JP5606672B2 - Intestinal environment adjustment method using symbiotics - Google Patents

Description

本発明は、腸内の健康に有用とされるプロバイオティクスを特定のプレバイオティクスを併用することにより、プロバイオティクスの胃酸耐性が向上し、ヒトや動物の大腸に効率よく到達し定着率を向上させる、かつプロバイオティクスの保存安定性を向上させることできるシンバイオティクスおよびこれを添加した飲食品、飼料およびペットフードに関する。さらに詳しくは、分子量が分子量マーカーとしてプルランを用いた高速液体クロマトグラフィーによるゲルろ過で重量平均分子量が３〜５０ｋＤａと算出されるガラクトマンナンであるプレバイオティクスとプロバイオティクスを併用するシンバイオティクスおよびこれを添加した飲食品、飼料およびペットフードに関する。   The present invention improves the gastric acid resistance of probiotics by using probiotics that are useful for intestinal health in combination with specific prebiotics, efficiently reaching the colon of humans and animals, and the establishment rate The present invention relates to synbiotics that can improve the storage stability of probiotics, and foods and drinks, feeds and pet foods to which these are added. More specifically, a synbiotic using a prebiotic and a probiotic, which is a galactomannan having a weight average molecular weight of 3 to 50 kDa calculated by gel filtration by high performance liquid chromatography using pullulan as a molecular weight marker, and this The present invention relates to foods and drinks, feeds and pet foods to which is added.

プロバイオティクスとは、消化管内の細菌叢を改善して宿主に有益な作用をもたらし得る有用な微生物を意味している。プロバイオティクス機能を持つ微生物を摂取すると、それらが消化管内の細菌叢に作用し、細菌叢の健常化をはかりながら、疾病の予防・改善を行うことができると言われている。プロバイオティクスを応用した技術開発として、いくつかものが知られている（特許文献１）。   Probiotics means useful microorganisms that can improve the bacterial flora in the gastrointestinal tract and have beneficial effects on the host. It is said that when microorganisms having a probiotic function are ingested, they act on the bacterial flora in the gastrointestinal tract, and the disease can be prevented and ameliorated while the bacterial flora is healthy. There are several known technology developments that apply probiotics (Patent Document 1).

また、プレバイオティクスとは、上記プロバイオティクスに含まれる有用な細菌や常在の有用腸内細菌の増殖を助けて、腸内環境の改善を促進する物質のことを意味し、簡単に消化されない物質が多い。例えば、オリゴ糖、食物繊維などは、プレバイオティクスとして働く。オリゴ糖は、乳酸菌、ビフィズス菌などの栄養となり、食物繊維は、腸内細菌をとどめさせて、その増殖を助ける。プレバイオティクスを応用した技術開発として、いくつかのものが知られている（特許文献２）。
上記プロバイオティクスとプレバイオティクスとを組み合わせたものをシンバイオティクスと称しているが、このシンバイオティクスに関する技術開発については、十分に進んでいなかった。 Prebiotics mean substances that help the growth of useful bacteria and resident useful intestinal bacteria contained in the above probiotics and promote the improvement of the intestinal environment. There are many substances that are not used. For example, oligosaccharides, dietary fiber, etc. act as prebiotics. Oligosaccharides serve as nutrients for lactic acid bacteria, bifidobacteria, etc., and dietary fiber keeps intestinal bacteria and helps their growth. There are several known technology developments that apply prebiotics (Patent Document 2).
A combination of the above probiotics and prebiotics is referred to as synbiotics, but technical development related to the synbiotics has not been sufficiently advanced.

特開２００８−１０９９４５号公報JP 2008-109945 A 特表２００７−５３７２２４号公報Special Table 2007-537224

本発明は、上記課題に鑑みてなされたものであり、その目的はシンバイオティクスを利用した腸内環境調整方法を提供することである。   This invention is made | formed in view of the said subject, The objective is to provide the intestinal environment adjustment method using a synbiotic.

上記課題を解決するための発明に係る腸内環境調整方法は、（Ａ）プレバイオティクスとして、加水分解されたグァーの胚乳部分であって、次の性質を含むもの、（１）プルランを分子量マーカーとして用いた高速液体クロマトグラフィーによるゲルろ過で重量平均分子量が３〜５０ｋＤａと算出されるガラクトマンナン、（２）ケルダール法により窒素含量を測定し、係数６.２５を乗じて算出されたタンパク質含量が１.０％以下であるものと、（Ｂ）プロバイオティクスとして、ビィフィズス菌、乳酸菌、枯草菌、酪酸生成菌、乳酸利用菌、プロピオン酸生成菌の一種または二種以上からなり、さらに水分含量が２０％以下であるもの、の両者を含有するシンバイオティクスを経口投与することにより、腸管内で乳酸及び糖類から酪酸を生じさせて腸内環境を整えることを特徴とする。
本発明において、前記加水分解されたグァーの胚乳部分が、次の性質を含むもの、（３）固形分含量１５％水溶液の粘度が、回転式粘度計で回転数６０ｒｐｍ、２０℃で測定したときに２０ｍＰａ・ｓ以下であるもの、であることが好ましい。
また、前記加水分解されたグァーの胚乳部分が、次の性質を含むもの、（４）分解物の固形物含量が１.０％水溶液９９ｇに１.０ｇのポリオキシエチレン付加型界面活性剤（ＰＯＥ）を添加して測定した曇点が６０℃以下であるもの、（５）（Ａ）分解物１質量部に対して、１／５質量部のイソプロピルアルコールを加えてよく湿らせた後、激しくかき混ぜながら水１０質量部加えた溶液（溶液（５−１））の粘度がＢ型粘度計で２５℃、Ｎｏ．１ローター、１２ｒｐｍで測定したときに２０ｍＰａ・ｓ以下、（Ｂ）溶液（５−１）を沸騰水中で１０分間加熱し冷却後に同条件で測定した粘度が２０ｍＰａ・ｓ以下（溶液５−２）、（Ｃ）溶液（５−２）１質量部に５％ホウ酸ナトリウム水溶液１／５質量部を添加し、混和、放置したものを動的粘弾性測定装置で、２５℃、１Ｈｚでひずみ依存性測定をすると、線形領域で貯蔵弾性率（Ｇ‘）＞損失弾性率（Ｇ’‘）かつ線形領域から非線形領域を示す測定曲線を得るものであることが好ましい。
また、さらにツバキ科植物成分を経口投与することが好ましい。
本発明におけるプロバイオティクスとは、宿主の腸管内で有益な作用を発揮する微生物であり、好ましくは乳酸菌、ビフィズス菌、糖化菌、枯草菌、酪酸生成菌、乳酸利用菌、プロピオン酸生成菌、酵母である。 The method for adjusting the intestinal environment according to the invention for solving the above-mentioned problems is as follows: (A) As a prebiotic, a hydrolyzed guar endosperm part having the following properties: (1) Pullulan having a molecular weight Galactomannan whose weight average molecular weight is calculated to be 3-50 kDa by gel filtration by high performance liquid chromatography used as a marker, (2) Protein content calculated by measuring nitrogen content by Kjeldahl method and multiplying by coefficient 6.25 1.0% or less, and (B) as a probiotic, it consists of one or more of bifidobacteria, lactic acid bacteria, Bacillus subtilis, butyric acid-producing bacteria, lactic acid-utilizing bacteria, and propionic acid-producing bacteria. Oral administration of symbiotics containing both of which content is 20% or less, and butyric acid from lactic acid and saccharides in the intestine Difference was characterized by arranging the intestinal environment.
In the present invention, the endosperm portion of the hydrolyzed guar has the following properties: (3) When the viscosity of a 15% solid content aqueous solution is measured with a rotary viscometer at 60 rpm and 20 ° C. It is preferably 20 mPa · s or less.
In addition, the hydrolyzed guar endosperm part has the following properties: (4) 1.0 g of polyoxyethylene addition type surfactant (99 g of aqueous solution containing 1.0% solids content of degradation product) The cloud point measured by adding POE) is 60 ° C. or less, (5) (A) 1 part by mass of decomposition product, 1/5 parts by mass of isopropyl alcohol is added and moistened well, The viscosity of a solution (solution (5-1)) added with 10 parts by mass of water while stirring vigorously was 25 ° C. with a B-type viscometer. 1 rotor, measured at 12 rpm, 20 mPa · s or less, (B) Solution (5-1) heated in boiling water for 10 minutes, cooled and measured under the same conditions, viscosity of 20 mPa · s or less (solution 5-2) , (C) 1/5 parts by mass of 5% aqueous sodium borate solution was added to 1 part by mass of solution (5-2), and the mixture was allowed to stand with a dynamic viscoelasticity measuring device at 25 ° C. and 1 Hz. When the measurement is performed, it is preferable that the storage elastic modulus (G ′)> loss elastic modulus (G ″) in the linear region and a measurement curve indicating the non-linear region from the linear region is obtained.
Furthermore, it is preferable to orally administer camellia plant components.
The probiotic in the present invention is a microorganism that exhibits a beneficial action in the intestinal tract of the host, preferably lactic acid bacteria, bifidobacteria, saccharifying bacteria, Bacillus subtilis, butyric acid producing bacteria, lactic acid utilizing bacteria, propionic acid producing bacteria, Yeast.

本発明における乳酸菌とは、乳酸桿菌および乳酸球菌であり、好ましくは、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属細菌、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ属細菌、Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ属細菌、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ属細菌、Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ属細菌およびＬｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ属細菌である。   The lactic acid bacteria in the present invention are Lactobacillus and Lactococcus, preferably Lactobacillus genus bacteria, Streptococcus genus bacteria, Enterococcus genus bacteria, Lactococcus genus bacteria, Pediococcus genus bacteria and Leuconostoc genus bacteria.

本発明におけるＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属細菌は、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ、 Ｌ．ｇａｓｓｅｒｉ、 Ｌ．ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ、Ｌ．ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ、Ｌ．ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ、Ｌ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ、Ｌ．ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ、Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ、Ｌ．ｃａｓｅｉ、Ｌ．ｐｌａｎｔａｒｕｍ、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ、Ｌ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ、Ｌ．ｓａｋｅ、Ｌ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ、Ｌ．ｃｅｌｌｏｂｉｏｓｕｓおよびＬ．ｂｒｅｖｉｓが例示できる。   Lactobacillus genus bacteria in the present invention are Lactobacillus acidophilus, L. et al. gasseri, L.M. johnsonii, L.M. delbrueckii, L .; delbrueckii subsp. bulgaricus, L .; bulgaricus, L .; helveticus, L.H. rhamnosus, L .; casei, L .; plantarum, L .; reuteri, L.M. salivarius, L.M. sake, L.M. salivarius, L.M. cellobiosus and L. Brevis can be exemplified.

本発明におけるＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ属細菌は、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ、Ｓ．ｓａｎｇｕｉｓ、Ｓ．ｍｉｔｉｓ、Ｓ． ｐｓｅｕｄｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ、Ｓ．ｐａｓｔｅｕｒｉ、Ｓ．ｐａｒａｓａｎｇｕｉｎｉｓ、Ｓ．ｐａｒａｓａｎｇｕｉｎｉｓ、Ｓ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ、Ｓ．ｖｅｓｔｉｂｕｌａｒｉｓ、Ｓ．ｐａｓｔｅｕｒｉ、およびＳ．ｏｒａｌｉｓが例示できる。
本発明におけるＥｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ属細菌は、Ｅ．ｍａｌｏｄｏｒａｔｕｓ、Ｅ．ｍａｌｏｄｏｒａｔｕｓ、Ｅ．ｆａｃｉａｌｉｓおよびＥ．ｆａｃｅｉｕｍが例示できる。 The genus Streptococcus in the present invention is Streptococcus thermophilus, S. cerevisiae. sanguis, S .; mitis, S.M. pseudoneumoniae, S. p. pasturi, S .; parasanguinis, S. et al. parasanguinis, S. et al. salivarius, S.M. vestibularis, S .; pasturi, and S. p. oralis can be exemplified.
The Enterococcus bacterium in the present invention is E. coli. malodoratus, E.M. malodoratus, E.M. facialis and E.I. faceium can be exemplified.

本発明におけるＬａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ属細菌は、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓおよびＬａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ．ｃｒｅｍｏｒｉｓが例示できる。
本発明におけるＰｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ属細菌は、Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｄａｍｎｏｓｕｓおよびＰ．ａｃｉｄｉｌａｃｔｉｃｉが例示できる。
本発明におけるＬｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ属細菌は、Ｌ．ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓおよびＬ．ｓａｋｅが例示できる。 The bacteria belonging to the genus Lactococcus in the present invention are Lactococcus lactis and Lactococcus lactis subsp. Cremoris can be exemplified.
Pediococcus genus bacteria in the present invention include Pediococcus damnosus and P. Acidilactici can be exemplified.
The genus Leuconostoc in the present invention is L. mesenteroides and L.M. An example is sake.

本発明におけるビィフィズス菌とは、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属細菌のことを指す。好ましくは、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ、Ｂ．ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ、Ｂ．ｌｏｎｇｕｍ、Ｂ．ｉｎｆａｎｔｉｓ、Ｂ．ｂｒｅｖｅ、Ｂ．ａｎｉｍａｌｉｓ、Ｂ．ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕｍ、Ｂ．ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｍ、Ｂ．ｂｏｕｍ、Ｂ．ｍａｇｕｎｕｍ、Ｂ．ｐｕｌｌｏｒｕｍ、Ｂ．ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ、Ｂ．ｓｕｉｓ、Ｂ．ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ、Ｂ．ｇａｌｌｉｎａｒｕｍ、Ｂ．ｄｅｎｔｉｕｍ、Ｂ．ｒｕｍｉｎａｎｔｉｕｍ、Ｂ．ａｎｇｕｌａｔｕｍ、Ｂ．ｍｅｒｙｃｉｃｕｍ、Ｂ．ｇａｌｌｉｃｕｍ、Ｂ．ｓａｅｃｕｌａｒｅ、Ｂ．ｉｎｏｐｉｎａｔｕｍ、Ｂ．ｍｉｎｉｍｕｍ、Ｂ．ｄｅｎｔｉｃｏｌｅｎｓ、Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｅ、Ｂ．ｃｏｒｙｎｅｆｏｒｍｅ、Ｂ．ｃｕｎｉｃｕｌｉ、Ｂ．ａｓｔｅｒｏｉｄｅｓ、Ｂ．ｃｈｏｅｒｉｎｕｍおよびＢ．ｉｎｄｉｃｕｍである。   The bifidobacteria in the present invention refers to a bacterium belonging to the genus Bifidobacterium. Preferably, Bifidobacterium bifidum, B.I. adolescentis, B.M. longum, B.M. infantis, B.M. breve, B.M. animalis, B. et al. pseudolongum, B.I. thermophilum, B.M. room, B.B. magunum, B.M. pullorum, B.I. catenatum, B. et al. suis, B.M. pseudocateulatum, B.I. gallinarum, B.I. denium, B.M. luminantium, B.M. angulatum, B.I. mericicum, B.M. gallicum, B.I. saeculare, B.I. inopinatum, B.I. minimum, B.M. denticolens, B.M. subtile, B.M. coryneform, B.M. cuniculi, B.M. asteroides, B.I. choerinum and B.E. indicum.

本発明における糖化菌とは、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｓｅｎｔｅｒｉｃｕｓである。
本発明における枯草菌とは、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ、好ましくは、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ ｖａｒ． ｎａｔｔｏである。
本発明における酪酸生成菌とは、Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｕｔｙｒｉｃｕｍおよびＴ−ＲＥＬＰ法による細菌解析でＣｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｓｕｂｃｌｕｓｔｅｒ ＸＩＶａに分類される細菌である。 The saccharifying bacterium in the present invention is Bacillus mesentericus.
Bacillus subtilis in the present invention refers to Bacillus subtilis, preferably Bacillus subtilis var. NATTO.
The butyric acid-producing bacterium in the present invention is a bacterium classified as Clostridium subcluster XIVa by bacterial analysis by Clostridium butyricum and T-RELP method.

本発明におけるＴ−ＲＥＬＰ法による細菌解析でＣｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｓｕｂｃｌｕｓｔｅｒ ＸＩＶａに分類される細菌は、Ｅｕｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｈａｌｌｉｉ、Ｅ．ｒａｍｕｌｕｓ、Ｅ．ｒｅｃｔａｌｅ、Ｅ．ｖｅｎｔｒｉｏｓｕｍおよびＲｏｓｅｂｕｒｉａ ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｉｓが例示できる。   Bacteria classified as Clostridium subcluster XIVa in the bacterial analysis by the T-RELP method in the present invention are classified into Eubacterium halliii, E. et al. Ramulus, E.M. Rectale, E.I. Ventriosum and Roseburia intestinalis can be exemplified.

本発明における乳酸利用菌とは、Ｍｅｇａｓｐｈａｅｒａ ｅｌｓｄｅｎｉｉである。
本発明におけるプロピオン酸生成菌とは、Ｐｒｏｐｉｏｎｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ属細菌のことであり、好ましくは、Ｐｒｏｐｉｏｎｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｆｒｅｕｄｅｎｒｅｉｃｈｉｉである。 The lactic acid-utilizing bacterium in the present invention is Megaphaera elsdenii.
The propionic acid-producing bacterium in the present invention is a genus Propionibacterium, and is preferably Propionibacterium fredenreichii.

本発明におけるガラクトマンナンとは、Ｄ−マンノースがβ−（１→４）結合したマンナン鎖を主鎖とし、Ｄ−マンノースのＯ−６位からα−ガラクトシル基が結合した櫛状の分岐構造を有し、分子量マーカーとしてプルランを用いた高速液体クロマトグラフィーによるゲルろ過で測定した重量平均分子量が３〜５０ｋＤａと算出される物質を指す。
本発明のガラクトマンナンのマンノース直鎖の鎖長は、３０単位〜２００単位の範囲内に８０％以上分布している。
本発明のガラクトマンナンの５％水溶液の粘度は、ブルックフィールド粘度計を用いて５℃，６０ｒｐｍで、Ｌｏｗローターにて測定したときに５〜２０ｍＰａ・ｓである。 The galactomannan in the present invention is a comb-like branched structure in which a main chain is a mannan chain in which D-mannose is β- (1 → 4) bonded, and an α-galactosyl group is bonded from the O-6 position of D-mannose. It has a weight average molecular weight measured by gel filtration by high performance liquid chromatography using pullulan as a molecular weight marker.
The chain length of the mannose straight chain of the galactomannan of the present invention is distributed 80% or more within the range of 30 units to 200 units.
The viscosity of a 5% aqueous solution of galactomannan of the present invention is 5 to 20 mPa · s when measured with a Low rotor at 5 ° C. and 60 rpm using a Brookfield viscometer.

本発明のガラクトマンナンの食物繊維含量は、ＡＯＡＣ ９８５．２９に記載の酵素重量法により測定したときに６５％以上である。
本発明のガラクトマンナンは、ガラクトマンナンを含有するマメ科植物種子の胚乳部分をヘミセルラーゼ製剤により酸性域で酵素的に加水分解することで得られた溶液の加水分解反応を停止させ、この溶液を遠心分離処理を行って未反応物を除去し、次いで精製処理、加熱殺菌処理及び冷却処理を行った後、中和処理を行うことによって得ることができる。 The dietary fiber content of the galactomannan of the present invention is 65% or more as measured by the enzyme gravimetric method described in AOAC 985.29.
The galactomannan of the present invention stops the hydrolysis reaction of the solution obtained by enzymatically hydrolyzing the endosperm portion of legume seeds containing galactomannan in the acidic region with a hemicellulase preparation. It can be obtained by carrying out a centrifugal separation treatment to remove unreacted substances, followed by a purification treatment, a heat sterilization treatment and a cooling treatment, followed by a neutralization treatment.

本発明のガラクトマンナンを含有するマメ科植物とは、グアー（Ｃｙａｍｏｐｓｉｓ ｔｅｔｒａｇｏｎｏｌｏｂｕｓ）、イナゴマメ（Ｃｅｒａｔｏｎｉａ ｓｉｌｉｑｕａ）、ケンタッキー・コーヒーマメ（Ｇｙｍｎｏｃｌａｄｕｓ ｄｉｏｉｃａ）、ムラサキウマゴヤシ（Ｍｅｄｉｃａｇｏ ｓａｔｉｖａ）、クローバ（Ｔｒｉｆｏｌｉｕｍ ｐｒａｔｅｎｓｅ）、ダイズサヤ（Ｇｌｙｃｉｎｅ ｈｉｓｐｉｄａ）、タラ（Ａｃｔｉｎｉｄｉａ ｃａｌｌｏｓａ ＬＩＮＤＬＥＹ）、セスバニア（Ｓｅｓｂａｎｉａ ｂｉｓｉｂｉｎｏｎｉａ）、カシア（Ｃａｓｓｉａ ｔｏｒａ Ｌｉｎｎ）およびフェヌグリーク（Ｔｒｉｇｏｎｅｌｌａ ｆｏｅｎｕｍ ｇｒａｅｃｕｍ Ｌ）が例示でき、資源の豊富さと味の観点からグアー（Ｃｙａｍｏｐｓｉｓ ｔｅｔｒａｇｏｎｏｌｏｂｕｓ）、フェヌグリーク（Ｔｒｉｇｏｎｅｌｌａ ｆｏｅｎｕｍ ｇｒａｅｃｕｍ Ｌ）及びイナゴマメ（Ｃｅｒａｔｏｎｉａ ｓｉｌｉｑｕａ）が好ましく、最も好ましくはグアー（Ｃｙａｍｏｐｓｉｓ ｔｅｔｒａｇｏｎｏｌｏｂｕｓ）である。   Leguminous plants containing the galactomannan of the present invention include guar (Cyamopsis tetragonolobus), locust bean (Ceratonia siliqua), Kentucky coffee bean (Gymnocladus dioica), and purple peas (Medica pea). Glycine hispida), cod (Actinida callosa LINDLEY), Sesbania (Sesbania bibinionia), Cassia (Cassia tora Linn) and fenugreek (Trigonella fonumum) s tetragonolobus, Fenugreek (Trigonella foenum graecum L) and carob bean (Ceratonia siliqua) are preferred, and most preferred are gua (Cyamopsis tetragonolobus).

本発明のガラクトマンナンを得るときに実施される加水分解反応で用いるヘミセルラーゼ製剤は、ガラクトマンナナーゼ、α−ガラクトシダーゼ及びβ−マンノシダーゼを含有し、それら酵素の比活性の割合が１〜１００：１：０〜０.５、もしくはガラクトマンナナーゼ、α−ガラクトシダーゼ、酸性プロテアーゼ及びβ−マンノシダーゼを含有し、それら酵素の比活性の割合が１〜１００：１：０〜０.１５：０〜０.５、もしくはガラクトマンナナーゼ、α−ガラクトシダーゼ、酸性プロテアーゼ及びβ−マンノシダーゼを含有し、それら酵素の比活性の割合が１〜１０：１：０〜０.０５：０〜０.５である。ここで、本発明で酵素として用いるβ−ガラクトマンナナーゼの比活性とは、β−ガラクトマンナナーゼがガラクトマンナンであるローカストビーンガムに３７℃、ｐＨ５．０で作用するとき、反応初期の１分間に１マイクロモルのマンノースに相当する還元力の増加をもたらす試料１ｇ中の酵素量のことを指す。β−ガラクトマンナナーゼの分子量は、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動後にクーマシーブルー染色（ＣＢＢ染色）した結果、２０ｋＤａ〜６０ｋＤａを示すことがよい。当該分子量のより好ましい範囲は３０ｋＤａ〜５０ｋＤａであり、最も好ましい範囲は３５ｋＤａ〜４５ｋＤａである。   The hemicellulase preparation used in the hydrolysis reaction carried out when obtaining the galactomannan of the present invention contains galactomannanase, α-galactosidase and β-mannosidase, and the ratio of specific activities of these enzymes is 1 to 100: 1: 0 to 0.5, or galactomannanase, α-galactosidase, acid protease and β-mannosidase, the ratio of specific activities of these enzymes being 1 to 100: 1: 0 to 0.15: 0 to 0.5, Alternatively, it contains galactomannanase, α-galactosidase, acid protease and β-mannosidase, and the ratio of the specific activities of these enzymes is 1 to 10: 1: 0 to 0.05: 0 to 0.5. Here, the specific activity of β-galactomannanase used as an enzyme in the present invention is 1 per minute at the beginning of the reaction when β-galactomannanase acts on locust bean gum, which is galactomannan, at 37 ° C. and pH 5.0. It refers to the amount of enzyme in 1 g of sample that causes an increase in reducing power corresponding to micromolar mannose. The molecular weight of β-galactomannanase is preferably 20 kDa to 60 kDa as a result of Coomassie blue staining (CBB staining) after SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The more preferable range of the molecular weight is 30 kDa to 50 kDa, and the most preferable range is 35 kDa to 45 kDa.

本発明で酵素として用いるα−ガラクトシダーゼの比活性とは、当該α−ガラクトシダーゼがｐ−ニトロフェニル−α−ガラクシドに３７℃、ｐＨ５.５で作用するとき、反応初期の１分間に１マイクロモルのｐ−ニトロフェニルを遊離する試料１ｇ中の酵素量のことを指す。
本発明で酵素として使用する酸性プロテアーゼの比活性とは、当該酸性プロテアーゼが乳製カゼインに３０℃、ｐＨ３.０で作用するとき、反応初期の１分間に１マイクログラムのチロシンに相当する非蛋白性のフォリン試液呈色物質の増加をもたらす試料１ｇ中の酵素量のことを指す。
本発明で酵素として使用するβ−マンノシダーゼの比活性とは、当該β−マンノシダーゼがｐ−ニトロフェニル−β−マンノシドに３７℃、ｐＨ５.５で作用するとき、反応初期の１分間に１マイクロモルのｐ−ニトロフェニルを遊離する試料１ｇ中の酵素量のことを指す。 The specific activity of α-galactosidase used as an enzyme in the present invention means that when the α-galactosidase acts on p-nitrophenyl-α-galacside at 37 ° C. and pH 5.5, 1 micromole per minute at the beginning of the reaction. It refers to the amount of enzyme in 1 g of sample that liberates p-nitrophenyl.
The specific activity of the acidic protease used as an enzyme in the present invention is a non-protein equivalent to 1 microgram of tyrosine in 1 minute of the initial reaction when the acidic protease acts on dairy casein at 30 ° C. and pH 3.0. It refers to the amount of enzyme in 1 g of a sample that causes an increase in the sex forin test solution color substance.
The specific activity of β-mannosidase used as an enzyme in the present invention is defined as 1 micromole per minute at the beginning of the reaction when the β-mannosidase acts on p-nitrophenyl-β-mannoside at 37 ° C. and pH 5.5. It refers to the amount of enzyme in 1 g of sample that liberates p-nitrophenyl.

本発明のガラクトマンナンを得るときに実施される加水分解反応で用いるヘミセルラーゼ製剤は、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ属細菌、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ属細菌、Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ属細菌、Ｖｉｂｒｉｏ属細菌、Ａｅｒｏｍｏｎａｓ属細菌、Ｂａｃｉｌｌｕｓ属細菌、Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ属細菌、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属カビ、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ属カビ及びＴｒｉｃｏｈｄｅｒｍａ属酵母の微生物群から選択される少なくとも１種に由来し、例えば、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ属細菌はＰ．ｐｕｒｐｕｒｏｇｅｎａｍ、Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ属細菌はＥ．ｃａｓｅｌｉｆｌａｖａｓ、Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ属細菌はＣ．ｔｅｒｔｉｕｍ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属カビはＡ．ｎｉｇｅｒ、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ属カビはＲ．ｎｉｖｅｕｓ、Ｔｒｉｃｏｈｄｅｒｍａ属酵母はＴ．ｒｅｅｓｅｉが、それぞれ例示できる。   The hemicellulase preparation used in the hydrolysis reaction carried out when obtaining the galactomannan of the present invention is a Penicillium bacterium, Streptomyces bacterium, Enterococcus bacterium, Vibrio genus bacteria, Aeromonas genus bacteria, Bacillus genus bacteria, Clostridium genus bacteria, Aspergillus is derived from at least one species selected from the group of microorganisms of the genus Aspergillus, Rhizopus and Trichohderma. purpurogenam, Enterococcus spp. caseliflavas, Clostridium spp. tertium, Aspergillus sp. niger, Rhizopus sp. niveus, Trichoderma yeasts are T. cerevisiae. reesei can be illustrated respectively.

本発明のガラクトマンナンを得るときに実施される加水分解反応における酸性域は、ｐＨ２.０〜ｐＨ６.０である。
本発明のガラクトマンナンを得るときに実施される加水分解反応における温度および反応時間は、５０℃〜８０℃で８時間〜２４時間、または６０℃〜８０℃で３時間〜１２時間である。
本発明のガラクトマンナンを得るときに実施される加水分解反応の停止は、特に限定されないが、８５℃以上で１５分間〜６０分間加熱が好ましい。 The acidic range in the hydrolysis reaction carried out when obtaining the galactomannan of the present invention is pH 2.0 to pH 6.0.
The temperature and reaction time in the hydrolysis reaction carried out when obtaining the galactomannan of the present invention is 50 to 80 ° C. for 8 to 24 hours, or 60 to 80 ° C. for 3 to 12 hours.
Although the stop of the hydrolysis reaction carried out when obtaining the galactomannan of the present invention is not particularly limited, heating at 85 ° C. or higher for 15 minutes to 60 minutes is preferable.

本発明のツバキ科植物成分とは、水、アルコール、酢酸エチル、石油エーテル等の有機溶媒による溶剤抽出、水蒸気蒸留、圧搾、油脂吸着、液化ガス抽出、超臨界抽出、乾留により得られる成分を指す。好ましくは抽出効率の観点から溶剤抽出、最も好ましくは水及び酢酸エチルによる溶剤抽出である。このようにして得られた抽出物は、必要に応じて吸着樹脂、濾過膜等により精製しても問題はない。例えば、茶の場合では酢酸エチルにより抽出して得られたポリフェノール化合物を用いることも可能である。緑茶の場合、生葉又は乾燥葉から（＋）−カテキン、（＋）−ガロカテキン、（−）−ガロカテキンガレート、（−）−エピカテキン、（−）−エピカテキンガレート、（−）−エピガロカテキン、（−）−エピガロカテキンガレートのポリフェノール化合物が抽出され、これらポリフェノール化合物の１種または２種以上の混合物として用いることができが、好ましくは（−）−ガロカテキンガレート、（−）−エピカテキンガレート、（−）−エピガロカテキンガレートの１種または２種以上の混合物として用いることができる。単独で用いる場合、（＋）−カテキン、（＋）−ガロカテキン、（−）−ガロカテキンガレート、（−）−エピカテキン、（−）−エピカテキンガレート、（−）−エピガロカテキン又は（−）−エピガロカテキンガレートが好ましく、さらに好ましくは、（−）−エピガロカテキンガレート、（−）−エピカテキンガレート又は（−）−ガロカテキンガレートであり、最も好ましくは、（−）−エピガロカテキンガレートである。   The camellia plant component of the present invention refers to a component obtained by solvent extraction with water, alcohol, ethyl acetate, petroleum ether or other organic solvent, steam distillation, pressing, oil adsorption, liquefied gas extraction, supercritical extraction, dry distillation. . Solvent extraction is preferable from the viewpoint of extraction efficiency, and solvent extraction with water and ethyl acetate is most preferable. The extract obtained in this manner can be purified with an adsorbent resin, a filtration membrane, or the like, if necessary. For example, in the case of tea, it is possible to use a polyphenol compound obtained by extraction with ethyl acetate. In the case of green tea, (+)-catechin, (+)-gallocatechin, (−)-gallocatechin gallate, (−)-epicatechin, (−)-epicatechin gallate, (−)-epigaro from fresh or dried leaves A polyphenol compound of catechin and (−)-epigallocatechin gallate is extracted and can be used as one or a mixture of two or more of these polyphenol compounds, preferably (−)-gallocatechin gallate, (−) — Epicatechin gallate and (-)-epigallocatechin gallate can be used as one kind or a mixture of two or more kinds. When used alone, (+)-catechin, (+)-gallocatechin, (-)-gallocatechin gallate, (-)-epicatechin, (-)-epicatechin gallate, (-)-epigallocatechin or (- ) -Epigallocatechin gallate is preferred, more preferably (-)-epigallocatechin gallate, (-)-epicatechin gallate or (-)-gallocatechin gallate, most preferably (-)-epigallocategalate. Catechin gallate.

実施例１
Ａ．ｎｉｇｅｒを所定期間培養し、加水分解反応に用いる酵素群をあらかじめ採取しておいた。このようにして採取したＡ． ｎｉｇｅｒ由来の酵素群は、β−ガラクトマンナナーゼ、α−ガラクトシダーゼ、酸性プロテアーゼ及びβ−マンノシダーゼの混合物であった。
次に、水９００部に塩酸を加えてｐＨを４.５に調整した後、その水に上記の酵素群０.２部とグアー豆（Ｃｙａｍｏｐｓｉｓ ｔｅｔｒａｇｏｎｏｌｏｂｕｓ）の胚乳１００部とを添加混合し、５５℃〜６５℃で２４時間酵素を作用させ、酵素的に加水分解した。
次に、反応液を９０℃，３０分間加熱することにより酵素を失活させ、加水分解反応を停止させた。 Example 1
A. Niger was cultured for a predetermined period, and an enzyme group used for the hydrolysis reaction was collected in advance. A. collected in this manner. The enzyme group derived from niger was a mixture of β-galactomannanase, α-galactosidase, acid protease and β-mannosidase.
Next, after adding hydrochloric acid to 900 parts of water to adjust the pH to 4.5, 0.2 parts of the above enzyme group and 100 parts of guar bean (Cyamopsis tetragonolobus) endosperm were added to and mixed with the water. The enzyme was allowed to act for 24 hours at a temperature between 65 ° C. and 65 ° C., and hydrolyzed enzymatically.
Next, the enzyme was deactivated by heating the reaction solution at 90 ° C. for 30 minutes to stop the hydrolysis reaction.

次に、加水分解物を含む反応液を遠心分離装置（石川島播磨重工業社製、商品名ＨＳ−５０Ｌ）で３０００ｒｐｍ，供給量６ｍ^３／ｈで遠心分離処理し、反応液を未反応物と清澄液とに分離させるとともに、清澄液のみを採取した。
次に、採取した溶液（清澄液）に珪藻土系濾過助剤及び活性炭を添加して６０分間攪拌した後、第１濾過手段である濾過装置（昭和製作所社製、商品名２０２Ｂ、濾過圧：２５０ｋｇ／ｃｍ^２）を用いて濾過する粗精製を行った。その結果、前記溶液中に含まれる不純物をある程度吸着除去した。さらに、粗精製された前記溶液に珪藻土系濾過助剤のみを添加して６０分間攪拌した後、第１濾過手段よりも目の細かい第２濾過手段である精密濾過装置（中央製作所社製、商品名ＦＳ−５０Ｂ、流量：３００Ｌ／ｈ）を用いて濾過する本精製を行った。その結果、前記溶液中に含まれる不純物をほぼ完全に吸着除去し、本発明のガラクトマンナンを含有する無色透明で臭いのない溶液を得た。 Next, the reaction solution containing the hydrolyzate is centrifuged at 3000 rpm with a supply rate of 6 m ³ / h using a centrifuge (trade name HS-50L, manufactured by Ishikawajima-Harima Heavy Industries Co., Ltd.), and the reaction solution is clarified with unreacted substances. Only the clear liquid was collected.
Next, after adding a diatomaceous earth filter aid and activated carbon to the collected solution (clarified liquid) and stirring for 60 minutes, a filtration device (trade name 202B, manufactured by Showa Seisakusho Co., Ltd., filtration pressure: 250 kg, which is the first filtration means) / Cm ² ), and crude purification was performed. As a result, the impurities contained in the solution were removed by adsorption to some extent. Furthermore, after adding only a diatomaceous earth filter aid to the roughly purified solution and stirring for 60 minutes, a microfiltration device (manufactured by Chuo Seisakusho Co., Ltd., which is a second filtration means finer than the first filtration means) This purification was carried out using No. FS-50B, flow rate: 300 L / h). As a result, the impurities contained in the solution were almost completely adsorbed and removed to obtain a colorless, transparent and odorless solution containing the galactomannan of the present invention.

次に、ＵＨＴ殺菌装置（日阪製作所社製、商品名ＦＸ−０５）を用いて、前記溶液をＵＨＴ殺菌処理しかつ直ちに強制冷却した。なお、この処理では、入り口温度を１４０℃に設定し、出口温度を４℃に設定し、殺菌時間を４秒に設定した。
次に、ｐＨが酸性域に保持されていた溶液をＮａＯＨで中和してｐＨ＝約７．０にした。
さらに、得られた中性の溶液を遠心式薄膜濃縮装置（アルファ・ラバル社製、商品名ＣＴ−６）を用いて固形分として２０％になるように所定時間減圧濃縮した。 Next, the solution was subjected to UHT sterilization using a UHT sterilizer (trade name FX-05, manufactured by Nisaka Manufacturing Co., Ltd.) and immediately forcedly cooled. In this process, the inlet temperature was set to 140 ° C., the outlet temperature was set to 4 ° C., and the sterilization time was set to 4 seconds.
Next, the solution whose pH was maintained in the acidic range was neutralized with NaOH to pH = about 7.0.
Further, the obtained neutral solution was concentrated under reduced pressure for a predetermined time using a centrifugal thin film concentration apparatus (trade name CT-6, manufactured by Alfa Laval Co., Ltd.) so that the solid content was 20%.

その後、噴霧乾燥装置（大川原化工機社製、商品名ＯＣ−３５）を用いて９０分間噴霧乾燥を行い、本発明のガラクトマンナンの白色粉末７０部を得た。
そして、得られた粉末状のガラクトマンナンをサンプルとして下記の測定を行った。具体的には、カラムにＧ３０００ＰＷ（東ソー株式会社製）を充填したものを固定相として用い、高速液体クロマトグラフィーを行った。このような測定の結果、マンナン主鎖の糖鎖の８０％以上はマンノースの重合度が３０〜４０単位の範囲内に包含されていた。なお、このとき糖鎖単位の標準試薬として、グルコース重合度が既知の直鎖デキストリン（グルコースの重合度：５０，１００，１５０）を用いた。
本実施例のガラクトマンナンの重量平均分子量、食物繊維含量、５％溶液の粘度を測定したところ、重量平均分子量が２０ｋＤａ、食物繊維含量が８２％、粘度が８ｍＰａ・ｓであった。
本実施例のガラクトマンナン０.４ｇにイソプロピルアルコール０.０８ｍｌを加えてよく湿らした後、厳しくかき混ぜながら水４ｍｌを加え、更に均一に分散するまで激しくかき混ぜ、粘度を測定した（均一分散後）。また、この液を沸騰した水浴上で約１０分間加熱した後に粘度を測定した（１０分加熱冷却後）。粘度計はＢ型粘度計を用い、ローター番号は Ｎｏ.１、測定温度は２５℃および粘度計の回転数は１２ｒｐｍとした。均一分散後の粘度は７.４ｍＰａ・ｓであり、１０分加熱冷却後粘度は７.４ｍＰａ・ｓであった。 Thereafter, spray drying was performed for 90 minutes using a spray drying apparatus (trade name OC-35, manufactured by Okawara Chemical Industries Co., Ltd.) to obtain 70 parts of white powder of galactomannan of the present invention.
Then, the following measurement was performed using the obtained powdery galactomannan as a sample. Specifically, high-performance liquid chromatography was performed using a column packed with G3000PW (manufactured by Tosoh Corporation) as a stationary phase. As a result of such measurement, 80% or more of the sugar chains of the mannan main chain were included in the range of 30 to 40 units of mannose polymerization. At this time, a linear dextrin having a known degree of glucose polymerization (degree of polymerization of glucose: 50, 100, 150) was used as a standard reagent for the sugar chain unit.
When the weight average molecular weight, dietary fiber content, and viscosity of a 5% solution of the galactomannan of this example were measured, the weight average molecular weight was 20 kDa, the dietary fiber content was 82%, and the viscosity was 8 mPa · s.
To 0.4 g of galactomannan of this example, 0.08 ml of isopropyl alcohol was added and moistened well, then 4 ml of water was added while stirring vigorously, and stirred vigorously until evenly dispersed, and the viscosity was measured (after uniform dispersion). The viscosity of the solution was measured after heating for about 10 minutes on a boiling water bath (after heating and cooling for 10 minutes). The viscometer used was a B-type viscometer, the rotor number was No. 1, the measurement temperature was 25 ° C., and the rotation speed of the viscometer was 12 rpm. The viscosity after uniform dispersion was 7.4 mPa · s, and the viscosity after heating and cooling for 10 minutes was 7.4 mPa · s.

１０分加熱冷却後の溶液３.５ｍｌに５％ホウ酸ナトリウム溶液０.７ｍｌを加え、混和して放置し、動的粘弾性の歪依存性測定に供した。尚、試験装置は、動的粘弾性物性計測装置ＡＲＥＳ（Ｔ．Ａインスツルメンツ株式会社製）を用いた。測定温度は２５℃、および測定周波数は１.０Ｈｚとした。その結果、図１に示したように、線形領域で貯蔵弾性率（Ｇ‘）＞損失弾性率（Ｇ’‘）かつ線形領域から非線形領域を示す測定曲線が得られた。   To 3.5 ml of the solution after heating and cooling for 10 minutes, 0.7 ml of a 5% sodium borate solution was added, mixed and allowed to stand, and subjected to strain dependence measurement of dynamic viscoelasticity. In addition, the dynamic viscoelastic property measuring device ARES (made by TA Instruments Co., Ltd.) was used for the test apparatus. The measurement temperature was 25 ° C., and the measurement frequency was 1.0 Hz. As a result, as shown in FIG. 1, a storage curve (G ′)> loss elastic modulus (G ″) in a linear region and a measurement curve indicating a non-linear region from the linear region was obtained.

実施例２
Ａ．ｎｉｇｅｒを所定期間培養し、加水分解反応に用いる酵素群をあらかじめ採取しておいた。このようにして採取したＡ．ｎｉｇｅｒ由来の酵素群は、β−ガラクトマンナナーゼ、α−ガラクトシダーゼ、酸性プロテアーゼ及びβ−マンノシダーゼの混合物であった。
次に、水９００部に塩酸を加えてｐＨを４.５に調整した後、その水に上記の酵素群０.１部とグアー豆（Ｃ．ｔｅｔｒａｇｏｎｏｌｏｂｕｓ）の胚乳１００部とを添加混合し、７０℃〜７５℃で８時間酵素を作用させた。この後、実施例１と同様の方法を実施し、本発明のガラクトマンナンの白色粉末７０部を得た。 Example 2
A. Niger was cultured for a predetermined period, and an enzyme group used for the hydrolysis reaction was collected in advance. A. collected in this manner. The enzyme group derived from niger was a mixture of β-galactomannanase, α-galactosidase, acid protease and β-mannosidase.
Next, hydrochloric acid was added to 900 parts of water to adjust the pH to 4.5, and 0.1 parts of the above enzyme group and 100 parts of guar bean (C. tetragonolobus) endosperm were added to and mixed with the water. The enzyme was allowed to act at 70 ° C to 75 ° C for 8 hours. Thereafter, the same method as in Example 1 was performed to obtain 70 parts of white powder of galactomannan of the present invention.

得られた粉末状のガラクトマンナンについて、実施例１と同様の測定及び評価を行った。その結果、マンナン主鎖の糖鎖の８０％以上は、マンノースの重合度が３０〜４０単位の範囲内に包含されていた。また、本実施例のガラクトマンナンの重量平均分子量は１６ｋＤａ、食物繊維含量は７６％、５％水溶液の粘度は５ｍＰａ・ｓ、であった。   About the obtained powdery galactomannan, the same measurement and evaluation as Example 1 were performed. As a result, 80% or more of the sugar chains of the mannan main chain were included in the range of 30 to 40 units of mannose polymerization. Further, the galactomannan of this example had a weight average molecular weight of 16 kDa, a dietary fiber content of 76%, and a 5% aqueous solution having a viscosity of 5 mPa · s.

本実施例のガラクトマンナン０.４ｇにイソプロピルアルコール０.０８ｍｌを加えてよく湿らした後、厳しくかき混ぜながら水４ｍｌを加え、更に均一に分散するまで激しくかき混ぜ、粘度を測定した（均一分散後）。また、この液を沸騰した水浴上で約１０分間加熱した後に粘度を測定した（１０分加熱冷却後）。粘度計はＢ型粘度計を用い、ローター番号は Ｎｏ.１、測定温度は２５℃および粘度計の回転数は１２ｒｐｍとした。均一分散後の粘度は４.９ｍＰａ・ｓであり、１０分加熱冷却後粘度は５.１ｍＰａ・ｓであった。   To 0.4 g of galactomannan of this example, 0.08 ml of isopropyl alcohol was added and moistened well, then 4 ml of water was added while stirring vigorously, and stirred vigorously until evenly dispersed, and the viscosity was measured (after uniform dispersion). The viscosity of the solution was measured after heating for about 10 minutes on a boiling water bath (after heating and cooling for 10 minutes). The viscometer used was a B-type viscometer, the rotor number was No. 1, the measurement temperature was 25 ° C., and the viscosity of the viscometer was 12 rpm. The viscosity after uniform dispersion was 4.9 mPa · s, and the viscosity after heating and cooling for 10 minutes was 5.1 mPa · s.

１０分加熱冷却後の溶液３.５ｍｌに５％ホウ酸ナトリウム溶液０.７ｍｌを加え、混和して放置し、動的粘弾性の歪依存性測定に供した。尚、試験装置は、動的粘弾性物性計測装置ＡＲＥＳ（Ｔ．Ａインスツルメンツ株式会社製）を用いた。測定温度は２５℃、および測定周波数は１.０Ｈｚとした。その結果、図２に示したように、線形領域で貯蔵弾性率（Ｇ‘）＞損失弾性率（Ｇ’‘）かつ線形領域から非線形領域を示す測定曲線が得られた。   To 3.5 ml of the solution after heating and cooling for 10 minutes, 0.7 ml of a 5% sodium borate solution was added, mixed and allowed to stand, and subjected to strain dependence measurement of dynamic viscoelasticity. In addition, the dynamic viscoelastic property measuring device ARES (made by TA Instruments Co., Ltd.) was used for the test apparatus. The measurement temperature was 25 ° C., and the measurement frequency was 1.0 Hz. As a result, as shown in FIG. 2, a storage curve (G ′)> loss elastic modulus (G ″) in the linear region and a measurement curve indicating the non-linear region from the linear region was obtained.

比較例１
Ａ．ｎｉｇｅｒを所定期間培養し、加水分解反応に用いる酵素群をあらかじめ採取しておいた。このようにして採取したＡ．ｎｉｇｅｒ由来の酵素群は、β−ガラクトマンナナーゼ、α−ガラクトシダーゼ、酸性プロテアーゼ及びβ−マンノシダーゼの混合物であった。
次に、水９００部に塩酸を加えてｐＨを４.５に調整した後、その水に上記の酵素群０.２部とグアー豆（Ｃ．ｔｅｔｒａｇｏｎｏｌｏｂｕｓ）の胚乳１００部とを添加混合し、５５℃〜６５℃で７２時間酵素を作用させ、酵素的に加水分解した。 Comparative Example 1
A. Niger was cultured for a predetermined period, and an enzyme group used for the hydrolysis reaction was collected in advance. A. collected in this manner. The enzyme group derived from niger was a mixture of β-galactomannanase, α-galactosidase, acid protease and β-mannosidase.
Next, hydrochloric acid was added to 900 parts of water to adjust the pH to 4.5, and then 0.2 parts of the enzyme group and 100 parts of guar beans (C. tetragonolobus) endosperm were added to and mixed with the water. The enzyme was allowed to act at 55 ° C to 65 ° C for 72 hours and hydrolyzed enzymatically.

次に、反応液を９０℃，３０分間加熱することにより酵素を失活させ、加水分解反応を停止させた。
次に、加水分解物を含む反応液を遠心分離装置（石川島播磨重工業社製、商品名ＨＳ−５０Ｌ）で３０００ｒｐｍ，供給量６ｍ^３／ｈで遠心分離処理し、反応液を未反応物と清澄液とに分離させるとともに、清澄液のみを採取した。
次に、採取した溶液（清澄液）に珪藻土系濾過助剤及び活性炭を添加して６０分間攪拌した後、第１濾過手段である濾過装置（昭和製作所社製、商品名２０２Ｂ、濾過圧：２５０ｋｇ／ｃｍ^２）を用いて濾過する粗精製を行った。その結果、前記溶液中に含まれる不純物をある程度吸着除去した。さらに、粗精製された前記溶液に珪藻土系濾過助剤のみを添加して６０分間攪拌した後、第１濾過手段よりも目の細かい第２濾過手段である精密濾過装置（中央製作所社製、商品名ＦＳ−５０Ｂ、流量：３００Ｌ／ｈ）を用いて濾過した。その結果、前記溶液中に含まれる不純物をほぼ完全に吸着除去した。 Next, the enzyme was deactivated by heating the reaction solution at 90 ° C. for 30 minutes to stop the hydrolysis reaction.
Next, the reaction solution containing the hydrolyzate is centrifuged at 3000 rpm with a supply rate of 6 m ³ / h using a centrifuge (trade name HS-50L, manufactured by Ishikawajima-Harima Heavy Industries Co., Ltd.), and the reaction solution is clarified with unreacted substances. Only the clear liquid was collected.
Next, after adding a diatomaceous earth filter aid and activated carbon to the collected solution (clarified liquid) and stirring for 60 minutes, a filtration device (trade name 202B, manufactured by Showa Seisakusho Co., Ltd., filtration pressure: 250 kg, which is the first filtration means) / Cm ² ), and crude purification was performed. As a result, the impurities contained in the solution were removed by adsorption to some extent. Furthermore, after adding only a diatomaceous earth filter aid to the roughly purified solution and stirring for 60 minutes, a microfiltration device (manufactured by Chuo Seisakusho Co., Ltd., which is a second filtration means finer than the first filtration means) No. FS-50B, flow rate: 300 L / h). As a result, the impurities contained in the solution were almost completely adsorbed and removed.

次に、ＵＨＴ殺菌装置（日阪製作所社製、商品名ＦＸ−０５）を用いて、前記溶液をＵＨＴ殺菌処理しかつ直ちに強制冷却した。なお、この処理では、入り口温度を１４０℃に設定し、出口温度を４℃に設定し、殺菌時間を４秒に設定した。
次に、ｐＨが酸性域に保持されていた溶液をＮａＯＨで中和してｐＨ＝約７.０にした。
さらに、得られた中性の溶液を遠心式薄膜濃縮装置（アルファ・ラバル社製、商品名ＣＴ−６）を用いて固形分として２０％になるように所定時間減圧濃縮した。濃縮液を陰イオンカラムクロマトグラフィーおよび陽イオンカラムクロマトグラフィー処理し、除タンパク処理した。
その後、噴霧乾燥装置（大川原化工機社製、商品名ＯＣ−３５）を用いて９０分間噴霧乾燥を行い、比較品の白色粉末６５部を得た。 Next, the solution was subjected to UHT sterilization using a UHT sterilizer (trade name FX-05, manufactured by Nisaka Manufacturing Co., Ltd.) and immediately forcedly cooled. In this process, the inlet temperature was set to 140 ° C., the outlet temperature was set to 4 ° C., and the sterilization time was set to 4 seconds.
Next, the solution whose pH was maintained in the acidic range was neutralized with NaOH to pH = about 7.0.
Further, the obtained neutral solution was concentrated under reduced pressure for a predetermined time using a centrifugal thin film concentration apparatus (trade name CT-6, manufactured by Alfa Laval Co., Ltd.) so that the solid content was 20%. The concentrate was subjected to anion column chromatography and cation column chromatography to remove proteins.
Thereafter, spray drying was performed for 90 minutes using a spray drying apparatus (trade name OC-35, manufactured by Okawara Chemical Industries Co., Ltd.) to obtain 65 parts of a white powder as a comparative product.

そして、得られた粉末状のガラクトマンナンをサンプルとして下記の測定を行った。具体的には、カラムにＧ３０００ＰＷ（東ソー株式会社製）を充填したものを固定相として用い、高速液体クロマトグラフィーを行った。このような測定の結果、マンナン主鎖の糖鎖の８０％以上はマンノースの重合度が３０〜４０単位の範囲内に包含されていなかった。なお、このとき糖鎖単位の標準試薬として、グルコース重合度が既知の直鎖デキストリン（グルコースの重合度：５０，１００，１５０）を用いた。   Then, the following measurement was performed using the obtained powdery galactomannan as a sample. Specifically, high-performance liquid chromatography was performed using a column packed with G3000PW (manufactured by Tosoh Corporation) as a stationary phase. As a result of such measurement, 80% or more of the sugar chains of the mannan main chain were not included within the range of 30 to 40 units of mannose polymerization. At this time, a linear dextrin having a known degree of glucose polymerization (degree of polymerization of glucose: 50, 100, 150) was used as a standard reagent for the sugar chain unit.

本比較例のガラクトマンナンの重量平均分子量、食物繊維含量、５％溶液の粘度を測定したところ、重量平均分子量が１.５ｋＤａ、食物繊維含量が５４％、粘度が３ｍＰａ・ｓであった。   When the weight average molecular weight, dietary fiber content, and viscosity of a 5% solution of the galactomannan of this comparative example were measured, the weight average molecular weight was 1.5 kDa, the dietary fiber content was 54%, and the viscosity was 3 mPa · s.

本比較例のガラクトマンナン０.４ｇにイソプロピルアルコール０.０８ｍｌを加えてよく湿らした後、厳しくかき混ぜながら水４ｍｌを加え、更に均一に分散するまで激しくかき混ぜ、粘度を測定した（均一分散後）。また、この液を沸騰した水浴上で約１０分間加熱した後に粘度を測定した（１０分加熱冷却後）。粘度計はＢ型粘度計を用い、ローター番号は Ｎｏ.１、測定温度は２５℃および粘度計の回転数は１２ｒｐｍとした。均一分散後の粘度は２.５ｍＰａ・ｓであり、１０分加熱冷却後粘度は２.３ｍＰａ・ｓであった。
１０分加熱冷却後の溶液３.５ｍｌに５％ホウ酸ナトリウム溶液０.７ｍｌを加え、混和して放置し、動的粘弾性の歪依存性測定を供しようとしたところ、この溶液はゲル状態を呈しないために、測定することは不可能であった。このことより本発明のガラクトマンナンとは異なる性質のものであった。 0.04 ml of isopropyl alcohol was added to 0.4 g of the galactomannan of this comparative example and moistened well. Then, 4 ml of water was added while stirring vigorously, and stirred vigorously until evenly dispersed, and the viscosity was measured (after uniform dispersion). The viscosity of the solution was measured after heating for about 10 minutes on a boiling water bath (after heating and cooling for 10 minutes). The viscometer used was a B-type viscometer, the rotor number was No. 1, the measurement temperature was 25 ° C., and the rotation speed of the viscometer was 12 rpm. The viscosity after uniform dispersion was 2.5 mPa · s, and the viscosity after heating and cooling for 10 minutes was 2.3 mPa · s.
When 0.7 ml of 5% sodium borate solution was added to 3.5 ml of the solution after heating and cooling for 10 minutes, the mixture was allowed to stand and subjected to strain dependence measurement of dynamic viscoelasticity. It was impossible to measure because From this, it was a thing different from the galactomannan of this invention.

比較例２
Ａ．ｎｉｇｅｒを所定期間培養し、加水分解反応に用いる酵素群をあらかじめ採取しておいた。このようにして採取したＡ．ｎｉｇｅｒ由来の酵素群は、β−ガラクトマンナナーゼ、α−ガラクトシダーゼ、酸性プロテアーゼ及びβ−マンノシダーゼの混合物であった。
次に、水９００部に塩酸を加えてｐＨを４.５に調整した後、その水に上記の酵素群０.２部とグアー豆（Ｃ．ｔｅｔｒａｇｏｎｏｌｏｂｕｓ）の胚乳１００部とを添加混合し、５５℃〜６５℃で３時間酵素を作用させ、酵素的に加水分解した。 Comparative Example 2
A. Niger was cultured for a predetermined period, and an enzyme group used for the hydrolysis reaction was collected in advance. A. collected in this manner. The enzyme group derived from niger was a mixture of β-galactomannanase, α-galactosidase, acid protease and β-mannosidase.
Next, hydrochloric acid was added to 900 parts of water to adjust the pH to 4.5, and then 0.2 parts of the enzyme group and 100 parts of guar beans (C. tetragonolobus) endosperm were added to and mixed with the water. The enzyme was allowed to act at 55 ° C. to 65 ° C. for 3 hours to hydrolyze enzymatically.

次に、反応液を９０℃，３０分間加熱することにより酵素を失活させ、加水分解反応を停止させた。
次に、加水分解物を含む反応液を遠心分離装置（石川島播磨重工業社製、商品名ＨＳ−５０Ｌ）で３０００ｒｐｍ，供給量６ｍ^３／ｈで遠心分離処理し、反応液を未反応物と清澄液とに分離させるとともに、清澄液のみを採取した。 Next, the enzyme was deactivated by heating the reaction solution at 90 ° C. for 30 minutes to stop the hydrolysis reaction.
Next, the reaction solution containing the hydrolyzate is centrifuged at 3000 rpm with a supply rate of 6 m ³ / h using a centrifuge (trade name HS-50L, manufactured by Ishikawajima-Harima Heavy Industries Co., Ltd.), and the reaction solution is clarified with unreacted substances. Only the clear liquid was collected.

次に、採取した溶液（清澄液）に珪藻土系濾過助剤及び活性炭を添加して６０分間攪拌した後、第１濾過手段である濾過装置（昭和製作所社製、商品名２０２Ｂ、濾過圧：２５０ｋｇ／ｃｍ^２）を用いて濾過する粗精製を行った。その結果、前記溶液中に含まれる不純物をある程度吸着除去した。さらに、粗精製された前記溶液に珪藻土系濾過助剤のみを添加して６０分間攪拌した後、第１濾過手段よりも目の細かい第２濾過手段である精密濾過装置（中央製作所社製、商品名ＦＳ−５０Ｂ、流量：３００Ｌ／ｈ）を用いて濾過した。その結果、前記溶液中に含まれる不純物をほぼ完全に吸着除去した。 Next, after adding a diatomaceous earth filter aid and activated carbon to the collected solution (clarified liquid) and stirring for 60 minutes, a filtration device (trade name 202B, manufactured by Showa Seisakusho Co., Ltd., filtration pressure: 250 kg, which is the first filtration means) / Cm ² ), and crude purification was performed. As a result, the impurities contained in the solution were removed by adsorption to some extent. Furthermore, after adding only a diatomaceous earth filter aid to the roughly purified solution and stirring for 60 minutes, a microfiltration device (manufactured by Chuo Seisakusho Co., Ltd., which is a second filtration means finer than the first filtration means) No. FS-50B, flow rate: 300 L / h). As a result, the impurities contained in the solution were almost completely adsorbed and removed.

次に、ＵＨＴ殺菌装置（日阪製作所社製、商品名ＦＸ−０５）を用いて、前記溶液をＵＨＴ殺菌処理しかつ直ちに強制冷却した。なお、この処理では、入り口温度を１４０℃に設定し、出口温度を４℃に設定し、殺菌時間を４秒に設定した。
次に、ｐＨが酸性域に保持されていた溶液をＮａＯＨで中和してｐＨ＝約７.０にした。
さらに、得られた中性の溶液を遠心式薄膜濃縮装置（アルファ・ラバル社製、商品名ＣＴ−６）を用いて固形分として２０％になるように所定時間減圧濃縮した。濃縮液を陰イオンカラムクロマトグラフィーおよび陽イオンカラムクロマトグラフィー処理し、除タンパク処理した。 Next, the solution was subjected to UHT sterilization using a UHT sterilizer (trade name FX-05, manufactured by Nisaka Manufacturing Co., Ltd.) and immediately forcedly cooled. In this process, the inlet temperature was set to 140 ° C., the outlet temperature was set to 4 ° C., and the sterilization time was set to 4 seconds.
Next, the solution whose pH was maintained in the acidic range was neutralized with NaOH to pH = about 7.0.
Further, the obtained neutral solution was concentrated under reduced pressure for a predetermined time using a centrifugal thin film concentration apparatus (trade name CT-6, manufactured by Alfa Laval Co., Ltd.) so that the solid content was 20%. The concentrate was subjected to anion column chromatography and cation column chromatography to remove proteins.

その後、噴霧乾燥装置（大川原化工機社製、商品名ＯＣ−３５）を用いて９０分間噴霧乾燥を行い、比較品の白色粉末３２部を得た。
そして、得られた粉末状のガラクトマンナンをサンプルとして下記の測定を行った。具体的には、カラムにＧ３０００ＰＷ（東ソー株式会社製）を充填したものを固定相として用い、高速液体クロマトグラフィーを行った。このような測定の結果、マンナン主鎖の糖鎖の８０％以上はマンノースの重合度が３０〜４０単位の範囲内に包含されていなかった。なお、このとき糖鎖単位の標準試薬として、グルコース重合度が既知の直鎖デキストリン（グルコースの重合度：５０，１００，１５０）を用いた。
本比較例のガラクトマンナンの重量平均分子量、食物繊維含量及び５％溶液の粘度を測定したところ、重量平均分子量が８３ｋＤａ、食物繊維含量が８２％、粘度が１５０ｍＰａ・ｓであった。
本比較例のガラクトマンナン０.４ｇにイソプロピルアルコール０.０８ｍｌを加えてよく湿らした後、厳しくかき混ぜながら水４ｍｌを加え、更に均一に分散するまで激しくかき混ぜ、粘度を測定しようとしたが、この溶液は高粘度を呈し、この条件では粘度測定が不可能であった。よって、以後の測定も実施不可能であった。このことより本発明のガラクトマンナンとは異なる性質のものであった。 Thereafter, spray drying was performed for 90 minutes using a spray drying apparatus (trade name OC-35, manufactured by Okawara Chemical Industries Co., Ltd.) to obtain 32 parts of a comparative white powder.
Then, the following measurement was performed using the obtained powdery galactomannan as a sample. Specifically, high-performance liquid chromatography was performed using a column packed with G3000PW (manufactured by Tosoh Corporation) as a stationary phase. As a result of such measurement, 80% or more of the sugar chains of the mannan main chain were not included within the range of 30 to 40 units of mannose polymerization. At this time, a linear dextrin having a known degree of glucose polymerization (degree of polymerization of glucose: 50, 100, 150) was used as a standard reagent for the sugar chain unit.
When the weight average molecular weight, dietary fiber content, and viscosity of a 5% solution of the galactomannan of this comparative example were measured, the weight average molecular weight was 83 kDa, the dietary fiber content was 82%, and the viscosity was 150 mPa · s.
After adding 0.08 ml of isopropyl alcohol to 0.4 g of galactomannan of this comparative example and moistening well, 4 ml of water was added while stirring vigorously, and the mixture was further vigorously stirred until evenly dispersed to measure the viscosity. Exhibited a high viscosity, and viscosity measurement was impossible under these conditions. Therefore, subsequent measurements could not be performed. From this, it was a thing different from the galactomannan of this invention.

実施例３
プレバイオティクスとして実施例１で調製したガラクトマンナン（Ａ）１０質量部およびプロバイオティクスとして、１.０×１０^８個／ｇのＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ粉末１質量部を混合し、シンバイオティクスＬＡＣ−１（ＳＬＡＣ−１）を調製した。
同様に、Ａとプロバイオティクスとして、１×１０^８個／ｇのＬ．ｇａｓｓｅｒｉ（２）、Ｌ．ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ（３）、Ｌ．ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ（４）、Ｌ．ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ（５）、Ｌ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ（６）、Ｌ．ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ（７）、Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ（８）、Ｌ．ｃａｓｅｉ（９）、Ｌ．ｐｌａｎｔａｒｕｍ（１０）、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ（１１）、Ｌ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ（１２）、Ｌ．ｓａｋｅ（１３）、Ｌ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ（１４）、Ｌ．ｃｅｌｌｏｂｉｏｓｕｓ（１５）およびＬ．ｂｒｅｖｉｓ（１６）を用いて、それぞれシンバイオティクスＬＡＣ−２〜１６（ＳＬＡＣ−２〜１６）を調製した。 Example 3
Prebiotics as galactomannan prepared in Example 1 (A) 10 parts by weight and as probiotics, mixed Lactobacillus acidophilus powder 1 part by weight of 1.0 × 10 ⁸ cells / g, synbiotic LAC-1 ( SLAC-1) was prepared.
Similarly, as A and probiotic, 1 × 10 ⁸ cells / g L.I. gasseri (2), L.M. johnsonii (3), L.M. delbrueckii (4), L .; delbrueckii subsp. bulgaricus (5), L. et al. bulgaricus (6), L. et al. helveticus (7), L.H. rhamnosus (8), L. et al. casei (9), L.C. plantarum (10), L. et al. reuteri (11), L.L. salivarius (12), L.M. sake (13), L.M. salivarius (14), L. et al. cellobiosus (15) and L. Synbiotics LAC-2-16 (SLAC-2-16) were prepared using brevis (16), respectively.

比較例３
比較プレバイオティクスとして比較例１で調製したガラクトマンナン（ＣＡ）１０質量部およびプロバイオティクスとして、１.０×１０^８個／ｇのＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ粉末１質量部を混合し、比較シンバイオティクス−１（ＣＳＬＡＣ−１）を調製した。
同様に、Ａとプロバイオティクスとして、１×１０^８個／ｇのＬ． ｇａｓｓｅｒｉ（２）、Ｌ．ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ（３）、Ｌ．ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ（４）、Ｌ．ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ（５）、Ｌ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ（６）、Ｌ．ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ（７）、Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ（８）、Ｌ．ｃａｓｅｉ（９）、Ｌ．ｐｌａｎｔａｒｕｍ（１０）、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ（１１）、Ｌ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ（１２）、Ｌ．ｓａｋｅ（１３）、Ｌ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ（１４）、Ｌ．ｃｅｌｌｏｂｉｏｓｕｓ（１５）およびＬ．ｂｒｅｖｉｓ（１６）を用いて、それぞれ比較シンバイオティクスＬＡＣ−２〜１６（ＣＳＬＡＣ−２〜１６）を調製した。 Comparative Example 3
10 parts by mass of galactomannan (CA) prepared in Comparative Example 1 as a comparative prebiotic and 1 part by mass of 1.0 × 10 ⁸ pieces / g Lactobacillus acidophilus powder as a probiotic were mixed, and Comparative Synbiotic-1 (CSLAC-1) was prepared.
Similarly, as A and probiotic, 1 × 10 ⁸ cells / g L.I. gasseri (2), L.M. johnsonii (3), L.M. delbrueckii (4), L .; delbrueckii subsp. bulgaricus (5), L. et al. bulgaricus (6), L. et al. helveticus (7), L.H. rhamnosus (8), L. et al. casei (9), L.C. plantarum (10), L. et al. reuteri (11), L.L. salivarius (12), L.M. sake (13), L.M. salivarius (14), L. et al. cellobiosus (15) and L. Brevis (16) was used to prepare comparative synbiotics LAC-2-16 (CSLAC-2-16), respectively.

試験例１
男性４名（平均年齢４３±５才）より新鮮糞便１５０ｇずつを集めた。これらの糞便を一つの３０００ｍＬの三角フラスコに注入した。４倍重量のリン酸緩衝液（ｐＨ７.０）を添加し、嫌気的に均一に懸濁した。試験管に９.５ｍＬずつ嫌気的に分注した後に、実施例３で調製したＳＬＡＣ−１〜１６、および比較例３で調製したＣＳＬＡＣ−１〜１６を、それぞれの試験管に０.５ｇずつ添加した。各試験管を３７℃で２４時間嫌気的に培養した。培養後に培養液をろ過し、得られたろ液中の酢酸、プロピオン酸及び酪酸を定量した。定量には、イオン排除高速液体クロマトグラフィー（Ｗａｔｅｒｓ 製、以下ＨＰＬＣ）を用いた。前処理およびＨＰＬＣの条件は、Ａｎｉｍ．Ｓｃｉ．Ｔｅｃｈｎｏｌ．６９：５７１−５７５（１９９８）に準拠した。
その結果を表１に示した。 Test example 1
150 g of fresh stool was collected from 4 males (average age 43 ± 5 years). These feces were injected into a 3000 mL Erlenmeyer flask. A 4-fold weight phosphate buffer (pH 7.0) was added and suspended uniformly anaerobically. After anaerobically dispensing 9.5 mL into each test tube, 0.5 g each of SLAC-1 to 16 prepared in Example 3 and CSLAC-1 to 16 prepared in Comparative Example 3 were added to each test tube. Added. Each tube was anaerobically cultured at 37 ° C. for 24 hours. After the cultivation, the culture solution was filtered, and acetic acid, propionic acid and butyric acid in the obtained filtrate were quantified. For quantification, ion-exclusion high performance liquid chromatography (manufactured by Waters, hereinafter HPLC) was used. Pretreatment and HPLC conditions are described in Anim. Sci. Technol. 69: 571-575 (1998).
The results are shown in Table 1.

表１に示したように、比較例３で調製した比較シンパイオティクスと比較すると、実施例３で調製したシンバイオティクスは、糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 1, when compared with the comparative sympiotics prepared in Comparative Example 3, the symbiotic prepared in Example 3 increased the production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment. Was shown to be in place.

実施例４
実施例３と同様に、プレバイオティクスとして実施例２で調製したガラクトマンナン（Ｂ）１００質量部およびプロバイオティクスとして、１.２×１０^８個／ｇのＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ（１）、Ｓ．ｓａｎｇｕｉｓ（２）、Ｓ．ｍｉｔｉｓ（３）、Ｓ．ｐｓｅｕｄｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ（４）、Ｓ．ｐａｓｔｅｕｒｉ（５）、Ｓ．ｐａｒａｓａｎｇｕｉｎｉｓ（６）、Ｓ．ｐａｒａｓａｎｇｕｉｎｉｓ（７）、Ｓ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ（８）、Ｓ．ｖｅｓｔｉｂｕｌａｒｉｓ（９）、Ｓ．ｐａｓｔｅｕｒｉ（１０）、Ｓ．ｏｒａｌｉｓ（１１）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＳ−１〜１１（ＳＳ−１〜１１）を調製した。 Example 4
As in Example 3, 100 parts by mass of galactomannan (B) prepared in Example 2 as prebiotics and 1.2 × 10 ⁸ pieces / g of Streptococcus thermophilus (1), S. sanguis (2), S. et al. mitis (3), S.M. pseudoneumoniae (4), S. p. pasturi (5), S.P. parasanguinis (6), S. et al. parasanguinis (7), S. et al. salivarius (8), S. et al. vestibularis (9), S.V. pasturi (10), S.P. Synbiotics S-1 to 11 (SS-1 to 11) were prepared from 1 part by weight of oralis (11).

比較例４
実施例３と同様に、比較プレバイオティクスとして比較例２で調製したガラクトマンナン（ＣＢ）１００質量部およびプロバイオティクスとして、１.２×１０^８個／ｇのＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ（１）、Ｓ．ｓａｎｇｕｉｓ（２）、Ｓ．ｍｉｔｉｓ（３）、Ｓ．ｐｓｅｕｄｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ（４）、Ｓ．ｐａｓｔｅｕｒｉ（５）、Ｓ．ｐａｒａｓａｎｇｕｉｎｉｓ（６）、Ｓ．ｐａｒａｓａｎｇｕｉｎｉｓ（７）、Ｓ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ（８）、Ｓ．ｖｅｓｔｉｂｕｌａｒｉｓ（９）、Ｓ．ｐａｓｔｅｕｒｉ（１０）、Ｓ．ｏｒａｌｉｓ（１１）１質量部より、それぞれ比較シンバイオティクスＳ−１〜１１（ＣＳＳ−１〜１１）を調製した。 Comparative Example 4
As in Example 3, 100 parts by mass of galactomannan (CB) prepared in Comparative Example 2 as a comparative prebiotic and 1.2 × 10 ⁸ pieces / g of Streptococcus thermophilus (1), S. sanguis (2), S. et al. mitis (3), S.M. pseudoneumoniae (4), S. p. pasturi (5), S.P. parasanguinis (6), S. et al. parasanguinis (7), S. et al. salivarius (8), S. et al. vestibularis (9), S.V. pasturi (10), S.P. Comparative Symbiotics S-1 to 11 (CSS-1 to 11) were prepared from 1 part by weight of olialis (11).

試験例２
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施例４で調製したＳＳ−１〜１１および比較例４で調製したＣＳＳ−１〜１１で行った。
その結果を表２に示した。 Test example 2
Similar to Test Example 1, SS-1 to 11 prepared in Example 4 and CSS-1 prepared in Comparative Example 4 were used in the same test using fresh stool of four men (average age 43 ± 5 years). 11 was done.
The results are shown in Table 2.

表２に示したように、比較例４で調製した比較シンパイオティクスと比較すると、実施例４で調製したシンバイオティクスは、糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 2, when compared with the comparative symbiotic prepared in Comparative Example 4, the symbiotic prepared in Example 4 increased production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment. Was shown to be in place.

実施例５
実施例３と同様に、プレバイオティクスとして実施例１で調製したガラクトマンナン（Ａ）２００質量部およびプロバイオティクスとして、１.５×１０^７個／ｇのＥｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ ｍａｌｏｄｏｒａｔｕｓ（１）、Ｅ． ｍａｌｏｄｏｒａｔｕｓ（２）、Ｅ．ｆａｃｉａｌｉｓ（３）およびＥ．ｆａｃｅｉｕｍ（４）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＥ−１〜１１（ＳＥ−１〜４）を調製した。 Example 5
In the same manner as in Example 3, 200 parts by mass of galactomannan (A) prepared in Example 1 as prebiotics and 1.5 × 10 ⁷ pieces / g of Enterococcus malodoratus (1), E. coli as probiotics. malodoratus (2), E.M. facialis (3) and E. coli. Synbiotics E-1 to 11 (SE-1 to 4) were prepared from 1 part by mass of faceium (4).

比較例５
実施例３と同様に、比較プレバイオティクスとして比較例１で調製したガラクトマンナン（ＣＡ）２００質量部およびプロバイオティクスとして、１.５×１０^７個／ｇのＥｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ ｍａｌｏｄｏｒａｔｕｓ（１）、Ｅ．ｍａｌｏｄｏｒａｔｕｓ（２）、Ｅ．ｆａｃｉａｌｉｓ（３）およびＥ．ｆａｃｅｉｕｍ（４）１質量部より、それぞれ比較シンバイオティクスＥ−１〜１１（ＣＳＥ−１〜４）を調製した。 Comparative Example 5
In the same manner as in Example 3, 200 parts by mass of galactomannan (CA) prepared in Comparative Example 1 as a comparative prebiotic and 1.5 × 10 ⁷ Enterococcus malodoratus (1), E. coli as probiotics. malodoratus (2), E.M. facialis (3) and E. coli. Comparative Symbiotics E-1 to 11 (CSE-1 to 4) were prepared from 1 part by mass of faceium (4).

試験例３
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を、実施例５で調製したＳＥ−１〜４および比較例５で調製したＣＳＥ−１〜４で行った。
その結果を表３に示した。 Test example 3
Similar to Test Example 1, similar tests using fresh stool of 4 males (average age 43 ± 5 years old) were prepared as SE-1 to 4 prepared in Example 5 and CSE-1 prepared in Comparative Example 5 Performed at ~ 4.
The results are shown in Table 3.

表３に示したように、比較例５で調製した比較シンパイオティクスと比較して、実施例５で調製したシンバイオティクスは糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 3, in comparison with the comparative sympiotics prepared in Comparative Example 5, the symbiotic prepared in Example 5 increased the production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment Was shown to be in place.

実施例６
実施例３と同様に、プレバイオティクスとして実施例２で調製したガラクトマンナン（Ｂ）１質量部およびプロバイオティクスとして、１.１×１０^８個／ｇのＬａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ（１）およびＬ．ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ．ｃｒｅｍｏｒｉｓ（２）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＬＣ−１および２（ＳＬＣ−１および２）を調製した。 Example 6
As in Example 3, 1 part by mass of galactomannan (B) prepared in Example 2 as prebiotics and 1.1 × 10 ⁸ pieces / g of Lactococcus lactis (1) and L. lactis subsp. Synbiotics LC-1 and 2 (SLC-1 and 2) were prepared from 1 part by mass of cremoris (2), respectively.

比較例６
実施例３と同様に、比較プレバイオティクスとして比較例２で調製したガラクトマンナン（ＣＢ）１質量部およびプロバイオティクスとして、１.１×１０^８個／ｇのＬａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ（１）およびＬ．ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ．ｃｒｅｍｏｒｉｓ（２）１質量部より、それぞれ比較シンバイオティクスＬＣ−１および２（ＣＳＬＣ−１および２）を調製した。 Comparative Example 6
As in Example 3, 1 part by mass of galactomannan (CB) prepared in Comparative Example 2 as a comparative prebiotic and 1.1 × 10 ⁸ pieces / g of Lactococcus lactis (1) and L. lactis subsp. Comparative Symbiotics LC-1 and 2 (CSLC-1 and 2) were prepared from 1 part by mass of cremoris (2), respectively.

試験例４
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施例６で調製したＳＬＣ−１および２と比較例６で調製したＣＳＬＣ−１および２で行った。
その結果を表４に示した。 Test example 4
Similar to Test Example 1, SLC-1 and 2 prepared in Example 6 and CSLC-1 prepared in Comparative Example 6 and the same test using fresh stool of 4 males (average age 43 ± 5 years) and 2 performed.
The results are shown in Table 4.

表４に示したように、比較例６で調製した比較シンパイオティクスと比較すると、実施例６で調製したシンバイオティクスは、糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 4, when compared with the comparative sympiotics prepared in Comparative Example 6, the symbiotics prepared in Example 6 increased production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment Was shown to be in place.

実施例７
実施例３と同様に、プレバイオティクスとして実施例１で調製したガラクトマンナン（Ａ）５００質量部およびプロバイオティクスとして、１.４×１０^８個／ｇのＰｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｄａｍｎｏｓｕｓ（１）およびＰ．ａｃｉｄｉｌａｃｔｉｃｉ（２）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＰ−１および２（ＳＰ−１および２）を調製した。 Example 7
In the same manner as in Example 3, 500 parts by mass of galactomannan (A) prepared in Example 1 as prebiotics and 1.4 × 10 ⁸ pieces / g of Pediococcus damnosus (1) Synbiotics P-1 and 2 (SP-1 and 2) were prepared from 1 part by mass of acidilactici (2), respectively.

比較例７
実施例３と同様に比較プレバイオティクスとして比較例１で調製したガラクトマンナン（ＣＡ）５００質量部およびプロバイオティクスとして、１.４×１０^８個／ｇのＰｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｄａｍｎｏｓｕｓ（１）およびＰ．ａｃｉｄｉｌａｃｔｉｃｉ（２）１質量部より、それぞれ比較シンバイオティクスＰ−１および２（ＣＳＰ−１および２）を調製した。 Comparative Example 7
In the same manner as in Example 3, 500 parts by mass of galactomannan (CA) prepared in Comparative Example 1 as a comparative prebiotic and 1.4 × 10 ⁸ pieces / g of Pediococcus damnosus (1) and P. Comparative synbiotics P-1 and 2 (CSP-1 and 2) were prepared from 1 part by mass of acidilactici (2), respectively.

試験例５
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施例７で調製したＳＰ−１および２と比較例７で調製したＣＳＰ−１および２で行った。
その結果を表５に示した。 Test Example 5
Similar to Test Example 1, SP-1 and 2 prepared in Example 7 and CSP-1 prepared in Comparative Example 7 and the same test using fresh stool of four men (average age 43 ± 5 years) and 2 performed.
The results are shown in Table 5.

表５に示したように、比較例６で調製した比較シンパイオティクスと比較して、実施例７で調製したシンバイオティクスは糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 5, as compared with the comparative sympiotics prepared in Comparative Example 6, the symbiotic prepared in Example 7 increased production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment Was shown to be in place.

実施例８
実施例３と同様に、プレバイオティクスとして実施例１で調製したガラクトマンナン（Ａ）２００質量部およびプロバイオティクスとして、１.８×１０^７個／ｇのＬｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ（１）およびＬ．ｓａｋｅ（２）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＬＣＮ−１および２（ＳＬＣＮ−１および２）を調製した。 Example 8
In the same manner as in Example 3, 200 parts by mass of galactomannan (A) prepared in Example 1 as prebiotics and 1.8 × 10 ⁷ pieces / g of Leuconostoc mesenteroides (1) and L. Synbiotics LCN-1 and 2 (SLCN-1 and 2) were prepared from 1 part by mass of cake (2), respectively.

比較例８
実施例３と同様に比較プレバイオティクスとして比較例１で調製したガラクトマンナン（ＣＡ）２００質量部およびプロバイオティクスとして、１.８×１０^７個／ｇのＬｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ（１）およびＬ．ｓａｋｅ（２）１質量部より、それぞれ比較シンバイオティクスＬＣＮ−１および２（ＣＳＬＣＮ−１および２）を調製した。 Comparative Example 8
As in Example 3, 200 parts by mass of galactomannan (CA) prepared in Comparative Example 1 as a comparative prebiotic and 1.8 × 10 ⁷ Leuconostoc mesenteroides (1) and L. Comparative Symbiotics LCN-1 and 2 (CSLCN-1 and 2) were prepared from 1 part by weight of sake (2), respectively.

試験例６
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施例８で調製したＳＬＣＮ−１および２と比較例８で調製したＣＳＬＣＮ−１および２で行った。
その結果を表６に示した。 Test Example 6
Similar to Test Example 1, similar tests using fresh stool of 4 males (average age 43 ± 5 years) were performed in SLCN-1 and 2 prepared in Example 8 and CSLCN-1 prepared in Comparative Example 8 and 2 performed.
The results are shown in Table 6.

表６に示したように、比較例８で調製した比較シンパイオティクスと比較すると、実施例８で調製したシンバイオティクスは糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 6, when compared with the comparative sympiotics prepared in Comparative Example 8, the symbiotics prepared in Example 8 increased production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment was reduced. It was shown that it was prepared.

実施例９
実施例３と同様にプレバイオティクスとして実施例１で調製したガラクトマンナン（Ａ）３００質量部およびプロバイオティクスとして、１.５×１０^８個／ｇのＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ（１）、Ｂ．ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ（２）、Ｂ．ｌｏｎｇｕｍ（３）、Ｂ．ｉｎｆａｎｔｉｓ（４）、Ｂ．ｂｒｅｖｅ（４）、Ｂ．ａｎｉｍａｌｉｓ（５）、Ｂ．ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕｍ（６）、Ｂ．ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｍ（７）、Ｂ．ｂｏｕｍ（８）、Ｂ．ｍａｇｕｎｕｍ（９）、Ｂ．ｐｕｌｌｏｒｕｍ（１０）、Ｂ．ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ（１１）、Ｂ．ｓｕｉｓ（１２）、Ｂ．ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ（１３）、Ｂ．ｇａｌｌｉｎａｒｕｍ（１４）、Ｂ．ｄｅｎｔｉｕｍ（１５）、Ｂ．ｒｕｍｉｎａｎｔｉｕｍ（１６）、Ｂ．ａｎｇｕｌａｔｕｍ（１７）、Ｂ．ｍｅｒｙｃｉｃｕｍ（１８）、Ｂ．ｇａｌｌｉｃｕｍ（１９）、Ｂ．ｓａｅｃｕｌａｒｅ（２０）、Ｂ．ｉｎｏｐｉｎａｔｕｍ（２１）、Ｂ．ｍｉｎｉｍｕｍ（２２）、Ｂ．ｄｅｎｔｉｃｏｌｅｎｓ（２３）、Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｅ（２４）、Ｂ．ｃｏｒｙｎｅｆｏｒｍｅ（２５）、Ｂ．ｃｕｎｉｃｕｌｉ（２６）、Ｂ．ａｓｔｅｒｏｉｄｅｓ（２７）、Ｂ．ｃｈｏｅｒｉｎｕｍ（２８）、Ｂ．ｉｎｄｉｃｕｍ（２９）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＢＩＦ−１〜２９（ＳＢＩＦ−１〜２９）を調製した。 Example 9
As in Example 3, 300 parts by mass of galactomannan (A) prepared in Example 1 as prebiotics and 1.5 × 10 ⁸ pieces / g of Bifidobacterium bifidum (1), B. adolescentis (2), B.I. longum (3), B.I. infantis (4), B.I. breve (4), B.I. animalis (5), B.I. pseudolongum (6), B.I. thermophilum (7), B.I. room (8), B.I. magunum (9), B.I. pullorum (10), B.I. catenatum (11), B.I. suis (12), B.I. pseudocateulatum (13), B.I. Gallinarum (14), B.I. denium (15), B.I. luminantium (16), B.I. angulatum (17), B.I. mericicum (18), B.I. Gallicum (19), B.I. saeculare (20), B.I. inopinatum (21), B.I. minimum (22), B.I. denticolens (23), B.I. subtile (24), B.I. coryneform (25), B.I. cuniculi (26), B.I. asteroides (27), B.I. choerinum (28), B.I. Synbiotics BIF-1 to 29 (SBIF-1 to 29) were prepared from 1 part by mass of indicum (29).

比較例９
実施例３と同様に、比較プレバイオティクスとして比較例１で調製したガラクトマンナン（ＣＡ）３００質量部およびプロバイオティクスとして、１.５×１０^８個／ｇのＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ（１）、Ｂ．ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ（２）、Ｂ．ｌｏｎｇｕｍ（３）、Ｂ．ｉｎｆａｎｔｉｓ（４）、Ｂ．ｂｒｅｖｅ（４）、Ｂ．ａｎｉｍａｌｉｓ（５）、Ｂ．ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕｍ（６）、Ｂ．ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｍ（７）、Ｂ．ｂｏｕｍ（８）、Ｂ．ｍａｇｕｎｕｍ（９）、Ｂ．ｐｕｌｌｏｒｕｍ（１０）、Ｂ．ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ（１１）、Ｂ．ｓｕｉｓ（１２）、Ｂ．ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ（１３）、Ｂ．ｇａｌｌｉｎａｒｕｍ（１４）、Ｂ．ｄｅｎｔｉｕｍ（１５）、Ｂ．ｒｕｍｉｎａｎｔｉｕｍ（１６）、Ｂ．ａｎｇｕｌａｔｕｍ（１７）、Ｂ．ｍｅｒｙｃｉｃｕｍ（１８）、Ｂ．ｇａｌｌｉｃｕｍ（１９）、Ｂ．ｓａｅｃｕｌａｒｅ（２０）、Ｂ．ｉｎｏｐｉｎａｔｕｍ（２１）、Ｂ．ｍｉｎｉｍｕｍ（２２）、Ｂ．ｄｅｎｔｉｃｏｌｅｎｓ（２３）、Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｅ（２４）、Ｂ．ｃｏｒｙｎｅｆｏｒｍｅ（２５）、Ｂ．ｃｕｎｉｃｕｌｉ（２６）、Ｂ．ａｓｔｅｒｏｉｄｅｓ（２７）、Ｂ．ｃｈｏｅｒｉｎｕｍ（２８）、Ｂ．ｉｎｄｉｃｕｍ（２９）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＢＩＦ−１〜２９（ＣＳＢＩＦ−１〜２９）を調製した。 Comparative Example 9
As in Example 3, 300 parts by mass of galactomannan (CA) prepared in Comparative Example 1 as a comparative prebiotic and 1.5 × 10 ⁸ pieces / g of Bifidobacterium bifidum (1), B. adolescentis (2), B.I. longum (3), B.I. infantis (4), B.I. breve (4), B.I. animalis (5), B.I. pseudolongum (6), B.I. thermophilum (7), B.I. room (8), B.I. magunum (9), B.I. pullorum (10), B.I. catenatum (11), B.I. suis (12), B.I. pseudocateulatum (13), B.I. Gallinarum (14), B.I. denium (15), B.I. luminantium (16), B.I. angulatum (17), B.I. mericicum (18), B.I. Gallicum (19), B.I. saeculare (20), B.I. inopinatum (21), B.I. minimum (22), B.I. denticolens (23), B.I. subtile (24), B.I. coryneform (25), B.I. cuniculi (26), B.I. asteroides (27), B.I. choerinum (28), B.I. Synbiotics BIF-1 to 29 (CSBIF-1 to 29) were prepared from 1 part by mass of indicum (29).

試験例７
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施例９で調製したＳＢＩＦ−１〜２９および比較例９で調製したＣＳＢＩＦ−１〜２９で行った。
その結果を表７に示した。 Test Example 7
Similar to Test Example 1, SBIF-1 to 29 prepared in Example 9 and CSBIF-1 prepared in Comparative Example 9 were used in the same test using fresh stool of four men (average age 43 ± 5 years). 29.
The results are shown in Table 7.

表７に示したように、比較例９で調製した比較シンパイオティクスと比較すると、実施例９で調製したシンバイオティクスは糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 7, when compared to the comparative sympiotics prepared in Comparative Example 9, the symbiotics prepared in Example 9 increased production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment was reduced. It was shown that it was prepared.

実施例１０
実施例３と同様に、プレバイオティクスとして実施例２で調製したガラクトマンナン（Ｂ）５００質量部およびプロバイオティクスとして、３.８×１０^６個／ｇのＢａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ（１）およびＢ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ ｖａｒ．ｎａｔｔｏ（２）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＢＡＣ−１および２（ＳＢＡＣ−１および２）を調製した。 Example 10
As in Example 3, 500 parts by mass of galactomannan (B) prepared in Example 2 as prebiotics and 3.8 × 10 ⁶ / g Bacillus subtilis (1) and B. subtilis var. Synbiotics BAC-1 and 2 (SBAC-1 and 2) were prepared from 1 part by mass of Natto (2), respectively.

比較例１０
実施例３と同様に、比較プレバイオティクスとして比較例２で調製したガラクトマンナン（ＣＢ）５００質量部およびプロバイオティクスとして、３.８×１０^６個／ｇのＢａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ（１）およびＢ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ ｖａｒ．ｎａｔｔｏ（２）１質量部より、それぞれ比較シンババイオティクスＢＡＣ−１および２（ＣＳＢＡＣ−１および２）を調製した。 Comparative Example 10
As in Example 3, 500 parts by mass of galactomannan (CB) prepared in Comparative Example 2 as a comparative prebiotic and 3.8 × 10 ⁶ / g Bacillus subtilis (1) and B. subtilis var. Comparative Simbabiotics BAC-1 and 2 (CSBAC-1 and 2) were prepared from 1 part by mass of Natto (2), respectively.

試験例８
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施例１０で調製したＳＢＡＣ−１および２と比較例１０で調製したＣＳＢＡＣ−１および２で行った。
その結果を表８に示した。 Test Example 8
Similar to Test Example 1, SBAC-1 and 2 prepared in Example 10 and CSBAC-1 prepared in Comparative Example 10 and the same test using fresh stool of four men (average age 43 ± 5 years) and 2 performed.
The results are shown in Table 8.

表８に示したように、比較例１０で調製した比較シンパイオティクスと比較すると、実施例１０で調製したシンバイオティクスは糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 8, when compared with the comparative sympiotics prepared in Comparative Example 10, the symbiotic prepared in Example 10 increased the production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment was reduced. It was shown that it was prepared.

実施例１１
実施例３と同様に、プレバイオティクスとして実施例１で調製したガラクトマンナン（Ａ）１０００質量部およびプロバイオティクスとして、２.０×１０^７個／ｇのＣｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｕｔｙｒｉｃｕｍ（１）、Ｅｕｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｈａｌｌｉｉ（２）、Ｅ．ｒａｍｕｌｕｓ（３）、Ｅ．ｒｅｃｔａｌｅ（４）、Ｅ．ｖｅｎｔｒｉｏｓｕｍ（５）およびＲｏｓｅｂｕｒｉａ ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｉｓ（６）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＢＵＴ−１〜６（ＳＢＵＴ−１〜６）を調製した。 Example 11
As in Example 3, 1000 parts by mass of galactomannan (A) prepared in Example 1 as prebiotics and 2.0 × 10 ⁷ / g Clostridium butyricum (1), Eubacterium hallii ( 2), E.I. ramulus (3), E.I. rectale (4), E.I. Synbiotics BUT-1 to 6 (SBUT-1 to 6) were prepared from 1 part by mass of ventriosum (5) and Roseburia intestinalis (6), respectively.

比較例１１
実施例３と同様に、比較プレバイオティクスとして比較例１で調製したガラクトマンナン（ＣＡ）１０００質量部およびプロバイオティクスとして、２.０×１０^７個／ｇのＣｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｕｔｙｒｉｃｕｍ（１）、Ｅｕｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｈａｌｌｉｉ（２）、Ｅ．ｒａｍｕｌｕｓ（３）、Ｅ．ｒｅｃｔａｌｅ（４）、Ｅ．ｖｅｎｔｒｉｏｓｕｍ（５）およびＲｏｓｅｂｕｒｉａ ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｉｓ（６）１質量部より、それぞれ比較シンバイオティクスＢＵＴ−１〜６（ＣＳＢＵＴ−１〜６）を調製した。 Comparative Example 11
As in Example 3, 1000 parts by weight of galactomannan (CA) prepared in Comparative Example 1 as a comparative prebiotic and 2.0 × 10 ⁷ / g Clostridium butyricum (1), Eubacterium hallilium as a probiotic. (2), E.I. ramulus (3), E.I. rectale (4), E.I. Comparative Symbiotics BUT-1 to 6 (CSBUT-1 to 6) were prepared from 1 part by mass of ventriosum (5) and Roseburia intestinalis (6), respectively.

試験例９
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施例１１で調製したＳＢＵＴ−１〜６および比較例１１で調製したＣＳＢＵＴ−１〜６で行った。
その結果を表９に示した。 Test Example 9
Similar to Test Example 1, SBUT-1 to 6 prepared in Example 11 and CSBUT-1 to 1 prepared in Comparative Example 11 were used in the same test using fresh stool of four men (average age 43 ± 5 years). 6 was done.
The results are shown in Table 9.

表９に示したように、比較例１１で調製した比較シンパイオティクスと比較すると、実施例１１で調製したシンバイオティクスは糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 9, when compared with the comparative symbiotic prepared in Comparative Example 11, the symbiotic prepared in Example 11 increased production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment was reduced. It was shown that it was prepared.

実施例１２
実施例３と同様に、プレバイオティクスとして実施例１で調製したガラクトマンナン（Ａ）２０００質量部およびプロバイオティクスとして、４.０×１０^７個／ｇのＭｅｇａｓｐｈａｅｒａ ｅｌｓｄｅｎｉｉ（１）およびＰｒｏｐｉｏｎｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｆｒｅｕｄｅｎｒｅｉｃｈｉｉ（２）１質量部より、それぞれシンバイオティクスＡＵＢ−１および２（ＳＡＵＢ−１および２）を調製した。 Example 12
As in Example 3, 2000 parts by mass of galactomannan (A) prepared in Example 1 as prebiotics and 4.0 × 10 ⁷ cells / g of Megaphaera elsdenii (1) and Propionibacterium fredenreichii ( 2) Synbiotics AUB-1 and 2 (SAUB-1 and 2) were prepared from 1 part by mass, respectively.

比較例１２
実施例３と同様に、比較プレバイオティクスとして比較例１で調製したガラクトマンナン（ＣＡ）２０００質量部およびプロバイオティクスとして、４.０×１０^７個／ｇのＭｅｇａｓｐｈａｅｒａ ｅｌｓｄｅｎｉｉ（１）およびＰｒｏｐｉｏｎｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｆｒｅｕｄｅｎｒｅｉｃｈｉｉ（２）１質量部より、それぞれ比較シンバイオティクスＡＵＢ−１および２（ＣＳＡＵＢ−１および２）を調製した。 Comparative Example 12
As in Example 3, 2000 parts by mass of galactomannan (CA) prepared in Comparative Example 1 as a comparative prebiotic and 4.0 × 10 ⁷ cells / g of Megaphaera elsdenii (1) and Propionibacterium fredenreichiii as probiotics. (2) Comparative Synbiotics AUB-1 and 2 (CSAUB-1 and 2) were prepared from 1 part by mass, respectively.

試験例１０
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施例１２で調製したＳＡＵＢ−１および２と比較例１２で調製したＣＳＡＵＢ−１および２で行った。
その結果を表１０に示した。 Test Example 10
Similar to Test Example 1, SAUB-1 and 2 prepared in Example 12 and CSAUB-1 prepared in Comparative Example 12 and a similar test using fresh stool of four men (average age 43 ± 5 years) and 2 performed.
The results are shown in Table 10.

表１０に示したように、比較例１２で調製した比較シンパイオティクスと比較すると、実施例１２で調製したシンバイオティクスは糞便培養により酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 10, when compared with the comparative symbiotic prepared in Comparative Example 12, the symbiotic prepared in Example 12 increased production of acetic acid, propionic acid and butyric acid by fecal culture, and the intestinal environment was reduced. It was shown that it was prepared.

試験例１１
乳酸菌として、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属細菌であるＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓを用いた実施例３で調製したシンバイオティクスＬＡＣ−１（ＳＬＡＣ−１）と比較例３で調製した比較シンパイオティクス−１（ＣＳＬＡＣ−１）を、それぞれ１日３ｇずつ４週間、ローマ−ＩＩＩの基準で過敏性腸症候群（ＩＢＳ）と診断された男性５名、女性５名（平均年齢３５±７才）に投与する試験を実施した。試験は、二重盲検、クロスオーバー試験を実施した。ウォッシュアウトは４週間とした。
摂取前と摂取４週間目に、健康関連ＱＯＬをＳＦ−３６（３６−Ｉｔｅｍ Ｓｈｏｒｔ Ｆｏｒｍ）、胃腸症状をＧＳＲＳ（Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｓｙｍｐｔｏｍ Ｒａｔｉｎｇ Ｓｃａｌｅ）、不安・鬱をＨＡＤＳ（Ｈｏｓｐｉｔａｌ Ａｎｘｉｅｔｙ ａｎｄ Ｄｅｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｓｃａｌｅ）により、それぞれ評価した。
その結果を表１１〜１３に示した。 Test Example 11
Synbiotic LAC-1 (SLAC-1) prepared in Example 3 using Lactobacillus acidophilus, a Lactobacillus genus bacterium, as lactic acid bacteria, and comparative symbiotics-1 (CSLAC-1) prepared in Comparative Example 3, respectively. A study was conducted in which 5 g and 5 women (average age 35 ± 7 years) diagnosed with irritable bowel syndrome (IBS) on a Rome-III basis were administered 3 g daily for 4 weeks. The test was a double-blind, crossover test. Washout was 4 weeks.
Before ingestion and 4 weeks after ingestion, health-related QOL is SF-36 (36-Item Short Form), gastrointestinal symptoms are GSRS (Gastrointestinal Symptom Rating Scale), anxiety / depression is HADS (Hospital Anxiety and Depression, respectively) evaluated.
The results are shown in Tables 11-13.

表１１〜表１３に示したように、本実施形態のシンパイオティクスを摂取させることにより、健康関連ＱＯＬ、胃腸症状および不安・鬱の評価項目が改善され、腸内環境を整えることがわかった。
試験例１２
ビフィズス菌として、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属細菌であるＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍを用いた実施例９で調製したシンバイオティクスＢＩＦ−３（ＳＢＩＦ−３）と比較例９で調製した比較シンパイオティクス−３（ＣＢＩＦ−３）を、それぞれ１日５ｇずつ２週間、ローマ−ＩＩＩの基準でＩＢＳと診断された男性４名、女性６名（平均年齢３８±７才）に投与する試験を実施した。試験は、二重盲検、クロスオーバー試験を実施した。ウォッシュアウトは４週間とした。 As shown in Tables 11 to 13, it was found that by taking the sympiotics of this embodiment, the evaluation items of health-related QOL, gastrointestinal symptoms and anxiety / depression were improved and the intestinal environment was adjusted. .
Test Example 12
Synbiotic BIF-3 (SBIF-3) prepared in Example 9 using Bifidobacterium longum which is a bacterium belonging to the genus Bifidobacterium as bifidobacteria, and comparative symbiotics-3 (CBIF-3) prepared in Comparative Example 9, A test was conducted in which 5 g each day was administered to 4 men and 6 women (average age 38 ± 7 years) diagnosed with IBS on the Rome-III basis for 2 weeks. The test was a double-blind, crossover test. Washout was 4 weeks.

摂取前と摂取２週間目に、健康関連ＱＯＬをＳＦ−３６（３６−Ｉｔｅｍ Ｓｈｏｒｔ Ｆｏｒｍ）、胃腸症状をＧＳＲＳ（Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｓｙｍｐｔｏｍ Ｒａｔｉｎｇ Ｓｃａｌｅ）、不安・鬱をＨＡＤＳ（Ｈｏｓｐｉｔａｌ Ａｎｘｉｅｔｙ ａｎｄ Ｄｅｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｓｃａｌｅ）により、それぞれ評価した。
その結果を表１４〜１６に示した。 Before and 2 weeks after ingestion, health-related QOL is SF-36 (36-Item Short Form), gastrointestinal symptoms are GSRS (Gastrointestinal Symptom Rating Scale), anxiety / depression is HADS (Hospital Anxiety and Depression), respectively. evaluated.
The results are shown in Tables 14-16.

表１４〜表１６に示したように、本実施形態のシンパイオティクスを摂取させることにより、健康関連ＱＯＬ、胃腸症状および不安・鬱の評価項目が改善され、腸内環境を整えることがわかった。
実施例１１
プレバイオティクスとして実施例１で調製したガラクトマンナン（Ａ）１０質量部およびプロバイオティクスとして、１.０×１０^８個／ｇのＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ粉末１質量部、緑茶カテキン類（太陽化学（株）製、サンフェノン）０.０１質量部よりシンパイオティクスＬＡＣＣ−１（ＳＬＡＣＣ−１）を調製した。
同様に、Ａと緑茶カテキン類とプロバイオティクスとして、１×１０^８個／ｇのＬ．ｇａｓｓｅｒｉ（２）、Ｌ．ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ（３）、Ｌ．ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ（４）、Ｌ．ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ（５）、Ｌ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ（６）、Ｌ．ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ（７）、Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ（８）、Ｌ．ｃａｓｅｉ（９）、Ｌ．ｐｌａｎｔａｒｕｍ（１０）、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ（１１）、Ｌ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ（１２）、Ｌ．ｓａｋｅ（１３）、Ｌ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ（１４）、Ｌ．ｃｅｌｌｏｂｉｏｓｕｓ（１５）およびＬ．ｂｒｅｖｉｓ（１６）を用いて、それぞれシンバイオティクスＬＡＣ−２〜１６（ＳＬＡＣＣ−２〜１６）を調製した。 As shown in Tables 14 to 16, it was found that by taking the sympiotics of this embodiment, the evaluation items of health-related QOL, gastrointestinal symptoms and anxiety / depression were improved and the intestinal environment was adjusted. .
Example 11
10 parts by mass of galactomannan (A) prepared in Example 1 as prebiotics and 1 part by mass of Lactobacillus acidophilus powder of 1.0 × 10 ⁸ / g as probiotics, green tea catechins (Taiyo Kagaku Co., Ltd.) Sympiotics LACC-1 (SLACC-1) was prepared from 0.01 parts by mass of Sanphenon (manufactured by Sanfenon).
Similarly, as A, green tea catechins and probiotics, 1 × 10 ⁸ L / g L.I. gasseri (2), L.M. johnsonii (3), L.M. delbrueckii (4), L .; delbrueckii subsp. bulgaricus (5), L. et al. bulgaricus (6), L. et al. helveticus (7), L.H. rhamnosus (8), L. et al. casei (9), L.C. plantarum (10), L. et al. reuteri (11), L.L. salivarius (12), L.M. sake (13), L.M. salivarius (14), L. et al. cellobiosus (15) and L. Synbiotics LAC-2 to 16 (SLACC-2 to 16) were prepared using brevis (16), respectively.

試験例１３
試験例１と同様に、男性４名（平均年齢４３±５才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施例４で調製したＳＬＡＣＣ−１〜１１で行った。
その結果を表１７に示した。 Test Example 13
Similar to Test Example 1, similar tests using fresh stool of 4 males (average age 43 ± 5 years old) were performed with SLACC-1 to 11 prepared in Example 4.
The results are shown in Table 17.

表１７に示したように、試験例１の表１のＳＬＡＣ−１〜１１より実施例１２で調製したＳＬＡＣＣ−１〜１１では、糞便培養によりさらに酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 17, in SLACC-1 to 11 prepared in Example 12 from SLAC-1 to 11 in Table 1 of Test Example 1, production of acetic acid, propionic acid and butyric acid was further increased by fecal culture, It was shown that the intestinal environment was prepared.

試験例１４
シンパイオティクスとして実施例３で調製したＳＬＡＣ−９（実施例１で調製したガラクトマンナンとＬ．ｃａｓｅｉからなるシンパイオティクス）、特表２００７−５３７２２４号１４頁第０１００段〜第０１０１段に記載の方法のうち（ａ）で調製したコンニャク加水分解物１０質量部および１.０×１０^８個／ｇのＬ．ｃａｓｅｉより調製した比較品Ａ、および市販のパラチニット（和光純薬（株）製、１，６−ＧＰＳ：４９質量％、１，１−ＧＰＭ：４９質量％）１０質量部および１.０×１０^８個／ｇのＬ．ｃａｓｅｉより調製した比較品Ｂで試験例１と同様に男性４名（平均年齢４４±８才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施した。
その結果を表１８に示した。 Test Example 14
SLAC-9 prepared in Example 3 as sympiotics (sympiotics comprising galactomannan prepared in Example 1 and L. casei), described in JP-T 2007-537224, page 14, pp. 0100 to 0101 Of the konjac hydrolyzate prepared in (a) and 1.0 × 10 ⁸ L / g of L. Comparative product A prepared from casei, and 10 parts by mass of commercially available paratinite (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd., 1,6-GPS: 49% by mass, 1,1-GPM: 49% by mass) and 1.0 × 10 ⁸ L / g. In the same manner as in Test Example 1, a similar test using fresh stool of 4 males (average age 44 ± 8 years old) was performed with Comparative Product B prepared from casei.
The results are shown in Table 18.

表１８に示したように、ＳＬＡＣ−９は、比較品ＡおよびＢと比較して、糞便培養によりさらに酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 18, compared to Comparative products A and B, SLAC-9 showed that the production of acetic acid, propionic acid and butyric acid was further increased by fecal culture, and the intestinal environment was adjusted. It was.

試験例１５
シンパイオティクスとして実施例９で調製したＳＢＩＦ−５（実施例１で調製したガラクトマンナンとＢ．ａｎｉｍａｌｉｓからなるシンパイオティクス）、特表２００７−５３７２２４号１４頁第０１００段〜第０１０１段に記載の方法のうち（ｂ）で調製したコンニャク加水分解物３００質量部および１.５×１０^８個／ｇのＢ．ａｎｉｍａｌｉｓより調製した比較品ＡＡ、および市販のパラチニット（和光純薬（株）製、１，６−ＧＰＳ：４９質量％、１，１−ＧＰＭ：４９質量％）１０質量部および１.０×１０^８個／ｇのＢ．ａｎｉｍａｌｉｓより調製した比較品ＢＢで試験例１と同様に男性４名（平均年齢４０±６才）の新鮮糞便を用いた同様の試験を実施した。
その結果を表１９に示した。 Test Example 15
As sympiotics, SBIF-5 prepared in Example 9 (sympiotics composed of galactomannan and B. animalis prepared in Example 1), described in JP-T 2007-537224, page 14, 0100 to 0101 300 parts by weight of the konjac hydrolyzate prepared in (b) and 1.5 × 10 ⁸ pieces / g B. Comparative product AA prepared from animalis, and 10 parts by mass of commercially available paratinite (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd., 1,6-GPS: 49 mass%, 1,1-GPM: 49 mass%) and 1.0 × 10 ⁸ / g B.c. In the same manner as in Test Example 1, a similar test using fresh stool of 4 males (average age 40 ± 6 years old) was performed on the comparative product BB prepared from animalis.
The results are shown in Table 19.

表１９に示したように、ＳＢＩＦ−５は、比較品ＡＡおよびＢＢと比較して、糞便培養によりさらに酢酸、プロピオン酸および酪酸の産生が増加し、腸内環境が整えられたことが示された。   As shown in Table 19, SBIF-5 showed that the production of acetic acid, propionic acid and butyric acid was further increased by stool culture and the intestinal environment was adjusted as compared with comparative products AA and BB. It was.

試験例１６
ＳＬＡＣ−９、比較品Ａを、それぞれ１日３ｇずつ４週間、ローマ−ＩＩＩの基準で過敏性腸症候群（ＩＢＳ）と診断された男性６名、女性４名（平均年齢３３±２才）に投与する試験を実施した。試験は、二重盲検、クロスオーバー試験を実施した。ウォッシュアウトは４週間とした。
摂取前と摂取４週間目に、健康関連ＱＯＬをＳＦ−３６（３６−Ｉｔｅｍ Ｓｈｏｒｔ Ｆｏｒｍ）、胃腸症状をＧＳＲＳ（Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｓｙｍｐｔｏｍ Ｒａｔｉｎｇ Ｓｃａｌｅ）、不安・鬱をＨＡＤＳ（Ｈｏｓｐｉｔａｌ Ａｎｘｉｅｔｙ ａｎｄ Ｄｅｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｓｃａｌｅ）により、それぞれ評価した。
その結果を表２０〜２２に示した。 Test Example 16
SLAC-9 and Comparative product A for 3 weeks a day for 4 weeks, 6 males and 4 females (average age 33 ± 2 years) diagnosed with irritable bowel syndrome (IBS) on the basis of Rome-III A study to administer was conducted. The test was a double-blind, crossover test. Washout was 4 weeks.
Before ingestion and 4 weeks after ingestion, health-related QOL is SF-36 (36-Item Short Form), gastrointestinal symptoms are GSRS (Gastrointestinal Symptom Rating Scale), anxiety / depression is HADS (Hospital Anxiety and Depression, respectively) evaluated.
The results are shown in Tables 20-22.

表２０〜表２２に示したように、本実施形態のシンパイオティクスを摂取させることにより、健康関連ＱＯＬ、胃腸症状および不安・鬱の評価項目が有意に改善され、腸内環境を整えることがわかった。しかしながら、比較品Ａを摂取した場合は、健康関連ＱＯＬ、胃腸症状および不安・鬱の評価項目は有意差はなく、改善される傾向であった。   As shown in Tables 20 to 22, by taking the sympiotics of the present embodiment, the evaluation items of health-related QOL, gastrointestinal symptoms and anxiety / depression are significantly improved, and the intestinal environment can be adjusted. all right. However, when the comparative product A was ingested, the evaluation items of health-related QOL, gastrointestinal symptoms and anxiety / depression were not significantly different, and tended to be improved.

試験例１７
ＳＢＩＦ−５、比較品ＢＢを、それぞれ１日５ｇずつ２週間、ローマ−ＩＩＩの基準で過敏性腸症候群（ＩＢＳ）と診断された男性５名、女性３名（平均年齢３１±４才）に投与する試験を実施した。試験は、二重盲検、クロスオーバー試験を実施した。ウォッシュアウトは４週間とした。
摂取前と摂取２週間目に、健康関連ＱＯＬをＳＦ−３６（３６−Ｉｔｅｍ Ｓｈｏｒｔ Ｆｏｒｍ）、胃腸症状をＧＳＲＳ（Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｓｙｍｐｔｏｍ Ｒａｔｉｎｇ Ｓｃａｌｅ）、不安・鬱をＨＡＤＳ（Ｈｏｓｐｉｔａｌ Ａｎｘｉｅｔｙ ａｎｄ Ｄｅｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｓｃａｌｅ）により、それぞれ評価した。
その結果を表２３〜２５に示した。 Test Example 17
SBIF-5 and comparative product BB were administered to 5 males and 3 females (average age 31 ± 4 years) diagnosed with irritable bowel syndrome (IBS) on the basis of Rome-III for 5 weeks a day for 2 weeks each. A study to administer was conducted. The test was a double-blind, crossover test. Washout was 4 weeks.
Before and 2 weeks after ingestion, health-related QOL is SF-36 (36-Item Short Form), gastrointestinal symptoms are GSRS (Gastrointestinal Symptom Rating Scale), anxiety / depression is HADS (Hospital Anxiety and Depression), respectively. evaluated.
The results are shown in Tables 23-25.

表２３〜表２５に示したように、本実施形態のシンパイオティクスを摂取させることにより、健康関連ＱＯＬ、胃腸症状および不安・鬱の評価項目が有意に改善され、腸内環境を整えることがわかった。しかしながら、比較品ＢＢを摂取した場合は、健康関連ＱＯＬ、胃腸症状および不安・鬱の評価項目は有意差はなく、改善される傾向であった。   As shown in Tables 23 to 25, by taking the sympiotics of the present embodiment, the evaluation items of health-related QOL, gastrointestinal symptoms and anxiety / depression are significantly improved, and the intestinal environment can be adjusted. all right. However, when the comparative product BB was ingested, there was no significant difference in the evaluation items of health-related QOL, gastrointestinal symptoms, and anxiety / depression, and there was a tendency to improve.

実施例Ａ
脱脂粉乳９.５ｋｇ、無塩バター３ｋｇ、上白糖１０.５ｋｇ、実施例１で調製したガラクトマンナン５ｋｇ及び水７２ｋｇをホモミキサーで混合し、原料ミックスを調製した。
この原料ミックスを５０℃まで加温し、８０ｋｇ／ｃｍ^２で均質処理した後、プレート式殺菌機で９０℃、１０分間加熱殺菌し、プレート式熱交換機で４２℃まで冷却した。そして、発酵乳製造用のビフィドバクテリウム・ロンガムのスターター４質量％を添加した後、１００ｍｌ容の容器に充填し、４２℃で発酵を行い、乳酸酸度が０．７５％になったところで５℃まで冷却して、静置型発酵乳を製造した（実施例Ａ発酵乳）。 Example A
Non-fat dry milk 9.5 kg, unsalted butter 3 kg, upper white sugar 10.5 kg, galactomannan 5 kg prepared in Example 1 and water 72 kg were mixed with a homomixer to prepare a raw material mix.
This raw material mix was heated to 50 ° C., homogenized at 80 kg / cm ² , then sterilized by heating at 90 ° C. for 10 minutes with a plate type sterilizer, and cooled to 42 ° C. with a plate type heat exchanger. After adding 4% by mass of a starter of Bifidobacterium longum for producing fermented milk, it was filled in a 100 ml container, fermented at 42 ° C., and when the lactic acid acidity reached 0.75%, 5 Cooled to 0 ° C. to produce stationary type fermented milk (Example A fermented milk).

比較例Ａ
脱脂粉乳９.５ｋｇ、無塩バター３ｋｇ、上白糖１０.５ｋｇ、比較例１で調製したガラクトマンナン５ｋｇ及び水７２ｋｇをホモミキサーで混合し、原料ミックスを調製した。
この原料ミックスを５０℃まで加温し、８０ｋｇ／ｃｍ^２で均質処理した後、プレート式殺菌機で９０℃、１０分間加熱殺菌し、プレート式熱交換機で４２℃まで冷却した。そして、発酵乳製造用のビフィドバクテリウム・ロンガムのスターター４質量％を添加した後、１００ｍｌ容の容器に充填し、４２℃で発酵を行い、乳酸酸度が０.７５％になったところで５℃まで冷却して、静置型発酵乳を製造した（比較例Ａ発酵乳）。 Comparative Example A
Non-fat dry milk 9.5 kg, unsalted butter 3 kg, upper white sugar 10.5 kg, galactomannan 5 kg prepared in Comparative Example 1 and water 72 kg were mixed with a homomixer to prepare a raw material mix.
This raw material mix was heated to 50 ° C., homogenized at 80 kg / cm ² , then sterilized by heating at 90 ° C. for 10 minutes with a plate type sterilizer, and cooled to 42 ° C. with a plate type heat exchanger. Then, after adding 4% by mass of a starter of Bifidobacterium longum for producing fermented milk, it was filled in a 100 ml container, fermented at 42 ° C., and when the lactic acid acidity reached 0.75%, 5 Cooled to 0 ° C. to produce stationary type fermented milk (Comparative Example A fermented milk).

比較例Ｂ
脱脂粉乳９.５ｋｇ、無塩バター３ｋｇ、上白糖１０.５ｋｇ、比較例２で調製したガラクトマンナン５ｋｇ及び水７２ｋｇをホモミキサーで混合し、原料ミックスを調製した。
この原料ミックスを５０℃まで加温し、８０ｋｇ／ｃｍ^２で均質処理した後、プレート式殺菌機で９０℃、１０分間加熱殺菌し、プレート式熱交換機で４２℃まで冷却した。そして、発酵乳製造用のビフィドバクテリウム・ロンガムのスターター４質量％を添加した後、１００ｍｌ容の容器に充填し、４２℃で発酵を行い、乳酸酸度が発酵乳１００ｇ当たり、０.７５％になったところで５℃まで冷却して、静置型発酵乳を製造した（比較例Ｂ発酵乳）。 Comparative Example B
Non-fat dry milk 9.5 kg, unsalted butter 3 kg, upper white sugar 10.5 kg, galactomannan 5 kg prepared in Comparative Example 2 and water 72 kg were mixed with a homomixer to prepare a raw material mix.
This raw material mix was heated to 50 ° C., homogenized at 80 kg / cm ² , then sterilized by heating at 90 ° C. for 10 minutes with a plate type sterilizer, and cooled to 42 ° C. with a plate type heat exchanger. Then, after adding 4% by mass of a starter of Bifidobacterium longum for producing fermented milk, it is filled in a 100 ml container, fermented at 42 ° C., and lactic acid acidity is 0.75% per 100 g of fermented milk. When it became, it cooled to 5 degreeC and manufactured stationary type fermented milk (comparative example B fermented milk).

試験例Ａ
実施例Ａで調製した実施例Ａ発酵乳および比較例Ａで調製した比較例Ａ発酵乳を４℃で１４日間保存した。保存３、７および１４日目に乳酸酸度を測定することで保存中の発酵乳の過発酵を調べた。尚、乳酸酸度は、０.１Ｎ水酸化ナトリウム溶液による中和滴定法で測定した。製造直後の乳酸酸度を１００として、その上昇率で示した。その結果を表２６に示した。 Test example A
Example A fermented milk prepared in Example A and Comparative Example A fermented milk prepared in Comparative Example A were stored at 4 ° C. for 14 days. The overfermentation of the fermented milk during storage was examined by measuring the lactic acid acidity on the 3rd, 7th and 14th days of storage. The lactic acid acidity was measured by neutralization titration with a 0.1N sodium hydroxide solution. The rate of increase was shown with the lactic acid acidity immediately after production as 100. The results are shown in Table 26.

表２６に示したように、実施例Ａ発酵乳は保存中に乳酸酸度が上昇せずに過発酵認められなかったが、比較例Ａ発酵乳は保存中に乳酸酸度が上昇し、過発酵が確認された。   As shown in Table 26, the fermented milk of Example A did not increase in lactate during storage and no overfermentation was observed, but the fermented milk of Comparative Example A increased in lactate during storage and overfermented. confirmed.

試験例Ｂ
実施例Ａで調製した実施例Ａ発酵乳および比較例Ｂで調製した比較例Ｂ発酵乳について、５人のパネラーを用いた官能評価を実施した。尚、評価項目及び評価基準は表２７に示した。 Test example B
Sensory evaluation using five panelists was performed on the fermented milk of Example A prepared in Example A and the fermented milk of Comparative Example B prepared in Comparative Example B. Evaluation items and evaluation criteria are shown in Table 27.

表２８に示したように実施例Ａ発酵乳は、比較例Ｂ発酵乳と比較して、おいしさ、のど越し、風味および総合評価のすべての官能評価項目において優れていることが確認された。   As shown in Table 28, it was confirmed that the fermented milk of Example A was superior to all the sensory evaluation items of taste, throat, flavor and comprehensive evaluation as compared with the fermented milk of Comparative Example B.

本発明によれば、プレバイオティクスとプロバイオティクスとを組み合わせたシンバイオティクスを利用した腸内環境調整方法を提供することができる。   ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the intestinal environment adjustment method using the synbiotic which combined prebiotic and probiotic can be provided.

実施例１で得られたガラクトマンナンの歪依存性測定を行った結果を示すグラフである。グラフ中の●はＧ’‘を意味し、▲はＧ‘を意味する（図２においても同じ）。It is a graph which shows the result of having performed distortion dependence measurement of the galactomannan obtained in Example 1. FIG. In the graph, ● means G ″ and ▲ means G ′ (the same applies to FIG. 2). 実施例２で得られたガラクトマンナンの歪依存性測定を行った結果を示すグラフである。It is a graph which shows the result of having performed distortion dependence measurement of the galactomannan obtained in Example 2. FIG.

Claims (2)

（Ａ）プレバイオティクスとして、加水分解されたグァーの胚乳部分であって、次の性質を含むもの、（１）プルランを分子量マーカーとして用いた高速液体クロマトグラフィーによるゲルろ過で重量平均分子量が３〜５０ｋＤａと算出されるガラクトマンナン、（２）ケルダール法により窒素含量を測定し、係数６.２５を乗じて算出されたタンパク質含量が１.０％以下であるものと、（Ｂ）プロバイオティクスとして、酪酸生成菌からなり、さらに水分含量が２０％以下であるもの、の両者を含有するシンバイオティクスであって、
前記加水分解されたグァーの胚乳部分が、次の性質を含むもの、（３）固形分含量１５％水溶液の粘度が、回転式粘度計で回転数６０ｒｐｍ、２０℃で測定したときに２０ｍＰａ・ｓ以下であるものであり、
前記加水分解されたグァーの胚乳部分が、次の性質を含むもの、（４）分解物の固形物含量が１.０％水溶液９９ｇに１.０ｇのポリオキシエチレン付加型界面活性剤（ＰＯＥ）を添加して測定した曇点が６０℃以下であるもの、であり、
（Ａ）前記加水分解されたグァーの胚乳部分１質量部に対して、１／５質量部のイソプロピルアルコールを加えてよく湿らせた後、激しくかき混ぜながら水１０質量部加えた溶液（溶液（１））の粘度がＢ型粘度計で２５℃、Ｎｏ.１ローター、１２ｒｐｍで測定したときに２０ｍＰａ・ｓ以下、
（Ｂ）溶液（１）を沸騰水中で１０分間加熱し冷却後に同条件で測定した粘度が２０ｍＰａ・ｓ以下（溶液２）、
（Ｃ）溶液（２）１質量部に５％ホウ酸ナトリウム水溶液１／５質量部を添加し、混和、放置したものを動的粘弾性測定装置で、２５℃、１Ｈｚでひずみ依存性測定をすると、線形領域で貯蔵弾性率（Ｇ‘）＞損失弾性率（Ｇ’‘）かつ線形領域から非線形領域を示す測定曲線を得るものであり、
前記酪酸生成菌が、Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｕｔｙｒｉｃｕｍ、Ｅｕｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｈａｌｌｉｉ、Ｅ．ｒａｍｕｌｕｓ、Ｅ．ｒｅｃｔａｌｅ、Ｅ．ｖｅｎｔｒｉｏｓｕｍ、Ｒｏｓｅｂｕｒｉａ ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｉｓからなる群から選択される少なくとも一つであることを特徴とするシンバイオティクス。 (A) As a prebiotic, hydrolyzed guar endosperm portion containing the following properties: (1) gel filtration by high performance liquid chromatography using pullulan as a molecular weight marker, the weight average molecular weight is 3 A galactomannan calculated as ˜50 kDa, (2) a protein content calculated by measuring the nitrogen content by the Kjeldahl method and multiplying by a coefficient of 6.25 is 1.0% or less, and (B) probiotics As a symbiotic containing both butyric acid-producing bacteria and having a water content of 20% or less,
The endosperm portion of the hydrolyzed guar has the following properties: (3) When the viscosity of a 15% solid content aqueous solution is measured with a rotary viscometer at a rotation speed of 60 rpm and 20 ° C., 20 mPa · s Is the following:
The endosperm portion of the hydrolyzed guar has the following properties: (4) 1.0 g of polyoxyethylene addition type surfactant (POE) in 99 g of 1.0% aqueous solution with a solid content of the degradation product of 1.0% The cloud point measured by adding is 60 ° C. or less,
(A) To 1 part by mass of the hydrolyzed guar endosperm, 1/5 part by mass of isopropyl alcohol was added and moistened, and then 10 parts by mass of water (solution (1 )) When measured with a B-type viscometer at 25 ° C., No. 1 rotor, 12 rpm, 20 mPa · s or less,
(B) Solution (1) is heated in boiling water for 10 minutes, cooled, and the viscosity measured under the same conditions is 20 mPa · s or less (Solution 2),
(C) Solution (2) Add 1/5 parts by mass of 5% aqueous sodium borate solution to 1 part by mass, mix and leave the mixture with a dynamic viscoelasticity measuring device at 25 ° C and 1 Hz. Then, the storage elastic modulus (G ′)> loss elastic modulus (G ″) in the linear region and the measurement curve indicating the non-linear region from the linear region is obtained.
The butyric acid producing bacterium is Clostridium butyricum, Eubacterium halliii, E. coli. Ramulus, E.M. Rectale, E.I. A symbiotic which is at least one selected from the group consisting of ventriosum and Roseburia intestinalis . さらにツバキ科植物成分を含有することを特徴とする請求項１に記載のシンバイオティクス。 The synbiotic according to claim 1, further comprising a camellia plant component.

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