JPH02119798A - Method for measuring activity of urokinase inhibitor - Google Patents

Method for measuring activity of urokinase inhibitor

Info

Publication number
JPH02119798A
JPH02119798A JP27589688A JP27589688A JPH02119798A JP H02119798 A JPH02119798 A JP H02119798A JP 27589688 A JP27589688 A JP 27589688A JP 27589688 A JP27589688 A JP 27589688A JP H02119798 A JPH02119798 A JP H02119798A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
urokinase
activity
inhibitor
specimen
measuring
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP27589688A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Shigeru Hayashi
滋 林
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Individual
Original Assignee
Individual
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Individual filed Critical Individual
Priority to JP27589688A priority Critical patent/JPH02119798A/en
Publication of JPH02119798A publication Critical patent/JPH02119798A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Abstract

PURPOSE:To rapidly and readily measure the activity of the subject compound useful for diagnosing abnormal fibrinolysis, etc., with high sensitivity and excellent specificity by removing urokinases using an affinity column, then adding urokinase and synthetic substrate, etc., thereto and measuring the amount of the neutralized urokinase. CONSTITUTION:A specimen (e.g., human blood plasma) is passed through an affinity column filled with agarose particles immobilizing antiurokinase house rabbit immnnoglobulin G, etc., to remove urokirkase and urokinase-urokinase inhibitor complex in the specimen. A known amount of urokinase is then added and reacted with a urokinase inhibitor in the specimen and the residual urokinase is subsequently measured with a synthetic substrate or plasminogen- containing fibrin plate. Thereby, the activity of the urokinase inhibitor in the specimen is measured from the amount of the neutralized urokinase.

Description

【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 この発明は、ウロキナーゼインヒビターの活性測定法に
関し、さらに詳述するならば、血栓症治療において、ウ
ロキナーゼ、組織アクチベータ、ストレプトキナーゼ、
および、プラスミン−ストレプトキナーゼ複合体の何れ
かが血栓症の患者に投与された際に、その患者の血液中
に減少するところのウロキナーゼインヒビターの活性を
測定する方法で、そのウロキナーゼ、組織アクチベータ
、ストレプトキナーゼ、および、プラスミン−ストレプ
トキナーゼ複合体の有効投与量の判定に役立つところの
ウロキナーゼインヒビターの活性測定法に関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Field of Industrial Application This invention relates to a method for measuring the activity of urokinase inhibitors, and more specifically, in the treatment of thrombosis, urokinase, tissue activator, streptokinase,
A method for measuring the activity of urokinase inhibitor, which decreases in the blood of a patient with thrombosis when any of the plasmin-streptokinase complexes is administered to a patient with thrombosis. The present invention relates to a method for measuring the activity of urokinase inhibitors, which is useful in determining effective doses of kinases and plasmin-streptokinase complexes.

背景技術 今日では、ヒトの胎盤中には、多量のウロキナーゼイン
ヒビターが存在し、部分精製されて、それの性状が明ら
かにされている。
BACKGROUND ART Today, a large amount of urokinase inhibitor is present in the human placenta and has been partially purified and characterized.

そして、妊婦尿中には、胎盤から分泌されたところの胎
盤性ウロキナーゼインヒビターが認められ、それが、ま
た、妊娠の進行につれて増減する。
Placental urokinase inhibitors secreted from the placenta are found in pregnant women's urine, and this increases and decreases as the pregnancy progresses.

その妊婦尿中のウロキナーゼインヒビターに関する通常
の活性測定法は、専ら尿に既知量のウロキナーゼを混和
し、その既知量のウロキナーゼの減少をもって、ウロキ
ナーゼインヒビターの活性としていた。しかしながら、
尿中には、ウロキナーゼインヒビターを上回る量のウロ
キナーゼが存在するので、これを除去しないところのそ
の通常のウロキナーゼインヒビターの活性測定法では、
見かげ上のウロキナーゼインヒビターの活性が測定され
たことになる。勿論、その通常の活性測定法は、妊婦以
外のヒトの尿や血液については、ウロキナーゼインヒビ
ターの活性を測定することが困難であった。
The conventional method for measuring the activity of urokinase inhibitors in the urine of pregnant women is to mix a known amount of urokinase into the urine and measure the activity of the urokinase inhibitor as a decrease in the known amount of urokinase. however,
Since there is an amount of urokinase in urine that exceeds the amount of urokinase inhibitor, the usual method of measuring the activity of urokinase inhibitor, which does not remove this amount,
This means that the apparent activity of urokinase inhibitor was measured. Of course, it is difficult to measure the activity of urokinase inhibitors in the urine and blood of humans other than pregnant women using the conventional activity measurement method.

そして、具体的には、その通常の活性測定法は、妊婦尿
中のウロキナーゼインヒビターの活性も実際の値よりも
低いところの見かけの値を測定していたにすぎなかった
Specifically, the conventional activity measurement method only measured the apparent value of the activity of urokinase inhibitor in the urine of pregnant women, which was lower than the actual value.

発明の目的・課題 この発明の目的・課題は、ヒトの血液、尿、および体液
中のウロキナーゼインヒビターの活性を迅速、高感度、
正確で、かつ、簡単に測定可能にするところのウロキナ
ーゼインヒビターの活性測定法の提供にある。
OBJECTIVES AND PROBLEMS OF THE INVENTION The purpose and problem of the present invention is to rapidly, highly sensitively, and
An object of the present invention is to provide a method for measuring urokinase inhibitor activity that is accurate and easy to measure.

