JP6988480B2 - 浮遊培養馴化接着型細胞の調製方法、接着型上皮細胞の上皮間葉転換誘導方法、及びそれらの利用 - Google Patents
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Description
しかしながら、組み換え医薬品は、治療のために投与する量が多く、また、生産するための費用が高いことがあり、十分に普及するには至っていない。したがって、生産性を上げることが課題となっている。
しかしながら、この方法は、CHO細胞を浮遊状態にするまで培養を繰り返すものであるため、8週間程度という長い時間が必要になる。また、継代培養期間が長くなると、遺伝子の変異や細胞の変質等の状態を管理し、確認する手間と費用が増加することとなる。
しかしながら、この方法には、ホローファイバーを組み込んだ装置が複雑で高価であるため、費用面での問題があった。また、大量培養のためにホローファイバーサイズを大きくすると、ホローファイバーの両端での培地交換が均等ではなく、培地が不均一になりやすかった。この結果、培地のpH等が変化し、ホローファイバー内の細胞にストレスがかかるため、目的のタンパク質の生産性が低下するおそれがあった。
本発明は、かかる実情に鑑みてなされたものであり、接着型細胞を特殊な操作を要さずに、浮遊状態でも死滅することのない、浮遊培養に馴化した接着型細胞の調製方法、当該方法で調整された浮遊培養に馴化した接着型細胞を用いた核酸又はタンパク質の生産方法、脂環構造含有重合体成形体からなる接着型細胞の浮遊培養馴化促進剤、接着型細胞を浮遊培養に馴化させるための脂環構造含有重合体成形体の使用、及び接着型細胞の浮遊培養馴化用容器を提供することを目的とする。
また本発明は、接着型上皮細胞を接触させるのみの操作で該細胞に上皮間葉転換を誘導する方法、当該方法で上皮間葉転換された細胞を用いた核酸又はタンパク質の生産方法、脂環構造含有重合体成形体からなる接着型上皮細胞の上皮間葉転換誘導剤、接着型上皮細胞を上皮間葉転換誘導させるための脂環構造含有重合体成形体の使用、及び接着型上皮細胞の上皮間葉転換誘導用容器を提供することを目的とする。
(2)前記接着型細胞が、外来遺伝子を発現する遺伝子組み換えされた接着型細胞である、(1)に記載の接着型細胞の調製方法。
(3)前記外来遺伝子がタンパク質をコードする遺伝子である、(2)に記載の接着型細胞の調製方法。
(4)前記接着型細胞が動物由来の細胞である、(1)〜(3)のいずれかに記載の接着型細胞の調製方法。
(5)前記動物由来の細胞がCHO細胞である、(4)に記載の接着型細胞の調製方法。
(7)脂環構造含有重合体成形体からなる接着型細胞の浮遊培養馴化促進剤。
(8)接着型細胞を液体培地中に浮遊培養に馴化させるための、脂環構造含有重合体成形体の使用。
(9)少なくとも底面が脂環構造含有重合体成形体からなるものである接着型細胞の浮遊培養馴化用容器。
(10)前記脂環構造含有重合体が飽和ノルボルネン系重合体である、(9)に記載の浮遊培養馴化用容器。
(12)前記接着型上皮細胞が、外来遺伝子を発現する遺伝子組み換えされた接着型細胞である、(11)に記載の上皮間葉転換の誘導方法。
(13)前記接着型上皮細胞が動物由来の細胞である、(11)または(12)に記載の上皮間葉転換の誘導方法。
(14)前記動物由来の細胞がCHO細胞である、(13)に記載の上皮間葉転換の誘導方法。
(15)前記(12)〜(14)のいずれかに記載の上皮間葉転換の誘導方法により、上皮間葉転換した接着型細胞を培養することによる、外来遺伝子によってコードされた核酸又はタンパク質の生産方法。
(17)接着型上皮細胞を上皮間葉転換誘導させるための、脂環構造含有重合体成形体の使用。
(18)少なくとも底面が脂環構造含有重合体成形体からなるものである接着型上皮細胞の上皮間葉転換誘導用容器。
