JP7448638B2 - 抗体の変異体及びその使用 - Google Patents
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Description
本発明は、抗体分野に属する。具体的に、抗体の変異体、それを含む組成物および/またはコンジュゲート、およびそれらの用途に関する。
抗体-薬物コンジュゲート（Antibody-drug conjugates，ADC）は、標的治療薬の一類であり、抗体の特異性と細胞傷害性治療剤の細胞傷害性を組み合わせたものである。ADCは主としてさまざまな癌を治療する候補と見なされている。ADCには、治療薬物と連結されている抗体が含まれている。また、二重特異性抗体は、両つの既存の抗体を用いて、化学コンジュゲート方法によって迅速に、大量に合成されてもよい。例えば、両つのIgG分子あるいは両つのFab断片が、コンジュゲート試薬で連結されている。また、抗体酵素を利用してCovX-Bodies［1］を調製することが報告され、一つのIgG分子の両つのFabアームに対して、それぞれ、標的部位中和作用を有する両つのポリペプチドが接続された。よって、サイト特定カップリング（Site-specific coupling）テクノロジーは、新規二重特異性抗体の調製にも応用できる［1］。
抗体分子には、架橋の修飾に使える基、例えばアミノ基とカルボキシ基が多く含まれる。一方、これらの基は抗体分子において大量に存在しているため、抗体のカップリング部位にランダム性を付与されている。また、抗体分子のジスルフィド結合による方法もたくさんあり、その数が限られており、位置も固定であり、薬物にコンジュゲートされた後、抗原結合部位が遮断されていない。これらの特徴によって、抗体のジスルフィド結合は、抗体のコンジュゲートに適している部位の一つになる。しかし、これらの内在性ジスルフィド結合の還元は非特異的であり、すなわち、ヒンジ領域のジスルフィド結合、及び重鎖と軽鎖の間のジスルフィド結合がすべて還元され、その結果、コンジュゲート生成物はさまざまな成分の混合物になる［2，3］。
システインチオールは、中性pHにおいて反応性であり、これは、pH7に近い場合でプロトン化と求核性が低下するアミン類の大部分とは異なる。遊離のチオール(スルフヒドリル基)は相対的な反応性を有するので、システイン残基を持っているタンパク質は、一般、そのジスルフィド-連結されたオリゴマーの酸化形として存在し、又は内部で架橋されたジサルファイド基を持つ。抗体中のシステインスルフヒドリル基は、一般、抗体アミン又はヒドロキシ基に対する反応性と比較して、求電子カップリング反応剤に対する反応性がより高く、すなわち、もっと求核性を有している。したがって、抗体のアミノ酸残基をシステインに改変させ、その後、該システインを利用してコンジュゲート反応を行うことができる。Junutulaら［4］は、PHESELECTOR(phage ELISA for selection of reactive thiols )という技術を開発した。さらに、前記技術によりスクリーニングして、反応性Cysを有するIgG変異体であるTHIOMABが得られ、それと薬物とのコンジュゲート生成物は、TDC（THIOMAB-drug conjugates）と呼ばれる。従来のADCと比べて、PHESELECTOR技術により得られる対応するTDCは、より良い治療効果を示したが、下記欠点もある：全長抗体を哺乳動物細胞で発現する場合、導入されたCysは、培地中の、グルタチオン又は他のカプチル基含有物質とジスルフィド結合を形成可能であるので、コンジュゲートの進行には、それを遊離フォームに還元される必要がある。しかし、その同時、抗体の鎖間ジスルフィド結合も開かれ、完全な抗体に回復するために再度酸化される必要がある。また、この追加導入されたスルフヒドリル基は、THIOMAB形成の全過程で、抗体の2つのFabの間に誤ってジスルフィド結合を形成する可能性もある［5-7］。
適切な部位を選択してシステイン変異を作ると、その変異によって得られたシステインのスルフヒドリル基が、発現・精製の過程でそのまま遊離状態を保持し、何の前処理もせずに、下流のコンジュゲート反応に直接適用することができる。そのため、出願人らは、システインのスルフヒドリル基が遊離状態を維持しやすく、高い反応性を有する、合理的なシステイン変異部位を開発した。その後、抗体は、マレイミドを含むリンカーを介して、別の機能性分子（抗体断片、ポリペプチド又は低分子薬）とコンジュゲートした。
本発明は、特に、システインに変異可能な抗体定常領域の部位を提供し、前記変異は、抗体、断片または誘導体を有効担持物とコンジュゲートすることを可能にするように、選択された部位特異的コンジュゲート部位を導入され、1つまたは複数の前記変異は、Kabatナンバリングによる軽鎖位置の166位の変異を含む。また、本発明は、抗血管新生機能を有する二重特異性抗体の独立構造を提供する。
その結果、本発明は以下を提供する。
その結果、本発明は以下を提供する。
１．抗体又はその断片の変異体であって、Kabatナンバリングで166で表される位置のアミノ酸からシステインへの変異を有する軽鎖定常領域を含み、好ましくは、ヒト化抗体、キメラ抗体であり、より好ましくは、IgG抗体である、抗体又はその断片の変異体。
２．前記軽鎖がλ又はκ型である、前記項1に記載の抗体又はその断片の変異体。
３．前記変異体が、配列番号：1のアミノ酸配列の重鎖と、配列番号:7のアミノ酸配列の軽鎖とを含み；配列番号：9のアミノ酸配列の重鎖と、配列番号:13のアミノ酸配列の軽鎖とを含み；又は、配列番号：17のアミノ酸配列の重鎖と、配列番号:21のアミノ酸配列の軽鎖とを含む、前記項1又は2に記載の抗体又はその断片の変異体。
４．前記断片が、Fab断片、Fab’断片又はF(ab’)2断片であり、好ましくは、前記Fab断片の重鎖アミノ酸配列が配列番号：25の配列であり、前記Fab断片の軽鎖アミノ酸配列が配列番号:29の配列である、前記項1～3のいずれか1項に記載の抗体又はその断片の変異体。
５．前記項1～4のいずれか1項に記載の抗体又はその断片の変異体を含む、二重特異性抗体又は融合タンパク質。
６．前記項1～4のいずれか1項に記載の抗体又はその断片の変異体を含む、コンジュゲート。
７．前記コンジュゲートが、ポリエチレングリコール、細胞障害性薬剤、活性ペプチド、ナノボディ、単一ドメイン抗体、Fab断片、Fab’断片、scFv、低分子薬、化学療法剤又は放射線療法剤からなる群から選ばれ、好ましくは、前記活性ペプチドが、Ang2活性ペプチドであり、より好ましくは配列番号:33のAng2活性ペプチドであり、さらに好ましくは、前記Ang2活性ペプチドがリンカーを介して本発明のベバシズマブ変異体にコンジュゲートしており、なお好ましくは、前記リンカーがアミド結合を有し、具体的には下記式I
で示される構造を有するホルムアミド-PEG4-NHSである、前記項6に記載のコンジュゲート。
で示される構造を有するホルムアミド-PEG4-NHSである、前記項6に記載のコンジュゲート。
８．前記ポリエチレングリコールが、モノメトキシポリエチレングリコール（Methoxy PEG）であり、好ましくは、mPEG2000、mPEG5000、又はmPEG10000である、前記項6に記載のコンジュゲート。
９．前記ポリエチレングリコールがさらに薬物分子とコンジュゲートしており、好ましくは、前記ポリエチレングリコールが直鎖状二官能基化ポリエチレングリコール、直鎖状ヘテロ官能基化ポリエチレングリコール又はMulti-Arm官能基化PEGである、前記項7又は8に記載のコンジュゲート。
１０．前記項1～4のいずれか1項に記載の抗体又はその断片の変異体、前記項5に記載の二重特異性抗体又は融合タンパク質、又は前記項6～9のいずれか1項に記載のコンジュゲートを含み、任意選択的に、薬学的に許容可能な担体を含む、医薬組成物。
１１．前記項1～4のいずれか1項に記載の抗体又はその断片の変異体、前記項5に記載の二重特異性抗体又は融合タンパク質、前記項6～9のいずれか1項に記載のコンジュゲート、又は前記項10に記載の医薬組成物を投与することを含む、癌(好まくは、進行期、転移性又は再発性非扁平上皮非小細胞肺がんのような非小細胞肺癌、転移性結腸直腸癌のような結腸直腸癌、乳がん、悪性神経膠腫、腎細胞がん、多形性膠芽腫)の治療方法。
１２．前記項1～4のいずれか1項に記載の抗体又はその断片の変異体、前記項5に記載の二重特異性抗体／融合タンパク質又は前記項6～9いずれか1つしたコンジュゲート、又は前記項10に記載の医薬組成物の、癌(好まくは、進行期、転移性又は再発性非扁平上皮非小細胞肺がんのような非小細胞肺癌、転移性結腸直腸癌のような結腸直腸癌、乳がん、悪性神経膠腫、腎細胞がん、多形性膠芽腫)を治療するための医薬品又はキットの製造における、使用。