目的・課題に係る構成上の発明の概要:請求する発明の
内容 上述の目的・課題に関連して、この発明のウロキナーゼ
インヒビターの活性測定法は、合成基質あるいはプラス
ミノーゲン含有フィブリン平板、および、親和性カラム
を用いて、ウロキナーゼインヒビターの活性を測定する
ところにあって、その場合、ウロキナーゼに対する抗体
を固定化しであるカラムを用いるところにある。
Summary of the invention in terms of structure related to objects/problems: Contents of the claimed invention In relation to the above-mentioned objects/problems, the method for measuring the activity of a urokinase inhibitor of the present invention provides a synthetic substrate or a fibrin plate containing plasminogen, and a method for measuring the activity of a urokinase inhibitor. The activity of a urokinase inhibitor is measured using an affinity column, in which case a column on which an antibody against urokinase is immobilized is used.

すなわち、この発明のウロキナーゼインヒビターの活性
測定法は、高度に精製されたウロキナーゼを動物に免疫
して、ウロキナーゼに対する特異抗血清を作製し、そし
て、これのIgG分画をセファロースカラムに固定化さ
せて抗ウロキナーゼ固定化カラムを作製し、ヒトの血液
、尿、および体液をそのカラムに通過させてこれらの中
に含まれているウロキナーゼを取り除き、そして、通過
分画に既知量のウロキナーゼを添加し、そのウロキナー
ゼ活性の阻害量を合成基質あるいは天然基質を用いて定
量化するところにある。
That is, the method for measuring the activity of a urokinase inhibitor of the present invention involves immunizing an animal with highly purified urokinase to prepare a specific antiserum against urokinase, and then immobilizing the IgG fraction of this on a Sepharose column. An anti-urokinase immobilized column is prepared, human blood, urine, and body fluids are passed through the column to remove the urokinase contained therein, and a known amount of urokinase is added to the flow-through fraction, The purpose is to quantify the amount of inhibition of urokinase activity using synthetic or natural substrates.

そのようにして、この発明のウロキナーゼインヒビター
の活性測定法は、ヒトの生体中におけるウロキナーゼイ
ンヒビター量の正確な値が判明できるところにあり、そ
の結果、生体中における線溶の程度を把握可能にし、ま
た、血栓性疾患におけるウロキナーゼ、組織アクチヘー
タ、ストレプトキナーゼ、およびプラスミンースI・レ
ゾ1キナーゼ複合体の何れかの投与時においては、適切
なウロキナーゼ、組織アクチヘータ、ストレプトキナー
ゼ、およびプラスミン−ストレプトキナーゼ複合体の投
与量を知得可能にし、さらに、腎疾患、心筋梗塞、脳血
栓症、悪性腫瘍、および妊娠においては、血栓の進展お
よび線溶の状態を知得可能にする。
In this way, the method for measuring the activity of urokinase inhibitor of the present invention makes it possible to determine the exact amount of urokinase inhibitor in the human body, and as a result, it becomes possible to understand the degree of fibrinolysis in the body. In addition, when administering any of urokinase, tissue acti- heta, streptokinase, and plasmin-reso-1 kinase complex in thrombotic diseases, appropriate urokinase, tissue acti- cheta, streptokinase, and plasmin-streptokinase complex should be administered. It makes it possible to know the dosage, and also makes it possible to know the progress of thrombus and the state of fibrinolysis in renal diseases, myocardial infarction, cerebral thrombosis, malignant tumors, and pregnancy.

また、この発明のウロキナーゼインヒビターの活性測定
法の特徴について、さらに詳述するならば、発明者は、
ヒトの血液(血漿)、尿、および体液(腹水、膨水)の
中に含まれているところのウロキナーゼとうロキナーゼ
インヒビターとを分離するために、ウロキナーゼ抗体カ
ラム、あるいは、p (パラ)−アミノベンザミジンセ
ファロースを導入し、これらにそのウロキナーゼのみを
吸着させ、そして、そのウロキナーゼインヒビターを素
通りさせて両者の分離に成功し、そして、その素通りし
たウロキナーゼインヒビターに既知量のウロキナーゼを
混和し、減少したウロキナーゼの活性を特異的合成基質
、あるいは、寒天フィブリン(フィブリンプレート)に
よって測定し、その血液、尿、および体液の中のウロキ
ナーゼインヒビターのみを正確に、かつ、選択的に、し
かも、再現性よく測定することに成功したところにある
In addition, to explain in more detail the characteristics of the method for measuring the activity of urokinase inhibitors of this invention, the inventors:
Urokinase antibody columns or p (para)-amino By introducing benzamidine Sepharose, only the urokinase was adsorbed, and the urokinase inhibitor was allowed to pass through, successfully separating the two. Then, the urokinase inhibitor that passed through was mixed with a known amount of urokinase, and the amount was reduced. Urokinase activity is measured using a specific synthetic substrate or agar fibrin (fibrin plate), and only urokinase inhibitors in blood, urine, and body fluids are measured accurately, selectively, and reproducibly. This is where we succeeded in doing so.

