JPH02177896A - 新規生理活性ポリペプチド - Google Patents
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Landscapes
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(1)産業上の利用分野
本発明は新規生理活性ポリペプチド、該ポ、リペブチド
をコードするDNA領域を含む組換えプラスミド、該プ
ラスミドによって形質転換された組換え微生物細胞及び
該微生物細胞を用いた新規生理活性ポリペプチドの製造
方法に関する。更に詳しくは、抗腫瘍活性を有する新規
ポリペプチド(以下、新規抗腫瘍活性ポリペプチドと略
すこともある)、該ポリペプチドをコードするり、N△
領領域含む組換えプラスミド、該プラスミドによって形
質転換され1〔組換え微生物細胞及び該微生物細胞を用
いた新規抗腫瘍活性ポリペプチドの製造方法に関する。
をコードするDNA領域を含む組換えプラスミド、該プ
ラスミドによって形質転換された組換え微生物細胞及び
該微生物細胞を用いた新規生理活性ポリペプチドの製造
方法に関する。更に詳しくは、抗腫瘍活性を有する新規
ポリペプチド(以下、新規抗腫瘍活性ポリペプチドと略
すこともある)、該ポリペプチドをコードするり、N△
領領域含む組換えプラスミド、該プラスミドによって形
質転換され1〔組換え微生物細胞及び該微生物細胞を用
いた新規抗腫瘍活性ポリペプチドの製造方法に関する。
本明細書において、アミノ酸、ポリペプチドはIUPA
C−IUB生化学委員会(C,BN)で採用された方法
により略記するものとし、たとえば下記の略号を用いる
。
C−IUB生化学委員会(C,BN)で採用された方法
により略記するものとし、たとえば下記の略号を用いる
。
Alal−−アラニン
Ar(IL−アルギニン
ASnl−−アスパラギン
ASI)L−アスパラギン酸
CysL−システィン
G1n1−−グルタミン
GILI L−グルタミン酸
GIV グリシン
1−1isl−−ヒスチジン
11el−イソロイシン
1eul−一ロイシン
LysL−リジン
Met l−−メチオニン
PheL−フェニルアラニン
prO+−一プロリン
3er L−セリン
Thr L−スレオニン
Trpl−t−リプトファン
Tyr L−ヂロシン
Val L−バリン
また、DNAの配列はそれを構成する各デオキシリボヌ
クレオチドに含まれる塩基の種類で略記するものとし、
たとえば下記の略号を用いる。
クレオチドに含まれる塩基の種類で略記するものとし、
たとえば下記の略号を用いる。
△ アデニン(デオキシアデニル酸を示す。)Cシトシ
ン(デオキシシチジル酸を示す。)G グアニン(デオ
キシグアニル酸を示す。)T チミン (デオキシチミ
ジル酸を示す。)さらに、(H2N)−及び−(COO
H)はそれぞれアミノ酸配列のアミン末端側及びカルボ
キシ末端側を示すものであり、(5′ )−及び(3r
)はそれぞれDNA配列の5′末端側及び3′末端側を
示すものである。
ン(デオキシシチジル酸を示す。)G グアニン(デオ
キシグアニル酸を示す。)T チミン (デオキシチミ
ジル酸を示す。)さらに、(H2N)−及び−(COO
H)はそれぞれアミノ酸配列のアミン末端側及びカルボ
キシ末端側を示すものであり、(5′ )−及び(3r
)はそれぞれDNA配列の5′末端側及び3′末端側を
示すものである。
(2)発明の背景
Carswel l らは、Bacillus Ca
lmetteGuerin (BCG)などで前もっ
て刺激をうけたマウスにエンドトキシンを投与した後に
採取した血清中に、移植したMethA肉腫による癌を
出血壊死させる物質が含まれていることを見出し、この
物質を腫瘍壊死因子(T umor N ecros
lsFactor 、以下TNFと略記することもある
)と名づけだ[’E 、 A 、 Carswellら
、 p rocJJ atl。
lmetteGuerin (BCG)などで前もっ
て刺激をうけたマウスにエンドトキシンを投与した後に
採取した血清中に、移植したMethA肉腫による癌を
出血壊死させる物質が含まれていることを見出し、この
物質を腫瘍壊死因子(T umor N ecros
lsFactor 、以下TNFと略記することもある
)と名づけだ[’E 、 A 、 Carswellら
、 p rocJJ atl。
Acad、Sci、、U S A 、 72.3666
(1975) ] 。このTNFはマウス、ウサギ、
ヒト等多くの動物中に見られ、腫瘍細胞に特異的に、し
かも種を越えて働くことから、制癌剤としての利用が期
待されてきた。
(1975) ] 。このTNFはマウス、ウサギ、
ヒト等多くの動物中に見られ、腫瘍細胞に特異的に、し
かも種を越えて働くことから、制癌剤としての利用が期
待されてきた。
最近になッテ、penniCaらは、ヒトTNFのcD
N Aクローニングを行ない、ヒトTNF蛋白質の一
次構造を明らかにすると共に、大腸菌におけるヒトTN
F遺伝子の発現について報告した[ D、 p en
nicaら、 Nature 、 312. 72
4(1984) ] 、その後、自弁ら[T、3hir
ai ら。
N Aクローニングを行ない、ヒトTNF蛋白質の一
次構造を明らかにすると共に、大腸菌におけるヒトTN
F遺伝子の発現について報告した[ D、 p en
nicaら、 Nature 、 312. 72
4(1984) ] 、その後、自弁ら[T、3hir
ai ら。
Nature 、 313. 803(1985)
] 、宗村ら[宗利ら、癌と化学療法、 12. 16
0(1985) ] 、Wanら[A、M、Wangら
、 3clence、ユ28. 149(1985)
]及びM armenoutら[A 、 lyj
armenoutら。
] 、宗村ら[宗利ら、癌と化学療法、 12. 16
0(1985) ] 、Wanら[A、M、Wangら
、 3clence、ユ28. 149(1985)
]及びM armenoutら[A 、 lyj
armenoutら。
Eur、 J、 Biochem、、 152. 51
5(1985) ]が、ヒトTNF遺伝子の大腸菌にお
ける発現について相ついで報告している。
5(1985) ]が、ヒトTNF遺伝子の大腸菌にお
ける発現について相ついで報告している。
このように遺伝子操作技術を用いることによって、純粋
なヒトTNF蛋白質が多量に入手できるようになるに及
び、TNFの有する抗腫瘍活性以外の生理活性が明らか
になりつつある。たとえば、癌末期や重症感染症患者に
見られる悪液質を引き起こす原因の一つであるカケクチ
ンがTNFに非常に類似しており[B 、 B eul
terら、 Nature 。
なヒトTNF蛋白質が多量に入手できるようになるに及
び、TNFの有する抗腫瘍活性以外の生理活性が明らか
になりつつある。たとえば、癌末期や重症感染症患者に
見られる悪液質を引き起こす原因の一つであるカケクチ
ンがTNFに非常に類似しており[B 、 B eul
terら、 Nature 。
316、 552(1985) ] 、カケクチンがリ
ポプロティン・リパーゼ阻害活性を有することから、T
NFの投与により血中のトリグリセリド量が増大し、そ
の結果として高脂血症のような副作用を引き起こす可能
性のあることが示唆された。また、それ以外にも、血管
内皮細胞への影響[J、R。
ポプロティン・リパーゼ阻害活性を有することから、T
NFの投与により血中のトリグリセリド量が増大し、そ
の結果として高脂血症のような副作用を引き起こす可能
性のあることが示唆された。また、それ以外にも、血管
内皮細胞への影響[J、R。
Gambleら、J、 Exp、 Med、 、 1
62.2163(1985) ] 、骨吸収作用[D、
R,Be1toliniら、Nature 、 3
19. 516(1986) ]等が報告されている。
62.2163(1985) ] 、骨吸収作用[D、
R,Be1toliniら、Nature 、 3
19. 516(1986) ]等が報告されている。
方、近年の遺伝子操作技術の進歩は、蛋白質中の任意の
アミノ酸を仙のアミノ酸に置換したり、付加したり、ま
たは欠失させることを可能にした。
アミノ酸を仙のアミノ酸に置換したり、付加したり、ま
たは欠失させることを可能にした。
このようにして、天然に存在する蛋白質を改変して、特
定の目的にかなった新しい蛋白質を創製する研究が、数
多く成されている。
定の目的にかなった新しい蛋白質を創製する研究が、数
多く成されている。
ヒトTNF蛋白質の改変についてもいくつかの研究が成
されており、第1図記載のヒトTNF蛋白質のアミノ酸
配列において、Cysjり及びCy s /D/のいず
れか又は両方のアミノ酸残基の他のアミノ酸残基への置
換(PCT出願公開WO36/ 04606号、特願昭
6l−106772) 、G 117θゝの他のアミノ
酸残基への置換(特願昭61−106772号、特願昭
61238048号)、Ala[+の弛のアミノ酸残基
への置換(特願昭61−233337号)が報告されて
いる。また、アミノ末端側のアミノ酸残基の欠失につい
ても、6アミノ酸欠失TNFが細胞障害活性を有してい
ること(特開昭61−50923号)、7アミノ酸欠失
TNFが細胞障害活性を有していること(特願昭619
0087号)、1〜10アミノ酸欠失TNFが細胞障害
活性を有しており、その比活性は6〜8アミノ酸欠失T
NFにおいて極大になること(PCT出願公開WO36
/ 02381号)、10アミノ酸欠失TNFが細胞障
害活性を有していること(特願昭61114754号)
、11アミノ酸欠失TNFが細胞障害活性を有している
こと(特願昭61173822号)、及び7アミノ酸欠
失TNFを基盤として、P「08S er9A 5DI
OをA r(II ”l’sA rgへ置換ヲ行なウド
、その比活性が大きく上昇することが報告されている。
されており、第1図記載のヒトTNF蛋白質のアミノ酸
配列において、Cysjり及びCy s /D/のいず
れか又は両方のアミノ酸残基の他のアミノ酸残基への置
換(PCT出願公開WO36/ 04606号、特願昭
6l−106772) 、G 117θゝの他のアミノ
酸残基への置換(特願昭61−106772号、特願昭
61238048号)、Ala[+の弛のアミノ酸残基
への置換(特願昭61−233337号)が報告されて
いる。また、アミノ末端側のアミノ酸残基の欠失につい
ても、6アミノ酸欠失TNFが細胞障害活性を有してい
ること(特開昭61−50923号)、7アミノ酸欠失
TNFが細胞障害活性を有していること(特願昭619
0087号)、1〜10アミノ酸欠失TNFが細胞障害
活性を有しており、その比活性は6〜8アミノ酸欠失T
NFにおいて極大になること(PCT出願公開WO36
/ 02381号)、10アミノ酸欠失TNFが細胞障
害活性を有していること(特願昭61114754号)
、11アミノ酸欠失TNFが細胞障害活性を有している
こと(特願昭61173822号)、及び7アミノ酸欠
