JP5512887B2 - 成長因子アンカーリング型骨移植材料および成長因子アンカーリング型骨移植材料製造用キット - Google Patents
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Description
骨は、網目状に形成されたコラーゲン線維にヒドロキシアパタイトが沈着したものであり、骨の有機質の大部分はコラーゲンである。コラーゲン分子は、3本のポリペプチド鎖がラセン状に結合したものであり、生体内ではこの分子が多数会合して不溶性線維を形成している。骨を酸性溶液やキレート剤で処理して調製して無機質をぼぼ完全に除去したコラーゲン露出処理マトリックス(DBM)は、含まれる活性物質が皮下組織や筋肉内に存在する未分化間葉細胞を骨芽細胞に分化させ骨形成を促進するため骨移植材料として使用されていが、ほぼ完全にミネラルを消失しているため、骨に本来備わっている力学的強度も失われる。本発明の「成長因子アンカーリング骨移植材料」は、少なくともコラーゲン線維が露出してなる骨移植基材を使用するものであり、たとえば、骨に含まれる少なくも一部の無機質を除去して骨表面にコラーゲン線維を露出させた骨移植基材を使用することができる。これにCB−GFを結合させたものは、当該骨移植基材にミネラルが多量に残存しているため解剖学的形状が高度に維持され、かつ力学的に優れる。このような骨移植基材には、コラーゲン線維が分解されずに存在するため、骨移植基材に前記CB−GFを混合するだけで結合させることができ、製造が容易である。
本発明で使用するCB−GFは、成長因子受容体アゴニストペプチド部(以下、「GF部」とも称する。)とコラーゲン結合性ペプチド部(以下、「CB部」とも称する。)とを含むものであればその構造や製造方法に特に制限はなく、両ペプチド部が化学的に結合されたものであってもよく、GF部とCB部とを含む融合タンパクであってもよい。この際、たとえば、CB部が、直接またはポリペプチド断片からなるリンカー部を介して、GF部に連結されるものであってもよい。更に、GF部とCB部という二つのポリペプチドを、アミノ基を介してジスクシンイミドイルグルタレートやグルタルアルデヒドを含む試薬により架橋結合するものであってもよい。また、一つのポリペプチドをスクシンイミドイル−4−ヒドラジノニコチネート アセトンヒドラゾンにより、もう一方のポリペプチドをスクシンイミドイル−4−フォルミル ベンゾエートにより誘導化した後に、二つの誘導化されたポリペプチドを混合し、アミノ基を介して架橋結合してもよい。なお、本発明では、上記以外にGF部とCB部とを結合するために、ポリペプチド以外の架橋剤その他の化合物でこれらを連結してもよい。
本発明で使用するCB−GFを構成する「コラーゲン結合性ペプチド部」は、骨移植基材に成長因子受容体アゴニストペプチド部を結合させるための結合部として機能する部位である。前記したように、成長因子は骨形成作用を示すが、静脈注射などによって全身投与すると局所残存率が低く、持続的な骨形成作用を期待することができない。本発明は、少なくともコラーゲン線維が露出してなる骨移植基材を骨移植材料として使用し、かつ、予めGF部とCB部とを含むCB−GFを調製し、これを骨移植基材と混合させることで成長因子受容体アゴニストを骨移植基材に結合させたものである。
本発明で使用するCB−GFを構成するGF部は、骨移植基材に結合して成長因子などの機能を発揮する部位である。成長因子としては、上皮成長因子(EGF)、線維芽細胞成長因子(FGF)、血小板由来成長因子(PDGF)などがあり、このような作用を発揮しうる成長因子受容体アゴニストを広く使用することができる。その他、TGF−β、IGF−1、BMPなどの成長因子は、異所性の骨誘導能を示さないが骨形成作用を示し、骨折部に適用すると骨折の治癒を促進する。
CB−GFは、CB部とGF部とをリンカー部によって連結するものであってもよい。リンカー部を挿入することでCB部とGF部とを所定間隔に隔離することにより、各部位の機能を独立して十分に発揮させることができる。この結果、リンカー部を挿入することでリンカー部を有しないCB−GFを使用する場合よりも強くコラーゲン線維に結合させることができる。
本発明で使用する「骨移植基材」とは、少なくともコラーゲン線維が露出してなる骨移植基材である。このような骨移植基材としては、コラーゲン露出骨材や高密度コラーゲン材などがある。
コラーゲン露出骨材としては、たとえば、少なくも骨を形成する無機鉱物成分の一部を除去した粉砕骨などの、コラーゲン露出骨材を好適に使用することができる。骨に含まれる無機鉱物成分の全てを除去した、いわゆる完全脱灰骨に限定されるものではない。これにより骨の力学的強度を確保し、解剖学的形状を維持することができる。なお、一部の無機鉱物成分を除去することで骨に含まれるコラーゲン線維が骨表面に露出し、前記コラーゲン結合性ペプチド部を介してCB−GFを結合することができる。
本発明では、高密度コラーゲン材を骨移植基材として使用することができる。コラーゲン露出骨材を調製する場合のように酸によるコラーゲン露出処理の必要がないため、短時間で成長因子アンカーリング型骨移植材料を作成できる。
高密度コラーゲン材としては、コラーゲン線維の密度が100〜800mg/cm3、好ましくは300〜800mg/cm3、より好ましくは400〜800mg/cm3である。この範囲で、力学的強度に優れるからである。なお、高密度コラーゲン材は、シート状、柱状、球状、多角状、その他の不定形であってもよい。これらの中でもシート状の高密度コラーゲン材は、骨の表面を被覆する際などに好適に使用することができる。なお、高密度コラーゲン材を構成するコラーゲン線維としては、特に限定されないが、コラーゲンI〜XI型のいずれであってもよい。好ましくはI型である。高密度コラーゲン材は、テロペプチドの一部または全部を除去したアテロコラーゲンから構成されることが好ましい。このような高密度コラーゲン材は、コラーゲン線維を含む溶液を凍結乾燥その他によって乾燥し、次いで上記密度に加圧することでシート状に成形して調製することができる。また、市販品を使用してもよい。
本発明で使用するCB−GFを構成するGF部とCB部とは、共にペプチドであるため融合タンパクとして調製することができる。CB−GFとして、成長因子受容体アゴニストが塩基性線維芽細胞増殖因子(bFGF)であり、リンカー部およびCB部がColHに由来するPKD−CBDである場合のCB−GFをbFGF−PKD−CBDと称すれば、bFGF−PKD−CBDの製造方法は、非特許文献1に開示されている。これにより、bFGF−PKD−CBDを製造することができる。また、GF部として塩基性線維芽細胞増殖因子(bFGF)を使用し、CB部としてColGに由来するCBDを使用することで、これらが融合したbFGF−CBDを製造することもできる。また、bFGFの遺伝子配列に代えて上皮細胞成長因子(EGF)の遺伝子配列を使用することで、上記と同様にしてCB−EGFを製造することができる。更に、他の成長因子受容体アゴニストをコードする遺伝子配列を使用することで、CBに他の成長因子受容体アゴニストが結合したCB−GFを製造することができる。なお、前記したように架橋剤によってCB部とGF部とを架橋結合させてもよい。
本発明の成長因子アンカーリング型骨移植材料製造用キットには、前記したCB−GF溶液と骨移植基材とからなるキット(I)と、CB−GF溶液とコラーゲン露出骨材調製溶液とからなるキット(II)とがある。
キット(I)は、CB−GF溶液と骨移植基材とからなる。骨移植基材としては、ドナー骨に含まれる無機鉱物成分の少なくとも一部を除去してコラーゲン線維を露出し、緩衝液に保存したものや、乾燥保存したもの、高密度コラーゲン材などを例示することができる。
キット(I)を構成するCB−GF溶液は、CB−GFを緩衝液中に0.5〜2.0mg/mlの範囲で溶解した溶液である。緩衝液としては、pH7.0〜8.0のリン酸緩衝液や、トリス緩衝液、生理食塩水を例示することができる。予め骨移植基材がセットされているため、移植時に骨移植基材にCB−GF溶液を加えるだけで簡便に成長因子アンカーリング型骨移植材料を調製することができる。
キット(II)は、骨移植基材に換えて、コラーゲン露出骨材調製溶液をCB−GF溶液に組み合わせたものである。たとえば、自家骨移植を行う際に、コラーゲン露出骨材調製溶液に自家骨を含浸させ、その後に洗浄するだけで、簡便にコラーゲン露出骨材を調製することができる。得られたコラーゲン露出骨材にCB−GF溶液を添加して混和すれば、成長因子アンカーリング型骨移植材料を調製することができる。なお、0.6N塩酸溶液や酢酸などの酸溶液、更には、これらの酸液にキレート剤を含有したものをコラーゲン露出骨材調製溶液として使用することができる。キット(II)は、自家骨移植を行う際に好適に使用することができる。
本発明の成長因子アンカーリング型骨移植材料は、前記骨移植基材にFGF、TGF−β、IGF−1、PDGFなどのGF部とCB部とを含むCB−GFを結合させたものである。骨移植基材による骨形成能と成長因子による骨形成の作用を期待することができる。従来から、腫瘍掻爬や人工関節再置換術後に生じる骨欠損部の治療や、偽関節部の治療には、自家骨を粉砕した移植骨や、同種骨を粉砕した移植骨が使用されてきた。従来の移植骨に代えて本発明の成長因子アンカーリング型骨移植材料を使用することで、成長因子が移植部に長く留まるため継続的な骨形成を促すことができ、従来よりも早期に骨を形成させることができる。
(1)ColHのDNA(配列番号1)における塩基番号3001〜3366の領域は、コラーゲン結合ドメイン(CBD)をコードする遺伝子断片である。また、上記DNA(配列番号1)中、塩基番号2719〜3000の領域は、細菌性コラゲナーゼのPKDドメイン(PKD) をコードする遺伝子断片であり、リンカー部として使用することができる。そこで、これらの領域を含む上記DNA(配列番号1)の塩基番号2719番目〜3391番目の領域をpGEX−4T−2プラスミドのSmaI部位に常法に従って挿入した。
前記大腸菌を、50mLの50μg/mLアンピシリン及び30μg/mLクロラムフェニコール含有2×YT−G培地中で、一晩、前培養した。得られた前培養液10mLを前記培地500mLに加え、この菌液の濁度(O.D.600)が約0.7になるまで、37℃で振とう培養した。得られた菌液に、0.1M イソプロピル−β−D−チオガラクトピラノシド(IPTG)水溶液5mLを添加し、37℃で2時間培養した。その後、0.1Mフェニルメチルスルフォニルフルオライド(PMSF)のイソプロパノール溶液5mLを添加し、培養液を6,000×g、4℃で10分間遠心して形質転換体を集菌した。1mMPMSFを含むリン酸緩衝生理食塩水(PBS)7.5mLに菌体を懸濁し、フレンチ・プレスにて細胞破砕処理を行った。懸濁液の1/19容量の20% Triton X−100溶液を添加し、4℃で30分間撹拌した。この溶菌液を15,000×g、4℃で30分間遠心して得た上清を、再度同じ条件で遠心し、その上清を清澄溶菌液とした。グルタチオン−セファロース・ビーズ(2mL)にこの清澄溶菌液を添加し4℃で1時間撹拌してGST−EGF−PKD−CBD融合タンパク質をビーズに結合させた。このビーズをPBS12mLで5回洗浄したのち、少量のPBSに懸濁してカラムに充填した。50mM Tris−HCl(pH8.0),10mMグルタチオン溶液で融合タンパク質を溶出した。融合タンパク質1mgあたり5unitのトロンビンを添加して25℃で10時間反応し、GSTタグを切断した。その後PBS300mLに対して4℃で12時間の透析を4回繰り返した。PBSで洗浄した新しいグルタチオン−セファロース・ビーズ(2mL)を充填したカラムに透析を完了した切断産物を添加してそのまま溶出することにより、GSTタグを除去してGSTタグを有しないEGF−PKD−CBD融合タンパク質(配列番号6の225〜491)を得た。
まず、配列番号1に示すCo1H遺伝子の2719番目〜3391番目の塩基配列を含むDNA断片(PKD−CBD遺伝子)を、pGEX−4T−2プラスミド(GEヘルスケア・ジャパン社製)のSmaI部位に、常法を用いて挿入した。他方、配列番号2に示すHomo sapiens fibroblast growth factor 2(basic)遺伝子(NCBI Reference Sequenceアクセッション番号NM_002006.4)の468番目〜932番目の塩基配列からなるDNA断片(bFGF遺伝子)を、5´末端側にBglII部位を有し、3´末端側に1ヌクレオチド(塩基G)およびEcoRI部位を有するように、PCR法により増幅した。増幅したDNA断片(bFGF遺伝子)を、前記DNA断片(PKD−CBD遺伝子)を挿入した前記プラスミドのBamHI−EcoRI部位に、常法を用いて挿入し、発現プラスミドを調製した。前記発現プラスミドは、GST−bFGF−PKD−CBD融合タンパク質(配列番号8)をコードするリーディングフレーム(配列番号9)を有している。前記bFGF−PKD−CBD融合タンパク質のアミノ酸配列を配列番号10に示し、前記bFGF−PKD−CBD融合タンパク質をコードする塩基配列を配列番号11に示す。配列番号10に示すアミノ酸配列において、N末端の2つのアミノ酸残基Gly−Serは、GSTタグ切断用酵素(トロンビンプロテアーゼ)の認識部位の一部である。エレクトロポレーション法を用いて、前記発現プラスミドを、大腸菌BL21 Codon Plus RIL(Stratagene社製)に導入し、形質転換体を作製した。
配列番号12に示すColG遺伝子の4011番目〜4358番目の塩基配列からなるDNA断片を、5´末端側にSmaI部位を有し、3´末端側にXhoI部位を有するように、PCR法により増幅した。この断片をpGEX−4T−2プラスミドのSmaI部位とXhoI部位の間に常法に従って挿入した。他方、配列番号2に示すHomo sapiens fibroblast growth factor 2(basic)遺伝子(NCBI Reference Sequenceアクセッション番号NM_002006.4)の468番目〜932番目の塩基配列からなるDNA断片(bFGF遺伝子)を、5´末端側にBglII部位を有し、3´末端側に1ヌクレオチド(塩基G)およびEcoRI部位を有するように、PCR法により増幅した。増幅したDNA断片(bFGF遺伝子)を、前記DNA断片(CBD遺伝子)を挿入した前記プラスミドのBamHI−EcoRI部位に、常法を用いて挿入し、発現プラスミドを調製した。前記発現プラスミドは、GST−bFGF−CBD融合タンパク質(配列番号13)をコードするリーディングフレームを有している。前記bFGF−CBD融合タンパク質のアミノ酸配列は、配列番号13の塩基配列第720番目から1503番目に対応するアミノ酸配列である。このアミノ酸配列において、N末端の2つのアミノ酸残基Gly−Serは、GSTタグ切断用酵素(トロンビンプロテアーゼ)の認識部位の一部である。エレクトロポレーション法を用いて、前記発現プラスミドを、大腸菌BL21 Codon Plus RIL(Stratagene社製)に導入し、形質転換体を作製した。
この形質転換体を用いた以外は製造例2と同様に操作して、bFGF−CBD融合タンパク質を製造した。
生後2ヶ月齢オスのWistarラットから大腿骨を採取し、脱脂凍結乾燥を行った。
この骨組織を骨端部と骨幹部とにわけ、それぞれを平均粒子径50〜300μmに粉砕した。各粉砕骨40mgに0.6Nの塩酸1mlを添加し、温度4℃で18時間、撹拌処理した。次いで、pH7.4のリン酸緩衝液で2度洗浄し骨端部および骨幹部のコラーゲン露出骨材を調製した。
EGF−PKD−CBD融合タンパク質に代えて、製造例2で得たbFGF−PKD−CBD融合タンパク質を使用した以外は実施例1と同様に操作して、骨端部の粉砕骨とコラーゲン露出骨材、および骨幹部の粉砕骨とコラーゲン露出骨材に対するbFGF−PKD−CBD融合タンパク質の結合活性を評価した。骨端部の粉砕骨とコラーゲン露出骨材とに対するbFGF−PKD−CBD融合タンパク質の結合活性の結果を図3(a)、図3(b)に、骨幹部の粉砕骨とコラーゲン露出骨材とに対するbFGF−PKD−CBD融合タンパク質の結合活性の結果を、図4(a)、図4(b)に示す。
生後2ヶ月齢のオスのWistarラット6匹を3匹ずつの2群に分けた。両群のラットにおいて、ネンブタール麻酔下に、大腿骨前方の骨膜上に、実施例1と同様に調製したコラーゲン露出骨材20mg(コラーゲン露出処理前重量)に製造例2で調製したbFGF−PKD−CBD融合タンパク質を20mg結合させたコラーゲン露出骨材(成長因子アンカーリング型骨移植材料)を移植し、他の一群には、実施例1で調製した骨端部の粉砕骨を20mg移植した。
生後2ヶ月齢のオスのWistarラットから大腿骨を採取し、脱脂凍結乾燥を行った。
この骨組織の骨幹部を平均粒子径50〜300μmに粉砕した。粉砕骨を40mg(コラーゲン露出処理前重量)ずつに3分割し、その1を非コラーゲン露出処理粉砕骨(BP)とし、その2,その3をコラーゲン露出処理粉砕骨(DBP)群とした。コラーゲン露出処理粉砕骨(DBP)群は、0.6Nの塩酸1mlを添加し、温度4℃で1分または18時間、撹拌処理した。次いで、pH7.4のリン酸緩衝液で2度洗浄し骨幹部の骨移植基材とした。
生後10週齢のオスのWistarラット64匹を16匹ずつの4群に分けた。実施例1と同様に調製した骨幹部の脱ミネラル化骨材20mg(コラーゲン露出処理前重量)と1.16nモルのbFGF、0.29nモルのbFGF−PKD−CBD融合タンパク質、1.16nモルのbFGF−PKD−CBD融合タンパク質とを反応させて成長因子アンカーリング型骨移植材料を調製し、これを大腿骨骨幹部前方の骨膜上に移植した。
移植1週間後、および2週間後に各群の8匹のラットの大腿骨を採取し、マイクロCTを用いて新生骨体積を測定した。なお、リン酸緩衝液(PBS)とコラーゲン露出骨材を反応させた後に移植した群をコントロールとした。結果を図8に示す。
白カラムがコントロール群であり、灰色カラムが1.16nモルbFGF群、黒カラムが0.29nモルbFGF−PKD−CBD融合タンパク質群,グラデーションカラムが1.16nモルbFGF−PKD−CBD融合タンパク質群である。aはコントロール群との有意差、bは1.16nモル bFGF群との有意差を示す。
生後10週齢のオスのWistarラット32匹を16匹ずつの2群に分けた。実施例1と同様に調製した骨幹部のコラーゲン露出骨材20mg(コラーゲン露出処理前重量)とbFGF−PKD−CBD、製造例3で得たbFGF−CBD融合タンパク質を反応後、大腿骨骨幹部前方の骨膜上に移植した。反応量は両群共に0.58nモルとした。
移植1週間後、および2週間後に各群の8匹のラットの大腿骨を採取し、マイクロCTを用いて新生骨体積を測定した。結果を図9に示す。移植後2週後の新生骨量はbFGF−CBD融合タンパク質群で多い傾向にあった。本発明によりコラーゲン結合ドメインを変化させることによって、徐放期間や骨形成量をコントロールできることが示された。
生後10週齢のオスのWistarラット80匹を20匹ずつの4群に分けた。シート状の高密度コラーゲン材(コラーゲン線維の密度640mg/cm3、5mm×5mm×100μm)と0.58nモルbFGF、0.58nモルbFGF−CBD融合タンパク質、0.58nモルbFGF−PKD−CBD融合タンパク質とをそれぞれ反応させた骨移植材料を大腿骨骨幹部前方の骨膜上に移植した。リン酸緩衝液(PBS)と高密度コラーゲン材を反応させた後に移植した群をコントロールとした。
移植1週間後、および2週間後に各群の10匹のラットの大腿骨を採取し、マイクロCTを用いて新生骨体積を測定した。結果を図10に示す。移植1週後の新生骨量はbFGF群、bFGF−CBD(I)融合タンパク質、bFGF−PKD−CBD(II)融合タンパク質群で同等であったが、移植2週後はbFGF−PKD−CBD(II)融合タンパク質で有意に高かった。本発明により高い強度を有する高密度コラーゲン材を用いることで長期的に骨形成を促進する移植骨代替材料を提供できることが示された。
生後10週齢オスのC57BL/6Jマウス6匹を2群に分けた。腫瘍掻爬や外傷後の広範囲骨欠損に対する再建を模擬してマウス大腿骨骨幹部に5mmの骨欠損を作成後、同部位に骨移植を行った。骨移植後、実施例7と同様に調製したbFGF−PKD−CBD融合タンパク質をシート状の高密度コラーゲン材(コラーゲン線維の密度640mg/cm3、5mm×5mm×100μm)と反応させて得た骨移植材料で被覆した。なお、リン酸緩衝液(PBS)とシート状の高密度コラーゲン材を反応させた後に被覆した群をコントロールとした。
各群の1匹のラットの経時変化を結果を図11に示す。移植3週後、骨移植材料で被覆した群では移植骨周囲に旺盛な新生骨形成が認められ、移植骨と母床骨の癒合が認められた。これによりこの骨移植材料は、力学的強度が要求される同種皮質骨プレートの代替材料として有用であることが示された。
Claims (7)
- 成長因子受容体アゴニストペプチド部とコラーゲン結合性ペプチド部とを含むコラーゲン結合部位含有成長因子が、少なくともコラーゲン線維が露出してなる骨移植基材に結合された成長因子アンカーリング型骨移植材料であって、
前記コラーゲン結合部位含有成長因子は、前記成長因子受容体アゴニストペプチド部とコラーゲン結合性ペプチド部とがリンカー部を介して結合されたものであり、
前記リンカー部が、コラゲナーゼの多発性嚢胞腎Iドメインである、成長因子アンカーリング型骨移植材料。 - 前記骨移植基材が、コラーゲン線維の密度が100〜800mg/cm3である高密度コラーゲン材、またはカルシウム含有量が95〜60%に酸処理されたコラーゲン露出骨材である、請求項1記載の成長因子アンカーリング型骨移植材料。
- 前記高密度コラーゲン材がシート状である、請求項2記載の成長因子アンカーリング型骨移植材料。
- 前記成長因子受容体アゴニストペプチド部は、塩基性線維芽細胞増殖因子であることを特徴とする、請求項1〜3のいずれかに記載の成長因子アンカーリング型骨移植材料。
- 成長因子受容体アゴニストペプチド部とコラーゲン結合性ペプチド部とを含むコラーゲン結合部位含有成長因子を含有する溶液と、コラーゲン線維が露出してなる骨移植基材とを含み、
前記コラーゲン結合部位含有成長因子が、前記成長因子受容体アゴニストペプチド部とコラーゲン結合性ペプチド部とがリンカー部を介して結合されたものであり、前記リンカー部が、コラゲナーゼの多発性嚢胞腎Iドメインである、成長因子アンカーリング型骨移植材料製造用キット。 - 前記骨移植基材が、コラーゲン線維の密度が100〜800mg/cm3である高密度コラーゲン材である、請求項5記載の成長因子アンカーリング型骨移植材料製造用キット。
- 成長因子受容体アゴニストペプチド部とコラーゲン結合性ペプチド部とを含むコラーゲン結合部位含有成長因子を含有する溶液と、コラーゲン露出骨材調製溶液とを含み、
前記コラーゲン結合部位含有成長因子が、前記成長因子受容体アゴニストペプチド部とコラーゲン結合性ペプチド部とがリンカー部を介して結合されたものであり、前記リンカー部が、コラゲナーゼの多発性嚢胞腎Iドメインであり、
前記成長因子受容体アゴニストペプチド部が、塩基性線維芽細胞増殖因子であることを特徴とする、成長因子アンカーリング型骨移植材料製造用キット。
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