態のウイルス性肝臓疾患とは異なり得る。N
ANBHは輸血を受けた個人で最初に同定された。ヒト
からチンパンジーに接種し、チンパンジーで連続継代し
たところ、NANBHが単数もしくは複数の伝達可能な
感染要因に起因していることが判明した。
BACKGROUND OF THE INVENTION Non-A, non-B hepatitis, which may or may not be caused by the hepatitis C virus (HCV), is a group of transmissible or virus-induced diseases. This non-A, non-B hepatitis is a disease caused by known hepatitis viruses, namely hepatitis A virus (HAV), hepatitis B virus (HBV) and hepatitis delta virus (HDV), as well as cytomegalovirus (CMV) or Epstein-mediated hepatitis. It may be different from other forms of viral liver disease, including hepatitis induced by Barr virus (EBV). N
ANBH was first identified in individuals who received blood transfusions. When chimpanzees were inoculated from humans and serially passaged in chimpanzees, NANBH was found to be caused by one or more transmissible infectious agents.

【0004】NANBHには3つの型、即ち水系感染流
行型、血液又は針を介して感染する型及び散発性(集団
後天性(community acquired))型
があり得るという疫学的証拠は示唆的である。しかしな
がら、NANBHの原因となり得る要因の多くは知られ
ていない。
Epidemiological evidence is suggestive that NANBH may be of three types: waterborne epidemic, blood- or needle-borne, and sporadic (community acquired). . However, many of the factors that can cause NANBH are unknown.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】NANBHの臨床診断
及び同定はまず、他のウイルスマーカーを排除して行わ
れた。推定上のNANBH抗原及び抗体の検出に使用さ
れる方法には、寒天ゲル拡散法、カウンター免疫電気泳
動法、免疫蛍光顕微鏡検査法、免疫電子顕微鏡検査法、
ラジオイムノアッセイ及び酵素結合性免疫吸着剤検定法
がある。しかしながら、これらの検定のいずれも、NA
NBH用診断試験として使用するには感受性、特異性及
び再現性が不十分であることが判明した。
[Problems to be Solved by the Invention] Clinical diagnosis and identification of NANBH was first performed by excluding other viral markers. Methods used to detect putative NANBH antigens and antibodies include agar gel diffusion, counterimmunoelectrophoresis, immunofluorescence microscopy, immunoelectron microscopy,
There are radioimmunoassays and enzyme-linked immunosorbent assays. However, none of these tests
It was found that the sensitivity, specificity and reproducibility were insufficient for use as a diagnostic test for NBH.

【0006】しかしながらNANBH感染の種々の段階
での信頼性のある診断の実施を可能とする特定の感受性
のある方法の開発のためには、この型の免疫優勢ウイル
スエピトープを同定することが非常に重要である。
However, for the development of specific sensitive methods that would allow reliable diagnosis to be carried out at various stages of NANBH infection, it is very important to identify immunodominant viral epitopes of this type. is important.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】NANBH抗体と特に免
疫化学反応する15個のアミノ酸からなるペプチドを発
見した。アミノ酸配列は配列表に示す。
[Means for Solving the Problems] We have discovered a peptide consisting of 15 amino acids that is particularly immunochemically reactive with NANBH antibodies. The amino acid sequence is shown in the sequence listing.

【0008】本発明は更に、NANBH抗体と免疫化学
反応する前記ペンタデカペプチドのフラグメント、及び
ペンタデカペプチドを主成分として含むポリペプチド又
はNANBH抗体と免疫化学反応するそのフラグメント
に関する。
The present invention further relates to a fragment of the pentadecapeptide that immunochemically reacts with a NANBH antibody, and a polypeptide containing the pentadecapeptide as a main component or a fragment thereof that immunochemically reacts with a NANBH antibody.

【0009】アミノ酸配列がArg−Lys−Thr−
Lys−Arg−Ser−Thr−Asn−Argのノ
ナペプチドは、本発明のペンタデカペプチドのフラグメ
ントとして好ましい。
[0009] The amino acid sequence is Arg-Lys-Thr-
The nonapeptide of Lys-Arg-Ser-Thr-Asn-Arg is preferred as the pentadecapeptide fragment of the invention.

【0010】本発明は更に、本発明のペプチドの少なく
とも1種を含んでいる免疫化学試薬に関する。
The invention further relates to immunochemical reagents containing at least one of the peptides of the invention.

【0011】本発明は更に、本発明のペプチドの少なく
とも1種を使用して行う、試験液中のNANBHに対す
る抗体の検出方法に関する。
The present invention further relates to a method for detecting antibodies against NANBH in a test solution using at least one of the peptides of the present invention.

【0012】本発明は更に、本発明のペプチドの少なく
とも1種を使用して行う、試験液中のNANBHの検出
方法に関する。
The present invention further relates to a method for detecting NANBH in a test solution using at least one of the peptides of the present invention.

【0013】最後に本発明は、イムノアッセイを実施す
るために使用すべき試験用キットに関する。この試験用
キットは本発明の少なくとも1種の免疫化学試薬を含ん
でいる。
Finally, the invention relates to a test kit to be used for carrying out immunoassays. This test kit contains at least one immunochemical reagent of the invention.

