JPH0393798A - プラスミノゲン活性化因子阻害剤2(pai―2)の精製方法 - Google Patents

プラスミノゲン活性化因子阻害剤2(pai―2)の精製方法

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JPH0393798A
JPH0393798A JP2233445A JP23344590A JPH0393798A JP H0393798 A JPH0393798 A JP H0393798A JP 2233445 A JP2233445 A JP 2233445A JP 23344590 A JP23344590 A JP 23344590A JP H0393798 A JPH0393798 A JP H0393798A
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JP
Japan
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pai
pref
soln
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plasminogen activator
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JP2233445A
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Klaus-Peter Radtke
クラウス―ペーター・ラートケ
Norbert Heimburger
ノルベルト・ハイムブルガー
Karlheinz Wenz
カールハインツ・ヴエンツ
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Siemens Healthcare Diagnostics GmbH Germany
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Behringwerke AG
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/81Protease inhibitors
    • C07K14/8107Endopeptidase (E.C. 3.4.21-99) inhibitors
    • C07K14/811Serine protease (E.C. 3.4.21) inhibitors
    • C07K14/8121Serpins
    • C07K14/8132Plasminogen activator inhibitors

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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は不純物をアクリジンまたはキノリン塩基で沈殿
させることより成るグラスミノゲン活性化因子阻害剤2
 CPAI−2)の精製方法に関する。
プラスミノゲン活性化因子(PA)は線維素溶解系を活
性化するセリンプロテアーゼである。それらはプロ酵素
プラスミノゲンを、フィブリンおよびフィブリノゲンを
分解する活性酵素プラスミンに変える。体内には2種類
のPA,すなわち、組織プラスミノゲン活性化因子(t
−PA)およびウロキナーゼ(u−PA)と同じであり
また腎細胞のみならず他の正常または悪性細胞によって
も産生されるPAが存在する。t−PAは血栓症の防止
に特に重要である。u−PAは泌尿管系におけるフィプ
リン凝塊形戊を防ぐばかりでなく創傷治ゆにも寄与し、
また新生物が増殖するところに認められている。
PAの濃度および活性はそれらの合戒によってだけでな
く阻害剤によっても調節される。プラスミンまたは他の
グロテアーゼを阻害しない2種類の特異的PA阻害剤(
PAI)が知られている。
そのうちの一つば内皮細胞で産生され(PAI−1)、
他方の胎盤に認められるもの(PAI−2)は“ミナク
チビン(minactivin)”とも呼ばれている。
胎盤抽出物より出発して、硫酸アンモニウム分画、不純
物のCM−Sephadex C−50吸着、ゲル枦過
およびヒドロキシアパタイトクロマトグラ7イを施す従
来技術に従えば120倍濃度のPAi2を得ることがで
きる。この方法により、70および43kDaの分子量
を有する二つ゛の形態のPAI−2が得られる。イムノ
アフィニティ・クロマトグラフィおよびイムノアフィニ
ティ・クロマトグラフィとPLOの組合せも精製に用い
られている。中性塩による沈殿、CM一およびDEAE
−e Sepharoseおよびヒドロキシアパタイト
でのクロマトグラフィおよび分取式電気泳動を含む8工
程の組合せにより、胎盤から出発して47kDaの分子
量を有する精製PAi2が得られる。クロマトグラ7イ
精製工程がジチオトレイトール型の還元剤の添加により
有利な影響を受け得ることも知られている。
本発明の目的はPAI−2単離のために生産規模で使用
できるより簡単な方法を見出すことにある。
驚くべきことに、2−エトキシー6.9−ジアミノアク
リジンラクテートを用いるとPAl2の溶液から不純物
を沈殿させることができPAI−2それ自体は上溝に溶
存したまま残ることが見出された。
ジチオトレイトール(DTT)で予めインキユベーショ
ンしでおくことが有利であることも判っt二。
本発明は、PAl−2含有溶液をジスルフィド結合開裂
剤、好ましくはジチオトレイトール(DTT)、と予め
インキユペートし、適当な水溶性アクリジンまたはキノ
リン塩基、好ましくは2−エトキシ−6.9−ジアミノ
アクリジンラクテート、を形威される沈殿が僅少なPA
I−2しか含まないような量で用いて前記溶液と混合し
、この沈殿を分離し、その上清からPAi2を取得し、
そして適切な場合には既知方法を用いて更に精製するこ
とより成るグラスミノゲン活性化因子阻害剤2 (FA
T−2)の精製方法に関する。
溶存タンパク質量に対して少量のアクリジンまたはキノ
リン塩基を添加してもFA I−2は沈殿するであろう
。前記塩基の水溶性塩、好ましくは2−エトキシー6.
9−ジアミノアクリジンラクテート、の適切な濃度は溶
存タンパク質(PAI−2は実質的に溶存状態にある)
19あたり200119〜29である。この方法は5.
5〜8.5のpuで行われる。
PAI−2含有溶液は予め低温殺菌しておいてもよく、
適切な場合には安定化剤、好ましくはグリシンおよび/
またはシュークロースを添加しておいてもよい。
PAI−2含有溶液は好ましくは胎盤抽出液または遺伝
子工学によるPAi2を含有する溶液である。
ジスルフィド開裂剤は10mmoQ/ Q〜250mt
noQ/C1好ましくはl00mmol2/ (lの濃
度で用いられる。
予備的インキュベーションは15分〜3時間、好ましく
は1時間、lO〜40°C1好ましくは約3 7 ’0
で行われる。
本方法を前記の如く行うとき、上溝には使用PAI−2
活性の85〜90%が存在するが使用タンパク質の5〜
8%しか存在していない。
沈殿後、好ましくはNaCQ1好ましくは5%、を用い
てアクリジン塩基を塩析することができ、またvitm
アンモニウム沈殿、例えば硫酸アンモニウムで溶液を8
