JP7132123B2 - 原発性シェーグレン症候群の治療のためのｐｉ３ｋの活性阻害剤または機能阻害剤の使用 - Google Patents
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Description
本発明は、原発性シェーグレン症候群の治療のための、ＰＩ３Ｋデルタアイソフォームに対する阻害作用を有するホスファチジルイノシトール３－キナーゼファミリーの活性阻害剤または機能阻害剤（以下ＰＩ３Ｋ阻害剤）ならびに／または薬学的に許容されるその塩および／もしくはその溶媒和物の使用に関する。より詳細には、本発明は、原発性シェーグレン症候群の治療のための、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩の使用に関する。
シェーグレン症候群は、「原発性」または「続発性」のいずれかに分類される。原発性シェーグレン症候群（ｐＳＳ）は、他に基礎疾患としてリウマチ性障害を伴わずに発症するが、続発性シェーグレン症候群は、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、関節リウマチ（ＲＡ）、または強皮症など、他に基礎疾患としてリウマチ性疾患を伴う。原発性シェーグレン症候群は、体の免疫系が、例えば、唾液腺および涙腺など、体液を分泌する腺を攻撃する慢性自己免疫疾患である。唾液線および涙腺に対する免疫介在性の攻撃は、口内乾燥およびドライアイの発症に繋がる。ｐＳＳの他の症状または状態として、皮膚乾燥、時に完全に消耗した状態に達する疲労および倦怠感、筋肉痛、関節痛、関節の硬直および腫脹、血管炎、集中困難が挙げられる。現時点で、原発性シェーグレン症候群に対する既知の治療法はないが、治療は、その症状の管理に役立ち得る。非ステロイド性抗炎症薬は、筋骨格症状を治療するために使用されることがあるが、副腎皮質ステロイド剤、免疫抑制剤、および疾患修飾性抗リウマチ薬（ＤＭＡＲＤ）が処方されることもあり、その大半は有害な副作用を有する。このため、原発性シェーグレン症候群の治療におけるさらなる治療的進歩が必要とされている（Holdgate N. F1000Research 2016, 5(F1000 Faculty Rev):1412）。
ＰＩ３Ｋデルタ阻害剤である１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩は、原発性シェーグレン症候群の治療に好適であることが見出されている。
１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩は、原発性シェーグレン症候群の治療に好適であることが見出された。
１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オン
リン酸化Ａｋｔ（ｐＡｋｔ）は、ＰＩ３Ｋデルタ活性化の下流エフェクターである。１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩は、ＰＩ３Ｋデルタアイソフォームに対する選択性を持つＰＩ３Ｋ阻害剤である（国際公開第２０１２／００４２９９号パンフレット）。本発明者らは、ｐＳＳ患者ではＡｋｔ経路が活性化されていると仮説を立て、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容される塩は、ｐＳＳの治療において有用であることが見出された。
１）慢性的なＢ細胞活動亢進は、ｐＳＳにおける一貫したかつ顕著な免疫調節異常である（Hansen A et al, Arthritis Research & Therapy 2007; 9; 218）。１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩は、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏにおいて、例えば、ｐＡｋｔ、ＣＤ６９、ＣＤ８６、ＡＰＣ機能、サイトカイン産生、および抗体産生など、種々のＢ細胞機能を直接阻害する。
２）ｐＳＳ患者は、接着分子、サイトカイン、およびケモカインの特有なプロファイルを示すことが見出されており、これには、ｐＳＳの病態形成に関与するＢ細胞誘引性ケモカインであるＣＸＣＬ１３（ＢＣＡ－１、ＢｌＣ）の顕著な過剰発現を含まれるが、ＣＸＣＬ１０（ＩＰ－１０）およびＣＣＬ４（ＭＩＰ－１ｂｅｔａ）の顕著な過剰発現も含まれる（Hansen A et al, Arthritis Research & Therapy 2007; 9; 218, Lee, Y. J. et al, Rheumatology 2010; 49(9);1747-1752, Kramer JM et al, J Leukoc Biol. 2013; 94(5);1079-1089, Nishikawa A et al Arthritis Research & Therapy 2016;18;106）。１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩は、ＣｐＧまたは抗ＩｇＭによって刺激された健常者から得られたＰＢＭＣの上清中のＣＸＣＬ１３（ＢＣＡ－１、ＢＬＣ）を阻害するが、ＣＸＣＬ１０（ＩＰ－１０）およびＣＣＬ４（ＭＩＰ－１ｂｅｔａ）も阻害する。
３）ｐＳＳの特徴的な特性として、胚中心（ＧＣ）様構造を持つ異所性リンパ組織の形成が挙げられる。健常者において、ＧＣは、Ｔ細胞依存性免疫応答の際の二次リンパ器官である一次Ｂ細胞濾胞から形成される（Hansen A et al, Arthritis Research & Therapy 2007; 9; 218）。
組織学的に、ＧＣ形成の阻害は、ＦＡＣＳ分析によって測定される辺縁帯Ｂ細胞（ＭＺ Ｂ細胞）および濾胞ヘルパーＴ細胞（ＴＦＨ）の全般的な減少を伴う。これらの細胞は、ｐＳＳの病態生理学に関与すると考えられる。１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩は、ＧＣ様構造、ＭＺ Ｂ細胞、およびＴＦＨを減少させる。
１）慢性的なＢ細胞活動亢進は、ｐＳＳにおける一貫したかつ顕著な免疫調節異常である（Hansen A et al, Arthritis Research & Therapy 2007; 9; 218）。１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩は、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏにおいて、例えば、ｐＡｋｔ、ＣＤ６９、ＣＤ８６、ＡＰＣ機能、サイトカイン産生、および抗体産生など、種々のＢ細胞機能を直接阻害する。
２）ｐＳＳ患者は、接着分子、サイトカイン、およびケモカインの特有なプロファイルを示すことが見出されており、これには、ｐＳＳの病態形成に関与するＢ細胞誘引性ケモカインであるＣＸＣＬ１３（ＢＣＡ－１、ＢｌＣ）の顕著な過剰発現を含まれるが、ＣＸＣＬ１０（ＩＰ－１０）およびＣＣＬ４（ＭＩＰ－１ｂｅｔａ）の顕著な過剰発現も含まれる（Hansen A et al, Arthritis Research & Therapy 2007; 9; 218, Lee, Y. J. et al, Rheumatology 2010; 49(9);1747-1752, Kramer JM et al, J Leukoc Biol. 2013; 94(5);1079-1089, Nishikawa A et al Arthritis Research & Therapy 2016;18;106）。１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩は、ＣｐＧまたは抗ＩｇＭによって刺激された健常者から得られたＰＢＭＣの上清中のＣＸＣＬ１３（ＢＣＡ－１、ＢＬＣ）を阻害するが、ＣＸＣＬ１０（ＩＰ－１０）およびＣＣＬ４（ＭＩＰ－１ｂｅｔａ）も阻害する。
３）ｐＳＳの特徴的な特性として、胚中心（ＧＣ）様構造を持つ異所性リンパ組織の形成が挙げられる。健常者において、ＧＣは、Ｔ細胞依存性免疫応答の際の二次リンパ器官である一次Ｂ細胞濾胞から形成される（Hansen A et al, Arthritis Research & Therapy 2007; 9; 218）。
組織学的に、ＧＣ形成の阻害は、ＦＡＣＳ分析によって測定される辺縁帯Ｂ細胞（ＭＺ Ｂ細胞）および濾胞ヘルパーＴ細胞（ＴＦＨ）の全般的な減少を伴う。これらの細胞は、ｐＳＳの病態生理学に関与すると考えられる。１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩は、ＧＣ様構造、ＭＺ Ｂ細胞、およびＴＦＨを減少させる。
一実施形態において、本発明は、原発性シェーグレン症候群の治療に使用するための１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を提供する。
別の実施形態において、本発明は、原発性シェーグレン症候群の治療法であって、このような治療を必要としている対象、例えば、ヒト対象に１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を治療有効量で投与することを含む、治療法を提供する。
別の実施形態において、本発明は、原発性シェーグレン症候群の治療のための薬剤の製造のための、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩の使用を提供する。
別の実施形態において、本発明は、原発性シェーグレン症候群の治療のための、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩の使用を提供する。
好ましいのは、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンがリン酸塩の形態である、上記の実施形態のいずれかである。
好ましい実施形態において、本発明は、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩に関する。
本明細書で用いる場合、「対象」という用語は、動物を指す。通常、該動物は哺乳動物である。また、対象は、例えば、霊長類（例えば、ヒト、男性または女性）、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、イヌ、ネコ、ウサギ、ラット、マウス、魚類、鳥類などを指す。特定の実施形態において、該対象は霊長類である。好ましい実施形態において、該対象はヒトである。