【0014】前述したペプチドは、試験液中のNANB
H又はNANBH抗体の存在の確定のための診断方法で
使用するのに特に適している。
[0014] The above-mentioned peptide is the NANB in the test solution.
It is particularly suitable for use in diagnostic methods for determining the presence of H or NANBH antibodies.

【0015】天然のNANBHとは対照的に、本発明の
ペプチドは、安全な非感染源であるという大きな利点を
有する。
In contrast to natural NANBH, the peptides of the invention have the great advantage of being a safe, non-infectious source.

【0016】本発明のペプチドの製造は、公知のペプチ
ド合成用有機化学法の1つによって行うか又は組換え体
DNA技術を利用して行う。この組換え体DNA技術は
、宿主として適切な微生物中で1種以上の問題のペプチ
ドをコードしているポリヌクレオチド配列で組換え体ポ
リヌクレオチドを発現させることにより所望のペプチド
を製造することからなる。
The peptides of the invention are produced by one of the known organic chemical methods for peptide synthesis or by using recombinant DNA technology. This recombinant DNA technique consists of producing the desired peptide by expressing a recombinant polynucleotide with a polynucleotide sequence encoding one or more peptides in question in a suitable microorganism as host. .

【0017】ペプチド合成有機化学法は、均質相又はい
わゆる固相における縮合反応を介しての必要なアミノ酸
の結合を含むことが考えられる。
[0017] Organic chemical methods for peptide synthesis are believed to involve the attachment of the necessary amino acids via condensation reactions in a homogeneous phase or in the so-called solid phase.

【0018】縮合反応は以下の如く実施し得る。The condensation reaction can be carried out as follows.

【0019】a)  縮合剤の存在下で、遊離カルボキ
シル基と保護された他の反応基とを含む化合物(アミノ
酸、ペプチド)を、遊離アミノ基と保護された他の反応
基とを含む化合物(アミノ酸、ペプチド)と縮合する。
a) In the presence of a condensing agent, a compound (amino acid, peptide) containing a free carboxyl group and a protected other reactive group is converted into a compound (amino acid, peptide) containing a free amino group and a protected other reactive group ( Condenses with amino acids, peptides).

【0020】b)  活性化カルボキシル基と遊離又は
保護された他の反応基とを含む化合物(アミノ酸、ペプ
チド)を、遊離アミノ基と遊離又は保護された他の反応
基とを含む化合物(アミノ酸、ペプチド)と縮合する。
b) Compounds containing an activated carboxyl group and other free or protected reactive groups (amino acids, peptides) are converted into compounds containing free amino groups and other free or protected reactive groups (amino acids, peptides). peptide).

【0021】中でも、カルボキシル基を酸ハロゲン化物
、酸アジド、酸無水物、酸イミダゾリド又は活性化エス
テル(例えばN−ヒドロキシスクシンイミド、N−ヒド
ロキシベンゾトリアゾール若しくはp−ニトロフェニル
エステル)に転換することによりカルボキシル基を活性
化し得る。
Among others, the carboxyl group can be modified by converting the carboxyl group into an acid halide, an acid azide, an acid anhydride, an acid imidazolide or an activated ester (for example, N-hydroxysuccinimide, N-hydroxybenzotriazole or p-nitrophenyl ester). groups can be activated.

【0022】前記縮合反応の最も一般的な方法は、カル
ボジイミド法、アジド法、混合無水物法及びThe P
eptides, Analysis, Synthe
sis, Biology,Vol. 1−3(Ed.
 Gross,E. and Meienhofer,
 J.)1979, 1980, 1981(Acad
emic Press, Inc.)に記載の如き活性
化エステルを使用する方法である。
The most common methods of the condensation reaction are the carbodiimide method, the azide method, the mixed anhydride method and the P
eptides, Analysis, Synthe
sis, Biology, Vol. 1-3 (Ed.
Gross, E. and Meienhofer,
J. ) 1979, 1980, 1981 (Acad
emic Press, Inc. This method uses an activated ester as described in ).

【0023】上述した本発明のペプチドの“固相”を使
用しての製造は例えば、J. Amer. Chem.
 Soc. 85, 2149 (1963)及びIn
t. J. Peptide Protein Res
. 35, 161−214(1990)に記載されて
いる。製造すべきペプチドのアミノ酸の結合は通常、カ
ルボキシル末端側から出発する。この方法では、その上
に反応基があるか又はこのような基を導入することので
きる固相が必要である。これは例えば反応性クロロメチ
ル基を含むベンゼンとジビニルベンゼンとのコポリマー
、又はヒドロキシメチル官能基若しくはアミン官能基と
反応させられるポリマー性固相であり得る。
The production of the above-described peptide of the present invention using a "solid phase" is described, for example, in J. Amer. Chem.
Soc. 85, 2149 (1963) and In
t. J. Peptide Protein Res
.. 35, 161-214 (1990). The attachment of amino acids of the peptide to be produced usually starts from the carboxyl terminal side. This method requires a solid phase on which there are reactive groups or into which such groups can be introduced. This can be, for example, a copolymer of benzene and divinylbenzene containing reactive chloromethyl groups, or a polymeric solid phase which is reacted with hydroxymethyl or amine functions.

