JP5669083B2 - Method for promoting sugar translocation - Google Patents

Method for promoting sugar translocation Download PDF

Info

Publication number
JP5669083B2
JP5669083B2 JP2010110837A JP2010110837A JP5669083B2 JP 5669083 B2 JP5669083 B2 JP 5669083B2 JP 2010110837 A JP2010110837 A JP 2010110837A JP 2010110837 A JP2010110837 A JP 2010110837A JP 5669083 B2 JP5669083 B2 JP 5669083B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
rsx1
plant
gene
cell
translocation
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
JP2010110837A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP2011234695A (en
Inventor
生郎 西田
生郎 西田
亮一 矢野
亮一 矢野
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Saitama University NUC
Original Assignee
Saitama University NUC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Saitama University NUC filed Critical Saitama University NUC
Priority to JP2010110837A priority Critical patent/JP5669083B2/en
Publication of JP2011234695A publication Critical patent/JP2011234695A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP5669083B2 publication Critical patent/JP5669083B2/en
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

本発明は、植物の糖転流効率の制御に関する。より具体的には、植物の糖転流経路を拡大、あるいは、新規構築することにより糖転流量を増大させ、種子や塊茎などの生産性を向上させる技術に関する。   The present invention relates to control of sugar translocation efficiency of plants. More specifically, the present invention relates to a technique for increasing productivity of seeds, tubers and the like by increasing the sugar translocation flow rate by expanding or newly constructing the sugar translocation pathway of plants.

植物は、光合成により、ソース葉で炭酸ガスをショ糖等の有機物に同化し、これらを篩管を介して種子や塊茎などのシンク器官に転流し、栄養物として貯蔵している。このように、光合成の産物である糖が種子などの非光合成組織へ運搬されることを糖転流と称しており、糖転流の効率を高めることにより、種子や塊茎などの生産性の向上が期待できる。また、高炭酸ガス濃度環境では、糖の蓄積により光合成関連遺伝子の発現が抑制され光合成活性が低下するが、転流活性を高めることにより、高炭酸ガス濃度環境でも生産性を維持できると期待される。
これまでに、植物による炭素固定活性を高め、生産性を向上させるための技術として、例えば、ショ糖リン酸合成酵素を強制発現させてショ糖合成能を強化させる方法(特許文献1及び特許文献2)、メチオニン、トリプトファンを利用してショ糖リン酸合成酵素活性を向上させ、糖転流を促進させる方法(特許文献3)などが報告されている。
Plants assimilate carbon dioxide into organic substances such as sucrose in the source leaves by photosynthesis, and these are translocated to sink organs such as seeds and tubers through a sieve tube and stored as nutrients. In this way, the sugar that is the product of photosynthesis is transported to non-photosynthetic tissues such as seeds, which is called sugar translocation. By increasing the efficiency of sugar translocation, the productivity of seeds and tubers is improved. Can be expected. In addition, in the high CO2 concentration environment, the expression of photosynthetic genes is suppressed due to the accumulation of sugar and the photosynthetic activity decreases, but it is expected that the productivity can be maintained even in the high CO2 concentration environment by increasing the translocation activity. The
So far, as a technique for enhancing carbon fixation activity by plants and improving productivity, for example, a method of forcibly expressing sucrose phosphate synthase to enhance sucrose synthesis ability (Patent Document 1 and Patent Document) 2) A method for improving sucrose phosphate synthase activity using methionine and tryptophan to promote sugar translocation (Patent Document 3) has been reported.

植物の糖転流の効率は、原形質連絡の形成と密接に関連していると考えられる。原形質連絡(Plasmodesmata)とは、隣接する細胞間の細胞壁に存在する管状構造のことで、植物生体内における転流の際に、様々な物質の移動通路となる、植物独特の構造である。原形質連絡は、個体発生学的に2つのカテゴリ(一次原形質連絡及び二次原形質連絡)に分類される。一次原形質連絡は、細胞***終期の細胞板形成の際に形成されるのに対し、二次原形質連絡は既に存在する細胞壁中で、細胞質***後に形成される。二次原形質連絡は、しばしば、構造的に多形性を示し、一次原形質連絡の修飾により形成されることが多い。また、二次原形質連絡は、植物キメラ、移植片の結合、原形質融合及び植物同士の寄生的な相互作用などの特別なシステムにより形成されることもある。双子葉植物の一次壁は、ヘミセルロース、ペクチン及びタンパク質を含むマトリックスポリマーで絡み合ったセルロースのミクロフィブリル骨格で構成されている。ペクチン構造は、メチル化レベルが低く、細胞壁のミドルラメラ中に存在しており、細胞接着において重要な役割を演じている。従って、二次原形質連絡の形成は、ペクチンやその他のグリカンの局所的な消化を必要とすると考えられている(例えば、非特許文献1を参照のこと)。   The efficiency of plant sugar translocation is thought to be closely related to the formation of protoplasmic communication. Plasmodesmata is a tubular structure existing in the cell wall between adjacent cells, and is a plant-specific structure that serves as a movement path for various substances during translocation in the plant body. Protoplasmic communication is classified ontogenetically into two categories (primary protoplasmic communication and secondary protoplasmic communication). Primary protoplasmic communication is formed during cell plate formation at the end of cell division, whereas secondary protoplasmic communication is formed in the existing cell wall after cytokinesis. Secondary protoplasm communication often exhibits structural polymorphism and is often formed by modification of the primary protoplasm communication. Secondary protoplasm communication may also be formed by special systems such as plant chimeras, graft binding, protoplast fusion, and plant-to-plant parasitic interactions. The primary walls of dicotyledonous plants are composed of cellulose microfibril skeletons intertwined with a matrix polymer containing hemicellulose, pectin and proteins. The pectin structure has a low level of methylation and is present in the middle lamellae of the cell wall and plays an important role in cell adhesion. Therefore, formation of secondary protoplasm communication is thought to require local digestion of pectin and other glycans (see, for example, Non-Patent Document 1).