１３．前記項1～4のいずれか1項に記載の抗体又はその断片の変異体、前記項5に記載の二重特異性抗体／融合タンパク質又は前記項6～9のいずれか1項に記載のコンジュゲート、又は前記項10に記載の医薬組成物を含むキットであって、好ましくは、前記キットが、さらに、前記抗体又はその断片と併用する薬剤、例えばカルボプラチン又はシスプラチンを含む、キット。
［発明の詳細な説明］
本発明の目的、技術構成および利点を明確にするために、以下具体的な実施例を示して、本発明をより詳細に説明する。一般当業者が理解できるように、以下の実施形態は例示を目的とするものであり、本発明の保護範囲は、後述する請求項の範囲に基づくものである。
本発明の目的、技術構成および利点を明確にするために、以下具体的な実施例を示して、本発明をより詳細に説明する。一般当業者が理解できるように、以下の実施形態は例示を目的とするものであり、本発明の保護範囲は、後述する請求項の範囲に基づくものである。
実施例で使用した制限エンドヌクレアーゼは、Thermo Fisher Scientific (China) Co., Ltd.から購入し、以下の実施例で使用した試薬又は材料は、由来が明確に記載されない場合、当技術分野で日常的に入手可能なものである。CHO-K1細胞の培地は、Sigma会社から購入した。
実施例1．システイン変異細胞株のスクリーニングと発現
（1）抗VEGF抗体、変異体の発現ベクターの構築
本文に記載された抗体（その対応する野生型配列は、USP Medicines Compendiumから得られたものであり、具体的には、重鎖配列は配列番号:1に示され、軽鎖配列は配列番号:2に示され；これを基に、本発明の変異体166Cは、kabatナンバリングによる軽鎖166位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものであり、コントロール抗体124Cは、軽鎖124位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものである）をコードするDNAは、化学合成した（GENEWIZ，Inc. Genomics Suzhou, China）。その後、抗体の重鎖遺伝子をBstBIとPacIで二重消化し、軽鎖遺伝子をHindIIIとEcoRIで二重消化した。重鎖遺伝子は、T4リガーゼにて、BstBIとPacIで処理した真核発現ベクターであるpCGS3（Biovector NTCC Inc．）にライゲーションし、ライゲーションした後、HindIIIとEcoRIで二重消化して、T4リガーゼで軽鎖遺伝子を挿入し、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターの構築した。
（1）抗VEGF抗体、変異体の発現ベクターの構築
本文に記載された抗体（その対応する野生型配列は、USP Medicines Compendiumから得られたものであり、具体的には、重鎖配列は配列番号:1に示され、軽鎖配列は配列番号:2に示され；これを基に、本発明の変異体166Cは、kabatナンバリングによる軽鎖166位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものであり、コントロール抗体124Cは、軽鎖124位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものである）をコードするDNAは、化学合成した（GENEWIZ，Inc. Genomics Suzhou, China）。その後、抗体の重鎖遺伝子をBstBIとPacIで二重消化し、軽鎖遺伝子をHindIIIとEcoRIで二重消化した。重鎖遺伝子は、T4リガーゼにて、BstBIとPacIで処理した真核発現ベクターであるpCGS3（Biovector NTCC Inc．）にライゲーションし、ライゲーションした後、HindIIIとEcoRIで二重消化して、T4リガーゼで軽鎖遺伝子を挿入し、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターの構築した。
（2）抗VEGF抗体、変異体の発現ベクターのスクリーニングと精製
構築した発現ベクターをDH5αコンピテントエシェリヒア・コリ菌株に形質転換した。形質転換されたDH5α株は、BstBIとPacIの2種の酵素とHindIIIとEcoRIの2種の酵素でそれぞれ二重消化して、シーケンス解析して確認した。ポジティブクローンは選択した。得られたエシェリヒア・コリは、プラスミド抽出キット（(CWBIO, Beijing, Chinaから購入）を用いて、溶解してプラスミドを抽出して、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターを得た。
構築した発現ベクターをDH5αコンピテントエシェリヒア・コリ菌株に形質転換した。形質転換されたDH5α株は、BstBIとPacIの2種の酵素とHindIIIとEcoRIの2種の酵素でそれぞれ二重消化して、シーケンス解析して確認した。ポジティブクローンは選択した。得られたエシェリヒア・コリは、プラスミド抽出キット（(CWBIO, Beijing, Chinaから購入）を用いて、溶解してプラスミドを抽出して、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターを得た。
（3）CHO細胞での抗VEGF抗体、変異体の発現
精製した発現ベクターは、電気穿孔法でCHO-K1細胞（ATCCから購入）にトランスフェクションし、96ウェルプレートに播種した。15日間培養した後、モノクロナールをピックアップし、ELISAにて細胞の抗体生産量を測定し、ベストの20%の株をピックアップして24ウェルプレートに播種した。7日間培養した後、細胞の抗体生産量を測定し、ベストの５つ～６つの株をピックアップしてローラーボトルに移して培養した。CHO-K1細胞での抗VEGF抗体の発現を達成した。無血清培養が安定した後、7日間の連続培養後に細胞を採取し、精製して後続実験に使用した。
精製した発現ベクターは、電気穿孔法でCHO-K1細胞（ATCCから購入）にトランスフェクションし、96ウェルプレートに播種した。15日間培養した後、モノクロナールをピックアップし、ELISAにて細胞の抗体生産量を測定し、ベストの20%の株をピックアップして24ウェルプレートに播種した。7日間培養した後、細胞の抗体生産量を測定し、ベストの５つ～６つの株をピックアップしてローラーボトルに移して培養した。CHO-K1細胞での抗VEGF抗体の発現を達成した。無血清培養が安定した後、7日間の連続培養後に細胞を採取し、精製して後続実験に使用した。
（4）抗CD20抗体、変異体の発現ベクターの構築
本文に記載された抗体（その対応する野生型配列は、USP Medicines Compendiumから得られたものであり、具体的には、重鎖配列は配列番号:9に示され、軽鎖配列は配列番号:10に示され；これを基に、本発明の変異体166Cは、kabatナンバリングによる軽鎖166位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものであり、コントロール抗体124Cは、軽鎖124位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものである）をコードするDNAは、化学合成した（GENEWIZ，Inc. Genomics Suzhou, China）。その後、抗体の重鎖遺伝子をBstBIとPacIで二重消化し、軽鎖遺伝子をHindIIIとEcoRIで二重消化した。重鎖遺伝子は、T4リガーゼにて、BstBIとPacIで処理した真核発現ベクターであるpCGS3（Biovector NTCC Inc．）にライゲーションし、ライゲーションした後、HindIIIとEcoRIで二重消化して、T4リガーゼで軽鎖遺伝子を挿入し、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターの構築した。
