JP5778708B2 - 結腸癌関連疾患の診断及び治療のためのマイクロrnaに基づいた方法及び組成物 - Google Patents
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Description
本出願は、その開示が本明細書において援用される、2006年7月13日に出願された米国仮出願番号60/807,304、及び2007年6月1日出願された米国仮出願番号60/932,736の優先権を主張する。
本発明は、政府支援でなされ、National Institutes of Health 助成金番号xxx及びNational Cancer Institute の助成金のもと、政府は本発明に特定の権利を有する。
結腸腺癌は、世界的な癌死亡率の主原因である1。結腸直腸癌は、米国において3番目に多く、そして2番目に多い癌死の原因である2。散発性結腸腺癌は腺腫として開始され、分子的、細胞的及び組織学的変化の進行を介して進化する3。5年死亡率は最近30年間にわたってやや下落しているが4、この疾患についての新規予後バイオマーカー及び治療標的を同定することがまだ必要である。現在、化学療法は著しい治療意義を有するが、手術が唯一の治療の根治的形態である5。
発明の要約
一つの広範な側面において、対象が結腸癌関連疾患を有する、発症するリスクがある、又は減少した生存予後を有するかどうかを診断する方法が本明細書で提供される。本方法は、対象からの試験サンプル中の少なくとも一つのmiR遺伝子産物のレベルを測定することを含んでおり、対照サンプル中の対応するmiR遺伝子産物のレベルと比較して、試験
サンプル中の該miR遺伝子産物のレベルの変化は、対象が結腸癌関連疾患を有するか、発症するリスクがあることを示す。特定の側面において、該少なくとも一つのmiR遺伝子産物は、miR−20a、miR−21、miR−106a、miR−181b、miR−203及びそれらの組み合わせから成る群より選択される。一つの態様において、該一つのmiR遺伝子産物は、miR−21である。
(1)試験対象からのサンプル中の少なくとも一つのマーカーの発現レベルを決定すること;該少なくとも一つのマーカーは、miR−20a、miR−21、miR−106a、miR−181b、miR−203及びそれらの組み合わせから成る群より選択される少なくとも一つのmiR遺伝子産物を含んでいる;
(2)工程(1)で決定された該発現レベルを、健康な対象からのサンプル中のマーカーの対照発現レベルと比較すること;及び
(3)工程(2)での比較の結果が:i)試験対象中の少なくとも一つのマーカーの発現レベルが、対照中のレベルよりも高い、又はii)試験対象中の少なくとも一つのマーカーの発現レベルが、対照中のレベルよりも低いことを示す場合、該対象が結腸癌関連疾患を有すると判断すること;
を含んでなる。
別の広範な側面において、対象が結腸癌関連疾患を有する、発症するリスクがある、又は減少した生存予後を有するかどうかを診断する方法が提供され:
(1)対象から得られた試験サンプルからのRNAを逆転写して、標的オリゴデオキシヌクレオチドの組を提供し;
(2)該標的オリゴデオキシヌクレオチドを、miRNA特異的プローブオリゴヌクレオチドを含んでなるマイクロアレイにハイブリダイズさせて試験サンプルについてのハイブリダイゼーションプロファイルを提供し;及び
(3)試験サンプルハイブリダイゼーションプロファイルと対照サンプルから発生させたハイブリダイゼーションプロファイルを比較し、少なくとも一つのmiRNAのシグナルの変化は、対象が結腸癌関連疾患を有する、発症するリスクがある、又は減少した生存予後を有することを示す;
ことを含んでなる。
該方法は:
(1)少なくとも一つのmiR遺伝子産物が癌細胞中で下方調節されている場合、発癌が該対象中で抑制されるように、miR20a、miR−21、miR−106a、miR−181b、miR−203及びそれらの組み合わせから成る群より選択される少なくと
も一つの単離されたmiR遺伝子産物の有効量を該対象に投与すること;又は
(2)少なくとも一つのmiR遺伝子産物が癌細胞中で上方調節されている場合、発癌が該対象中で抑制されるように、miR20a、miR−21、miR−106a、miR−181b、miR−203及びそれらの組み合わせから成る群より選択される少なくとも一つの単離されたmiR遺伝子産物の発現を抑制するための少なくとも一つの化合物の有効量を該対象に投与すること;
を含んでなる。
(1)対照細胞と比較し、対象からの癌細胞中の少なくとも一つのmiR遺伝子産物の量を決定すること;及び
(2)該対象における発癌が抑制されるように;
(i)もし癌細胞中で発現された該miR遺伝子産物の量が、対照細胞中で発現された該miR遺伝子産物の量よりも少ないならば、miR20a、miR−21、miR−106a、miR−181b、miR−203及びそれらの組み合わせから成る群より選択される少なくとも一つの単離されたmiR遺伝子産物の有効量を該対象に投与すること;又は
(ii)もし癌細胞中で発現された該miR遺伝子産物の量が、対照細胞中で発現された該miR遺伝子産物の量よりも多いならば、該少なくとも一つのmiR遺伝子産物の発現を抑制するための少なくとも一つの化合物の有効量を該対象に投与すること;
により、癌細胞中で発現されるmiR遺伝子産物の量を変化させること;
を含んでなる。
より選択される一つ又はそれより多くのmiR遺伝子産物を含んでなる。
別の広範な側面において、対象において少なくとも一つの結腸癌関連疾患の開始又は発達の可能性を同定する方法が本明細書で提供され、該方法は、本明細書に記載された一つ又はそれより多くの該マーカーを測定することを提供している。特定の態様において、一つ又はそれより多くのマーカーは単離されたサンプル中に存在し、及びすべての方法工程はインビトロで実施される。
1)その有効性が評価されている療法を動物に受けさせること;及び
2)本明細書に記載された少なくとも一つのマーカーを評価することにより、結腸癌関連疾患を治療すること又は予防することにおいて試験されている治療の有効性のレベルを決定すること;
を含んでなる。
1)動物において結腸癌関連疾患応答を開始させるのに十分な量の一つ又はそれより多くの物質で動物を暴露した後、一つ又はそれより多くの上方又は下方調節された本明細書に記載のマーカーを測定すること;及び
2)一つ又はそれより多くの上方又は下方調節されたマーカーが結腸癌関連疾患応答を開始する能力を有しているかいなかを決定すること;
を提供している。
成る群より選択されるmiR遺伝子産物に特異的である。
一つ又はそれより多くの請求項20のマーカーとこうしたマーカーのための基質、及び試験剤を接触させること;及び
該試験剤が該マーカーの活性を変調させるかどうかを決定すること;
を含んでなる。
別の広範な側面において、対象における結腸癌関連疾患の存在を予測するためのマイクロアレイが本明細書において提供され、それは請求項20の少なくとも一つのマーカーに方向付けられた抗体を含んでなる、
別の広範な側面において、該マーカーの発現のレベルが、転写されたポリヌクレオチド又はそれらの一部の存在を検出することにより評価される、方法、組成物などが本明細書において提供され、該転写されたポリヌクレオチドは該マーカーのコード領域を含んでなる。また、該サンプルは、結腸癌関連体液又は組織であり得る。特定の態様において、該サンプルは、患者から得られた細胞を含んでなる。
該個体に、少なくとも一つの結腸癌関連疾患応答シグナル伝達経路を妨害する剤を、こうしたシグナル伝達を妨害するために十分な量で投与すること、該剤は、miR20a、miR−21、miR−106a、miR−181b、miR−203及びそれらの組み合わせから成る群より選択される少なくとも一つのmiR遺伝子産物を含んでなる;を含んでなる。