発明者らは、シロイヌナズナのペクチン酸リアーゼであるRSX1(At5g04310; RESTRICTED SUCROSE TRANSPORT 1)が、維管束で発現し、篩管の伴細胞と篩要素間の細胞壁に形成される原形質連絡の形成に関わることを初めて見出している(International Conference on Plant Vascular Biology 2007, Taipei, May 7-May11; 非特許文献2)。また、RSX1の変異株では、糖転流が阻害されており、この阻害は、RSX1遺伝子を発現させることで回復することなどから、RSX1の遺伝子産物が原形質連絡の形成に関与し、糖転流の制御を行うにあたり重要な因子となることが示唆されている。   The inventors of the present invention found that RSX1 (At5g04310; RESTRICTED SUCROSE TRANSPORT 1), a pectate lyase from Arabidopsis thaliana, is expressed in the vascular bundle and forms a protoplasmic link formed on the cell wall between the companion cell and the sieve element of the phloem. It has been found for the first time (International Conference on Plant Vascular Biology 2007, Taipei, May 7-May11; Non-Patent Document 2). Moreover, in the mutant strain of RSX1, sugar translocation is inhibited, and this inhibition is recovered by expressing the RSX1 gene. Therefore, the RSX1 gene product is involved in the formation of protoplasmic communication, and glycosylation is promoted. It is suggested that it becomes an important factor in controlling the flow.

特開平9−248084JP-A-9-248084 特開2000−262283JP 2000-262283 A 特開2005−15438JP-A-2005-15438

Ding, B. and Lucas, W.J. (1996). Secondary plasmodesmata: biogenesis, special functions and evolution. In M. Smallwood, J.P. Knox, D.J. Bowles, eds, Membranes: Specialized Functions in Plants. BIOS Scientific Publishers, Oxford, pp. 489-503.Ding, B. and Lucas, WJ (1996) .Secondary plasmodesmata: biogenesis, special functions and evolution.In M. Smallwood, JP Knox, DJ Bowles, eds, Membranes: Specialized Functions in Plants.BIOS Scientific Publishers, Oxford, pp. 489-503. International Conference on Plant Vascular Biology 2007, Taipei, May 7-May11;Program and Abstract Book p.34International Conference on Plant Vascular Biology 2007, Taipei, May 7-May11; Program and Abstract Book p.34

これまでにも、植物の生長を制御し、種子及び塊茎などの生産性を向上させる試みが活発に行われてきた。しかしながら、植物の糖の転流に着目し、その制御を通じて植物の生産性を向上させる技術は、あまり知られていなかった。
そこで、本発明は、植物の糖転流経路を拡大又は新規構築することで糖転流を制御する方法の提供を目的とする。
さらに、本発明は、糖転流経路が拡大又は新規構築された植物の提供を目的とする。
Until now, attempts have been actively made to control the growth of plants and improve the productivity of seeds and tubers. However, little attention has been paid to techniques for improving plant productivity through the control of plant sugar translocation.
Then, this invention aims at provision of the method of controlling sugar translocation by expanding or newly constructing the sugar translocation pathway of a plant.
Furthermore, an object of the present invention is to provide a plant in which the sugar translocation pathway is expanded or newly constructed.

本発明者らは、自ら同定したRSX1(Restricted Sucrose Transport 1)遺伝子を植物全体において過剰発現をさせたところ、驚くべき事に、根への糖の転流が野生型の約2倍近くにまで上昇することを見出し、本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、以下の(1)〜(11)である。
(1)植物細胞中のRSX1遺伝子の発現を調節し、該植物の糖転流を制御する方法。
(2)前記RSX1遺伝子が外来性であることを特徴とする上記(1)に記載の方法。
(3)前記RSX1遺伝子の発現調節が、該遺伝子の発現を増大させることを特徴とする上記(1)又は(2)に記載の方法。
(4)前記糖転流の制御が、塊茎への糖転流の増大であることを特徴とする上記(1)乃至(3)のいずれかに記載の方法。
(5)前記植物細胞が、篩部組織以外の細胞であることを特徴とする上記(1)乃至(4)のいずれかに記載の方法。
(6)前記植物が、アブラナ科植物であることを特徴とする上記(1)乃至(5)のいずれかに記載の方法。
(7)上記(1)乃至(6)のいずれかに記載の方法により糖転流が制御された植物。
(8)外来性のRSX1遺伝子を発現可能に保持する形質転換植物細胞。
(9)内在性のRSX1遺伝子に変異を含まない上記(8)に記載の植物細胞。
(10)上記(8)又は(9)に記載の植物細胞を含む植物。
(11)植物細胞中でのRSX1遺伝子発現用ベクターを含む植物の糖転流促進用キット。
When the present inventors overexpressed the RSX1 (Restricted Sucrose Transport 1) gene that was identified in the whole plant, surprisingly, the translocation of sugar to the roots was nearly twice that of the wild type. As a result, the present invention was completed.
That is, this invention is the following (1)-(11).
(1) A method for controlling the sugar translocation of a plant by regulating the expression of the RSX1 gene in the plant cell.
(2) The method according to (1) above, wherein the RSX1 gene is exogenous.
(3) The method according to (1) or (2) above, wherein the regulation of the expression of the RSX1 gene increases the expression of the gene.
(4) The method according to any one of (1) to (3) above, wherein the control of sugar translocation is an increase in sugar translocation to a tuber.
(5) The method according to any one of (1) to (4) above, wherein the plant cell is a cell other than a sieve tissue.
(6) The method according to any one of (1) to (5) above, wherein the plant is a cruciferous plant.
(7) A plant whose sugar translocation is controlled by the method according to any one of (1) to (6) above.
(8) A transformed plant cell that retains an exogenous RSX1 gene so that it can be expressed.
(9) The plant cell according to (8), wherein the endogenous RSX1 gene does not contain a mutation.
(10) A plant comprising the plant cell according to (8) or (9) above.
(11) A kit for promoting sugar translocation in a plant comprising a vector for expressing the RSX1 gene in plant cells.