失TNFを基盤として、P「08S er9A 5DI
OをA r(II ”l’sA rgへ置換ヲ行なウド
、その比活性が大きく上昇することが報告されている。
そこで、本発明者らは比活性の向上、安定性の向上2反
応スペクトルの広域化、副作用の低減化等を目的として
、ヒトTNF蛋白質の改変について鋭意研究を行なった
ところ、アミノ末端側の7アミノ酸を欠失させ、かつP
ro” 5er9 ASploをA r!It L V
SA r(Iへ置換させた形のヒトTNF改変体を基盤
として、さらにAla’“ 1 euyf’7の他のア
ミノ酸残基への置換を行なうことにより、その比活性が
さらに大ぎく上昇することを見出し、本発明を完成する
に至った。
応スペクトルの広域化、副作用の低減化等を目的として
、ヒトTNF蛋白質の改変について鋭意研究を行なった
ところ、アミノ末端側の7アミノ酸を欠失させ、かつP
ro” 5er9 ASploをA r!It L V
SA r(Iへ置換させた形のヒトTNF改変体を基盤
として、さらにAla’“ 1 euyf’7の他のア
ミノ酸残基への置換を行なうことにより、その比活性が
さらに大ぎく上昇することを見出し、本発明を完成する
に至った。
(3)発明の目的
本発明の目的は、新規抗腫瘍活性ポリペプチドを提供す
ることにある。
ることにある。
本発明の他の目的は、新規抗腫瘍活性ポリペプチドをコ
ードするDNA領域を含む組換えプラスミドを提供する
ことにある。
ードするDNA領域を含む組換えプラスミドを提供する
ことにある。
本発明の更に他の目的は、上記組換えプラスミドによっ
て形質転換された組換え微生物及びその組換え微生物細
胞を用いて新規抗腫瘍活性ポリペプチドを製造する方法
を提供することにある。
て形質転換された組換え微生物及びその組換え微生物細
胞を用いて新規抗腫瘍活性ポリペプチドを製造する方法
を提供することにある。
本発明の更に伯の目的は、以下の説明から一層明らかと
なるであろう。
なるであろう。
(4)発明の構成
本発明者らの研究によれば、前記本発明の目的は、次の
アミノ酸配列 (H2N ) −Ar(] ]LV SPro−Val−Ala−HisVaA 5n−P
ro −G In−A la −G luL eu −
G In−T rp−L eu −A snA Ia−
A sn −A la −L eu −1euG ly
−V al −G 1u−L eu −A rgG
In−L eu −V al−V al−P r。
アミノ酸配列 (H2N ) −Ar(] ]LV SPro−Val−Ala−HisVaA 5n−P
ro −G In−A la −G luL eu −
G In−T rp−L eu −A snA Ia−
A sn −A la −L eu −1euG ly
−V al −G 1u−L eu −A rgG
In−L eu −V al−V al−P r。
G ly −L eu−Tyr −L eu−IleG
In −V at −l eu−P he −L v
sG 1y−CVS−P ro −S ep −T h
rL eu−L eu −T hr−His −T h
rA ra −1le −A la −V at−8e
rAr(1−143 Val−Ala Gly−Qln A r(J−A r(+ Ala−Asn Asp−Asn 3er−GILI Tyr−3er Q+y−Qln− His−Val I Ie−3er 1”yr−Qln Thr−LVS−Val−Asn−L eu−L eu
−8erA la −(le−1ys−、S ep−P
ro−Cys= G In −A ro−G 1u−
T hr−P ro −G lu −G 1y−A 1
aQlu−A 1a−L ys −Pro−Trp−T
yr−GluP r(1−I le−TVr−Leu
−G +y−G +y−VaP he−G ln−Le
u−G +u−L VS−G +y−A SllArg
−Leu−8er−A 1a=Glu−11e−Asn
Ara−Pro−Asp−Tyr−L eu−ASD
−PheAla−Glu−8er−Gly−Gln−V
al−TyrPhe−Gly −I 1e−T 1e−
X−Phe(COOH) において×が任意のアミノ酸であるような新規生理活性
ポリペプチドまたはそのアミノ末端にMetが結合して
いるポリペプチド、また上記新規抗腫瘍活性ポリペプチ
ドをコードするDNA領域を含む組換えプラスミドを提
供することによって達成され、更にかくして得られた組
換えプラスミドによって形質転換された組換え微生物細
胞、その微生物細胞を用いて目的とする新規抗腫瘍活性
ポリペプチドを産生ずる方法及びこの新規抗腫瘍活性ポ
リペプチドを含有する医薬組成物を提供することによっ
て達成されることがわかった。
In −V at −l eu−P he −L v
sG 1y−CVS−P ro −S ep −T h
rL eu−L eu −T hr−His −T h
rA ra −1le −A la −V at−8e
rAr(1−143 Val−Ala Gly−Qln A r(J−A r(+ Ala−Asn Asp−Asn 3er−GILI Tyr−3er Q+y−Qln− His−Val I Ie−3er 1”yr−Qln Thr−LVS−Val−Asn−L eu−L eu
−8erA la −(le−1ys−、S ep−P
ro−Cys= G In −A ro−G 1u−
T hr−P ro −G lu −G 1y−A 1
aQlu−A 1a−L ys −Pro−Trp−T
yr−GluP r(1−I le−TVr−Leu
−G +y−G +y−VaP he−G ln−Le
u−G +u−L VS−G +y−A SllArg
−Leu−8er−A 1a=Glu−11e−Asn
Ara−Pro−Asp−Tyr−L eu−ASD
−PheAla−Glu−8er−Gly−Gln−V
al−TyrPhe−Gly −I 1e−T 1e−
X−Phe(COOH) において×が任意のアミノ酸であるような新規生理活性
ポリペプチドまたはそのアミノ末端にMetが結合して
いるポリペプチド、また上記新規抗腫瘍活性ポリペプチ
ドをコードするDNA領域を含む組換えプラスミドを提
供することによって達成され、更にかくして得られた組
換えプラスミドによって形質転換された組換え微生物細
胞、その微生物細胞を用いて目的とする新規抗腫瘍活性
ポリペプチドを産生ずる方法及びこの新規抗腫瘍活性ポ
リペプチドを含有する医薬組成物を提供することによっ
て達成されることがわかった。
以下本発明について更に詳細に説明する。
(A>ヒトTNF遺伝子のクローン化;ヒトTNF遺伝
子は、ヒトTNF蛋白質を構成するアミノ酸[D 、
P ennicaら、前出]を指定するいくつかのコド
ンの中から適当なものを選び、それを化学合成すること
によって取得できる。ヒトTNF遺伝子の設計に際して
は、用いる宿主細胞に最も適したコドンを選択すること
が望ましく、後にクローン化及び遺伝子改変を容易に行
なえるように適当な位置に適当な制限酵素による切断部
位を設けることが望ましい。
子は、ヒトTNF蛋白質を構成するアミノ酸[D 、
P ennicaら、前出]を指定するいくつかのコド
ンの中から適当なものを選び、それを化学合成すること
によって取得できる。ヒトTNF遺伝子の設計に際して
は、用いる宿主細胞に最も適したコドンを選択すること
が望ましく、後にクローン化及び遺伝子改変を容易に行
なえるように適当な位置に適当な制限酵素による切断部
位を設けることが望ましい。
また、ヒトTNF蛋白質をコードするDNA領域は、そ
の上流に読みとりフレームを一致さゼた形での翻訳開始
コドン(ATG)を有することが好ましく、その下流方
向に読みとり7レムを一致させた形での翻訳終止コドン
(TGA。
の上流に読みとりフレームを一致さゼた形での翻訳開始
コドン(ATG)を有することが好ましく、その下流方
向に読みとり7レムを一致させた形での翻訳終止コドン
(TGA。
TAGまたはTAA)を有することが好ましい。
上記翻訳終止コドンは、発現効率の向上を目的として、
2つ以上タンデムに連結することがとつわり好ましい。
2つ以上タンデムに連結することがとつわり好ましい。
さらに、このヒトTNF遺伝子は、その上流及び下流に
作用する制限酵素の切断部位を用いることにより、適当
なベクターへのクローン化が可能になる。このようなヒ
1へTNFI伝子の塩基配列の例を、第1図に示した。
作用する制限酵素の切断部位を用いることにより、適当
なベクターへのクローン化が可能になる。このようなヒ
1へTNFI伝子の塩基配列の例を、第1図に示した。
上記のように設計したヒトTNF遺伝子の取得は、上側
の鎖、下側の鎖のそれぞれについて、たとえば第2図に
示したような何本かのオリゴヌクレオチドに分けて、そ
れらを化学合成し、各々のオリゴヌクレオチドを連結す
る方法をとるのが望ましい。各オリゴヌクレオチドの合
成法としてはジエステル法[1−1,G、 Khora
na。
の鎖、下側の鎖のそれぞれについて、たとえば第2図に
示したような何本かのオリゴヌクレオチドに分けて、そ
れらを化学合成し、各々のオリゴヌクレオチドを連結す
る方法をとるのが望ましい。各オリゴヌクレオチドの合
成法としてはジエステル法[1−1,G、 Khora
na。
” S ome Recent [) evelo
pments inChemistry of
P hosphate E 5ters of3i
ological Interest”、John
Wileyand 5ons 、 Inc、、
New York (1961) ]。
pments inChemistry of
P hosphate E 5ters of3i
ological Interest”、John
Wileyand 5ons 、 Inc、、
New York (1961) ]。
1〜リエステル法[R、L 、 L etsinger
ら、J。
ら、J。
Am、 Chem、 Soc、、89.4801(
1967) ]及びホスファイト法[M、 D、 Ma
tteucclら。
1967) ]及びホスファイト法[M、 D、 Ma
tteucclら。
Tetrahedron l ett、、 2
1 、 719(1980) ] があるが、合
成時間、収率、操作の簡便さ等の血から、全自動DNA
合成機を用いたホスファイト法による合成が好ましい。
1 、 719(1980) ] があるが、合
成時間、収率、操作の簡便さ等の血から、全自動DNA
合成機を用いたホスファイト法による合成が好ましい。
合成したオリゴヌクレオチドの精製は、ゲル濾過、イオ
ン交換クロマトグラフィー、ゲル電気泳動、逆相カラム
による高速液体クロマトグラフィー等を、適宜単独もし
くは組合ゼて用いることができる。
ン交換クロマトグラフィー、ゲル電気泳動、逆相カラム
による高速液体クロマトグラフィー等を、適宜単独もし
くは組合ゼて用いることができる。
こうして得られた合成オリゴヌクレオチドの5′末端側
の水酸基を、たとえばT4−ポリヌクレオチドキナーゼ
を用いてリン酸化した後、アニーリングさせ、たとえば