0%飽和することによりFA I −2を濃縮でき、そ
れによって硫酸アンモニウムにより溶液を30%飽和さ
せることによる予備的沈殿とあいまって更なる精製度が
得られる。使用タンパク質の約90%がリバノール(R
ivanol)オよびi酸アンモニウム沈殿により除去
されるので、僅少の残留量は次いで容量制限に従う精製
方法に付すことができる:例えばDEAE一”Affj
gel Blue(アガロースに共有結合したジエチル
アミノエチル基および ”Cibacron Blue
F3GA色素より戊る二官能性ア7イニテイを有するク
ロマトグラ7イゲル)での、およびヒドロキシアバタイ
トでのクロマトグラフイ。この純度の物質はすでに治療
用途に適しているはずである。超精製(ultra−p
urification)はフエニルアラニンカラムで
の疎水性クロマトグラフイによって行うことができるが
実質的損失を伴う。
得られるFA I−2は予め行われていない場合には付
加的に低温殺菌してもよい。
本発明方法を以下記載する: PAl2の単離を監視するためにアミド分解(amid
olytic)法をKabi社の色素原性基質S−24
44(G lu−G 1y−Arg−pNA)と組合せ
て用いた。測定には、50aQのウロキナーゼ(u−P
A)(IOOOU / mff)ヲ100μQのPAi
2含有試料と室温で4分間インキユペートし、そしてこ
の混合物80μaを37℃に予め加温されたプラスチッ
ク製キュベットに移した。
次に50u(lの緩衝液Aおよび20μQのS−244
4(6 +mM)を添加した。405nmでの吸光度増
加をCobas Bio遠心分離分析器で測定した。測
定値を内部用(in−house) PAI−2標準品
の連続希釈を通して作威した希釈プロットと比較するこ
とにより評価し Iこ 。
PAI−2の単離に用いた物質: 2−エトキシー6.9−ジアミノアクリジンラクテート
(6.9−ジアミノ−2−エトキシアクリジンラクテー
ト) : SigmaChemie GmbH, D−
6100ダルムシュタット(Darmstadt) ;
 12.5+mM tris, pH6.8、中の2.
5%(w/V)強度溶液を分別沈殿に用いた。
ジチオトレイトール(DTT)  : Serva F
ein−biochemika (;mbH & Co
.,  D−6900ハイデルペルク(Heidelb
erg) ヒドロキシアパタイト: ”BioRads  リッチ
モンド(Richmond)、カリフォルニア州(CD
)、米国 7エニルアラニンー”SepharoseおよびCNB
r一活性化”Sepharose  4 B : De
utschePharmacia GmbH,  D−
6900  フライダルク(Freiburg) S−2444 : Kabi Vi”trum, S−
11287ストックホルム(SLockholm)、ス
エーデントリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン(L
ris): E. Merck. D−6100ダルム
シュタット ウロキナーゼ(”Actosolv): B6hrin
gwerkeA(;, D−3550マールブルク(M
arburg)緩衝液A : 50mM LriSx 
pH8.4、1%ポリゲリン、l00mM  NaCQ
,0.01%”TritonXIOOおよび0.01%
NaN. 緩衝液B : 2Q+++M tris, pH7.5
、20++IM DTT緩衝液C : 20mM Na
2HPOイpH6.8、20iMDTT 緩衝液D : 20++lM tris, pH7.5
、20+*M DTT1硫酸アンモニウムで30%飽和 緩衝液E : 20mM tris, pH7.5、1
00mAJ NaC(1緩衝液F : 20mM tr
is, pH6.8実施例 血液不含に洗浄された凍結ヒト胎盤をPAI−2調製用
原料として用いた。その胎盤はカッターで寸断しておき
、次いで0.5%NaC(2および3mMEDTAで抽
出した。細胞残渣を遠心分離により除去し、そして上溝
を8%リパノールで沈殿させそしてその沈殿を溶解し硫
酸アンモニウムによる分別沈殿に付した。PAI−2を
含有する沈殿を緩衝液Fに溶解しそしてそれに対して透
析した。
胎盤の濃抽出液は4,615U PAI−2/ mQを
含有し、比活性は120U/19であった。この物質を
超精製に用いた。
−リバノールおよび硫酸アンモニウム沈殿500lII
2の前記出発材料(第1表参照)を7.79のDTT 
(最終濃度100mM)と37℃で工時間インキュベー
トした。l . 520mffの2.5%強度リバノー
ル溶液をこの溶液に注意深く連続撹拌しながら滴加し、
かくて200%に相当する最終濃度に到らしめた。沈殿
により得られた沈殿を遠心分離により除去し、過剰のり
バノールを、1009の固体NaC(lを5%最終濃度
まで添加することにより上清から除去した。次に、34
3gの固体硫酸アンモニウムを30%飽和に相当する最
終濃度に達する,まで上清に添加した。沈殿を遠心分離
(20分間、300Orpm)により除去し、次いで6
94gの固体硫酸アンモニウムを80%飽和の最終濃度
となるまで添加した。これにより得られる沈殿を緩衝液
Bに高濃度で溶解しそして透析した。これにより80r
RQの溶解・透析硫酸アンモニウム残液が得られt二。
−DEAE−’Affigel Blueクロマトグラ
フイ80mQの前記硫酸アンモニウム沈殿を緩衝液Bと
平衡させたDEAE−Affigel Blue力ラム
(17.5X4.4cm、260ml2ゲル床)にかけ
た。ソノカラムヲ0 〜200mM NaCQの範囲に
及ぶ緩衝液B中のNaCα勾配( 2 X looom
c)を用いて9Qml2/時の流速で溶出した。夕冫パ
ク質濃度を280nmでのODで連続測定し、そしてP
Al−2活性を前述の如く測定しt二。
−ヒドロキシアパタイトクロマトグラフイ前工程からの
PA!−2含有画分を472mQ集め、緩衝液Cに対し
透析し、そして同じ緩衝液で平衡させたヒドロキシアバ
タイト力ラム(15X3.2cIII1561IQゲル
床)(第1表参照)にかけた。そのカラムを同じ緩衝液
を用いてある流速で溶出した。そのカラムを緩衝液C中
の燐酸ナトリウムの塩勾配(0.02〜0.3M ; 
2 X 250m(1)を用イテ50rrrQ/時の流
速で溶出した。溶出液のタンパク質濃度およびPAI−
2活性を連続測定した。
−7エニルアラニンー”Sepharoseヒドロキシ
アパタイトクロマトグラフィ後のPAI−2含有画分を
集め、そして13.2gの固体硫酸アンモニウムを12
0ml2のこの物質に添加し30%飽和とした。この溶
液を緩衝液Dと平衡させたフエニルアラニンー”Sep
harose力ラムにかけた。
その樹脂を緩衝液DおよびBから形戊された勾配(2 
X l00m0を用いて20ma/時の流速で溶出した
。PAI−2含有画分を集めそして特性を測定した。最
高純度の物質は60.000U (一単位)/I+Ig
の比活性を有し、またSOSボリアクリルアミドゲル電
気泳動では、43kDaの分子量を有しそして特異モノ
クローナル抗体を用l/1tこイムノブ口トで実証し得
る一体のノ《ンドとして移動しI二 。
C 12 N 9/99 @発 明 者 カールハインツ●ヴエ ンッ ドイツ連邦共和国デー− 3556ヴアイマル.ーセ1
0 タールシュトラ