本発明により、所望の糖転流経路を形成させることができる。
さらに、本発明により、糖転流経路の拡大、あるいは、新規構築が可能となるため、所望の植物組織(例えば、種子や塊茎などのシンク器官)への糖転流を増大させることができる。
According to the present invention, a desired sugar translocation pathway can be formed.
Furthermore, since the sugar translocation pathway can be expanded or newly constructed according to the present invention, sugar translocation to a desired plant tissue (for example, a sink organ such as a seed or a tuber) can be increased.

図1は、本発明の実施例において用いたRSX1の発現プラスミドの構造を示した図である。FIG. 1 shows the structure of the RSX1 expression plasmid used in the examples of the present invention. 図2は、植物体全体にRSX1を発現させたシロイヌナズナにおける、シュート及び根への糖転流量の変化を調べた結果である。図中、WTは野生型を、35S−RSX1はRSX1過剰発現株のことである。FIG. 2 shows the results of examining changes in sugar translocation to shoots and roots in Arabidopsis thaliana in which RSX1 is expressed throughout the plant. In the figure, WT represents a wild type, and 35S-RSX1 represents a strain overexpressing RSX1.

本発明の実施形態の1つは、植物細胞中のRSX1遺伝子の発現を調節し、該植物の糖転流を制御する方法である。
RSX1(restricted sucrose export 1)は、発明者らによって同定された、ペクチン酸リアーゼをコードする遺伝子(シロイヌナズナのAt5g04310に対応する)のことである。この遺伝子の変異体であるrsx1は、耐凍性が向上した変異株として単離されたもので、矮性及び稔性低下を示し、葉肉細胞、維管束鞘細胞、篩部柔細胞の他、伴細胞においてもデンプンを貯留している。また、rsx1変異株では、伴細胞と篩要素間の二次原形質連絡の形成が不完全であり、この結果、ソースからシンク組織への糖転流が阻害されると考えられる。
RSX1のアミノ酸配列としては、例えば、シロイヌナズナ由来の配列番号2、アブラナ由来の配列番号4などを挙げることができる。また、RSX1のcDNA配列としては、例えば、シロイヌナズナ由来の配列番号1、アブラナ由来の配列番号3などを挙げることができる。なお、本明細書中で、「遺伝子」とは、細胞中に存在するゲノムDNAの他、そのcDNAをも含む意味で使用するものとし、両者を特に区別するばあいには、「ゲノムDNA(又は遺伝子)」又は「cDNA」などと記載する。そして、ゲノムDNAには、エクソン、イントロンのみならず、プロモーター、エンハンサーなどの転写調節領域も含まれる。
One of the embodiments of the present invention is a method for regulating the sugar translocation of a plant by regulating the expression of the RSX1 gene in the plant cell.
RSX1 (r estricted s ucrose e x port 1) was identified by the inventors is that of the gene encoding the pectate lyase (corresponding to At5g04310 Arabidopsis). Rsx1, a mutant of this gene, was isolated as a mutant strain with improved freezing tolerance, and shows fertility and reduced fertility. In addition to mesophyll cells, vascular sheath cells, sieve parenchymal cells, companion cells Also stores starch. In addition, in the rsx1 mutant, formation of secondary protoplasm communication between the companion cell and the sieve element is incomplete, and as a result, it is considered that sugar translocation from the source to the sink tissue is inhibited.
Examples of the amino acid sequence of RSX1 include SEQ ID NO: 2 derived from Arabidopsis thaliana, SEQ ID NO: 4 derived from rape. Examples of the RSX1 cDNA sequence include SEQ ID NO: 1 derived from Arabidopsis thaliana, SEQ ID NO: 3 derived from rape. In the present specification, the term “gene” is used to mean genomic DNA present in a cell as well as its cDNA. Or gene) ”or“ cDNA ”. Genomic DNA includes not only exons and introns but also transcriptional regulatory regions such as promoters and enhancers.

RSX1遺伝子の発現調節は、細胞に元々内在するRSX1遺伝子の発現を調節してもよく、又は、外来性のRSX1遺伝子で目的の植物細胞を形質転換し、該外来性RSX1遺伝子の発現を調節してもよい。
本発明において、外来性のRSX1遺伝子を用いる場合のRSX1遺伝子は、いずれの植物に由来してもよく、特に限定はされない。例えば、上記シロイヌナズナが属する、アブラナ科の植物の他、イネ科植物、マメ科植物、ナス科植物、ウリ科植物などに由来するRSX1も使用可能である。各種植物由来のRSX1遺伝子は、シロイヌナズナ由来RSX1などの既知の遺伝子のDNA配列又は遺伝子産物のアミノ酸配列との相同性検索などにより、同定することが可能である。
The regulation of the expression of the RSX1 gene may regulate the expression of the RSX1 gene originally inherent in the cell, or the target plant cell is transformed with the exogenous RSX1 gene to regulate the expression of the exogenous RSX1 gene. May be.
In the present invention, the RSX1 gene in the case of using an exogenous RSX1 gene may be derived from any plant and is not particularly limited. For example, RSX1 derived from a grass family plant, a legume plant, a solanaceous plant, a cucurbit family plant, etc. can be used in addition to the cruciferous plant to which the Arabidopsis thaliana belongs. RSX1 genes derived from various plants can be identified by homology search with DNA sequences of known genes such as Arabidopsis thaliana-derived RSX1 or amino acid sequences of gene products.