本文に記載された抗体（その対応する野生型配列は、USP Medicines Compendiumから得られたものであり、具体的には、重鎖配列は配列番号:9に示され、軽鎖配列は配列番号:10に示され；これを基に、本発明の変異体166Cは、kabatナンバリングによる軽鎖166位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものであり、コントロール抗体124Cは、軽鎖124位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものである）をコードするDNAは、化学合成した（GENEWIZ，Inc. Genomics Suzhou, China）。その後、抗体の重鎖遺伝子をBstBIとPacIで二重消化し、軽鎖遺伝子をHindIIIとEcoRIで二重消化した。重鎖遺伝子は、T4リガーゼにて、BstBIとPacIで処理した真核発現ベクターであるpCGS3（Biovector NTCC Inc．）にライゲーションし、ライゲーションした後、HindIIIとEcoRIで二重消化して、T4リガーゼで軽鎖遺伝子を挿入し、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターの構築した。
（5）抗CD20抗体、変異体の発現ベクターのスクリーニングと精製
構築した発現ベクターをDH5αコンピテントエシェリヒア・コリ菌株に形質転換した。形質転換されたDH5α株は、BstBIとPacIの2種の酵素とHindIIIとEcoRIの2種の酵素でそれぞれ二重消化して、シーケンス解析して確認した。ポジティブクローンは選択した。得られたエシェリヒア・コリは、プラスミド抽出キット（(CWBIO, Beijing, Chinaから購入）を用いて、溶解してプラスミドを抽出して、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターを得た。
構築した発現ベクターをDH5αコンピテントエシェリヒア・コリ菌株に形質転換した。形質転換されたDH5α株は、BstBIとPacIの2種の酵素とHindIIIとEcoRIの2種の酵素でそれぞれ二重消化して、シーケンス解析して確認した。ポジティブクローンは選択した。得られたエシェリヒア・コリは、プラスミド抽出キット（(CWBIO, Beijing, Chinaから購入）を用いて、溶解してプラスミドを抽出して、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターを得た。
（6）CHO細胞での抗CD20抗体、変異体の発現
精製した発現ベクターは、電気穿孔法でCHO-K1細胞（ATCCから購入）にトランスフェクションし、96ウェルプレートに播種した。15日間培養した後、モノクロナールをピックアップし、ELISAにて細胞の抗体生産量を測定し、ベストの20%の株をピックアップして24ウェルプレートに播種した。7日間培養した後、細胞の抗体生産量を測定し、ベストの５つ～６つの株をピックアップしてローラーボトルに移して培養した。CHO-K1細胞での抗CD20抗体の発現を達成した。無血清培養が安定した後、7日間の連続培養後に細胞を採取し、精製して後続実験に使用した。
精製した発現ベクターは、電気穿孔法でCHO-K1細胞（ATCCから購入）にトランスフェクションし、96ウェルプレートに播種した。15日間培養した後、モノクロナールをピックアップし、ELISAにて細胞の抗体生産量を測定し、ベストの20%の株をピックアップして24ウェルプレートに播種した。7日間培養した後、細胞の抗体生産量を測定し、ベストの５つ～６つの株をピックアップしてローラーボトルに移して培養した。CHO-K1細胞での抗CD20抗体の発現を達成した。無血清培養が安定した後、7日間の連続培養後に細胞を採取し、精製して後続実験に使用した。
（7）抗HER2抗体、変異体の発現ベクターの構築
本文に記載された抗体（その対応する野生型配列は、USP Medicines Compendiumから得られたものであり、具体的には、重鎖配列は配列番号:17に示され、軽鎖配列は配列番号:19に示され；これを基に、本発明の変異体166Cは、kabatナンバリングによる軽鎖166位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものであり、コントロール抗体124Cは、軽鎖124位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものである）をコードするDNAは、化学合成した（GENEWIZ，Inc. Genomics Suzhou, China）。その後、抗体の重鎖遺伝子をBstBIとPacIで二重消化し、軽鎖遺伝子をHindIIIとEcoRIで二重消化した。重鎖遺伝子は、T4リガーゼにて、BstBIとPacIで処理した真核発現ベクターであるpCGS3（Biovector NTCC Inc．）にライゲーションし、ライゲーションした後、HindIIIとEcoRIで二重消化して、T4リガーゼで軽鎖遺伝子を挿入し、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターの構築した。
本文に記載された抗体（その対応する野生型配列は、USP Medicines Compendiumから得られたものであり、具体的には、重鎖配列は配列番号:17に示され、軽鎖配列は配列番号:19に示され；これを基に、本発明の変異体166Cは、kabatナンバリングによる軽鎖166位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものであり、コントロール抗体124Cは、軽鎖124位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものである）をコードするDNAは、化学合成した（GENEWIZ，Inc. Genomics Suzhou, China）。その後、抗体の重鎖遺伝子をBstBIとPacIで二重消化し、軽鎖遺伝子をHindIIIとEcoRIで二重消化した。重鎖遺伝子は、T4リガーゼにて、BstBIとPacIで処理した真核発現ベクターであるpCGS3（Biovector NTCC Inc．）にライゲーションし、ライゲーションした後、HindIIIとEcoRIで二重消化して、T4リガーゼで軽鎖遺伝子を挿入し、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターの構築した。
（8）抗HER2抗体、変異体の発現ベクターのスクリーニングと精製
構築した発現ベクターをDH5αコンピテントエシェリヒア・コリ菌株に形質転換した。形質転換されたDH5α株は、BstBIとPacIの2種の酵素とHindIIIとEcoRIの2種の酵素でそれぞれ二重消化して、シーケンス解析して確認した。ポジティブクローンは選択した。得られたエシェリヒア・コリは、プラスミド抽出キット(CWBIO, Beijing, Chinaから購入）を用いて、溶解してプラスミドを抽出して、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターを得た。
構築した発現ベクターをDH5αコンピテントエシェリヒア・コリ菌株に形質転換した。形質転換されたDH5α株は、BstBIとPacIの2種の酵素とHindIIIとEcoRIの2種の酵素でそれぞれ二重消化して、シーケンス解析して確認した。ポジティブクローンは選択した。得られたエシェリヒア・コリは、プラスミド抽出キット(CWBIO, Beijing, Chinaから購入）を用いて、溶解してプラスミドを抽出して、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターを得た。
（9）CHO細胞での抗HER2抗体、変異体の発現
精製した発現ベクターは、電気穿孔法でCHO-K1細胞（ATCCから購入）にトランスフェクションし、96ウェルプレートに播種した。15日間培養した後、モノクロナールをピックアップし、ELISAにて細胞の抗体生産量を測定し、ベストの20%の株をピックアップして24ウェルプレートに播種した。7日間培養した後、細胞の抗体生産量を測定し、ベストの５つ～６つの株をピックアップしてローラーボトルに移して培養した。CHO-K1細胞での抗HER2抗体の発現を達成した。無血清培養が安定した後、7日間の連続培養後に細胞を採取し、精製して後続実験に使用した。
精製した発現ベクターは、電気穿孔法でCHO-K1細胞（ATCCから購入）にトランスフェクションし、96ウェルプレートに播種した。15日間培養した後、モノクロナールをピックアップし、ELISAにて細胞の抗体生産量を測定し、ベストの20%の株をピックアップして24ウェルプレートに播種した。7日間培養した後、細胞の抗体生産量を測定し、ベストの５つ～６つの株をピックアップしてローラーボトルに移して培養した。CHO-K1細胞での抗HER2抗体の発現を達成した。無血清培養が安定した後、7日間の連続培養後に細胞を採取し、精製して後続実験に使用した。