(19)前記脂環構造含有重合体が飽和ノルボルネン系重合体である、(18)に記載の上皮間葉転換誘導用容器。
接着型細胞が浮遊培養に馴化されると、接着型細胞が培養環境に適合するため、浮遊馴化していない接着型細胞を浮遊培養したときの平均倍化時間と比較して、浮遊培養に馴化された接着型細胞は平均倍化時間が短くなる。
本発明において、接着型細胞は、通常の培養条件において、細胞外基質に接着することで生存及び増殖可能な細胞のことをいう。接着型細胞としては、上皮細胞や線維芽細胞が挙げられる。また、これらの細胞に外来遺伝子を組み込んだ、遺伝子組み換えされた接着型細胞などの遺伝子工学処理を施された細胞であっても良い。接着細胞の具体例としては、CHO細胞、VERO細胞、NIH3T3細胞、HEK293細胞などが挙げられる。これらの中でも浮遊馴化のしやすさからCHO細胞が好ましい。
尚、本発明の上皮間葉転換の誘導方法に用いる細胞は、上記接着細胞の内、単層扁平上皮細胞、重層扁平上皮細胞、円柱上皮細胞、線毛(多列線毛)上皮細胞、移行上皮細胞、立方上皮細胞等に分類される上皮細胞やこれらと同様の形態を持つ上皮細胞様の細胞である。上述した具体例の内、CHO細胞やHEK293細胞が上皮細胞の例となる。
こうした組み換え細胞の培養中に脂環構造含有重合体成形体を接触させると、生理活性タンパク質の生産量が増大する。
液体培地としては、通常、pH緩衝作用があり、浸透圧が細胞に好適なものであり、細胞の栄養成分を含み、かつ、細胞に対して毒性がないものが用いられる。
pH緩衝作用を示す成分としては、トリス塩酸塩、各種リン酸塩、各種炭酸塩等が挙げられる。
液体培地の浸透圧調整は、通常、細胞の浸透圧とほぼ同じになるように、カリウムイオン、ナトリウムイオン、カルシウムイオン、グルコース等の濃度を調整した水溶液を用いて行われる。かかる水溶液としては、具体的には、リン酸緩衝生理食塩水、トリス緩衝生理食塩水、HEPES緩衝生理食塩水等の生理食塩水;乳酸リンゲル液、酢酸リンゲル液、重炭酸リンゲル液等のリンゲル液;等が挙げられる。
細胞の栄養成分としては、アミノ酸、核酸、ビタミン類、ミネラル類等が挙げられる。
液体培地としては、RPMI−1640、HAM、α−MEM、DMEM、EMEM、F−12、F−10、M−199等の各種市販品を利用することができる。
用いる添加剤としては、細胞表面の受容体に作用する、リガンド、アゴニスト、アンタゴニスト;核内受容体の、リガンド、アゴニスト、アンタゴニスト;コラーゲンやファイブネクチン等の細胞外マトリックス;細胞外マトリックスの一部分あるいは、模擬した化合物;細胞内の情報伝達経路に関わるタンパク質に作用する成分;細胞内の1次代謝又は2次代謝の酵素に作用する成分;細胞内の核内又はミトコンドリア内の遺伝子の発現に影響を与える成分;ウィルスベクター等と組み合わせて細胞内に導入することができるDNAやRNA;等が挙げられる。
これらの添加剤は一種単独で、あるいは二種以上を組み合わせて用いることができる。
例えば、二酸化炭素濃度が5%程度で、温度が20℃〜37℃の範囲で一定に維持された、加湿された恒温器を用いて細胞を培養することができる。
脂環構造含有重合体は、主鎖及び/又は側鎖に脂環構造を有する樹脂である。なかでも、機械的強度、耐熱性等の観点から、主鎖に脂環構造を含有するものが好ましい。
ノルボルネン系重合体は、ノルボルネン骨格を有する単量体であるノルボルネン系単量体を重合してなるものであり、開環重合によって得られるものと、付加重合によって得られるものに大別される。
これらの単量体は、置換基を1種又は2種以上有していてもよい。置換基としては、アルキル基、アルキレン基、アリール基、シリル基、アルコキシカルボニル基、アルキリデン基等が挙げられる。
これらの中でも、ノルボルネン系単量体と付加共重合可能なその他の単量体としては、α−オレフィン系単量体が好ましく、エチレンがより好ましい。