【0024】特に適した固相は例えば、Wangにより
J. Am. Chem. Soc. 95,1328
(1974)に記載されているp−アルコキシベンジル
アルコール樹脂(4−ヒドロキシメチルフェノキシメチ
ルコポリスチレン−1%  ジビニルベンゼン樹脂)で
ある。合成後に、穏和な条件下においてペプチドをこの
固相から分離することができる。
Particularly suitable solid phases are described, for example, by Wang, J.; Am. Chem. Soc. 95,1328
(1974) is a p-alkoxybenzyl alcohol resin (4-hydroxymethylphenoxymethylcopolystyrene-1% divinylbenzene resin). After synthesis, the peptide can be separated from this solid phase under mild conditions.

【0025】所望のアミノ酸配列の合成後に、ペプチド
を例えば、トリフルオロメタンスルホン酸で又はトリフ
ルオロ酢酸に溶解したメタンスルホン酸で樹脂から分離
する。低級アルコール、好ましくはメタノール又はエタ
ノールによるエステル交換反応によりペプチドを担体か
ら除去することもできる。この場合、ペプチドの低級ア
ルキルエステルは直接生成される。同様にアンモニアを
使用して分離すると、本発明のペプチドのアミドが生成
される。
After synthesis of the desired amino acid sequence, the peptide is separated from the resin, for example with trifluoromethanesulfonic acid or with methanesulfonic acid dissolved in trifluoroacetic acid. The peptide can also be removed from the carrier by transesterification with lower alcohols, preferably methanol or ethanol. In this case, the lower alkyl ester of the peptide is produced directly. Similarly, separation using ammonia produces amides of the peptides of the invention.

【0026】縮合反応に関与し得ない反応基は前述した
如く、酸、塩基又は還元による加水分解により再度非常
に簡単に除去され得る基により実質上保護する。従って
、カルボキシル基は例えばメタノール、エタノール、第
三ブタノール、ベンジルアルコール又はp−ニトロベン
ジルアルコールによるエステル化及び固形支持体に結合
したアミンにより実質上保護され得る。
Reactive groups which cannot take part in the condensation reaction are, as mentioned above, substantially protected by groups which can be very easily removed again by acid, base or reductive hydrolysis. Thus, the carboxyl group may be substantially protected by esterification with, for example, methanol, ethanol, tert-butanol, benzyl alcohol or p-nitrobenzyl alcohol and an amine attached to a solid support.

【0027】アミノ基を実質上保護し得る基はエトキシ
カルボニル基、ベンジルオキシカルボニル基、t−ブト
キシカルボニル基、p−メトキシベンジルオキシカルボ
ニル基又はスルホン酸から得られる酸基(例えばベンゼ
ンスルホニル基若しくはp−トルエンスルホニル基)で
あるが、他の基、例えば置換若しくは未置換アリール若
しくはアラルキル基(例えばベンジル及びトリフェニル
メチル)、又はオルトニトロフェニルスルフェニル及び
2−ベンゾイル−1−メチルビニルのような基を使用す
ることもできる。特に適したα−アミノ保護基は例えば
、塩基感受性9−フルオレニルメトキシカルボニル(F
moc)基[Carpino & Han (1970
)J.Amer. Chem. Soc.92, 57
48]である。
Groups capable of substantially protecting an amino group include an ethoxycarbonyl group, a benzyloxycarbonyl group, a t-butoxycarbonyl group, a p-methoxybenzyloxycarbonyl group, or an acid group obtained from a sulfonic acid (for example, a benzenesulfonyl group or a p-methoxycarbonyl group). -toluenesulfonyl) but also other groups, such as substituted or unsubstituted aryl or aralkyl groups (e.g. benzyl and triphenylmethyl), or orthonitrophenylsulfenyl and 2-benzoyl-1-methylvinyl. You can also use Particularly suitable α-amino protecting groups are, for example, base-sensitive 9-fluorenylmethoxycarbonyl (F
moc) group [Carpino & Han (1970
)J. Amer. Chem. Soc. 92, 57
48].

【0028】The Peptides, Analy
sis, Synthesis, Biology, 
Vol. 1−9(Eds. GrossUdenfr
iend and Meienhofer)1979−
1987(Academic Press, Inc.
)に、可能な保護基についてより広範な説明が行われて
いる。
[0028] The Peptides, Analysis
sis, Synthesis, Biology,
Vol. 1-9 (Eds.
1979-
1987 (Academic Press, Inc.
) provides a more extensive explanation of possible protecting groups.

【0029】リシンのε−アミノ基を保護することも必
要であり、アルギニンのグアニジル基にとって適切であ
る。この場合、慣用的な保護基はリシンの場合Boc基
であり、アルギニンの場合Pmc基、Pms基、Mbs
基又はMtr基である。
It is also necessary to protect the ε-amino group of lysine, which is appropriate for the guanidyl group of arginine. In this case, the customary protecting groups are the Boc group for lysine, the Pmc group, Pms group, Mbs group for arginine.
group or Mtr group.

【0030】特定基の種類に応じて、種々の従来方法に
より、例えばトリフルオロ酢酸を使用して、又は例えば
水素と触媒(例えばパラジウム)による、又は氷酢酸中
のHBrによる弱い還元により、保護基を分離すること
ができる。
Depending on the nature of the particular group, the protecting group is removed by various conventional methods, for example using trifluoroacetic acid, or by mild reduction, for example with hydrogen and a catalyst (eg palladium) or with HBr in glacial acetic acid. can be separated.