（10）抗VEGF抗体Fab断片および変異体の発現ベクターの構築
本文に記載された抗VEGF抗体Fab断片（その対応する野生型配列は、USP Medicines Compendiumから得られたものであり、具体的には、Fab断片の重鎖配列は配列番号:25に示され、Fab断片の軽鎖配列は配列番号:26に示され；これを基に、本発明の変異体166Cは、kabatナンバリングによるFab断片の軽鎖166位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものであり、コントロール抗体124Cは、Fab断片の軽鎖124位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものである）をコードするDNAは、化学合成した（GENEWIZ，Inc. Genomics Suzhou, China）。その後、Fab断片の重鎖遺伝子をBstBIとPacIで二重消化し、Fab断片の軽鎖遺伝子をHindIIIとEcoRIで二重消化した。重鎖遺伝子は、T4リガーゼにて、BstBIとPacIで処理した真核発現ベクターであるpCGS3（Biovector NTCC Inc．）にライゲーションし、ライゲーションした後、HindIIIとEcoRIで二重消化して、T4リガーゼでFab断片の軽鎖遺伝子を挿入し、重鎖と軽鎖の両方を含むFab断片発現ベクターの構築した。
本文に記載された抗VEGF抗体Fab断片（その対応する野生型配列は、USP Medicines Compendiumから得られたものであり、具体的には、Fab断片の重鎖配列は配列番号:25に示され、Fab断片の軽鎖配列は配列番号:26に示され；これを基に、本発明の変異体166Cは、kabatナンバリングによるFab断片の軽鎖166位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものであり、コントロール抗体124Cは、Fab断片の軽鎖124位のアミノ酸をシステインに置換して得られたものである）をコードするDNAは、化学合成した（GENEWIZ，Inc. Genomics Suzhou, China）。その後、Fab断片の重鎖遺伝子をBstBIとPacIで二重消化し、Fab断片の軽鎖遺伝子をHindIIIとEcoRIで二重消化した。重鎖遺伝子は、T4リガーゼにて、BstBIとPacIで処理した真核発現ベクターであるpCGS3（Biovector NTCC Inc．）にライゲーションし、ライゲーションした後、HindIIIとEcoRIで二重消化して、T4リガーゼでFab断片の軽鎖遺伝子を挿入し、重鎖と軽鎖の両方を含むFab断片発現ベクターの構築した。
（11）抗VEGF抗体Fab断片および変異体の発現ベクターのスクリーニングと精製
構築した発現ベクターをDH5αコンピテントエシェリヒア・コリ菌株に形質転換した。形質転換されたDH5α株は、BstBIとPacIの2種の酵素とHindIIIとEcoRIの2種の酵素でそれぞれ二重消化して、シーケンス解析して確認した。ポジティブクローンは選択した。得られたエシェリヒア・コリは、プラスミド抽出キット（(CWBIO, Beijing, Chinaから購入）を用いて、溶解してプラスミドを抽出して、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターを得た。
構築した発現ベクターをDH5αコンピテントエシェリヒア・コリ菌株に形質転換した。形質転換されたDH5α株は、BstBIとPacIの2種の酵素とHindIIIとEcoRIの2種の酵素でそれぞれ二重消化して、シーケンス解析して確認した。ポジティブクローンは選択した。得られたエシェリヒア・コリは、プラスミド抽出キット（(CWBIO, Beijing, Chinaから購入）を用いて、溶解してプラスミドを抽出して、重鎖と軽鎖の両方を含む発現ベクターを得た。
（12）CHO細胞での抗VEGF抗体Fab断片および変異体の発現
精製した発現ベクターは、電気穿孔法でCHO-K1細胞（ATCCから購入）にトランスフェクションし、96ウェルプレートに播種した。15日間培養した後、モノクロナールをピックアップし、SDS-PAGEにて細胞の抗体生産量を測定し、ベストの20%の株をピックアップして24ウェルプレートに播種した。7日間培養した後、細胞の抗体生産量を測定し、ベストの５つ～６つの株をピックアップしてローラーボトルに移して培養した。CHO-K1細胞での抗抗体の発現を達成した。無血清培養が安定した後、7日間の連続培養後に細胞を採取し、Niアフィニティークロマトグラフィーカラムで精製して後続実験に使用した。
精製した発現ベクターは、電気穿孔法でCHO-K1細胞（ATCCから購入）にトランスフェクションし、96ウェルプレートに播種した。15日間培養した後、モノクロナールをピックアップし、SDS-PAGEにて細胞の抗体生産量を測定し、ベストの20%の株をピックアップして24ウェルプレートに播種した。7日間培養した後、細胞の抗体生産量を測定し、ベストの５つ～６つの株をピックアップしてローラーボトルに移して培養した。CHO-K1細胞での抗抗体の発現を達成した。無血清培養が安定した後、7日間の連続培養後に細胞を採取し、Niアフィニティークロマトグラフィーカラムで精製して後続実験に使用した。
実施例2．Pro Aアフィニティークロマトグラフィーカラムでの（HiTrap FF）精製
細胞と培地を50 mL遠心チューブに移して、高速凍結遠心機にセットし、8000rで15 min遠心した。上清を回収し、細胞デブリを捨てた。培地を0.22μmのマイクロポアろ過膜で一回ろ過し、ろ液を回収して使用まで予備した。ポンプ、シリンジ及び精製カラムは、カラムボリューム10倍の超純水、PBSで洗浄し、ローディングを待った。ローディング；0.1 M Gly-HClで溶出して、精製した抗体蛋白液をエッペンチューブに引取し、1.5 M Tris-HClでpHを7～8に調整し、2-8℃で保存した。結果を図1に示した。
細胞と培地を50 mL遠心チューブに移して、高速凍結遠心機にセットし、8000rで15 min遠心した。上清を回収し、細胞デブリを捨てた。培地を0.22μmのマイクロポアろ過膜で一回ろ過し、ろ液を回収して使用まで予備した。ポンプ、シリンジ及び精製カラムは、カラムボリューム10倍の超純水、PBSで洗浄し、ローディングを待った。ローディング；0.1 M Gly-HClで溶出して、精製した抗体蛋白液をエッペンチューブに引取し、1.5 M Tris-HClでpHを7～8に調整し、2-8℃で保存した。結果を図1に示した。
実施例3．抗体の遊離スルフヒドリル基（free thiol）の割合の解析
本発明は、Ellmanの方法（Thermo Fisher Scientific (China) Co, Ltd.）を用いて、抗体製品における遊離スルフヒドリル基の含有率を検出することにより、さらなるコンジュゲーションに適した細胞株を選択した。0.1 M Na2HPO4溶液、DTNB(10 mM)溶液、システイン標準溶液を終濃度0.0059M～0.375Mになるように調製した。同時、濃度5 mg／mLの被検抗体サンプルを準備した。システイン標準溶液または被検サンプルを入れた1.5 mLエッペンチューブに、それぞれ、0.1 M Na2HPO4を250μL 、DTNB溶液を5μL加え、vortexしてよく混ぜた。避光して室温で5 minインキュベートした。波長412 nmのOD値を測定した。OD値をもとに標準曲線を作成し、サンプルのスルフヒドリル基の含有率を算出した。
本発明は、Ellmanの方法（Thermo Fisher Scientific (China) Co, Ltd.）を用いて、抗体製品における遊離スルフヒドリル基の含有率を検出することにより、さらなるコンジュゲーションに適した細胞株を選択した。0.1 M Na2HPO4溶液、DTNB(10 mM)溶液、システイン標準溶液を終濃度0.0059M～0.375Mになるように調製した。同時、濃度5 mg／mLの被検抗体サンプルを準備した。システイン標準溶液または被検サンプルを入れた1.5 mLエッペンチューブに、それぞれ、0.1 M Na2HPO4を250μL 、DTNB溶液を5μL加え、vortexしてよく混ぜた。避光して室温で5 minインキュベートした。波長412 nmのOD値を測定した。OD値をもとに標準曲線を作成し、サンプルのスルフヒドリル基の含有率を算出した。