勿論、その特異的合成基質は、ウロキナーゼに対するも
ので、それには、pyro−Glu−Gly−Argp
Na  (Kabi社:スウェーデン)、あるいは、G
luGly −Arg −MCA (ペプチド研究所二
大阪)が使用され、また、その寒天フィブリンは、天然
基質であるプラスミノーゲンを含有するものである。
Of course, its specific synthetic substrate is for urokinase, which includes pyro-Glu-Gly-Argp.
Na (Kabi: Sweden) or G
luGly-Arg-MCA (Peptide Institute Ni-Osaka) was used, and its agar fibrin contains the natural substrate plasminogen.

一方、発明者の研究によれば、健常者の尿中には、ウロ
キナーゼインヒビター活性は、殆んど認められず、認め
られても極めて低い値で、多くは複合体を形成している
と考えられ、そして、各種の腎炎、糖尿病性腎症、悪性
腫瘍、妊婦尿中に認められることが明らかであり、ウロ
キナーゼインヒビター活性を測定することは、これらの
病態との関係の解明や治療に大いに役立つものである。
On the other hand, according to the inventor's research, urokinase inhibitor activity is hardly observed in the urine of healthy people, and even when it is observed, it is at an extremely low level, and it is thought that most of it forms a complex. It is clear that urokinase inhibitor activity is observed in various types of nephritis, diabetic nephropathy, malignant tumors, and in the urine of pregnant women, and measuring urokinase inhibitor activity will be of great help in elucidating the relationship with these pathological conditions and treating them. It is something.

さらには、心筋梗塞、脳梗塞、動静脈血栓症、腎疾患の
治療でウロキナーゼを静注すると、血液中のウロキナー
ゼインヒビター活性が低下されることも発明者によって
明らかにされたことから、血液中のウロキナーゼインヒ
ビター活性を測定することは、これら疾患の治療に多大
な有益をもたらす。
Furthermore, the inventors have also found that intravenous injection of urokinase in the treatment of myocardial infarction, cerebral infarction, arteriovenous thrombosis, and renal disease reduces urokinase inhibitor activity in the blood. Measuring urokinase inhibitor activity has great benefits in the treatment of these diseases.

また、血液中には、3種類の免疫学的に異ったウロキナ
ーゼインヒビターが存在することも知られ、それぞれ、
プラスミノーゲンアクチヘーク・タイプ1、タイプ2、
およびタイプ3 (PAII、PAh、およびPAI3
)と呼ばれている。
It is also known that there are three immunologically different types of urokinase inhibitors in the blood;
Plasminogen actihake type 1, type 2,
and type 3 (PAII, PAh, and PAI3
)It is called.

そのタイプ1は、血管内皮細胞由来、タイプ2は、胎盤
由来、そして、タイプ3は、プロティンCインヒビター
と言われているものと同じである。
Type 1 is derived from vascular endothelial cells, type 2 is derived from placenta, and type 3 is the same as what is called protein C inhibitor.

そして、発明者の方法によるウロキナーゼインヒビター
は、これら3種のウロキナーゼインヒビターの総和とし
て測定することが可能になる。
Then, the urokinase inhibitor according to the inventor's method can be measured as the sum of these three types of urokinase inhibitors.

そのように、この発明によって、ヒトの血液、尿、およ
び体液の中に含まれるウロキナーゼインヒビターの活性
が正確に測定可能になる。
As such, the present invention allows the activity of urokinase inhibitors contained in human blood, urine, and body fluids to be accurately measured.

具体例の説明 以下、この発明のウロキナーゼインヒビターの活性測定
法の特定された具体例について、図を参照して説明する
Description of Specific Examples Specific examples of the method for measuring the activity of a urokinase inhibitor of the present invention will be described below with reference to the drawings.

具体例1 この測定法は、先ず、ウロキナーゼを精製し、次いで、
そのウロキナーゼを動物に注射して免疫させて抗血清を
得て、そして、その抗血清のイムノグロブリンG分画を
精製し、これをセファロースカラムに固定化し、このカ
ラムを用いてウロキナーゼインヒビター活性を測定する
ところにある。
Specific Example 1 In this measurement method, first, urokinase is purified, and then,
The urokinase is injected into an animal and immunized to obtain an antiserum.The immunoglobulin G fraction of the antiserum is then purified and immobilized on a Sepharose column, and the urokinase inhibitor activity is measured using this column. It's there.

そこで、そのウロキナーゼの精製から述べる。Therefore, we will discuss the purification of urokinase.

これは、市販のウロキナーゼ製剤(1バイヤル6万単位
含有)をバラアミノヘンザミジンセファロースカラムに
通し、ウロキナーゼを吸着させて、賦形剤や安定化剤を
取り除き、0.01Mリン酸、0、5 M Nacl緩
衝液p)17.6で十分に洗滌した。
This is done by passing a commercially available urokinase preparation (one vial contains 60,000 units) through a column of aminohenzamidine Sepharose to adsorb urokinase, removing excipients and stabilizers, and adding 0.01M phosphoric acid, Wash thoroughly with 5 M NaCl buffer p) 17.6.

次いで、0.1M酢酸でその吸着されたウロキナーゼを
?容量させた。
Then, remove the adsorbed urokinase with 0.1M acetic acid. Capacity increased.