本明細書で用いる場合、「阻害する（inhibit）」、「阻害（inhibition）」、または「阻害すること（inhibiting）」という用語は、所定の状態、症状、もしくは障害、または疾患の退行もしくは抑制、または生物学的活性もしくは生物学的過程のベースライン活性における顕著な低下を指す。
本明細書で用いる場合、どの疾患または障害に対しても「治療する（treat）」、「治療すること（treating）」、または「治療（treatment）」という用語は、一実施形態において、該疾患または障害を改善すること（すなわち、該疾患の発症またはその臨床症状の少なくとも１つの進行の遅延、または停止、または退行）を指す。別の実施形態において、「治療する（treat）」、「治療すること（treating）」、または「治療（treatment）」という用語は、該患者によって識別できないであろうものを含む、少なくとも１つの身体的パラメータの軽減または改善を指す。さらに別の実施形態において、「治療する（treat）」、「治療すること（treating）」、または「治療（treatment）」は、該疾患または障害を、身体的に（例えば、識別できる症状の安定化）、生理的に（例えば、身体的パラメータの安定化）、またはその両方で調整することを指す。さらに別の実施形態において、「治療する（treat）」、「治療すること（treating）」、または「治療（treatment）」は、該疾患または障害の発症、または発現、または進行の予防または遅延を指す。
本明細書で用いる場合、このような対象が、生物学的に、医学的に、または生活の質において、このような治療から利益を得る場合、対象は、治療を「必要としている」とする。
本明細書で用いる場合、対象化合物を「投与（administration）」または「投与すること（administering）」という用語は、本発明の化合物およびそのプロドラッグを、治療を必要としている対象に提供することを意味する。１種または複数の追加の治療薬との「組合せ」投与は、任意の順序および任意の投与経路での、同時（併用）および継続的投与を含む。
組合せ相手の他の治療薬として、例えば、国際公開第２０１２／０６５９５０号パンフレットに開示されているようなＣＤ４０に結合する抗体；ＡＭＧ５５７などの誘導性Ｔ細胞共刺激分子；国際公開第２０１０／００７０８２号パンフレットに開示されているようなＢ細胞活性化因子受容体（ＢＡＦＦ－Ｒ）を標的とする抗体；低用量ＩＬ－２、リツキシマブなどの抗ＣＤ２０抗体；ベリムマブなどのＢ細胞活性化因子（ＢＡＦＦ）を阻害する抗体；トシリズマブなどのインターロイキン－６受容体（ＩＬ－６Ｒ）に対する抗体；アバタセプト；もしくはベラタセプト；さらにシクロスポリン点眼薬；メトトレキサート、スルファサラジン、レフルノミド、ハイドロキシクロロキン、および金塩などの疾患修飾性抗リウマチ薬（ＤＭＡＲＤ）；インフリキシマブおよびエタネルセプトなどの腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）－ａ阻害剤；イブプロフェンなどの非ステロイド系抗炎症薬；プレドニゾンなどの全身性副腎皮質ステロイド剤；またはアザチオプリン、ミコフェノール酸モフェチル、およびシクロホスファミドなどの他の免疫抑制剤が挙げられる。
組合せ相手の他の薬剤として、例えば、分泌促進剤；セビメリンおよびピロカルピンなどのムスカリン受容体作動薬；ガバペンチンもしくはプレガバリン；人工涙液；人工唾液；または膣エストロゲンクリームが挙げられる。
１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩および薬学的に許容される担体を含む医薬組成物。好適な薬学的に許容される担体は、国際公開第２０１２／００４２９９号パンフレットに記載されている。好ましい投与経路は経口である。
一実施形態において、本発明は、治療有効量の１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩および１種または複数の治療活性剤を含む組合せ物、特に医薬組合せ物を提供する。
一実施形態において、本発明は、治療有効量の１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩および１種または複数の治療活性剤を含む組合せ物、特に医薬組合せ物を提供する。
別の実施形態において、本発明は、ｐＳＳの治療の際、同時に、個別に、または連続して使用する組合せ製剤として、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容される塩および少なくとも１種の他の治療薬を含む製品を提供する。
別の実施形態において、本発明は、ｐＳＳの治療の際、同時に、個別に、または連続して使用する組合せ製剤として、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩および少なくとも１種の他の治療薬を含む製品を提供する。
ｐＳＳの治療用の組合せ製剤として提供される製品は、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩および前記他の治療薬を同じ医薬組成物中に一緒に含む、または式（Ｉ）の化合物および前記他の治療薬を個別の剤形、例えば、キットの形態で含む組成物を含む。
ｐＳＳの治療用の組合せ製剤として提供される製品は、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩および前記他の治療薬を同じ医薬組成物中に一緒に含む、または式（Ｉ）の化合物および前記他の治療薬を個別の剤形、例えば、キットの形態で含む組成物を含む。
したがって、本発明は、ｐＳＳの治療に使用するための１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩であって、別の治療薬と共に投与されるように調製される、薬剤を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療のための別の治療薬の使用であって、該薬剤が、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩と共に投与される、使用を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療法に使用するための１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩であって、別の治療薬と共に投与されるように調製される１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療法に使用するための別の治療薬であって、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩と共に投与されるように調製される、治療薬を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療法に使用するための１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩であって、別の治療薬と共に投与される１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療法に使用するための別の治療薬であって、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩と共に投与される、治療薬を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療のための、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩の使用であって、前記患者に、あらかじめ（例えば、２４時間以内）別の治療薬が投与されている、使用を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療のための別の治療薬の使用であって、前記患者に、あらかじめ（例えば、２４時間以内）１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩が投与されている、使用を提供する。
本発明は、ｐＳＳの治療に使用するための１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩であって、別の治療薬と共に投与されるように調製されるものを提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療のための別の治療薬の使用であって、該薬剤が、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩と共に投与される、使用を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療法に使用するための１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩であって、別の治療薬と共に投与されるように調製される１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療法に使用するための別の治療薬であって、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩と共に投与されるように調製される、治療薬を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療法に使用するための１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩であって、別の治療薬と共に投与される１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療法に使用するための別の治療薬であって、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩と共に投与される、治療薬を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療のための、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩の使用であって、前記患者に、あらかじめ（例えば、２４時間以内）別の治療薬が投与されている、使用を提供する。
さらに、本発明は、ｐＳＳの治療のための別の治療薬の使用であって、前記患者に、あらかじめ（例えば、２４時間以内）１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩が投与されている、使用を提供する。