実施例4．抗体のコンジュゲートとアッセイ
抗体とコンジュゲートのコンジュゲート反応の条件は、抗体：コンジュゲート（ポリペプチド又はmPEG2000-MAL)=1：30（モル比）、反応温度37℃、反応時間3～4h。反応バッファーはPBS（pH 7.2）であった。抗VEGF抗体とmPEG2000-MAL（化学試薬会社から購入、例えば、SHANGHAI ZZBIO CO . , LTD、製品認識ナンバリングZZP-MPEG-MAL-2K-01））とコンジュゲートした後のSDS-PAGE電気泳動図は、図2に示した。
抗体とコンジュゲートのコンジュゲート反応の条件は、抗体：コンジュゲート（ポリペプチド又はmPEG2000-MAL)=1：30（モル比）、反応温度37℃、反応時間3～4h。反応バッファーはPBS（pH 7.2）であった。抗VEGF抗体とmPEG2000-MAL（化学試薬会社から購入、例えば、SHANGHAI ZZBIO CO . , LTD、製品認識ナンバリングZZP-MPEG-MAL-2K-01））とコンジュゲートした後のSDS-PAGE電気泳動図は、図2に示した。
抗VEGF抗体とDC（ポリペプチド-リンカー）とコンジュゲートした（反応は、下記の式IIを参照、166C変異体とDCとコンジュゲートすると166ADC、124C変異体とDCとコンジュゲートすると124ADCが得られた）後のSDS-PAGE電気泳動図は、図3に示した。その結果、166Cでは85%がDCにコンジュゲートされているのに対し、124Cでは75%のみDCにコンジュゲートされていることが、Image J（NIH）によるグレースケール解析から分かる。このことから、166C抗体変異体は、同じ条件でより優れたコンジュゲート効率を示したことがわかる。なお、DC（ポリペプチド-リンカー）の構築情報は以下であった：
ポリペプチドは、Ang2中和作用を有する活性ポリペプチドであり、配列はGln-Lys(Ac)-Tyr-Gln-Pro-Leu-Asp-Glu-Lys(Ac)-Asp-Lys-Thr-Leu-Tyr-Asp-Gln-Phe-Met-Leu-Gln-Gln-Gly-CONH2（配列番号:33）（参考文献のHanhua Huang, Jing-Yu Lai, Janet Do, Dingguo Liu, Lingna Li, Joselyn Del Rosario. Specifically Targeting Angiopoietin-2 Inhibits Angiogenesis, Tie2-Expressing Monocyte Infiltration, and Tumor Growth. Clin Cancer Res; 17(5) March 1, 2011，1001-1011参照）であり、リンカーと接続するためのLysは下線で示した。前記リンカーはホルムアミド-PEG4-NHSであり、構造式ば下記式Iに示した：
活性ペプチドとリンカーとの反応経路は以下の通りであった。
抗CD20抗体（WT、124C、166C）とmPEG2000-MALとのコンジュゲートは、図4に示した。
抗CD20抗体（WT、124C、166C）とDC（ポリペプチド-リンカー）とのコンジュゲートは、図5に示した。
抗HER2抗体（WT、124C、166C）とmPEG2000-MALとのコンジュゲートは、図6に示した。
抗HER2抗体（WT、124C、166C）とDC（ポリペプチド-リンカー）とのコンジュゲートは、図7に示した。
抗VEGF Fab抗体（WT、124C、166C）とmPEG2000-MALとのコンジュゲートは、図8に示した。
抗VEGF Fab抗体（WT、124C、166C）とDC（ポリペプチド-リンカー）とのコンジュゲートは、図9に示した。
ポリペプチドは、Ang2中和作用を有する活性ポリペプチドであり、配列はGln-Lys(Ac)-Tyr-Gln-Pro-Leu-Asp-Glu-Lys(Ac)-Asp-Lys-Thr-Leu-Tyr-Asp-Gln-Phe-Met-Leu-Gln-Gln-Gly-CONH2（配列番号:33）（参考文献のHanhua Huang, Jing-Yu Lai, Janet Do, Dingguo Liu, Lingna Li, Joselyn Del Rosario. Specifically Targeting Angiopoietin-2 Inhibits Angiogenesis, Tie2-Expressing Monocyte Infiltration, and Tumor Growth. Clin Cancer Res; 17(5) March 1, 2011，1001-1011参照）であり、リンカーと接続するためのLysは下線で示した。前記リンカーはホルムアミド-PEG4-NHSであり、構造式ば下記式Iに示した：
活性ペプチドとリンカーとの反応経路は以下の通りであった。
抗CD20抗体（WT、124C、166C）とmPEG2000-MALとのコンジュゲートは、図4に示した。
抗CD20抗体（WT、124C、166C）とDC（ポリペプチド-リンカー）とのコンジュゲートは、図5に示した。
抗HER2抗体（WT、124C、166C）とmPEG2000-MALとのコンジュゲートは、図6に示した。
抗HER2抗体（WT、124C、166C）とDC（ポリペプチド-リンカー）とのコンジュゲートは、図7に示した。
抗VEGF Fab抗体（WT、124C、166C）とmPEG2000-MALとのコンジュゲートは、図8に示した。
抗VEGF Fab抗体（WT、124C、166C）とDC（ポリペプチド-リンカー）とのコンジュゲートは、図9に示した。
マススペクトル解析：
サンプルは、限外ろ過チューブで前処理して、2回蒸留水（DDW）に溶解した。得られたサンプルは、マススペクトル解析をした。マススペクトルシステムとしては、高性能タンデム質量分析Triple TOF 4600 LC/MS/MSシステム（SCIEX China）、エレクトロスプレーイオン化源を用いて、ポジティブイオンモードで解析した。マススペクトルパラメータ：GS1：55；GS2：55；CUR：35；スキャンレンジ：100-2000 Da；ネブライジング電圧（ISVF）：5500 V；ネブライジング温度：350℃；デクラスタリング電圧（DP）：150 V；衝突エネルギー（CE）：10 eV。結果は図10-13に示した。図10と図11から、DCとコンジュゲートした後、変異体166Cは、メインピークが右に6478.8 Da（両分子のDCの分子量に相当）分シフトしたことがわかる。これは、166Cの両方のスルフヒドリル基はDCにコンジュゲートしたことを証明した。
図12～13から、DCとコンジュゲート反応した後、変異体124Cは、それぞれ、0分子のDCとのコンジュゲート、1分子のDCとのコンジュゲート、2分子のDCとのコンジュゲートのピークが生じ、コンジュゲートの均一性と効率性の両方が166Cより低いことがわかる。
サンプルは、限外ろ過チューブで前処理して、2回蒸留水（DDW）に溶解した。得られたサンプルは、マススペクトル解析をした。マススペクトルシステムとしては、高性能タンデム質量分析Triple TOF 4600 LC/MS/MSシステム（SCIEX China）、エレクトロスプレーイオン化源を用いて、ポジティブイオンモードで解析した。マススペクトルパラメータ：GS1：55；GS2：55；CUR：35；スキャンレンジ：100-2000 Da；ネブライジング電圧（ISVF）：5500 V；ネブライジング温度：350℃；デクラスタリング電圧（DP）：150 V；衝突エネルギー（CE）：10 eV。結果は図10-13に示した。図10と図11から、DCとコンジュゲートした後、変異体166Cは、メインピークが右に6478.8 Da（両分子のDCの分子量に相当）分シフトしたことがわかる。これは、166Cの両方のスルフヒドリル基はDCにコンジュゲートしたことを証明した。
図12～13から、DCとコンジュゲート反応した後、変異体124Cは、それぞれ、0分子のDCとのコンジュゲート、1分子のDCとのコンジュゲート、2分子のDCとのコンジュゲートのピークが生じ、コンジュゲートの均一性と効率性の両方が166Cより低いことがわかる。
実施例5．抗VEGF抗体と抗原とのアフィニティーアッセイ