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1)プラスミノゲン活性化因子阻害剤(PAI−2)含
    有溶液をジスルフィド結合開裂剤と予めインキュベート
    し、適当な水溶性アクリジンまたはキノリン塩基、好ま
    しくは2−エトキシ−6,9−ジアミノアクリジンラク
    テートを形成される沈殿が僅少なPAI−2しか含まな
    いような量で用いて前記溶液と混合し、この沈殿を分離
    し、その上清からPAI−2を取得しそして適切な場合
    には既知方法を用いて更に精製することより成るPAI
    −2の精製方法。 2)PAI−2含有溶液が胎盤抽出液または遺伝子工学
    によるPAI−2の溶液である請求項1記載の方法。 3)ジスルフィド開裂剤がジチオトレイトールである請
    求項1記載の方法。 4)ジスルフィド開裂剤が10mmol/l〜25mm
    ol/l、好ましくは100mmol/l、の濃度で用
    いられる請求項1記載の方法。 5)予備的インキュベーションが15分〜3時間、好ま
    しくは1時間行われる請求項1記載の方法。 6)予備的インキュベーションが10〜40℃、好まし
    くは約37℃、で行われる請求項1記載の方法。 7)塩基が5.5〜8.5のpHで溶解された形で用い
    られる請求項1記載の方法。 8)PAI−2含有溶液が低温殺菌される請求項1記載
    の方法。
JP2233445A 1989-09-06 1990-09-05 プラスミノゲン活性化因子阻害剤2(pai―2)の精製方法 Pending JPH0393798A (ja)

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AT (1) ATE115589T1 (ja)
AU (1) AU642661B2 (ja)
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DE (2) DE3929504A1 (ja)
DK (1) DK0418647T3 (ja)
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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ATE364092T1 (de) 2003-01-09 2007-06-15 Genentech Inc Reinigung von polypeptiden

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Publication number Priority date Publication date Assignee Title
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CA2024701A1 (en) 1991-03-07
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