JP6874147B2

JP6874147B2 - 腫瘍特異的殺傷アデノウイルスおよび免疫チェックポイント阻害剤を含む抗癌用組成物

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Publication number: JP6874147B2
Application number: JP2019547084A
Authority: JP
Inventors: チェ・オク・ユン; ヒョ・ミン・アン
Original assignee: ジーンメディスン・カンパニー・リミテッド
Priority date: 2017-02-28
Filing date: 2018-02-28
Publication date: 2021-05-19
Anticipated expiration: 2038-02-28
Also published as: WO2018159991A1; CA3054664A1; JP7313394B2; US11364272B2; US20190388488A1; AU2022202457A1; RU2740713C1; AU2018228308A1; EP3591041A1; KR20200133193A; JP2023086736A; JP2021112199A; JP2020508676A; CN110573612A; KR102182957B1; AU2018228308B2; KR20180099557A; KR102352632B1; US20220347242A1; EP3591041A4

Description

本発明は、腫瘍特異的殺傷アデノウイルスおよび免疫チェックポイント阻害剤を含む抗癌用組成物に関する。

癌治療剤の急速な発展にもかかわらず、癌は、依然として全世界的に死亡率が高い疾患の一つである。既存の臨床的に使用されている主な癌治療方法は、外科的手術、放射線治療、抗癌剤治療方法であるか、またはこれを併行する治療として最大限癌細胞を患者から除去する方法である。しかし、このような治療は、比較的初期癌であって、転移にならない状態で、癌細胞を完全に除去したときにのみ治療効果を示し、早く***する他の正常な細胞も殺して、様々な副作用を起こすことができるという短所がある。したがって、最近には、免疫治療方法として、身体の腫瘍特異的免疫活性を利用した癌を治療する研究がなされている。

しかし、癌は、腫瘍内免疫抑制環境（ｉｍｍｕｎｏｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎｔｕｍｏｒｍｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ）を誘導することによって、多様な宿主免疫反応を巧妙に回避し、破壊して、結果的に、腫瘍の生存を持続的に維持すると共に、免疫体系が活性化したとしても、活性化した抗腫瘍免疫反応から逃避できる能力を有するという点から、免疫治療に困難を経験しているのが現状である。したがって、腫瘍内免疫抑制環境を改善して癌細胞に対する免疫反応を増進させるために、ＩＬ−１２、ＩＬ−１８、ＩＬ−２３、ＩＦＮ−γ（ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ−ｇａｍｍａ）、ＧＭ−ＣＳＦ（ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ−ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｃｏｌｏｎｙ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇｆａｃｔｏｒ）、ＴＮＦ−α（ｔｕｍｏｒｎｅｃｒｏｓｉｓｆａｃｔｏｒａｌｐｈａ）のようなサイトカイン遺伝子、Ｂ７分子のような同時刺激誘発因子、直接的に抗原提示細胞（ａｎｔｉｇｅｎｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇｃｅｌｌ；ＡＰＣ）の役割をする樹枝状細胞（ｄｅｎｄｒｉｔｉｃｃｅｌｌ；ＤＣ）、腫瘍抗原で活性化させたＴ細胞、自然殺害細胞（ｎａｔｕｒａｌｋｉｌｌｅｒｃｅｌｌ；ＮＫ）等を利用した研究が多角的に進行されている。特に、ＩＬ−１２は、主に単核細胞（ｍｏｎｏｃｙｔｅｓ）、大食細胞（ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ）、ＤＣなどのようなＡＰＣから分泌され、癌細胞を効果的に除去できる細胞毒性Ｔ細胞（ｃｙｔｏｔｏｘｉｃＴｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ；ＣＴＬ）とＮＫ細胞に直接作用してこれらを活性化させ、ＩＦＮ−γの分泌を誘導すると共に、癌細胞に対する殺傷能力も増強させると知られている。また、ナイーブ（ｎａｉｖｅ）ＣＤ４^＋リンパ球に作用してＴｈ１（Ｔｈｅｌｐｅｒ１）細胞への分化を促進させて、抗癌免疫反応に中枢的な役割をする細胞媒介免疫反応（ｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄｉｍｍｕｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅ）を誘導し、増強させることによって、抗癌免疫反応を活性化させるのに重要な役割をする。また、ＶＥＧＦは、血管形成および血管新生を促進させる細胞により生産される信号タンパク質であって、骨髄でＴ細胞前駆体に影響を与えて、Ｔ細胞および樹枝状細胞の増殖および成熟を抑制すると共に、血管新生において重要な機能をして、癌転移という副作用を示す。したがって、ＶＥＧＦは、腫瘍成長の促進因子だけでなく、抗癌免疫における抑制因子としても作用し、ＶＥＧＦｓｈＲＮＡによるＶＥＧＦ下向き調節によって免疫反応が回復され、抗癌効果が増加すると予想される。また、ＧＭ−ＣＳＦは、ＤＣを刺激してＡＰＣへの分化を促進させて、ＣＤ４^＋およびＣＤ８^＋Ｔ細胞の免疫反応を強化させる役割をし、また、１次単核細胞（ｐｒｉｍａｒｙｍｏｎｏｃｙｔｅ）でＭＨＣ（ｍａｊｏｒｈｉｓｔｏｃｏｍｐａｔｉｂｉｌｉｔｙｃｏｍｐｌｅｘ）ｃｌａｓｓIIを構成する分子の発現調節にも関与する。また、腫瘍内にＧＭ−ＣＳＦ発現の効果によって腫瘍の周辺に多くのＡＰＣが集まるように誘導することによって、腫瘍抗原を効果的にプロセッシングして、強い抗癌免疫反応が誘導されることが報告されたことがある。

これに基づいて、本研究室でも、Ｅ１Ｂ５５ｋＤａ遺伝子が消失した腫瘍選択的殺傷アデノウイルスであるＹＫＬ−１（Ａｄ−Ｅ１Ｂ５５）を利用して、ＩＬ−１２の抗腫瘍効果を報告したことがあり、Ｅ１Ｂ遺伝子の消失とＥ１ＡのＲｂ結合部位が変異されて腫瘍選択的殺傷能が増進されたＲｄＢアデノウイルスを利用して、ＧＭ−ＣＳＦの抗腫瘍効果も報告したことがある。しかし、腫瘍内免疫抑制環境が改善されても、腫瘍の低い免疫原性によって依然として免疫治療法で癌を完全に治療するには多くの限界点を表わしているのが現状である。

本発明者らは、腫瘍の免疫監視（ｉｍｍｕｎｅｓｕｒｖｅｉｌｌａｎｃｅ）回避を克服するための免疫治療療法を開発するために鋭意努力した結果、ＩＬ−１２およびｓｈＶＥＧＦ（ｖａｓｃｕｌａｒｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒ（ＶＥＧＦ）−ｔａｒｇｅｔｉｎｇｓｈｏｒｔｈａｉｒｐｉｎｒｉｂｏｎｕｃｌｅｉｃａｃｉｄ）、またはＩＬ−１２およびＧＭ−ＣＳＦ−Ｒｅｌａｘｉｎを同時に発現する組換えアデノウイルスを製造して、これらの優れた抗癌効果をｉｎｖｉｖｏ上で確認しただけでなく、免疫チェックポイント阻害剤との併用を通じて組換えアデノウイルスの抗癌効果が向上することを確認し、これに基づいて本発明を完成するに至った。

したがって、本発明の目的は、ＩＬ−１２およびｓｈＶＥＧＦ、またはＩＬ−１２およびＧＭ−ＣＳＦ−Ｒｅｌａｘｉｎを同時発現する組換えアデノウイルスを提供することにある。

本発明の他の目的は、癌の予防または治療のための前記組換えアデノウイルスの医薬的用途を提供することにある。

本発明のさらに他の目的は、免疫チェックポイント阻害剤との併用製剤として、癌の予防または治療のための前記組換えアデノウイルスの医薬的用途を提供することにある。

しかし、本発明が達成しようとする技術的課題は、以上で言及した課題に制限されず、言及されていないさらに他の課題は、下記の記載から当業者に明確に理解され得る。

上記のような本発明の目的を達成するために、本発明は、ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ１２）を暗号化する遺伝子；ＧＭ−ＣＳＦ（Ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ−ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｃｏｌｏｎｙ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇｆａｃｔｏｒ）を暗号化する遺伝子；およびＲｅｌａｘｉｎを暗号化する遺伝子を含む組換えアデノウイルス、またはＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ１２）を暗号化する遺伝子；およびＶＥＧＦ発現を抑制するｓｈＲＮＡを暗号化する遺伝子を含む組換えアデノウイルスを提供する。

本発明の一具現例として、前記組換えアデノウイルスは、Ｅ１およびＥ３領域よりなる群から選ばれるいずれか一つ以上の領域が欠失されていてもよい。

本発明の他の具現例として、前記ＩＬ−１２を暗号化する遺伝子は、ＩＬ−１２Ａ（ｐ３５）遺伝子配列、ＩＲＥＳ配列およびＩＬ−１２Ｂ（ｐ４０）遺伝子配列を含み、組換えアデノウイルスのＥ１またはＥ３領域に挿入されていてもよい。

本発明のさらに他の具現例として、前記ＧＭ−ＣＳＦおよびＲｅｌａｘｉｎを暗号化する遺伝子は、ＧＭ−ＣＳＦ遺伝子配列、ＩＲＥＳ配列、およびＲｅｌａｘｉｎ遺伝子配列を含み、組換えアデノウイルスのＥ１またはＥ３領域に挿入されていてもよい。

本発明のさらに他の具現例として、前記ＶＥＧＦ発現を抑制するｓｈＲＮＡを暗号化する遺伝子は、ＶＥＧＦのｍＲＮＡに相補的に結合し、組換えアデノウイルスのＥ１またはＥ３領域に挿入されていてもよい。

また、本発明は、前記組換えアデノウイルス；および薬学的に許容される担体を含む癌の予防または治療用薬学的組成物を提供する。

本発明の一具現例として、前記組成物は、ＰＤ−１拮抗剤、ＰＤ−Ｌ１拮抗剤、ＰＤ−Ｌ２拮抗剤、ＣＤ２７拮抗剤、ＣＤ２８拮抗剤、ＣＤ７０拮抗剤、ＣＤ８０拮抗剤、ＣＤ８６拮抗剤、ＣＤ１３７拮抗剤、ＣＤ２７６拮抗剤、ＫＩＲｓ拮抗剤、ＬＡＧ３拮抗剤、ＴＮＦＲＳＦ４拮抗剤、ＧＩＴＲ拮抗剤、ＧＩＴＲＬ拮抗剤、４−１ＢＢＬ拮抗剤、ＣＴＬＡ−４拮抗剤、Ａ２ＡＲ拮抗剤、ＶＴＣＮ１拮抗剤、ＢＴＬＡ拮抗剤、ＩＤＯ拮抗剤、ＴＩＭ−３拮抗剤、ＶＩＳＴＡ拮抗剤、およびＫＬＲＡ拮抗剤、およびこれらの組合よりなる群から選ばれるいずれか一つの免疫チェックポイント阻害剤と併用投与され得る。