これらの単量体は、置換基を1種又は2種以上有していてもよい。置換基としては、アルキル基、アルキレン基、アリール基、シリル基、アルコキシカルボニル基、アルキリデン基等が挙げられる。
単環の環状オレフィン系重合体としては、例えば、シクロヘキセン、シクロヘプテン、シクロオクテン等の、単環の環状オレフィン系単量体の付加重合体を用いることができる。
(3)環状共役ジエン系重合体及びその水素化物
環状共役ジエン系重合体及びその水素化物としては、例えば、シクロペンタジエン、シクロヘキサジエン等の環状共役ジエン系単量体を1,2−又は1,4−付加重合した重合体及びその水素化物等が挙げられる。
(4)ビニル脂環式炭化水素重合体及びその水素化物
ビニル脂環式炭化水素重合体及びその水素化物としては、例えば、ビニルシクロヘキセン、ビニルシクロヘキサン等のビニル脂環式炭化水素系単量体の重合体及びその水素化物;スチレン、α−メチルスチレン等のビニル芳香族系単量体の重合体の芳香環部分の水素化物;等が挙げられる。ビニル脂環式炭化水素重合体は、これらの単量体と共重合可能な他の単量体との共重合体であってもよい。
これらの脂環構造含有重合体は、それぞれ単独で、あるいは2種以上を組み合わせて用いることができる。
本発明においてガラス転移温度は、JIS K 7121に基づいて測定されたものである。
また、脂環構造含有重合体には、軟質重合体以外のその他の重合体(以下、単に「その他の重合体」という)を混合しても良い。脂環構造含有重合体に混合されるその他の重合体の量は、脂環構造含有重合体100重量部に対して、通常200重量部以下、好ましくは150重量部以下、より好ましくは100重量部以下である。
脂環構造含有重合体に対して配合する各種配合剤やその他の重合体の割合が多すぎると細胞が浮遊し難くなるため、いずれも脂環構造含有重合体の性質を損なわない範囲で配合することが好ましい。
配合剤やその他の重合体との混合方法は、ポリマー中に配合剤が十分に分散する方法であれば、特に限定されない。また、配合順序に格別な制限はない。配合方法としては、例えば、ミキサー、一軸混練機、二軸混練機、ロール、ブラベンダー、押出機等を用いて樹脂を溶融状態で混練する方法、適当な溶剤に溶解して分散させた後、凝固法、キャスト法、又は直接乾燥法により溶剤を除去する方法等が挙げられる。
二軸混練機を用いる場合、混練後は、通常は溶融状態で棒状に押出し、ストランドカッターで適当な長さに切り、ペレット化して用いられることが多い。
具体的な容器の形状としては、ディッシュ、プレート、バッグ、チューブ、スキャホールド、カップ、ジャー・ファーメンター等の培養容器が挙げられる。
そして、こうして得られる脂環構造含有重合体成形体は、接着細胞の浮遊培養への馴化を促進する機能を有する、本発明の浮遊培養馴化促進剤である。
滅菌処理の方法に格別な制限はなく、成形体の形状や用いる細胞に応じて、公知の滅菌処理法選択することができる。例えば、高圧蒸気法や乾熱法等の加熱法;γ線や電子線等の放射線を照射する放射線法や高周波を照射する照射法;酸化エチレンガス(EOG)等のガスを接触させるガス法;滅菌フィルタを用いる濾過法;等、医療分野で一般的に採用される方法が挙げられる。これらの中でも、表面状態の変化が少ないことから、ガス法が好ましい。
この脂環構造含有重合体成形体の細胞と接触する面の水接触角は通常85°以上110°以下であり、85°以上105°以下であることが好ましく、85°以上100°以下であることが特に好ましい。
ここで、水接触角は、公知の全自動接触角計(本願実施例においては、協和界面科学社製「LCD−400S」を使用)を用い、ディッシュ底面をΦ30mmのサークルカッターで切り取って、試料の中心と、そこを中央とする1辺20mmの正方形の頂点4か所、計5か所を測定点とし、液滴の半径rと高さhを求め、tanθ1=h/r、θ=2arctan(h/r)で求められるθである(θ/2法)。
例えば、タンパク質をコードする外来遺伝子を発現することのできる組み換え細胞の培養中に、当該細胞と脂環式構造含有重合体成形体とを接触させることにより、タンパク質を大量に産生させることができる。
即ち、脂環構造含有重合体成形体は、上皮間葉転換剤として機能するものである。脂環構造含有重合体成形体が培養容器である場合、特別な操作を要さず、本容器を用いて培養するだけで上皮間葉転換を起こすことができる。
抗生物質G418への耐性遺伝子を内包するベクターpLXRN(Chlontech社製)の発現遺伝子の挿入サイトに、EPO遺伝子配列を挿入してプラスミドpLXRN−EPOを構築した。構築したプラスミドの中のEPO遺伝子は、その塩基配列解析を行うことにより確認した。
次に、構築したプラスミドpLXRN−EPOとプラスミドpVSV−G(Clontech社製)を、パッケージ細胞であるGP293T細胞(Clontech社製)に形質導入することにより、EPO遺伝子を含有するウイルス粒子を調製した。
なお、細胞へのプラスミドpLXRN−EPOの導入操作のための遺伝子導入試薬として、Lipofectamine(invitorogen社製)を用い、遺伝子導入操作は、メーカーのマニュアルに従った。
続いて、あらかじめ培養したCHO細胞試料の培養液を除いて、上記のEPO遺伝子を保持したウイルス粒子を含む培養上清試料を添加して、8時間培養維持することにより、EPO遺伝子を保持したウイルス粒子をCHO細胞に感染させた。
8時間のインキュベーションの後に、CHO細胞の培養培地に交換を行い、組み換えEPOを産生するCHO細胞の培養操作を行った。
ウイルスが感染し、ゲノムにEPO遺伝子が組み込まれたCHO細胞を選抜するため、抗生物質G418を培地に添加し、培養維持して、抗生物質G418耐性のCHO細胞を薬剤選択することにより、組み換えEPO産生CHO細胞(以下、EPO産生CHO細胞という。)を選抜した。
脂環構造含有重合体として、ノルボルネン系開環重合体水素化物〔ゼオネックス(登録商標)790R、日本ゼオン社製;以下、単に「790R」という〕を用いて、射出成形法により、直径3cmのディッシュを作製した。以下、このディッシュを「790R製ディッシュ」という。790R製ディッシュの底面(細胞と接触する側)の水接触角は、90°であった。
培養容器として790R製ディッシュを使用し、液体培地として10%牛胎児血清を含むHam培地を使用して、EPO産生CHO細胞を0.624×104cells/cm2で播種して、5%CO2雰囲気37℃の条件で7日間培養を行った。
(細胞数の計測)
以下の方法により、浮遊している細胞と接着している細胞の数を計測した。
浮遊している細胞:培養上清を取り出して遠心処理した試料から、培地上清のみを除き、得られた細胞成分にトリパンブルーを作用させた。3分程度反応させた後、試料をトリパンブルー染色して生細胞及び死細胞数を計測した。計測には、細胞数計測装置を用いた。
接着している細胞:培養上清を除去し、生理食塩水で洗浄後、トリプシン処理によりディッシュから細胞を剥離した。剥離後、血清含培養培地で、これら細胞試料をトリパンブルー染色して生細胞及び死細胞数を計測した。計測は、同様に装置を用いた。
実施例1において、790R製ディッシュに代えて、ポリスチレン製ディッシュ〔ファルコン(登録商標)ディッシュ(型番353001、ベクトンデッキンソン社製)〕を使用したことを除き、実施例1と同様にして培養を行い、細胞数を計測した。
前培養(播種後7日)期間に、790R製ディッシュでは、全細胞数に対して8割程度の浮遊しているEPO産生CHO細胞の出現が観察され、大部分が生細胞であった。一方、ポリスチレン製ディッシュでは、大部分は底面に接着している細胞であり、浮遊している細胞は、1個の細胞単独で存在し、かつ、大部分が死滅状態にあった。