一実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約５０～７０ｋｇのヒト対象に対して約１０～１００ｍｇの有効成分を単位投与量とし得る。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約４０～２００ｋｇのヒト対象に対して約１０～１００ｍｇの有効成分を単位投与量とし得る。
一実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約５０～７０ｋｇのヒト対象に対して約１０～１００ｍｇの有効成分を単位投与量とし得る。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約４０～２００ｋｇのヒト対象に対して約１０～１００ｍｇの有効成分を単位投与量とし得る。
化合物、前記医薬組成物、またはその組合せ物の治療有効投与量は、体重、年齢、および個々の状態、または治療対象の障害または疾患の重症度によって異なる。通常の技術を有する医師または臨床医であれば、該障害または疾患の進行を予防、抑制、または阻止するために必要な各活性成分の有効量を速やかに決定し得る。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約５０～７０ｋｇのヒト対象に対して約７０ｍｇの有効成分を単位投与量とし得る。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約４０～２００ｋｇのヒト対象に対して約７０ｍｇの有効成分を単位投与量とし得る。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約５０～７０ｋｇのヒト対象に対して約７０ｍｇの有効成分を単位投与量とし得る。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約４０～２００ｋｇのヒト対象に対して約７０ｍｇの有効成分を単位投与量とし得る。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約５０～７０ｋｇのヒト対象に対して約７０ｍｇの有効成分で１日２回投与される。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約４０～２００ｋｇのヒト対象に対して約７０ｍｇの有効成分で１日２回投与される。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約５０～７０ｋｇのヒト対象に対して約７０ｍｇの有効成分で１日２回投与される。
別の実施形態において、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩を含む、ｐＳＳの治療のための医薬組成物または組合せ物は、約４０～２００ｋｇのヒト対象に対して約７０ｍｇの有効成分で１日２回投与される。
実験の詳細
実験の詳細
出発物質の製造について特に記載のない限り、前記化合物は公知のものであるか、当技術分野において公知の方法または下記のとおりの方法に準じで調製されてもよい。
下記実施例は、限定することなく、本発明を例示するものである。
希釈した全血中のヒトＢ細胞活性化
方法．細胞表面Ｂ細胞受容体刺激時のＢ細胞活性化に対する作用を評価するため、９０％ヒト全血中のＢリンパ球を、化合物の量を漸増させながら、抗ＩｇＭ抗体のみ（ａＩｇＭ）を加え、またはＩＬ－４（ａＩｇＭ／ＩＬ－４）と組み合わせて加えて培養することによって刺激した。全血内の刺激は、生理的状態を密接に反映し、血漿タンパクと結合する可能性が考慮される。標的ＰＩ３Ｋに近位の経路を介した早期の活性化は、Ａｋｔリン酸化の阻害として確認された。
方法．細胞表面Ｂ細胞受容体刺激時のＢ細胞活性化に対する作用を評価するため、９０％ヒト全血中のＢリンパ球を、化合物の量を漸増させながら、抗ＩｇＭ抗体のみ（ａＩｇＭ）を加え、またはＩＬ－４（ａＩｇＭ／ＩＬ－４）と組み合わせて加えて培養することによって刺激した。全血内の刺激は、生理的状態を密接に反映し、血漿タンパクと結合する可能性が考慮される。標的ＰＩ３Ｋに近位の経路を介した早期の活性化は、Ａｋｔリン酸化の阻害として確認された。
刺激時のＢ細胞表面活性化マーカーに対する化合物Ａのｉｎ ｖｉｔｒｏ作用を評価するため、ヘパリン化全血１８０．５μＬを、あらかじめ希釈された化合物Ａ９．５μＬと共に９６ウェル丸底マイクロタイタープレート（Ｎｕｎｃ）にスパイクし、濃度範囲が５０～０．００８μＭの２倍希釈系列を得た。対照ウェルをＤＭＳＯで前処理し、最終濃度が０．５％のＤＭＳＯを得た。培養液を２組ずつ用意し、プレートシェーカー（３０秒、速度９００）で撹拌して十分に混合させ、上下にピペッティングし、再度プレートシェーカーで撹拌した。培養液を３７℃、５％ＣＯ２下で１時間培養した。次に、記載されている刺激溶液１０μＬを加え、上記のとおり混合し、培養液を３７℃、５％ＣＯ２下でさらに２４時間培養した。
フローサイトメトリー分析
培養後、該培養液に、２５ｍＭ ＥＤＴＡ溶液、ｐＨ７．４を１５μＬ／ウェルで加え、細胞凝集塊を崩した。試料を、プレートシェーカー（速度９００）で１５分間撹拌して十分に混合した。細胞に蛍光標識抗体の混合液２５μＬを加えて染色し、プレートシェーカー（３０秒間、速度９００）で混合させ、暗所、室温にて３０分間培養した。ＦＡＣＳ分析において、試料を、抗ｈｕＣＤ３－ＡＰＣ－Ｃｙ７（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ［ＢＤ］＃５５７８３２）で染色することによってＴ細胞をゲーティングし、また抗ｈｕＣＤ１９－ＡＰＣ（ＢＤ＃５５５４１５）で染色することによってＢ細胞をゲーティングした。さらに、試料を、結果の項に記載されている下記の抗体の組合せで染色した：抗ｈｕＣＤ６９－ＰＥ－Ｃｙ７（ＢＤ＃５５７７４５）および抗ｈｕＣＤ８６－ＰＥ－Ｃｙ５（ＢＤ＃５５５６５９）。
培養後、該培養液に、２５ｍＭ ＥＤＴＡ溶液、ｐＨ７．４を１５μＬ／ウェルで加え、細胞凝集塊を崩した。試料を、プレートシェーカー（速度９００）で１５分間撹拌して十分に混合した。細胞に蛍光標識抗体の混合液２５μＬを加えて染色し、プレートシェーカー（３０秒間、速度９００）で混合させ、暗所、室温にて３０分間培養した。ＦＡＣＳ分析において、試料を、抗ｈｕＣＤ３－ＡＰＣ－Ｃｙ７（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ［ＢＤ］＃５５７８３２）で染色することによってＴ細胞をゲーティングし、また抗ｈｕＣＤ１９－ＡＰＣ（ＢＤ＃５５５４１５）で染色することによってＢ細胞をゲーティングした。さらに、試料を、結果の項に記載されている下記の抗体の組合せで染色した：抗ｈｕＣＤ６９－ＰＥ－Ｃｙ７（ＢＤ＃５５７７４５）および抗ｈｕＣＤ８６－ＰＥ－Ｃｙ５（ＢＤ＃５５５６５９）。
染色後、試料を、２ｍＬ／ウェルの１×ＢＤ Ｌｙｓｉｎｇ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（ＢＤ＃３４９２０２）を含有する９６ディープウェルＶ底マイクロタイタープレート（Ｃｏｒｎｉｎｇ＃３９６０９６）に移した。プレートを上下にピペッティングすることによって混合し、暗所、室温にて１０分間培養した。プレートを４５０ｘｇで５分間遠心分離し、その上清を除去後、ＣｅｌｌＷＡＳＨ（ＢＤ＃３４９５２４）２ｍＬを各ウェルに加えた。プレートを４５０ｘｇで５分間再度遠心分離し、その上清を除去し、細胞ペレットをＣｅｌｌＷＡＳＨ ０．５ｍＬ中に再懸濁した。
データは、ＢＤ ＦＡＣＳＤｉｖａソフトウェア（バージョン４．１．２）を用いたＢＤ ＬＳＲＩＩフローサイトメーターによって得られた。サイズおよび粒度に従ったＦＳＣ／ＳＳＣドットプロットにおいてリンパ球をゲーティングし、さらにＣＤ１９、ＣＤ３、および活性化マーカーの発現を解析した。データは、ＣＤ１９＋またはＣＤ３＋集団中の活性化マーカーに対して陽性染色された細胞の百分率として、ドットブロットから算出された。
統計的評価
信号雑音比（Ｓ／Ｎ）は、活性化された血液試料からのマーカー陽性Ｂ細胞またはＴ細胞の百分率を、活性化されていない試料からのマーカー陽性Ｂ細胞またはＴ細胞の百分率で除することによって算出された。
信号雑音比（Ｓ／Ｎ）は、活性化された血液試料からのマーカー陽性Ｂ細胞またはＴ細胞の百分率を、活性化されていない試料からのマーカー陽性Ｂ細胞またはＴ細胞の百分率で除することによって算出された。
薬剤に曝露させた後のＢ細胞またはＴ細胞活性化の阻害率は、下記の式によって算出された：
刺激の際の細胞内経路活性化マーカーであるｐＡｋｔに対する化合物Ａのｉｎ ｖｉｔｒｏ作用を評価するため、ヘパリン化血液１８０μＬを、あらかじめ希釈された化合物Ａ１０μＬと共に５ｍＬ丸底チューブ（ＢＤ、ｃａｔ＃３５２０６３）に加え、濃度範囲が１６６６６ｎＭ～０．８ｎＭの希釈液を得た。対照試料をＤＭＳＯで前処理し、最終濃度が０．１７％のＤＭＳＯ溶液を得た。試料を２組ずつ用意し、ボルテックス（５秒間３回、速度１８００）で撹拌して十分に混合させた。試料を水浴中３７℃で１．５時間培養した（閉蓋）。次に、体積１０μＬの刺激溶液を加え、混合し（５秒間３回、速度１８００）、水浴中３７℃で２０分間培養した。
細胞溶解、固定、および透過処理
培養後、２ｍＬのあらかじめ加温した（水浴中３７℃）ＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｌｙｓｅ／Ｆｉｘ ｂｕｆｆｅｒ（ＢＤ、ｃａｔ＃５５８０４９）を各チューブに加え、ボルテックス（vortexer）で３秒間振盪し、水浴中３７℃で２０分間培養した。試料を、４００ｇで５分間遠心分離した。遠心分離後、２ｍＬのＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ Ｉ（ＢＤ、ｃａｔ＃５５７８８５）を各チューブに加え、暗所、室温（ＲＴ）にて１０分間培養した。４００ｇで５分間遠心分離した後、ペレットを２ｍＬのＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ Ｉで洗浄し、再度４００ｇで５分間遠心分離した。上清を除去し、試料を下記のとおり染色した。
培養後、２ｍＬのあらかじめ加温した（水浴中３７℃）ＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｌｙｓｅ／Ｆｉｘ ｂｕｆｆｅｒ（ＢＤ、ｃａｔ＃５５８０４９）を各チューブに加え、ボルテックス（vortexer）で３秒間振盪し、水浴中３７℃で２０分間培養した。試料を、４００ｇで５分間遠心分離した。遠心分離後、２ｍＬのＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ Ｉ（ＢＤ、ｃａｔ＃５５７８８５）を各チューブに加え、暗所、室温（ＲＴ）にて１０分間培養した。４００ｇで５分間遠心分離した後、ペレットを２ｍＬのＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ Ｉで洗浄し、再度４００ｇで５分間遠心分離した。上清を除去し、試料を下記のとおり染色した。
フローサイトメトリー分析
ｐＡｋｔの分析のため、処理後のヒト血液試料を、抗ｈｕＣＤ２０（Ａｌｅｘａ４８８標識抗ｈｕＣＤ２０、ＢＤ ｃａｔ＃５５８０５６）で染色することによって、サイトメトリー分析においてＢ細胞をゲーティングした。さらに、試料を、Ａｌｅｘａ６４７コンジュゲート抗ヒトリン酸化Ａｋｔ（Ｓｅｒ４７３；ＢＤ、ｃａｔ＃５６０３４３）で染色した。
ｐＡｋｔの分析のため、処理後のヒト血液試料を、抗ｈｕＣＤ２０（Ａｌｅｘａ４８８標識抗ｈｕＣＤ２０、ＢＤ ｃａｔ＃５５８０５６）で染色することによって、サイトメトリー分析においてＢ細胞をゲーティングした。さらに、試料を、Ａｌｅｘａ６４７コンジュゲート抗ヒトリン酸化Ａｋｔ（Ｓｅｒ４７３；ＢＤ、ｃａｔ＃５６０３４３）で染色した。
染色工程は、ＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ Ｉ中、暗所、ＲＴにて３０分間行われた。培養後、試料を、２ｍＬのＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ Ｉで洗浄し、４００ｇで５分間遠心分離し、ペレットを３００μＬのＢＤ Ｓｔａｉｎ Ｂｕｆｆｅｒ（ＢＤ、ｃａｔ＃５５４６５６）に再懸濁した。データが、ＤＩＶＡ（バージョン６．１．２）ソフトウェアを用いたＬＳＲＩＩフローサイトメーター（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）によって取得されるまで、試料を氷冷した。サイズおよび粒度に従ったＦＳＣ／ＳＳＣドットブロットにおいてリンパ球をゲーティングし、さらにＣＤ２０の発現およびＡｋｔのリン酸化を解析した。データは、ＣＤ２０＋集団中のＡｋｔ－リン酸化に対して陽性染色された細胞の百分率として、ドットブロットまたはヒストグラムから算出された。上述のとおり、表面活性化マーカーに対する統計的評価を行った。
ＢＣＲ刺激後のマウスＢ細胞の増殖。
方法．（Julius et al 1984）に記載されるとおり、化合物の量を漸増させながら、マウスＢ細胞を抗ＩｇＭ抗体によってＢＣＲを介して刺激し、放射性３Ｈ－チミジンの取込みによって増殖の評価を行った。
結果．（表２）。
方法．（Julius et al 1984）に記載されるとおり、化合物の量を漸増させながら、マウスＢ細胞を抗ＩｇＭ抗体によってＢＣＲを介して刺激し、放射性３Ｈ－チミジンの取込みによって増殖の評価を行った。
結果．（表２）。
ｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるＬＰＳに誘導されたマウスＢ細胞からの抗体産生。
方法．若干の改良を加えたＭｏｏｎ（Moon et al 1989）を応用した手順に従い、ＬＰＳに誘導されたＢ細胞機能について検討した：化合物の量を漸増させながら、Ｂａｌｂ／ｃ ｎｕ／ｎｕマウスの脾臓Ｂ細胞を、ｍＩＬ－４、ｍＩＬ－５、およびＬＰＳと共に培養した。最終濃度は、０．５×１０５脾細胞／ウェル、５００Ｕ／ｍＬ ｍＩＬ－４、５００Ｕ／ｍＬ ｍＩＬ－５、および５０μｇ／ｍＬ ＬＰＳであった。６日間の培養後、抗体産生に関して、上清をＥＬＩＳＡによって分析した。
結果．（表２）。
方法．若干の改良を加えたＭｏｏｎ（Moon et al 1989）を応用した手順に従い、ＬＰＳに誘導されたＢ細胞機能について検討した：化合物の量を漸増させながら、Ｂａｌｂ／ｃ ｎｕ／ｎｕマウスの脾臓Ｂ細胞を、ｍＩＬ－４、ｍＩＬ－５、およびＬＰＳと共に培養した。最終濃度は、０．５×１０５脾細胞／ウェル、５００Ｕ／ｍＬ ｍＩＬ－４、５００Ｕ／ｍＬ ｍＩＬ－５、および５０μｇ／ｍＬ ＬＰＳであった。６日間の培養後、抗体産生に関して、上清をＥＬＩＳＡによって分析した。
結果．（表２）。
マウスＢＣＲ遺伝子組換えＢ細胞の抗原提示およびサイトカイン産生。
方法．ＭＤ４ ＨＥＬ ＢｃＲ ＴｇマウスからのＣＤ１９＋脾臓Ｂ細胞の精製
ＭＤ４ ＨＥＬ ＢｃＲ遺伝子組換えＢ１０．ＢＲ（ＭＤ４ Ｂ１０．ＢＲ）マウスは、Ｊｏｓｅ Ｍｏｒｅｎｏ教授（Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｕｎｉｔ ｏｎ Ａｕｔｏｉｍｍｕｎｅ Ｄｉｓｅａｓｅｓ、Ｃｅｎｔｒｏ Ｍｅｄｉｃｏ Ｎａｃｉｏｎａｌ Ｓｉｇｌｏ ＸＸＩ、Ｍｅｘｉｃｏ）からの寄贈であった。
過量のイソフルラン曝露によって殺処分した後、ＭＤ４ Ｂ１０．ＢＲマウスおよび非遺伝子組換えの同腹対照であるＢ１０．ＢＲマウスから脾臓を単離した。単離した脾臓を、ＲＰＭＩ１６４０（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、＃３１８７０）に懸濁し、ＧｅｎｔｌｅＭＡＣＳ Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｏｒ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ）によって解離させ、Ｃｅｌｌ Ｓｔｒａｉｎｅｒ（ＢＤ Ｆａｌｃｏｎ、７０μｍメッシュ、＃３５２３５０）を用いて濾過した。赤血球を除去するため、単一脾臓細胞懸濁液を、さらに溶解緩衝液（Ｓｉｇｍａ、＃Ｒ７７５７）で処理し、ＰＢＳで２回洗浄し、１０％ＦＢＳ、１００Ｕ／ｍＬペニシリン、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン、および５０μＭ ２－メルカプトエタノール（２－ＭＥ）を添加したＲＰＭＩ－１６４０からなる完全培養液に再懸濁した。さらに、提供された製造業者の指示に従って磁気細胞分離装置、ＡｕｔｏＭＡＣＳ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ）を使用し、非Ｂ細胞を除去することによって脾臓Ｂ細胞の精製を行った。要約すると、０．５％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）および２ｍＭ ＥＤＴＡを添加したＰＢＳであるＭＡＣＳ緩衝液４０μＬに懸濁した１×１０７個の脾臓細胞を、ＣＤ４３（Ｌｙ４８、ラットＩｇＧ２ａ）、ＣＤ４（Ｌ３Ｔ４、ラットＩｇＧ２ｂ）、およびＴｅｒ－１１９（ラットＩｇＧ２ｂ）に対するモノクローナル抗体からなるビオチン－抗体カクテル１０μＬと共に氷冷下で１５分間培養した。ビオチン－抗体カクテルで処理した後、脾臓細胞を、さらに抗ビオチン抗体３０μＬと共に氷冷下で１５分間培養し、ＭＡＣＳ緩衝液１ｍＬに再懸濁してＡｕｔｏＭＡＣＳを介したＢ細胞の精製に用いた。ＡｕｔｏＭＡＣＳを使用した精製において、「Ｄｅｐｌｅｔｅ」プログラムを選択し、ｏｕｔｌｅｔ ｐｏｒｔ ｎｅｇ１からネガティブフラクションをＢ細胞に富んだ画分として採取した。この純度は、ＦＡＣＳ分析で分離された画分中のＣＤ１９＋細胞の割合によって決定され、９５％を上回った。
方法．ＭＤ４ ＨＥＬ ＢｃＲ ＴｇマウスからのＣＤ１９＋脾臓Ｂ細胞の精製
ＭＤ４ ＨＥＬ ＢｃＲ遺伝子組換えＢ１０．ＢＲ（ＭＤ４ Ｂ１０．ＢＲ）マウスは、Ｊｏｓｅ Ｍｏｒｅｎｏ教授（Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｕｎｉｔ ｏｎ Ａｕｔｏｉｍｍｕｎｅ Ｄｉｓｅａｓｅｓ、Ｃｅｎｔｒｏ Ｍｅｄｉｃｏ Ｎａｃｉｏｎａｌ Ｓｉｇｌｏ ＸＸＩ、Ｍｅｘｉｃｏ）からの寄贈であった。
過量のイソフルラン曝露によって殺処分した後、ＭＤ４ Ｂ１０．ＢＲマウスおよび非遺伝子組換えの同腹対照であるＢ１０．ＢＲマウスから脾臓を単離した。単離した脾臓を、ＲＰＭＩ１６４０（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、＃３１８７０）に懸濁し、ＧｅｎｔｌｅＭＡＣＳ Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｏｒ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ）によって解離させ、Ｃｅｌｌ Ｓｔｒａｉｎｅｒ（ＢＤ Ｆａｌｃｏｎ、７０μｍメッシュ、＃３５２３５０）を用いて濾過した。赤血球を除去するため、単一脾臓細胞懸濁液を、さらに溶解緩衝液（Ｓｉｇｍａ、＃Ｒ７７５７）で処理し、ＰＢＳで２回洗浄し、１０％ＦＢＳ、１００Ｕ／ｍＬペニシリン、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン、および５０μＭ ２－メルカプトエタノール（２－ＭＥ）を添加したＲＰＭＩ－１６４０からなる完全培養液に再懸濁した。さらに、提供された製造業者の指示に従って磁気細胞分離装置、ＡｕｔｏＭＡＣＳ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ）を使用し、非Ｂ細胞を除去することによって脾臓Ｂ細胞の精製を行った。要約すると、０．５％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）および２ｍＭ ＥＤＴＡを添加したＰＢＳであるＭＡＣＳ緩衝液４０μＬに懸濁した１×１０７個の脾臓細胞を、ＣＤ４３（Ｌｙ４８、ラットＩｇＧ２ａ）、ＣＤ４（Ｌ３Ｔ４、ラットＩｇＧ２ｂ）、およびＴｅｒ－１１９（ラットＩｇＧ２ｂ）に対するモノクローナル抗体からなるビオチン－抗体カクテル１０μＬと共に氷冷下で１５分間培養した。ビオチン－抗体カクテルで処理した後、脾臓細胞を、さらに抗ビオチン抗体３０μＬと共に氷冷下で１５分間培養し、ＭＡＣＳ緩衝液１ｍＬに再懸濁してＡｕｔｏＭＡＣＳを介したＢ細胞の精製に用いた。ＡｕｔｏＭＡＣＳを使用した精製において、「Ｄｅｐｌｅｔｅ」プログラムを選択し、ｏｕｔｌｅｔ ｐｏｒｔ ｎｅｇ１からネガティブフラクションをＢ細胞に富んだ画分として採取した。この純度は、ＦＡＣＳ分析で分離された画分中のＣＤ１９＋細胞の割合によって決定され、９５％を上回った。
細胞染色およびＦＡＣＳ分析
精製したＢ細胞を、氷冷したＦＡＣＳ緩衝液（０．１％アジドおよび０．１％ＢＳＡを添加したＰＢＳ）５０μＬに再懸濁した。ＦＡＣＳ緩衝液中の細胞懸濁液を、Ｆｃ ｂｌｏｃｋ（ラット抗マウスＣＤ１６／ＣＤ３２抗体、ＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、＃５５３１４２）１μＬで、氷冷下にて１０分間処理した。Ｆｃ ｂｌｏｃｋで処理した後、Ｂ細胞集団を識別するため、細胞を抗ＣＤ１９ ＰｅｒＣｐを用い、氷冷下にて３０分間染色し、さらに抗ＨＥＬ４８－６１ペプチド／ＭＨＣクラスＩＩ Ｉ－Ａｋ（Ａｗ３．１８．１４）抗体、続いて抗マウスＩｇＧ１ ＰＥ抗体を用いて抗原提示活性と同じく細胞活性化を測定した。染色した細胞試料を、氷冷したＦＡＣＳ緩衝液５ｍＬで２回洗浄し、ＦＡＣＳ Ｃａｌｉｂｕｒ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を使用して分析した。Ａｗ３．１８．１４抗体（Dadaglio G et al. 1997）を、ハイブリドーマ培養液（ＡＴＣＣ、＃ＣＲＬ２８２６）からＡｍｉｃｏｎ遠心式３０ｋｄフィルター（Ｍｉｌｌｉｏｒｅ、＃ＬＳＫ２ＡＢＡ２０）を用いて精製した。他のすべての抗体は、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅから購入した。
精製したＢ細胞を、氷冷したＦＡＣＳ緩衝液（０．１％アジドおよび０．１％ＢＳＡを添加したＰＢＳ）５０μＬに再懸濁した。ＦＡＣＳ緩衝液中の細胞懸濁液を、Ｆｃ ｂｌｏｃｋ（ラット抗マウスＣＤ１６／ＣＤ３２抗体、ＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、＃５５３１４２）１μＬで、氷冷下にて１０分間処理した。Ｆｃ ｂｌｏｃｋで処理した後、Ｂ細胞集団を識別するため、細胞を抗ＣＤ１９ ＰｅｒＣｐを用い、氷冷下にて３０分間染色し、さらに抗ＨＥＬ４８－６１ペプチド／ＭＨＣクラスＩＩ Ｉ－Ａｋ（Ａｗ３．１８．１４）抗体、続いて抗マウスＩｇＧ１ ＰＥ抗体を用いて抗原提示活性と同じく細胞活性化を測定した。染色した細胞試料を、氷冷したＦＡＣＳ緩衝液５ｍＬで２回洗浄し、ＦＡＣＳ Ｃａｌｉｂｕｒ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を使用して分析した。Ａｗ３．１８．１４抗体（Dadaglio G et al. 1997）を、ハイブリドーマ培養液（ＡＴＣＣ、＃ＣＲＬ２８２６）からＡｍｉｃｏｎ遠心式３０ｋｄフィルター（Ｍｉｌｌｉｏｒｅ、＃ＬＳＫ２ＡＢＡ２０）を用いて精製した。他のすべての抗体は、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅから購入した。
ＦＡＣＳデータを分析し、平均蛍光強度（ＭＦＩ）は、ＦｌｏｗＪｏソフトウェア（Ｔｒｅｅ Ｓｔａｒ Ｉｎｃ）によって算出された。ＩＣ５０値は、ＧｒａｐｈＰａｄ ＰＲＩＳＭバージョン６．０ソフトウェア（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ）によって算出された。
ＭＨＣＩＩによる抗原提示の測定
１００万個の脾臓細胞またはＭＤ４ Ｂ１０．ＢＲマウスから精製したＢ細胞を、完全培養液５００μＬに懸濁し、２４ウェルプレートに播種した。該細胞を化合物Ａで３０分間前処理し、さらに特定の濃度のＨＥＬタンパク質と共に３７℃、５％ＣＯ２下で一晩培養した。一晩培養後、該細胞を回収し、上述のとおり、ＦＡＣＳ分析に用いてＣＤ１９＋細胞上のＨＥＬペプチド／ＭＨＣＩＩ複合体の発現レベルを測定した。ＤＭＳＯ濃度は、０．１％を超えないように維持した。
１００万個の脾臓細胞またはＭＤ４ Ｂ１０．ＢＲマウスから精製したＢ細胞を、完全培養液５００μＬに懸濁し、２４ウェルプレートに播種した。該細胞を化合物Ａで３０分間前処理し、さらに特定の濃度のＨＥＬタンパク質と共に３７℃、５％ＣＯ２下で一晩培養した。一晩培養後、該細胞を回収し、上述のとおり、ＦＡＣＳ分析に用いてＣＤ１９＋細胞上のＨＥＬペプチド／ＭＨＣＩＩ複合体の発現レベルを測定した。ＤＭＳＯ濃度は、０．１％を超えないように維持した。
炎症性サイトカイン放出の測定
項２．１に記載されたとおり、ＭＤ４ Ｂ１０．ＢＲから精製した百万個のＢ細胞を、完全培養液２００μＬに懸濁し、可溶性ＣＤ４０リガンドと共にＨＥＬタンパク質１００μＭによって、３７℃、５％ＣＯ２下で４８時間刺激した。刺激する３０分前に、化合物Ａを該培養液に加えた。ＨＥＬタンパク質による刺激後、培養液上清を回収し、提供された製造業者（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ）の指示に従ったＥＬＩＳＡによる、ＩＬ－６およびＴＮＦαの測定に用いた。該データは、３つの試料から得た濃度の平均（ｐｇ／ｍＬ）として示され、ＩＣ５０値は、上述のとおり算出された。ＤＭＳＯ濃度は、０．１％を超えないように維持した。
結果．（表２）。
項２．１に記載されたとおり、ＭＤ４ Ｂ１０．ＢＲから精製した百万個のＢ細胞を、完全培養液２００μＬに懸濁し、可溶性ＣＤ４０リガンドと共にＨＥＬタンパク質１００μＭによって、３７℃、５％ＣＯ２下で４８時間刺激した。刺激する３０分前に、化合物Ａを該培養液に加えた。ＨＥＬタンパク質による刺激後、培養液上清を回収し、提供された製造業者（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ）の指示に従ったＥＬＩＳＡによる、ＩＬ－６およびＴＮＦαの測定に用いた。該データは、３つの試料から得た濃度の平均（ｐｇ／ｍＬ）として示され、ＩＣ５０値は、上述のとおり算出された。ＤＭＳＯ濃度は、０．１％を超えないように維持した。
結果．（表２）。
ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）のケモカイン産生
方法．
ＰＢＭＣの単離
胚中心の形成に関わるケモカイン産生における化合物Ａの作用を評価するため、ＰＢＭＣを、Ｌｅｕｃｏｓｅｐチューブ（Ｇｒｅｉｎｅｒ Ｂｉｏ－ｏｎｅ ＃２２７２８９）中のバフィーコート（Ｉｎｔｅｒ－Ｒｅｇｉｏｎａｌｅ Ｂｌｕｔｓｐｅｎｄｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｗｉｓｓ Ｒｅｄ Ｃｒｏｓｓから入手）から、Ｆｉｃｏｌｌ－Ｐａｑｕｅ ｐｌｕｓ（ＧＥ ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ ＃１７－１４４０－０３）を用い、標準的なフィコール勾配遠心分離によって単離した。細胞を、ＰＢＳで２回洗浄し、その後１０％ＦＢＳ、ゲンタマイシン（５０ｕｇ／ｍＬ）、インスリン－トランスフェリン－セレン、およびβ－メルカプトエタノール（５０ｕＭ）を添加したＲＰＭＩ１６４０培養液に２．２×１０６／ｍＬで再懸濁した。
方法．
ＰＢＭＣの単離
胚中心の形成に関わるケモカイン産生における化合物Ａの作用を評価するため、ＰＢＭＣを、Ｌｅｕｃｏｓｅｐチューブ（Ｇｒｅｉｎｅｒ Ｂｉｏ－ｏｎｅ ＃２２７２８９）中のバフィーコート（Ｉｎｔｅｒ－Ｒｅｇｉｏｎａｌｅ Ｂｌｕｔｓｐｅｎｄｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｗｉｓｓ Ｒｅｄ Ｃｒｏｓｓから入手）から、Ｆｉｃｏｌｌ－Ｐａｑｕｅ ｐｌｕｓ（ＧＥ ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ ＃１７－１４４０－０３）を用い、標準的なフィコール勾配遠心分離によって単離した。細胞を、ＰＢＳで２回洗浄し、その後１０％ＦＢＳ、ゲンタマイシン（５０ｕｇ／ｍＬ）、インスリン－トランスフェリン－セレン、およびβ－メルカプトエタノール（５０ｕＭ）を添加したＲＰＭＩ１６４０培養液に２．２×１０６／ｍＬで再懸濁した。
ＰＢＭＣの刺激
ＰＢＭＣを、４８ウェルプレート（Ｃｏｓｔａｒ ＃３５４８）に分注し、あらかじめ希釈された化合物Ａと共に培養し、最終濃度０．３、１、または３ｕＭの希釈液を得た。対照試料をＤＭＳＯで前処置し、最終濃度０．０３％のＤＭＳＯ溶液を得た。試料を十分に混合し、加湿インキュベーターで３７℃にて１時間培養した。その後、ＴＬＲ９アゴニストであるＯＤＮ Ｍ３６２（Ｉｎｖｉｖｏｇｅｎ、＃ｔｌｒｌ－ｍ３６２）を最終濃度３０ｕｇ／ｍＬで、または抗ＩｇＭ－デキストラン（Ｆｉｎａｂｉｏｓｏｌｕｔｉｏｎ ＃０００４）を最終濃度２ｕｇ／ｍＬで添加し、細胞を刺激した。対照試料は刺激せずにおいた。試料を十分に混合し、加湿インキュベーターで３７℃にて２４時間培養した。
ＰＢＭＣを、４８ウェルプレート（Ｃｏｓｔａｒ ＃３５４８）に分注し、あらかじめ希釈された化合物Ａと共に培養し、最終濃度０．３、１、または３ｕＭの希釈液を得た。対照試料をＤＭＳＯで前処置し、最終濃度０．０３％のＤＭＳＯ溶液を得た。試料を十分に混合し、加湿インキュベーターで３７℃にて１時間培養した。その後、ＴＬＲ９アゴニストであるＯＤＮ Ｍ３６２（Ｉｎｖｉｖｏｇｅｎ、＃ｔｌｒｌ－ｍ３６２）を最終濃度３０ｕｇ／ｍＬで、または抗ＩｇＭ－デキストラン（Ｆｉｎａｂｉｏｓｏｌｕｔｉｏｎ ＃０００４）を最終濃度２ｕｇ／ｍＬで添加し、細胞を刺激した。対照試料は刺激せずにおいた。試料を十分に混合し、加湿インキュベーターで３７℃にて２４時間培養した。
サイトカイン／ケモカイン検出
刺激後、培養液上清を回収し、Ｂｉｏ－Ｐｌｅｘ多重免疫測定法（ＣＸＣＬ１３；Ｂｉｏ Ｒａｄ ＃１７１ＢＫ１２ＭＲ２）もしくはＭＳＤ Ｖ－Ｐｌｅｘ測定法（ＩＰ－１０；Ｍｅｓｏ Ｓｃａｌｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ）によって、または製造業者の指示に従って、ケモカインを定量化した。
結果。（表３および４）。
刺激後、培養液上清を回収し、Ｂｉｏ－Ｐｌｅｘ多重免疫測定法（ＣＸＣＬ１３；Ｂｉｏ Ｒａｄ ＃１７１ＢＫ１２ＭＲ２）もしくはＭＳＤ Ｖ－Ｐｌｅｘ測定法（ＩＰ－１０；Ｍｅｓｏ Ｓｃａｌｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ）によって、または製造業者の指示に従って、ケモカインを定量化した。
結果。（表３および４）。
ＣＸＣＬ１３誘導性のＢ細胞遊走
方法．
バフィーコートからのＢ細胞単離
上記のとおり、ＰＢＭＣをバフィーコートから単離した。細胞を、ＰＢＳで２回洗浄し、その後２％ＦＢＳおよび１ｍＭ ＥＤＴＡを含むＰＢＳに５×１０７／ｍＬで再懸濁した。さらに、製造業者の指示に従い、ＥａｓｙＳｅｐ（商標）Ｈｕｍａｎ Ｂ Ｃｅｌｌ Ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ Ｋｉｔ（ＳＴＥＭＣＥＬＬ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ＃１９０５４）を用いた非Ｂ細胞の除去によってＢ細胞の精製を行った。要約すると、分離緩衝液８ｍＬ中の４×１０８ＰＢＭＣを、１４ｍＬ丸底チューブ中で濃縮カクテル４００ｕＬと共に、室温にて１０分間培養した。ＰＢＭＣを、さらに磁性粒子６００ｕＬと共に、室内で５分間培養した。Ｂ細胞単離のため、該チューブを磁石内に５分間静置し、濃縮したＢ細胞を新たな１４ｍＬチューブに回収した。その後、細胞を洗浄し、１０％ＦＢＳ、ゲンタマイシン（５０ｕｇ／ｍＬ）、インスリン－トランスフェリン－セレン、およびβ－メルカプトエタノール（５０ｕＭ）を添加したＲＰＭＩ１６４０培養液に５×１０６／ｍＬで再懸濁した。
方法．
バフィーコートからのＢ細胞単離
上記のとおり、ＰＢＭＣをバフィーコートから単離した。細胞を、ＰＢＳで２回洗浄し、その後２％ＦＢＳおよび１ｍＭ ＥＤＴＡを含むＰＢＳに５×１０７／ｍＬで再懸濁した。さらに、製造業者の指示に従い、ＥａｓｙＳｅｐ（商標）Ｈｕｍａｎ Ｂ Ｃｅｌｌ Ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ Ｋｉｔ（ＳＴＥＭＣＥＬＬ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ＃１９０５４）を用いた非Ｂ細胞の除去によってＢ細胞の精製を行った。要約すると、分離緩衝液８ｍＬ中の４×１０８ＰＢＭＣを、１４ｍＬ丸底チューブ中で濃縮カクテル４００ｕＬと共に、室温にて１０分間培養した。ＰＢＭＣを、さらに磁性粒子６００ｕＬと共に、室内で５分間培養した。Ｂ細胞単離のため、該チューブを磁石内に５分間静置し、濃縮したＢ細胞を新たな１４ｍＬチューブに回収した。その後、細胞を洗浄し、１０％ＦＢＳ、ゲンタマイシン（５０ｕｇ／ｍＬ）、インスリン－トランスフェリン－セレン、およびβ－メルカプトエタノール（５０ｕＭ）を添加したＲＰＭＩ１６４０培養液に５×１０６／ｍＬで再懸濁した。
９６ウェルｔｒａｎｓｗｅｌｌプレートにおける遊走アッセイ
単離したＢ細胞を５ｍＬ丸底チューブ（Ｃｏｓｔａｒ ＃３５２０５４）に分注し、あらかじめ希釈された化合物Ａと共に培養して最終濃度１０、１、０．１または０．０１μＭの希釈液を得た。対照試料をＤＭＳＯで前処理し、最終濃度が０．１％のＤＭＳＯ溶液を得た。試料を十分に混合し、水浴中３７℃で３０分間培養した。希釈液中の最終濃度が１００ｎＭのＣＸＣＬ１３（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＃８０１－ＣＸ）約２３５μＬを、９６ウェルｔｒａｎｓｗｅｌｌのレシーバープレート（Ｃｏｓｔａｒ ＃３３８７）のウェルに添加した。対照ウェルには、培養液２３５ｕＬを充填した。５ｕｍパーミアブルサポートのインサートをレシーバープレートに取り付け、あらかじめ培養したＢ細胞８０ｕＬを充填した。ｔｒａｎｓｗｅｌｌプレートを、加湿インキュベーターで３７℃にて３時間培養した。パーミアブルサポートのインサートを取り外し、レシーバープレート中の細胞数をフローサイトメトリーによって測定した。
結果．（表５）。
単離したＢ細胞を５ｍＬ丸底チューブ（Ｃｏｓｔａｒ ＃３５２０５４）に分注し、あらかじめ希釈された化合物Ａと共に培養して最終濃度１０、１、０．１または０．０１μＭの希釈液を得た。対照試料をＤＭＳＯで前処理し、最終濃度が０．１％のＤＭＳＯ溶液を得た。試料を十分に混合し、水浴中３７℃で３０分間培養した。希釈液中の最終濃度が１００ｎＭのＣＸＣＬ１３（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＃８０１－ＣＸ）約２３５μＬを、９６ウェルｔｒａｎｓｗｅｌｌのレシーバープレート（Ｃｏｓｔａｒ ＃３３８７）のウェルに添加した。対照ウェルには、培養液２３５ｕＬを充填した。５ｕｍパーミアブルサポートのインサートをレシーバープレートに取り付け、あらかじめ培養したＢ細胞８０ｕＬを充填した。ｔｒａｎｓｗｅｌｌプレートを、加湿インキュベーターで３７℃にて３時間培養した。パーミアブルサポートのインサートを取り外し、レシーバープレート中の細胞数をフローサイトメトリーによって測定した。
結果．（表５）。
試験化合物のラットへの単回経口投与によるｅｘ ｖｉｖｏにおけるＡｋｔ－リン酸化の時間依存的な阻害
方法．
動物
すべての試験は、体重２２０～２８０ｇの成体雄Ｌｅｗｉｓラット（ＬＥＷ／Ｈａｎ／Ｈｓｄ、Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ、Ｇｅｒｍａｎｙ ａｎｄ ＬＥＷ／Ｏｒｌ@Ｒｊ、Ｊａｎｖｉｅｒ、Ｆｒａｎｃｅ）を用いて実施された。
方法．
動物
すべての試験は、体重２２０～２８０ｇの成体雄Ｌｅｗｉｓラット（ＬＥＷ／Ｈａｎ／Ｈｓｄ、Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ、Ｇｅｒｍａｎｙ ａｎｄ ＬＥＷ／Ｏｒｌ@Ｒｊ、Ｊａｎｖｉｅｒ、Ｆｒａｎｃｅ）を用いて実施された。
管理状態
動物は、従来の衛生環境で飼育し、通常食を与え、水を自由に摂取させた。試験前および試験中、餌および水の摂取は無制限とした。
動物は、従来の衛生環境で飼育し、通常食を与え、水を自由に摂取させた。試験前および試験中、餌および水の摂取は無制限とした。
試薬
高分子量ヘパリンナトリウム（Ｂ．Ｂｒａｕｎ、Ｍｅｌｓｕｎｇｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｙ；５０００Ｉ．Ｕ．／ｍｌ）を抗凝血剤として使用した。ヤギ抗ラットＩｇＭ抗体は、Ｓｅｒｏｔｅｃ、Ｄｕｓｓｅｌｄｏｒｆ Ｇｅｒｍａｎｙから入手した（ｃａｔ＃３０２００１）。ＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｌｙｓｅ／Ｆｉｘ ｂｕｆｆｅｒ Ｉは、ＢＤ ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓから入手した（ｃａｔ＃５５８０４９）。組換えラットＩＬ－４（ＢＤ、ｃａｔ＃５５５１０７）は、一定量に分割し、－８０℃で保存した。
高分子量ヘパリンナトリウム（Ｂ．Ｂｒａｕｎ、Ｍｅｌｓｕｎｇｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｙ；５０００Ｉ．Ｕ．／ｍｌ）を抗凝血剤として使用した。ヤギ抗ラットＩｇＭ抗体は、Ｓｅｒｏｔｅｃ、Ｄｕｓｓｅｌｄｏｒｆ Ｇｅｒｍａｎｙから入手した（ｃａｔ＃３０２００１）。ＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｌｙｓｅ／Ｆｉｘ ｂｕｆｆｅｒ Ｉは、ＢＤ ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓから入手した（ｃａｔ＃５５８０４９）。組換えラットＩＬ－４（ＢＤ、ｃａｔ＃５５５１０７）は、一定量に分割し、－８０℃で保存した。
薬剤およびｉｎ ｖｉｖｏにおける薬剤適用
投与のための懸濁液を新たに調製し、暗所、室温にて保存した。化合物Ａ１４．８ｍｇを、０．５％Ｔｗｅｅｎ８０と共に、０．５％ＣＭＣ５．９２ｍＬに懸濁した。次に、乳白色で均一な懸濁液を前記動物に適用した。試験物質は、体積４ｍＬ／ｋｇ体重、つまり１０ｍｇ／ｋｇの経口用量で経口投与された。
投与のための懸濁液を新たに調製し、暗所、室温にて保存した。化合物Ａ１４．８ｍｇを、０．５％Ｔｗｅｅｎ８０と共に、０．５％ＣＭＣ５．９２ｍＬに懸濁した。次に、乳白色で均一な懸濁液を前記動物に適用した。試験物質は、体積４ｍＬ／ｋｇ体重、つまり１０ｍｇ／ｋｇの経口用量で経口投与された。
採血
動物には、Ｆｌｕｖａｃエアフローシステム（airflow system）を用いてイソフルランで麻酔をかけた。全血は、投与前ならびに投与後１、２、４、６、８、１０、１２および２４時間の時点で、舌下から採取した。薬力学分析のため、ラット血液１００μＬを、時点毎にヘパリンナトリウム（Ｂ．Ｂｒａｕｎ、Ｍｅｌｓｕｎｇｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｙ；５０００Ｉ．Ｕ．／ｍＬ）３０ＩＵの入ったＥｐｐｅｎｄｏｒｆチューブに採取した。薬物動態分析のため、ラット血液１５０μＬを、時点毎にＥＤＴＡでコーティングしたＥｐｐｅｎｄｏｒｆ（Ｍｉｌｉａｎ ｃａｔ＃ＴＯＭ－１４）チューブに採取した。
動物には、Ｆｌｕｖａｃエアフローシステム（airflow system）を用いてイソフルランで麻酔をかけた。全血は、投与前ならびに投与後１、２、４、６、８、１０、１２および２４時間の時点で、舌下から採取した。薬力学分析のため、ラット血液１００μＬを、時点毎にヘパリンナトリウム（Ｂ．Ｂｒａｕｎ、Ｍｅｌｓｕｎｇｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｙ；５０００Ｉ．Ｕ．／ｍＬ）３０ＩＵの入ったＥｐｐｅｎｄｏｒｆチューブに採取した。薬物動態分析のため、ラット血液１５０μＬを、時点毎にＥＤＴＡでコーティングしたＥｐｐｅｎｄｏｒｆ（Ｍｉｌｉａｎ ｃａｔ＃ＴＯＭ－１４）チューブに採取した。
薬物動態分析
薬物動態分析のため、各全血試料１５０μＬを、分析前に－８０℃で保存した。内部標準（濃度＝４００ｎｇ／ｍＬ）２０μＬを各全血試料の８０μＬアリコートに添加後、アセトニトリル４００μＬを加えて沈殿させ、細胞およびタンパク質を遠心分離によって除去した。次に、該有機上層を蒸発乾固した。該残渣は、０．２％のギ酸を含有する５０％アセトニトリル中に溶解させ、これを０．２％ギ酸で希釈し、遠心分離した後、分析前に１０℃で保存した。校正のため、８つのブランク全血試料に、１～５０００ｎｇ／ｍＬの量の化合物を添加した。精度および回収率管理試料は、１００ｎｇ／ｍＬとした。
薬物動態分析のため、各全血試料１５０μＬを、分析前に－８０℃で保存した。内部標準（濃度＝４００ｎｇ／ｍＬ）２０μＬを各全血試料の８０μＬアリコートに添加後、アセトニトリル４００μＬを加えて沈殿させ、細胞およびタンパク質を遠心分離によって除去した。次に、該有機上層を蒸発乾固した。該残渣は、０．２％のギ酸を含有する５０％アセトニトリル中に溶解させ、これを０．２％ギ酸で希釈し、遠心分離した後、分析前に１０℃で保存した。校正のため、８つのブランク全血試料に、１～５０００ｎｇ／ｍＬの量の化合物を添加した。精度および回収率管理試料は、１００ｎｇ／ｍＬとした。
分析のため、各試料抽出物の１０μＬアリコートをＬＣ－ＭＳ－ＭＳシステムに注入した。化合物は、０．２％のギ酸を含有する５ｍＭギ酸アンモニウムから５％のメタノールを含有するアセトニトリルまでの直線勾配を用いたＲｅｐｒｏｓｉｌ－ｐｕｒ Ｃ１８逆相カラムで５分以内に分離させた。検出には、４５１．２ｍ／ｚ→２４７．０ｍ／ｚの質量遷移を伴う、ＭＲＭによる質量分析が用いられた。ＡＰエレクトロスプレー源における該カラム溶出液のイオン化後、化合物Ａおよび内部標準は、それらの［ＭＨ］＋プロダクトイオンとして検出された。
化合物Ａ濃度は、ＭＳ／ＭＳシグナルの相対強度から得られた抽出されたピーク面積比に基づき、ＸＫａｌｉｂｕｒ（登録商標）およびＥｘｃｅｌ（登録商標）によって算出された。該ＬＯＱは１ｎｇ／ｍＬに決定し、１ｎｇ／ｍＬから１０００ｎｇ／ｍＬの間の校正精度は５％よりも高かった。前記ＱＣ試料（ｎ＝５、１００ｎｇ／ｍＬ）の精度は４．７％ＲＳＤよりも高く、前記回収率は１０２．６％であった。
ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける全血刺激
薬剤を投与した動物から採取した血液のｅｘ ｖｉｖｏ分析のため、採血直後、５ｍＬ丸底チューブ（ＢＤ、ｃａｔ＃３５２０６３）中でヘパリン化血液９０ｍＬをＲＰＭＩ培養液（Ｇｉｂｃｏ、ｃａｔ＃３１８７０）１００ｍＬと混合し、抗ラットＩｇＭの最終濃度が５０ｍｇ／ｍＬおよびｒＩＬ－４の最終濃度が１０ｎｇ／ｍＬの抗ラットＩｇＭ／ｒＩＬ－４ １０μＬで活性化した。対照試料は刺激せずにおいた。試料を十分に混合し、水浴中３７℃で１０分間培養した。
薬剤を投与した動物から採取した血液のｅｘ ｖｉｖｏ分析のため、採血直後、５ｍＬ丸底チューブ（ＢＤ、ｃａｔ＃３５２０６３）中でヘパリン化血液９０ｍＬをＲＰＭＩ培養液（Ｇｉｂｃｏ、ｃａｔ＃３１８７０）１００ｍＬと混合し、抗ラットＩｇＭの最終濃度が５０ｍｇ／ｍＬおよびｒＩＬ－４の最終濃度が１０ｎｇ／ｍＬの抗ラットＩｇＭ／ｒＩＬ－４ １０μＬで活性化した。対照試料は刺激せずにおいた。試料を十分に混合し、水浴中３７℃で１０分間培養した。
細胞溶解、固定、および透過処理
培養後、あらかじめ加温した（水浴中３７℃）ＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｌｙｓｅ／Ｆｉｘ ｂｕｆｆｅｒ ２ｍＬを各チューブに加えた。試料を十分に混合し、水浴中３７℃で２０分間培養した。次に、試料を４００ｇで５分間遠心分離した。遠心分離後、ＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ ２ｍＬを各チューブに加えた。試料を十分に混合し、暗所、室温（ＲＴ）にて１０分間培養した。その後、試料をドライアイス上で急速凍結し、次に、ＦＡＣＳ染色まで－８０℃で保存した。
培養後、あらかじめ加温した（水浴中３７℃）ＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｌｙｓｅ／Ｆｉｘ ｂｕｆｆｅｒ ２ｍＬを各チューブに加えた。試料を十分に混合し、水浴中３７℃で２０分間培養した。次に、試料を４００ｇで５分間遠心分離した。遠心分離後、ＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ ２ｍＬを各チューブに加えた。試料を十分に混合し、暗所、室温（ＲＴ）にて１０分間培養した。その後、試料をドライアイス上で急速凍結し、次に、ＦＡＣＳ染色まで－８０℃で保存した。
フローサイトメトリー分析
解凍のため、試料すべてを水浴中２５℃で１０分間培養した。４００ｇで５分間遠心分離後、ペレットをＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ ２ｍＬで洗浄し、さらに４００ｇで５分間遠心分離した。上清を除去した。ｐＡｋｔの分析のため、試料をＰＥ標識抗ラットＩｇＭ（ＢＤ、ｃａｔ＃５５３８８８）で染色することによって、ＦＡＣＳ分析においてＢ細胞をゲーティングした。さらに、試料をＡｌｅｘａ６４７コンジュゲート抗リン酸化Ａｋｔ（Ｓｅｒ４７３；ＢＤ、ｃａｔ＃５６０３４３）で染色した。染色工程は、全量１００μＬのＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ中、暗所、ＲＴにて３０分間行われた。培養後、試料を２ｍＬのＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒで洗浄し、４００ｇで５分間遠心分離し、ペレットを３００μＬのＢＤ Ｓｔａｉｎ Ｂｕｆｆｅｒ（ＢＤ、ｃａｔ＃５５４６５６）中に再懸濁した。データが、ＤＩＶＡソフトウェア（バージョン６．１．２）を用いたＬＳＲＩＩフローサイトメーター（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）によって取得されるまで、試料を氷冷した。サイズおよび粒度に従ったＦＳＣ／ＳＳＣドットブロットにおいてリンパ球をゲーティングし、さらにＩｇＭの発現およびＡｋｔのリン酸化を解析した。データは、ＩｇＭ＋集団中のＡｋｔ－リン酸化に対して陽性染色された細胞の百分率として、ドットブロットまたはヒストグラムから算出された。
解凍のため、試料すべてを水浴中２５℃で１０分間培養した。４００ｇで５分間遠心分離後、ペレットをＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ ２ｍＬで洗浄し、さらに４００ｇで５分間遠心分離した。上清を除去した。ｐＡｋｔの分析のため、試料をＰＥ標識抗ラットＩｇＭ（ＢＤ、ｃａｔ＃５５３８８８）で染色することによって、ＦＡＣＳ分析においてＢ細胞をゲーティングした。さらに、試料をＡｌｅｘａ６４７コンジュゲート抗リン酸化Ａｋｔ（Ｓｅｒ４７３；ＢＤ、ｃａｔ＃５６０３４３）で染色した。染色工程は、全量１００μＬのＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ中、暗所、ＲＴにて３０分間行われた。培養後、試料を２ｍＬのＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ ｐｅｒｍ／ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒで洗浄し、４００ｇで５分間遠心分離し、ペレットを３００μＬのＢＤ Ｓｔａｉｎ Ｂｕｆｆｅｒ（ＢＤ、ｃａｔ＃５５４６５６）中に再懸濁した。データが、ＤＩＶＡソフトウェア（バージョン６．１．２）を用いたＬＳＲＩＩフローサイトメーター（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）によって取得されるまで、試料を氷冷した。サイズおよび粒度に従ったＦＳＣ／ＳＳＣドットブロットにおいてリンパ球をゲーティングし、さらにＩｇＭの発現およびＡｋｔのリン酸化を解析した。データは、ＩｇＭ＋集団中のＡｋｔ－リン酸化に対して陽性染色された細胞の百分率として、ドットブロットまたはヒストグラムから算出された。
統計的評価
ｅｘ ｖｉｖｏにおける薬剤の作用は、フローサイトメトリーによって測定されたＡｋｔ－リン酸化の阻害として現れた。Ａｋｔ－リン酸化の阻害百分率は、下記の式によって算出された：
ｅｘ ｖｉｖｏにおける薬剤の作用は、フローサイトメトリーによって測定されたＡｋｔ－リン酸化の阻害として現れた。Ａｋｔ－リン酸化の阻害百分率は、下記の式によって算出された：
４匹のＬｅｗｉｓラットの群に、化合物Ａ１０ｍｇ／ｋｇを単回経口投与した。方法の項に記載されたとおり、表示された時点において、５０％ラット全血を抗ラットＩｇＭ／ｒＩＬ－４で刺激し、Ａｋｔ－リン酸化を判定した。データは、個々の値およびＳＤと共に４匹の動物の平均値を示す。
ヒトの血漿における化合物Ａの薬物動態分析
方法．全血試料は、直接静脈穿刺または前腕静脈に挿入した留置カニューレのいずれかによって得られた。血液試料を、エチレンジアミン－四酢酸三カリウム（Ｋ３ ＥＤＴＡ）を含むチューブに採取し、６０分以内に３～５℃で遠心分離して血漿を分離した。得られた血漿を凍結し、薬剤濃度を測定するまで－２０℃で保存した。
方法．全血試料は、直接静脈穿刺または前腕静脈に挿入した留置カニューレのいずれかによって得られた。血液試料を、エチレンジアミン－四酢酸三カリウム（Ｋ３ ＥＤＴＡ）を含むチューブに採取し、６０分以内に３～５℃で遠心分離して血漿を分離した。得られた血漿を凍結し、薬剤濃度を測定するまで－２０℃で保存した。
血漿中の化合物Ａ濃度を検証済みエレクトロスプレーイオン化液体クロマトグラフィー－タンデム質量分析法（ＨＰＬＣ－ＭＳ／ＭＳ）を用いてポジティブイオンモードで数値化した。簡潔に述べると、血漿試料４０μＬを９６ウェルプレート上のＩｍｐａｃｔタンパク質沈殿プレートに移した。７５％アセトニトリル水溶液で調製して４ｎｇ／ｍＬに希釈した内部標準［１３ＣＤ３］化合物Ａ１５０μＬを、９６ウェルプレートに添加してボルテックスで混合した。対照ブランク試料として、体積１５０μＬの内部標準を含まない７５％アセトニトリル水溶液を代わりに添加した。プレートをフィルムで密封して１０分間振盪し、遠心分離した（１０分間、２２５０ｇ、４℃）。体積４μＬの試料抽出物をＬＣ／ＭＳ／ＭＳシステム（ＡＰＩ４０００、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）に注入した。
化合物Ａのクロマトグラフィー分離を、Ａｓｃｅｎｔｉｓ２．７μｍ Ｃ１８、５０×２．１ｍｍ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）を用い、４０℃、流速１．００ｍＬ／分で実施した。Ａを含む移動相：０．１％ギ酸水溶液およびＢ：０．１％ギ酸アセトニトリル溶液。移動相Ｂ１０％の初期条件を最初の０．３分間維持し、該移動相Ｂの組成を次の０．３分間に５０％まで直線的に増加させ、１０分間に９５％まで急増させ、その後１０％まで戻した。化合物Ａの保持時間およびその内部標準は約１．４分であった。化合物Ａおよび［１３ＣＤ３］化合物Ａの選択された質量遷移は、それぞれ４５１．２→２４７．１、１７４．１および４５５．３→２５１．２、１７４．２、１２４．２であった。
校正標準のピーク面積比（化合物Ａ対［１３ＣＤ３］化合物Ａ）を用い、重み付けした（１／濃度の二乗）二次の最小二乗回帰アルゴリズムを適用することによって、検量線を作成した。
臨床試料中の化合物Ａ濃度は、前記検量線に対するそのピーク面積比から逆算された（Ａｎａｌｙｓｔ ｓｏｆｔｗａｒｅ）。該方法は、ＬＬＯＱを３ｎｇ／ｍＬとして３ｎｇ／ｍＬ～１０００ｎｇ／ｍＬの範囲で問題なく検証された。７つの校正標準によって該ダイナミックレンジをカバーした。該方法は、直線性（検量線からの校正標準の偏差≦１５％（ＬＬＯＱでは≦２０％））、日間および日内の精度および正確さ（公称値の平均バイアス≦１５％（ＬＬＯＱでは≦２０％）；正確さ≦１５％（ＬＬＯＱでは≦２０％））、さらにキャリーオーバー反応に関する所定の受入基準を満たした。
結果．（図１）。
結果．（図１）。
刺激した／非刺激の臨床全血試料におけるＢ細胞中のｐＡｋｔの測定
方法．
採血および細胞刺激
Ａｋｔリン酸化として測定されるヒトＢ細胞活性化に対する化合物Ａのｉｎ ｖｉｖｏ作用の評価のため、臨床試料を、Ｎａ－ヘパリンｍｏｎｏｖｅｔｔｅシステムを用いて全血から調製した。
方法．
採血および細胞刺激