また、RSX1遺伝子は、野生型の植物に由来するものは勿論のこと、その変異体であっても、ペクチン酸リアーゼとして機能し、あるいは、rsx1変異体の機能を相補するもの(実質的に野生型RSX1遺伝子と同一な遺伝子)であれば、使用することができる。また、RSX1遺伝子産物(本明細書では、RSX1タンパク質と記す)についても、野生型RSX1タンパク質と実質的に同一なタンパク質であれば、本発明のRSX1タンパク質として使用可能である。
ここで、実質的に野生型RSX1遺伝子と同一な遺伝子とは、例えば、配列番号1、配列番号3に例示されるRSX1遺伝子の塩基配列からなるDNAのみならず、配列番号1、配列番号3で表される塩基配列と相補的な塩基配列からなるDNAと高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、rsx1変異体の機能を相補し、もしくは、その翻訳産物であるタンパク質がペクチン酸リアーゼとして機能するものも含まれる。あるいは、実質的に野生型RSX1遺伝子と同一な遺伝子とは、例えば、配列番号1、配列番号3に例示されるRSX1遺伝子の塩基配列と好ましくは約70%以上、より好ましくは約80%,81%,82%,83%,84%,85%,86%,87%,88%,89%,90%,91%,92%,93%,94%,95%,96%,97%,98%,最も好ましくは約99%のヌクレオチド配列相同性を有する塩基配列を含有するDNA(遺伝子)で、rsx1変異体の機能を相補し、もしくは、その翻訳産物であるタンパク質がペクチン酸リアーゼとして機能するDNA(遺伝子)のことである。
また、ストリンジェントな条件とは、当業者によって容易に決定されるハイブリダイゼーション条件のことで、一般的にプローブ長、洗浄温度、及び塩濃度に依存する経験的な評価される条件である。一般に、プローブが長くなると適切なアニーリングのための温度が高くなり、プローブが短くなると温度は低くなる。ハイブリッド形成は、一般的に、相補的鎖が、その融点に近いか、又は、それより低い環境において再アニールする能力に依存している。
具体的には、例えば、低ストリンジェントな条件として、ハイブリダイゼーション後のフィルターの洗浄段階において、37℃〜42℃の温度条件下、0.1×SSC、0.1%SDS溶液中で洗浄することなどが挙げられる。また、高ストリンジェントな条件として、例えば、洗浄段階において、65℃、5×SSCおよび0.1%SDS中で洗浄することなどが挙げられる。ストリンジェントな条件をより高くすることにより、相同性の高いポリヌクレオチドを得ることができる。
さらに、本発明におけるRSX1遺伝子には、後述の実質的に野生型RSX1タンパク質と同一なタンパク質をコードするDNAも含まれる。
The RSX1 gene functions as a pectate lyase, as well as a mutant derived from a wild-type plant, or complements the function of an rsx1 mutant (substantially wild A gene identical to the type RSX1 gene) can be used. Further, the RSX1 gene product (referred to as RSX1 protein in this specification) can be used as the RSX1 protein of the present invention as long as it is substantially the same protein as the wild-type RSX1 protein.
Here, the gene that is substantially the same as the wild type RSX1 gene includes, for example, not only DNA comprising the base sequence of the RSX1 gene exemplified in SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 3, but also SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 3. A protein consisting of a base sequence complementary to the represented base sequence hybridizes under highly stringent conditions and complements the function of the rsx1 mutant, or a protein that is a translation product thereof is a pectate lyase Some that work. Alternatively, the gene substantially the same as the wild-type RSX1 gene is preferably, for example, about 70% or more, more preferably about 80%, 81 with the base sequence of the RSX1 gene exemplified in SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 3. %, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, A DNA (gene) containing a nucleotide sequence having nucleotide sequence homology of 98%, most preferably about 99%, which complements the function of the rsx1 mutant, or the translation product protein functions as a pectate lyase It is the DNA (gene) that does.
Stringent conditions are hybridization conditions that are easily determined by those skilled in the art, and are generally empirically evaluated conditions that depend on probe length, washing temperature, and salt concentration. In general, the longer the probe, the higher the temperature for proper annealing, and the shorter the probe, the lower the temperature. Hybridization generally relies on the ability of the complementary strand to reanneal in an environment near or below its melting point.
Specifically, for example, as a low stringency condition, in a filter washing step after hybridization, washing is performed in a 0.1 × SSC, 0.1% SDS solution at a temperature of 37 ° C. to 42 ° C. And so on. Examples of highly stringent conditions include washing in 65 ° C., 5 × SSC and 0.1% SDS in the washing step. By making the stringent conditions higher, a highly homologous polynucleotide can be obtained.
Furthermore, the RSX1 gene in the present invention includes DNA encoding a protein that is substantially the same as the wild-type RSX1 protein described later.