本発明の他の具現例として、前記組成物は、抗腫瘍免疫性を増進させることができる。

本発明のさらに他の具現例として、前記癌は、胃癌、肺癌、非小細胞性肺癌、乳癌、卵巣癌、肝癌、気管支癌、鼻咽頭癌、喉頭癌、すい臓癌、膀胱癌、結腸癌、子宮頸癌、骨癌、非小細胞性骨癌、血液癌、皮膚癌、頭部または頸部癌、子宮癌、直腸癌、肛門付近癌、卵管癌、子宮内膜癌、膣癌、陰門癌、ホジキン病（Ｈｏｄｇｋｉｎ’ｓｄｉｓｅａｓｅ）、食道癌、小腸癌、内分泌腺癌、甲状腺癌、副甲状腺癌、副腎癌、軟組織肉腫、尿道癌、陰茎癌、前立腺癌、慢性または急性白血病、リンパ球リンパ腫、腎臓または輸尿管癌、腎臓細胞癌腫、腎臓骨盤癌腫、唾液腺腫瘍、肉腫癌、仮性粘液腫、肝芽腫、睾丸癌、膠芽腫、口脣癌、卵巣生殖細胞腫瘍、基底細胞癌、多発性骨髄腫、胆のう癌、脈絡膜黒色腫、ファーテル膨大部癌、腹膜癌、舌癌、小細胞癌、小児リンパ腫、神経芽細胞腫、十二指腸癌、尿管癌、星状細胞腫、髄膜腫、腎盂癌、外陰部癌、胸腺癌、中枢神経系（ｃｅｎｔｒａｌｎｅｒｖｏｕｓｓｙｓｔｅｍ、ＣＮＳ）腫瘍、１次中枢神経系リンパ腫、脊髄腫瘍、脳幹神経膠腫および脳下垂体腺腫よりなる群から選ばれ、また、前記癌は、再発癌であってもよい。

ＩＬ−１２およびｓｈＶＥＧＦ、またはＩＬ−１２およびＧＭ−ＣＳＦ−Ｒｅｌａｘｉｎが導入された、本発明の組換えアデノウイルスは、免疫機能を向上させて、優れた抗癌効果を示し、このような抗癌効果は、免疫チェックポイント阻害剤との併用を通じて顕著に増進されることを確認することができたところ、本発明は、癌治療分野の核心技術に活用され得る。

図１は、ＩＬ−１２とＶＥＧＦｓｈＲＮＡを同時発現する腫瘍殺傷アデノウイルスの特徴を示したものであって、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄの遺伝的構造を模式化した図である。ＲｄＢは、変異されたＥ１Ａ（ｏｐｅｎｓｔａｒ−Ｒｂタンパク質結合部位の突然変異）を含んでおり、Ｅ１Ｂ１９および５５ｋＤａ（Ｅ１Ｂ）、およびＥ３領域（Ｅ３）が欠失されており；マウスＩＬ−１２およびマウスｓｈＶＥＧＦは、アデノウイルスゲノムのＥ１またはＥ３領域にそれぞれ挿入された。図２は、ＩＬ−１２とＧＭ−ＣＳＦおよびＲｅｌａｘｉｎ（ＧＭＣＳＦ−Ｒｅｌａｘｉｎ）を同時発現する腫瘍殺傷アデノウイルスの特徴を示したものであって、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの遺伝的構造を模式化した図である。ＩＬ−１２およびＧＭＣＳＦ−Ｒｅｌａｘｉｎは、アデノウイルスゲノムのＥ１またはＥ３領域にそれぞれ挿入された。ＧＭＣＳＦとＲｅｌａｘｉｎは、ＩＲＥＳ（ｉｎｔｅｒｎａｌｒｉｂｏｓｏｍｅｅｎｔｒｙｓｉｔｅ）により連結された発現システムによっても発現することができ、本発明でＩＲＥＳは、複数種のウイルスおよび細胞のＲＮＡｓで発見される調節配列である。図３は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−Ｌ１抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、図３ａは、腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図３ｂは、黒色腫マウスの生存率の変化を確認した結果である。Ｃ５７ＢＬ／６マウスの腫瘍内にＡｄ５×１０^９ｖｉｒａｌｐａｒｔｉｃｌｅ（ＶＰ）（図３ａ；初期腫瘍体積：８０〜１００ｍｍ^３）アデノウイルスを１日、３日および５日目に投与し、抗ＰＤ−Ｌ１抗体を２００μｇで腹腔内に投与した。腫瘍の体積は、実験終了時まで毎日モニタリングして記録した。赤色の矢印は、アデノウイルスの注入時期を、黒色の矢印は、抗体の注入時期を示す。図３は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−Ｌ１抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、図３ａは、腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図３ｂは、黒色腫マウスの生存率の変化を確認した結果である。Ｃ５７ＢＬ／６マウスの腫瘍内にＡｄ５×１０^９ｖｉｒａｌｐａｒｔｉｃｌｅ（ＶＰ）（図３ａ；初期腫瘍体積：８０〜１００ｍｍ^３）アデノウイルスを１日、３日および５日目に投与し、抗ＰＤ−Ｌ１抗体を２００μｇで腹腔内に投与した。腫瘍の体積は、実験終了時まで毎日モニタリングして記録した。赤色の矢印は、アデノウイルスの注入時期を、黒色の矢印は、抗体の注入時期を示す。図４は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−Ｌ１抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、図４ａは、腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図４ｂは、黒色腫マウスの生存率の変化を確認した結果である。図４は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−Ｌ１抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、図４ａは、腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図４ｂは、黒色腫マウスの生存率の変化を確認した結果である。図５は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄの投与およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、相対的に低い用量である１×１０^９ＶＰのＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄを投与した場合、腫瘍の体積変化を確認した結果である。図６は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、相対的に低い用量である１×１０^９ＶＰのＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄを投与した場合、腫瘍の体積変化を確認した結果である。図７は、黒色腫マウスにおいてＨｍＴ−Ｒｄ１９−Ｋ３５／ＩＬ２１Ａｄ、ＲｄＢ／ＧＭＣＳＦ／ｓｈＶＥＧＦＡｄ、およびＹＫＬ−１／ＧＭＣＳＦ／Ｂ７．１Ａｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による抗癌効果を確認した結果である。図８は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、図８ａは、腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図８ｂは、黒色腫マウスの生存率の変化を確認した結果である。図８は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、図８ａは、腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図８ｂは、黒色腫マウスの生存率の変化を確認した結果である。図９は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（項ＣＴＬＡ−４抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、図９ａは、腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図９ｂは、黒色腫マウスの生存率の変化を確認した結果である。図９は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（項ＣＴＬＡ−４抗体）の併用による抗癌効果を確認したものであって、図９ａは、腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図９ｂは、黒色腫マウスの生存率の変化を確認した結果である。図１０は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−Ｌ１抗体）の併用による抗癌免疫記憶（ａｎｔｉｔｕｍｏｒｉｍｍｕｎｅｍｅｍｏｒｙ）効果を確認したものであって、図１０ａは、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄを投与した場合、２次腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図１０ｂは、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）を併用した場合、２次腫瘍の体積変化を確認した結果である。図１０は、黒色腫マウスにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦの投与、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−Ｌ１抗体）の併用による抗癌免疫記憶（ａｎｔｉｔｕｍｏｒｉｍｍｕｎｅｍｅｍｏｒｙ）効果を確認したものであって、図１０ａは、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄを投与した場合、２次腫瘍の体積変化を確認した結果であり、図１０ｂは、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）を併用した場合、２次腫瘍の体積変化を確認した結果である。図１１は、シリアンハムスターのすい臓癌細胞株（Ｈａｐ−Ｔ１）にＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄを感染させた後、ｍｕｌｔｉｐｌｉｃｉｔｙｏｆｉｎｆｅｃｔｉｏｎ（ＭＯＩ）によるＩＬ−１２およびＧＭＣＳＦの発現変化をＥｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔａｓｓａｙ（ＥＬＩＳＡ）を通じて確認した結果である。図１２は、シリアンハムスターのすい臓癌細胞株（Ｈａｐ−Ｔ１）にＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄを感染させた後、ＭＯＩによるＲｅｌａｘｉｎの発現変化をＲｅｖｅｒｓｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｐｏｌｙｍｅｒａｓｅｃｈａｉｎｒｅａｃｔｉｏｎ（ＲＴ−ＰＣＲ）を通じて確認した結果である。図１３は、シリアンハムスターの腫瘍動物モデルにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による腫瘍の体積変化を確認した結果である。図１４は、シリアンハムスターの腫瘍動物モデルにおいてＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による腫瘍組織の変化を免疫組織学的方法で確認した結果である。図１５は、ｄｒａｉｎｉｎｇｌｙｍｐｈｎｏｄｅ（ＤＬＮ）でＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用によるｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ（ＩＦＮ）−γ−発現ＣＤ４^＋またはＣＤ８^＋Ｔ細胞の群集変化を確認した結果である。図１６は、腫瘍組織内浸潤されたリンパ球でＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用によるｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ（ＩＦＮ）−γ−発現ＣＤ４^＋またはＣＤ８^＋Ｔ細胞の群集変化を確認した結果である。図１７は、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による腫瘍組織内ＩＦＮ−γの発現変化を確認した結果である。図１８は、免疫チェックポイント阻害剤に対する抵抗性を有する条件下で、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による腫瘍の体積変化を確認した結果である。図１９は、免疫チェックポイント阻害剤に対する抵抗性を有する条件下で、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の併用による腫瘍の体積変化を投与後２３日目に確認した結果である。図２０は、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与による免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の腫瘍組織内浸透変化を確認したものであって、腫瘍組織内Ａｌｅｘａ４８８−αＰＤ−１の蓄積を免疫蛍光分析を通じて定量化した結果である。図２１は、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与による免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の腫瘍組織内浸透変化を確認したものであって、Ａｌｅｘａ４８８−αＰＤ−１がＣＤ４^＋またはＣＤ８^＋Ｔ細胞の発現部位に位置するか否かを免疫染色を通じて確認した結果である。図２２は、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与による免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の浸透変化を全身を対象に確認したものであって、時間の経過による免疫ＰｏｓｉｔｒｏｎＥｍｉｓｓｉｏｎＴｏｍｏｇｒａｐｈｙ（ＰＥＴ）イメージを分析した結果である。図２３は、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与による免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体）の浸透変化を全身を対象として確認したものであって、腫瘍組織を含む多様な組織内^６４ＣＵ−αＰＤ−１の分布または吸収を％ＩＤ／ｇで評価して比較した結果である。