790R製ディッシュ前培養工程で出現した浮遊しているEPO産生CHO細胞及び未だ接着しているEPO産生CHO細胞をチューブに回収した。尚、ここで接着している細胞については、ディッシュ中の培養上清を除去し、生理食塩水で洗浄後、トリプシン処理によりディッシュから細胞を剥離・回収した。各々の細胞を滅菌チューブの中に混合し、遠心分離操作後に、培養培地を取り除き、細胞成分のみを新しい培地に懸濁した。細胞が懸濁された培地を浮遊培養装置(エイブル社製)の培養容器に添加し、浮遊培養を開始した。
実施例2において、前培養工程でポリスチレン製ディッシュを使用したことを除き、実施例2と同様に操作を行い、浮遊培養を開始した。
790R製ディッシュで前培養したEPO産生CHO細胞は、ポリスチレン製ディッシュで前培養したEPO産生CHO細胞よりも増殖しており、790R製ディッシュで前培養した細胞試料は、浮遊細胞システムに馴化した試料であると考えられる。
更に、比較のため、ポリスチレン製ディッシュで静置培養した、即ち接着状態で培養されている細胞の平均倍化時間も測定した。
実施例1と同様の方法により8日間培養後の培養容器中のCHO細胞と、比較例1と同様の方法により8日間培養後培養容器中のCHO細胞を回収し、回収した全細胞をTrizol(Invitrogen社製)で溶解した。溶解した試料から、RNAを採取した。採取方法は製品マニュアルに従った。次いで、回収されたRNAを、(HiSeq(登録商標)、Illumina社製)で解析した。
実験はNGS解析条件を変更して2回実施した。両解析とも、paired−end法で実施した。各々Read数は3000万または5000万程度であった。リファレンスとして、公開情報(GCF_000223135.1_CriGri_1.0_ma.fa.fai)を用いた。
得られた転写量のデータを、(CLC Genomics Workbench、CLC bio社製)にてRNA−Seqを解析し、mRNAの転写量をRPKM値として数値化した。
得られたRPKM値を、(CLC Genomics Workbench、CLC bio社製)にてEDGE解析し、790R製ディッシュで培養した細胞群の転写量と、ポリスチレン製ディッシュで培養した細胞群の転写量を比較し、Fold Change値(ポリスチレン製ディッシュでの転写量に対する790R製ディッシュでの転写量の比率)を得た。ここで、Fold Change値が正の整数であれば790R製ディッシュの転写量が多く、Fold Change値が負の整数であればポリスチレン製ディッシュの転写量が多いことになり、その絶対値が大きいほど、両者間での差が大きいことになる。
得られた結果を表1及び2に示す。
表1及び2の結果は、本発明の方法により培養された細胞が、上皮間葉転換誘導されたことを示唆するものである。
Claims (13)
- 外来遺伝子を発現する遺伝子組み換えされた接着型細胞を、
少なくとも細胞が接触する面が飽和ノルボルネン系重合体で形成されたノルボルネン系重合体成形体であって、飽和ノルボルネン系重合体の板状成形体、飽和ノルボルネン系重合体のシート状成形体、これらの成形体を構成部材の一部として含む容器、飽和ノルボルネン系重合体成形体で全体を構成された容器、及び、飽和ノルボルネン系重合体成形体と他の重合体成形体との積層体で構成された容器からなる群から選ばれる飽和ノルボルネン系重合体成形体の、飽和ノルボルネン系重合体部分と接触した状態で培養する工程を有する、浮遊培養に馴化した接着型細胞の調製方法。 - 前記外来遺伝子がタンパク質をコードする遺伝子である、請求項1に記載の接着型細胞の調製方法。
- 前記接着型細胞が動物由来の細胞である、請求項1又は2に記載の接着型細胞の調製方法。