【0031】既に前述した如く、組換え体DNA技術を
使用して本発明のペプチドを同様に製造することができ
る。この可能性は、ペプチドを反復配列(”縦列”)に
組み込むとき又はペプチドを(遥かに大きい)タンパク
質又はポリペプチドの成分として製造し得るときに特に
重要である。従って、この型のペプチド製造も同様に本
発明の範囲内にある。このために本発明のペプチドをコ
ードするポリヌクレオチドを組み換えDNAの構成成分
として使用し、更には天然のNANBHゲノムにおいて
、前述したポリヌクレオチド配列の側に位置するポリヌ
クレオチドセグメントを実質的に含まない。
As already mentioned above, the peptides of the invention can likewise be produced using recombinant DNA technology. This possibility is particularly important when incorporating peptides into repeating sequences ("tandems") or when peptides can be produced as components of (much larger) proteins or polypeptides. Therefore, this type of peptide production is also within the scope of the invention. For this purpose, a polynucleotide encoding a peptide of the invention is used as a component of a recombinant DNA, which is furthermore substantially free of polynucleotide segments flanking the aforementioned polynucleotide sequences in the natural NANBH genome.

【0032】本発明のペプチドをコードするこの型のポ
リヌクレオチド及びこのポリヌクレオチドが組み込まれ
ている組換えDNAも同様に本発明の範囲内にある。
Polynucleotides of this type encoding the peptides of the invention and recombinant DNA into which this polynucleotide has been incorporated are likewise within the scope of the invention.

【0033】このことはクレームには特別明記されてい
ないが、本発明のペプチド中の1個以上のアミノ酸を他
のアミノ酸に置換することができることは自明である。
Although this is not specifically stated in the claims, it is obvious that one or more amino acids in the peptides of the present invention can be substituted with other amino acids.

【0034】概して、(a)ペプチドの酸付加塩、(b
)ペプチドのアミド、特にC末端アミド、(c)エステ
ル、特にC末端エステル及び(d)N−アシル誘導体、
特にN−末端アシル誘導体、とりわけN−アセチル誘導
体を意味するこれらのペプチドの官能誘導体も本発明の
ペプチドとみなす。
In general, (a) an acid addition salt of a peptide; (b) an acid addition salt of a peptide;
) amides, especially C-terminal amides, (c) esters, especially C-terminal esters, and (d) N-acyl derivatives of peptides,
Functional derivatives of these peptides, meaning in particular N-terminal acyl derivatives, especially N-acetyl derivatives, are also considered as peptides according to the invention.

【0035】本発明の“免疫化学試薬”は通常、本発明
のペプチドの1種以上と、適切な支持体又は標識物質と
からなる。
The "immunochemical reagent" of the present invention usually consists of one or more peptides of the present invention and a suitable support or labeling substance.

【0036】使用し得る支持体は例えば、ミクロ試験用
ウェルの内壁若しくはキュベット、管若しくは毛細管、
膜、フィルター、試験用ストリップ、又は粒子表面(例
えばラテックス粒子、赤血球、染料ゾル、金属ゾル若し
くはゾル粒子としての金属化合物、担体タンパク質(例
えばBSA若しくはKLH)である。
Supports that can be used are, for example, the inner walls of microtest wells or cuvettes, tubes or capillaries,
Membranes, filters, test strips, or particle surfaces such as latex particles, red blood cells, dye sols, metal compounds as metal sols or sol particles, carrier proteins such as BSA or KLH.

【0037】使用し得る標識物質は特に、放射性同位体
、蛍光化合物、酵素、染料ゾル、金属ゾル又はゾル粒子
である金属化合物である。
Labeling substances that can be used are in particular radioisotopes, fluorescent compounds, enzymes, metal compounds which are dye sols, metal sols or sol particles.

【0038】試験液中のNANBHに対する抗体の検出
方法では、本発明の免疫化学試薬を試験液と接触させる
。その後、ペプチドと試験液中の抗体との間で生成され
る免疫複合体の存在を検出し、この検出により試験液中
のNANBH抗体の存在を確認し、また定量することが
できる。
[0038] In the method for detecting antibodies against NANBH in a test solution, the immunochemical reagent of the present invention is brought into contact with the test solution. Thereafter, the presence of an immune complex formed between the peptide and the antibody in the test solution is detected, and by this detection, the presence of NANBH antibodies in the test solution can be confirmed and quantified.

【0039】生じる免疫化学反応は、免疫化学試薬の種
類、更には特性に応じて、いわゆるサンドイッチ型反応
、凝集反応、競合反応又は阻害反応である。
The immunochemical reaction that occurs is a so-called sandwich type reaction, agglutination reaction, competitive reaction or inhibition reaction, depending on the type and further characteristics of the immunochemical reagent.

【0040】試験液中のNANBHの検出のために、本
発明の免疫化学試薬を試験液及び抗NANBHに接触さ
せ、その後生成した免疫錯体の存在を検出し、それによ
り試験液中のNANBHの存在を確定することができる
For the detection of NANBH in the test solution, the immunochemical reagent of the present invention is contacted with the test solution and anti-NANBH, and the presence of the formed immune complex is then detected, thereby detecting the presence of NANBH in the test solution. can be determined.