また、実質的に野生型RSX1タンパク質と同一なタンパク質とは、配列番号2、配列番号4で例示されるRSX1タンパク質のアミノ酸配列からなるタンパク質のみならず、配列番号2、配列番号4で表されるアミノ酸配列と約60%以上、好ましくは約70%以上、より好ましくは約80%,81%,82%,83%,84%,85%,86%,87%,88%,89%,90%,91%,92%,93%,94%,95%,96%,97%,98%,最も好ましくは約99%のアミノ酸同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつ、ペクチン酸リアーゼとして機能するか、もしくは、そのコードDNAがrsx1変異体の機能を相補するタンパク質も含まれる。あるいは、野生型RSX1タンパク質と実質的に同一なタンパク質とは、配列番号2、配列番号4で表されるアミノ酸配列中の1又は数個(好ましくは、1〜30個程度、より好ましくは1〜10個程度、さらに好ましくは1〜5個)のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加・挿入されたアミノ酸配列からなり、かつ、ペクチン酸リアーゼとして機能するか、もしくは、そのコードDNAがrsx1変異体の機能を相補するタンパク質のことである。   The protein substantially identical to the wild type RSX1 protein is represented not only by the protein consisting of the amino acid sequence of the RSX1 protein exemplified by SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 4, but also by SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: About 60% or more, preferably about 70% or more, more preferably about 80%, 81%, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90 with the amino acid sequence %, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, most preferably about 99% amino acid sequence and function as pectate lyase Alternatively, a protein whose coding DNA complements the function of the rsx1 mutant is also included. Alternatively, the protein that is substantially the same as the wild-type RSX1 protein is one or several (preferably about 1 to 30, more preferably 1 to 1) in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4. About 10 (more preferably 1 to 5) amino acid sequences deleted, substituted or added / inserted, and functioning as a pectate lyase, or the coding DNA of the rsx1 mutant A protein that complements its function.

RSX1遺伝子の調製は、当該技術分野における通常の技術を使用して行うことができる。例えば、シロイヌナズナ由来のRSX1遺伝子など、公知の塩基配列情報に基づき、適当なプライマーペアを作成して、目的の植物から調製したゲノムDNAを鋳型にPCR増幅などを行い、得られた増幅産物をプローブにして、目的の植物由来のゲノミックライブラリーをスクリーニングすることにより、目的の植物由来のRSX1ゲノム遺伝子を調製することができる。また、cDNAについても同様な方法で、目的の植物のcDNAライブラリーなどから、調製することが可能である。   The RSX1 gene can be prepared using a conventional technique in the art. For example, an appropriate primer pair is created based on known nucleotide sequence information such as the Arabidopsis RSX1 gene, PCR amplification is performed using genomic DNA prepared from the target plant as a template, and the obtained amplification product is probed Thus, the target plant-derived genomic library can be screened to prepare the target plant-derived RSX1 genomic gene. Also, cDNA can be prepared from a cDNA library of the target plant by the same method.

RSX1遺伝子の発現調節における、「調節」とは、特別な作用を意味するものではなく、例えば、RSX1遺伝子の細胞内における発現を増減させたり、植物の部位特異的にその発現量を変動させたり、植物の成長過程のある時期に特異的に発現量を増減させるなど、野生型の植物(又は植物細胞)内における発現様式とは異なる発現を実現することである。
外来性のRSX1遺伝子は、植物細胞内で発現を可能にする適当なプロモーターやエンハンサーなどが挿入された発現ベクターを用いて、所望の細胞内で発現させることができる。使用可能はプロモーターとしては、植物細胞で機能するものであれば、特に限定はされず、例えば、カリフラワーモザイクウイルス(CaMV)35S RNA遺伝子のプロモーター、アグロバクテリウムTiプラスミド由来ノパリン合成酵素遺伝子のプロモーター(Pnos)、トウモロコシ由来ユビキチン遺伝子のプロモーター、イネ由来アクチン遺伝子のプロモーター、REFプロモーター、伴細胞特異的SUC2プロモーター、葉肉細胞特異的FBPaseプロモーターなどを挙げることができる。また、発現制御可能なプロモーターを使用して、所望のタイミングでRSX1遺伝子を発現させてもよい。この場合、例えば、alcA/alcRスイッチプロモーターなどの誘導可能なプロモーターを使用することができる。あるいは、植物発生の特定の時期(例えば、胚性発生初期など)にのみ機能するようなプロモーターなども適宜使用可能である。
さらに、RSX1遺伝子を植物組織特異的に発現させることも可能で、そのようなプロモーターとしては、例えばイネを例にとると、葯又は花粉特異的プロモーターCatA(WO00/58454)、花粉特異的プロモーターRPS4(特開2005−168470)、花器特異的プロモーターRPC213(WO99/43818)、葉肉細胞特異的プロモーターrbcS(Plant Physiol. 102, 991-1000 :1993)、葉特異的プロモーターpsbO,#42(特開2005−168470)、胚乳特異的プロモーターG/LuB−1、G/LuA−2(Plant Mol. Biol. 30, 1207-1221:1996, Plant J. 4, 357-366:1993)、カルス特異的プロモーターPRO3(特開2003−265182)、カルスおよび種子胚特異的発現活性を有するプロモーター#15(特開2005−168470)などが報告されている。
その他、RSX1遺伝子発現にシスに作用するエレメント、例えば、転写ターミネーターなどの使用等については、使用対象植物及び目的に応じて、当業者であれば適宜選択することができる。
“Regulation” in regulating the expression of the RSX1 gene does not mean a special action. For example, the expression of the RSX1 gene in the cell is increased or decreased, or the expression level is varied in a plant-specific manner. In other words, to achieve expression different from the expression pattern in a wild type plant (or plant cell), such as specifically increasing or decreasing the expression level at a certain stage of the plant growth process.
The exogenous RSX1 gene can be expressed in a desired cell using an expression vector into which an appropriate promoter or enhancer that allows expression in a plant cell is inserted. The promoter that can be used is not particularly limited as long as it functions in plant cells. For example, a promoter of a cauliflower mosaic virus (CaMV) 35S RNA gene, a promoter of an Agrobacterium Ti plasmid-derived nopaline synthase gene ( Pno), a maize-derived ubiquitin gene promoter, a rice-derived actin gene promoter, a REF promoter, a companion cell-specific SUC2 promoter, a mesophyll cell-specific FBPase promoter, and the like. Alternatively, the RSX1 gene may be expressed at a desired timing using a promoter capable of controlling expression. In this case, for example, an inducible promoter such as an alcA / alcR switch promoter can be used. Alternatively, a promoter that functions only at a specific stage of plant development (for example, early stage of embryonic development) can be used as appropriate.
Furthermore, the RSX1 gene can also be expressed specifically in plant tissues. As such a promoter, for example, rice is taken as an example, rice cake or pollen specific promoter CatA (WO00 / 58454), pollen specific promoter RPS4. (JP 2005-168470), flower organ specific promoter RPC213 (WO 99/43818), mesophyll cell specific promoter rbcS (Plant Physiol. 102, 991-1000: 1993), leaf specific promoter psbO, # 42 (JP 2005) -168470), endosperm-specific promoter G / LuB-1, G / LuA-2 (Plant Mol. Biol. 30, 1207-1221: 1996, Plant J. 4, 357-366: 1993), callus-specific promoter PRO3 (JP 2003-265182 A), Promoter # 15 having callus and seed embryo specific expression activity (JP 20 5-168470) and the like have been reported.
In addition, the use of elements that act in cis on RSX1 gene expression, such as transcription terminators, and the like can be appropriately selected by those skilled in the art depending on the target plant and purpose.