- 前記動物由来の細胞がCHO細胞である、請求項3に記載の接着型細胞の調製方法。
- 請求項1〜4のいずれかに記載の接着型細胞の調製方法により、前記浮遊培養に馴化した接着型細胞を培養することによる、外来遺伝子によってコードされた核酸又はタンパク質の生産方法。
- 飽和ノルボルネン系重合体の板状成形体、飽和ノルボルネン系重合体のシート状成形体、これらの成形体を構成部材の一部として含む容器、飽和ノルボルネン系重合体成形体で全体を構成された容器、及び、飽和ノルボルネン系重合体成形体と他の重合体成形体との積層体で構成された容器からなる群から選ばれる飽和ノルボルネン系重合体成形体からなり、少なくとも、接着型細胞と接触する部分が、飽和ノルボルネン系重合体である、
接着型細胞の浮遊培養馴化促進剤。 - 接着型細胞を、
少なくとも細胞が接触する面が飽和ノルボルネン系重合体で形成されたノルボルネン系重合体成形体であって、飽和ノルボルネン系重合体の板状成形体、飽和ノルボルネン系重合体のシート状成形体、これらの成形体を構成部材の一部として含む容器、飽和ノルボルネン系重合体成形体で全体を構成された容器、及び、飽和ノルボルネン系重合体成形体と他の重合体成形体との積層体で構成された容器からなる群から選ばれる飽和ノルボルネン系重合体成形体の、飽和ノルボルネン系重合体部分と接触させ、液体培地中に浮遊培養に馴化させる、前記飽和ノルボルネン系重合体成形体の使用。 - 外来遺伝子を発現する遺伝子組み換えされた接着型細胞である接着型上皮細胞を、
少なくとも細胞が接触する面が飽和ノルボルネン系重合体で形成されたノルボルネン系重合体成形体であって、飽和ノルボルネン系重合体の板状成形体、飽和ノルボルネン系重合体のシート状成形体、これらの成形体を構成部材の一部として含む容器、飽和ノルボルネン系重合体成形体で全体を構成された容器、及び、飽和ノルボルネン系重合体成形体と他の重合体成形体との積層体で構成された容器からなる群から選ばれる飽和ノルボルネン系重合体成形体の、飽和ノルボルネン系重合体部分と接触した状態で培養する工程を有する、上皮間葉転換の誘導方法。 - 前記接着型上皮細胞が動物由来の細胞である、請求項8に記載の上皮間葉転換の誘導方法。
- 前記動物由来の細胞がCHO細胞である、請求項9に記載の上皮間葉転換の誘導方法。
- 請求項8〜10のいずれかに記載の上皮間葉転換の誘導方法により、上皮間葉転換した接着型細胞を培養することによる、外来遺伝子によってコードされた核酸又はタンパク質の生産方法。
- 飽和ノルボルネン系重合体の板状成形体、飽和ノルボルネン系重合体のシート状成形体、これらの成形体を構成部材の一部として含む容器、飽和ノルボルネン系重合体成形体で全体を構成された容器、及び、飽和ノルボルネン系重合体成形体と他の重合体成形体との積層体で構成された容器からなる群から選ばれる飽和ノルボルネン系重合体成形体からなり、少なくとも、外来遺伝子を発現する遺伝子組み換えされた接着型細胞である接着型上皮細胞と接触する部分が、飽和ノルボルネン系重合体である、
前記接着型上皮細胞の上皮間葉転換誘導剤。 - 少なくとも細胞が接触する面が飽和ノルボルネン系重合体で形成されたノルボルネン系重合体成形体であって、飽和ノルボルネン系重合体の板状成形体、飽和ノルボルネン系重合体のシート状成形体、これらの成形体を構成部材の一部として含む容器、飽和ノルボルネン系重合体成形体で全体を構成された容器、及び、飽和ノルボルネン系重合体成形体と他の重合体成形体との積層体で構成された容器からなる群から選ばれる飽和ノルボルネン系重合体成形体の、飽和ノルボルネン系重合体部分を、外来遺伝子を発現する遺伝子組み換えされた接着型細胞である接着型上皮細胞に接触させ、上皮間葉転換誘導させる、前記飽和ノルボルネン系重合体成形体の使用。
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