【0041】特に適した試験液中のNANBHの検出方
法は、標識物質を備えた本発明のペプチドと(試験液中
に存在する)NANBH抗原との競合反応に基づいてお
り、それによってペプチドと抗原とが固形支持体に結合
したNANBHに対する抗体と競合している。
A particularly suitable method for the detection of NANBH in a test solution is based on a competitive reaction between the peptide of the invention provided with a labeling substance and the NANBH antigen (present in the test solution), whereby the peptide and antigen are separated. and compete with an antibody against NANBH bound to a solid support.

【0042】本発明の試験用キットは、必須構成要素と
して前述した如き免疫化学試薬を含んでいる。NANB
H抗体の検出のためにサンドイッチ型反応を実施する場
合、試験用キットは例えば、固形支持体(例えばミクロ
試験用ウェルの内壁)に被覆した本発明のペプチド、及
び本発明の標識ペプチド又は標識抗体を含み得る。
The test kit of the present invention contains the above-mentioned immunochemical reagents as essential components. NANB
When performing a sandwich reaction for detection of H antibody, the test kit includes, for example, the peptide of the present invention coated on a solid support (for example, the inner wall of a micro test well), and the labeled peptide or labeled antibody of the present invention. may include.

【0043】競合反応を実施する場合、試験用キットは
固形支持体に被覆した本発明のペプチド、及びNANB
Hに対する標識抗体、好ましくは前記ペプチドに対する
モノクローナル抗体を含み得る。
When carrying out a competitive reaction, the test kit contains the peptide of the invention coated on a solid support and NANB.
The peptide may contain a labeled antibody against H.H., preferably a monoclonal antibody against said peptide.

【0044】凝集反応では、試験用キットは、粒子又は
ゾルに被覆した本発明のペプチドからなる免疫化学試薬
を含んでいる。
For agglutination reactions, the test kit contains an immunochemical reagent consisting of a peptide of the invention coated onto particles or sols.

【0045】NANBH抗原の検出のための試験用キッ
トは例えば、本発明の標識ペプチド及び固形支持体に被
覆されるNANBHに対する抗体を含んでいる。
A test kit for the detection of NANBH antigen contains, for example, a labeled peptide of the invention and an antibody against NANBH coated on a solid support.

【0046】[0046]

【実施例】実施例1配列表に示す如き配列からなるペン
タデカペプチドを段階的固相ペプチド合成により製造し
た。VEGA  Coupler250  C自動ペプ
チド合成器又はLabortec  SP640半自動
ペプチド合成器を利用し、p−ベンジルオキシベンジル
アルコール樹脂(Wang樹脂;0.6−0.7mmo
les/g,  Bachem  AG,  Swit
zerland)及びN(α位)−Fmocで保護した
(Fmocとは9−フルオレニルメチルオキシカルボニ
ルのこと)アミノ酸を使用して、合成を実施した。
EXAMPLES Example 1 A pentadecapeptide having the sequence shown in the sequence listing was produced by stepwise solid phase peptide synthesis. Using a VEGA Coupler 250 C automatic peptide synthesizer or a Labortec SP640 semi-automatic peptide synthesizer, p-benzyloxybenzyl alcohol resin (Wang resin; 0.6-0.7 mm
les/g, Bachem AG, Swit
The synthesis was carried out using an amino acid protected with N (α-position)-Fmoc (Fmoc refers to 9-fluorenylmethyloxycarbonyl).

【0047】DDC(ジシクロヘキシルカルボジイミド
、1当量)、HOBt(1−ヒドロキシベンゾトリアゾ
ール、2当量)及びDMAP(N,N−ジメチルアミノ
ピリジン、1当量)をDMF−ジクロロメタン(1:1
、vol/vol)中4℃で18時間使用してFmoc
−Arg(Pmc)−OHを樹脂に結合することにより
、合成を開始した。次いで、ベンゾイルクロライド−ピ
リジンで2時間ベンゾイル化することにより、樹脂上の
未反応アルコール官能基をブロックした。
DDC (dicyclohexylcarbodiimide, 1 eq.), HOBt (1-hydroxybenzotriazole, 2 eq.) and DMAP (N,N-dimethylaminopyridine, 1 eq.) were dissolved in DMF-dichloromethane (1:1).
, vol/vol) for 18 h at 4°C.
The synthesis was initiated by coupling -Arg(Pmc)-OH to the resin. Unreacted alcohol functionality on the resin was then blocked by benzoylation with benzoyl chloride-pyridine for 2 hours.