調製したRSX1を含む発現ベクターで、目的の植物細胞を形質転換する場合、種々の公知の方法を用いて行うことができ、例えば、アグロバクテリウムを介する方法、エレクトロポレーション法、パーティクルガン法、リン酸カルシウム法、ポリエチレングリコール法、あるいは、マイクロインジェクション法などが使用可能である。例えば、アグロバクテリウムを介する方法は、まず、発現ベクターでアグロバクテリウムを形質転換し、この形質転換アグロバクテリウムリーフディスクと共培養することで感染させる方法(リーフディスク法)、又は、プロトプラストに共培養により感染させる方法(プロトプラスト共存培養法)などにより、実施することができる。   When transforming a target plant cell with the prepared expression vector containing RSX1, it can be performed using various known methods, for example, an Agrobacterium-mediated method, an electroporation method, a particle gun method, A calcium phosphate method, a polyethylene glycol method, a microinjection method, or the like can be used. For example, in the method using Agrobacterium, first, Agrobacterium is transformed with an expression vector, and then infected with this transformed Agrobacterium leaf disc (leaf disc method), or protoplast is used. It can be carried out by a method of infecting by co-culture (protoplast co-culture method) or the like.

本発明において、外来性のRSX1遺伝子を発現させる対象となる植物は、特に限定はされるものではなく、糖転流の制御を望む植物であれば如何なるものであってもよい。あえて例示をするならば、例えば、上記シロイヌナズナが属する、アブラナ科の植物、例えば、ミヤマナズナ属、シロイヌナズナ属(シロイヌナズナなど)、セイヨウワサビ属(セイヨウワサビなど)、イワナズナ属、アブラナ属(タアサイ、カラシナ、タカナ、セイヨウアブラナ、ミズナ、ハゴロモカンラン(ケール)、ハボタン、カリフラワー、キャベツ、メキャベツ(コモチカンラン)、ブロッコリー、チンゲンサイ、ノザワナ、アブラナ、ハクサイ、コマツナ、カブなど)、アマナズナ属、ナズナ属、タネツケバナ属、カラクサナズナ属、エダウチナズナ属、イヌナズナ属、キバナスズシロ属(ルッコラなど)、ハナダイコン属、ダイコンモドキ属、マガリバナ属、イオノプシディウム属、マメグンバイナズナ属、ニワナズナ属、ゴウダソウ属、マルコルミア属、アラセイトウ属、オランダガラシ属、オオアラセイトウ属、ダイコン属(ダイコン、ハツカダイコンなど)、ミヤガラシ属、イヌガラシ属、キハナハタザオ属、グンバイナズナ属、ワサビ属(ワサビなど)などに属する植物由来のRSX1などは好適に使用することができる。また、その他、イネ、コムギ、トウモロコシ、オオムギ、ライムギなどのイネ科植物、トマト、ジャガイモ、ピーマン、シシトウなどのナス科植物、ヒルガオ、サツマイモなどのヒルガオ科植物、コンニャク、タロイモ、サトイモ、ヤツガシラなどのサトイモ科植物、ダイズ、インゲンなどマメ科植物、カボチャ、キュウリ、メロンなどのウリ科植物などを挙げることができる。また、RSX1を発現させる植物細胞は、野生型(内在性のRSX1遺伝子に変異を持たない細胞)は勿論のこと、RSX1遺伝子以外の遺伝子に何らかの変異などがすでに導入されている細胞であってもよい。   In the present invention, the target plant for expressing the exogenous RSX1 gene is not particularly limited, and any plant may be used as long as it is desired to control sugar translocation. For example, for example, plants of the Brassicaceae family to which the above-mentioned Arabidopsis belongs, for example, the genus Miyamanazuna, the Arabidopsis genus (such as Arabidopsis), the horseradish genus (such as horseradish), the genus Iwanazu, Takana, Brassica napus, Mizuna, Hagoromokanran (kale), Ha button, cauliflower, cabbage, mecabbage (Komochikanran), broccoli, Chinggensai, Nozawana, Brassica, Chinese cabbage, Komatsuna, turnip, etc.) Nazuna, Eudachinazuna, Inuazuna, Kibanasushiro (Arugula, etc.), Japanese radish, Daikonmodoki, Magaribana, Ionopsidium, Mamegunbinazuna, Niwanazuna, Go Derived from plants belonging to the genus Genus, Marcormia, Arashito, Dutch genus, Giant arabes, Japanese radish (Japanese radish, Japanese radish, etc.), Japanese genus, Japanese red genus, Japanese red-billed genus, Gunby genus, Wasabi RSX1 and the like can be preferably used. In addition, other grasses such as rice, wheat, corn, barley and rye, solanaceae such as tomato, potato, pepper, and sweet potato, convolvulaceae such as convolvulus and sweet potato, konjac, taro, taro, and chrysalis Examples include taro family plants, legumes such as soybeans and green beans, and cucurbits such as pumpkins, cucumbers and melons. In addition, plant cells that express RSX1 may be wild-type cells (cells that do not have mutations in the endogenous RSX1 gene), as well as cells in which any mutations have already been introduced into genes other than the RSX1 gene. Good.