その後、0.5M炭酸重炭酸緩衝液pH9,5で中和し
て、そのウロキナーゼを精製した。
The urokinase was then purified by neutralization with 0.5M carbonate-bicarbonate buffer pH 9.5.

次には、そのウロキナーゼをフロイントの完全アジュバ
ントと等量ずつ混和し、家兎に2rnp、を注射し、免
疫を行なった。
Next, the urokinase was mixed with Freund's complete adjuvant in equal amounts, and 2rnp was injected into rabbits for immunization.

4週間後および8週間後に同様の操作を行ない、そして
、その家兎から採血して抗血清を得た。
After 4 and 8 weeks, the same operation was performed, and blood was collected from the rabbit to obtain antiserum.

次に、そのようにして得られたウロキナーゼ抗血清から
イムノグロブリンG分画(IgG分画)を精製する。す
なわち、その家兎のウロキナーゼ抗血清を等量の整理食
塩水で希釈してプロティンAセファロースカラムに添加
し、そして、0.01Mリン酸、0.5 M Nacl
緩衝液pl(7,6で十分に洗滌して後、そのカラムに
吸着したIgG分画を1M酢酸で溶出させ、さらに、そ
れを0.5M炭酸重炭酸緩衝液pH9,5で中和して抗
つロキナーゼ家兎rgc分画を得た。
Next, an immunoglobulin G fraction (IgG fraction) is purified from the urokinase antiserum thus obtained. Briefly, the rabbit urokinase antiserum was diluted with an equal volume of saline, applied to a protein A Sepharose column, and then diluted with 0.01 M phosphoric acid, 0.5 M NaCl.
After thorough washing with buffer pl (7.6), the IgG fraction adsorbed on the column was eluted with 1M acetic acid, and further neutralized with 0.5M carbonate-bicarbonate buffer pH 9.5. Anti-Turokinase rabbit RGC fraction was obtained.

次に、その抗つロキナーゼ家兎1gG分画をセファロー
スカラムに固定する。すなわち、この抗つロキナーゼ家
兎1gG分画を0.1Mリン酸緩衝液p117.8で中
和し、そして、予め、0.001N塩酸で活性化してお
いたCNBr−セファロース4B(ファルマシア社製:
スウェーデン)と混合し、次に示した緩衝液(1)ない
しく4)でその抗つロキナーゼ家兎IgG分画が固定さ
れたところのそのカラムを洗滌した。
Next, the anti-Turokinase rabbit 1gG fraction is immobilized on a Sepharose column. That is, this anti-Turokinase rabbit 1gG fraction was neutralized with 0.1M phosphate buffer p117.8, and CNBr-Sepharose 4B (manufactured by Pharmacia: manufactured by Pharmacia: activated in advance with 0.001N hydrochloric acid)
Sweden) and the column on which the anti-rokinase rabbit IgG fraction was immobilized was washed with the following buffers (1) to 4).

(1)0.1Mリン酸緩衝液pl+7.6  500 
ml。
(1) 0.1M phosphate buffer pl+7.6 500
ml.

(2)  0.05 M トリス−リン酸(H3PO,
)緩衝液pH8,6500mR。
(2) 0.05 M Tris-phosphoric acid (H3PO,
) Buffer pH 8, 6500mR.

(3)  0.05 M トリス−リン酸(113PO
4)緩衝液pH4,1500ml、 (4)  0.1 M ’J 7酸緩衝液pH7,65
00IRQ。
(3) 0.05 M Tris-phosphoric acid (113PO
4) Buffer pH 4, 1500ml, (4) 0.1 M'J 7 acid buffer pH 7,65
00IRQ.

この場合、使用した抗血清は、家兎で作製されたが、こ
の方法は、羊、山羊、犬、猫、および豚で作製されたも
のにも、また、マウスを利用したモノクロナール抗体に
も適用できる。
In this case, the antisera used were generated in rabbits, but this method also applies to those generated in sheep, goats, dogs, cats, and pigs, as well as monoclonal antibodies made in mice. Applicable.

次には、すなわち、そのようにして、その抗つロキナー
ゼ家兎1gG分画がそのセファロースカラムに固定化さ
れたならば、そのセファロースカラムの容量200μ!
に検体(ヒトの尿、血漿、あるいは、体液)の0.5d
を加え、これを素通りさせた。
Then, if the anti-Turokinase rabbit 1gG fraction is immobilized on the Sepharose column in this way, the capacity of the Sepharose column is 200μ!
0.5d of specimen (human urine, plasma, or body fluid)
I added this and let it pass.

そして、ウロキナーゼ抗原が取り除かれたところのその
素通り分画の0.05 dに既知量のウロキナーゼ熔液
100 II/mfの0.05 mlを加え、温度37
°Cで15分間インキュへ−1−L、さらに、合成基質
S −2444(pyro−Glu−Gly−Arg−
pNa、3 mM、カビ社製:スウェーデン)の0.0
5 mlおよび0.05 M )リス塩酸、0.38 
M Nacl緩衝液pH8,8の0.35 mlを加え
て温度37°Cで15分間反応させ、そして、50%酢
酸の0.1滅を加えて反応を止め、その後において、比
色計を用いて405nmの波長の吸光度を測定した。
Then, 0.05 ml of a known amount of urokinase solution 100 II/mf was added to 0.05 d of the flow-through fraction from which the urokinase antigen had been removed, and the temperature was 37°C.
Incubate for 15 min at °C.
pNa, 3 mM, 0.0 of Kabi (Sweden)
5 ml and 0.05 M) Lis-HCl, 0.38
Add 0.35 ml of M NaCl buffer pH 8.8, react for 15 minutes at a temperature of 37°C, and stop the reaction by adding 0.1 ml of 50% acetic acid, after which the reaction was measured using a colorimeter. The absorbance at a wavelength of 405 nm was measured.

