JP6230027B2 - エキソソームの分析方法、エキソソーム分析装置、抗体−エキソソーム複合体、及びエキソソーム電気泳動チップ - Google Patents
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Description
本願は、2012年8月24日に、日本に出願された特願2012−185666号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
(1)本発明の一実施態様におけるエキソソームの分析方法は、エキソソームの分析方法であって、
(a)試料からエキソソームを調製する工程と、
(b)前記工程(a)で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて第1の抗体−エキソソーム複合体を形成させる工程と、
(c)前記第1の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
(2)本発明の一実施態様におけるエキソソーム分析装置は、エキソソーム分析装置であって、
試料からエキソソームを調製する調製手段と、
前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて抗体−エキソソーム複合体を形成させる複合体形成手段と、
前記抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
を備える。
(3)本発明の一実施態様におけるエキソソーム電気泳動チップは、エキソソーム電気泳動チップであって
試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させた、抗体−エキソソーム複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
前記抗体−エキソソーム複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
を備え、
前記流路は、前記抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を算出するために光照射される部分を有する。
(4)本発明の一実施態様におけるエキソソームの分析方法は、エキソソームの分析方法であって、
(a)試料からエキソソームを調製する工程と、
(b)前記工程(a)で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる工程と、
(c)前記複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
(5)本発明の一実施態様におけるエキソソーム分析装置は、エキソソーム分析装置であって、
試料からエキソソームを調製する調製手段と、
前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる複合体形成手段と、
前記複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
を備える。
(6)本発明の一実施態様におけるエキソソーム電気泳動チップは、エキソソーム電気泳動チップであって、
試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させた、複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
前記複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
を備え、
前記流路は、前記抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を算出するために光照射される部分を有する。
≪エキソソームの分析方法≫
本実施形態のエキソソームの分析方法は、細胞の異常を検出するためのエキソソームの分析方法であって、
(a)検出対象の細胞が分泌したエキソソームを含有する試料から前記エキソソームを調製する工程と、
(b)前記工程(a)で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて第1の抗体−エキソソーム複合体を形成させる工程と、
(c)前記第1の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
そのため、エキソソームの表面に発現しているタンパク質を分析することで分泌源の細胞の異常を検出することができる。ここで、エキソソームの表面とは、細胞から分泌される膜小胞の膜表面であって、分泌されたエキソソームが生体内の環境と接する部分をいう。
更に、エキソソームは、生体内で循環している血液中で検出されるため、エキソソームを分析することで、バイオプシー検査をしなくとも、生体内の異常を検出することができる。
以下、各工程について説明する。
また、係る試料には、培養細胞が分泌したエキソソームを含有する細胞培養液も含まれる。