以下、本発明を詳細に説明することとする。

本発明は、（ａ）ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ１２）を暗号化する遺伝子；ＧＭ−ＣＳＦ（Ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ−ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｃｏｌｏｎｙ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇｆａｃｔｏｒ）を暗号化する遺伝子；およびＲｅｌａｘｉｎを暗号化する遺伝子を含む組換えアデノウイルス、または（ｂ）ＩＬ−１２を暗号化する遺伝子；およびＶＥＧＦ発現を抑制するｓｈＲＮＡを暗号化する遺伝子を含む組換えアデノウイルスを提供する。

癌の免疫遺伝子治療法は、去る数十年間さらに有望な接近法として発展してきたが、腫瘍も、免疫監視体系を避けるために数多くの他の戦略を作ってきた。このような障害を克服し、抗癌免疫の効果を増進させるために、免疫抑制を回復し、抗癌免疫を増加させるための適切な治療アジュバント（ａｄｊｕｖａｎｔ）として、ＩＬ−１２および血管内皮成長因子（ＶＥＧＦ）ｓｈＲＮＡ（ｓｈｏｒｔｈａｉｒｐｉｎＲＮＡ）、またはＩＬ−１２およびＧＭ−ＣＳＦ−Ｒｅｌａｘｉｎを同時発現する腫瘍殺傷アデノウイルス（ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ）システムを構築した。ＩＬ−１２は、Ｔｈｅｌｐｅｒ１細胞の分化を誘導し、細胞毒性Ｔリンパ球および自然殺傷細胞の細胞毒性を活性化させることによって、抗癌免疫を増加させる。ｓｈＶＥＧＦは、Ｔ細胞および樹枝状細胞の増殖および成熟を促進し、ＧＭ−ＣＳＦは、ＤＣを刺激してＡＰＣへの分化を促進させて、ＣＤ４^＋およびＣＤ８^＋Ｔ細胞の免疫反応を強化させる役割をすると知られており、このような効果は、ＩＬ−１２機能をさらに増幅させるものと予想した。これより、本発明者らは、最初に腫瘍内にＩＬ−２およびｓｈＶＥＧＦ、またはＩＬ−１２およびＧＭ−ＣＳＦ−Ｒｅｌａｘｉｎを同時発現するアデノウイルスを利用した免疫遺伝子治療を試みたという点から技術的特徴がある。本発明の一実施例では、前記組換えアデノウイルス（ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ）を黒色腫動物モデルに投与した結果、腫瘍の成長阻害率、完全寛解率、およびマウスの生存率が増加することを実験的に確認した。

これだけでなく、ＩＬ−１２は、抗癌免疫治療のための核心サイトカインとして多くの注目を受けており、特に、体内免疫が低下している患者を対象とする抗癌免疫治療療法では、有効な治療的効能を得るために、ＩＬ−１２の反復投与が頻繁に考慮されているのが現状である。ただし、前記ＩＬ−１２は、臨床的に全身、特に、腎臓に対するサイトカイン−関連毒性が知られていて、制限された用量の範囲内だけで癌治療剤として使用しなければならないという技術的限界を持っている。このような技術的背景下で、本発明によるＩＬ−１２遺伝子と追加遺伝子を同時発現する組換えアデノウイルスは、低いウイルス力価でも高い腫瘍殺傷効果を誘導することによって、従来の抗癌免疫治療の限界と指摘された、ＩＬ−１２の高用量および反復投与による正常細胞に対する毒性問題を解消したという点からさらに他の技術的特徴がある。

したがって、本発明の組換えアデノウイルスは、ＩＬ−１２を暗号化する遺伝子を含み、ＧＭ−ＣＳＦを暗号化する遺伝子とＲｅｌａｘｉｎを暗号化する遺伝子、およびＶＥＧＦ発現を抑制するｓｈＲＮＡを暗号化する遺伝子のうちいずれか一つを含むことを特徴とする。

本発明で使用される「ＩＬ−１２を暗号化する遺伝子」は、ＩＬ−１２Ａ（ｐ３５）遺伝子配列およびＩＬ−１２Ｂ（ｐ４０）遺伝子配列を含み、ＶｉｒａｌＰｒｏｔｅｉｎの効果的な翻訳のために、ＩＬ−１２Ａ（ｐ３５）遺伝子配列とＩＬ−１２Ｂ（ｐ４０）遺伝子配列との間にＩＲＥＳ配列を含むことができる。好ましくは、前記ＩＬ−１２Ａ（ｐ３５）遺伝子配列は、配列番号１、前記ＩＬ−１２Ｂ（ｐ４０）遺伝子配列は、配列番号２、前記ＩＲＥＳ配列は、配列番号３の塩基配列からなり得るが、これらに制限されるものではない。

本発明で使用される「ＧＭ−ＣＳＦを暗号化する遺伝子」および「Ｒｅｌａｘｉｎを暗号化する遺伝子」は、それぞれ、ＧＭ−ＣＳＦ遺伝子配列およびＲｅｌａｘｉｎ遺伝子配列を含み、これらも、ＧＭ−ＣＳＦ遺伝子配列とＲｅｌａｘｉｎ遺伝子配列との間にＩＲＥＳ配列を含むことができる。好ましくは、前記ＧＭ−ＣＳＦ遺伝子配列は、配列番号４、前記Ｒｅｌａｘｉｎ遺伝子配列は、配列番号５、前記ＩＲＥＳ配列は、配列番号３の塩基配列からなり得るが、これらに制限されるものではない。

本発明で使用される「ＶＥＧＦ発現を抑制するｓｈＲＮＡを暗号化する遺伝子」は、ヘアピン構造を有し、ＲＮＡ妨害または遺伝子サイレンシングを媒介できる遺伝子を意味する。前記遺伝子は、ＶＥＧＦｍＲＮＡに相補的な配列を含むが、用語「相補的」は、１００％相補的な場合だけでなく、ＲＮＡ妨害（ｉｎｔｅｒｆｅｒｅｎｃｅ）機序を通じてＶＥＧＦ遺伝子の発現を抑制できるほどの不完全な相補性も包括する意味であり、好ましくは９０％の相補性、より好ましくは９８％の相補性、最も好ましくは１００％の相補性を意味する。本明細書で１００％相補性を表現する場合には、「完全相補的（ｃｏｍｐｌｅｔｅｌｙｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ）」に特別に記載される。本明細書では、ｓｈＶＥＧＦとも記載し、これに制限されるものではないが、前記遺伝子は、配列番号６または配列番号７で表されるＶＥＧＦのｍＲＮＡに相補的に結合して、ＶＥＧＦの発現を抑制することができる。

前記遺伝子配列は、実質的な同一性（ｓｕｂｓｔａｎｔｉａｌｉｄｅｎｔｉｔｙ）または実質的な類似性（ｓｕｂｓｔａｎｔｉａｌｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ）を示す遺伝子配列も含むものと解される。前記の実質的な同一性は、上記した本発明の配列と任意の他の配列を最大限対応するようにアラインし、当業界で通常用いられるアルゴリズムを利用してアラインされた配列を分析した場合に、最小８０％の相同性、より好ましくは９０％の相同性、最も好ましくは９５％の相同性を示す配列を意味する。前記の実質的な類似性は、一つ以上の塩基の欠損または挿入のような遺伝子配列の変化が組換えアデノウイルスベクターとの相同性組換えを最小化する本発明の目的に影響を及ぼさない変化を総称する。したがって、本発明の遺伝子配列は、例示された配列番号１〜配列番号６に限定されず、本発明が目的とする最終生成物の活性に実質的に影響を与えない限り、本発明の権利範囲に含まれると解される。

一方、本発明の組換えアデノウイルスとしては、当業界で広く知られたｏｎｃｏｌｙｔｉｃアデノウイルスが用いられる。本発明の一実施例では、前記組換えアデノウイルスは、活性のＥ１Ａ遺伝子および不活性化したＥ１Ｂ１９遺伝子、Ｅ１Ｂ５５遺伝子またはＥ１Ｂ１９／Ｅ１Ｂ５５遺伝子を含む。本明細書で、遺伝子と関連して使用される用語「不活性化」は、その遺伝子の転写および／または解読が正常に行われず、その遺伝子によりコードされる正常なタンパク質の機能が現れないことを意味する。例えば、不活性化Ｅ１Ｂ１９遺伝子は、その遺伝子に変異（置換、付加、部分的欠失または全体的欠失）が発生して活性のＥ１Ｂ１９ｋＤａタンパク質を生成しない遺伝子である。Ｅ１Ｂ１９が欠失される場合には、細胞アポトーシスを増加させることができ、Ｅ１Ｂ５５遺伝子が欠失された場合には、腫瘍細胞特異性を有するようにする（参照：韓国特許出願第２００２−２３７６０号）。本明細書でウイルスゲノム配列と関連して使用される用語「欠失」は、当該配列が完全に欠失されたものだけでなく、部分的に欠失されたものも含む意味を有する。

本発明の一実施例によれば、前記組換えアデノウイルスは、Ｅ１Ａ領域を含み、Ｅ１Ｂ領域、すなわちＥ１Ｂ１９および５５ｋＤａ（Ｅ１Ｂ）が欠失されており、Ｅ３領域（Ｅ３）が欠失されている。Ｅ１Ａ遺伝子を含む組換えアデノウイルスは、複製可能な特性を有するようになる。前記ＩＬ−１２を暗号化する遺伝子は、組換えアデノウイルスの欠失されたＥ１Ｂ領域に挿入され、前記ＧＭ−ＣＳＦおよびＲｅｌａｘｉｎを暗号化する遺伝子またはＶＥＧＦ発現を抑制するｓｈＲＮＡを暗号化する遺伝子は、Ｅ３領域に挿入される。一方、前記Ｅ１Ａ部位は、ＥｌＡ遺伝子配列に位置するＲｂ結合部位をコードするヌクレオチド配列のうち４５番目のＧｌｕ残基がＧｌｙで置換された変異および１２１−１２７番目アミノ酸配列が全体的にＧｌｙで置換された変異を有する。