そのように、その検体のウロキナーゼインヒビター活性
を測定するのに、合成基質が、使われたが、プラスミノ
ーゲン含有フィブリン平板を用いてもよい。また、ウロ
キナーゼインヒビター活性の検量線は、ウロキナーゼイ
ンヒビター(ミドリ十字、1バイヤル500U含有)を
用いて、200IU/mR11001U/d、50IU
/d、251U/mR11010/mf、5 IU/雌
、およびIII/mff1の標準液を作り、そして、そ
の溶液0.1 dに既知量のウロキナーゼ液の0.1 
mflを加えて得る。そして、それを図に示す。
Thus, although a synthetic substrate was used to measure the urokinase inhibitor activity of the specimen, plasminogen-containing fibrin plates may also be used. In addition, the standard curve for urokinase inhibitor activity was calculated using urokinase inhibitor (Midori Juji, 1 vial containing 500 U), 200 IU/mR11001 U/d, 50 IU
Prepare standard solutions of /d, 251U/mR11010/mf, 5 IU/female, and III/mff1, and add 0.1 of a known amount of urokinase solution to 0.1 d of the solution.
Obtained by adding mfl. And it is shown in the figure.

また、上述の方法で測定したヒトの尿および血漿の中の
ウロキナーゼインヒビター活性の変動について示す。そ
して、各種の腎疾患30例の尿中のウロキナーゼインヒ
ビター活性値は表1に示す通りであった。
Also shown are changes in urokinase inhibitor activity in human urine and plasma measured by the method described above. The urinary urokinase inhibitor activity values of 30 patients with various renal diseases were as shown in Table 1.

表   1 また、急性心筋梗塞症のウロキナーゼ投与時の血漿ウロ
キナーゼインヒビター活性は、表2に示す通りで、その
血漿中のウロキナーゼインヒビター活性は、ウロキナー
ゼ投与により低下されることが示され、しかも、血漿中
のプラスミノーゲンアクチベータインヒビター活性(F
AI活性)によく似た変動を示した。
Table 1 In addition, the plasma urokinase inhibitor activity upon administration of urokinase for acute myocardial infarction is as shown in Table 2, indicating that the plasma urokinase inhibitor activity is decreased by urokinase administration, and plasminogen activator inhibitor activity (F
showed a variation similar to that of AI activity).

表   2 腎炎B (非活動性) 腎不全B (BUN40以下) UK : S−2444法 UKI:S−2444法 PLG:テストチームPLG αzPI:テストチームα2PI FDPニラテックス法 PΔI : 5PECTROLYSE/ f ibr 
1nFAIはタイプ1由来 これらの成績から、上述されたウロキナーゼインヒビタ
ーの活性測定法は、臨床例におけるヒトの尿、および血
漿中の測定に極めて有用であることが明らかである。
Table 2 Nephritis B (inactive) Renal failure B (BUN 40 or less) UK: S-2444 method UKI: S-2444 method PLG: Test Team PLG αzPI: Test Team α2PI FDP Nilatex method PΔI: 5PECTROLYSE/fibr
1nFAI is derived from type 1 From these results, it is clear that the above-described method for measuring urokinase inhibitor activity is extremely useful for measuring human urine and plasma in clinical cases.

具体例2 その具体例1では、検体中のウロキナーゼ抗原を取り除
くために、抗つロキナーゼ家兎1gGセファロースカラ
ムが使用されたが、この具体例2では、そのカラムの代
りにパラアミノベンザミジンセファロースカラムが使用
された。
Specific Example 2 In Specific Example 1, an anti-urokinase rabbit 1gG Sepharose column was used to remove the urokinase antigen in the specimen, but in this Specific Example 2, a para-aminobenzamidine Sepharose column was used instead of that column. used.

先ず、バラアミノヘンザミジン、EDC(1エチル−3
−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミドハイ
ドロクロライド:和光純薬)、および、CH−セファロ
ース4B(ファルヌシア社:スウェーデン)を混合し、
pl+を4.5〜5.0に保ちながら、室温で一昼夜、
スターラを使用せずに混和し続けた。
First, paraaminohenzamidine, EDC (1 ethyl-3
-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide hydrochloride (Wako Pure Chemical Industries) and CH-Sepharose 4B (Farnusia: Sweden) were mixed,
While keeping pl+ at 4.5 to 5.0, at room temperature all day and night.
Continued mixing without using stirrer.

この操作で、カップリングが行なわれ、そのカップリン
グ終了後、次に示した緩衝液(1)ないしく4)でその
パラアミノベンザミジンセファロースカラムを洗滌した
Coupling was performed by this operation, and after the coupling was completed, the para-aminobenzamidine Sepharose column was washed with the following buffers (1) to 4).

(1)  0.1 M IJ 7酸緩衝液pH7,85
00mIl(210,05M l−リスリン酸(IhP
O4)緩衝液pH8,6500雁 (3)  0.05 M )リスリン酸(HzPO<)
緩衝液pH4,1500戚 (4)  0. OI M IJ ン酸緩衝液pH7,
6501次に、すなわち、そのようにして、そのパラア
ミノベンザミジンセファロースカラムが洗滌されたなら
ば、そのパラアミノベンザミジンセファロスカラムの溶
量200μ2に検体(ヒトの尿、血漿、あるいは、体液
)の0.51dを加え、これを素通りさせた。
(1) 0.1 M IJ 7 acid buffer pH 7,85
00ml (210,05M l-lysphosphoric acid (IhP)
O4) Buffer pH 8,6500 (3) 0.05 M) Lysphosphoric acid (HzPO<)
Buffer pH 4,1500 (4) 0. OIM IJ acid buffer pH7,
6501 Next, that is, once the para-aminobenzamidine Sepharose column has been washed, 0% of the sample (human urine, plasma, or body fluid) is added to the dissolution volume of the para-aminobenzamidine Sepharose column of 200μ2. I added .51d and let it pass.

この素通り分画には、ウロキナーゼ抗原が取り除かれる
が、プロウロキナーゼ(−木鎖ウロキナーゼ、scu 
−PΔ)は素通りし、このプロウロキナゼはウロキナー
ゼインヒビターに結合しない。
In this pass-through fraction, urokinase antigen is removed, but pro-urokinase (-wood chain urokinase, scu
-PΔ) passes through, and this prourokinase does not bind to the urokinase inhibitor.

そして、その素通り分画の0.05 ml、に既知量の
ウロキナーゼ溶液1001U/dの0.05 mflを
加え、温度37°Cで15分間インキュベートし、さら
に、合成基質S −2444(pyro−Glu−Gl
y−ArgpNa 、3mM、カビ社製:スウェーデン
)の0.05m!、および、0.05 M )リス塩酸
、0.38 M Nacl緩衝液pH8,8の0.35
 dを加え、温度37°Cで15分間反応させ、そして
、50%酢酸の0.1 mflを加えて反応を止め、そ
の後において、比色計を用いて405nmの波長の吸光
度を測定した。
Then, 0.05 mfl of a known amount of urokinase solution (1001 U/d) was added to 0.05 ml of the flow-through fraction, incubated at a temperature of 37°C for 15 minutes, and the synthetic substrate S-2444 (pyro-Glu -Gl
0.05m of y-ArgpNa, 3mM, Kabi (Sweden)! , and 0.35 of 0.05 M) Lis-HCl, 0.38 M NaCl buffer pH 8.8
d was added, reacted for 15 minutes at a temperature of 37°C, and the reaction was stopped by adding 0.1 mfl of 50% acetic acid, after which the absorbance at a wavelength of 405 nm was measured using a colorimeter.

そのように、その検体のウロキナーゼインヒビター活性
を測定するのに、合成基質が、使われたが、MCA基質
(Glu−Gly−Arg”MIA)を用いてもよい。
As such, although a synthetic substrate was used to measure the urokinase inhibitor activity of the specimen, the MCA substrate (Glu-Gly-Arg"MIA) may also be used.

また、ウロキナーゼインヒビター活性の検量線は、前述
の具体例1と同様にして製作された。
In addition, a standard curve for urokinase inhibitor activity was prepared in the same manner as in Example 1 above.

具体例3 さらに、発明者は、前述のウロキナーゼインヒビター活
性をより迅速で、かつ、簡単にして、しかも光感度で特
異的に測定可能にするために、キットを開発した。
Specific Example 3 Furthermore, the inventors developed a kit to enable the above-mentioned urokinase inhibitor activity to be measured more quickly, easily, and specifically with photosensitivity.

このキットは、前述の具体例1に通ずるように準備され
たもので、(1)抗つロキナーゼ家兎1gGセファロー
ス(但、抗体を固定化した担体は、セライ1−やAF−
トレシルトヨパーイル650 (東す−)でもよい)、
(2)合成基質S−2444液(pyr。
This kit was prepared in the same manner as in Specific Example 1 above, and included (1) anti-Turokinase rabbit 1gG Sepharose (however, the carrier on which the antibody was immobilized was Serai 1- or AF-
Toresil Toyopail 650 (Tosu-) may also be used),
(2) Synthetic substrate S-2444 solution (pyr.

Glu−Gly−Arg−pNa、但、MCA基質でも
よい)、(3)ウロキナーゼインヒビター標準液、(4
)ウロキナーゼ標準液、(5)検体希釈液(0,01M
リン酸緩衝液pH7,6、および(6)反応停止液(5
0%酢酸)を含めである。
Glu-Gly-Arg-pNa (although MCA substrate may also be used), (3) urokinase inhibitor standard solution, (4
) Urokinase standard solution, (5) Specimen dilution solution (0.01M
Phosphate buffer pH 7.6, and (6) reaction stop solution (5
(0% acetic acid).