バイオフィルム干渉技術（BLI）、Pro A probe（ForteBio）を用いて、野生型抗体、抗体変異体、抗体ポリペプチドコンジュゲートの、VEGFとのアフィニティーを測定した。抗体サンプルはPBSに溶解して、作業濃度10μg／mLとした。VEGF-165（Sino Biological Inc.）はPBSに溶解して、それぞれ50nM、75 nM、100 nM、150 nM、200 nM濃度にグラジェント希釈した。作業容量はすべて200μLとした。
バイオフィルム干渉技術（BLI）、Pro A probeを用いて、野生型抗体、抗体変異体、抗体ポリペプチドコンジュゲートの、Ang2とのアフィニティーを測定した。抗体サンプルはPBSに溶解して、作業濃度20μg／mLとした。Ang2（Sino Biological Inc.）はPBS（0.02% tween-20,0.1% BSA）に溶解して、それぞれ25nM、50 nM、75 nM、100 nM、 200nM濃度にグラジェント希釈した。作業容量はすべて200μLとした。
OCTETシステムとデータ処理ソフトウェアでデータ図をフィッティングし、ソフトにて抗体などとVEGF又はAng2との分子間力を算出し、KD値で表し、その結果を表5に示した。
バイオフィルム干渉技術（BLI）、Pro A probe（ForteBio）を用いて、野生型抗体、抗体変異体、抗体ポリペプチドコンジュゲートの、VEGFとのアフィニティーを測定した。抗体サンプルはPBSに溶解して、作業濃度10μg／mLとした。VEGF-165（Sino Biological Inc.）はPBSに溶解して、それぞれ50nM、75 nM、100 nM、150 nM、200 nM濃度にグラジェント希釈した。作業容量はすべて200μLとした。
バイオフィルム干渉技術（BLI）、Pro A probeを用いて、野生型抗体、抗体変異体、抗体ポリペプチドコンジュゲートの、Ang2とのアフィニティーを測定した。抗体サンプルはPBSに溶解して、作業濃度20μg／mLとした。Ang2（Sino Biological Inc.）はPBS（0.02% tween-20,0.1% BSA）に溶解して、それぞれ25nM、50 nM、75 nM、100 nM、 200nM濃度にグラジェント希釈した。作業容量はすべて200μLとした。
OCTETシステムとデータ処理ソフトウェアでデータ図をフィッティングし、ソフトにて抗体などとVEGF又はAng2との分子間力を算出し、KD値で表し、その結果を表5に示した。
実施例7．抗VEGF抗体による細胞増殖活性のアッセイ
抗体によるVEGF165中和作用は、HUVEC細胞（ScienCell Research Laboratories，Inc．）で検出した。96ウェルプレートに、4000細胞／50μL／ウェルの接種密度で細胞を接種した。ブランクコントロールウェルを設定した。コントロールウェルは6つ以上であった。グラジェント希釈方法により、グラジェント濃度の抗体サンプル（0.001μg／mL、0.01μg／mL、0.05μg／mL、0.1μg／mL、0.5μg／mL、1μg／mL、5μg／mL、10μg／mL）を調製した。VEGF165を、試験培地で110 ng／mLの濃度になるように希釈した。調製したVEGF165試薬は、VEGF165の終濃度が10 ng／mLになるように、グラジェント濃度のサンプルと混合した。96ウェルプレートをCO2インキュベータインに入れて、48 hキュベーションした後、CCK-8カウントした。サンプル及びそのコントロールのOD値から、増殖率を算出した。結果は図14に示し、野生型抗体（WT）、変異体（124Cと166C）およびコンジュゲート（124ADCと166ADC）は、内皮細胞であるHUVECの増殖（VEGF刺激による増殖）に対する抑制効果を示した。上記図から、抗体変異体は、選択された部位のシステイン変異により活性が変化しなかったことが分かり、選択された部位が抗体の生物的活性に影響を与えていないことが証明した。同様に、DCにコンジュゲートすることで生じたコンジュゲートも、抗体の細胞増殖に対する抑制活性に影響をを与えなかった。
抗体によるVEGF165中和作用は、HUVEC細胞（ScienCell Research Laboratories，Inc．）で検出した。96ウェルプレートに、4000細胞／50μL／ウェルの接種密度で細胞を接種した。ブランクコントロールウェルを設定した。コントロールウェルは6つ以上であった。グラジェント希釈方法により、グラジェント濃度の抗体サンプル（0.001μg／mL、0.01μg／mL、0.05μg／mL、0.1μg／mL、0.5μg／mL、1μg／mL、5μg／mL、10μg／mL）を調製した。VEGF165を、試験培地で110 ng／mLの濃度になるように希釈した。調製したVEGF165試薬は、VEGF165の終濃度が10 ng／mLになるように、グラジェント濃度のサンプルと混合した。96ウェルプレートをCO2インキュベータインに入れて、48 hキュベーションした後、CCK-8カウントした。サンプル及びそのコントロールのOD値から、増殖率を算出した。結果は図14に示し、野生型抗体（WT）、変異体（124Cと166C）およびコンジュゲート（124ADCと166ADC）は、内皮細胞であるHUVECの増殖（VEGF刺激による増殖）に対する抑制効果を示した。上記図から、抗体変異体は、選択された部位のシステイン変異により活性が変化しなかったことが分かり、選択された部位が抗体の生物的活性に影響を与えていないことが証明した。同様に、DCにコンジュゲートすることで生じたコンジュゲートも、抗体の細胞増殖に対する抑制活性に影響をを与えなかった。
実施例8．抗CD20抗体活性のアッセイ
バイオフィルム干渉技術（BLI）、Pro A probe（ForteBio）を用いて、野生型抗体、抗体変異体の、CD20とのアフィニティーを測定した。抗体サンプルはPBSに溶解して、作業濃度10μg／mLとした。CD20（Sino Biological Inc.）はPBSに溶解して、それぞれ25nM、50 nM、100 nM、150 nM、200 nM濃度にグラジェント希釈した。作業容量はすべて200μLとした。
OCTETシステムとデータ処理ソフトウェアでデータ図をフィッティングし、ソフトにて抗体などとCD20との分子間力を算出し、KD値で表し、その結果を表6に示した。
バイオフィルム干渉技術（BLI）、Pro A probe（ForteBio）を用いて、野生型抗体、抗体変異体の、CD20とのアフィニティーを測定した。抗体サンプルはPBSに溶解して、作業濃度10μg／mLとした。CD20（Sino Biological Inc.）はPBSに溶解して、それぞれ25nM、50 nM、100 nM、150 nM、200 nM濃度にグラジェント希釈した。作業容量はすべて200μLとした。
OCTETシステムとデータ処理ソフトウェアでデータ図をフィッティングし、ソフトにて抗体などとCD20との分子間力を算出し、KD値で表し、その結果を表6に示した。
実施例9．抗HER2抗体活性のアッセイ
バイオフィルム干渉技術（BLI）、Pro A probe（ForteBio）を用いて、野生型抗体、抗体変異体、抗体ポリペプチドコンジュゲートの、HER-FCとのアフィニティーを測定した。HER-FC（Sino Biological Inc.）はPBS溶解して、作業濃度10 μg／mLとした。抗体はPBS2に溶解して、それぞれ25nM、50 nM、75 nM、150 nM、300nM濃度にグラジェント希釈した。作業容量はすべて200μLとした。
OCTETシステムとデータ処理ソフトウェアでデータ図をフィッティングし、ソフトにて抗体などとHER2との分子間力を算出し、KD値で表し、その結果を表7に示した。
バイオフィルム干渉技術（BLI）、Pro A probe（ForteBio）を用いて、野生型抗体、抗体変異体、抗体ポリペプチドコンジュゲートの、HER-FCとのアフィニティーを測定した。HER-FC（Sino Biological Inc.）はPBS溶解して、作業濃度10 μg／mLとした。抗体はPBS2に溶解して、それぞれ25nM、50 nM、75 nM、150 nM、300nM濃度にグラジェント希釈した。作業容量はすべて200μLとした。
OCTETシステムとデータ処理ソフトウェアでデータ図をフィッティングし、ソフトにて抗体などとHER2との分子間力を算出し、KD値で表し、その結果を表7に示した。
REFERENCES
1. Doppalapudi VR, Huang J, Liu D, Jin P, Liu B, Li L, Chemical generation of bispecific antibodies. Proc Natl Acad Sci U S A. (2010) 107:22611-22616.