【0048】得られたFmoc−Arg(Pmc)−樹
脂(0.38mmol/g)をDMF中20%ピペリジ
ンで6分間3回連続処理して、Fmoc基を除去した。 次いで、アミノ酸配列により示されているように、保護
されたペンタデカペプチドをH−Arg(Pmc)−樹
脂上でFmoc−アミノ酸の連続結合ステップにより製
造した。以下の側鎖の保護基を使用した。即ちArgの
場合は−Pmc(2,2,5,7,8−ペンタメチルク
ロマン−6−スルホニル−)を、Thr及びSerの場
合は−tBu(t−ブチル−)を、Lysの場合はBo
c(t−ブチルオキシカルボニル)を、Asn及びGl
nの場合はTrt(トリチル)を使用した。
The resulting Fmoc-Arg(Pmc)-resin (0.38 mmol/g) was treated with 20% piperidine in DMF three times for 6 minutes successively to remove the Fmoc group. The protected pentadecapeptide was then prepared by successive coupling steps of Fmoc-amino acids on H-Arg(Pmc)-resin, as indicated by the amino acid sequence. The following side chain protecting groups were used. That is, in the case of Arg, -Pmc (2,2,5,7,8-pentamethylchroman-6-sulfonyl-), in the case of Thr and Ser, -tBu (t-butyl-), and in the case of Lys, Bo
c (t-butyloxycarbonyl), Asn and Gl
In the case of n, Trt (trityl) was used.

【0049】それぞれが3当量のFmoc−アミノ酸、
BOP(=ベンゾトリアゾリルオキシ−トリス(ジメチ
ルアミノ)−ホスホニウムヘキサフルオロホスフェート
)及びHOBtと、4.5当量のDIPEA(=N,N
−ジイソプロピルエチルアミン)とを含んでいる、樹脂
1グラム当たり12〜15ミリリットルのDMFを使用
して、各結合段階を15分間実施し、その後DMF及び
エタノールで3サイクルの洗浄(1サイクルが1分)を
実施した。結合反応の完全性をKaiserのニンヒド
リン試験で監視した(Anal. Biochem. 
34, 595−598,1970)。Ser10及び
Arg5の結合の後に、陽性ニンヒドリン反応を観察し
た。それぞれの場合において、1当量の対応Fmoc−
アミノ酸、、BOP、HOBt及びDIPEAを使用す
る結合反応を再度30分間繰り返した。次いで、無水酢
酸−DMF(5:59;vol/vol)で10分間ア
セチル化し、その後DMF及びエタノールで洗浄(それ
ぞれ1分間)して、任意の残留遊離アミノ基をブロック
した。
3 equivalents of each Fmoc-amino acid,
BOP (=benzotriazolyloxy-tris(dimethylamino)-phosphonium hexafluorophosphate) and HOBt and 4.5 equivalents of DIPEA (=N,N
-diisopropylethylamine) for 15 minutes using 12-15 milliliters of DMF per gram of resin, followed by three cycles of washing with DMF and ethanol (each cycle is 1 minute). was carried out. The completeness of the binding reaction was monitored by Kaiser's ninhydrin test (Anal. Biochem.
34, 595-598, 1970). A positive ninhydrin reaction was observed after binding of Ser10 and Arg5. In each case, one equivalent of the corresponding Fmoc-
The coupling reaction using amino acids, BOP, HOBt and DIPEA was repeated again for 30 minutes. It was then acetylated with acetic anhydride-DMF (5:59; vol/vol) for 10 min, followed by washing with DMF and ethanol (1 min each) to block any remaining free amino groups.

【0050】各合成サイクルの後に、前述した如くDM
F中25%ピペリジンで処理してN(α位)−Fmoc
保護基を除去した。
After each synthesis cycle, DM
N(α-position)-Fmoc by treatment with 25% piperidine in F
Protecting groups were removed.

【0051】合成終了後、得られた完全に保護されたペ
ンタデカペプチド樹脂を、トリフルオロ酢酸/水/フェ
ノール/チオアニソール/エタンジチオール(82:5
:5:5:2.5vol/vol)混合物中にて、室温
で18時間処理することにより、ペプチドを樹脂から分
離すると同時に全ての保護基を除去した。反応混合物を
ジエチルエーテルに加えて沈澱させた後に、粗ペプチド
を単離した。pH2.1の0.1Mリン酸塩緩衝液中の
アセトニトリル勾配を利用して、C18シリカのHPL
Cによりペンタデカペプチドを精製した。
After completion of the synthesis, the obtained fully protected pentadecapeptide resin was mixed with trifluoroacetic acid/water/phenol/thioanisole/ethanedithiol (82:5
:5:5:2.5vol/vol) mixture at room temperature for 18 hours to separate the peptide from the resin and simultaneously remove all protecting groups. The crude peptide was isolated after precipitation of the reaction mixture with diethyl ether. HPL of C18 silica using an acetonitrile gradient in 0.1 M phosphate buffer at pH 2.1
The pentadecapeptide was purified by C.

【0052】実施例2 配列表に示す如きアミノ酸配列からなるペンタデカペプ
チドを、pH8.0の100mMリン酸塩緩衝液7.5
μg/ミリリットルに溶解した。マイクロタイタープレ
ートを、pH5.0のリン酸塩緩衝液中0.2%グルタ
ルアルデヒドの135μl/ウェルで室温で4時間、連
続振とうしながら予備処理した。次いでプレートを空に
して、135μlの上記ペプチド溶液を各ウェルに与え
た。37℃で3時間放置してペプチドをマイクロタイタ
ープレートに結合させた。プレートを冷凍し、−20℃
で一晩貯蔵した。
Example 2 A pentadecapeptide consisting of an amino acid sequence as shown in the sequence listing was added to a 100mM phosphate buffer solution with a pH of 8.0 (7.5%).
Dissolved at μg/ml. Microtiter plates were pretreated with 135 μl/well of 0.2% glutaraldehyde in pH 5.0 phosphate buffer for 4 hours at room temperature with continuous shaking. The plate was then emptied and 135 μl of the above peptide solution was applied to each well. The peptide was allowed to bind to the microtiter plate by standing at 37°C for 3 hours. Freeze the plate at -20°C
It was stored overnight.