エキソソームを分泌する異常細胞は、その細胞表面に特有のタンパク質を発現しているか、又は、前記異常細胞において、特有のタンパク質の発現が欠損している。従って、正常細胞と比較して、発現パターンの異なるタンパク質を抗原とする抗体を用いることで、細胞の異常を検出できる。
係る観点から、第1の抗体は、一例として、異常細胞又は正常細胞に高発現が認められるタンパク質を抗原とし、また、一例として、異常細胞特異的又は正常細胞特異的に発現が認められるタンパク質を抗原とする。
第1の抗体が認識する抗原としては、エキソソームの表面に存在するタンパク質であれば特に限定されず、細胞内に存在するタンパク質の一部が表面に露呈されていてもよい。例えば、がん細胞において免疫細胞に攻撃される成分(以下、がん抗原という。)は、がん細胞の細胞質内でペプチドに分解され、がん細胞の細胞膜表面にクラスIMHC分子と共にがん抗原ペプチドとして発現される。第1の抗体が認識する抗原は、係るがん抗原ペプチドであってもよい。
第1の抗体がエキソソームとの複合体を形成しやすいという観点から、一例としてレセプター等の膜タンパク質を抗原とする。
従って、乳腺上皮細胞の異常を検出する場合、一例として第1の抗体がCD10、CD5/6、CD44等の膜タンパク質を抗原とする。
また、複数種類の抗体は、異なる抗原を認識してもよい。例えば、乳がん細胞又は乳腺上皮正常細胞に高発現が認められる複数種類のタンパク質を抗原とする複数種類の抗体を用いることによって、乳腺上皮細胞の異常を検出する際の精度を高めることができる。
従って、複合体のゼータ電位を計測することによって、エキソソームの膜表面における、第1抗体が認識するタンパク質の発現を検出でき、分泌源の細胞の異常を検出することができる。
また、本実施形態の分析方法は、従来のエキソソームの分析方法と異なり、抗体で修飾したビーズを用いて、エキソソームを多数捕捉する必要が無い。そのため、本実施形態の分析方法によれば、細胞の異常を高感度にかつ簡便に検出できる。
例えば、生体内を循環している血液からエキソソームを調製する場合、前記エキソソームは複数の臓器由来の複数種類の細胞から分泌される為、エキソソームの膜表面に存在するタンパク質の種類及び発現量は、粒子ごとに異なる。従って、係るエキソソームを詳細に分析するためには、一例として、電気泳動により1粒子レベルで分離して、分析する。1粒子のエキソソームに結合する抗体の分子数が多いほど、複合体は正に帯電し、電気泳動における複合体の移動速度は遅くなる。
例えば、電気泳動の際、例えば、波長488nm、強度50mWのレーザ光を抗体−エキソソーム複合体に照射して、レイリー散乱光による粒子画像を取得し、抗体−エキソソーム複合体の電気泳動度を測定する。複数種類の抗体−エキソソーム複合体を電気泳動により分離し、スモルコフスキー(Smoluchowski)の式:
乳がん、すい臓がん、胃がん、大腸がん等の固形がんにおいては、CD44陽性のがん細胞は免疫不全マウスでの腫瘍形成能力が高く、CD44陽性のがん細胞はがん幹細胞様の性質を有することが報告されている。
従って、本実施形態によれば、生体内を循環している血液からエキソソームを調製し、第1の抗体としてCD44を抗原とする抗体を用い、抗CD44抗体−エキソソーム複合体を電気泳動により分離して、抗CD44抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を1粒子レベルで計測することにより、CD44を高発現する微量の転移性乳がん細胞等を検出することができる。
(d)前記工程(a)で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの膜表面に存在するタンパク質を抗原とする第2の抗体と、を接触させて前記第2の抗体−エキソソーム複合体を形成させる工程と、
(e)前記第2の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
即ち、一例として、本実施形態のエキソソームの分析方法は、上述した第1の抗体を用いて、エキソソームとの複合体のゼータ電位を計測する工程とは別に、第1の抗体とは異なる第2の抗体を用いて、エキソソームとの複合体のゼータ電位を計測する工程を有する。
以下、各工程について詳細に説明する。
第2の抗体は、一例として、第1の抗体とは異なり、第1の抗体を用いることにより特定される検出細胞の性質とは異なる性質を特定できる。例えば、第1の抗体としてがん特異的に発現するタンパク質を抗原とするものを用いた場合、第2の抗体として臓器特異的に発現するタンパク質を抗原とするものを用いる。これにより、エキソソームの分泌源の細胞ががん細胞であるかどうかを特定できるだけではなく、エキソソームの分泌源の細胞が生体内のどの臓器由来であるかを特定できる。
エキソソームを詳細に分析する観点から、工程(e)も、一例として、前記第2の抗体−エキソソーム複合体を電気泳動により分離して、前記第2の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を1粒子レベルで計測する工程である。
また、工程(e)は、一例として、光学的に測定した移動度に基づいて前記第2の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程を含む。