上述のように、本発明には、植物細胞中で外来性のRSX1遺伝子の発現を調節、特に、過剰発現させることで、当該植物の糖転流を制御する方法が含まれる。ここで、糖転流の制御とは、植物全体の糖転流の効率を上昇させることの他、例えば、シュート(シンク葉、茎)、塊茎、種子などの部位特異的に糖転流効率を上昇させることが含まれる。例えば、篩部組織以外の組織でRSX1遺伝子を過剰発現させると、塊茎への糖転流効率が約2倍程度にまで上昇させることが可能である。
この糖転流の制御は、二次原形質連絡の形成が促進される結果として、既存の糖転流経路が増強され、又は、新規な糖転流経路が形成されることによって達成されてもよく、RSX1遺伝子の植物細胞中での発現調節に起因した糖転流の制御(主に、糖転流効率の上昇)であれば、本発明の効果に含まれる。
As described above, the present invention includes a method for controlling the sugar translocation of a plant by regulating the expression of the exogenous RSX1 gene in the plant cell, in particular by overexpression. Here, the control of sugar translocation refers to, in addition to increasing the efficiency of sugar translocation in the whole plant, for example, site-specific sugar translocation efficiency such as shoots (sink leaves, stems), tubers, and seeds. Includes raising. For example, when the RSX1 gene is overexpressed in a tissue other than the sieve tissue, the sugar translocation efficiency to the tuber can be increased to about twice.
This control of transglycosylation may be achieved by enhancing the existing transglycosylation pathway or forming a novel transglycosylation pathway as a result of promoting the formation of secondary protoplasmic communication. If the control of sugar translocation resulting from regulation of the expression of the RSX1 gene in plant cells is well (mainly increased sugar translocation efficiency), it is included in the effects of the present invention.

本発明の他の実施形態は、上述の糖転流を制御方法によって作製された植物である。
さらに、本発明には、植物細胞中でのRSX1遺伝子発現用ベクターを含む植物の糖転流促進用キットが含まれる。
糖転流促進用キットには、RSX1遺伝子を目的の植物組織細胞で発現させるためのベクターの(RSX1遺伝子が予め組み込まれていてもよく、又は、本キット中にRSX1遺伝子が別途収納されていてもよい)他、該ベクターの形質転換に必要な試薬類、使用説明書、場合によっては、該ベクターで形質転換される所望の植物細胞、植物組織又は植物株などが含まれていてもよい。
Another embodiment of the present invention is a plant produced by the above-described method for controlling sugar translocation.
Furthermore, the present invention includes a kit for promoting sugar translocation of a plant comprising a vector for expressing RSX1 gene in plant cells.
In the kit for promoting sugar translocation, the RSX1 gene may be preliminarily incorporated in the vector for expressing the RSX1 gene in the target plant tissue cells, or the RSX1 gene is separately stored in this kit. In addition, reagents necessary for transformation of the vector, instructions for use, and in some cases, desired plant cells, plant tissues or plant strains transformed with the vector may be included.

以下に、シロイヌナズナを例として、本発明の実施例を示すが、本発明は以下に示す実施例に限定されるものではない。   Examples of the present invention will be shown below using Arabidopsis as an example, but the present invention is not limited to the following examples.

シロイヌナズナにおけるRSX1過剰発現体の解析
35Sプロモーターを含む発現ベクター(図1)を用いて、シロイヌナズナの野生株を形質転換し、RSX1(配列番号1、配列番号2)を恒常的に発現させた。具体的には、過剰発現体は、シロイヌナズナのコロンビア株に floral dip法(Clough and Bent, 1998, Plant J. 16, 735-743)でTiプラスミド(pPZP221)を含むアグロバクテリウムEHA101を感染させ、その種子(T1種子と呼ぶ)よりゲンタマイシン選抜により単離した。播種後、5〜6週間の抽薹したシロイヌナズナ(植物体:野生株及び35S−RSX1過剰発現株)の第5葉以外の植物体をアルミホイルで遮光し、アクリルチャンバー内で、1時間、14CO暴露し、その後、5分間、脱14COした。その後、アルミホイルを外して、4時間チェースした後、植物体を各葉、根と茎に切り分け、BAS2000で14Cの定量を行った(図2)。その結果、35S−RSX1過剰発現株では、根への転流が野生株と比べて191.2%まで増えていることが分かった。
以上のように、植物体全体の細胞においてRSX1を過剰発現させると、根への転流が促進される。
Analysis of RSX1 overexpressing body in Arabidopsis thaliana Using an expression vector containing a 35S promoter (FIG. 1), a wild-type Arabidopsis thaliana was transformed to constantly express RSX1 (SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2). Specifically, the overexpressing body infects a Colombian strain of Arabidopsis thaliana with the Agrobacterium EHA101 containing Ti plasmid (pPZP221) by the floral dip method (Clough and Bent, 1998, Plant J. 16, 735-743), It was isolated from the seed (referred to as T1 seed) by gentamicin selection. After sowing, plants other than the 5th leaf of Arabidopsis thaliana (plants: wild strain and 35S-RSX1 overexpressing strain) that have been lottered for 5 to 6 weeks are shielded with aluminum foil, and 14 CO in an acrylic chamber for 1 hour. 2 exposed, then 5 minutes, and de-14 CO 2. Then, after removing aluminum foil and chasing for 4 hours, the plant body was cut into leaves, roots and stems, and 14 C was quantified with BAS2000 (FIG. 2). As a result, in the 35S-RSX1 overexpression strain, it was found that the translocation to the root increased to 191.2% compared to the wild strain.
As described above, when RSX1 is overexpressed in cells of the entire plant body, translocation to the root is promoted.