一方、前記アデノウイルス以外に他のウイルスも本発明で用いられる。本発明に用いられるウイルスは、好ましくはワクシニアウイルス（ＰｕｈｌｍａｎｎＭ．ｅｔａｌ．、ＨｕｍａｎＧｅｎｅＴｈｅｒａｐｙ１０：６４９−６５７（１９９９））、レンチウイルス（ＷａｎｇＧ．ｅｔａｌ．、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．１０４（１１）：Ｒ５５−６２（１９９９））または単純ヘルペスウイルス（ＣｈａｍｂｅｒＲ．、ｅｔａｌ．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．ＳｃｉＵＳＡ９２：１４１１−１４１５（１９９５））であってもよいが、これらに制限されるものではない。

本発明で用いられる組換えアデノウイルスは、動物細胞、好ましくは哺乳動物細胞で作動可能なプロモーターを含む。本発明に適合したプロモーターは、哺乳動物ウイルスに由来するプロモーターおよび哺乳動物細胞のゲノムに由来するプロモーターを含み、例えば、ＣＭＶ（Ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏｖｉｒｕｓ）プロモーター、Ｕ６プロモーターおよびＨ１プロモーター、ＭＬＶ（ＭｕｒｉｎｅＬｅｕｋｅｍｉａＶｉｒｕｓ）ＬＴＲ（Ｌｏｎｇｔｅｒｍｉｎａｌｒｅｐｅａｔ）プロモーター、アデノウイルス初期プロモーター、アデノウイルス後期プロモーター、ワクシニアウイルス７．５Ｋプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ＨＳＶのｔｋプロモーター、ＲＳＶプロモーター、ＥＦ１アルファプロモーター、メタロチオネインプロモーター、ベータ−アクチンプロモーター、ヒトＩＬ−２遺伝子のプロモーター、ヒトＩＦＮ遺伝子のプロモーター、ヒトＩＬ−４遺伝子のプロモーター、ヒトリンフォトキシン遺伝子のプロモーター、ヒトＧＭ−ＣＳＦ遺伝子のプロモーター、ｉｎｄｕｃｉｂｌｅプロモーター、癌細胞特異的プロモーター（例えば、ＴＥＲＴプロモーター、ｍｏｄｉｆｉｅｄＴＥＲＴプロモーター、ＰＳＡプロモーター、ＰＳＭＡプロモーター、ＣＥＡプロモーター、Ｓｕｒｖｉｖｉｎプロモーター、Ｅ２Ｆプロモーター、ｍｏｄｉｆｉｅｄＥ２Ｆプロモーター、ＡＦＰプロモーター、ｍｏｄｉｆｉｅｄＡＦＰプロモーター、Ｅ２Ｆ−ＡＦＰｈｙｂｒｉｄプロモーター、およびＥ２Ｆ−ＴＥＲＴｈｙｂｒｉｄプロモーター）および組織特異的プロモーター（例えば、アルブミンプロモーター）、ヒトホスホグリセリン酸キナーゼ（ＰＧＫ）プロモーター、マウスホスホグリセリン酸キナーゼ（ＰＧＫ）プロモーターを含むが、これらに限定されるものではない。最も好ましくは、ＣＭＶプロモーターである。トランス遺伝子を発現させるための発現コンストラクトでトランス遺伝子のダウンストリームにポリアデニル化配列が結合されていることが好ましい。前記ポリアデニル化配列は、ウシ成長ホルモンターミネーター（Ｇｉｍｍｉ、Ｅ．Ｒ．、ｅｔａｌ．、ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓ．１７：６９８３−６９９８（１９８９））、ＳＶ４０由来ポリアデニル化配列（Ｓｃｈｅｋ、Ｎ、ｅｔａｌ．、Ｍｏｌ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１２：５３８６−５３９３（１９９２））、ＨＩＶ−１ｐｏｌｙＡ（Ｋｌａｓｅｎｓ、Ｂ．Ｉ．Ｆ．、ｅｔａｌ．、ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓ．２６：１８７０−１８７６（１９９８））、β−グロビンｐｏｌｙＡ（Ｇｉｌ、Ａ．、ｅｔａｌ、Ｃｅｌｌ４９：３９９−４０６（１９８７））、ＨＳＶＴＫｐｏｌｙＡ（Ｃｏｌｅ、Ｃ．Ｎ．ａｎｄＴ．Ｐ．Ｓｔａｃｙ、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．５：２１０４−２１１３（１９８５））またはポリオーマウイルスｐｏｌｙＡ（Ｂａｔｔ、Ｄ．ＢａｎｄＧ．Ｇ．Ｃａｒｍｉｃｈａｅｌ、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１５：４７８３−４７９０（１９９５））を含むが、これらに限定されるものではない。

本発明で用いられる組換えアデノウイルスにおいて、ＩＬ−１２遺伝子配列とＧＭ−ＣＳＦ−Ｒｅｌａｘｉｎ遺伝子配列またはｓｈＶＥＧＦ遺伝子配列は、プロモーターに作動的に連結されている。本明細書で、用語「作動的に結合される核酸発現調節配列（例：プロモーター、シグナル配列、または転写調節因子結合位置のアレイ）と他の核酸配列間の機能的な結合を意味し、これによって、前記調節配列は、前記他の核酸配列の転写および／または解読を調節することになる。

本発明の組換えアデノウイルスは、選択標識として抗生剤耐性遺伝子およびレポータ遺伝子（例えば、ＧＦＰ（ｇｒｅｅｎｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅｐｒｏｔｅｉｎ）、ルシフェラーゼおよびβ−グルクロニダーゼ）をさらに含むことができる。前記抗生剤耐性遺伝子は、当業界で通常用いられる抗生剤耐性遺伝子を含み、例えばアンピシリン、ゲンタマイシン、カルベニシリン、クロラムフェニコール、ストレプトマイシン、カナマイシン、ジェネティシン、ネオマイシンおよびテトラサイクリンに対する耐性遺伝子があり、好ましくはネオマイシン耐性遺伝子である。前記の選択標識は、別途のプロモーターまたはＩＲＥＳ（ｉｎｔｅｒｎａｌｒｉｂｏｓｏｍｅｅｎｔｒｙｓｉｔｅ）、２Ａｓｙｓｔｅｍ（Ｆ２Ａｓｙｓｔｅｍ、Ｐ２Ａｓｙｓｔｅｍ、Ｔ２Ａｓｙｓｔｅｍ）により連結された発現システムによっても発現することができ、本発明で用いられるＩＲＥＳは、複数種のウイルスおよび細胞のＲＮＡｓで発見される調節配列である。

本発明の他の様態として、前記組換えアデノウイルス、および薬学的に許容される担体（ｃａｒｒｉｅｒ）を含む癌の予防または治療用薬学的組成物；癌の予防または治療のための前記組換えアデノウイルスの医薬的用途；および治療学的有効量の前記組換えアデノウイルスを個体に投与する段階を含む癌の治療方法を提供する。

本発明の薬学的組成物は、上述した組換えアデノウイルスを利用するので、これらの両者間に共通した内容は、本明細書の過度な複雑性を避けるために、その記載を省略する。

本発明で使用される用語「予防」とは、本発明による薬学的組成物の投与によって癌（腫瘍）を抑制させたり発病を遅延させるすべての行為を意味する。

本発明で使用される用語「治療」とは、本発明による薬学的組成物の投与によって癌（腫瘍）に対する症状が好転したり有利に変更されるすべての行為を意味する。

本発明で用語「個体」とは、病気の治療を必要とする対象を意味し、より具体的には、ヒトまたは非ヒトである霊長類、げっ歯類（ラット、ネズミ、ギニアピッグなど）、マウス（ｍｏｕｓｅ）、犬、猫、馬、牛、ヒツジ、豚、ヤギ、ラクダ、レイヨウなどの哺乳類を意味する。

本発明の薬学的組成物による予防または治療対象病気である「癌（ｃａｎｃｅｒ）」は、細胞が正常な成長限界を無視し、***および成長する攻撃的（ａｇｇｒｅｓｓｉｖｅ）特性、周囲組織に浸透する浸透的（ｉｎｖａｓｉｖｅ）特性および体内外他の部位に広がる転移的（ｍｅｔａｓｔａｔｉｃ）特性を有する細胞による病気を総称する。本発明で前記癌は、悪性腫瘍（ｍａｌｉｇｎａｎｔｔｕｍｏｒ）と同じ意味に使用され、固体腫瘍および血液腫瘍（ｂｌｏｏｄｂｏｒｎｔｕｍｏｒ）を含むことができる。例えば、本発明で癌は、胃癌、肺癌、非小細胞性肺癌、乳癌、卵巣癌、肝癌、気管支癌、鼻咽頭癌、喉頭癌、すい臓癌、膀胱癌、結腸癌、子宮頸癌、骨癌、非小細胞性骨癌、血液癌、皮膚癌、頭部または頸部癌、子宮癌、直腸癌、肛門付近癌、卵管癌、子宮内膜癌、膣癌、陰門癌、ホジキン病（Ｈｏｄｇｋｉｎ’ｓｄｉｓｅａｓｅ）、食道癌、小腸癌、内分泌腺癌、甲状腺癌、副甲状腺癌、副腎癌、軟組織肉腫、尿道癌、陰茎癌、前立腺癌、慢性または急性白血病、リンパ球リンパ腫、腎臓または輸尿管癌、腎臓細胞癌腫、腎臓骨盤癌腫、唾液腺腫瘍、肉腫癌、仮性粘液腫、肝芽腫、睾丸癌、膠芽腫、口脣癌、卵巣生殖細胞腫瘍、基底細胞癌、多発性骨髄腫、胆のう癌、脈絡膜黒色腫、ファーテル膨大部癌、腹膜癌、舌癌、小細胞癌、小児リンパ腫、神経芽細胞腫、十二指腸癌、尿管癌、星状細胞腫、髄膜腫、腎盂癌、外陰部癌、胸腺癌、中枢神経系（ｃｅｎｔｒａｌｎｅｒｖｏｕｓｓｙｓｔｅｍ、ＣＮＳ）腫瘍、１次中枢神経系リンパ腫、脊髄腫瘍、脳幹神経膠腫および脳下垂体腺腫よりなる群から選ばれるいずれか一つであってもよく、また、再発癌であってもよいが、これらに制限されるものではない。

一方、本発明の薬学的組成物は、免疫チェックポイント阻害剤（Ｉｍｍｕｎｅｃｈｅｃｋｐｏｉｎｔｉｎｈｉｂｉｔｏｒ）をさらに含むことができる。

本発明で使用される用語「免疫チェックポイント」は、免疫細胞表面で免疫反応の刺激または抑制信号を誘発するのに関与するタンパク質を総称し、癌細胞は、このような免疫チェックポイントを通じて免疫反応の刺激およびこれによる癌細胞の抑制が正確に進行されないように操作して免疫体系の監視網を回避することになる。好ましくは、前記免疫チェックポイントタンパク質は、ＰＤ−１拮抗剤、ＰＤ−Ｌ１拮抗剤、ＰＤ−Ｌ２拮抗剤、ＣＤ２７拮抗剤、ＣＤ２８拮抗剤、ＣＤ７０拮抗剤、ＣＤ８０拮抗剤、ＣＤ８６拮抗剤、ＣＤ１３７拮抗剤、ＣＤ２７６拮抗剤、ＫＩＲｓ拮抗剤、ＬＡＧ３拮抗剤、ＴＮＦＲＳＦ４拮抗剤、ＧＩＴＲ拮抗剤、ＧＩＴＲＬ拮抗剤、４−１ＢＢＬ拮抗剤、ＣＴＬＡ−４拮抗剤、Ａ２ＡＲ拮抗剤、ＶＴＣＮ１拮抗剤、ＢＴＬＡ拮抗剤、ＩＤＯ拮抗剤、ＴＩＭ−３拮抗剤、ＶＩＳＴＡ拮抗剤、およびＫＬＲＡ拮抗剤、またはこれらの組合せであってもよいが、これらに制限されるものではない。

免疫チェックポイント阻害剤は、このような免疫チェックポイントタンパク質を標的とする拮抗剤または抗体であって、免疫反応を刺激させるタンパク質を増進させたり免疫反応を抑制するタンパク質を遮断して免疫反応による抗癌効果を示す。免疫チェックポイント阻害剤は、一般的な細胞毒性抗癌剤より嘔吐や脱毛のような副作用が少なく、治療効果が大きいという長所以外にも、記憶能に優れた免疫反応体系を利用するので、薬物投与を中断した後にも、治療効果が長期間持続され得るが、組換えアデノウイルスとの併用を通した抗癌効果増進については知られていないのが現状である。これより、本発明者らは、前記組換えアデノウイルスの抗癌効果を増進させるために、免疫チェックポイント阻害剤との併用を試み、免疫チェックポイント阻害剤との併用製剤として、癌の予防または治療のための前記組換えアデノウイルスの医薬的用途を提供したという点から、さらに他の技術的特徴がある。

本発明の薬学的組成物は、有効成分以外に、薬学的に許容される担体を含むことができる。この際、薬学的に許容される担体は、製剤時に通常に用いられるものであって、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、デンプン、アカシアゴム、リン酸カルシウム、アルギネート、ゼラチン、ケイ酸カルシウム、微細結晶性セルロース、ポリビニルピロリドン、セルロース、水、シロップ、メチルセルロース、メチルヒドロキシベンゾエート、プロピルヒドロキシベンゾエート、滑石、ステアリン酸マグネシウムおよびミネラルオイルなどを含むが、これらに限定されるものではない。また、前記成分以外に、潤滑剤、湿潤剤、甘味剤、香味剤、乳化剤、懸濁剤、保存剤などをさらに含むことができる。適合した薬剤学的に許容される担体および製剤は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ（１９ｔｈｅｄ．、１９９５）に詳細に記載されている。

本発明の薬学的組成物は、目的とする方法によって経口投与したり非経口投与（例えば、静脈内、皮下、腹腔内または局所に適用）することができ、本発明の一実施例によれば、本発明の抗腫瘍免疫性増進組成物は、好ましくは腫瘍内に（ｉｎｔｒａｔｕｍｏｒａｌｌｙ）直接的に投与され得る。投与量は、患者の状態および体重、病気の程度、薬物形態、投与経路および時間によって異なるが、当業者により適切に選択され得る。

本発明の薬学的組成物は、薬学的に有効な量で投与する。本発明において薬学的に有効な量は、医学的治療に適用可能な合理的な恩恵／リストの割合で疾患を治療するのに十分な量を意味し、有効用量水準は、患者の疾患の種類、重症度、薬物の活性、薬物に対する敏感度、投与時間、投与経路および排出比率、治療期間、同時使用される薬物を含む要素およびその他医学分野によく知られた要素によって決定され得る。本発明による薬学的組成物は、個別治療剤として投与したり他の治療剤と併用して投与することができ、従来の治療剤とは順次または同時に投与することができ、単一または多重投与することができる。上記した要素を全部考慮して副作用なしに最小限の量で最大効果を得ることができる量を投与することが重要であり、これは、当業者により容易に決定され得る。

以下、本発明の理解を助けるために好ましい実施例を提示する。しかし、下記の実施例は、本発明をより容易に理解するために提供されるものに過ぎず、下記実施例によって本発明の内容が限定されるわけではない。

［実施例］
実験材料および実験方法
１．動物実験
ＣｈａｒｌｅｓＲｉｖｅｒＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ、Ｉｎｃ．（Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＭＡ）から６週〜８週齢の雄性Ｃ５７ＢＬ／６マウスを購入して、無菌状態のラミナエアフローキャビネットで飼育した。すべての動物実験は、ＡＡＡＬＡＣ（ＡｓｓｏｃｉａｔｉｏｎｆｏｒＡｓｓｅｓｓｍｅｎｔａｎｄＡｃｃｒｅｄｉｔａｔｉｏｎｏｆＬａｂｏｒａｔｏｒｙＡｎｉｍａｌＣａｒｅ）の承認下に行われ、漢陽大学校動物管理および利用委員会（ＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＨａｎｙａｎｇＩｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌＡｎｉｍａｌＣａｒｅａｎｄＵｓｅＣｏｍｍｉｔｔｅｅ）のガイドラインに基づいて行われた。

２．腫瘍殺傷アデノウイルスの製作
Ｅ１領域にＩＬ−１２、Ｅ３領域にＧＭ−ＣＳＦ−ＲｅｌａｘｉｎまたはｓｈＶＥＧＦが導入されたアデノウイルス（Ａｄ）を図１および図２に示されたように製作した。

具体的に、ＩＬ−１２を発現するＡｄＥ１シャトルベクターを構築するために、ｐＣＡ１４／ＩＬ１２からマウスＩＬ−１２遺伝子を切り出し、ｐＸＣ１ＲｄＢＥ１シャトルベクターにサブクローニングして、ｐＸＣ１ＲｄＢ／ＩＬ１２Ｅ１シャトルベクターを製作した。また、ｓｈＶＥＧＦ発現Ｅ３シャトルベクターを構築するために、骨髄−由来活性樹枝状細胞から得られた全体ＲＮＡを利用して、全長（ｆｕｌｌ−ｌｅｎｇｔｈ）マウスｓｈＶＥＧＦ相補的ＤＮＡをＲＴ−ＰＣＲでクローニングした。ｓｈＶＥＧＦ相補的ＤＮＡ（５３−９８２ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓｏｆＮａｔｉｏｎａｌＣｅｎｔｅｒｆｏｒＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙＩｎｆｏｒｍａｔｉｏｎＬ１５４３５）は、次のプライマーセットを利用して製作した：ｓｅｎｓｅ（５’−ｇａｔｃｃｃｇｇａａｇｇａｇａｇｃａｇａａｇｔｃｃｃａｔｇｔｔｃａａｇａｇａｃａｔｇｇｇａｃｔｔｃｔｇｃｔｃｔｃｃｔｔｔｔｔｔｔｔｔｇｇａａａ−３’）、ａｎｔｉｓｅｎｓｅ（５’−ｔｔｔｃｃａａａａａａａａａｇｇａｇａｇｃａｇａａｇｔｃｃｃａｔｇｔｃｔｃｔｔｇａａｃａｔｇｇｇａｃｔｔｃｔｇｃｔｃｔｃｃｔｔｃｃｇｇｇａｔｃ−３’）。前記ＰＣＲ生成物をＢａｍＨＩ／ＨｉｎｄIIIで切った後、ＢａｍＨＩ／ＨｉｎｄIII処理したｐＳＰ７２Ｅ３／ＣＭＶ−ｐｏｌＡＡｄＥ３シャトルベクターにクローニングして、ｐＳＰ７２Ｅ３／ｓｈＶＥＧＦＥ３シャトルベクターを製作した。また、ｐＳＰ７２Ｅ３／ＣＭＶ−ｐｏｌＡＡｄＥ３シャトルベクターにＧＭＣＳＦ−ＩＲＥＳ−Ｒｅｌａｘｉｎ遺伝子をクローニングして、ｐＳＰ７２Ｅ３／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＥ３シャトルベクターを製作した。

相同組換えのために、前記ｐＸＣ１ＲｄＢ／ＩＬ１２Ｅ１シャトルベクターとｐｄＥ１／ｓｈＶＥＧＦまたはｐｄＥ１／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸを大腸菌ＢＪ５１８３に同時形質転換させ、これにより、ｐＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄおよびｐＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄを製作した。すべてのウイルスは、２９３細胞を利用して製作し、アデノウイルスの精製、滴定（ｔｉｔｒａｔｉｏｎ）および品質分析は、先行技術によって行った。

３．動物モデルを利用した抗癌効果の評価
Ｂ１６−Ｆ１０細胞（５×１０^５）を６〜７週齢の雄性Ｃ５７ＢＬ／６正常免疫（ｉｍｍｕｎｅ−ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ）マウスの右側の脇腹の皮下に注入した。腫瘍体積が約１００ｍｍ^３に到達すれば、類似した腫瘍サイズを有するグループに分類し、１日、３日、および５日目に、腫瘍殺傷アデノウイルス（ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ；ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ）を５×１０^９ＶＰ濃度で腫瘍内投与した。また、免疫チェックポイント阻害剤との併用による抗癌効果を確認するために、３日、６日、および９日目に、前記腫瘍殺傷アデノウイルスが投与されたマウスに免疫チェックポイント阻害剤である抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＰＤ−１抗体および抗ＣＴＬＡ−４抗体を２００μｇ濃度で腹腔内投与し、さらに免疫チェックポイント阻害剤との併用による相乗効果を評価するために、５×１０^９ＶＰを利用した以前の実験より５倍さらに低い用量の腫瘍殺傷アデノウイルス（１×１０^９ＶＰ）を利用して上記と同じ実験を再度実施した。一方、本実験で、対照群としては、ＰＢＳ処理群（ＰＢＳ）、免疫チェックポイント阻害剤単独処理群（抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＰＤ−１抗体、抗ＣＴＬＡ−４抗体）を利用した。

以後、キャリパーで腫瘍の垂直直径を測定して腫瘍の成長を毎日モニタリングし、時間の経過による生存率の変化を確認することによって、動物モデルを利用して抗癌効果を評価した。一方、腫瘍体積は、次の公式で計算した：ｖｏｌｕｍｅ＝０．５２３Ｌ（Ｗ）^２、Ｌは、長さ（ｌｅｎｇｔｈ）、Ｗは、幅（ｗｉｄｔｈ）を示す。