1)対象から得られたサンプルからのデータを分類するためのモデル又はアルゴリズムを含んでなるコンピューターを提供すること、該分類は、少なくとも一つのマーカーの存在、不在又は量についてのデータを分析することを含み、該マーカーは、miR20a、miR−21、miR−106a、miR−181b、miR−203及びそれらの組み合わせから成る群より選択される一つ又はそれより多くのmiR遺伝子産物を含んでなる;2)対象から得られた生体サンプルからのデータを入力すること;及び
3)生体サンプルを分類して、結腸癌関連疾患の存在、不在、性質又は程度を示すこと;を含んでなる。
一つの広範な側面において、その発現が、正常対照細胞と比べ、異なった結腸癌に関連する癌細胞中で変化を受ける特定のマイクロRNAが本明細書において提供される。
は典型的には腫瘍塊の形成及び/又は存在が付随し、及び、例えば、腺癌であり得る。
一つの態様において、結腸は腺癌であり、及び試験サンプル中で測定される該少なくとも一つのmiR遺伝子産物は、miR20a、miR−21、miR−106a、miR−181b、miR−203及びそれらの組み合わせから成る群から選択される。
少なくとも一つのmiR遺伝子産物のレベルは、対象から得られた生物学的サンプル(例えば、細胞、組織)中で測定し得る。例えば、組織サンプル(例えば、腫瘍から)は、慣用的生検技術により、結腸癌関連疾患を有していると疑われる対象から、取り出し得る。別の態様において、血液試料を対象から取り出すことが可能であり、そして標準技術によるDNA抽出のために血球細胞(例えば、白血球細胞)を単離し得る。血液又は組織サンプルは、好ましくは、放射線療法、化学療法及びホルモン療法又は他の療法的治療に先立って対象から得られる。対応する対照組織又は血液サンプルは、対象の罹患していない組織から、正常ヒト個体又は正常個体の集団から、又は患者のサンプル中の大多数の細胞に対応している培養細胞から得ることが可能である。対照組織又は血液サンプルは次ぎに、対象のサンプルからの細胞における所与のmiR遺伝子から産生されたmiR遺伝子産物のレベルを、対照サンプルの細胞からの対応するmiR遺伝子産物レベルと比較できるように、対象のサンプルと同様に処理する。生物学的サンプルについての基準miR発現標準も、対照として使用し得る。
、DNaseによる処理及び沈澱によりDNAが取り出される。RNA分子は次ぎに、標準技術に従ってアガロースゲル上でのゲル電気泳動により分離され、ニトロセルロースフィルターに移される。RNAは次ぎに加熱によりフィルター上に固定される。特異的RNAの検出及び定量は、問題とするRNAに相補的である、適切に標識されたDNA又はRNAプローブを使用して達成される。例えば、その全開示が本明細書において援用される、Molecular Cloning: A Laboratory Manual, J. Sambrook et al., eds., 2nd edition,
Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989, 7章、を参照されたい。
識し得る。後者は、一本鎖DNAから、又はRNA鋳型から高比活性の32P−標識プローブを合成するために選択される方法である。例えば、ニックトランスレーション法に従って、既存のヌクレオチドを高放射性ヌクレオチドで置き換えることにより、108cpm/マイクログラムをかなり上回る比活性を有する32P−標識核酸プローブを製造することが可能である。ハイブリダイゼーションのオートラジオグラフィー検出を、ハイブリダイズされたフィルターを写真フィルムに暴露することにより実施し得る。ハイブリダイズされたフィルターにより暴露された写真フィルムのデンシトメトリックスキャニングは、miR遺伝子転写体レベルの正確な測定を提供する。別のアプローチを使用し、miR遺伝子転写体レベルは、Amersham Biosciences, Piscataway, NJ. から入手可能であるMolecular Dynamics 400-B 2D Phosphorimager のような、コンピューター化されたイメー
ジングシステムにより定量し得る。
査することを含む。この技術は、対象からの組織バイオプシーサンプルを分析するために特によく適している。インサイチュハイブリダイゼーション技術の実際は、その全開示が本明細書において援用される米国特許第5,427,916号により詳細に記載されている。
期生存見通し)を決定することができる。異なった状態にある結腸癌組織の発現プロファイルを比較することにより、これらの状態の各々においてどの遺伝子が重要であるかに関する情報(遺伝子の上方及び下方調節を含んで)が得られる。結腸癌組織において異なって発現された配列、ならびに異なった予後結果を生じる異なった発現の同定は、この情報のさなざまな形での使用を可能にする。
SSPE/30%ホルムアミド、続いて37℃で40分の0.75X TNT(トリス
HCl/NaCl/Tween 20)中での洗浄)、マイクロアレイチップにハイブ
リダイズさせる。固定化されたプローブDNAがサンプル中の相補的標的cDNAを認識するアレイ上の位置でハイブリダイゼーションが起こる。標識標的cDNAは、結合が起こったアレイ上の正確な位置に印を付け、自動的な検出及び定量化を可能にする。出力はハイブリダイゼーション事象のリストから成っており、特異的cDNA配列の相対的存在量、そしてそれ故、患者サンプル中の対応する相補的miRの相対量を示している。
結腸癌を有する対象の予後を決定する方法も本明細書において提供され、対象からのサンプル中の、結腸癌関連疾患の特定の予後(例えば、良好又は正の予後、不良な又は悪い予後)に関連する、少なくとも一つのmiR遺伝子産物のレベルを測定することを含んでなる。
おいて、該生物学的に活性な断片は、少なくとも、約5、7、10、12、15、又は17ヌクレオチド長である。特定の態様において、単離されたmiR遺伝子産物は、一つ又はそれより多くの追加の抗癌治療と組み合わせて対象に投与し得る。適した抗癌治療には、限定されるわけではないが、化学療法、放射線療法及びそれらの組み合わせ(例えば、放射線化学療法)が含まれる。
は、一つ又はそれより多くのmiR遺伝子産物は、約3〜約28日、より好ましくは約7日〜約10日の期間、対象に1日1回又は2回投与し得る。特定の投与計画において、一つ又はそれより多くのmiR遺伝子産物は7日にわたって1日1回投与される。投与計画が複数の投与を含んでなる場合、対象に投与される一つ又はそれより多くのmiR遺伝子産物の有効量は、全投与計画にわたって投与された遺伝子産物の総量を含むことが可能であることが理解される。
ChemGenes (Ashland, MA, U.S.A.) 及びCruachem (Glasgow, UK) が含まれる
もしくは、該miR遺伝子産物は、いずれかの適したプロモーターを使用して組換え環状又は直線状DNAプラスミドから発現し得る。プラスミドからRNAを発現するために適したプロモーターには、例えば、U6又はH1 RNAポリメラーゼIIIプロモータ
ー配列又はサイトメガロウイルスプロモーターが含まれる。他の適したプロモーターの選択は当業者には自明である。本発明の組換えプラスミドは、癌細胞中でのmiR遺伝子産物の発現のための誘導可能又は調節可能プロモーターも含み得る。
産物を発現するための核酸配列を挿入する方法、及び組換えプラスミドを問題とする細胞へ送達する方法は当業者には自明である。例えば、その全開示が本明細書において援用される、Zeng et al. (2002), Molecular Cell 9:1327-1333; Tuschl (2002), Nat.Biotechnol, 20:446-448; Brummelkamp et al. (2002), Science 296:550-553; Miyagishi et al. (2002), Nat. Biotechnol. 20:497-500; Paddison et al. (2002), Genes Dev. 16:948-958; Lee et al. (2002), Nat. Biotechnol. 20:500-505; 及び Paul et al. (2002), Nat. Biotechnol. 20:505-508 を参照されたい。
ーター配列又はサイトメガロウイルスプロモーターが含まれる。他の適したプロモーターの選択は当業者には自明である。本発明の組換えウイルスベクターは、癌細胞中での該miR遺伝子産物の発現のための誘導可能又は調節可能プロモーターも含み得る。
トロウイルス(例えば、レンチウイルス(LV)、ラブドウイルス、マウス白血病ウイルス);ヘルペスウイルスなどに由来するベクター。ウイルスベクターの向性は、他のウイルスからの外被タンパク質又は他の表面抗原でベクターをシュードタイピングすることにより、又は必要に応じて、異なったウイルスカプシドタンパク質で置換することにより修飾し得る。
書において援用される、Dornburg (1995), Gene Therap. 2:301-310; Eglitis (1988), Biotechniques 6:608-614; Miller (1990), Hum. Gene Therap. 1:5-14; 及びAnderson (1998), Nature 392:25-30 、を参照されたい。
et al. (1996), J. Virol, 70:520-532; Samulski et al. (1989), J. Virol. 63:3822-3826;米国特許第5,252,479号;米国特許第5,139,941号;国際特許出願番号WO 94/13788 ;及び国際特許出願番号WO 93/24641 に記載されている。一つの態様において、該miR遺伝子産物は、CMV中間初期プロモーターを含んでなる単一組換えAAVベクターから発現される。
miR発現を抑制するために適した化合物には、二本鎖RNA(短い又は小さな干渉RNA又は「siRNA」のような)、アンチセンス核酸及びリボザイムのような酵素的RNA分子が含まれる。これらの化合物の各々は、所与のmiR遺伝子産物へ標的化すること、及び標的miR遺伝子産物の発現を妨害(例えば、翻訳を抑制することにより、開裂
又は分解を誘発することにより)することが可能である。
A、DNA、RNA−DNAキメラ、ペプチド核酸(PNA))である。該アンチセンス核酸は、miR遺伝子産物中の近接する核酸配列と50〜100%相補的、75〜100%相補的、又は95〜100%相補的である核酸配列を含んでなることができる。
用いることができるが、又は用いなくてもよい。腫瘍塊のサイズは、組織塊の触診のような物理的手段により、又はキャリパーのような計測器での組織塊の測定によっても確認し得る
miR遺伝子産物又はmiR遺伝子発現抑制化合物は、対象の癌細胞へこれらの化合物を送達するために適したいずれかの手段により対象に投与し得る。例えば、該miR遺伝子産物又はmiR遺伝子発現抑制化合物は、これらの化合物で、又はこれらの化合物をコードする配列を含んでなる核酸で該対象の細胞をトランスフェクトするために適した方法により投与し得る。
ェクチン;リポフェクタミン;セルフェクチン;ポリカチオン(例えば、ポリリジン)及びリポソームが含まれる。
をコードする配列を含んでなる核酸)を対象に送達するためにリポソームが使用される。リポソームは該遺伝子産物又は核酸の血中半減期を増加させることもできる。本発明で使用するために適したリポソームは、一般的に中性又は陰性に荷電したリン脂質及びコレステロールのようなステロールを含む、標準小胞形成脂質から形成し得る。脂質の選択は、所望のリポソームサイズ及び血流におけるリポソームの半減期のような因子の考慮により一般的に導かれる。例えば、それらの全開示が本明細書において援用される、Szoka et al. (1980), Ann. Rev. Biophys. Bioeng. 9:467;及び米国特許第4,235,871、4,501,728
、4,837,028及び5,019,369 号に記載されているように、リポソームを作製するための多
様な方法は公知である。
載されているように。
し得る。例えば、PEGのN−ヒドロキシスクシニミドエステルはホスファチジル−エタノールアミン脂溶性アンカーへ結合することが可能であり、そして次ぎに膜へ結合される。同様に、デキストランポリマーは、Na(CN)BH3及び30:12の比のテトラヒドロフラン及び水のような溶媒混合物を使用した60℃での還元的アミノ化を介して、ステアリルアミン脂溶性アンカーで誘導体化し得る。
参照されたい。加えて、RESによる減少した取り込みは、肝臓及び脾臓におけるリポソームの有意な蓄積を防止することにより、ステルスリポソームの毒性を低下させる。それ故、オプソニン化阻害部分で修飾されたリポソームは、該miR遺伝子産物又はmiR遺伝子発現阻害化合物(又はそれらをコードする配列を含んでなる核酸)を腫瘍細胞に送達するのに特に適している。
iR−21である遺伝子産物を含んでなる。
特定の態様において、本発明の医薬組成物は、ヌクレアーゼによる分解に耐性である該miR遺伝子産物又はmiR遺伝子発現抑制化合物(又は、それらをコードする配列を含んでなる少なくとも一つの核酸)を含んでなる。当業者は、例えば、2’位が修飾されている一つ又はそれ以上のリボヌクレオチドを該miR遺伝子産物内に取り込ませることにより、ヌクレアーゼ耐性である核酸を容易に合成し得る。適した2’修飾リボヌクレオチドには、フルオロ、アミノ、アルキル、アルコキシ及びO−アリルで2’位が修飾されているものが含まれる。
C、過酸化水素、オキサリプラチン、イリノテカン、トポテカン、ロイコボリン、カルムスチン、ストレプトゾシン、CPT−Il、タキソール、タモキシフェン、ダカルバジン、リツキシマブ、ダウノルビシン、1−β−D−アラビノフラノシルシトシン、イマチニブ、フルダラビン、ドセタキセル及びFOLFOX4が含まれる。
マイクロRNA発現パターンは結腸腫瘍において変化する
我々は、マイクロRNAマイクロアレイ30を使用して、結腸腫瘍性及び隣接する非腫瘍性組織の84対のマイクロRNAプロファイルを比較した。これら84対象は、発症結腸腺癌を有するグレーターボルチモア、メリーランド地区から採用された患者であり、メリーランド試験コホートと称される(表1)。
9%の正確度で区別し、発癌の間にマイクロRNA発現パターンの系統的変化を示唆している。
miR−21は、隣接する非腫瘍組織と比較し、ヒト腫瘍組織中の結腸上皮細胞の核及び細胞質の両方において高レベルで発現される。これらの結果は、qRT−PCR及びマイクロアレイデータと一致し、発癌におけるマイクロRNAの役割を支持している。
腺腫は、結腸腺癌の前躯体ステージを表す3。18対の腺腫及び隣接する非腺腫組織において、qRT−PCRによりmiR−20as miR21、miR−106a、miR−181b及びmiR−203発現レベルを試験した。5つのマイクロRNAの内の4つが腺腫組織において増加したレベルを示したが、miR−21のみが1.6倍より高く有意に富化された(p=0.006、ウィルコクソンマッチドペア検定)(表3b参照)。
個々のマイクロRNA腫瘍/非腫瘍(T/N)発現比を分析し、いずれが予後不良と関係があるかどうかを決定した。T/NマイクロRNA発現比は、最高三分位値に基づいて高いと分類した。高TIN比が癌生存率と関係していた(p<0.05)いずれのマイクロRNAも探索した。これらから、腫瘍中で異なって発現されていた(p<O.001)マイクロRNAを選択した。
印環細胞癌を有するすべての対象を初期分析から除外した。
香港検証コホートにおいて、腫瘍中の高miR−21発現は、年齢、性、腫瘍組織構造、又は腫瘍位置とは有意に関連していなかった(フィッシャーの正確確率検定)。すべての共変量は、Cox比例ハザード分析により試験した(表4b)。
致した。
アジュバント化学療法への応答に関連するバイオマーカーを同定することは、医師が療法の利点をより良く予測することを可能にする。この目的のため、ステージII及びIII癌患者におけるmiR−21発現とアジュバント化学療法への応答の関連性を分析した。アジュバント化学療法の投与についての情報は、メリーランド試験コホートにおける65人のステージIl又はIII対象の内の47人及び香港検証コホートにおける全対象について利用可能であった。
2つの独立したコホートを使用し、結腸癌組織中のマイクロRNAプロファイルを分析した。マイクロRNAマイクロアレイ分析によると、37のマイクロRNAが腫瘍組織中では異なって発現された。5つすべての試験されたマイクロRNAの発現パターンを香港
コホートにおいて検証した。腫瘍及び非腫瘍組織間を区別する5マイクロRNAの識別力は、発癌の間にマイクロRNA発現パターンの予測可能な及び系統的変化が起こり、散発性結腸腺癌の大多数を代表するようであることを示している。
39又は他のアンチセンス療法剤は、高miR−21発現腫瘍を有する対象において療法的利点を有し得る。これらは生存における転帰を改善する現行療法に加えて使用することができる。
ンの系統的差違を発見した。腫瘍中の高miR−21発現は、病期及び他の臨床的共変量とは独立して、悪い生存における転帰及びアジュバント化学療法に対する応答不良を予測し、結腸腺癌及び療法への応答を含む生存予後のための有用な診断バイオマーカーであることができることを示唆している。
組織採取及びRNA単離:
原発性結腸腫瘍及び隣接する非腫瘍組織の対は、1993年から2002年の間に、University of Maryland Medical Center で採用された84人の患者、及び1991年から2000年の間に、香港のQueen Mary Hospital で採用された113人の患者である。年齢、性、臨床病期、腫瘍位置、診断からの生存時間及びアジュバント化学療法の受け取りを含む各組織ドナーについての詳細な背景を集めた。腫瘍組織構造は、World Health Organization Classification of Tumor System1に従って分類した。腺腫組織はCooperative Human Tissue Network から得た。この研究は、Institutional Review Board of the National Institutes of health、Institutional Review Board of the University of Hong Kong/Hospital Authority Hong Kong West Cluster 及びInstitutional Review Board
for Human Subject Research at the University of Maryland により承認された。
RNAは標準TRIZOL(Invitrogen,Carlsbad)法を使用し、組織から抽出した。マイクロRNAマイクロアレイプロファイリングは、以前に記載されているように実行した30。簡単には、5lagの全RNAを標識し、およそ400ヒトマイクロRNAプローブの四つ組を含有する各各マイクロRNAマイクロアレイにハイブリダイズさせた。スライドはPerkinElmer ScanArray LX5Kスキャナーを使用してスキャンした。マイクロRNAのqRT−PCRは、Taqman MicroRNAアッセイ(Applied Biosystems,Foster City)
を使用し、製造元の説明書に従い、7500リアルタイムRT−PCRシステム(Applied Biosystems,Foster City)で実施した。全qRT−PCR実験において、U6Bが規格化対照であった。全アッセイは、二重(miR−20a、miR−203)又は三重(miR−21、miR−106a、miR−181b)に行った。miR−21、miR−106a及びmiR−181bについてのqRT−PCRは、その時点で生存における転帰及び検証コホートのメンバーについての臨床データを教えられていないAJSにより実施した。
この出願で議論されたデータはNCBIs Gene Expression Omnibus (GEO,http://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/) にすでに寄託されており、GEO Series accession number GSE7828
を介して利用できる。LOESS規格化マイクロアレイデータは、BRBアレイツール3.5.0(http://linus.nci.nih.gov/.BRB-ArrayTools.html) 内に移入されており、すべての
続いてのマイクロアレイ分析はこのソフトウェアで実施した。
オフはこの研究を通して普遍的に使用された。腫瘍及び非腫瘍マイクロRNA発現レベルは、生存率との関連についての全ての分析のため、マイクロアレイ実験の日付に基づいてバッチ規格化された。
インサイチュハイブリダイゼーション(ISH)は、ヒトmiR−21、スクランブル及びU6(Exiqon、Wobum)に対するプローブを用い、ヒト結腸組織に対してW. Kloosterman(http://www.exiqon.eom/uploads/.LNA 52- FFPE miRNA in situi.rotocol.pdf) により記述されたホルマリン−固定パラフィン−包埋(FFPE)組織のための製造元によるプロトコールに修正を加えて実施した。修正には、ポリクローナルウサギ抗DIG/HRP結合抗体及びDakoCytomation GenPoint Tyramid Signal Amplication System (DakoCytomation、Carpinteria)、及び VECTORRNovaRed(商標)基質(Vector Laboratories、Burlingame)の使用が含まれる。イメージはOlympus DP70デジタルカメラ及びDP制御ソフトウェア(Olympus、Champaign)を使用するOlympus BX40 顕微鏡で撮影した。
統計分析を実施した。ウィルコクソンマッチドペア試験を使用し、すべての全qRT−PCRデータについての、腫瘍及び対となる非腫瘍組織間のマイクロRNA発現の相違、ならびに腺腫及び対となる非腺腫組織間の相違を分析した。報告されているすべての傾向分析は、順序群にわたる傾向に対するノンパラメトリック検定である。すべてのカプラン・マイヤー分析は、WINSTAT 2001(R. Fitch Software) を使用して実施した。多変量Cox回帰分析はIntercooled Stata 9.2(StataCorp LP、College Station) を使用して実施
した。最終多変量モデルは、一変量モデルにおいて悪い生存率と関連する(p<0.10)ことが観察された臨床共変量の段階的追加及び除去に基づいていた。p<0.05のワルド統計を、最終多変量モデルにおける包含の基準として使用した。すべてのp値は両側である。ハザード比は括弧内の95%信頼区間で報告されている。発現グラフは、Graphpad Prism 4.0 (Graphpad Software Inc.、San Diego)を使用して作製した。
この分析に使用されたマイクロアレイは、ピン−スポッテッド(pin-spotted)マイク
ロRNAマイクロアレイ(Ohio State University Comprehensive Cancer Center、version 2.0 から)であった。各スポットの強度はフォアグラウンドの中央値強度であった。
この研究に使用された170マイクロアレイの各々は、11520スポットを含んでいた。フォアグラウンド強度がバックグラウンドより低い場合、すべてのスポットはNAと再び割り当てられた(NAは失われたデータスポットの印となる)。スキャナーにより欠損していると警告されたすべてのスポットもNAと再び割り当てられた。高いフォアグラウンド強度を有するすべてのブランク(オリゴなし)スポットはNAと再び割り当てられた。各マイクロRNAオリゴは、2つの隣接するスポットの2つの離れた対として、これらアレイ上の四元のスポットにより表される。もしオリゴ四元について0又は1NAがあり、及び離れたオリゴ対の平均値がlog2スケールで>1異なっていれば、該四元のスポットのすべてがNAと再び割り当てられた。もし、四元について3NAスポットがあれば、最終スポットはNAと再び割り当てられた。総計で、1,958,400スポットの1,082,689がこれらの方法を使用してNAと再び割り当てられた。LOESS(Locally Weighted Scatterplot Smoothing)規格化は、Rソフトウェアパッケージを使用して実施した。すべてのデータを分析のためにBRBアレイツールバージョン3.5.0に移入し、すべての反復スポットを平均した。使用したアレイには本来85対(腫瘍及び対となる非腫瘍組織)があった。本来偶発結腸癌患者と同定された1つのケースが、後に原位置癌腫と診断されていたことが判明したため、分析から除かれ、84対象の研究集団が残った。マイクロRNAリストをフィルターにかけ、389ヒトhsa−miRプローブセットのみが含まれるようにした。これらをさらにフィルターにかけ、アレイの25%よ
り多くが失われているプローブセットを除去し、230ヒトマイクロRNAプローブセットを残した。ペアードクラス比較分析を使用し、腫瘍及び対となる非腫瘍組織間で異なって発現されているマイクロRNAを同定した。2つのマイクロRNA(miR−181b及びmiR−338)に対しては、2つの独立したプローブで測定すると各々反対の結果を与え、各々のマイクロRNAについて1つのプローブは腫瘍中でより高い発現を示し、1つのプローブは腫瘍中でより低い発現を示した。各々に対して、より有意ではない結果を廃棄し、miR−181b及びmiR−388両方が腫瘍において富化されたとした。加えて、qRT−PCRで、miR−181bが腫瘍において富化されていることを確認した。
Cox比例ハザード回帰を使用し、患者生存率に対するmir−21発現レベル及び他の臨床変数の影響を分析した。臨床変数に含まれるのは、年齢、性、人種、腫瘍部位、腫瘍組織学、アジュバント療法の受け取り及びTNM病期である。これらのモデルに対し、結腸癌について推奨されるスクリーニング年齢が50歳であるので、年齢>50対年齢<50の2分化年齢を選択し;腫瘍部位は、もし腫瘍が脾湾曲部内又は近位に位置していれば近位と、もし腫瘍が下行結腸内又は遠位に位置していれば遠位と定義し;TNM病期は転移性対非転移性疾患に基づいて2分化し、ステージI−II対III−IVを結果として生じた。メリ−ランドコホートの1人の患者は手術当日に死亡し、0ヶ月の生存期間を生じた。この場合はカプラン・マイヤー分析には含まれたが、図2の腫瘍中のmiR−21発現間のケースに相違を生じるCox回帰分析(n=72)及び表4のCox回帰分析のケースの数(n=71)については除かれた。一変量Cox回帰が各臨床共変量において実施され、各患者生存に対する影響を試験した。最終多変量モデルは、一変量モデルに
おいて悪い生存率と関連する(p<0.10)ことが観察された臨床共変量の段階的追加及び除去に基づいていた。p<0.05のワルド統計を、最終多変量モデルにおける包含の基準として使用した。最終多変量モデルのため、最も簡潔なCox回帰モデルを使用した。
miRNAは結腸腫瘍中で異なって発現される
miRNAマイクロアレイを使用し、85対の癌性及び隣接する非癌性結腸組織のmiRNAプロファイルを分析した。腫瘍のmiRNA発現プロファイルは正常組織とは全く異なっていたことが発見され、miRNAが結腸発癌に重要な役割を果たすことができることを示唆している。ペアードクラス比較分析は、これらの腫瘍中で異なって発現された27の独立したmiRNAを同定した(表7)。
miRNA発現プロファイルが患者生存を予測するかどうかを決定した。この分析のため、各個体の各miRNAについて、腫瘍対正常miRNA発現比(TIN比)を計算した。すべてのmiRNA TIN比の非介在的(Unsupervised)階層的クラスタリングは、任意に名付けたグループA及びグループBの2つのグループに個体をグループ化した(
図7)。
このことは、グローバルmiRNAプロファイルは臨床病期を、及びより重要なことには、生存予後を予測することを示している。
一変量(上)及び多変量(下)Cox回帰分析が行われ、miRNAグループBに分類された個体が結腸癌で死亡するより高リスクあることが示された。年齢、性又は人種のどれも生存リスクには寄与していなかった。これらの分析の目的のため、年齢は50以上及び未満に2分化し、人種をアフリカ系アメリカ人(AA)及び白人に2分化した。
その発現レベルが結腸癌予後の生存を予測する個々のmiRNAを同定した。悪い生存予後と関連しているmiRNA発現パターンを同定するため、TIN比にカプラン・マイヤー生存プロット及び多変量Cox回帰分析を使用した。悪い生存率に相関するTIN比を同定するためBRBアレイツールを使用した(データは示されていない)。我々はこれらのmiRNAをさらに詳細に分析することを選んだ。腫瘍中で異なって発現された(p<0.01)いずれのmiRNAも分析した。各個体についてのTIN比を、中央値及び最高四分位値TIN比に基づいて2分化した。TIN比が18個体より多くで失われている場合、分析からいずれのmiRNAも除いた。そのTIN比が結腸癌予後を示す、miR−21、miR−106a、miR−181b、miR−16h、miR−203、let−7g、miR−29a、miR−103−2及びmiR−10aを含む少なくとも
9のmiRNAを同定した(図8、表9)。
個々のmiRNAが結腸癌で死亡するより高リスクの個体を分類するために使用できることを示すため、一変量及び多変量Cox回帰分析を実施した。これら9miRNAについてのTIN比は、TNM病期、年齢、性及び人種とは独立して、生存予後の重要な予測項目であった。miR−16b、miR−21、miR−29a、miR−103−2、miR−106a及びmiR−203についての高/低識別は、中央値TIN比に基づいて分類され、一方、let−7g、miR−10a及びmiR−181bは最高四分位値TIN比に基づいて分類されたことに注意されたい。
より進行したTNM病期を有する個体は、より高いTIN比を有する傾向があった(p=0.034)。TIN比は、データを有する80の個体の各々についての中央値に基づいて2分化した。高miR−21 TIN発現比を有する個体は、カプラン・マイヤー分析(p=0.004)に基づくとより悪い生存予後を有しており、高レベルのmiR−21を発現している腫瘍は予後不良を示すことを示唆している。これらの結果は、Cox回帰分析でさらに分析した。
我々は、腫瘍中で上昇されたmiR−106a(表7)、及びmiR−106a TIN比が生存予後と相関することを見出した(表9、図8b)。
より進行したTNM病期を有すると診断された個体は、より高いTIN比を有する傾向があった;let−7a(p=0.010)、miR−l0a(p=0.008)、miR−16h(p=0.048)、miR−29a(p=0.005)、miR−103−2(p=0.033)、miR−181h(p=0.016)及びmiR−203(p=0.016)(図8)。
結腸癌予後を予測し得るmiRNAシグニチャーを開発するため、以前に記述した9つすべてについてのTIN比を使用した。これらの値の9の内の2より多くを失った個体はこの分析から除外した。9miRNAのTIN比の階層的クラスタリングは、残りの78患者のグループ分けで2つのグループを生じた(図9a)。
個々のmiRNAは結腸腫瘍中で異なって発現され12.13、これらのmiRNAの変化した発現は、結腸発癌の原因となる細胞性変化の一部であることができることを示唆している。これらの発見に加え、我々は本明細書において、miRNA発現プロファイルが結腸癌病期及び予後に関連していることを示した。それ故、miRNA(個々に分析された、又はmiRNAシグニチャーの一部としての)は、医師が患者の生存リスクをより正確に予測することを可能にするであろうバイオマーカーとして使用し得る。
ァイリング及びmiRNAに基づいた療法を使用し、これら9つのmiRNAが変化されたことに基づいた、個人的薬剤治療戦略を設計することが可能である。加えて、これらの戦略は、遺伝的に受け継がれたリスク又は以前に癌履歴を有するために高リスクである人々において結腸癌を予防することにおいても有用であることができる。
結腸癌関連疾患を診断、病期分類、予後診断、モニタリング及び治療するための方法、試薬及びキット
一つの態様において、患者が結腸癌関連疾患を有するか、又は結腸癌関連疾患を発症する正常よりも高いリスクを有するかどうかを評価する診断法が提供され、患者サンプル中のマーカーの発現レベルと、対照(例えば、結腸癌関連疾患を有していない患者からのサンプル)における該マーカーの正常レベルを比較する工程を含んでなる。正常レベルと比較し、該患者サンプル中の該マーカーの有意により高いレベルの発現は、該患者が結腸癌関連疾患に罹患しているか、又は結腸癌関連疾患を発症する正常よりも高いリスクを有することの指標である。
あることの指標である。
有する該一定分量においてマーカーの発現レベルを有意に低くする組成物の少なくとも一つを該患者に投与すること;の工程を含んでなる。
ヌクレオチドを発現するベクターの送達を介して提供することができる。別の態様において、該方法は、マーカータンパク質又は該タンパク質の断片に特異的に結合する、抗体、抗体誘導体又は抗体断片を該患者に提供することを含んでなる。
eds., 1984); Transcription And Translation(Hames & Higgins eds., 1984); Culture
Of Animal Cells (R. I. Freshney, Alan R. Liss, Inc., 1987); Immobilized Cells And Enzymes (IRL Press, 1986); Perbal, A Practical Guide To Molecular Cloning (1984); 論文, Methods In Enzymology (Academic Press, Inc., N. Y.); Gene Transfer Vectors For Mammalian Cells (Miller and Calos eds., 1987, Cold Spring Harbor Laboratory); Methods In Enzymology, VoIs. 154 and 155 (Wu et al. eds.), Immunochemical Methods In Cell And Molecular Biology (Mayer and Walker, eds., Academic Press, London, 1987); Handbook Of Experimental Immunology, Volumes I-IV (Weir and Bla
ckwell, eds., 1986); The Laboratory Rat, editor in chief: Mark A. Suckow; authors: Sharp and LaRegina. CRC Press, Boston, 1988 (本明細書において援用される)及
び化学的方法を参照されたい。
本明細書で使用される以下の用語の各々は、この節に関連する意味を有する。
本明細書で使用される冠詞「a」及び「an」は、冠詞の文法的目的語の一つ又は一つより多く(即ち、少なくとも一つ)を指す。例として、「an element」は一つの要素又は一つより多くの要素を意味する。
マーカーの「過剰発現」又は「有意により高いレベルの発現」とは、発現を評価するために用いられたアッセイの標準誤差よりも大きく、ある態様では、対照サンプル(例えば、マーカー関連疾患を有していない健康な対象からのサンプル)中のマーカーの発現レベルの少なくとも2倍、他の態様では、3、4、5又は10倍、及びある態様においては、いくつかの対照サンプル中のマーカーの平均発現レベルである、試験サンプル中の発現レベルを指す。
)患者の結腸癌関連疾患の性質を評価すること;5)患者の結腸癌関連疾患の発症の可能性を評価すること;6)患者の結腸癌関連疾患に関連する細胞の組織型を評価すること;7)結腸癌関連疾患を治療する及び/又は患者が結腸癌関連疾患に罹患しているかどうかを評価するために有用である抗体、抗体断片又は抗体誘導体を作製すること;8)結腸癌関連疾患細胞の存在を評価すること;9)患者の結腸癌関連疾患を抑制するための一つ又はそれより多くの試験化合物の効力を評価すること;10)患者の結腸癌関連疾患を抑制するための療法の効力を評価すること;11)患者の結腸癌関連疾患の進行をモニタリングすること;12)患者の結腸癌関連疾患を抑制するための組成物又は療法を選択すること;13)結腸癌関連疾患に罹患している患者を治療すること;14)患者の結腸癌関連疾患を抑制すること;15)試験化合物が有害な可能性を評価すること;及び16)結腸癌関連疾患を発症するリスクを有する患者において、結腸癌関連疾患の発症を予防すること。
本明細書に記載された方法により作り出された動物モデルは、結腸癌関連疾患を治療する又は予防するために有用な療法剤のスクリーニングを可能にするであろう。従って、本方法は結腸癌関連疾患を治療する又は予防するための療法剤を同定するために有用である。本方法は、本明細書に記載された方法により作製された動物モデルに候補剤を投与すること、候補剤が投与されていない対照動物モデルと比較し、動物モデルにおける少なくとも一つの結腸癌関連疾患応答を評価すること含んでなる。もし、少なくとも一つの結腸癌関連疾患応答の症状が軽減され又は発症が遅延されたならば、その候補剤は結腸癌関連疾患を治療する又は予防するための剤である。
該候補剤は、一つ又はそれより多くの結腸癌関連疾患応答経路を上方又は下方調節する剤であることができる。ある態様において、該候補剤は、こうした経路に影響するアンタゴニストであることができる。
本明細書において結腸癌関連疾患応答を治療する、抑制する、救済する又は逆行させるための方法が提供される。本明細書に記載された方法において、シグナル伝達カスケードを妨害する剤が、限定されるわけではないが、こうした合併症はまだ明白ではない、及びすでに少なくとも一つの結腸癌関連疾患応答を有する個体のような、それを必要とする個体に投与される。
マーカーの発現は、多くの方法で抑制することが可能であり、非制限例として、マーカー(単数又は複数)の転写、翻訳又は両方を抑制するため、結腸癌関連疾患細胞にアンチセンスオリゴヌクレオチドを提供できることが含まれる。もしくは、マーカータンパク質に特異的に結合し、適切なプロモーター/調節因子領域と機能可能なように連結する抗体、抗体誘導体又は抗体断片をコードするポリヌクレオチドを、該タンパク質の機能又は活性を抑制するであろう細胞内抗体を発生させるために提供し得る。マーカーの発現及び/又は機能は、マーカータンパク質に特異的に結合する抗体、抗体誘導体又は抗体断片で結腸癌関連疾患細胞を治療することによっても抑制することができる。本明細書に記載された方法を使用し、多様な分子(特に、細胞膜を通過可能な十分に小さい分子を含んで)を、マーカーの発現を抑制する又はマーカータンパク質の機能を抑制する分子を同定するためにスクリーニングすることが可能である。そうのようにして同定された化合物を、患者の結腸癌関連疾患細胞を抑制するために該患者に提供し得る。
抗体を対象内へ導入することが含まれる。例えば、放射性マーカーで標識された抗体は、対象中でのその存在及び位置を標準イメージング技術により検出し得る。
分泌された、細胞表面、タンパク質の細胞質又は核タンパク質の検出のための免疫学的方法、タンパク質精製法、タンパク質機能又は活性アッセイ、核酸ハイブリダイゼーション法、核酸逆転写法及び核酸増幅法が含まれる。
性、欠失など)を検出するいずれかの多くの方法を患者におけるマーカーの出現を検出するために使用することができる。
関連疾患の性質の一つ又はそれより多くを特徴付けるために使用される場合、マーカー又はマーカーのパネルは、少なくとも約20%で、及びある態様においては、少なくとも約40%、60%又は80%で、及び対応するステージ、グレード、組織学的型、又は性質で結腸癌関連疾患に罹患している実質的にすべての患者で陽性結果が得られるように選択される。該マーカー又はマーカーのパネルは、一般集団については約10%より大きな陽性予測値が得られるように選択される(非制限例において、80%より大きなアッセイ特異性と相まって)。
該キットは、サンプル(例えば、患者サンプルのような)中の結腸癌関連疾患細胞の存在を評価するために有用である。該キットは、複数の試薬を含んでなり、その各々は、マーカー核酸又はタンパク質と特異的に結合することが可能である。マーカータンパク質との結合に適した試薬には、抗体、抗体誘導体、抗体断片などが含まれる。マーカー核酸(
例えば、ゲノムDNA、mRNA、スプライスされたmRNA、cDNAなど)との結合に適した試薬には、相補的核酸が含まれる。例えば、該核酸試薬は、基質に固定化されたオリゴヌクレオチド(標識又は非標識)、基質と結合されていない標識オリゴヌクレオチド、PCRプライマーの対、分子指標プローブなどを含むことができる。
患者が結腸癌関連疾患に罹患しているかどうかを評価するために有用な抗体を産生する、単離されたハイブリドーマを作製する方法も提供される。この方法において、マーカータンパク質の全体又はセグメントを含んでなるタンパク質又はペプチドが合成され又は単離された(例えば、それが発現される細胞からの精製により、又はインビボ又はインビトロで、該タンパク質をコードする核酸の転写翻訳により)。脊椎動物、例えば、マウス、ラット、ウサギ又はヒツジのような哺乳類を、タンパク質又はペプチドを使用して免疫化した。該脊椎動物がタンパク質又はペプチドに対して強い免疫応答を示すように、少なくとも追加の一回、場合により(及び好ましくは)免疫化してもよい。免疫化された脊椎動物の脾臓細胞を単離し、多様な方法のいずれかを使用して、不死化細胞株と融合させてハイブリドーマを形成させた。このようにして形成されたハイブリドーマは、標準法を使用してスクリーニングし、該マーカータンパク質又はそれらの断片と特異的に結合する抗体を産生する、一つ又はそれより多くのハイブリドーマを同定した。この方法により作製されたハイブリドーマ、及びこうしたハイブリドーマを使用して作製された抗体も本明細書で提供される。
結腸癌関連疾患細胞を抑制するための試験化合物の効力を評価する方法も本明細書において提供される。上記のように、該マーカーの発現のレベルの相違は、結腸系細胞の異常状態と相関する。ある種のマーカーの、発現のレベルの変化は結腸系細胞の異常状態により生じたようであるが、他のマーカーの、発現のレベルにおける変化が、これらの細胞の異常状態を誘導し、維持し及び促進することも同様に認められている。それ故、患者の結腸癌関連疾患を抑制する化合物は、一つ又はそれより多くの該マーカーの発現のレベルを、そのマーカー発現の正常レベルにより近いレベル(即ち、正常結腸系細胞におけるマーカの発現レベル)への変化を起こすであろう。
単離されたタンパク質及び抗体
一つの側面は、単離されたマーカータンパク質及びそれらの生物学的に活性な部分、ならびに、マーカータンパク質又はそれらの断片に対して方向付けられた抗体を上昇させるための免疫原として使用するのに適したポリペプチド断片に関する。一つの態様において、天然のマーカータンパク質は、標準タンパク質精製技術を使用する、適切な精製スキームにより、細胞又は組織源から単離し得る。別の態様において、マーカータンパク質の全体又はセグメントを含んでなるタンパク質又はペプチドが、組換えDNA技術により産生される。組換え発現の代わりに、こうしたタンパク質又はペプチドは、標準ペプチド合成技術を使用して化学的に合成し得る。
含み、及び対応する完全長タンパク質の少なくとも一つの活性を示す。典型的には、生物学的に活性な部分は対応する完全長タンパク質の少なくとも一つの活性を有するドメイン又はモチーフを含んでなる。マーカータンパク質の生物学的に活性な部分は、例えば、10、25、50、100又はそれ以上のアミノ酸長であるポリペプチドであり得る。さらに、マーカータンパク質の他の領域が欠損する他の生物学的に活性な部分は、組換え技術により調製することが可能であり、マーカータンパク質の天然形態の機能活性の一つ又はそれより多くを評価する。ある態様において、有用なタンパク質は、これらの配列の一つと実質的に同一であり(例えば、少なくとも約40%、及びある態様において、50%、60%、70%、80%、90%、95%又は99%)、天然のアレル変異又は変異発生によりアミノ酸配列は異なっているが、対応する天然に存在するマーカータンパク質の機能的活性を保持している。
予測医薬の分野における動物モデル及びマーカーの使用も本明細書において提供され、診断アッセイ、予後アッセイ、薬理ゲノミクス及び臨床治験のモニタリングが予後(予測)目的のために使用され、それにより個体を予防的に治療する。従って、個体が結腸癌関連疾患を発症するリスクを有するかどうかを決定するため、一つ又はそれより多くのマーカータンパク質又は核酸の発現のレベルを決定するための診断アッセイも本明細書において提供される。こうしたアッセイは、予後の又は予測目的のために使用され、それにより結腸癌関連疾患の発症に先立って個体を予防的に治療する。
該マーカーは、薬理ゲノミクスマーカーとしても有用である。本明細書で使用される「薬理ゲノミクスマーカー」は、その発現レベルが、患者の特異的臨床薬剤応答又は感受性と相関する客観的な生化学的マーカーである。薬理ゲノミクスマーカー発現の存在又は量は、患者の予測応答、及びより特定的には、特異的薬剤又は薬剤のクラスによる療法に対する患者腫瘍の予測応答に関連する。患者における一つ又はそれより多くの薬理ゲノミクスマーカーの発現の存在又は量を評価することにより、患者に最も適切である、又はより大きな成功度を有すると予測される薬剤療法を選択することができる。
マーカーの発現のレベルに対する剤(例えば、薬剤化合物)の影響をモニタリングは、基礎的薬剤スクリーニングのみでなく、臨床治験においても適応し得る。例えば、マーカー発現に影響する剤の有効性は、結腸癌関連疾患の治療を受けている対象の臨床治験でモニターし得る。
チド模倣剤、タンパク質、ペプチド、核酸、小分子、又は他の薬剤候補)による対象の治療の有効性をモニタリングするための方法を提供し、(i)剤の投与に先だって、対象から投与前サンプルを得ること;(ii)投与前サンプル中の、一つ又はそれより多くの選択されたマーカーの発現のレベルを検出すること;(iii)対象から一つ又はそれより多くの投与後サンプルを得ること;(iv)投与後サンプル中のマーカー(単数又は複数)の発現のレベルを検出すること;(v)投与前サンプル中の、マーカー(単数又は複数)の発現のレベルと投与後サンプル中の、マーカー(単数又は複数)の発現のレベルを比較すること;及び(vi)それに合わせて、対象への剤の投与を変化させること;の工程を含んでなる。
本明細書で使用される「電子装置可読媒体」はデータ又は情報の読み出しおよび電子装置により直接的にアクセスし得る、いかなる適した記憶、保持又は維持媒体も指す。こうした媒体は以下のものに限定されるわけではないがフロッピー(登録商標) ディスク、
ハードディスク記憶媒体、及び磁気テープのような、磁気記憶媒体、コンパクトディスクのような光学記憶媒体、RAM、ROM、EPROM、EEPROMなどのような電子記憶媒体、及び一般的なハードディスク及び磁気/光学記憶媒体などのこれらのカテゴリーの混成物を含み得る。媒体は本明細書に記載された通り、それにマーカーが記録されるよう適合又は設定した。
該マーカーは、一つ又はそれより多くの障害又は疾患状態のための、又は結腸癌関連疾患状態を導く条件のための代理マーカーとして働くことができる。本明細書で使用される「代理マーカー」は、疾患又は障害の不存在又は存在に、又は疾患又は障害の進行に相関する、客観的生化学的マーカーである。それ故、これらのマーカーは、治療の特定の経過が、疾患状態又は障害の軽減することに有効であるかどうかを示すために働くことができる。代理マーカーは、疾患状態又は障害の存在又は程度が標準方法論ではアクセスすることが困難である場合、又は危険な臨床的エンドポイントに到達する可能性がある前に疾患進行の評価が望まれる場合に特別に使用される。
結腸癌関連疾患の試験法は、例えば、対象由来の生体サンプル中の、各マーカー遺伝子の発現レベルを時間とともに測定すること、および対照生体サンプル中のマーカー遺伝子とレベルを比較することを含んでなる。
で現れる場合(例えば、対照の場合より高い又はより低い)、対象は結腸癌関連疾患の影響を受けたと判断される。マーカー遺伝子の発現レベルが許容範囲内に落ちる場合は、対象結腸癌関連疾患の影響を受けない傾向がある。
0%、及び95%又はそれ以上のものも意味する。ヌクレオチド配列間の相同性の程度はBLASTなどのアルゴリズムによって決定し得る。
別の側面において、結腸癌関連疾患のための動物モデルが本明細書において提供され、一つ又はそれより多くのマーカー遺伝子又はマーカー遺伝子の機能的に均等な遺伝子の発現レベルは該動物モデルにおいて上昇されている。本明細書で使用される「機能的に均等な遺伝子」とは、一般的に、マーカー遺伝子によりコードされたタンパク質の既知の活性と同様の活性を有するタンパク質をコードする遺伝子である。機能的に均等な遺伝子の代表的例には、該動物に固有である対象動物のマーカー遺伝子のカウンターパートが含まれる。
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12. Volinia, S., GA. Calin, CG. Liu, S. Arabs, A. Cimmino, F. Petrocca, R. Visone, M. Torio, C. Roldo, M. Ferracin, R.L. Prueitt, N. Yanaihara, G. Lanza, A. Scarpa, A. Vecchione, M. Negrini, CC. Harris, and CM. Croce, A microRNA expression signature of human solid tumors defines cancer gene targets. Proc Natl Acad Sci U S A, 2006. 103(7): p.2257-61.
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O. Barad, Z. Bentwich, A.E. Szafranska, E. Labourier, CK. Raymond, B.S. Roberts, H. Juhl, K.W. Kinzler, B. Vogelstein, and V.E. Velculescu, The colorectal microRNAome. Proc Natl Acad Sci U S A5 2006. 103(10): p. 3687-92.
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Claims (12)
- 結腸腺癌の患者における化学療法の有効性の決定を補助する方法であって、以下:
結腸腺癌の患者からの試験サンプル中のmiR−21遺伝子産物のレベルを測定すること、
対照サンプル中の対応するmiR−21遺伝子産物のレベルと比較した、該試験サンプル中の少なくとも当該miR−21遺伝子産物のレベルの増加が存在する場合、結腸腺癌の患者における化学療法の不十分な有効性を決定するための指標を提供すること、
ことを含む、前記方法。 - 結腸腺癌の患者におけるアジュバント化学療法に対する応答不良について試験する方法であって、以下:
(1)結腸腺癌を有する患者からの試験サンプル中の少なくとも一つのマーカーの発現レベルを決定すること;該少なくとも一つのマーカーはmiR−21遺伝子産物を含んでいる;
(2)工程(1)で決定した発現レベルを、結腸腺癌を有しない対象からのサンプル中のマーカーの対照発現レベルと比較すること;および
(3)工程(2)の比較の結果が、試験サンプル中の少なくともmiR−21の発現レベルが、対照中のものよりも高いことを示す場合、当該患者はアジュバント化学療法に対する応答不良を有するとの判断についての指標を提供する;
ことを含む、前記方法。 - サンプルが、一つ又はそれより多くの組織;腫瘍組織;血液;血漿;血清;尿;および、糞便;を含んで成る、請求項2に記載の方法。
- 方法のすべての工程がインビトロで実施される、請求項2に記載の方法。
- 対象が、結腸腺癌の患者におけるアジュバント化学療法に対する応答不良を有するかどうかの検出を補助する方法であって、以下:
(1)腺癌の患者から得られた試験サンプルからのRNAを逆転写して、標的オリゴデオキシヌクレオチドの組を提供すること;
(2)該標的オリゴデオキシヌクレオチドを、miR−21特異的プローブオリゴヌクレオチドを含んで成るマイクロアレイにハイブリダイズさせて該試験サンプルについてのハイブリダイゼーションプロファイルを提供すること;および
(3)該試験サンプルハイブリダイゼーションプロファイルと対照サンプルから発生させたハイブリダイゼーションプロファイルを比較すること;
を含んでなり、ここでmiR−21のシグナルの増加は、結腸腺癌の患者においてアジュバント化学療法に対する応答不良を有する対象の指標である、前記方法。 - miR−21遺伝子産物の発現のレベルが、転写されたポリヌクレオチドまたはその一部の存在を検出することにより評価される、ここで当該転写されたポリヌクレオチドはmiR−21遺伝子産物のコード領域を含んでなる、請求項1に記載の方法。
- サンプルが、結腸癌関連体液または組織である、請求項1に記載の方法。
- サンプルが、患者から得られた細胞を含んでなる、請求項1に記載の方法。
- 化学療法が、以下:5−フルオロウラシル;ウラシルを伴うテガフール;フルオロウラシル薬;フルオロウラシル薬−レバミゾール投与計画;及び、フルオロウラシル薬−ロイコボリン投与計画;から選択される、請求項1、2及び5のいずれか1項に記載の方法。
- 試験サンプル中の少なくとも一つの追加のmiR遺伝子産物のレベルを測定することをさらに含んでなる、ここで当該miRは以下:miR−181b;let−7g;miR−16b;miR−106a;miR−103−2;miR−203;miR−29a;およびmiR−10a;からなる群より選択される、請求項1、2及び5のいずれか1項に記載の方法。
- 試験サンプル中の少なくとも二つまたはそれより多くの追加のmiR遺伝子産物のレベルを測定することをさらに含んでなる、ここで当該miRは以下:miR−181b;let−7g;miR−16b;miR−106a;miR−103−2;miR−203;miR−29a;およびmiR−10a;からなる群より選択される、請求項1、2及び5のいずれか1項に記載の方法。
- 試験サンプル中の少なくとも三つまたはそれより多くの追加のmiR遺伝子産物のレベルを測定することをさらに含んでなる、ここで当該miRは以下:miR−181b;let−7g;miR−16b;miR−106a;miR−103−2;miR−203;miR−29a;およびmiR−10a;からなる群より選択される、請求項1、2及び5のいずれか1項に記載の方法。
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