【0053】その後、プレートを解凍して空にし、残留
結合部位を0.2MトリスpH7.4/0.2M−Na
Cl中0.05%Tween20(登録商標)溶液で5
分間室温にてブロックした。次いで、0.2Mトリス(
pH7.4)/0.2M  NaClで1回洗浄、0.
04Mトリス(pH7.4)で2回プレートを洗浄した
(ウェル当たり250μl)。非A非B型肝炎に特異な
抗体の同定のために、血清試料をウェルにピペットで注
入した(容器当たり100μl)試料稀釈剤(リン酸塩
緩衝生理食塩水(PBS)/20%正常ヤギ血清/1%
Triton  X100)で稀釈して、37℃で1時
間インキュベートした。ウェルをPBS/0.05%T
ween20(登録商標)で洗浄した後に、試料稀釈剤
中で稀釈したペルオキシターゼ(ウェル当たり100μ
l、37℃で1時間)で標識したヤギ抗ヒトイムノグロ
ブリンにより、結合したヒトの抗体を検出した。プレー
トをPBS/0.05%Tween20(登録商標)で
4回洗浄した。ペルオキシダーゼ酵素用基質としてTM
Bを加えると(ウェル当たり100μl)、室温で30
分間反応を進ませた。100μlの2M  H2SO4
を各ウェルに加えて反応を停止した。Organon 
 Teknika  microelisa読取器では
450nmで黄色を読取った。
The plate was then thawed and emptied, and the remaining binding sites were removed with 0.2M Tris pH 7.4/0.2M Na
5 in 0.05% Tween20® solution in Cl.
Blocked for minutes at room temperature. Then, 0.2M Tris (
pH 7.4)/washed once with 0.2M NaCl, 0.
The plates were washed twice with 0.04M Tris (pH 7.4) (250 μl per well). For identification of antibodies specific for non-A, non-B hepatitis, serum samples were pipetted into wells (100 μl per container) using a sample diluent (phosphate-buffered saline (PBS)/20% normal goat serum). /1%
Triton X100) and incubated at 37°C for 1 hour. Fill wells with PBS/0.05%T
After washing with ween20®, peroxidase (100μ per well) diluted in sample diluent was added.
Bound human antibodies were detected by goat anti-human immunoglobulin labeled with 1 hour at 37°C. Plates were washed four times with PBS/0.05% Tween20®. TM as a substrate for peroxidase enzymes
When adding B (100 μl per well), 30 μl at room temperature
The reaction was allowed to proceed for minutes. 100μl 2M H2SO4
was added to each well to stop the reaction. Organon
The yellow color was read at 450 nm on a Teknika microelisa reader.

【0054】非A非B型肝炎の患者の血清を使用して、
1.8〜3.0の範囲の吸光係数を測定した。20個の
正常なヒトの血清の平均吸光係数は0.301であった
(標準偏差0.07)。対照として、2つの無関係のペ
ンタデカペプチドで手順を繰り返した。いずれの場合も
、正常なヒトの血清とNANBHの患者の血清試料とか
ら得られた吸光係数にそれほどの差は認められなかった
[0054] Using serum from patients with non-A, non-B hepatitis,
Extinction coefficients ranging from 1.8 to 3.0 were measured. The average extinction coefficient of 20 normal human sera was 0.301 (standard deviation 0.07). As a control, the procedure was repeated with two unrelated pentadecapeptides. In all cases, no significant difference was observed in the extinction coefficients obtained from normal human serum and NANBH patient serum samples.

【0055】実施例3 配列表に示すペンタデカペプチドのフラグメントをNA
NBHの患者の血清との反応性についても再度検査した
Example 3 The pentadecapeptide fragment shown in the sequence listing was
Reactivity with serum from patients with NBH was also tested again.

【0056】以下に示すノナペプチド2〜8を合成し、
本質的に実施例1及び実施例2に記載の如く固形支持体
に結合させた。NANBHの患者から得られた血清試料
との免疫反応性を実施例2に記載の如く調べた。ノナペ
プチド5,6,7はNANBH患者の血清中の抗体と特
異反応を示した。これらの結果を表1に示す。
[0056] The following nonapeptides 2 to 8 were synthesized,
It was attached to a solid support essentially as described in Examples 1 and 2. Immunoreactivity with serum samples obtained from patients with NANBH was investigated as described in Example 2. Nonapeptides 5, 6, and 7 showed specific reactions with antibodies in the serum of NANBH patients. These results are shown in Table 1.

【0057】[0057]

【表1】 ペプチド2:配列番号2のアミノ酸配列。[Table 1] Peptide 2: Amino acid sequence of SEQ ID NO: 2.

【0058】ペプチド3:配列番号3のアミノ酸配列。Peptide 3: Amino acid sequence of SEQ ID NO:3.

【0059】ペプチド4:配列番号4のアミノ酸配列。Peptide 4: Amino acid sequence of SEQ ID NO: 4.