４．免疫記憶による抗癌効果の評価
黒色腫が誘導された前記３の動物モデルのうち、１次腫瘍を注入した後、５０日目、成功裏に治療されたマウス（１次腫瘍を促進できない時点から２５日目）を対象として、２次腫瘍を再注入（ｒｅｃｈａｌｌｅｎｇｅ）した。以後、前記と同様に、腫瘍の垂直直径を測定して腫瘍の成長を隔日でモニタリングし、腫瘍の平均体積を算出することによって、抗腫瘍免疫記憶効果を評価した。本実験で、対照群としては、正常マウスに黒色腫を誘導した群（Ｎｏｒｍａｌ）を利用した。

５．統計分析
すべてのデータは、平均標準誤差で示した。ＳｔａｔＶｉｅｗｓｏｆｔｗａｒｅ（ＡｂａｃｕｓＣｏｎｃｅｐｔｓ、Ｉｎｃ．、Ｂｅｒｋｅｌｅｙ、ＣＡ）およびｔｈｅＭａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙｔｅｓｔ（ｎｏｎ−ｐａｒａｍｅｔｒｉｃｒａｎｋｓｕｍｔｅｓｔ）を利用して比較した。０．０５以下のＰｖａｌｕｅは、統計的に有意性あることを示す（^＊、Ｐ＜０．０５；^＊＊、Ｐ＜０．０１）。

実験結果
１．黒色腫マウスにおける抗癌効果の確認
本発明者らは、黒色腫マウス内注入された腫瘍の体積および完全寛解の有無とマウスの生存率を比較して、組換えアデノウイルスおよび／または免疫チェックポイント阻害剤の抗癌効果を確認しようとした。

その結果、ＰＢＳまたは抗ＰＤ−Ｌ１抗体を処理した対照群では、それぞれ１１日または１５日目に腫瘍の体積が３，０００ｍｍ^３以上に達するほど早く増殖して、侵襲的腫瘍成長（ａｇｇｒｅｓｓｉｖｅｔｕｍｏｒｇｒｏｗｔｈ）を示した反面、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄまたはＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄを処理した群の場合、２２日目に、ＰＢＳ処理群と比較した結果、それぞれ９９．３％または９９．５％と腫瘍の成長が抑制されることを確認した（図３ａおよび図４ａ）。また、前記アデノウイルスと抗ＰＤ−Ｌ１抗体を併用した場合（ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ＋ＰＤ−Ｌ１、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ＋ＰＤ−Ｌ１）、上記と同様に、腫瘍の体積がアデノウイルスまたは抗ＰＤ−Ｌ１抗体を単独で処理した群より顕著に減少した。たとえ２７日目までアデノウイルス単独処理群（ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ）と類似した程度の抗癌効果を示したが、１ヶ月経過後からは、抗ＰＤ−Ｌ１抗体を併用投与した群では、持続的に腫瘍成長が抑制された反面、アデノウイルスを単独処理した群は、腫瘍の成長が、時間が経つにつれて増加して、アデノウイルスと抗体を併用投与した群間に腫瘍体積の有意的差異を確認することができた（図３ａおよび図４ａ）。また、５０日目に、ＰＢＳまたは抗ＰＤ−Ｌ１抗体を処理した対照群では、完全寛解（ｃｏｍｐｌｅｔｅｒｅｍｉｓｓｉｏｎ）を確認することができなかった反面、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄまたはＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ群では、それぞれ６６％（４／６）、５０％（３／６）、前記アデノウイルスと抗ＰＤ−Ｌ１抗体を併用した場合には、６６％（４／６）、１００％（６／６）が完全寛解されることが分かった。また、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ＋ＰＤ−Ｌ１またはＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ＋ＰＤ−Ｌ１群のすべてのマウスは、それぞれ４４日または５０日まで全部生存した反面、同じ時点にＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄまたはＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ群は、すべて６６％（４／６）の生存率を示し、対照群のすべてのマウスは、腫瘍によって死ぬことを確認した（図３ｂおよび図４ｂ）。このような結果は、免疫チェックポイント阻害剤である抗ＰＤ−Ｌ１抗体の単独処理による抗癌効果は、比較的微小であった反面、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄまたはＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄは、優れた抗癌効果を示し、このような組換えアデノウイルスの抗癌効果は、上記の抗ＰＤ−Ｌ１抗体と併用される場合、さらに上昇することになることを意味するものである。

２．免疫チェックポイント阻害剤との併用による抗癌効果
本発明者らは、免疫チェックポイント阻害剤との併用による相乗効果をさらに詳細に評価するために、５×１０^９ＶＰを利用した以前の実験より５倍さらに低い用量の腫瘍殺傷アデノウイルス（１×１０^９ＶＰ）を利用して組換えアデノウイルス単独投与と組換えアデノウイルスおよび免疫チェックポイント阻害剤併用投与との間に抗癌効果を比較した。また、前記結果に基づいて、免疫チェックポイント阻害剤として抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＰＤ−１抗体または抗ＣＴＬＡ−４抗体を利用した場合、これらの抗癌効果を比較し、本実験で組換えアデノウイルスは、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄを使用した。

その結果、１８日目に、ＰＢＳ処理群と腫瘍の体積を比較した結果、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ群の腫瘍成長抑制率は、９２．９％であったが、抗ＰＤ−１抗体との併用投与によって９９．７％と上昇し、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ群の腫瘍成長抑制率（９０．１％）も、抗ＰＤ−１抗体との併用によって９８．９％と大きく上昇した（図５および図６）。また、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ群で１７％（１／６）だけが完全寛解されたが、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ＋ＰＤ−１群は、８３％（５／６）と大きく増加した。

一方、他の形態の組換えアデノウイルスについても、免疫チェックポイント阻害剤との併用による相乗効果を示すが確認するために、ＨｍＴ−Ｒｄ１９−Ｋ３５／ＩＬ２１Ａｄ、ＲｄＢ／ＧＭＣＳＦ／ｓｈＶＥＧＦＡｄ、またはＹＫＬ−１／ＧＭＣＳＦ／Ｂ７．１Ａｄと抗ＰＤ−１抗体を併用投与した後、これらの抗癌効果を確認した。その結果、図７に示したように、多くの組換えアデノウイルスは、抗ＰＤ−１抗体との併用を通じて腫瘍の体積がある程度減少したことは事実であるが、本発明の組換えアデノウイルス（ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ）ぐらいの顕著な効果を示さず、特に、ＹＫＬ−１／ＧＭＣＳＦ／Ｂ７．１Ａｄの場合には、全般的に抗ＰＤ−１抗体単独処理群に比べても効果が優秀でなかった。このような結果に鑑みると、免疫チェックポイント阻害剤との併用による相乗効果は、すべての組換えアデノウイルスに適用されるものではなく、本発明の組換えアデノウイルス固有の効果であることが分かる。

また、免疫チェックポイント阻害剤の種類による抗癌効果を確認した結果、ＰＢＳ、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＰＤ−１抗体、または抗ＣＴＬＡ−４抗体を処理した対照群マウスは、それぞれ１１日、１５日、１８日、または１１日目に腫瘍の体積が３，０００ｍｍ^３以上に達するほど早く増殖して侵襲的腫瘍成長を示した反面、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ＋抗ＰＤ−Ｌ１抗体、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ＋抗ＰＤ−１抗体、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ＋抗ＣＴＬＡ−４抗体を処理した群の場合、２１日目、ＰＢＳ処理群と比較した結果、それぞれ、９９．９％、９９．９％、または９９．２％と腫瘍の成長が大きく抑制されることを確認した（図４ａ、８ａおよび９ａ）。また、５０日目に、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ群において完全寛解率は、５０％（３／６）であった反面、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＰＤ−１抗体または抗ＣＴＬＡ−４抗体を併用した場合、それぞれ１００％（６／６）、８３％（５／６）、８３％（５／６）と増加した。また、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ＋抗ＰＤ−Ｌ１抗体、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ＋抗ＰＤ−１抗体、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ＋抗ＣＴＬＡ−４抗体を処理したマウスは、それぞれ、５０日、５０日、または３０日目まで全部生存した反面、同じ時点にＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ群は、それぞれ６６％（４／６）、６６％（４／６）、８３％（５／６）の生存率を示した（図４ｂ、図８ｂおよび図９ｂ）。このような結果は、抗ＰＤ−Ｌ１抗体だけでなく、抗ＰＤ−１抗体または抗ＣＴＬＡ−４抗体を利用した場合にも、組換えアデノウイルスの抗癌効果が上昇することを示すものであって、ただし、抗ＣＴＬＡ−４抗体より抗ＰＤ−Ｌ１抗体または抗ＰＤ−１抗体を併用した場合、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの抗癌効果関連相乗作用がさらに優れていることが分かった。

３．再発癌に対する免疫記憶効果の確認
本発明者らは、黒色腫マウス内注入された２次腫瘍の体積などを比較して、本発明の組換えアデノウイルス、または前記組換えアデノウイルスと免疫チェックポイント阻害剤の併用による免疫記憶効果と再発癌に対する抗癌効果を確認しようとした。
その結果、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ｓｈＶＥＧＦＡｄ群で２次腫瘍の成長が明確に阻害され（図１０ａ）、特に、免疫チェックポイント阻害剤である抗ＰＤ−１抗体との併用によって２次腫瘍の成長は、さらに顕著に阻害されることを確認することができた（図１０ｂ）。このような結果は、本発明の組換えアデノウイルスは、免疫記憶による抗腫瘍免疫反応の増進効果を通じて腫瘍の再発を未然に防止することができることを意味し、前述した抗癌効果と同様に、このような効果は、免疫チェックポイント阻害剤との併用を通じて上昇することができることを示唆するものである。

４．ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの抗癌効果の検証
（１）ＩＬ−１２、ＧＭ−ＣＳＦ、およびＲｅｌａｘｉｎの発現様相の確認
ＩＬ−１２、ＧＭ−ＣＳＦ、およびＲｅｌａｘｉｎ（ＲＬＸ）遺伝子の同時発現による抗癌効果を再度検証するために、前述したように、ＩＬ−１２遺伝子がアデノウイルスのＥ１領域に、ＧＭ−ＣＳＦおよびｒｅｌａｘｉｎ遺伝子がＥ３領域に挿入されたアデノウイルスであるＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄを製作した。前記ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄは、アデノウイルスの初期遺伝子であるＥ１Ｂ遺伝子が消失され、Ｅ１Ａ遺伝子が変異された癌細胞特異的殺傷アデノウイルスであって、製作されたアデノウイルスによるＩＬ−１２、ＧＭ−ＣＳＦ、またはＲＬＸの発現量を確認した。具体的に、シリアンハムスターのすい臓癌細胞株（Ｈａｐ−Ｔ１）に０．２、０．５、１、２、および５ＭＯＩ（ｍｕｌｔｉｐｌｉｃｉｔｙｏｆｉｎｆｅｃｔｉｏｎ）のＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸを感染させ、これから４８時間後にこれらの培地を回収した。以後、Ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔａｓｓａｙ（ＥＬＩＳＡ）を通じてＩＬ−１２、およびＧＭ−ＣＳＦの発現量を確認し、Ｒｅｖｅｒｓｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｐｏｌｙｍｅｒａｓｅｃｈａｉｎｒｅａｃｔｉｏｎ（ＲＴ−ＰＣＲ）を通じてＲｅｌａｘｉｎの発現量を確認した。