2. Allen, T. M., Ligand-targeted therapeutics in anticancer therapy, Nat. Rev. Cancer, (2002) 2:750-763.
3. Hamblett, K. J., Effects of Drug Loading on the Antitumor Activity of a Monoclonal Antibody Drug Conjugate, Clin. Cancer Res.,(2004) 10:7063-7070.
4. Junutula J R, Bhakta S, Raab H, et al. Rapid identifi cation of reactive cysteine residues for site-specific labeling of antibody-Fabs. J Immunol Methods, (2008) 332: 41-52.
5. Junutula J R, Flagella K M, Graham R A, et al. Engineered thiotrastuzumab- DM1 conjugate with an improved therapeutic index to target human epidermal growth factor receptor 2-positive breast cancer. Clin Cancer Res, (2010) 16: 4769-4778.
6. Junutula J R, Raab H, Clark S, et al. Site-specific conjugation of a cytotoxic drug to an antibody improves the therapeutic index. Nat Biotechnol, (2008) 26: 925-932.
7. Kung Sutherland M S, Walter R B, Jeffrey S C, et al. SGN-CD33A: a novel CD33-targeting antibody-drug conjugate using a pyrrolobenzodiazepine dimer is active in models of drug-resistant AML. Blood, (2013) 122: 1455-1463.
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5. Junutula J R, Flagella K M, Graham R A, et al. Engineered thiotrastuzumab- DM1 conjugate with an improved therapeutic index to target human epidermal growth factor receptor 2-positive breast cancer. Clin Cancer Res, (2010) 16: 4769-4778.
6. Junutula J R, Raab H, Clark S, et al. Site-specific conjugation of a cytotoxic drug to an antibody improves the therapeutic index. Nat Biotechnol, (2008) 26: 925-932.
7. Kung Sutherland M S, Walter R B, Jeffrey S C, et al. SGN-CD33A: a novel CD33-targeting antibody-drug conjugate using a pyrrolobenzodiazepine dimer is active in models of drug-resistant AML. Blood, (2013) 122: 1455-1463.
配列
配列番号:1
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGYTFTNYGMNWVRQAPGKGLEWVGWINTYTGEPTYAADFKRRFTFSLDTSKSTAYLQMNSLRAEDTAVYYCAKYPHYYGSSHWYFDVWGQGTLVTVSSASTKGPSVFPLAPSSKSTSGGTAALGCLVKDYFPEPVTVSWNSGALTSGVHTFPAVLQSSGLSLSSVVTVPSSSLGTQTYICNVNHKPSNTKVDKKVEPKSCDKTHTCPPCPAPELLGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSREEMTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK
配列番号:1
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配列番号:2
DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCSASQDISNYLNWYQQKPGKAPKVLIYFTSSLHSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQYSTVPWTFGQGTKVEIKRTVAAPSVFIFPPSDEQLKSGTASVVCLLNNFYPREAKVQWKVDNALQSGNSQESVTEQDSKDSTYSLSSTLTLSKADYEKHKVYACEVTHQGLSSPVTKSFNRGEC
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配列番号:3
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配列番号:4
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配列番号:5
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配列番号:6
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配列番号:7
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配列番号:8
DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCSASQDISNYLNWYQQKPGKAPKVLIYFTSSLHSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQYSTVPWTFGQGTKVEIKRTVAAPSVFIFPPSDECLKSGTASVVCLLNNFYPREAKVQWKVDNALQSGNSQESVTEQDSKDSTYSLSSTLTLSKADYEKHKVYACEVTHQGLSSPVTKSFNRGEC
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配列番号:9
QVQLQQPGAELVKPGASVKMSCKASGYTFTSYNMHWVKQTPGRGLEWIGAIYPGNGDTSY NQKFKGKATLTADKSSSTAYMQLSSLTSEDSAVYYCARSTYYGGDWYFNVWGAGTTVTVS AASTKGPSVFPLAPSSKSTSGGTAALGCLVKDYFPEPVTVSWNSGALTSGVHTFPAVLQS SGLYSLSSVVTVPSSSLGTQTYICNVNHKPSNTKVDKKAEPKSCDKTHTCPPCPAPELLG GPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQY NSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSRD ELTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSR WQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK
QVQLQQPGAELVKPGASVKMSCKASGYTFTSYNMHWVKQTPGRGLEWIGAIYPGNGDTSY NQKFKGKATLTADKSSSTAYMQLSSLTSEDSAVYYCARSTYYGGDWYFNVWGAGTTVTVS AASTKGPSVFPLAPSSKSTSGGTAALGCLVKDYFPEPVTVSWNSGALTSGVHTFPAVLQS SGLYSLSSVVTVPSSSLGTQTYICNVNHKPSNTKVDKKAEPKSCDKTHTCPPCPAPELLG GPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQY NSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSRD ELTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSR WQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK
配列番号:10
QIVLSQSPAILSASPGEKVTMTCRASSSVSYIHWFQQKPGSSPKPWIYATSNLASGVPVRFSGSGSGTSYSLTISRVEAEDAATYYCQQWTSNPPTFGGGTKLEIKRTVAAPSVFIFPPSDEQLKSGTASVVCLLNNFYPREAKVQWKVDNALQSGNSQESVTEQDSKDSTYSLSSTLTLSKADYEKHKVYACEVTHQGLSSPVTKSFNRGEC
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配列番号:11
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配列番号:12
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配列番号:13
QIVLSQSPAILSASPGEKVTMTCRASSSVSYIHWFQQKPGSSPKPWIYATSNLASGVPVR FSGSGSGTSYSLTISRVEAEDAATYYCQQWTSNPPTFGGGTKLEIKRTVAAPSVFIFPPS DEQLKSGTASVVCLLNNFYPREAKVQWKVDNALQSGNSQESVTECDSKDSTYSLSSTLTL SKADYEKHKVYACEVTHQGLSSPVTKSFNRGEC
QIVLSQSPAILSASPGEKVTMTCRASSSVSYIHWFQQKPGSSPKPWIYATSNLASGVPVR FSGSGSGTSYSLTISRVEAEDAATYYCQQWTSNPPTFGGGTKLEIKRTVAAPSVFIFPPS DEQLKSGTASVVCLLNNFYPREAKVQWKVDNALQSGNSQESVTECDSKDSTYSLSSTLTL SKADYEKHKVYACEVTHQGLSSPVTKSFNRGEC
配列番号:14
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配列番号:15