発明の利便・利益 上述から理解されるように、この発明のウロキナーゼイ
ンヒビターの活性測定法は、合成基質あるいはプラスミ
ノーゲン含有フィブリン平板、および、親和性カラムを
用い、特に、ウロキナーゼに対する抗血清のIgG分画
を固定化した抗つロキナーゼ動物1gG−セファロース
を応用することにより、すなわち、検体をその抗つロキ
ナーゼ動物IgG−セファロースカラムに通過させてそ
の検体中に含まれている微量のうロキナーゼを取り除き
、この場合、分子量55kdおよび33kdのうロキナ
ーゼ以外に分子量100kdのウロキナーゼおよびウロ
キナーゼインヒビターの複合体も取り除かれ、その分画
を得、そして、その分画にウロキナーゼを添加してウロ
キナーゼの中和量からウロキナーゼインヒビターの活性
を測定するところにあるので、この発明のウロキナーゼ
インヒビターの活性測定法では、ウロキナーゼインヒビ
ターの活性が、迅速、簡単、高感度、かつ、特異的に測
定可能になり、それに伴って、血栓症の患者、腎炎の患
者、心筋梗塞症の患者、脳血栓症の患者、悪性腫瘍の患
者、婦人科疾患の患者、妊婦、および、その他の線溶異
常を示す患者の血液(血漿)、尿、および体液の中のウ
ロキナーゼインヒビターの活性の変動が、容易、かつ、
的確に把握可能となり、所謂、これら疾患に関する病態
が容易に解明可能になり、そのようにして、これら疾患
の診断や治療に役立つばかりでなく、血栓溶解剤(うロ
キナーゼ、プロウロキナーゼ、組織アクチヘータ、スト
レプI・キナーゼ、および、プラスミン−ストレプトキ
ナーゼ複合体)投与時の、適切な投与量、および、投与
時期を決定する示標となり得るものであり、極めて有用
である。
Conveniences and Benefits of the Invention As can be understood from the above, the method for measuring the activity of a urokinase inhibitor of the present invention uses a synthetic substrate or a fibrin plate containing plasminogen, and an affinity column, and in particular, the IgG By applying anti-urokinase animal 1gG-Sepharose with immobilized fractions, i.e., passing the sample through the anti-urokinase animal IgG-Sepharose column to remove trace amounts of urokinase contained in the sample. In this case, in addition to urokinase with a molecular weight of 55 kd and 33 kd, the complex of urokinase with a molecular weight of 100 kd and a urokinase inhibitor is also removed, the fraction is obtained, and urokinase is added to the fraction to obtain the neutralized amount of urokinase. Since the purpose is to measure the activity of urokinase inhibitor, the urokinase inhibitor activity measurement method of the present invention allows the activity of urokinase inhibitor to be measured quickly, easily, highly sensitively, and specifically, and accordingly, Blood (plasma) and urine of patients with thrombosis, nephritis, myocardial infarction, cerebral thrombosis, malignant tumors, gynecological diseases, pregnant women, and other patients with abnormal fibrinolysis. , and fluctuations in the activity of urokinase inhibitors in body fluids are easy, and
It has become possible to accurately understand the so-called pathophysiology of these diseases, and in this way, it has become not only useful for the diagnosis and treatment of these diseases, but also for the use of thrombolytic agents (urokinase, prourokinase, tissue activator, etc.). Strep I kinase and plasmin-streptokinase complex) can serve as an indicator for determining the appropriate dose and timing of administration, and are extremely useful.

発明と具体例との関係 先のように、説明されたこの発明の具体例からして、こ
の発明の属する技術の分野における通常の知識を有する
者にとって、この発明の内容が、その発明の課題を遂行
ならしめる発明の成立に必須であり、その発明の性質で
あるその発明の技術的本質に由来し、そして、それを内
在させると客観的に認められる態様に容易に置き換えら
れる。
As for the relationship between the invention and the specific examples, it is clear from the explained specific examples of the invention that the contents of this invention are clear to those who have ordinary knowledge in the technical field to which this invention pertains. It is essential for the establishment of the invention that allows the invention to be carried out, it originates from the technical essence of the invention that is the nature of the invention, and it can be easily replaced by a mode that is objectively recognized as incorporating it.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

図は、この発明のウロキナーゼインヒビターの活性測定
法に使用されたウロキナーゼインヒビター活性の検量線
図である。 K100 KIO KI (PLACENTAL ) 07m1 手続補正書(方式) 平成1年3月30日 昭和63年特許願第275896号 発明の名称 ウロキナーゼインヒビターの活性測定法補正をする者 事件との関係  特許出願人 住 所  東京都板橋区小茂根4丁目28番14号氏名
  林   滋 4、代理人 〒−167 居 所  東京都杉並区西荻北1丁目4番3号7、 補
正の内容 (1)本願明細書の第20頁第20行ないし同第21頁
第2行に記載した「図は、・・・である。」を、「第1
図は、ウロキナーゼ100単位使用時のこの発明のウロ
キナーゼインヒビターの活性測定法のウロキナーゼイン
ヒビター活性検量線図、および、第2図は、ウロキナー
ゼ10単位使用時のこの発明のウロキナーゼインヒビタ
ーの活性測定法のウロキナーゼインヒビター活性検量線
図である。J に訂正しまず。 (2)本願の願書に添付した図面を別紙の通りに訂正し
ます。 以上 補正命令の日付 平成1年3月7日 補正の対象 窪ポ郵 ギ淑郵
The figure is a calibration curve of urokinase inhibitor activity used in the method for measuring urokinase inhibitor activity of the present invention. K100 KIO KI (PLACENTAL) 07m1 Procedural amendment (method) March 30, 1999 Patent Application No. 275896, filed in 1988 Name of the invention Relationship with the case concerning the person amending the method for measuring the activity of urokinase inhibitor Patent applicant address 4-28-14, Komone, Itabashi-ku, Tokyo Name: Shigeru Hayashi 4, Agent: 〒-167 Address: 1-4-3-7, Nishiogikita, Suginami-ku, Tokyo Contents of the amendment (1) Page 20 of the specification of the present application "The figure is..." written in line 20 to page 21, line 2 of the same page is replaced with "1
The figure shows a urokinase inhibitor activity calibration curve of the method for measuring the activity of the urokinase inhibitor of the present invention when using 100 units of urokinase, and Figure 2 shows the urokinase inhibitor activity calibration curve of the method for measuring the activity of the urokinase inhibitor of the present invention when using 10 units of urokinase. It is an inhibitor activity calibration curve. First of all, please correct J. (2) The drawings attached to the application form will be corrected as shown in the attached document. Date of the above amendment order March 7, 1999 Subject of amendment

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] (1)合成基質あるいはプラスミノーゲン含有フィブリ
ン平板、および、親和性カラムを用いるところのウロキ
ナーゼインヒビターの活性測定法。
(1) A method for measuring urokinase inhibitor activity using a synthetic substrate or a fibrin plate containing plasminogen and an affinity column.
JP27589688A 1988-10-31 1988-10-31 Method for measuring activity of urokinase inhibitor Pending JPH02119798A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP27589688A JPH02119798A (en) 1988-10-31 1988-10-31 Method for measuring activity of urokinase inhibitor

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP27589688A JPH02119798A (en) 1988-10-31 1988-10-31 Method for measuring activity of urokinase inhibitor

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPH02119798A true JPH02119798A (en) 1990-05-07

Family

ID=17561948

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP27589688A Pending JPH02119798A (en) 1988-10-31 1988-10-31 Method for measuring activity of urokinase inhibitor

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPH02119798A (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5496879A (en) * 1992-02-25 1996-03-05 Siegwerk Druckfarben Gmbh & Co. Kg Printing ink

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5496879A (en) * 1992-02-25 1996-03-05 Siegwerk Druckfarben Gmbh & Co. Kg Printing ink

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cummins et al. Cardiac specific troponin-I release in canine experimental myocardial infarction: development of a sensitive enzyme-linked immunoassay
JPH021552A (en) Detection for decision of diseased condition of person to be examined, monoclonal antibody and detecting kit
JPS61192285A (en) Monoclonal antibody to activated platelet
JPH0616717B2 (en) Monoclonal antibody
Paramo et al. Types 1 and 2 Plasminogen Activator lnhibitor and Tirmor Necrosis Factor Alpha in Fatients with Sepsis
Van Geet et al. Activation of both coagulation and fibrinolysis in childhood hemolytic uremic syndrome
US10676539B2 (en) Tissue plasminogen activator antibodies and methods of use
Declerck et al. Prevalence and induction of circulating antibodies against recombinant staphylokinase
Booth et al. Plasmin‐a2‐antiplasmin complexes in bleeding disorders characterized by primary or secondary fibrinolysis
JPH0734014B2 (en) Method for quantitatively measuring collagenase
JPH02119798A (en) Method for measuring activity of urokinase inhibitor
AU628960B2 (en) Method of immunologically assaying human thrombin- antithrombin III complex, assay reagent and kit therefor
Conard et al. Theoretic and practical considerations on laboratory monitoring of thrombolytic therapy
Hanaoka et al. A novel and potent thrombolytic fusion protein consisting of anti-insoluble fibrin antibody and mutated urokinase
US5888749A (en) Anti-human plasmin-α2 -plasmin inhibitor complex antibodies, hybridomas, and immunological determination method
Chen et al. Radioimmunoassay of fibrinogen-fibrin degradation products: assay for fragment E-related neoantigen-methodological aspects
AU639940B2 (en) A reagent for the detection of fibrinolytic activity
JPH06508219A (en) Analytical method for plasmin-α2-antiplasmin complex compound and method for using this analytical method as a measure of changes in fibrinolytic system
Zuraw et al. Acute consumption of C1 inhibitor in a patient with acquired C1-inhibitor deficiency syndrome
Ng et al. A lysine-binding protein in SLE sera inhibits the binding of immune complexes to normal erythrocyte CR1 (complement receptor type 1).
EP0337817B2 (en) Plasminogen activator and thrombolytic agent
Gargan et al. A fibrin specific monoclonal antibody which interferes with the fibrinolytic effect of tissue plasminogen activator
JP2507317B2 (en) Method for measuring plasmin-α2 plasmin inhibitor complex
Langone Immunoassay of 5-methyltetrahydrofolate: Use of 125I-labeled Protein A as the tracer molecule for specific antibody
JPH0348158A (en) Immunoassay of human thrombin/anti-thrombin iii complex and measuring reagent and kit therefor