その結果、図１１および図１２に示したように、アデノウイルスのＭＯＩに依存的にＩＬ−１２、ＧＭ−ＣＳＦ、またはＲｅｌａｘｉｎの発現量が増加したところ、前記遺伝子の同時発現を実験的に確認することができた。

（２）シリアンハムスターの腫瘍動物モデルにおいてαＰＤ−１との併用投与による抗癌効果の相乗
ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄとαＰＤ−１の併用による抗癌効果の相乗を検証するために、ＨａＰ−Ｔ１すい臓癌細胞株を皮下注射して誘導されたシリアンハムスターの腫瘍動物モデルに７×１０^７ｖｉｒａｌｐａｒｔｉｃｌｅｓ（ＶＰ）／３０μｌのＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄを腫瘍内投与し、これと共に、１０ｍｇ／ｋｇのαＰＤ−１を腹腔内投与した後、これによる腫瘍の体積変化を観察した。一方、比較群としては、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ単独投与群を利用した。

その結果、図１３に示したように、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄが単独投与された腫瘍組織では、持続的に成長して一番目のウイルス投与後３０日目に、腫瘍の体積は、１．９８２±１２６ｍｍ^３に達した反面、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄおよびαＰＤ−１併用投与群では、一番目のウイルス投与後に３０日目まで腫瘍の成長を抑制して、腫瘍成長を単独投与群対比約７９％水準と抑制させた（Ｐ＜０．００１）。また、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄおよびαＰＤ−１併用投与群では、腫瘍の完全寛解率が約５０％程度であったが、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ単独投与群では、完全寛解が全く観察されなかった（不図示）。すなわち、このような結果は、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの抗癌治療効能がαＰＤ−１との併用によって顕著に向上したことを示唆するものである。

（３）シリアンハムスター腫瘍モデルにおいてαＰＤ−１との併用投与による腫瘍組織の変化
ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄとαＰＤ−１の併用による腫瘍組織内変化を具体的に確認するために、７×１０^７ＶＰのＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄと１０ｍｇ／ｋｇのαＰＤ−１を前述したように併用投与した後、採取した腫瘍組織を免疫組織学的に評価した。一方、比較群としてαＰＤ−１またはＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ単独投与群、対照群としては、ＰＢＳ投与群を利用した。

その結果、図１４に示したように、ＰＢＳが投与された腫瘍組織では、壊死部位がほとんど確認されない反面、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄとαＰＤ−１が併用投与された腫瘍組織は、大概壊死されたことを確認することができた。また、このような併用投与による効果、すなわち、顕著に低い腫瘍細胞の増殖（ＰＣＮＡ）と増加した細胞アポトーシス（ＴＵＮＥＬ）は、αＰＤ−１またはＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄが単独投与された場合に比べて非常に顕著なものであった。

（４）αＰＤ−１との併用投与による細胞群集およびＩＦＮ−γの腫瘍組織内発現変化
ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄによってαＰＤ−１の腫瘍組織内浸透が増加するにつれて、腫瘍組織内Ｔ細胞の浸潤および活性化が誘導できるかを評価するために、ｄｒａｉｎｉｎｇｌｙｍｐｈｎｏｄｅ（ＤＬＮ）と腫瘍組織内浸潤されたリンパ球でｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ（ＩＦＮ）−γ−発現ＣＤ４^＋またはＣＤ８^＋Ｔ細胞の群集変化を評価した。その結果、図１５および図１６に示したように、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄまたはαＰＤ−１単独投与群、およびＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄとαＰＤ−１併用投与群は、ＰＢＳまたはαＰＤ−１単独投与群に比べてＩＦＮ−γ−発現ＣＤ４^＋およびＣＤ８^＋Ｔ細胞の群集が高い水準で観察された（Ｐ＜０．００１またはＰ＜０．０１）。特に、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄとαＰＤ−１併用投与群は、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄまたはαＰＤ−１単独投与した群に比べてもＩＦＮ−γ−発現ＣＤ４^＋およびＣＤ８^＋Ｔ細胞の群集が有意的に増加することを確認することができたところ（Ｐ＜０．００１）、このような結果は、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄとαＰＤ−１の併用投与は、ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ（ＩＦＮ）−γ−発現ＣＤ４^＋およびＣＤ８^＋Ｔ細胞の腫瘍内浸潤および活性化を誘導することを示すものである。

また、前記アデノウイルスが投与された腫瘍組織内でのＩＦＮ−γの発現量を評価するために、アデノウイルスなどが投与されたマウスから腫瘍組織を摘出して微細に粉砕した後、ＩＦＮ−γＥＬＩＳＡ分析を行った。その結果、図１７に示したように、ＰＢＳまたはαＰＤ−１を腫瘍内単独投与した場合、ＩＦＮ−γが全く検出されず、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ単独投与群では、腫瘍組織１ｇ当たり８．３ｐｇ／ｍｇのＩＦＮ−γだけが検出された反面、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄとαＰＤ−１併用投与群では、腫瘍組織１ｇ当たり１８．７ｐｇ／ｍｇのＩＦＮ−γが検出されることを確認することができた。すなわち、前記の併用投与は、腫瘍内ＩＦＮ−γの発現を増加させることによって、免疫細胞の活性を増大させ、究極的に抗癌効果の相乗に寄与することが明らかにされた。

（５）免疫チェックポイント阻害剤に対する抵抗性を有する条件下で抗癌効果の確認
免疫チェックポイント阻害剤に対する抵抗性を有する条件下で、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄとαＰＤ−１の併用が有効な治療効能を示すことができるかを評価するために、αＰＤ−１で前処理された腫瘍を対象として併用投与による腫瘍の成長抑制効果を評価した。具体的に、αＰＤ−１単独投与によって腫瘍の成長がこれ以上効果的に抑制されないとき（一番目の抗体治療後９日目）、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄを２日間隔で総４回投与した。一方、比較群としてαＰＤ−１単独投与群を利用した。

その結果、図１８に示したように、腫瘍の体積が９１５±７８ｍｍ^３であるときに始まったＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの投与は、投与の最初日から１０日間腫瘍成長を効果的に抑制した。興味深く、αＰＤ−１単独投与群は、腫瘍成長速度の急激な増加を示して腫瘍成長を抑制できなかった反面、併用投与群では、前記期間の間にも腫瘍の成長を持続的に抑制した。また、腫瘍の体積変化を比較した結果（投与後２３日目）、図１９に示したように、併用投与群での成長抑制効果が最も顕著であった。すなわち、前記の併用投与は、免疫チェックポイント阻害剤に対する抵抗性を有する条件下でも有効な抗癌治療効能を示した。したがって、前記の併用投与は、免疫チェックポイント阻害剤の単一療法に対して耐性を有する患者に有益な治療療法になり得ることを示唆するものである。

（６）ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄ投与によるαＰＤ−１の腫瘍組織内浸透変化
腫瘍組織内ＲＬＸの発現は、αＰＤ−１の腫瘍内浸透を促進させることによって、相乗的（ｓｙｎｅｒｇｉｓｔｉｃ）抗癌治療効能を示すものと予想した。したがって、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄが繊維組織型（ｄｅｓｍｏｐｌａｓｔｉｃ）すい臓腫瘍組織にαＰＤ−１の腫瘍内浸透を増加させるか否かを評価しようとした。ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄは、０日または２日目に、腫瘍組織内に直接投与され、αＰＤ−１は、２日目に腹腔内投与され（ｃ：ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸ＋Ａｌｅｘａ４８８−ａｎｔｉＰＤ−１）、比較群としては、Ａｌｅｘａ４８８−接合されたαＰＤ−１単独投与群（ｂ；Ａｌｅｘａ４８８−ａｎｔｉＰＤ−１）、対照群としては、ＰＢＳ単独投与群（ａ；ＰＢＳ）が用いられた。上記のように処理された腫瘍組織を７日目に採取し、腫瘍組織内Ａｌｅｘａ４８８−αＰＤ−１の蓄積を免疫蛍光分析を通じて定量化した。組織面積当たりＡｌｅｘａ４８８−αＰＤ−１の蓄積を定量化した結果、図２０に示したように、ＰＢＳ単独投与群またはαＰＤ−１単独投与群は、それぞれ１４±２Ａ．Ｕ．／μｍ^２または２１±１Ａ．Ｕ．／μｍ^２を示した反面、併用投与群は、３２±６Ａ．Ｕ．／μｍ^２を示した。このような結果から、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄは、腫瘍組織にαＰＤ−１の浸透を顕著に向上させ、腫瘍組織内αＰＤ−１の局所化（ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ）を向上させることに寄与することが分かった。また、前記Ａｌｅｘａ４８８−αＰＤ−１がＣＤ４^＋またはＣＤ８^＋Ｔ細胞の発現部位に位置するか否かを確認するために、ＰＢＳ（ａ：ＰＢＳ）、Ａｌｅｘａ４８８−接合されたαＰＤ−１単独（ｂ：Ａｌｅｘａ４８８−ａｎｔｉＰＤ−１）またはＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄおよびＡｌｅｘａ４８８−接合されたαＰＤ−１併用投与（ｃ：ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸ＋Ａｌｅｘａ４８８−ａｎｔｉＰＤ−１）されたそれぞれ腫瘍組織に対して、ＣＤ４^＋またはＣＤ８^＋に対する免疫染色を行った。その結果、図２１に示したように併用投与群は、Ａｌｅｘａ４８８−αＰＤ−１単独投与群に比べてαＰＤ−１とＣＤ４またはＣＤ８の共同−局所化が高く観察された。

全身（ｗｈｏｌｅｂｏｄｙ）に対するαＰＤ−１の腫瘍内浸透を評価するために、１、４、７、１０−テトラアザシクロドデカン−１、４、７、１０−テトラ酢酸を使用してαＰＤ−１と^６４Ｃｕを接合させた、^６４Ｃｕ−αＰＤ−１を前述した方法でＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄとともにＨａＰ−Ｔ１−移植ハムスターに投与して、免疫ＰＥＴイメージを取得した。ＰＥＴスキャンは、^６４Ｃｕ−αＰＤ−１投与後、２、１２、３６、および６０時間目に行われ、主なＰＥＴイメージは、解剖学的描写のためにＣＴとともに行われた。比較群としては、^６４Ｃｕ−αＰＤ−１単独投与群が利用された。その結果、図２２に示したように、ＳＵＶとして算出された併用投与群と単独投与群の腫瘍内^６４Ｃｕ−αＰＤ−１の吸収は、次の通りである：２時間目に０．２６±０．０６および０．３６±０．０５（Ｐ＝０．０７２）；１２時間目に０．９０±０．２２および１．６８±０．４５（Ｐ＝０．０１８）；３６時間目に２．１４±０．１９および２．９７±０．６７（Ｐ＝０．０６２）；６０時間目に３．３７±０．５７および４．５０±１．０２（Ｐ＝０．０４３）。すなわち、前記のすべての時点で併用投与群の腫瘍内^６４Ｃｕ−αＰＤ−１の吸収が^６４Ｃｕ−αＰＤ−１単独投与群に比べて有意的に高く観察された。また、^６４Ｃｕ−αＰＤ−１投与後６０時間目に、腫瘍組織を含む多様な組織内^６４Ｃｕ−αＰＤ−１の分布または吸収を％ＩＤ／ｇで算出した。その結果、図２３に示したように、単独投与群および併用投与群の吸収は、腫瘍組織でそれぞれ１．８０±０．１３％ＩＤ／ｇ、２．８０±０．４１％ＩＤ／ｇ（Ｐ＜０．０５）；脾臓でそれぞれ１．１０±０．１１％ＩＤ／ｇ、１．９４±０．２３％ＩＤ／ｇ（Ｐ＜０．０５）を示して、腫瘍組織および脾臓の両方で^６４Ｃｕ−αＰＤ−１の吸収が向上することを確認することができた。また、これらの組織以外にもＴ細胞の濃縮部位と知られているｄｒａｉｎｉｎｇｌｙｍｐｈｎｏｄｅ（ＤＬＮ）も、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの感染によって肥大化していた（結果は不図示）。すなわち、前記の実験結果を総合してみると、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＧＭＣＳＦ−ＲＬＸＡｄの感染は、腫瘍組織内細胞外基質を再配列（ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ）または分解させ、ＩＬ−１２およびＧＭ−ＣＳＦによる増進された免疫反応によってαＰＤ−１の腫瘍組織内吸収を向上させることによって、併用投与の相乗効果が発生することが分かった。

前述した本発明の説明は、例示のためのものであり、本発明の属する技術分野における通常の知識を有する者は、本発明の技術的思想や必須の特徴を変更することなく、他の具体的な形態で容易に変形が可能であることを理解することができる。したがって、以上で記述した実施例は、すべての面において例示的なものであり、限定的でないものと理解しなければならない。

Claims

ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ１２）を暗号化する遺伝子；ＧＭ−ＣＳＦ（Ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ−ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｃｏｌｏｎｙ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇｆａｃｔｏｒ）を暗号化する遺伝子；およびＲｅｌａｘｉｎを暗号化する遺伝子を含む、癌を治療するための組換え腫瘍溶解性（ｏｎｃｏｌｙｔｉｃ）アデノウイルスであって、
活性なＥ１Ａ遺伝子を含む、組換え腫瘍溶解性アデノウイルス。
前記組換えアデノウイルスは、Ｅ１ＢおよびＥ３領域よりなる群から選ばれるいずれか一つ以上の領域が欠失されていることを特徴とする請求項１に記載の組換えアデノウイルス。
前記組換えアデノウイルスは、前記Ｅ１Ｂ領域にＩＬ−１２を暗号化する遺伝子が挿入されており、
前記Ｅ３領域にＧＭ−ＣＳＦを暗号化する遺伝子およびＲｅｌａｘｉｎを暗号化する遺伝子が挿入されているものである、請求項２に記載の組換えアデノウイルス。
（ａ）請求項１〜３のいずれかに記載の組換え腫瘍溶解性アデノウイルス；および（ｂ）薬学的に許容される担体（ｃａｒｒｉｅｒ）を含む癌の予防または治療用薬学的組成物。
前記組成物は、免疫チェックポイント阻害剤と同時に、別途に、または順次に併用投与されるものである、請求項４に記載の薬学的組成物。
前記免疫チェックポイント阻害剤は、ＰＤ−１（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄｃｅｌｌｄｅａｔｈ−１）拮抗剤、ＰＤ−Ｌ１（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄｃｅｌｌｄｅａｔｈ−ｌｉｇａｎｄ１）拮抗剤、ＰＤ−Ｌ２（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄｃｅｌｌｄｅａｔｈ−ｌｉｇａｎｄ２）拮抗剤、ＣＤ２７（ｃｌｕｓｔｅｒｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ２７）拮抗剤、ＣＤ２８（ｃｌｕｓｔｅｒｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ２８）拮抗剤、ＣＤ７０（ｃｌｕｓｔｅｒｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ７０）拮抗剤、ＣＤ８０（ｃｌｕｓｔｅｒｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ８０、ａｌｓｏｋｎｏｗｎａｓＢ７−１）拮抗剤、ＣＤ８６（ｃｌｕｓｔｅｒｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ８６、ａｌｓｏｋｎｏｗｎａｓＢ７−２）拮抗剤、ＣＤ１３７（ｃｌｕｓｔｅｒｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ１３７）拮抗剤、ＣＤ２７６（ｃｌｕｓｔｅｒｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ２７６）拮抗剤、ＫＩＲｓ（ｋｉｌｌｅｒ−ｃｅｌｌｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ−ｌｉｋｅｒｅｃｅｐｔｏｒｓ）拮抗剤、ＬＡＧ３（ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ−ａｃｔｉｖａｔｉｏｎｇｅｎｅ３）拮抗剤、ＴＮＦＲＳＦ４（ｔｕｍｏｒｎｅｃｒｏｓｉｓｆａｃｔｏｒｒｅｃｅｐｔｏｒｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ、ｍｅｍｂｅｒ４、ａｌｓｏｋｎｏｗｎａｓＣＤ１３４）拮抗剤、ＧＩＴＲ（ｇｌｕｃｏｃｏｒｔｉｃｏｉｄ−ｉｎｄｕｃｅｄＴＮＦＲ−ｒｅｌａｔｅｄｐｒｏｔｅｉｎ）拮抗剤、ＧＩＴＲＬ（ｇｌｕｃｏｃｏｒｔｉｃｏｉｄ−ｉｎｄｕｃｅｄＴＮＦＲ−ｒｅｌａｔｅｄｐｒｏｔｅｉｎｌｉｇａｎｄ）拮抗剤、４−１ＢＢＬ（４−１ＢＢｌｉｇａｎｄ）拮抗剤、ＣＴＬＡ−４（ｃｙｔｏｌｙｔｉｃＴｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅａｓｓｏｃｉａｔｅｄａｎｔｉｇｎ−４）拮抗剤、Ａ２ＡＲ（ＡｄｅｎｏｓｉｎｅＡ２Ａｒｅｃｅｐｔｏｒ）拮抗剤、ＶＴＣＮ１（Ｖ−ｓｅｔｄｏｍａｉｎ−ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇＴ−ｃｅｌｌａｃｔｉｖａｔｉｏｎｉｎｈｉｂｉｔｏｒ１）拮抗剤、ＢＴＬＡ（Ｂ− ａｎｄＴ−ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅａｔｔｅｎｕａｔｏｒ）拮抗剤、ＩＤＯ（Ｉｎｄｏｌｅａｍｉｎｅ２、３−ｄｉｏｘｙｇｅｎａｓｅ）拮抗剤、ＴＩＭ−３（Ｔ−ｃｅｌｌＩｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎｄｏｍａｉｎａｎｄＭｕｃｉｎｄｏｍａｉｎ３）拮抗剤、ＶＩＳＴＡ（Ｖ−ｄｏｍａｉｎＩｇｓｕｐｐｒｅｓｓｏｒｏｆＴｃｅｌｌａｃｔｉｖａｔｉｏｎ）拮抗剤、およびＫＬＲＡ（ｋｉｌｌｅｒｃｅｌｌｌｅｃｔｉｎ−ｌｉｋｅｒｅｃｅｐｔｏｒｓｕｂｆａｍｉｌｙＡ）拮抗剤、およびこれらの組合せよりなる群から選ばれるいずれか一つである、請求項５に記載の薬学的組成物。
前記癌は、胃癌、肺癌、非小細胞性肺癌、乳癌、卵巣癌、肝癌、気管支癌、鼻咽頭癌、喉頭癌、すい臓癌、膀胱癌、結腸癌、子宮頸癌、骨癌、非小細胞性骨癌、血液癌、皮膚癌、頭部または頸部癌、子宮癌、直腸癌、肛門付近癌、卵管癌、子宮内膜癌、膣癌、陰門癌、ホジキン病（Ｈｏｄｇｋｉｎ’ｓｄｉｓｅａｓｅ）、食道癌、小腸癌、内分泌腺癌、甲状腺癌、副甲状腺癌、副腎癌、軟組織肉腫、尿道癌、陰茎癌、前立腺癌、慢性または急性白血病、リンパ球リンパ腫、腎臓または輸尿管癌、腎臓細胞癌腫、腎臓骨盤癌腫、唾液腺腫瘍、肉腫癌、仮性粘液腫、肝芽腫、睾丸癌、膠芽腫、口脣癌、卵巣生殖細胞腫瘍、基底細胞癌、多発性骨髄腫、胆のう癌、脈絡膜黒色腫、ファーテル膨大部癌、腹膜癌、舌癌、小細胞癌、小児リンパ腫、神経芽細胞腫、十二指腸癌、尿管癌、星状細胞腫、髄膜腫、腎盂癌、外陰部癌、胸腺癌、中枢神経系（ｃｅｎｔｒａｌｎｅｒｖｏｕｓｓｙｓｔｅｍ、ＣＮＳ）腫瘍、１次中枢神経系リンパ腫、脊髄腫瘍、脳幹神経膠腫および脳下垂体腺腫よりなる群から選ばれるいずれか一つである、請求項４に記載の薬学的組成物。
前記癌は、再発癌（Ｒｅｃｕｒｒｅｎｔｃａｎｃｅｒ）であることを特徴とする請求項４に記載の薬学的組成物。
前記組成物は、抗腫瘍免疫性（Ａｎｔｉｔｕｍｏｒｉｍｍｕｎｉｔｙ）を増進させることを特徴とする請求項４に記載の薬学的組成物。
免疫チェックポイント阻害剤をさらに含む、請求項４に記載の治療用薬学的組成物。