Ａｋｔリン酸化として測定されるヒトＢ細胞活性化に対する化合物Ａのｉｎ ｖｉｖｏ作用の評価のため、臨床試料を、Ｎａ－ヘパリンｍｏｎｏｖｅｔｔｅシステムを用いて全血から調製した。
次に、全血を、抗ＩｇＭ／ＩＬ－４（７．５μｇ／ｍＬの抗ＩｇＭ［Ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ］および７．５ｎｇ／ｍＬのＩＬ－４［Ｒ＆Ｄ］）またはＰＢＳ（非刺激試料）のいずれかと共に培養した。培養は、プレートフォーマット中の血液９５μＬ（２組ずつ）を用い、採血後１時間以内に実施された。培養液を、穏やかに上下にピペッティングすることによって十分に混合し、３７℃で培養した（インキュベーター内、５％ＣＯ２）。３０分後、全血は、ＢＤ ＰｈｏｓＦｌｏｗ－Ｌｙｓｅ／Ｆｉｘ ｂｕｆｆｅｒ（１６００μＬ）を用い、暗所、３７℃（水浴）で２０分間溶解および固定された。溶解および固定された血液試料を、速やかに凍結し、次の工程まで－８０℃で保存した。
Ｂ細胞活性化マーカーの染色
臨床試料は、採血後１週間以内に処理された。解凍が完了した後（３７℃の水浴）、試料を、室温にて、５０２ｇ（１５８０ｒｐｍ）で５分間遠心分離した。次に、ペレット化した細胞を、氷冷したＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ ＩＩ ｂｕｆｆｅｒ５００μＬで洗浄し、十分に混合して３０～３５分間氷冷した。培養後、ＦＡＣＳ緩衝液１２００μＬを加え、細胞を、室温にて６５０ｇ（１８００ｒｐｍ）で１０分間遠心分離した。上清を除去し、上述のとおり、該試料を再度洗浄した。染色工程は、直接染色（Ｐｅｒ－ＣＰ－Ｃｙ５．５－標識抗ヒトＣＤ２０［ＢＤ ｃａｔ＃５５８０２１］およびＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標）４８８コンジュゲート抗ヒト総Ａｋｔ［Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｃａｔ＃２９１７Ｓ］を使用）およびｐＡｋｔ（Ｓｅｒ４７３）（Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｃａｔ＃４０５８Ｌ）に対する間接染色の両方から構成された。第一に、細胞を一次抗体（総体積５０μＬ）と共に、暗所、室温にて３０～３５分間培養し、続いて、ＦＡＣＳ緩衝液（１２００μＬ）で洗浄し、ＲＴにて６５０ｇ（１８００ｒｐｍ）で１０分間遠心分離した。さらに、ペレット化した細胞を二次Ａｂ（総体積５０μＬ）と共に、暗所、ＲＴにて１５～１７分間培養し、続いて、ＦＡＣＳ緩衝液（１２００μＬ）で洗浄し、ＲＴにて６５０ｇ（１８００ｒｐｍ）で１０分間遠心分離した。洗浄工程の繰り返し後（ＦＡＣＳ緩衝液１２００μＬ、ＲＴにて６５０ｇで１０分間遠心分離）、細胞を１％ＰＦＡ（ＰＢＳ中）３００μＬに再懸濁し、５ｍＬポリスチレンチューブに移した。
臨床試料は、採血後１週間以内に処理された。解凍が完了した後（３７℃の水浴）、試料を、室温にて、５０２ｇ（１５８０ｒｐｍ）で５分間遠心分離した。次に、ペレット化した細胞を、氷冷したＢＤ Ｐｈｏｓｆｌｏｗ Ｐｅｒｍ ＩＩ ｂｕｆｆｅｒ５００μＬで洗浄し、十分に混合して３０～３５分間氷冷した。培養後、ＦＡＣＳ緩衝液１２００μＬを加え、細胞を、室温にて６５０ｇ（１８００ｒｐｍ）で１０分間遠心分離した。上清を除去し、上述のとおり、該試料を再度洗浄した。染色工程は、直接染色（Ｐｅｒ－ＣＰ－Ｃｙ５．５－標識抗ヒトＣＤ２０［ＢＤ ｃａｔ＃５５８０２１］およびＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標）４８８コンジュゲート抗ヒト総Ａｋｔ［Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｃａｔ＃２９１７Ｓ］を使用）およびｐＡｋｔ（Ｓｅｒ４７３）（Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｃａｔ＃４０５８Ｌ）に対する間接染色の両方から構成された。第一に、細胞を一次抗体（総体積５０μＬ）と共に、暗所、室温にて３０～３５分間培養し、続いて、ＦＡＣＳ緩衝液（１２００μＬ）で洗浄し、ＲＴにて６５０ｇ（１８００ｒｐｍ）で１０分間遠心分離した。さらに、ペレット化した細胞を二次Ａｂ（総体積５０μＬ）と共に、暗所、ＲＴにて１５～１７分間培養し、続いて、ＦＡＣＳ緩衝液（１２００μＬ）で洗浄し、ＲＴにて６５０ｇ（１８００ｒｐｍ）で１０分間遠心分離した。洗浄工程の繰り返し後（ＦＡＣＳ緩衝液１２００μＬ、ＲＴにて６５０ｇで１０分間遠心分離）、細胞を１％ＰＦＡ（ＰＢＳ中）３００μＬに再懸濁し、５ｍＬポリスチレンチューブに移した。
データ取得および分析
同日、試料を分析した。データ取得は、ＤＩＶＡソフトウェアを用いたＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ ＩＩによって高流速で行った。ゲーティングは以下のとおり行った：第一に、ＦＳＣ－Ａ対ＦＳＣ－Ｈのドットプロットを用いてダブレットを除去した。次に、白血球にゲートを作成するため、ＦＳＣ－Ａ対ＳＳＣ－Ａのドットプロット上に単一細胞を表示した。ＣＤ２０対ＳＳＣ－Ａのドットプロットを作成し、白血球を表示した。ＣＤ２０－陽性Ｂ細胞に基づき、ｐＡｋｔに対するヒストグラムプロットを作成した。非刺激試料を用いて、陽性および陰性ｐＡｋｔ集団に対するインターバルゲートを設定した。データは、ベースライン値と比較したｐＡｋｔの％阻害として算出された。
結果．（図１）。
同日、試料を分析した。データ取得は、ＤＩＶＡソフトウェアを用いたＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ ＩＩによって高流速で行った。ゲーティングは以下のとおり行った：第一に、ＦＳＣ－Ａ対ＦＳＣ－Ｈのドットプロットを用いてダブレットを除去した。次に、白血球にゲートを作成するため、ＦＳＣ－Ａ対ＳＳＣ－Ａのドットプロット上に単一細胞を表示した。ＣＤ２０対ＳＳＣ－Ａのドットプロットを作成し、白血球を表示した。ＣＤ２０－陽性Ｂ細胞に基づき、ｐＡｋｔに対するヒストグラムプロットを作成した。非刺激試料を用いて、陽性および陰性ｐＡｋｔ集団に対するインターバルゲートを設定した。データは、ベースライン値と比較したｐＡｋｔの％阻害として算出された。
結果．（図１）。
化合物Ａは、ＰＩ３Ｋ／Ａｋｔ経路に対する用量－、濃度－、および時間－依存的な阻害を示す。化合物Ａ８０ｍｇの単回投与後、１２時間にわたり８０％を超える経路阻害が達成される。化合物Ａに関する用量反応相関のモデリングによって、経路阻害を２４時間にわたり維持することは、１日２回の投与計画によって保証され得ることが示唆される。
また、本発明は以下を提供する。
［１］
原発性シェーグレン症候群の治療に使用するための１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩。
［２］
１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩である、［１］に記載の使用のための化合物。
［３］
治療有効量の、［１］または［２］に記載の使用のための化合物と１種または複数の薬学的に許容される担体とを含む医薬組成物。
［４］
治療有効量の、［１］または［２］に記載の使用のための化合物と１種または複数の治療活性剤とを含む組合せ物。
［５］
約４０～２００ｋｇのヒト対象に対する単位投与量が、有効成分１０～１００ｍｇである、［１］または［２］に記載の使用のための化合物。
［６］
約５０～７０ｋｇのヒト対象に対する単位投与量が、有効成分７０ｍｇである、［１］または［２］に記載の使用のための化合物。
［７］
投与が１日２回である、［５］または［６］に記載の使用のための化合物。
また、本発明は以下を提供する。
［１］
原発性シェーグレン症候群の治療に使用するための１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩。
［２］
１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩である、［１］に記載の使用のための化合物。
［３］
治療有効量の、［１］または［２］に記載の使用のための化合物と１種または複数の薬学的に許容される担体とを含む医薬組成物。
［４］
治療有効量の、［１］または［２］に記載の使用のための化合物と１種または複数の治療活性剤とを含む組合せ物。
［５］
約４０～２００ｋｇのヒト対象に対する単位投与量が、有効成分１０～１００ｍｇである、［１］または［２］に記載の使用のための化合物。
［６］
約５０～７０ｋｇのヒト対象に対する単位投与量が、有効成分７０ｍｇである、［１］または［２］に記載の使用のための化合物。
［７］
投与が１日２回である、［５］または［６］に記載の使用のための化合物。
Claims (7)
- １－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オン
または薬学的に許容されるその塩を含む、原発性シェーグレン症候群の治療に使用するための医薬組成物。 - 薬学的に許容される塩が１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンのリン酸塩である、請求項１に記載の医薬組成物。
- １種または複数の薬学的に許容される担体を含む、請求項１または２に記載の医薬組成物。
- １－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オン
または薬学的に許容されるその塩と１種または複数の治療活性剤とを含む、原発性シェーグレン症候群の治療に使用するための組合せ物。 - 約４０～２００ｋｇのヒト対象に対する単位投与量が、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩として１０～１００ｍｇである、請求項１～３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 約５０～７０ｋｇのヒト対象に対する単位投与量が、１－｛（Ｓ）－３－［６－（６－メトキシ－５－トリフルオロメチル－ピリジン－３－イル）－５，６，７，８－テトラヒドロ－ピリド［４，３－ｄ］ピリミジン－４－イルアミノ］－ピロリジン－１－イル｝－プロパン－１－オンまたは薬学的に許容されるその塩として７０ｍｇである、請求項１～３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 投与が１日２回である、請求項１、２、３、５または６に記載の医薬組成物。
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