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配列番号:16
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Cagatcgtcctcagccagagcccagccattctgagcgccagccccggcgagaaggtgactatgacatgcagagcctccagctccgtgagctacatccactggttccagcagaagcccggctcctcccctaagccttggatctacgctacaagcaatctggcctccggagtcccagtgaggttcagcggcagcggatccggcacttcctactctctgacaatttctagggtggaggctgaggacgctgccacatactactgccagcagtggactagcaaccctcctacattcggcggaggcacaaagctggagatcaagaggactgtggccgctcctagcgtgttcatcttccctccttccgatgagtgtctgaagagcggcactgccagcgtggtctgtctgctgaacaacttctaccctagggaggccaaggtgcaatggaaggtggacaatgctctgcagtccggcaattcccaagagtccgtcacagagcaagattccaaggacagcacatactccctctccagcacactgacactgagcaaggctgactacgagaagcacaaggtgtacgcttgtgaggtgactcatcaaggactgagcagcccagtgactaagagcttcaataggggcgagtgt
配列番号:17
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配列番号:18
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配列番号:19
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配列番号:26
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Gaggtgcaactggtcgaaagcggaggcggactggtgcagcccggcggatctctgaggctgagctgtgccgccagcggctacactttcactaactacggcatgaattgggtgaggcaagcccccggcaaaggactggagtgggtcggatggatcaacacttacactggcgagccaacttacgccgccgacttcaagaggaggttcacattcagcctcgacactagcaagagcacagcctatctgcagatgaacagcctcagagctgaggacactgccgtgtactactgcgctaagtatcctcactactacggcagcagccactggtatttcgatgtgtggggccaaggcacactcgtcactgtcagcagcgcttccacaaaaggccctagcgtgttccctctcgcccctagctccaagagcacatccggaggaacagctgctctcggctgtctggtgaaggattacttcccagagccagtgactgtcagctggaatagcggcgctctgacaagcggcgtgcacacattcccagccgtgctgcagagctccggactgtactccctcagcagcgtggtcacagtccctagcagctctctgggcactcagacatacatctgcaacgtgaaccacaagccaagcaacactaaggtcgacaagaaggtggagcctaagagctgcgacaagactcacaca
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配列番号:31
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配列番号:32
gatatccagatgacccagtctccttcctctctgtcagcttcagtgggagatagagtgacaatcacctgttccgcttctcaggatatctccaactacctgaattggtaccagcagaagccaggaaaggctcctaaggtgctgatctacttcacctcttctctgcattccggagtgccttctagatttagcggctccggctccggcacagatttcacactgaccatctcttctctgcagccagaagatttcgccacctactattgccagcagtactctaccgtgccttggacatttggacagggaaccaaggtggagatcaagagaacagtggctgctccttccgtgtttatctttcctccttctgacgaatgtctgaaatccggaacagcttcagtcgtctgcctgctgaacaacttctaccctagagaggccaaagtccagtggaaagtggataacgctctgcagtccggaaattctcaggaatccgtgaccgagcaggattctaaggattctacctactccctgtcttctaccctgacactgtctaaggccgattacgagaagcacaaggtgtacgcttgcgaagtgacacatcagggactgtcttctccagtgaccaagtccttcaacagaggcgagtgt
配列番号:33
Gln-Lys(Ac)-Tyr-Gln-Pro-Leu-Asp-Glu-Lys(Ac)-Asp-Lys-Thr-Leu-Tyr-Asp-Gln-Phe-Met-Leu-Gln-Gln-Gly-CONH2
gatatccagatgacccagtctccttcctctctgtcagcttcagtgggagatagagtgacaatcacctgttccgcttctcaggatatctccaactacctgaattggtaccagcagaagccaggaaaggctcctaaggtgctgatctacttcacctcttctctgcattccggagtgccttctagatttagcggctccggctccggcacagatttcacactgaccatctcttctctgcagccagaagatttcgccacctactattgccagcagtactctaccgtgccttggacatttggacagggaaccaaggtggagatcaagagaacagtggctgctccttccgtgtttatctttcctccttctgacgaatgtctgaaatccggaacagcttcagtcgtctgcctgctgaacaacttctaccctagagaggccaaagtccagtggaaagtggataacgctctgcagtccggaaattctcaggaatccgtgaccgagcaggattctaaggattctacctactccctgtcttctaccctgacactgtctaaggccgattacgagaagcacaaggtgtacgcttgcgaagtgacacatcagggactgtcttctccagtgaccaagtccttcaacagaggcgagtgt
配列番号:33
Gln-Lys(Ac)-Tyr-Gln-Pro-Leu-Asp-Glu-Lys(Ac)-Asp-Lys-Thr-Leu-Tyr-Asp-Gln-Phe-Met-Leu-Gln-Gln-Gly-CONH2
Claims (20)
- 配列番号：1のアミノ酸配列の重鎖と、配列番号:7のアミノ酸配列の軽鎖とを含むか、配列番号：9のアミノ酸配列の重鎖と、配列番号:13のアミノ酸配列の軽鎖とを含むか、又は、配列番号：17のアミノ酸配列の重鎖と、配列番号:21のアミノ酸配列の軽鎖とを含む、抗体又はその抗原結合断片であって、前記抗原結合断片が、Fab断片、Fab’断片又はF(ab’)2断片である、抗体又はその抗原結合断片。
- 前記Fab断片の重鎖アミノ酸配列が配列番号：25の配列であり、前記Fab断片の軽鎖アミノ酸配列が配列番号:29の配列である、請求項１に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- 請求項１又は２に記載の抗体又はその抗原結合断片を含む、二重特異性抗体又は融合タンパク質。
- 請求項１又は２に記載の抗体又はその抗原結合断片を含む、コンジュゲート。
- ポリエチレングリコール、細胞障害性薬剤、活性ペプチド、ナノボディ、単一ドメイン抗体、Fab断片、Fab’断片、scFv、低分子薬、化学療法剤又は放射線療法剤からなる群から選ばれる別の機能性分子を、さらに含む、請求項４に記載のコンジュゲート。
- 前記活性ペプチドがAng2中和活性ペプチドである、請求項５に記載のコンジュゲート。
- 前記活性ペプチドが配列番号:３３のAng2中和活性ペプチドである、請求項５に記載のコンジュゲート。
- 前記Ang2中和活性ペプチドが、リンカーを介して抗体にコンジュゲートしており、前記抗体が、配列番号：1のアミノ酸配列の重鎖と、配列番号:7のアミノ酸配列の軽鎖とを含む、請求項６又は７に記載のコンジュゲート。
- 前記リンカーがアミド結合を有し、具体的には下記式I
で示される構造を有するホルムアミド-PEG4-NHSである、請求項８に記載のコンジュゲート。 - 前記ポリエチレングリコールが、モノメトキシポリエチレングリコールである、請求項５に記載のコンジュゲート。
- 前記ポリエチレングリコールが、mPEG2000、mPEG5000、又はmPEG10000である、請求項５に記載のコンジュゲート。
- 前記ポリエチレングリコールがさらに薬物分子とコンジュゲートしている、請求項５～１１のいずれか1項に記載のコンジュゲート。
- 前記ポリエチレングリコールが直鎖状二官能基化ポリエチレングリコール、直鎖状ヘテロ官能基化ポリエチレングリコール又はMulti-Arm官能基化PEGである、請求項５～１２のいずれか1項に記載のコンジュゲート。
- 請求項１又は２に記載の抗体又はその抗原結合断片、請求項３に記載の二重特異性抗体又は融合タンパク質、又は請求項４～１３のいずれか1項に記載のコンジュゲートを含み、任意選択的に、薬学的に許容可能な担体を含む、医薬組成物。
- 請求項１又は２に記載の抗体又はその抗原結合断片、請求項３に記載の二重特異性抗体又は融合タンパク質、請求項４～１３のいずれか1項に記載のコンジュゲート、又は請求項１４に記載の医薬組成物の、癌を治療するための医薬品又はキットの製造における、使用。
- 前記癌が、非小細胞肺癌、結腸直腸癌、乳がん、悪性神経膠腫、又は腎細胞がんである、請求項１５に記載の使用。
- 前記癌が、進行期、転移性又は再発性非扁平上皮非小細胞肺がん又は転移性結腸直腸癌である、請求項１５に記載の使用。
- 請求項１又は２に記載の抗体又はその抗原結合断片、請求項３に記載の二重特異性抗体又は融合タンパク質、請求項４～１３のいずれか1項に記載のコンジュゲート、又は請求項１４に記載の医薬組成物を含むキット。
- さらに、前記抗体又はその抗原結合断片と併用する薬剤を含む、請求項１８に記載キット。
- 前記薬剤が、カルボプラチン又はシスプラチンである、請求項１９に記載キット。
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