(a)試料からエキソソームを調製する工程と、
(b)前記工程(a)で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる工程と、
(c)前記複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する。
一例として、前記工程(c)は、前記複合体を電気泳動により分離して、前記複合体のゼータ電位を1粒子レベルで計測する工程である。
本実施形態のエキソソーム分析装置は、細胞の異常を検出するためのエキソソーム分析装置であって、
検出対象の細胞が分泌したエキソソームを含有する試料からエキソソームを調製する調製手段と、
前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて抗体−エキソソーム複合体を形成させる複合体形成手段と、
前記抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
を備える。
一例として、前記エキソソーム分析装置は、前記抗体−エキソソーム複合体を電気泳動により分離する電気泳動手段を含む。
μ−TASとは、MEMS(Micro Electro Mechanical Systems)技術を用いて、チップ上に微小な流路、反応室、及び混合室を設け、一つのチップ上で生体分子を分析するマイクロ流体デバイスを意味する。μ−TASは、少量の試料で測定、分析が可能なこと、持ち運びが可能となること、低コストで使い捨てが可能なこと等、従来の検査機器に比べて優れている。
更に、μ−TASは、高価な試薬を使用する場合や少量多検体を検査する場合において、有用性が高い方法として注目されている。
従って、検出対象の細胞が分泌した微量のエキソソームを分析するため、本実施形態のエキソソーム分析装置は、一例として、マイクロ流体デバイスを少なくとも一部に有する。
以下、図1を用いて、本実施形態のエキソソーム分析装置の一例について説明する。
本実施形態のエキソソーム分析装置1は、液溜部4,7、駆動源2、バルブ9、及び精製装置11からなる調製手段(調製部)21と、液溜部3,7、駆動源2、バルブ8、及び合流部13からなる複合体形成手段(複合体形成部)20と、電気泳動槽12からなる計測手段(計測部)22と、から構成されている。
図1に示すように、本実施形態のエキソソーム分析装置1は、駆動源2の下流に、液溜部3,4を有しており、液溜部3には、それぞれ、抗体、血液が溜められている。駆動源2の上流に位置する液溜部7には、駆動液が溜められている。更に、液溜部3,4の上流の流路には、流体の流れを制御するバルブ8,9が設けられている。
次いで、バルブ8を開け、駆動源2によって、液溜部3に溜められている抗体が押出され、合流部13にて、エキソソームが抗体と接触し、抗体−エキソソームが形成される。
次いで、合流部13に付されたバルブを開け、抗体−エキソソームは電気泳動槽12を通る。電気泳動槽12は、図示略の電気泳動装置に接続されており、前記電気泳動装置によって、抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位が計測される。
このように本実施形態のエキソソーム分析装置1によれば、生体内の微量のエキソソームを簡便かつ高感度に分析できる。
試料からエキソソームを調製する調製手段と、
前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる複合体形成手段と、
前記複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
を備える。
一例として、前記エキソソーム分析装置は、前記複合体を電気泳動により分離する電気泳動手段を含む。
本実施形態の抗体−エキソソーム複合体は、細胞の異常を検出するための抗体−エキソソーム複合体であって、
試料から調製されたエキソソームと、
前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、からなり、
電気泳動移動度によって算出される前記抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位が、前記エキソソームのゼータ電位と比較して正の電荷を有する。
また、本実施形態の抗体−エキソソーム複合体は、一例として上述したゼータ電位計測に用いられる。
更に、本実施形態の抗体−エキソソーム複合体の物性は、抗体―エキソソーム複合体のゼータ電位がエキソソーム単体のゼータ電位に比べて、一例として0.1mV以上、あるいは1mV以上、シフトしている。また、抗体―エキソソーム複合体のゼータ電位は、エキソソーム単体のゼータ電位に比べて、例えば、0.5、1、2、3、4、または5mV以上シフトしている。
本実施形態の抗体−エキソソーム複合体は、上述した本実施形態のエキソソームの分析方法において説明されたものと同様であり、その説明を省略する。
本実施形態のエキソソーム電気泳動チップは、細胞の異常を検出するためのエキソソーム電気泳動チップであって
試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させた、抗体−エキソソーム複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
前記抗体−エキソソーム複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
を備えたものである。
前記流路は、一例として、前記抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を算出するために光照射される部分を有する。また、一例として前記流路の少なくとも一部は、生体分子の非特異的吸着を抑制するために、ポリマーでコーティングされている。前記ポリマーの例としては、PEG(ポリエチレングリコール)や、BSA(ウシ血清アルブミン)などタンパク質の吸着ブロッキングで用いられるポリマー等が挙げられるが、特にタンパク質の非特異的吸着を抑制する観点からMPC(2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン)が好ましい。
試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させた、複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
前記複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
を備える。
[エキソソーム懸濁液の調製]
ヒト乳腺上皮細胞MCF10Aを、乳腺上皮細胞培地キット(Lonza社製)を用いて、コンフルエントに達するまで培養した。また、ヒト乳がん細胞MDA−MB−231を、10% ウシ胎児血清(インビトロジェン社製)、100units/mLペニシリン(インビトロジェン社製)、100μg/mLストレプトマイシン(インビトロジェン社製)、及び100μg/mLカナマイシン(インビトロジェン社製)含有RPMI培地(インビトロジェン社製) を用いて、コンフルエントに達するまで培養した。
次いで、培地交換を行い、MCF10A及びMDA−MB−231を、無血清培地(100units/mLペニシリン(インビトロジェン社製)、100μg/mLストレプトマイシン(インビトロジェン社製)、及び100μg/mLカナマイシン(インビトロジェン社製)含有RPMI培地(インビトロジェン社製))で、1日培養し、培養上清を回収した。
この培養上清を、2000×gで15分間遠心分離して上清を回収し、回収した上清を16800×gで35分間遠心分離して上清を回収し、更に回収した上清を151000×gで70分間遠心分離した。上清を廃棄して沈殿をPBSで懸濁し、懸濁液を151000×gで70分間遠心分離した。更に、上清を廃棄して沈殿をPBSで懸濁し、エキソソーム懸濁液を得た。
MCF10A及びMDA−MB−231の培養上清から調製したエキソソーム懸濁液それぞれに、抗ヒトCD10抗体(日本BD社製、型番555746)懸濁液又はIsotypeコントロール用マウスIgG1,κ抗体(日本BD社製、型番349050)懸濁液を加えてなる抗体−エキソソーム懸濁液を、4℃で30分間撹拌して反応させ、抗体−エキソソーム複合体の形成を試みた。
抗体−エキソソーム懸濁液750μLをサンプルセルに入れ、ゼータ電位計測装置(マルバーン社製、商品名:Zetasizer Nano)を用いて、25℃、20Vの条件下、ゼータ電位を計測した。尚、試験を3回連続で行った。計測結果を図2に示す。
図2に示すように、MCF10Aにおいて、抗ヒトCD10抗体−エキソソーム懸濁液は、Isotypeコントロール用マウスIgG1,κ抗体−エキソソーム懸濁液と比較して、そのゼータ電位が上昇していることが確認された。
このことから、Isotypeコントロール用マウスIgG1,κ抗体−エキソソーム懸濁液においては、Isotypeコントロール用マウスIgG1,κ抗体−エキソソーム複合体を形成していない一方、抗ヒトCD10抗体−エキソソーム懸濁液においては、抗ヒトCD10抗体−エキソソーム複合体を形成していることが確認された。
一方、MDA−MB−231においては、Isotypeコントロール用マウスIgG1,κ抗体−エキソソーム懸濁液及び抗ヒトCD10抗体−エキソソーム懸濁液のゼータ電位に差がないことから、どちらの懸濁液も複合体を形成していないことが確認された。
実施例1によれば、ある細胞で発現量が多いタンパク質を抗原とする抗体を用いて、抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を測定することにより、エキソソームの分泌源である細胞の存在を確認できる。すなわち、がん細胞特異的に発現するタンパク質又はがん細胞に高発現するタンパク質を抗原とする抗体を用いて、抗体−エキソソーム懸濁液のゼータ電位を測定することにより、エキソソームの分泌源の細胞の異常を検出し、生体内に存在するがんを簡便かつ高感度に検出できることが明らかである。
[エキソソーム懸濁液の調製]
実施例1と同様の方法にて、ヒト乳がん細胞MDA−MB−231由来のエキソソーム懸濁液を調製した。
MDA−MB−231の培養上清から調製したエキソソーム懸濁液それぞれに、抗ヒトCD63抗体(日本BD社製、型番556019)懸濁液又はIsotypeコントロール用マウスIgG2a抗体(日本BD社製、型番555746)懸濁液を加えてなる抗体−エキソソーム懸濁液を、4℃で30分間撹拌して反応させ、抗体−エキソソーム複合体の形成を試みた。また、ネガティブコントロールとして、抗体懸濁液を加えないエキソソーム懸濁液を同様の条件にて用意した。
図3右図に示すチップ電気泳動システムを用いて、抗体−エキソソーム懸濁液の電気泳動を行い、抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測した。詳細を以下に示す。
PDMS製電気泳動チップをソフトリソグラフィー法で作製した。電気泳動チップ内の流路のサイズは幅200μm、高さ50μm、長さ1000μmである。タンパク質の非特異吸着を抑制すべく、流路内壁をMPC(2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン)ポリマーでコーティングした。
作製したPDMS製電気泳動チップの両端に備えられたリザーバーの一方に、抗体−エキソソーム懸濁液を加え、他方からシリンジで吸引して、エキソソーム懸濁液又は抗体−エキソソーム懸濁液を、電気泳動チップ内の流路内に導入した。両方のリザーバーにプラチナ電極を入れ、電界強度50V/cmで10秒間電圧を印加して、電気泳動を行った。
図3左図は、エキソソーム及び抗体−エキソソーム複合体それぞれの電気泳動の拡大図を示す。エキソソームは負に帯電する一方、抗体は正に帯電するため、抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位は、エキソソーム単独のゼータ電位と比較して正の電荷を有している。従って、抗体−エキソソーム複合体の泳動度は、エキソソームの泳動度より小さいものとなる。
更に、電気泳動チップの下側方から波長488nm、強度50mWのレーザ光を照射し、出射光であるエキソソーム由来の散乱光を、電気泳動チップ下方にある対物レンズ(倍率x60)で集光した。
次いで、Andor社製の高感度カメラEMCCD iXon3を用いて、エキソソーム及び抗体−エキソソーム複合体それぞれの像を取得し、エキソソーム及び抗体−エキソソーム複合体それぞれの移動速度を電界強度で除して、電気泳動移動度を算出した。また、無電荷ビーズの電気泳動度を測定して、流路内の電気浸透流の電気泳動移動度を算出し、エキソソーム及び抗体−エキソソーム複合体それぞれの電気泳動移動度から無電荷ビーズの電気泳動移動度を差し引いて、エキソソーム及び抗体−エキソソーム複合体それぞれの真の電気泳動移動度を算出した。
次いで、スモルコフスキー(Smoluchowski)の式を用いてエキソソーム及び抗体−エキソソーム複合体それぞれの真の電気泳動移動度からゼータ電位を算出した。
結果を図3及び表1に示す。
図4右は、抗ヒトCD63抗体−エキソソーム懸濁液におけるゼータ電位の分布を示す。横軸は、ゼータ電位を示し、縦軸は、エキソソームの数を示す。合計32個のエキソソームのゼータ電位が計測された。表1に示すように、抗ヒトCD63抗体−エキソソーム懸濁液におけるゼータ電位の平均値は、−2.88±3.87mVであり、エキソソーム懸濁液及びコントロール用マウスIgG2a抗体−エキソソーム懸濁液と比較して、そのゼータ電位が上昇していることが確認された。
このことから、Isotypeコントロール用マウスIgG2a抗体−エキソソーム懸濁液においては、Isotypeコントロール用マウスIgG2a抗体−エキソソーム複合体を形成していない一方、抗ヒトCD63抗体−エキソソーム懸濁液においては、抗ヒトCD63抗体−エキソソーム複合体を形成していることが確認された。
即ち、実施例2によれば、例えば、生体内に微量に存在する悪性度の高いがん細胞を高感度に検出し、がんの浸潤・転移を早期に発見できることが明らかである。
2 駆動源
3,4,7 液溜部
8,9 バルブ
11 精製装置
12 電気泳動槽
13 合流部
20 複合体形成手段
21 調製手段
22 計測手段
Claims (21)
- エキソソームの分析方法であって、
(a)試料からエキソソームを調製する工程と、
(b)前記工程(a)で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて第1の抗体−エキソソーム複合体を形成させる工程と、
(c)前記第1の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有するエキソソームの分析方法。 - 前記工程(c)は、前記第1の抗体−エキソソーム複合体を電気泳動により分離して、前記第1の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を1粒子レベルで計測する工程である請求項1に記載のエキソソームの分析方法。
- 前記工程(c)は、光学的に測定した移動度に基づいて前記第1の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程を含む請求項2に記載のエキソソームの分析方法。
- 前記第1の抗体は、異常細胞又は正常細胞に高発現が認められるタンパク質を抗原とする請求項1〜3のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。
- 前記第1の抗体は、異常細胞特異的又は正常細胞特異的に発現が認められるタンパク質を抗原とする請求項1〜4のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。
- 前記第1の抗体は、複数種類の抗体からなる請求項1〜5のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。
- 前記工程(c)の後、
(d)前記工程(a)で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする第2の抗体と、を接触させて第2の抗体−エキソソーム複合体を形成させる工程と、
(e)前記第2の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有する請求項1〜6のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。 - 前記工程(e)は、前記第2の抗体−エキソソーム複合体を電気泳動により分離して、前記第2の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を1粒子レベルで計測する工程である請求項7に記載のエキソソームの分析方法。
- 前記工程(e)は、光学的に測定した移動度に基づいて前記第2の抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する工程を含む請求項8に記載のエキソソームの分析方法。
- 前記第2の抗体は、臓器特異的に高発現が認められるタンパク質を抗原とする請求項7〜9のいずれか一項に記載のエキソソームの分析方法。
- エキソソーム分析装置であって、
試料からエキソソームを調製する調製手段と、
前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させて抗体−エキソソーム複合体を形成させる複合体形成手段と、
前記抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
を備えたエキソソーム分析装置。 - 前記抗体−エキソソーム複合体を電気泳動により分離する電気泳動手段を含む請求項11に記載のエキソソーム分析装置。
- エキソソーム電気泳動チップであって
試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在するタンパク質を抗原とする抗体と、を接触させた、抗体−エキソソーム複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
前記抗体−エキソソーム複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
を備え、
前記流路は、前記抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を算出するために光照射される部分を有するエキソソーム電気泳動チップ。 - 電圧を前記流路に印加するための電極が入れられる2つの部分を備える請求項13に記載のエキソソーム電気泳動チップ。
- 電圧を前記流路に印加するための電極を備える請求項13又は14に記載のエキソソーム電気泳動チップ。
- 前記流路の少なくとも一部は、生体分子の非特異的吸着を抑制するために、ポリマーでコーティングされている請求項13〜15のいずれか一項に記載のエキソソーム電気泳動チップ。
- エキソソームの分析方法であって、
(a)試料からエキソソームを調製する工程と、
(b)前記工程(a)で調製されたエキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる工程と、
(c)前記複合体のゼータ電位を計測する工程と、
を有するエキソソームの分析方法。 - 前記工程(c)は、前記複合体を電気泳動により分離して、前記複合体のゼータ電位を1粒子レベルで計測する工程である請求項17に記載のエキソソームの分析方法。
- エキソソーム分析装置であって、
試料からエキソソームを調製する調製手段と、
前記エキソソームと、前記エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させて複合体を形成させる複合体形成手段と、
前記複合体のゼータ電位を計測する計測手段と、
を備えたエキソソーム分析装置。 - 前記複合体を電気泳動により分離する電気泳動手段を含む請求項19に記載のエキソソーム分析装置。
- エキソソーム電気泳動チップであって、
試料から調製したエキソソームと、該エキソソームの表面に存在する生体分子と特異的に結合する分子と、を接触させた、複合体を含む懸濁液が注入されるリザーバーと、
前記複合体を含む懸濁液の電気泳動を行う流路と、
を備え、
前記流路は、前記抗体−エキソソーム複合体のゼータ電位を算出するために光照射される部分を有するエキソソーム電気泳動チップ。
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