T 4− D N Aリガゼを用い−C連結する。合成
オリゴヌクレオチドを連結してヒトTNF31]伝子を
作成する方法としては、合成オリゴヌクレオチドをいく
つかのブロックに分【プて連結し、たとえばpBR32
2[F 、 B of 1varら、 Gene’
、 2 、 95(1977) ]のようなベクタ
ーに一度クローン化した後、それらの各ブロックのDN
A断片を連結する方法が好ましい。このようなヒトTN
F遺伝子を構成するブロックのDNA断片を含むプラス
ミドとして、好ましくはpTNFIBR。
の水酸基を、たとえばT4−ポリヌクレオチドキナーゼ
を用いてリン酸化した後、アニーリングさせ、たとえば
T 4− D N Aリガゼを用い−C連結する。合成
オリゴヌクレオチドを連結してヒトTNF31]伝子を
作成する方法としては、合成オリゴヌクレオチドをいく
つかのブロックに分【プて連結し、たとえばpBR32
2[F 、 B of 1varら、 Gene’
、 2 、 95(1977) ]のようなベクタ
ーに一度クローン化した後、それらの各ブロックのDN
A断片を連結する方法が好ましい。このようなヒトTN
F遺伝子を構成するブロックのDNA断片を含むプラス
ミドとして、好ましくはpTNFIBR。
pT N F 2 NまたはpTNF3が用いられる。
上記のようにしてクローン化したヒトTNF遺伝子を構
成する各ブロックのDNA断片を連結した後、適当なプ
ロモーター、 SD (シャイン・ダルカー))配列の
下流につなぐことにより、発現型遺伝子とすることがで
きる。使用可能なプロモーターとして、トリプトファン
・オペロン・プロモーター(trpプロモーター)。
成する各ブロックのDNA断片を連結した後、適当なプ
ロモーター、 SD (シャイン・ダルカー))配列の
下流につなぐことにより、発現型遺伝子とすることがで
きる。使用可能なプロモーターとして、トリプトファン
・オペロン・プロモーター(trpプロモーター)。
ラクトース・オペロン・プロモーター(lacプロモー
ター) 、 tacプロモーター、Pロプロモター、
lppプロモーター等があげられるが、とりわけtrp
プロモーターが好適である。trpプロモーターを有す
るプラスミドとして、好ましくはpY S 3IN 、
又はI)A A 41が用いられる。
ター) 、 tacプロモーター、Pロプロモター、
lppプロモーター等があげられるが、とりわけtrp
プロモーターが好適である。trpプロモーターを有す
るプラスミドとして、好ましくはpY S 3IN 、
又はI)A A 41が用いられる。
さらに、発現効率向上を目的として、ヒトTNF遺伝子
下流に大賜菌で効率良く機能するターネーターを付与す
ることができる。このようなターミネータ−として、1
ppターミネータtrpターミネータ−等があげられる
が、とりわけtrl) Aターミネータ−が好適であり
、trl) Aターミネータ−を有するプラスミドとし
で、好ましくはIIA A 41が用いられる。この発
現型ヒトTNF遺伝子を、たとえばIIBR322由来
のベクターにクローン化することにより、発現型プラス
ミドが作成できる。ヒトTNF遺伝子発現型プラスミド
として、好ましくはpTNF401NN又はpTNF4
01Aが用いられる。
下流に大賜菌で効率良く機能するターネーターを付与す
ることができる。このようなターミネータ−として、1
ppターミネータtrpターミネータ−等があげられる
が、とりわけtrl) Aターミネータ−が好適であり
、trl) Aターミネータ−を有するプラスミドとし
で、好ましくはIIA A 41が用いられる。この発
現型ヒトTNF遺伝子を、たとえばIIBR322由来
のベクターにクローン化することにより、発現型プラス
ミドが作成できる。ヒトTNF遺伝子発現型プラスミド
として、好ましくはpTNF401NN又はpTNF4
01Aが用いられる。
(B)新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子のクロン化;
こうして得られたヒトTNF遺伝子発現型プラスミドを
適当な制限酵素で切断し、ヒトTNF遺伝子内の特定な
領域を除去した後、適当な塩基配列を有する合成オリゴ
ヌクレオチドを用いた遺伝子の修復を行なう。かかる手
法を用いることにより、ヒトTNF蛋白質中の任意のア
ミノ酸を他のアミノ酸に置換したり、付加したり、また
は欠失させた形の新規抗腫瘍活性ポリペブヂドをコード
する遺伝子を含む発現型プラスミドの作成が可能になる
。このような新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子発現型
プラスミドとして、好ましくは pTNF633又は
pTNF634が用いられる。
適当な制限酵素で切断し、ヒトTNF遺伝子内の特定な
領域を除去した後、適当な塩基配列を有する合成オリゴ
ヌクレオチドを用いた遺伝子の修復を行なう。かかる手
法を用いることにより、ヒトTNF蛋白質中の任意のア
ミノ酸を他のアミノ酸に置換したり、付加したり、また
は欠失させた形の新規抗腫瘍活性ポリペブヂドをコード
する遺伝子を含む発現型プラスミドの作成が可能になる
。このような新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子発現型
プラスミドとして、好ましくは pTNF633又は
pTNF634が用いられる。
(C)発現確認及び活性評価;
ヒトTNF遺伝子及び新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝
子を発現させるだめの微生物宿主としては、大腸菌、枯
草菌、酵母等があげられるが、とりわ(プ大腸菌[エシ
ェリヒア・コリ(E 5cherichia cot
i ) ]が好ましい。前記ヒ1− T N F遺伝
子発現型プラスミド及び新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺
伝子発現型プラスミドは、たとえば公知の方法[M、
V、 Norgardら。
子を発現させるだめの微生物宿主としては、大腸菌、枯
草菌、酵母等があげられるが、とりわ(プ大腸菌[エシ
ェリヒア・コリ(E 5cherichia cot
i ) ]が好ましい。前記ヒ1− T N F遺伝
子発現型プラスミド及び新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺
伝子発現型プラスミドは、たとえば公知の方法[M、
V、 Norgardら。
Gene、β−,279(1978) ]を用いて、微
生物宿主、たとえばエシェリヒア・コリC600r−m
株(ATCC33525)に導入することができる。
生物宿主、たとえばエシェリヒア・コリC600r−m
株(ATCC33525)に導入することができる。
このようにして得られた組換え微生物細胞を、それ自体
は公知の方法で培養する。培地としては、たとえばグル
コースとカザミノ酸を含むM9培地[T、 Mania
tisら編、 ” MolecularClonin
g” 、 P 440. Co1d Spr+
ng1−1arbor 1aboratory 、
New York (1982)参照]があげ
られ、必要に応じて、たとえばアンピシリン等を添加す
るのが望ましい。培養は目的の組換え微生物に適した条
件、たとえば振とうによる通気、撹拌を加えながら、3
7°Cで2〜36時間行なう。また、培養開始時または
培養中に、プロモーターを効率良く機能させる目的で、
3−β−インドールアクリル酸等の薬剤を加えることも
できる。
は公知の方法で培養する。培地としては、たとえばグル
コースとカザミノ酸を含むM9培地[T、 Mania
tisら編、 ” MolecularClonin
g” 、 P 440. Co1d Spr+
ng1−1arbor 1aboratory 、
New York (1982)参照]があげ
られ、必要に応じて、たとえばアンピシリン等を添加す
るのが望ましい。培養は目的の組換え微生物に適した条
件、たとえば振とうによる通気、撹拌を加えながら、3
7°Cで2〜36時間行なう。また、培養開始時または
培養中に、プロモーターを効率良く機能させる目的で、
3−β−インドールアクリル酸等の薬剤を加えることも
できる。
培養後、ICとえば遠心分離により組換え微生物細胞を
集め、たとえばリン酸バッファーに懸濁させ、たとえば
超音波処理により組換え微生物細胞を破砕し、遠心分離
により組換え微生物細胞のライゼートを得る。得られた
ライゼート中の蛋白質を、ラウリル硫酸ナトリウム(以
下、SDSと略すこともある)を含むポリアクリルアミ
ドゲルを用いた電気泳動によって分離し、ゲル中の蛋白
質を適当な方法を用いて染色する。
集め、たとえばリン酸バッファーに懸濁させ、たとえば
超音波処理により組換え微生物細胞を破砕し、遠心分離
により組換え微生物細胞のライゼートを得る。得られた
ライゼート中の蛋白質を、ラウリル硫酸ナトリウム(以
下、SDSと略すこともある)を含むポリアクリルアミ
ドゲルを用いた電気泳動によって分離し、ゲル中の蛋白
質を適当な方法を用いて染色する。
発現型プラスミドを含まない微生物細胞のライゼートを
対照として泳動パターンを比較することにより、ヒトT
NF遺伝子または新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子の
発現を確認する。
対照として泳動パターンを比較することにより、ヒトT
NF遺伝子または新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子の
発現を確認する。
このようにして得られたヒトTNFI白質及び新規抗腫
瘍活性ポリペプチドの抗癌活性の評価は、マウスに移植
したMethA肉腫を壊死させる効果を見るin v
ivo活性測定法(Carswel l ら、前出〉、
マウスL細胞に対する細胞障害性を見るin Vit
rO活性測定法[Ruff 、 J、 Tmmuno
l、、 126. 235(1981) ]等により行
なえる。
瘍活性ポリペプチドの抗癌活性の評価は、マウスに移植
したMethA肉腫を壊死させる効果を見るin v
ivo活性測定法(Carswel l ら、前出〉、
マウスL細胞に対する細胞障害性を見るin Vit
rO活性測定法[Ruff 、 J、 Tmmuno
l、、 126. 235(1981) ]等により行
なえる。
ヒトTNF蛋白質及び新規抗腫瘍活性ポリペプチドの大
腸菌ライゼートからの分離・精製は、公知の通常知られ
ている蛋白質の分離・精製法に従えばよいが、ヒトTN
F蛋白質等に対する抗体を用いたアフィニティー・カラ
ム・クロマトグラフィーが有利である。なかでも、ヒト
TNF蛋白質等に対するマウス・モノクローナル抗体を
用いたアフィニティー・カラム・クロマトグラフィーが
とりわけ好適である。こうして得られたヒトTNF蛋白
質及び新規抗腫瘍活性ポリペプチド精製品を用いること
により、n vivo抗癌活性(前出)等に関する検討
が可能となる。
腸菌ライゼートからの分離・精製は、公知の通常知られ
ている蛋白質の分離・精製法に従えばよいが、ヒトTN
F蛋白質等に対する抗体を用いたアフィニティー・カラ
ム・クロマトグラフィーが有利である。なかでも、ヒト
TNF蛋白質等に対するマウス・モノクローナル抗体を
用いたアフィニティー・カラム・クロマトグラフィーが
とりわけ好適である。こうして得られたヒトTNF蛋白
質及び新規抗腫瘍活性ポリペプチド精製品を用いること
により、n vivo抗癌活性(前出)等に関する検討
が可能となる。
かくして本発明によれば、従来公知のヒトTNF蛋白質
とは異なる新規生理活性ポリペプチドを得ることが可能
になり、この新規抗腫瘍活性ポリペプチドを用いること
によって抗腫瘍のためのすぐれた医薬組成物を提供する
ことが可能になった。
とは異なる新規生理活性ポリペプチドを得ることが可能
になり、この新規抗腫瘍活性ポリペプチドを用いること
によって抗腫瘍のためのすぐれた医薬組成物を提供する
ことが可能になった。
以下、実施例を掲げて本発明について詳細に説明するが
、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
実施例1(ヒトTNF遺伝子の設計)
第1図に示した塩基配列のヒトTNF遺伝子を設計した
、設計に際しては、pennicaら[D。
、設計に際しては、pennicaら[D。
P ennicaら、 Nature 、 312
. 724(1984) ] の報告したヒトTNF
前駆体cD N Aの構造遺伝子部分の塩基配列を基盤
として、適当な制限酵素による切断部位を適当な位置に
設け、5′側に翻訳開始コドン(ATG)を、そして3
′側に2個の翻訳終止コドン(TGA及びTAA>をそ
れぞれ付与した。また、5′側翻訳開始コドン上流には
制限酵素C5a工による切断部位を設け、SD配列と翻
訳開始コドン間を適切な状態に保った形でのプロモータ
ーとの連結を可能にした。更に、3′側翻訳終止コドン
下流には制限酵素Hindl[lによる切断部位を設け
、ベクター・プラスミドと容易に連結できるようにした
。
. 724(1984) ] の報告したヒトTNF
前駆体cD N Aの構造遺伝子部分の塩基配列を基盤
として、適当な制限酵素による切断部位を適当な位置に
設け、5′側に翻訳開始コドン(ATG)を、そして3
′側に2個の翻訳終止コドン(TGA及びTAA>をそ
れぞれ付与した。また、5′側翻訳開始コドン上流には
制限酵素C5a工による切断部位を設け、SD配列と翻
訳開始コドン間を適切な状態に保った形でのプロモータ
ーとの連結を可能にした。更に、3′側翻訳終止コドン
下流には制限酵素Hindl[lによる切断部位を設け
、ベクター・プラスミドと容易に連結できるようにした
。
実施例2(オリゴヌクレオチドの化学合成)実施例1で
設計したヒl−T N F遺伝子は、第2図に示したよ
うに17本のオリゴヌクレオチドに分けて合成する。オ
リゴヌクレオチドの合成は全自動DNA合成機(アプラ
イド・バイオシステムズ。
設計したヒl−T N F遺伝子は、第2図に示したよ
うに17本のオリゴヌクレオチドに分けて合成する。オ
リゴヌクレオチドの合成は全自動DNA合成機(アプラ
イド・バイオシステムズ。
モデル38OA )を用いて、ホスファイト法により行
なった。合成オリゴヌクレオチドの精製は、アプライド
・バイオシステムズ社のマニュアルに準じて行なった。
なった。合成オリゴヌクレオチドの精製は、アプライド
・バイオシステムズ社のマニュアルに準じて行なった。
すなわら、合成オリゴヌクレオチドを含むアンモニア水
溶液を55℃で一晩保つことにより、DNA塩基の保護
基をはずし、セファデックスG−50フアイン・ゲル(
ファルマシア)を用いたゲル濾過によって、高分子量の
合成オリゴヌクレオチド画分を分取する。ついで、7M
尿素を含むポリアクリルアミドゲル電気泳動くゲル濃度
20%)の後、紫外線シャドウィング法により泳動パタ
ーンの観察を行なう。目的とする大きさのバンド部分を
切出して、そのポリアクリルアミドゲル断片を細かく破
砕した後、2〜5−の溶出用バック7 [50011
1M N’Ha OAO−1mMFDTA−0,1%
SDS (+)H7,5) ]を加え、31℃で一晩振
とうした。遠心分離により、目的のDNAを含む水相の
回収を行なった。最後に合成オリゴヌクレオチドを含む
溶液をゲル濾過カラム(セファデックスC,50)にか
けることにより、合成オリゴヌクレオチドの精製品を得
た。なお、必要に応じて、ポリアクリルアミドゲル電気
泳動を繰り返し、合成オリゴヌクレオチドの純度の向上
をはかった。
溶液を55℃で一晩保つことにより、DNA塩基の保護
基をはずし、セファデックスG−50フアイン・ゲル(
ファルマシア)を用いたゲル濾過によって、高分子量の
合成オリゴヌクレオチド画分を分取する。ついで、7M
尿素を含むポリアクリルアミドゲル電気泳動くゲル濃度
20%)の後、紫外線シャドウィング法により泳動パタ
ーンの観察を行なう。目的とする大きさのバンド部分を
切出して、そのポリアクリルアミドゲル断片を細かく破
砕した後、2〜5−の溶出用バック7 [50011
1M N’Ha OAO−1mMFDTA−0,1%
SDS (+)H7,5) ]を加え、31℃で一晩振
とうした。遠心分離により、目的のDNAを含む水相の
回収を行なった。最後に合成オリゴヌクレオチドを含む
溶液をゲル濾過カラム(セファデックスC,50)にか
けることにより、合成オリゴヌクレオチドの精製品を得
た。なお、必要に応じて、ポリアクリルアミドゲル電気
泳動を繰り返し、合成オリゴヌクレオチドの純度の向上
をはかった。
実施例3(化学合成ヒトTNF遺伝子のクローン化)
実施例2で作成した17本の合成オリゴヌクレオチド(
TNF−1〜TNF−L7)を用いて、ヒトTNFI伝
子を3つのブロックに分けてクローン化した。
TNF−1〜TNF−L7)を用いて、ヒトTNFI伝
子を3つのブロックに分けてクローン化した。
0.1〜1.0μグの合成オリゴヌクレオチドTNF−
2〜TNF−6の5′末端側を、5〜15ユニツトのT
4−ポリヌクレオチドキナーゼ(E。
2〜TNF−6の5′末端側を、5〜15ユニツトのT
4−ポリヌクレオチドキナーゼ(E。
coli3タイプ、宝酒造)を用いて、それぞれ別々に
リン酸化する。リン酸化反応は10〜20μlの50m
MTris−HCj (1)89.5) 、 10 m
M M!II (Jz 。
リン酸化する。リン酸化反応は10〜20μlの50m
MTris−HCj (1)89.5) 、 10 m
M M!II (Jz 。
5 mMジチオスレイトール、10mM ATP水溶
液中で、37°Cで、30分間行なった。反応終了後、
すべての合成オリゴヌクレオチド水溶液をすべて混合し
、フェノール抽出、エーテル抽出によりT4−ポリヌク
レオチドキナーゼを失活、除去する。
液中で、37°Cで、30分間行なった。反応終了後、
すべての合成オリゴヌクレオチド水溶液をすべて混合し
、フェノール抽出、エーテル抽出によりT4−ポリヌク
レオチドキナーゼを失活、除去する。
この合成オリゴヌクレオチド混合液に、新たに0.1〜
1.0μびの合成オリゴヌクレオチドTNF1及びTN
F−7を加え、90°Cで5分間加熱した後室温まで徐
冷して、アニーリングを行なう。
1.0μびの合成オリゴヌクレオチドTNF1及びTN
F−7を加え、90°Cで5分間加熱した後室温まで徐
冷して、アニーリングを行なう。
次に、これを減圧乾固した後に、30μρの66 n+
MTrls−HCR(pH7,6> 、 6.6 m
M MC+ (J2 。
MTrls−HCR(pH7,6> 、 6.6 m
M MC+ (J2 。
10 mMジチオスレイトール、1 mM ATP水溶
液に溶解させ、300ユニツトのTl−DNAリガーゼ
(宝酒造)を加えて、11℃で15時間連結反応を行な
った。反応終了後、ポリアクリルアミドゲル電気泳動(
ゲル濃度5%)を行ない、■チジウムブロマイド染色法
により泳動パターンの観察を行なう。目的とする大きさ
(約220bl) )のバンド部分を切出して、実施例
2の方法に従ってポリアクリルアミドゲルよりDNAを
回収する。
液に溶解させ、300ユニツトのTl−DNAリガーゼ
(宝酒造)を加えて、11℃で15時間連結反応を行な
った。反応終了後、ポリアクリルアミドゲル電気泳動(
ゲル濃度5%)を行ない、■チジウムブロマイド染色法
により泳動パターンの観察を行なう。目的とする大きさ
(約220bl) )のバンド部分を切出して、実施例
2の方法に従ってポリアクリルアミドゲルよりDNAを
回収する。
方、3μびの大腸菌用プラスミド1)BR322(約4
.4Kbp)を30tt 磨(7)10 mM T
ris−HCR(DH7,5> 、 60 mM N
a CJ、 7 mMMgCR2水溶液に溶解させ、1
0ユニツトの制限酵素Cfa工にューイングランド・バ
イオラブズ)を添加して、37℃で1時間切断反応を行
なった。
.4Kbp)を30tt 磨(7)10 mM T
ris−HCR(DH7,5> 、 60 mM N
a CJ、 7 mMMgCR2水溶液に溶解させ、1
0ユニツトの制限酵素Cfa工にューイングランド・バ
イオラブズ)を添加して、37℃で1時間切断反応を行
なった。
制限酵素CfaIによる切断の後、フェノール抽出。
エーテル抽出を行ない、エタノール沈澱によりDNAを
回収する。このDNAを30μ磨の50 mMTris
−HCJ (pH7,4) 、 100 mM N
a CL 10111yl M(]SO4水溶液に溶
解させ、10ユニツ]・の制限酵素5alI (宝酒造
)を添加して、37℃で1時間切断反応を行なった。反
応終了後、アガロースゲル電気泳動くゲル濃度0.8%
)を行ない、エヂジウムブロマイド染色法により切断パ
ターンの観察を行なう。プラスミドI)BR322の大
部分を含む約3.7KbpのDNAの部分に相当するバ
ンドを切出し、そのアガロースゲル断片を3倍量(vo
l 7wt)の8M NaC904水溶液に溶解させ
た。Chenらのグラスフィルター法[C,WChen
ら、 Anal 、 3iochem、 101.
339(1980) ]により、約3.7KbpのDN
A断片((JaIく→5alI)をアガロースゲルより
回収した。
回収する。このDNAを30μ磨の50 mMTris
−HCJ (pH7,4) 、 100 mM N
a CL 10111yl M(]SO4水溶液に溶
解させ、10ユニツ]・の制限酵素5alI (宝酒造
)を添加して、37℃で1時間切断反応を行なった。反
応終了後、アガロースゲル電気泳動くゲル濃度0.8%
)を行ない、エヂジウムブロマイド染色法により切断パ
ターンの観察を行なう。プラスミドI)BR322の大
部分を含む約3.7KbpのDNAの部分に相当するバ
ンドを切出し、そのアガロースゲル断片を3倍量(vo
l 7wt)の8M NaC904水溶液に溶解させ
た。Chenらのグラスフィルター法[C,WChen
ら、 Anal 、 3iochem、 101.
339(1980) ]により、約3.7KbpのDN
A断片((JaIく→5alI)をアガロースゲルより
回収した。
先に得られたヒトTNF311仏子の一部を含む約22
0bl)のDNA断片について、前記の方法に準じて末
端のリン酸化反応を行なった後、プラスミド1)BR3
22の大部分を含む約3.7)(bpのDNA水溶液と
混合する。エタノール沈澱の後、前記の方法に準じて両
DNA断片の連結反応を行なった。
0bl)のDNA断片について、前記の方法に準じて末
端のリン酸化反応を行なった後、プラスミド1)BR3
22の大部分を含む約3.7)(bpのDNA水溶液と
混合する。エタノール沈澱の後、前記の方法に準じて両
DNA断片の連結反応を行なった。
エシェリヒア・コリC6C600r−株の形質転換は、
通常のCafJz法(M、 V、 Norgardらの
方法)の改良法で行なった。すなわち、5dのL培地(
1%トリプトン、0.5%酵母エキス、0.5%Na
CL I)H7,2)にエシェリヒア・]すC6C6
00r−株の18時間培養基を接種し、菌体を含む培養
液の600μmにおける濁度(OD、f、ρ)が0.3
に達するまで生育させる。菌体を冷たいマグネシウム・
バッフp [0,IM Na CJ、 5 m
M 、 MOCB2゜5 mM Tris−HCR(
IIH7,6,0℃〉]中で2回洗い、2−の冷したカ
ルシウム・バッファ[100111MCa CRz 、
250 mM KCR,5mMMg(J2.5
mM Tris−HCj (1)H7,6゜0℃)
]中に再懸濁させ、O′Cで25分間放置する。
通常のCafJz法(M、 V、 Norgardらの
方法)の改良法で行なった。すなわち、5dのL培地(
1%トリプトン、0.5%酵母エキス、0.5%Na
CL I)H7,2)にエシェリヒア・]すC6C6
00r−株の18時間培養基を接種し、菌体を含む培養
液の600μmにおける濁度(OD、f、ρ)が0.3
に達するまで生育させる。菌体を冷たいマグネシウム・
バッフp [0,IM Na CJ、 5 m
M 、 MOCB2゜5 mM Tris−HCR(
IIH7,6,0℃〉]中で2回洗い、2−の冷したカ
ルシウム・バッファ[100111MCa CRz 、
250 mM KCR,5mMMg(J2.5
mM Tris−HCj (1)H7,6゜0℃)
]中に再懸濁させ、O′Cで25分間放置する。
次に菌体をこの容量の1/10にカルシウム・バッファ
ーの中で濃縮し、連結後のDNA水溶液と2:1 (v
ol、 : vol、)混合する。この混合物を60分
間。
ーの中で濃縮し、連結後のDNA水溶液と2:1 (v
ol、 : vol、)混合する。この混合物を60分
間。
0℃で保った後、1−のLBG培地(1%トリプトン、
0.5%酵母エキス、1%NaCj、 0.08%グ
ルコース、 pH7,2>を添加し、37°Cで1時
間撮とう培養する。培養液を、選択培地[アンピシリン
(シグマ)30μ9/dを含むし培地プレート]に10
0μρ/プレートの割合で接種する。プレトを37℃で
1晩培養して、形質転換株を生育させる。得られたアン
ピシリン耐性のコロニーより、公知の方法を用いてDN
Aを調製し、アガロースゲル電気泳動により、目的のプ
ラスミドpTNFlBR(約4.OK bp>の取得を
確認した。第3図に、プラスミドpTNFIBRの作成
方法を示す。
0.5%酵母エキス、1%NaCj、 0.08%グ
ルコース、 pH7,2>を添加し、37°Cで1時
間撮とう培養する。培養液を、選択培地[アンピシリン
(シグマ)30μ9/dを含むし培地プレート]に10
0μρ/プレートの割合で接種する。プレトを37℃で
1晩培養して、形質転換株を生育させる。得られたアン
ピシリン耐性のコロニーより、公知の方法を用いてDN
Aを調製し、アガロースゲル電気泳動により、目的のプ
ラスミドpTNFlBR(約4.OK bp>の取得を
確認した。第3図に、プラスミドpTNFIBRの作成
方法を示す。
以上と同様な手法により、合成オリゴヌクレオチドTN
I−8〜TNF−13を用いてプラスミドρTNF2N
(約3.IKblll)を、合成オリゴヌクレオチド
TNF−14〜TNF−17を用いてプラスミド1lT
NF3(約2.4K bp)を、それぞれ作成した。第
4図及び第5図に、プラスミドpTNF2N及びpTN
F3の作成方法を、それぞれ示す。
I−8〜TNF−13を用いてプラスミドρTNF2N
(約3.IKblll)を、合成オリゴヌクレオチド
TNF−14〜TNF−17を用いてプラスミド1lT
NF3(約2.4K bp)を、それぞれ作成した。第
4図及び第5図に、プラスミドpTNF2N及びpTN
F3の作成方法を、それぞれ示す。
こうして得られたヒトT、NF遺伝子の一部を含むプラ
スミドI)TNFlBR,1)RNF2N及びpTNF
3の、合成オリゴヌクレオチド使用部分の塩基配列が設
計通りであることは、マキサム・ギルバート法[A、
M、、Maxamら、 MethodsE nzymo
l、、65. 499 (1980) ]によって確認
した。
スミドI)TNFlBR,1)RNF2N及びpTNF
3の、合成オリゴヌクレオチド使用部分の塩基配列が設
計通りであることは、マキサム・ギルバート法[A、
M、、Maxamら、 MethodsE nzymo
l、、65. 499 (1980) ]によって確認
した。
実施例4(ヒトTNF遺伝子発現型プラスミドの作成)
実施例3で得られたプラスミドpTNFIBR10μ9
を、実施例3と同様にして制限酵素(JaI及び3al
:[で切断し、ポリアクリルアミドゲル電気泳動くゲル
濃度5%)の後、実施例2の方法に準じて、ヒトTNF
遺伝子の一部を含む約220bpのDNA断片((Ja
l−8alI)をポリアクリルアミドゲルより回収し
た。
を、実施例3と同様にして制限酵素(JaI及び3al
:[で切断し、ポリアクリルアミドゲル電気泳動くゲル
濃度5%)の後、実施例2の方法に準じて、ヒトTNF
遺伝子の一部を含む約220bpのDNA断片((Ja
l−8alI)をポリアクリルアミドゲルより回収し
た。
次に、実施例3で得られたプラスミドpTNF2 10
uciを100μMの10 mM T ris−HC
4(pH7,5) 、 60 mM Na CR,7
mMMil(J2水溶液に溶解させ、40ユニツトの制
限酵素PVIJII(宝酒造)を添加し、37°Cで1
時間切断反応を行なった。そして、実施例3の方法に準
じて制限酵素5alIによる切断、ポリアクリルアミド
ゲル電気泳動(ゲル濃度5%)の後、実施例2の方法に
準じて、ヒ1〜TN F遺伝子の一部を含む約170b
pのDNA断片(SalI+PvulI)をポリアクリ
ルアミドゲルより回収した。
uciを100μMの10 mM T ris−HC
4(pH7,5) 、 60 mM Na CR,7
mMMil(J2水溶液に溶解させ、40ユニツトの制
限酵素PVIJII(宝酒造)を添加し、37°Cで1
時間切断反応を行なった。そして、実施例3の方法に準
じて制限酵素5alIによる切断、ポリアクリルアミド
ゲル電気泳動(ゲル濃度5%)の後、実施例2の方法に
準じて、ヒ1〜TN F遺伝子の一部を含む約170b
pのDNA断片(SalI+PvulI)をポリアクリ
ルアミドゲルより回収した。
また、実施例3で得られたプラスミドpTNF3 10
11gも100μ旦の10 mMTrls−HC1<
I)H7,5) 、 60 mM Na C9,7
’mMM(IC92水溶液に溶解させ、40ユニツトの
制限酵素pvu■及び40ユニツトの制限酵素Hind
nl(宝酒造)を添加し、37℃で1時間切断反応を行
なった。そして、ポリアクリルアミドゲル電気泳動(ゲ
ル濃度5%)の後、実施例2の方法に準じて、ヒトTN
F遺伝子の一部を含む約110bpのDNA断片(p
vu[<−* if +nd m )をポリアクリルア
ミドゲルより回収し1= 。
11gも100μ旦の10 mMTrls−HC1<
I)H7,5) 、 60 mM Na C9,7
’mMM(IC92水溶液に溶解させ、40ユニツトの
制限酵素pvu■及び40ユニツトの制限酵素Hind
nl(宝酒造)を添加し、37℃で1時間切断反応を行
なった。そして、ポリアクリルアミドゲル電気泳動(ゲ
ル濃度5%)の後、実施例2の方法に準じて、ヒトTN
F遺伝子の一部を含む約110bpのDNA断片(p
vu[<−* if +nd m )をポリアクリルア
ミドゲルより回収し1= 。
方、大腸菌trpプロモーターを有するプラスミドpY
s31N<約4,7Kbp) 5μ9を、上記と同様に
制限酵素CjaI及び日ind mで切断し、アガロー
スゲル電気泳動くゲル′a度0.8%)の後、実施例3
の方法に準じて、プラスミドI]YS3INの大部分を
含む約4.7K bpのDNA断片(CJaIく→l−
1indl[をアガロースゲルより回収した。
s31N<約4,7Kbp) 5μ9を、上記と同様に
制限酵素CjaI及び日ind mで切断し、アガロー
スゲル電気泳動くゲル′a度0.8%)の後、実施例3
の方法に準じて、プラスミドI]YS3INの大部分を
含む約4.7K bpのDNA断片(CJaIく→l−
1indl[をアガロースゲルより回収した。
こうして得られた、ヒトTNFl仏子の一部を含む約2
20bp、約170bp及び約1101) +1の3つ
のDNA断片とプラスミドpYs31Nの大部分を含む
約4.7KbflのDNA断片とを混合し、エタノール
沈澱の後、実施例3の方法に準じで、T /1.− D
NAリガーゼによる連結反応を行なった。反応終了後
、実施例3の方法に準じてエシェリヒア・コリC6C6
00r−株に導入し、形質転換株の中より目的のヒトT
NF遺伝子発現型プラスミドDTNF401NN(約5
.2K b[l)を有するクローンを選択した。第6図
に、そのプラスミドpTNF401NNの作成方法を示
した。
20bp、約170bp及び約1101) +1の3つ
のDNA断片とプラスミドpYs31Nの大部分を含む
約4.7KbflのDNA断片とを混合し、エタノール
沈澱の後、実施例3の方法に準じで、T /1.− D
NAリガーゼによる連結反応を行なった。反応終了後
、実施例3の方法に準じてエシェリヒア・コリC6C6
00r−株に導入し、形質転換株の中より目的のヒトT
NF遺伝子発現型プラスミドDTNF401NN(約5
.2K b[l)を有するクローンを選択した。第6図
に、そのプラスミドpTNF401NNの作成方法を示
した。
また、上記プラスミドpYS3IN5μqを、上記の方
法に準じて制限酵素PVLIIIで部分分解した後、さ
らに制限酵素1−1indllで切断し、アガロスゲル
ミ気泳動くゲル濃度0.8%)の後、実施例3の方法に
準じて、trpプロモーターを含む約2.7K bpの
DNA断片[P vJ f2)” I−1ind II
I ]をアガロースゲルより回収した。
法に準じて制限酵素PVLIIIで部分分解した後、さ
らに制限酵素1−1indllで切断し、アガロスゲル
ミ気泳動くゲル濃度0.8%)の後、実施例3の方法に
準じて、trpプロモーターを含む約2.7K bpの
DNA断片[P vJ f2)” I−1ind II
I ]をアガロースゲルより回収した。
次に第7図記載の塩基配列を有するオリゴヌクレオチド
を、実施例2の方法に準じて、合成・精製した。得られ
た2本の合成オリゴヌクレオチドそれぞれ0.5μqに
ついて、実施例3の方法に準じて、末端のリン酸化を行
ない、アニーリングの後、先ニ1JIBhり約2.7K
bpのDNA断片[pvuII f2)” l−1in
d II[]と混合し、エタ7−/L4[f7)ffl
、実施例3の方法に準じて、T /l−D N Aリガ
ーゼによる連結反応を行なった。反応終了後、実施例3
の方法に準じてエシェリヒア・コリC600r−m株に
導入し、形質転換株の中より目的のプラスミドpAA4
1(約2.7K bp)を有するクローンを選択した。
を、実施例2の方法に準じて、合成・精製した。得られ
た2本の合成オリゴヌクレオチドそれぞれ0.5μqに
ついて、実施例3の方法に準じて、末端のリン酸化を行
ない、アニーリングの後、先ニ1JIBhり約2.7K
bpのDNA断片[pvuII f2)” l−1in
d II[]と混合し、エタ7−/L4[f7)ffl
、実施例3の方法に準じて、T /l−D N Aリガ
ーゼによる連結反応を行なった。反応終了後、実施例3
の方法に準じてエシェリヒア・コリC600r−m株に
導入し、形質転換株の中より目的のプラスミドpAA4
1(約2.7K bp)を有するクローンを選択した。
このようなプラスミドは、プラスミドpYs3INから
コピー数制御領域を除去し、jrpプロモーター下流に
存在するクローニング・サイトの下流に大腸菌trp
Aターミネータ−を付与した形の、多コピー・高効率発
現ベクターで゛あり、第7図にその作成方法を示した。
コピー数制御領域を除去し、jrpプロモーター下流に
存在するクローニング・サイトの下流に大腸菌trp
Aターミネータ−を付与した形の、多コピー・高効率発
現ベクターで゛あり、第7図にその作成方法を示した。
このプラスミドt’1AA41 2μqを、上記と同様
に制限酵素CfaI及びHindn[で切断し、アガロ
ースゲル電気泳動くゲル濃度0.8%)の後、実施例3
の方法に準じて、プラスミドDA A 44の大部分ヲ
含ム約2,7K bpのDNA断片(C9aI−1−l
ind III )をアガロースゲルより回収した。
に制限酵素CfaI及びHindn[で切断し、アガロ
ースゲル電気泳動くゲル濃度0.8%)の後、実施例3
の方法に準じて、プラスミドDA A 44の大部分ヲ
含ム約2,7K bpのDNA断片(C9aI−1−l
ind III )をアガロースゲルより回収した。
また、先に得られたヒトTNF遺伝子発現型プラスミド
p”r N F2O3N N 5μqを、上記と同様に
制限酵素CjaI及びHindI[[で切断し、ポリア
クリルアミドゲル電気泳動くゲル濃度5%)の後、実施
例2の方法に準じて、ヒトTNF遺伝子全域を含む約4
90brlのDNA断片((la I”Hind m
)をポリアクリルアミドゲルより回収した。
p”r N F2O3N N 5μqを、上記と同様に
制限酵素CjaI及びHindI[[で切断し、ポリア
クリルアミドゲル電気泳動くゲル濃度5%)の後、実施
例2の方法に準じて、ヒトTNF遺伝子全域を含む約4
90brlのDNA断片((la I”Hind m
)をポリアクリルアミドゲルより回収した。
こうして得られた、プラスミドI)A A 41の大部
分を含む約2.7K bpのDNA断片とヒトTNF遺
伝子全域を含む約490btllのDNA断片とを混合
し、エタノール沈澱の後、実施例3の方法に準じて、T
4−DNAリガーゼによる連結反応を行なった。
分を含む約2.7K bpのDNA断片とヒトTNF遺
伝子全域を含む約490btllのDNA断片とを混合
し、エタノール沈澱の後、実施例3の方法に準じて、T
4−DNAリガーゼによる連結反応を行なった。
反応終了後、実施例3の方法に準じて、エシェリヒア・
コリ600r−m−株に導入し、形質転換株の中より目
的のプラスミドIITN F 401A (約3.2K
bp)を有するクローンを選択した。このプラスミドは
、ヒトTNF遺伝子をより効率良く発現させる能力を有
しており、第8図にその作成方法を月\ し lこ 。
コリ600r−m−株に導入し、形質転換株の中より目
的のプラスミドIITN F 401A (約3.2K
bp)を有するクローンを選択した。このプラスミドは
、ヒトTNF遺伝子をより効率良く発現させる能力を有
しており、第8図にその作成方法を月\ し lこ 。
実施例5(新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子発現型プ
ラスミドの作成) 実施例4で得られたヒトTNF遺伝子発現型プフスミド
IITNF 401A20μ3を、実施例4の方法に準
じて制限酵素Cja工及びHindlで切断し、ポリア
クリルアミドゲル電気泳動(ゲル濃度5%)及びアガロ
ースゲル電気泳動くゲル濃度0.8%)の後、それぞれ
実施例2及び3の方法に準じて、生成する2つのDNA
断片(約490bp及び約2.7K bp、両方共(l
a I4−+l−1ind III )をゲルより回収
した。
ラスミドの作成) 実施例4で得られたヒトTNF遺伝子発現型プフスミド
IITNF 401A20μ3を、実施例4の方法に準
じて制限酵素Cja工及びHindlで切断し、ポリア
クリルアミドゲル電気泳動(ゲル濃度5%)及びアガロ
ースゲル電気泳動くゲル濃度0.8%)の後、それぞれ
実施例2及び3の方法に準じて、生成する2つのDNA
断片(約490bp及び約2.7K bp、両方共(l
a I4−+l−1ind III )をゲルより回収
した。
ここで得られたヒトTN FJ伝伝令全域含む約490
bpのDNA断片を50μすの10mM Trisl
−fciI)l−17,4)、 1.OmM M
(] SO+ 、 1 mMジチオスレイトー
ル水溶液に溶解させ、101ニツ1〜の制限酵素Hap
I[(宝酒造)を添加して、37°Cで1時間切断反応
を行なった。反応終了後、ポリアクリルアミドゲル電気
泳動(ゲル濃度5%)を行ない、実施例2の方法に準じ
て、ヒトTNF遺伝子の大部分を含む約390bl)の
DNA断片(Hap]I HHindlm>をポリアク
リルアミドゲルより回収した。
bpのDNA断片を50μすの10mM Trisl
−fciI)l−17,4)、 1.OmM M
(] SO+ 、 1 mMジチオスレイトー
ル水溶液に溶解させ、101ニツ1〜の制限酵素Hap
I[(宝酒造)を添加して、37°Cで1時間切断反応
を行なった。反応終了後、ポリアクリルアミドゲル電気
泳動(ゲル濃度5%)を行ない、実施例2の方法に準じ
て、ヒトTNF遺伝子の大部分を含む約390bl)の
DNA断片(Hap]I HHindlm>をポリアク
リルアミドゲルより回収した。
また、第9図記載の塩基配列を有するオリゴヌクレオチ
ドを、実施例2の方法に準じて、合成精製した。得られ
た4本の合成オリゴヌクレオチドそれぞれ0.5μqに
ついて、実施例3の方法に準じて、末端のリン酸化を行
ない、アニーリングの後、Tl−DNAリガーゼによる
連結反応を行なった。
ドを、実施例2の方法に準じて、合成精製した。得られ
た4本の合成オリゴヌクレオチドそれぞれ0.5μqに
ついて、実施例3の方法に準じて、末端のリン酸化を行
ない、アニーリングの後、Tl−DNAリガーゼによる
連結反応を行なった。
反応終了後、得られた2本鎖オリゴヌクレオチドを、先
に得られた約2,7K bt)のDNA断片(CRa
ニーHind I[I )及びヒトTNF遺伝子の大3
つ 部分を含む約390bDのDNA断片(Hap[−)−
1+ndlII)と混合し、エタノール沈澱の後、実施
例3の方法に準じて、T4.−、DNAリガーゼによる
連結反応を行なった。反応終了後、実施例3の方法に準
じてエシェリヒア・コリC6C600r−株に導入し、
形質転換株の中より目的のプラスミド1’1TNF47
1(約3,2K bp)を有するクローンを選択した。
に得られた約2,7K bt)のDNA断片(CRa
ニーHind I[I )及びヒトTNF遺伝子の大3
つ 部分を含む約390bDのDNA断片(Hap[−)−
1+ndlII)と混合し、エタノール沈澱の後、実施
例3の方法に準じて、T4.−、DNAリガーゼによる
連結反応を行なった。反応終了後、実施例3の方法に準
じてエシェリヒア・コリC6C600r−株に導入し、
形質転換株の中より目的のプラスミド1’1TNF47
1(約3,2K bp)を有するクローンを選択した。
このプラスミドは、次のアミノ酸配列(H2N )
Ar(l Lys Ar(] ]LysPro−
Vat−Ala−HisVal−Val−AlaA s
n −P ro −Q In −A 1a−G ILI
−G ly −Q In1−eu−Gln−TrD
−LeU−ASn−Ar(]−Ar(IA la −A
sn −A la −L eu −L eu−A l
a −A 5nGly−Vat−Glu −L eu−
Arg−Asp−AsnQ In −Leu −Val
−Val−Pro −Ser −G luG 1y−
Leu −Tyr −Leu−1le −Tyr −5
erG In−Val−Leu −Phe −Lys
−G 1y−G InG 1y−Cys −Pro −
3er −Thr−His −Vaしeu−L eu
−Thr −@ 1s−Thr −11e−3erA
ro−I le −A la −Val −3er −
Tyr −G InThr−Lys−Vat−Asn−
Leu−1eu−3erAla−I 1e−1−ys
−3er−1〕ro−Cys−QlnA rc+−G
1u−T hr−P ro−G lu−G ly−A
laG Iu −A la −1ys−P ro −T
rD −T Vr−G luP ro−1le−Ty
r−Leu−G ly−G ly−Vap he−G
1n−L etl−G Iu−L VS−G +y−A
5l)=ArQ−Leu−3er−Ala−Glu−
11e−ASnA r(]−P rO−A 5l)−T
Vr−Ll−A Sp−P heA Ia−G lu−
5er−G、ly−G ln−Val−TVrP he
−G ly −I 1e−I 1e−A 1a−
L eu(COOH) で表わされる抗腫瘍性ポリペプチドまたはそのアミノ末
端にMetが結合しているポリペプチドをコドする発現
型プラスミドであり、第9図にその作成方法を示した。
Ar(l Lys Ar(] ]LysPro−
Vat−Ala−HisVal−Val−AlaA s
n −P ro −Q In −A 1a−G ILI
−G ly −Q In1−eu−Gln−TrD
−LeU−ASn−Ar(]−Ar(IA la −A
sn −A la −L eu −L eu−A l
a −A 5nGly−Vat−Glu −L eu−
Arg−Asp−AsnQ In −Leu −Val
−Val−Pro −Ser −G luG 1y−
Leu −Tyr −Leu−1le −Tyr −5
erG In−Val−Leu −Phe −Lys
−G 1y−G InG 1y−Cys −Pro −
3er −Thr−His −Vaしeu−L eu
−Thr −@ 1s−Thr −11e−3erA
ro−I le −A la −Val −3er −
Tyr −G InThr−Lys−Vat−Asn−
Leu−1eu−3erAla−I 1e−1−ys
−3er−1〕ro−Cys−QlnA rc+−G
1u−T hr−P ro−G lu−G ly−A
laG Iu −A la −1ys−P ro −T
rD −T Vr−G luP ro−1le−Ty
r−Leu−G ly−G ly−Vap he−G
1n−L etl−G Iu−L VS−G +y−A
5l)=ArQ−Leu−3er−Ala−Glu−
11e−ASnA r(]−P rO−A 5l)−T
Vr−Ll−A Sp−P heA Ia−G lu−
5er−G、ly−G ln−Val−TVrP he
−G ly −I 1e−I 1e−A 1a−
L eu(COOH) で表わされる抗腫瘍性ポリペプチドまたはそのアミノ末
端にMetが結合しているポリペプチドをコドする発現
型プラスミドであり、第9図にその作成方法を示した。
方、上記で得られたヒトTNFM伝子発坦型プラスミド
pTNF 471 20μ9を、実施例4の方法に準じ
て制限酵素Hindl[iで切断した後、50mM
Tris −HCf (tllH7,4) 、 100
m MNa (J、 10 mM M(+ 804
水溶液中で制限M素NC0I(宝酒造)による切断反応
を37℃で1時間行なう。反応終了後、アガロースゲル
電気泳動くゲル濃度067%)及びポリアクリルアミド
ゲル電気泳動くゲル濃度5%)を行ない、実施例2の方
法に準じて、ヒトTNFJ伝子の一部を含む約140b
pのDNA断片(NcoIHf−find III)を
ポリアクリルアミドゲルより、そして実施例3の方法に
準じて、I)TNF471の大部分を含む約3.0Kb
pのDNA断片(NcoI+Hind m )をアガロ
スゲルより、それぞれ回収した。
pTNF 471 20μ9を、実施例4の方法に準じ
て制限酵素Hindl[iで切断した後、50mM
Tris −HCf (tllH7,4) 、 100
m MNa (J、 10 mM M(+ 804
水溶液中で制限M素NC0I(宝酒造)による切断反応
を37℃で1時間行なう。反応終了後、アガロースゲル
電気泳動くゲル濃度067%)及びポリアクリルアミド
ゲル電気泳動くゲル濃度5%)を行ない、実施例2の方
法に準じて、ヒトTNFJ伝子の一部を含む約140b
pのDNA断片(NcoIHf−find III)を
ポリアクリルアミドゲルより、そして実施例3の方法に
準じて、I)TNF471の大部分を含む約3.0Kb
pのDNA断片(NcoI+Hind m )をアガロ
スゲルより、それぞれ回収した。
さらに、上で得られた約140bpのDNA断片(Nc
oT←+Hind [1)を50μ磨の10mM T
risH(J (DH7,4) 、 10 m
M M(+ 804 、 1mMジチオスレイ
トール水溶液に溶解させ、10ユニツトの制限酵素AC
CI(宝酒造)を添加して、37℃で1時間切断反応を
行なった。反応終了後、ポリアクリルアミドゲル電気泳
動(ゲル濃度8%)を行ない、実施例2の方法に準じて
、ヒトTNF遺伝子の一部を含む約110bpのDNA
断片(N COI←ACCI)をポリアクリルアミドゲ
ルより回収し lこ 。
oT←+Hind [1)を50μ磨の10mM T
risH(J (DH7,4) 、 10 m
M M(+ 804 、 1mMジチオスレイ
トール水溶液に溶解させ、10ユニツトの制限酵素AC
CI(宝酒造)を添加して、37℃で1時間切断反応を
行なった。反応終了後、ポリアクリルアミドゲル電気泳
動(ゲル濃度8%)を行ない、実施例2の方法に準じて
、ヒトTNF遺伝子の一部を含む約110bpのDNA
断片(N COI←ACCI)をポリアクリルアミドゲ
ルより回収し lこ 。
また、第10図記載の塩基配列を有するオリゴヌクレオ
チドを、実施例2の方法に準じて、合成。
チドを、実施例2の方法に準じて、合成。
精製した。得られた2本の合成オリゴヌクレオチドそれ
ぞれ0.5μqについて、実施例3の方法に準じて、末
端のリン酸化を行ない、アニーリングを行なった。
ぞれ0.5μqについて、実施例3の方法に準じて、末
端のリン酸化を行ない、アニーリングを行なった。
アニーリングの後、得られた2重鎖オリゴヌクレオチド
を、先に得られた約3.OK bpのDNA断片(Nc
oI+Hind I[[)及びヒトTNF遺伝子の部含
む約110bpのDNA断片(NcoI→ACC■)と
混合し、エタノール沈殿の後、実施例3の方法に準じて
、T4−DNAリガーゼによる連結反応を行なった。反
応終了後、実施例3の方法に準じてエシェリヒア・コリ
C6C600r−株に導入し、形質転換株の中より目的
のプラスミド1ITNF633(約3.2Kbl))を
有するクローンを選択した。このプラスミドは、次のア
ミノ酸配列 (l2 N ) −Aro−Lys−Arg−1ys
P ro−Val −A la −His −Val
−Val −A laA sn−P ro−G In L eu−G ln−T rp A 1a−A sn−A la G ly−V al−G lu G In −L eu −Va G ly−L cu−T yr G In−V at−L eu G 1y−CyS−P r。
を、先に得られた約3.OK bpのDNA断片(Nc
oI+Hind I[[)及びヒトTNF遺伝子の部含
む約110bpのDNA断片(NcoI→ACC■)と
混合し、エタノール沈殿の後、実施例3の方法に準じて
、T4−DNAリガーゼによる連結反応を行なった。反
応終了後、実施例3の方法に準じてエシェリヒア・コリ
C6C600r−株に導入し、形質転換株の中より目的
のプラスミド1ITNF633(約3.2Kbl))を
有するクローンを選択した。このプラスミドは、次のア
ミノ酸配列 (l2 N ) −Aro−Lys−Arg−1ys
P ro−Val −A la −His −Val
−Val −A laA sn−P ro−G In L eu−G ln−T rp A 1a−A sn−A la G ly−V al−G lu G In −L eu −Va G ly−L cu−T yr G In−V at−L eu G 1y−CyS−P r。
L eu −L eU −Thr
A r(1−I 1e−A 1a
Thr−L ys −V a
A la −11e −L ys
A r(1−G lu−T hr
G lu−A 1a−L yS
P ro−11e−T yr
P he−G In −L eu
A rg−L eu−3er
A rg−P ro−A SD
A 1a−G lu−3er
P he−G ly−1le
1a
−eu
leu
leu
Va
leu
he
er
IS
Va
Sn
er
pr。
pr。
leu
Glu
1a
Tyr
Gll/
Ie
Glu
Sn
leu
Ar(]
pr。
le
VS
hr
hr
er
−eu
pr。
Glu
Trp
Gly
VS
Glu
−eu
Gln
he
Gly−Gln
A r(1−A r(I
Ala−Asn
Asp−Asn
3er−Qlu
Tyr−8er
GIV−Gln−
l5−Va
11e−3er
Tyr−Gln
leu−3er
Cys−Gln
Gly−Ala
Tyr−Glu
GIV−Val−
Q ly−A 5t)
11e−Asn
Asp−Phe
Val−Tyr
he
(COOH)
で表わされる新規抗腫瘍性ポリペプチドまたはそのアミ
ノ末端にMetが結合しているポリペプチドをコードす
る新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子発現型プラスミド
であり、第10図にその作成方法を示した。
ノ末端にMetが結合しているポリペプチドをコードす
る新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子発現型プラスミド
であり、第10図にその作成方法を示した。
また、第10図記載の塩基配列を有するオリゴヌクレオ
チドのかわりに、第11図記載の塩基配列を有するオリ
ゴヌクレオ−チドを用いることにより、プラスミドpT
NF634(約3,2K bp)を作成した。このプラ
スミドは、次のアミノ酸配列(H2N) ArQ−L
ys−Ar(] LVsP ro −Val −A
la −t」1s−Val −Val −A laA
sn −p ro −Q In−Ala −G lu
−G 1y−G InL eu−Qln −Trp −
L eu−Asn−Ar(]−Ar!+A la −A
sn −A la −L eu −L eu−△1a
−AsnG ly −Val −G 1u−L eu
−A rg−A sp−’A’5nGln−L eLI
−Vat−Vat−pro−8er−GluG 1y−
L eu−Tyr −Leu’−1le −Tyr −
5erG In −Vat−Leu −Phe −Ly
s−G 1y−G InG ly −Cys −P r
o −3er−T hr−His −■aしeu −L
eu −Thr −His −Thr −1le −S
erArg−11e−A 1a−Val−3er −T
yr−QlnThr −Lys−Val−A sn −
1eu−L eu −3erAla −I 1e−1y
s−3er−pro−Cys−QlnA rg −G
lu −T hr−P ro −Glu −G 1y−
A laG lu −A la −L ys −P r
o −T rp−T yr−G 1uPro−11e−
Tyr−L eu−Gly−Gly−VaPhe−Gl
n−L eu−Glu−Lys−Gly−AspA r
q −L eu −3er−A la −Q lu −
11e−A snA rg−P ro−A sp−T
yr−L eu−A sp−P heA la −G
Iu −S er −G Iy−G In −V al
−T yrPhe−Gly −11e−I 1e−T
rp−Phe(COOH) で表わされる新規抗腫瘍性ポリペプチドまたはそのアミ
ノ末端に1vletが結合しているポリペプチドをコー
ドする新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子発現型プラス
ミドである。
チドのかわりに、第11図記載の塩基配列を有するオリ
ゴヌクレオ−チドを用いることにより、プラスミドpT
NF634(約3,2K bp)を作成した。このプラ
スミドは、次のアミノ酸配列(H2N) ArQ−L
ys−Ar(] LVsP ro −Val −A
la −t」1s−Val −Val −A laA
sn −p ro −Q In−Ala −G lu
−G 1y−G InL eu−Qln −Trp −
L eu−Asn−Ar(]−Ar!+A la −A
sn −A la −L eu −L eu−△1a
−AsnG ly −Val −G 1u−L eu
−A rg−A sp−’A’5nGln−L eLI
−Vat−Vat−pro−8er−GluG 1y−
L eu−Tyr −Leu’−1le −Tyr −
5erG In −Vat−Leu −Phe −Ly
s−G 1y−G InG ly −Cys −P r
o −3er−T hr−His −■aしeu −L
eu −Thr −His −Thr −1le −S
erArg−11e−A 1a−Val−3er −T
yr−QlnThr −Lys−Val−A sn −
1eu−L eu −3erAla −I 1e−1y
s−3er−pro−Cys−QlnA rg −G
lu −T hr−P ro −Glu −G 1y−
A laG lu −A la −L ys −P r
o −T rp−T yr−G 1uPro−11e−
Tyr−L eu−Gly−Gly−VaPhe−Gl
n−L eu−Glu−Lys−Gly−AspA r
q −L eu −3er−A la −Q lu −
11e−A snA rg−P ro−A sp−T
yr−L eu−A sp−P heA la −G
Iu −S er −G Iy−G In −V al
−T yrPhe−Gly −11e−I 1e−T
rp−Phe(COOH) で表わされる新規抗腫瘍性ポリペプチドまたはそのアミ
ノ末端に1vletが結合しているポリペプチドをコー
ドする新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子発現型プラス
ミドである。
実施例6(発現の確認)
前記実施例5で得られた新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺
伝子発現型プラスミドpTNF633又はp丁NF63
4を有するエシェリヒア・コリC600r□m−株を、
30〜50μg/戒のアンピシリン、0.2%のグルコ
ース及び4m!J/mAのカザミノ酸を含むM9培地[
0,6%Na 2 HPO4−0,3%に2HPOa
−0,05%NacR−0,1%NHa(J水溶液(p
H7,4)をオートクレーブ滅菌した後に、別途にオー
トクレーブ滅菌したM(]SO4水溶液及びCaC92
水溶液をそれぞれ最終濃度2 mM及び0.1 mMに
なるように加える。] 250dに接種し、OD i
nρが0.7に達するまで、37℃で振どう培養を行な
った。次いで、最終濃度50μg/dの3−βインドー
ルアクリル酸を培養液中に添加し、さらに37℃で12
時間振どう培養を続けた。
伝子発現型プラスミドpTNF633又はp丁NF63
4を有するエシェリヒア・コリC600r□m−株を、
30〜50μg/戒のアンピシリン、0.2%のグルコ
ース及び4m!J/mAのカザミノ酸を含むM9培地[
0,6%Na 2 HPO4−0,3%に2HPOa
−0,05%NacR−0,1%NHa(J水溶液(p
H7,4)をオートクレーブ滅菌した後に、別途にオー
トクレーブ滅菌したM(]SO4水溶液及びCaC92
水溶液をそれぞれ最終濃度2 mM及び0.1 mMに
なるように加える。] 250dに接種し、OD i
nρが0.7に達するまで、37℃で振どう培養を行な
った。次いで、最終濃度50μg/dの3−βインドー
ルアクリル酸を培養液中に添加し、さらに37℃で12
時間振どう培養を続けた。
遠心分離により大腸菌菌体を集めた後、PBSバッファ
(150mM Na(Jを含む20IIIMリン
酸バッファー、 tlH7,4>を用いて菌体の洗浄
を行なった。洗浄後の菌体を10dのPBSバッファに
懸濁させ、超音波発生装置(久保田、 200M型)
を用いて菌体を破壊した後、遠心分離により菌体残渣の
除去を行なった。
(150mM Na(Jを含む20IIIMリン
酸バッファー、 tlH7,4>を用いて菌体の洗浄
を行なった。洗浄後の菌体を10dのPBSバッファに
懸濁させ、超音波発生装置(久保田、 200M型)
を用いて菌体を破壊した後、遠心分離により菌体残渣の
除去を行なった。
得られた大腸菌ライゼートの一部に対して、Tris−
1−ICPバッファ (pl−16,8) 、 SD
S、 2−メルカプトエタノール ぞれ最終濃度60mM,2%,4%,10%になるよう
に加え、SOS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動[鈴
木,遺伝, 31. 43 (1977)コを行なった
。
1−ICPバッファ (pl−16,8) 、 SD
S、 2−メルカプトエタノール ぞれ最終濃度60mM,2%,4%,10%になるよう
に加え、SOS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動[鈴
木,遺伝, 31. 43 (1977)コを行なった
。
分離用ゲルは15%とし、泳動バッファーはSDS。
7 ris−グリシン系[LJ. K. l−ae++
+mli。
+mli。
Nature 、 227, 680(1970)
]を用いた。電気泳動終了後、ゲル中の蛋白質をクー
マシーブルR−250(バイオ・ラッド)で染色し、ヒ
トTNF遺伝子及び新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子
の発現の確認を行なった。
]を用いた。電気泳動終了後、ゲル中の蛋白質をクー
マシーブルR−250(バイオ・ラッド)で染色し、ヒ
トTNF遺伝子及び新規抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子
の発現の確認を行なった。
実施例7く活性の評価)
新規抗腫瘍活性ポリペプチドのin VitrO抗癌活
性測定は、前記RuHの方法に準じて行なった。
性測定は、前記RuHの方法に準じて行なった。
すなわち、実施例6で得られた新規抗腫瘍活性ポリペプ
チドを含む大腸菌ライゼートを順次培地で希釈した試料
100μ夏と、4×105個/−の濃度のマウスL−9
29繊維芽細胞(ATCC CCL929)懸濁液1
00μ磨を、96大の組織培養用マイクロプレート(コ
ースタ−)内で混合した。なおこの際に、最終濃度1μ
g/dのアクチノマイシンD(コスメゲン,萬有製薬)
を添加しておく。
チドを含む大腸菌ライゼートを順次培地で希釈した試料
100μ夏と、4×105個/−の濃度のマウスL−9
29繊維芽細胞(ATCC CCL929)懸濁液1
00μ磨を、96大の組織培養用マイクロプレート(コ
ースタ−)内で混合した。なおこの際に、最終濃度1μ
g/dのアクチノマイシンD(コスメゲン,萬有製薬)
を添加しておく。
培地としては、5%(vol /vol )のウシ胎児
血清を含むイーグルのミニマム・エツセンシャル培地(
白水製薬)を用いた。上記マイクロプレートを、5%炭
酸ガスを含む空気中,37℃で18〜20時間培養した
後、クリスタル・バイオレット溶液15%( VOI/
VOI )メタノール水溶液に、0.5%( Wt/v
o l )のクリスタル・バイオレットを溶解させたち
の]を用いて生細胞を染色した。余分なりリスタル・バ
イオレッi〜を洗い流し乾燥した後、残ったクリスタル
・バイオレットを100μすの0.5%SDS水溶液で
抽出し、その595μmにおける吸光度をELTSAア
ナライザー(東洋側器。
血清を含むイーグルのミニマム・エツセンシャル培地(
白水製薬)を用いた。上記マイクロプレートを、5%炭
酸ガスを含む空気中,37℃で18〜20時間培養した
後、クリスタル・バイオレット溶液15%( VOI/
VOI )メタノール水溶液に、0.5%( Wt/v
o l )のクリスタル・バイオレットを溶解させたち
の]を用いて生細胞を染色した。余分なりリスタル・バ
イオレッi〜を洗い流し乾燥した後、残ったクリスタル
・バイオレットを100μすの0.5%SDS水溶液で
抽出し、その595μmにおける吸光度をELTSAア
ナライザー(東洋側器。
ETY−96型)で測定する。この吸光度は、生き残っ
た細胞数に比例する。そこで、抗腫瘍活性ポリペプチド
等を含む大賜菌うイゼー1〜の希釈溶液を加えない対照
の吸光度の50%の値に相当する大腸菌ライゼートの希
釈倍率をグラフ(たとえば第12図)によって求め、そ
の希釈倍率をユニットと定義する。第12図より、発現
型プラスミドpTNF633にコードされる新規抗腫瘍
活性ポリペプチドを含む大腸菌ライゼート100μμは
約9.6×107ユニツト程度の活性を、そして発現型
プラスミドpTNF634にコードされる新規抗腫瘍活
性ポリペプチドを含む大腸菌ライゼー1〜100uρは
約5.9X 106ユニツト程度の活性を、それぞれ有
していることが明らかになった。
た細胞数に比例する。そこで、抗腫瘍活性ポリペプチド
等を含む大賜菌うイゼー1〜の希釈溶液を加えない対照
の吸光度の50%の値に相当する大腸菌ライゼートの希
釈倍率をグラフ(たとえば第12図)によって求め、そ
の希釈倍率をユニットと定義する。第12図より、発現
型プラスミドpTNF633にコードされる新規抗腫瘍
活性ポリペプチドを含む大腸菌ライゼート100μμは
約9.6×107ユニツト程度の活性を、そして発現型
プラスミドpTNF634にコードされる新規抗腫瘍活
性ポリペプチドを含む大腸菌ライゼー1〜100uρは
約5.9X 106ユニツト程度の活性を、それぞれ有
していることが明らかになった。
第1図は設計したヒトTNF遺伝子の塩基配列を、第2
図は化学合成した合成オリゴヌクレオチドの塩基配列を
、それぞれ示したものである。第3図、第4図及び第5
図は、ヒトTNF遺伝子の部を有するプラスミドpTN
F1BR,pTNF2N及びpTNF3の作成方法を、
それぞれ示したものである。第6図はヒトT N F
3i伝子発坦型プラスミドpTNF 401NNの作成
方法を、第7図は発現ベクター 1)A A 41の作
成方法を、そして第8図はヒトTNF遺伝子発現型プラ
スミドpTNF 401Aの作成方法を、それぞれ示し
たものである。第9図は抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子
発魂型プラスミドI)TNF471の作成方法を示した
ものである。第10図及び第11図は新規抗腫瘍活性ポ
リペプヂド遺伝子発覗型プラスミドIITNF633及
び1lTNF634の作成方法を示したものである。第
12図は新規抗腫瘍活性ポリペプチドのnvi℃ro抗
癌活性測定結果を示したものである。 特許出願人 帝 人 株 式 会 社 代 理 人 弁理士 前 1) 純 博(
)○ 1−C (ワフ Q す(〕
図は化学合成した合成オリゴヌクレオチドの塩基配列を
、それぞれ示したものである。第3図、第4図及び第5
図は、ヒトTNF遺伝子の部を有するプラスミドpTN
F1BR,pTNF2N及びpTNF3の作成方法を、
それぞれ示したものである。第6図はヒトT N F
3i伝子発坦型プラスミドpTNF 401NNの作成
方法を、第7図は発現ベクター 1)A A 41の作
成方法を、そして第8図はヒトTNF遺伝子発現型プラ
スミドpTNF 401Aの作成方法を、それぞれ示し
たものである。第9図は抗腫瘍活性ポリペプチド遺伝子
発魂型プラスミドI)TNF471の作成方法を示した
ものである。第10図及び第11図は新規抗腫瘍活性ポ
リペプヂド遺伝子発覗型プラスミドIITNF633及
び1lTNF634の作成方法を示したものである。第
12図は新規抗腫瘍活性ポリペプチドのnvi℃ro抗
癌活性測定結果を示したものである。 特許出願人 帝 人 株 式 会 社 代 理 人 弁理士 前 1) 純 博(
)○ 1−C (ワフ Q す(〕
Claims (10)
- (1)次のアミノ酸配列 【アミノ酸配列があります】 においてXが任意のアミノ酸であ る新規生理活性ポリペプチド。
- (2)XがPheであることを特徴とする第1項記載の
ポリペプチド。 - (3)XがTrpであることを特徴する第1項記載のポ
リペプチド。 - (4)アミノ末端にMetが結合していることを特徴と
する請求項1、2又は3記載のポリペプチド。 - (5)次のアミノ酸配列 【アミノ酸配列があります】 においてXが任意のアミノ酸である新規生理活性ポリペ
プチドまたはそのアミノ末端にMetが結合しているポ
リペプチドをコードするDNA領域を含む組換えプラス
ミド。 - (6)該プラスミドがプラスミドpTNF633又はp
TNF634である請求項5記載のプラスミド。 - (7)次のアミノ酸配列 【アミノ酸配列があります】 においてXが任意のアミノ酸である新規生理活性ポリペ
プチドまたはそのアミノ末端にMetが結合しているポ
リペプチドをコードするDNA領域を含む組換えプラス
ミドにより形質転換された組換え微生物細胞。 - (8)該微生物細胞がエシェリヒア・コリ (Escherichiacoli)であることを特徴
とする請求項7記載の微生物細胞。 - (9)次のアミノ酸配列 【アミノ酸配列があります】 においてXが任意のアミノ酸である新規生理活性ポリペ
プチドまたはそのアミノ末端にMetが結合しているポ
リペプトチドをコードするDNA領域を含む組換えプラ
スミドにより形質転換された組換え微生物細胞を培養し
、培養物中に新規生理活性ポリペプチドを生成蓄積せし
め、得られた培養物から新規生理活性ポリペプチドを分
離することを特徴とする、新規生理活性ポリペプチドの
製造方法。 - (10)抗腫瘍に有効な量の次のアミノ酸配列【アミノ
酸配列があります】 においてXが任意のアミノ酸である新規生理活性ポリペ
プチドまたはそのアミノ末端にMetが結合しているポ
リペプチドを含有する医薬組成物。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63328852A JPH02177896A (ja) | 1988-12-28 | 1988-12-28 | 新規生理活性ポリペプチド |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63328852A JPH02177896A (ja) | 1988-12-28 | 1988-12-28 | 新規生理活性ポリペプチド |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02177896A true JPH02177896A (ja) | 1990-07-10 |
Family
ID=18214809
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63328852A Pending JPH02177896A (ja) | 1988-12-28 | 1988-12-28 | 新規生理活性ポリペプチド |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02177896A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2701264A1 (fr) * | 1993-02-09 | 1994-08-12 | Hanil Synthetic Fiber Co Ltd | Mutéines de facteur de nécrose tumorale. |
WO2004099244A3 (en) * | 2003-05-09 | 2004-12-29 | Pharmexa As | Immunogenic human tnf alpha analogues with reduced cytotoxicity and methods of their preparation |
-
1988
- 1988-12-28 JP JP63328852A patent/JPH02177896A/ja active Pending
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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