【0060】ペプチド5:配列番号5のアミノ酸配列。Peptide 5: Amino acid sequence of SEQ ID NO: 5.

【0061】ペプチド6:配列番号6のアミノ酸配列。Peptide 6: Amino acid sequence of SEQ ID NO: 6.

【0062】ペプチド7:配列番号7のアミノ酸配列。Peptide 7: Amino acid sequence of SEQ ID NO: 7.

【0063】ペプチド8:配列番号8のアミノ酸配列。Peptide 8: Amino acid sequence of SEQ ID NO: 8.

【0064】[0064]

【配列表】配列番号:1 配列の長さ:15 配列の型:アミノ酸 配列の種類:ペプチド 配列 配列番号:2 配列の長さ:9 配列の型:アミノ酸 配列の種類:ペプチド 配列 配列番号:3 配列の長さ:9 配列の型:アミノ酸 配列の種類:ペプチド 配列 配列番号:4 配列の長さ:9 配列の型:アミノ酸 配列の種類:ペプチド 配列 配列番号:5 配列の長さ:9 配列の型:アミノ酸 配列の種類:ペプチド 配列 配列番号:6 配列の長さ:9 配列の型:アミノ酸 配列の種類:ペプチド 配列Arg−Lys−Thr−Lys−Arg−Ser
−Thr−Asn−Arg配列番号:7配列の長さ:9 配列の型:アミノ酸 配列の種類:ペプチド 配列 配列番号:8 配列の長さ:9 配列の型:アミノ酸 配列の種類:ペプチド 配列
[Sequence list] Sequence number: 1 Sequence length: 15 Sequence type: Amino acid sequence type: Peptide sequence SEQ ID NO: 2 Sequence length: 9 Sequence type: Amino acid sequence type: Peptide sequence SEQ ID NO: 3 Sequence length: 9 Sequence type: Amino acid sequence type: Peptide sequence SEQ ID NO: 4 Sequence length: 9 Sequence type: Amino acid sequence type: Peptide sequence SEQ ID NO: 5 Sequence length: 9 Type: Amino acid sequence type: Peptide sequence SEQ ID NO: 6 Sequence length: 9 Sequence type: Amino acid sequence type: Peptide sequence Arg-Lys-Thr-Lys-Arg-Ser
-Thr-Asn-Arg Sequence number: 7 Sequence length: 9 Sequence type: Amino acid sequence type: Peptide sequence Sequence number: 8 Sequence length: 9 Sequence type: Amino acid sequence type: Peptide sequence

Claims (5)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】  配列番号1に示す如きアミノ酸配列か
らなるペンタデカペプチド及びNANBH抗体と免疫化
学反応するそのフラグメント、並びに該ペンタデカペプ
チドを主成分として含むポリペプチド又はNANBH抗
体と免疫化学反応するそのフラグメント。
Claim 1: A pentadecapeptide consisting of an amino acid sequence as shown in SEQ ID NO: 1, a fragment thereof that immunochemically reacts with a NANBH antibody, and a polypeptide containing the pentadecapeptide as a main component or a fragment thereof that immunochemically reacts with a NANBH antibody. fragment.
【請求項2】  請求項1に記載のペプチドを含んでい
る免疫化学試薬。
2. An immunochemical reagent comprising the peptide according to claim 1.
【請求項3】  試験液中のNANBHに対する抗体の
検出方法であって、請求項2に記載の免疫化学試薬を試
験液と接触させ、ペプチドと試験液中の抗体との間で生
成される免疫錯体の存在を検出し、これが試験液中のN
ANBH抗体の存在の測定方法であることを特徴とする
方法。
3. A method for detecting antibodies against NANBH in a test solution, comprising: contacting the immunochemical reagent according to claim 2 with the test solution, and detecting the immunity generated between the peptide and the antibody in the test solution; The presence of the complex is detected, which indicates that N in the test solution
A method characterized in that it is a method for measuring the presence of ANBH antibodies.
【請求項4】  試験液中のNANBHの検出方法であ
って、請求項2に記載の免疫化学試薬を試験液及び抗N
ANBHに接触させ、その後生成した免疫錯体の存在を
検出し、それにより試験液中のNANBHの存在を確定
することを特徴とする方法。
4. A method for detecting NANBH in a test solution, comprising adding the immunochemical reagent according to claim 2 to the test solution and anti-N
A method characterized in that the presence of NANBH in the test liquid is determined by contacting with ANBH and subsequently detecting the presence of the generated immune complex.
【請求項5】  請求項3又は4に記載のイムノアッセ
イで使用すべき試験用キット。
5. A test kit to be used in the immunoassay according to claim 3 or 4.
JP9153991A 1990-03-30 1991-03-29 Antibody to non-a, non-b hepatitis virus and immunochemically reactive peptide Pending JPH04221398A (en)

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NL9020077 1990-03-30
NL90.200775.6 1990-03-30

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JP9153991A Pending JPH04221398A (en) 1990-03-30 1991-03-29 Antibody to non-a, non-b hepatitis virus and immunochemically reactive peptide

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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH06500796A (en) * 1991-06-13 1994-01-27 デイド、インターナショナル、インコーポレイテッド Immunoassay for non-A, non-B hepatitis

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* Cited by examiner, † Cited by third party
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