本発明は、野生型とは異なる糖転流経路を有する植物を作出する技術であり、植物分野における育種において、多大なる貢献を行うことが期待される。   The present invention is a technique for producing a plant having a sugar translocation pathway different from that of the wild type, and is expected to greatly contribute to breeding in the field of plants.

Claims (4)

アブラナ科植物の細胞中のRSX1遺伝子の発現を増大させ該アブラナ科植物の根への糖転流を増大させる方法。 Expression of RSX1 gene in a cell in Brassicaceae to increase, a method of increasing the sugar commutation to the root of the Brassicaceae. 前記RSX1遺伝子が外来性であることを特徴とする請求項1に記載の方法。   The method of claim 1, wherein the RSX1 gene is exogenous. 前記アブラナ科植物の細胞が、篩部組織以外の細胞であることを特徴とする請求項1又は2に記載の方法。 The method according to claim 1 or 2, wherein the cell of the cruciferous plant is a cell other than the sieve tissue. アブラナ科の植物の細胞中でのRSX1遺伝子発現用ベクターを含むアブラナ科の植物の根への糖転流促進用キット。 A kit for promoting sugar translocation to the root of a cruciferous plant comprising a vector for expressing RSX1 gene in a cell of the cruciferous plant .
JP2010110837A 2010-05-13 2010-05-13 Method for promoting sugar translocation Expired - Fee Related JP5669083B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2010110837A JP5669083B2 (en) 2010-05-13 2010-05-13 Method for promoting sugar translocation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2010110837A JP5669083B2 (en) 2010-05-13 2010-05-13 Method for promoting sugar translocation

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2011234695A JP2011234695A (en) 2011-11-24
JP5669083B2 true JP5669083B2 (en) 2015-02-12

Family

ID=45323377

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2010110837A Expired - Fee Related JP5669083B2 (en) 2010-05-13 2010-05-13 Method for promoting sugar translocation

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP5669083B2 (en)

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008068498A2 (en) * 2006-12-08 2008-06-12 The University Of York Regulation of plant metabolism
US20100162432A1 (en) * 2007-05-22 2010-06-24 Basf Plant Science Gmbh Plant cells and plants with increased tolerance and/or resistance to environmental stress and increased biomass production-ko
GB0810111D0 (en) * 2008-06-04 2008-07-09 Univ York Aquatic plant

Also Published As

Publication number Publication date
JP2011234695A (en) 2011-11-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5701610B2 (en) Woody plant with improved growth characteristics and method for producing it using transcription factors
US20200354735A1 (en) Plants with increased seed size
WO2019038417A1 (en) Methods for increasing grain yield
US20190127755A1 (en) Construct and vector for intragenic plant transformation
EP2647646B1 (en) Nucleic acid sequences and peptides/proteins of the FT family providing flower-repressing properties in tobacco and transgenic plants transformed therewith
EP2925869B1 (en) Trichome specific promoters
EP2402446A1 (en) Gene involved in the development of the seed
JP2009540822A (en) Use of plant chromatin remodeling genes to regulate plant structure and growth
KR101554678B1 (en) Gene delivery system for transformation of plant using plant virus and uses thereof
CN117106820A (en) Method for creating few lateral branches of tomatoes through genome editing and application of method
US20130036515A1 (en) Banana MADS-Box Genes for Banana Ripening Control
JP5669083B2 (en) Method for promoting sugar translocation
KR20220164711A (en) Methods for producing plants with minimized biomass by-products and their associated plants
JP2009284799A (en) Method for creating plant using methionine-originated glucosinolate biosynthesis-inhibiting gene
WO2015150412A1 (en) Transgenic plants with increased number of fruits and seeds and method for obtaining thereof
KR20150003099A (en) ATPG6 Protein Providing Yield Increase and Stress Tolerance as well as Delaying Senescence in Plants, the Gene Encoding the Protein and Those Uses
CN104862319A (en) Arabidopis thaliana gene AtTIE 1 controlling plant branching and applications thereof
CN114644698B (en) Application of rice gene OsREM20 in regulation of spike number and yield
CN115707713B (en) Fruit-shape related protein, and coding gene and application thereof
JP2011019474A (en) Flowering control gene and flowering control method
JP2011188744A (en) High temperature-tolerant plant and screening method therefor
WO2008064413A1 (en) Plants with hexose accumulating tissues having an altered hexose concentration
JP2024078049A (en) Method for producing self-compatible Brassicaceae plants
KR100923196B1 (en) Transcription terminator gene isolated from apple
US20190032068A1 (en) CONSTRUCT OF NUCLEIC ACIDS COMPRISING A PROMOTER LINKED TO A NUCLEOTIDE SEQUENCE ENCODING THE PRECURSOR OF miRNA 319e OF V. VINÍFERA; METHOD FOR REGULATING THE EXPRESSION OF A TARGET SEQUENCE IN A TARGET CELL AND ITS USE IN POST-TRANSCRIPTIONAL GENE SILENCING OF A TARGET SEQUENCE

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20130314

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20140806

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20141003

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20141203

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20141209

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 5669083

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees