JP5499270B2 - アフィニティー機能を有する多孔膜を製造する方法およびタンパク質を分離精製する方法 - Google Patents

Description

本発明は、多孔膜を製造する方法及びタンパク質を分離精製する方法に関する。

近年、様々な研究開発、分析現場において、作業の省力化や試料の減量、また、データの精密化を目的として、多種多様な試料や情報を同時に処理することを可能にするハイスループット化が進められている。例えば、生体内の抗原抗体反応に基づく抗体医薬の分野において、膨大な種類のタンパク質を選別するスクリーニングが行われており、その際、一度に多種のタンパク質を精製することが必要とされる。抗体医薬は、患部に選択的に作用するため副作用が少ないことから、注目されている。通常、遺伝子組換えタンパク質は、大腸菌又は動物細胞を宿主として生産され、このとき、多数の不純物タンパク質も同時に生産される。そのため、宿主である細胞を破砕し、目的タンパク質を溶出させた後、細胞の破砕物を目的タンパク質から遠心分離又はフィルターにより分離する必要がある。その後、目的タンパク質及び不純物タンパク質を含む液体を各種のクロマトグラフィーにより処理して、目的タンパク質を分離精製する。クロマトグラフィーの種類としては、篩分効果による分離を利用したゲルろ過クロマトグラフィー、タンパク質の担体への吸着力の差を利用する吸着クロマトグラフィー（イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー）がある。

近年、特定のタンパク質と特異的にかつ可逆的に吸着するリガンドを有する担体を用いて、タンパク質を分離精製するアフィニティークロマトグラフィーが注目されている。これは、アフィニティークロマトグラフィーは他のクロマトグラフィーと比べて精製効率及び回収率が高く、また、一度に多量の試料を処理できるメリットがあるためである。

例えば、特許文献１では、担体としてのアガロースビーズにニトリロ三酢酸の誘導体がアフィニティーリガンドとして化学反応により導入され、ニトリロ三酢酸の誘導体とニッケルとで錯体が形成された金属キレートアフィニティークロマトグラフィーが開示されている。特許文献２では、ヒスチジン残基を含む親和性ペプチドを直接的又は間接的に結合したタンパク質（Ｈｉｓ−ｔａｇタンパク質）を、特許文献１の金属キレートアフィニティークロマトグラフィーを用いて分離精製する方法が開示されている。

多孔膜を担体として用いたアフィニティークロマトグラフィーも知られている。例えば、特許文献３では、多孔質架橋セルロース膜を予め担体として用意し、これに化学反応により、四級アンモニウム基およびジエチルアミノアチル基からなるアフィニティーリガンドを導入する方法が開示されている。非特許文献１には、アルミナ多孔膜を予め用意し、これにラジカル重合によりポリマー鎖を導入した後、ニトリロ三酢酸の誘導体をポリマー鎖末端に固定化し、ニトリロ三酢酸の誘導体とニッケルとで錯体を形成させて得られる金属キレートアフィニティークロマトグラフィーが開示されている。

特開昭６３−４４９４７号公報 特開昭６３−２５１０９５号公報 特表２００９−５０３１６０号公報

Biomacromolecules、２００７年、第８巻、p.3102-3107

特許文献１及び２に開示されるような、ビーズを担体として用いたアフィニティークロマトグラフィーの場合、目的タンパク質を含む被処理液をクロマトグラフィーにより処理する前に、被処理液から遠心分離又はフィルターろ過により細胞の破砕物等の懸濁物質を除去する必要がある。そのため、工程が多く、目的タンパク質を含む被処理液が多量に必要とされる。また、高速処理を行うと被処理液がビーズ間を素抜けするチャネリングが発生し、目的タンパク質がリガンドに吸着されずにろ過液側に透過してしまうという問題もある。

一方、多孔膜を担体として用いたアフィニティークロマトグラフィーの場合、目的タンパク質、不純物タンパク質及び細胞破砕物を含む被処理液を処理したときに、多孔膜の細孔による篩い分けにより細胞の破砕物と目的タンパク質及び不純物タンパク質とを分離しながら、アフィニティーリガンドにより目的タンパク質と不純物タンパク質とを分離することが可能である。すなわち、多孔膜を担体として用いたアフィニティークロマトグラフィーによれば、一段プロセスでの分離精製が可能である。さらに、目的タンパク質を含む液体が細孔内に担持されたリガンドまで強制流により送液されるため、リガンドと目的タンパク質との接触効率が高く、高速処理が可能である。スケールアップが容易であるという利点もある。

しかしながら、多孔膜を担体として用いたアフィニティークロマトグラフィーは、従来、多孔膜を作製した後でそこに化学反応によりアフィニティーリガンドを導入する方法により製造されているため、製造に要する工程が複雑である。低コスト化のため、より簡易な工程により多孔膜を担体として用いたアフィニティークロマトグラフィーを製造する方法の開発が求められている。

本発明の目的は、タンパク質の分離精製に好適なアフィニティー機能を有する多孔膜を、簡易な工程で製造することを可能にする方法を提供することにある。また、本発明は、係る方法により得ることのできる多孔膜を用いたタンパク質の分離精製方法を提供することも目的とする。

本発明者らは、鋭意検討を重ねた結果、アフィニティーリガンド及びこれに結合した疎水性鎖を有する有機化合物を含有する原液から、相分離法を利用して多孔膜を形成させることにより、分離精度が高いアフィニティー機能を有する多孔膜を簡易な工程で製造できることを見出し、本発明を完成した。

すなわち、本発明は、以下の方法に関する。
（１）ポリマーと、ポリマーに対して親和性を有する有機液体と、アフィニティーリガンド及びこれに結合した疎水性鎖を有する有機化合物と、を含有し、ポリマーの濃度が高い濃厚相と、濃厚相よりもポリマーの濃度が低い希薄相とに相分離している相分離混合物を形成させる工程を備える、多孔膜を製造する方法。
（２）疎水性鎖がオレイン酸に由来する基である、（１）の方法。
（３）アフィニティーリガンドがニトリロ三酢酸に由来する基である、（１）又は（２）の方法。
（４）有機化合物のポリマーに対する質量比が、０．０５〜０．１である（１）〜（３）のいずれかの方法。
（５）ポリマーがセルロース誘導体である（１）〜（４）のいずれかの方法。
（６）（１）〜（５）のいずれかの方法によって得ることのできる多孔膜を用いたろ過により、目的タンパク質を分離精製する方法。
（７）目的タンパク質がヒスチジン残基を末端に有するタンパク質である（６）の方法。

本発明によれば、タンパク質の分離精製に好適なアフィニティー機能を有する多孔膜を、簡易な工程で製造することが可能である。工程が簡易であることから、多孔質膜を低コストで提供することができる。

アフィニティーリガンドを化学反応により多孔膜の表面に固定化する従来の方法によれば、多孔膜内部の細孔内へのリガンドの導入が難しいことから、多孔膜表面におけるリガンド密度の粗密が生じ、目的タンパク質の分離性能が低下してしまう問題がある。これに対して、本発明の方法によれば、多孔質表面におけるリガンド密度の粗密が生じにくい。また、従来のように化学反応によってアフィニティーリガンドを導入する際、使用するアルカリ、酸、酸化剤等の薬剤により、有機材料から形成された多孔膜自体が劣化してしまうという問題があるのに対して、本発明の方法はそのような問題を回避できる。有機材料を用いた多孔膜は、一般に無機材料を用いた多孔膜と比較して製造コストが抑制される。

多孔膜の一実施形態を示す概略模式図である。 多孔膜を用いて、不純物タンパク質を含む被処理液から目的タンパク質を分離精製した結果を示すグラフである。 多孔膜を用いて、大腸菌破砕物を含む被処理液から目的タンパク質を分離精製した結果を示すグラフである。 種々の量のアフィニティーリガンドが固定化された多孔膜を用いて目的タンパク質を分離精製した結果を示すグラフである。

以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明する。ただし、本発明は、以下の実施形態に限定されるものではなく、その要旨の範囲内で種々変形することができる。

［アフィニティー機能を有する多孔膜を製造する方法］
本実施形態に係る方法は、ポリマーと、ポリマーに対して親和性を有する有機液体と、アフィニティーリガンド及びこれに結合した疎水性鎖を有する有機化合物（以下場合により「リガンド化合物」という。）と、を含有し、ポリマーの濃度が高い濃厚相と、濃厚相よりもポリマーの濃度が低い希薄相とに相分離している相分離混合物を形成させる工程と、相分離混合物から、ポリマーが細孔を形成している多孔質膜を形成させる工程と、を備える。

上記ポリマーは、多孔膜において細孔を形成する基材として機能する。このポリマーは、特に限定されないが、例えば、ポリスルホン、ポリエーテルスルホン、ポリアクリロニトリル、酢酸セルロース、プロピオン酸セルロース、酪酸セルロース、ポリフッ化ビニリデン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリカーボネート、ポリエステル、ポリスチレン及びポリメチルメタクリレートからなる群より選ばれる少なくとも１種である。これらの中でも、酢酸セルロース、プロピオン酸セルロース及び酪酸セルロースのようなセルロース誘導体が好ましい。これらセルロース誘導体は、高い親水性を有し、不純物タンパク質の多孔膜への非特異的吸着を抑制することができる。ポリマーの分子量は、製膜性や強度等を考慮して適宜選定することができる。異なる分子量のポリマーがブレンドされていてもよい。

ポリマーに対して親和性を有する有機液体は、常温（例えば２０℃）又は高温（例えば５０〜３００℃）においてポリマーを溶解する。ポリマーをこの有機液体に溶解することにより、均一なポリマー溶液が形成される。

ポリマーがポリスルホン又はポリエーテルスルホンである場合、有機液体は、Ｎ−メチル−２−ピロリドン、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド及びＮ，Ｎ−ジメチルアセトアミド等から選ばれる。ポリマーがポリアクリロニトリルである場合、有機液体は、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセトアミド、ジメチルスルホキシド及びＮ−メチル−２−ピロリドン等から選ばれる。ポリマーが酢酸セルロース、プロピオン酸セルロース及び酪酸セルロースなどのセルロース誘導体である場合、非溶媒誘起相分離法が利用されるときの有機液体は、アセトン、ジオキサン、ジメチルスルホキシド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセトアミド、Ｎ−メチル−２−ピロリドン及びＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド等から選ばれ、熱誘起相分離法が利用されるときの有機液体（潜在溶媒）は、トリエチレングリコール、２−メチル−２，４−ペンタンジオール及び２−エチル−１，３−ヘキサンジオール等から選ばれる。ポリマーがポリフッ化ビニリデンである場合、非溶媒誘起相分離法が利用されるときの有機液体は、Ｎ−メチル−２−ピロリドン、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセトアミド及びジメチルスルホキシド等から選ばれ、熱誘起相分離法が利用されるときの有機液体（潜在溶媒）は、フタル酸ジメチル、フタル酸ジエチル、フタル酸ジブチル、フタル酸ジシクロヘキシル、フタル酸ジヘプチル、フタル酸ジオクチル及びフタル酸ジ（２−エチルヘキシル）のようなフタル酸エステル類；γ―ブチロラクトン、エチレンカーボネイト、プロピレンカーボネイト、シクロヘキサノン、アセトフェノン及びイソホロンのようなケトン類；安息香酸エステル類；並びにリン酸エステル類から選ばれる。ポリマーがポリエチレンである場合、有機液体は、フタル酸ジブチル、フタル酸ジヘプチル、フタル酸ジオクチル、フタル酸ジ（２−エチルヘキシル）、フタル酸ジイソデシル及びフタル酸ジトリデシルのようなフタル酸エステル類；流動パラフィンのようなパラフィン類；プロピレングリコールジカプレート及びプロピレングリコールジオレエートのようなグリセリンエステル類；アジピン酸エステル類；並びにリン酸エステル類から選ばれる。これら有機液体は、単独で使用してもよいし２種以上を組み合わせて使用してもよい。

リガンド化合物は、目的タンパク質と特異的にかつ可逆的に吸着するアフィニティーリガンドと、このアフィニティーリガンドを担体としての多孔体に固定化するための疎水性鎖とを有する。相分離混合物において、リガンド化合物は、ポリマーと親和性を有する疎水性鎖が濃厚相側、リガンドが希薄相側に向いた状態になる。その結果、多孔膜においてリガンドが細孔表面に配され、タンパク質の吸着が可能となる。

疎水性鎖は、ポリマーに対して親和性を有する。リガンド導入の容易さ及びポリマーとの親和性を調整し易いことから、疎水性鎖は、直鎖若しくは分岐状のアルキル基又はアリール基であることが好ましい。汎用性、操作性およびコスト面から、飽和脂肪酸に由来する飽和脂肪族基又は不飽和脂肪酸に由来する不飽和脂肪族基がより好ましい。これら脂肪酸のアルキル鎖（脂肪族基）が短過ぎると、ポリマーの多孔体に固定化されにくくなることから、リガンド化合物は、ラウリル酸、ミリスチン酸、バルミチン酸、オレイン酸及びベヘニン酸などの高級脂肪酸に由来する脂肪族基を有することがより好ましい。

アフィニティーリガンドは、目的タンパク質を特異的かつ可逆的に吸着できるものであれば特に限定されないが、タンパク質のアミノ酸側鎖と固定化金属イオンとの可逆的な相互作用に基づく高いアフィニティーを示す、金属キレート系のリガンドが好ましい。金属キレート系のリガンドとしては、イミノ二酢酸、ニトリロ三酢酸、テルピリジン、ビピリジン、ポリピラゾリルホウ酸、トリエチレンテトラアミン、ビエチレンテトラアミン、又は１，４，７−トリアゾシクロノナンに由来する基を例示できる。この中で、ニトリロ三酢酸が高いアフィニティーを発現するため好ましい。

相分離混合物は、例えば、非溶媒誘起相分離法又は熱誘起相分離法により形成させることができる。非溶媒誘起相分離法では、ポリマーが有機液体に溶解している溶液に対して、該ポリマーの非溶媒である液体を添加して相分離を誘起する。熱誘起相分離法では、ポリマーが常温では溶解しないが高温で溶解する有機液体（潜在溶媒）にポリマーを溶解して、均一なポリマー溶液とし、その後、ポリマー溶液の温度を下げることにより、相分離を誘起する。化学的安定性及び機械的強度に優れた結晶性ポリマーを利用することができ、また、得られた細孔の多孔度が高く、かつ孔径分布がシャープであることから、熱誘起相分離法を利用して相分離混合物を形成することが好ましい。多孔膜の多孔度が高いと実質的な膜面積を大きくすることができるため捕捉できるタンパク質の吸着量が多くなる。また、孔径分布がシャープな多孔膜では、被処理液が各細孔に均一に流れるため、破過するまでに利用できるリガンド量が多くなる。孔径分布が大きいと、まず初めに流れやすい大孔径の細孔上のリガンドがタンパク吸着し、ここが破過する時点により膜の寿命が決定される。

ポリマー、有機液体、及びリガンド化合物を含有する製膜原液から、相分離混合物が形成される。製膜原液は、必要に応じてポリエチレングリコール及びポリビニルピロリドンなどの高分子量の有機物、テトラエチレングリコールなどの低分子量の有機物、又は、塩化リチウム、シリカ、炭酸カルシウム及びアルミナ等の無機物を含有してもよい。

製膜原液を準備する際、全ての成分を同時に混合してもよいし、各成分を順次混合してもよい。あるいは、一部の成分を予備混合した後、そこに残りの成分を混合してもよい。混合条件（混合の温度や混合のエネルギー）、混合時の雰囲気（真空下又は不活性気体雰囲気）は、適宜選定することができる。混合を行う装置としては、攪拌および温度調整が可能な設備を備えた溶解槽を用いてもよい、単軸や二軸の押出機等を用いてもよい。製膜原液の気泡を除去するために、脱泡操作を行ってもよい。

製膜原液中のポリマーの含有量は、製膜原液全体量を基準として１０〜６０質量％が好ましい。この含有量が１０質量％以上であると、製膜性及び機械的強度の点でより優れた多孔膜を得ることができ、６０質量％以下であると、高い空隙率の多孔膜を得ることができるため、タンパク質の高い吸着量を達成することができる。リガンド化合物のポリマーに対する質量比は、０．０５〜０．１が好ましい。この質量比が０．０５以上であると、多孔膜が特に高いタンパク質の捕捉性能を示し、また、０．１以下であると、タンパク質の分離精製の際に薬剤を用いても、多孔膜の機械的及び化学的な耐性がより高く保たれる。

平膜状の多孔膜を製造する場合、製膜原液をＴダイから押出すか、又は、ガラス板等の基板に塗布することにより、平膜状に成形することができる。このとき、製膜原液を不織布に塗布して、不織布及び多孔膜から構成された複合膜を得ることもできる。中空糸状の多孔膜を製造する場合、二重環式の紡糸口金から押出し、中空状に成形することができる。この際、中空部に非溶媒、溶媒と非溶媒の混合液あるいは、空気などの流体を流すことができる。また、中空糸状の膜においても、組紐などに製膜原液を塗布した複合膜としても良い。

上記のような方法により、平膜状あるいは中空糸状に成形されたゲル状の製膜原液は、必要に応じて空走部を経て、非溶媒、非溶媒と溶媒の混合液、又は、製膜原液を冷却するための液体（例えば、水）が満たされた槽に導入され、平膜状、中空糸状の状態で固化される。固化にともなって、相分離混合物が形成される。

相分離混合物から、主として希薄相に含まれる有機液体及び場合によりその他の添加剤を抽出して、これらを除去することにより、細孔を形成する多孔体であるポリマー相を有する多孔膜を得ることができる。この際、抽出の前後で、透水性能の向上及び強度特性の向上のため、延伸及び／又は熱処理を行ってもよい。

図１は、多孔膜の一実施形態を示す概略模式図である。図１に示す多孔膜１０は、細孔２を形成しているポリマー（ポリマー相）１と、ポリマー相１の表面に配されたリガンド化合物５とから構成される。リガンド化合物５は、アフィニティーリガンド４と、これに結合した疎水性鎖３とを有する。疎水性鎖３がポリマー相１に固定化されている。図１のリガンド化合物５は、オレイン酸に由来する脂肪族基である疎水性鎖と、ニトリロ三酢酸に由来するリガンドとを有する。

本実施形態に係る多孔質膜の細孔径は、好ましくは１０ｎｍ〜１０μｍ、より好ましくは５０ｎｍ〜５μｍである。細孔径が１０ｎｍ以上であれば、膜のろ過抵抗が低く、より高いろ過性能が得られ、さらに、不純物タンパク質の透過性も高い。また、細孔径が１０μｍ以下であれば、ミクロンオーダーの細胞破砕物とタンパク質との分離性能が得に優れる。

上記細孔径は、粒子径が既知の指標物質を多孔膜によってろ過したときの、阻止率が９０％以上である指標物質の大きさを細孔径とする方法により測定することができる。具体的には、指標物質として単分散ポリスチレン粒子を用いることにより、２０〜３０ｎｍ以上の細孔径を有する多孔膜の測定を行うことができる。また、指標物質としてタンパク質を用いることにより、２０〜３０ｎｍ以下の細孔径を有する多孔膜の測定を行うことができる。

本実施形態に係る多孔膜の形態は、平膜状でも、中空糸状でもよい。平膜状の場合は、膜を形成するポリマーの単体でもよいし、不織布等の支持体上に多孔膜を担持させて複合膜を形成してもよい。膜厚は、５μｍ〜１０００μｍであることが好ましい。膜厚が５μｍ以上であれば、タンパク質を含有する液体と膜表面のアフィニティーリガンドとの接触が大きくなり、より高い分離精度が達成できる。また、膜厚が１０００μｍ以下であれば、被分離液体が膜を透過する際の抵抗が小さく、より高い透水性能が得られる。

中空糸状の多孔膜の場合、その内径（中空部分に相当する。）は１００μｍ〜５ｍｍであることが好ましい。内径が１００μｍ以上であれば、液体が中空部を流れるときに発生する圧力損失を低く抑えることが可能であり、また、５ｍｍ以下であれば、単位体積当たりの膜充填密度を高くすることができ、コンパクト化が可能である。

中空糸状の多孔膜の膜厚は５μｍ〜１０００μｍであることが好ましい。膜厚が５μｍ以上であれば、タンパク質を含有する液体と膜表面のアフィニティーリガンドとの接触が大きくなり、より高い分離精度が達成でき、さらに、内圧ろ過式中空糸多孔膜に求められる十分な内圧破裂強度を得ることがでる。また、膜厚が１０００μｍ以下であれば、単位体積当たりの膜充填密度を高くすることができ、コンパクト化が可能である。

本実施形態に係る多孔膜の空隙率は、２０％〜９０％であることが好ましい。空隙率が２０％以上であれば、特に優れた透水性能と高い吸着容量が得られ、また、９０％以下であれば、実用的な強度特性が得られる。

上記空隙率は、細孔内に水を含浸した多孔膜の湿潤状態の質量と絶乾状態の質量との差分を、膜体積で除する方法により測定することができる。中空糸状の多孔膜の場合は、中空部の体積を除いた膜厚部分の空隙率が、２０％〜９０％であることが好ましい。

［タンパク質の分離精製方法］
本実施形態に係るアフィニティー機能を有する多孔膜を用いて、目的タンパク質を分離精製することができる。以下、分離精製方法に関して詳細に説明する。

目的とする遺伝子組換えタンパク質は、大腸菌、酵母、動物細胞等を宿主として生産することができる。あるいは、無細胞合成系にて生産することもできる。この際、目的タンパク質の他に不純物タンパク質も生産されるため、これらを分離精製する必要がある。目的タンパク質を、そのままの状態で分離精製するためには習熟した技術が必要でなり、従って、分離精製を容易にするため、目的タンパク質は、低分子のタグを付けたり、あるいは、酵素であるGST（Glutathione S-Transferase）を結合した融合タンパク質として生産されることが好ましい。中でも、目的タンパク質の活性や立体障害に影響を与えることが少ない低分子のタグを付与することが好ましい。

このような低分子のタグとしては、Ｈｉｓ−ｔａｇ、ＦＬＡＧ、ＨＡＴ−ｔａｇ、ＳｔｒｅｐｔａｇＩＩどが例示できる。ヒスチジン残基を末端に有するＨｉｓ−ｔａｇが特に好ましい。Ｈｉｓ−ｔａｇは、全ての宿主で発現可能であること、分子量が低いため付加による目的タンパクの活性及び立体障害への影響が小さいこと、精製するコストが安価であること、変性剤存在下でも分離精製が可能であることなど多くのメリットを有している。

タグを付加し生産された組換えタンパク質は、その後、菌体や細胞を破砕して溶解させる。この溶解された目的タンパク質及び破砕細胞を含む被処理液が、本実施形態に係る多孔膜によってろ過される。ろ過の前に、多孔膜に対して、リガンドをＮｉ（ＩＩ）錯体化し、バッファーにより平衡化する処理が予め施される。ろ過により、目的タンパク質を多孔膜中のアフィニティーリガンドに固定化させることができる。

錯体形成のための金属イオンとして、Ｎｉ（ＩＩ）の他、Ｃｕ（ＩＩ）、Ｃｏ（ＩＩ）、Ｆｅ（ＩＩ）などの遷移金属イオンも使用することができる。リガンドがニトリロ三酢酸に由来する基であり、Ｈｉｓ−Ｔａｇを結合した目的タンパク質を分離精製する場合、タンパク質と金属キーレトリガンドとの特に高いアフィニティーを示すことから、Ｎｉ（ＩＩ）が好ましい。

このように、本実施形態に係る多孔膜を用いれば、細胞破砕物を予め遠心分離又はフィルターによって分離する必要がないため、ビーズを担体としたアフィニティークロマトグラフィーに比べて、分離精製プロセスを簡素化でき、少量のサンプルから目的タンパク質を短時間で得ることができる。

ろ過の後、多孔膜のアフィニティーリガンドに弱く非特異的に結合した不純物タンパク質をリン酸緩衝液などのバッファー溶液を用いた洗浄により除去する。

次いで、溶出バッファーを用いて、目的タンパク質を多孔膜から溶出し、分離精製された目的タンパク質を得ることができる。溶出バッファーは、例えば、イミダゾール又はヒスチジンと、キレート剤と、二価金属イオンとを含有する。

タンパク質の分離精製の際、平膜状の多孔膜はホルダーに固定した状態で使用することができる。中空糸状の多孔膜の場合、複数本の多孔膜を束ね、これをエポキシ樹脂又はウレンタン樹脂等を用いてプラスチック製のハウジング等に固定した膜モジュールの形態で多孔膜を使用することができる。

ろ過の駆動力は、ポンプ又はエアーを用いた加圧であってもよい。ホルダーにセットされた平膜状の多孔膜をシリンジ等に設置し、手動で加圧ろ過することもできる。タンパク質を含む被処理液を多孔膜でろ過する際の圧力、ろ過流速等の操作条件は、ろ過圧力が高すぎると膜が破損しやすくなり、ろ過流束が高すぎると目的タンパク質がアフィニティーリガンドに補足できず素抜けしやすくなるので、これらの因子を考慮して適宜選択することができる。

以下、実施例を挙げて本発明についてさらに具体的に説明する。ただし、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。

［実施例１］
（リガンド及びこれに結合した疎水性鎖を有する有機化合物の合成：ＡＢ−ＮＴＡ化合物）
Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）１ｍＬに、１ｍｍｏｌのオレイン酸、１ｍｍｏｌのＮ−ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）、及び１．１ｍｍｏｌのＮ，Ｎ’−ジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ）を混合し、４０℃で２０時間反応を進行させて、ＮＨＳエステル化オレイン酸を得た。得られたＮＨＳエステル化オレイン酸０．１１ｍｍｏｌ、０．１ｍｍｏｌのアミノブチルニトリロトリアセテート（ＡＢ−ＮＴＡ）、ＤＭＦ４７０μＬ、トリエチルアミン２００μＬ及び水３０μＬを混合し、混合物を４０℃で２０時間攪拌し、反応を進行させた。反応生成物の分子量をマトリックス支援レーザー脱離イオン化法（ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ法）により測定し、反応生成物中に含まる結合をＮＭＲ法により同定し、さらに、反応生成物の元素分析を質量分析法（ＣＨＮ定量法）により行った。その結果、反応生成物は、ニトリロ三酢酸に由来するリガンドと、リガンドに結合した、オレイン酸に由来する疎水性鎖とを有する有機化合物（ＡＢ−ＮＴＡ化合物）であることが確認された。

（アフィニティー機能を有する多孔膜の製造）
セルロースアセテート（２０質量％）及びＡＢ−ＮＴＡ化合物（１質量％）を、有機液体であるトリエチレングリコール（７９質量％）に１５０℃にて溶解し、均一なポリマー溶液（製膜原液）を得た。このポリマー溶液を加熱したホットステージ上に置いたガラス板に塗布し、塗布されたポリマー溶液の上からガラス板を被せた。その後、室温雰囲気下で徐冷することによりポリマー溶液を固化させて、相分離混合物であるポリマー薄膜を形成させた。得られたポリマー薄膜を水で洗浄することにより、膜中に残留するトリエチレングリコールを除去し、薄膜状の多孔膜を得た。得られた多孔膜の表面、裏面及び断面をＦＥ−ＳＥＭを用いて観察したところ、４００ｎｍ程度の孔径を有する細孔がセルロースアセテートによって形成されていることが確認された。

多孔膜から切り出した直径２５ｍｍの円形のサンプルをホルダーにセットした。ホルダーをシリンジにセットし、粒子径５０、１００又は３００ｎｍのポリスチレンラテックス粒子をろ過した。原液中とろ過液中のポリスチレンラッテクス粒子の濃度を、分光光度計を用いて測定される３８５ｎｍの吸光度から求めた。その結果、粒子径５０、１００又は３００ｎｍのポリスチレンラテックス粒子の除去率は、それぞれ、９５、９１又は５５％であった。この結果から、多孔膜は、数μｍオーダーの大きさを有する細胞破砕物は除去しながら、不純物タンパク質は透過し得るサイズの孔径を有することが確認された。

（固定化されたＡＢ−ＮＴＡ化合物の定量）
上記で作成した、リガンドを有するＡＢ−ＮＴＡ化合物が固定化された多孔膜から、直径２５ｍｍの円形のサンプルを切り出した。サンプルを０．１Ｍの硫酸ニッケル水溶液に２時間浸漬し、その後、純水洗浄により余分な硫酸ニッケルを除去し、ニッケルとＡＢ−ＮＴＡの錯体を形成させた。次に、５０ｍＭのエチレンジアミン四酢酸ナトリウム塩に２時間浸漬することにより、ＡＢ−ＮＴＡ化合物と錯形成していたニッケルを遊離させ、遊離したニッケルをＣＩＰ発光分光分析装置を用いて分析した。その結果、１．２×１０^−４ｍｍｏｌのニッケルが観測され、タンパク質の分離精製に十分な量のＡＢ−ＮＴＡ化合物を固定化できたことが確認された。

（タンパク質の分離精製）
目的タンパク質としての、ヒスチジン残基（Ｈｉｓ−ｔａｇ）をＮ末端に有するenhanced green fluorescence protein（Ｈｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰ）と、不純物タンパク質としての(Tetramethylrhodamine-5-isothiocyanate)-BSA（ＴＲＩＴＣ−ＢＳＡ）とを含む混合液からの、上記の多孔膜を用いた目的タンパク質の分離精製を、下記（１）〜（６）の操作に従って行った。直径２５ｍｍの円形に切り出された多孔膜をホルダーにセットし、このホルダーをシリンダーに取り付け、ろ過を行った。
（１）多孔膜の洗浄：多孔膜に脱イオン水１０ｍＬを通水することにより、多孔膜を洗浄した。
（２）金属イオンの添加：０．１Ｍの硫酸ニッケル溶液５ｍＬを多孔膜に通水し、Ｎｉ(ＩＩ）とＡＢ−ＮＴＡ化合物との錯体を形成させた。
（３）多孔膜の洗浄：脱イオン水１０ｍＬを通水することにより多孔膜を洗浄した後、ｐＨ７．４のリン酸緩衝液（２０ｍＭのリン酸緩衝液及び０．５Ｍの塩化ナトリウムを含む混合水溶液）１０ｍＬを通水し、多孔質膜のコンディショニングを行った。
（４）目的タンパク質及び不純物タンパク質の添加：０．０４ｍｇ／ｍＬのＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰと、１ｍｇ／ｍＬのＴＲＩＴＣ−ＢＳＡとを含む混合液２ｍＬを、多孔膜に通液した。原液中のタンパク質の質量（以下「原液画分」という。）と、ろ過液中のタンパク質の質量（以下「非吸着画分」という。）とを、混合液中のＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰ及びＴＲＩＴＣ−ＢＳＡの濃度を蛍光測定（励起波長：４８８ｎｍ、蛍光波長：５１０ｎｍ）することにより求めた。結果を図２に示した。Ｈｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰの原液画分は９０μgであり、ＴＲＩＴＣ−ＢＳＡの原液画分は２０００μｇであった。Ｈｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰの非吸着画分は３μｇであり、ＴＲＩＴＣ−ＢＳＡの非吸着画分は１２００μｇであった。目的タンパク質であるＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰの９５質量％以上が多孔膜中に固定化できた。一方、不純物タンパク質であるＴＲＩＴＣ−ＢＳＡの約６０質量％が多孔膜に吸着せずに透過した。
（５）多孔膜の洗浄：多孔膜にリン酸緩衝液１０ｍＬを通水することにより、多孔膜を洗浄した。このときのろ過液中のタンパク質の質量（以下「素通り画分」という。）は、Ｈｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰが２５μｇであり、ＴＲＩＴＣ−ＢＳＡが７００μｇであった。不純物タンパク質であるＴＲＩＴＣ−ＢＳＡは、上記の非吸着画分と素通り画分を合わせると９５質量％以上が多孔膜に吸着されずに多孔膜を透過し、非特異的な吸着が抑制できることが確認された。一方、洗浄の際に溶出したＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰは、主に、ホルダー又はシリンダー中に残留した成分である。
（６）目的タンパク質の溶出：多孔膜にｐＨ７．４の溶出緩衝液（２０ｍＭのリン酸緩衝液、０．５Ｍの塩化ナトリウム及び５００ｍＭのイミダゾールを含む混合液）１０ｍＬを通液し、目的タンパク質を溶出した。得られたろ過液中のタンパク質の質量（以下「溶出画分」という。）は、目的タンパク質であるＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰが４５μg（９．２μg／ｃｍ^２）であり、不純物タンパク質であるＴＲＩＴＣ−ＢＳＡは０であった。

以上の結果から、ＡＢ−ＮＴＡ化合物をリガンドとして担持した多孔膜は、ＴＲＩＴＣ−ＢＳＡを不純物として含有する混合液中から、目的タンパク質であるＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰを選択的に分離精製できることが確認された。

［実施例２］
実施例１で作成した多孔膜を用い、手順（４）においてＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰの発現を誘導させた大腸菌の破砕物が共存するＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰ溶液を、濃度０．０４ｍｇ／ｍＬで２ｍＬろ過したこと以外は、実施例１の（タンパク質の分離精製）の手順に従い、てＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰの分離精製を行った。結果を図３に示した。Ｈｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰが３５μg回収された。得られたろ過液の純度を確認するため、電気泳動法（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）により、原液中およびろ過液中の成分の分析を行った。その結果、原液中には不純物タンパク質に由来する多数のバンドが確認されたが、ろ過液中には、Ｈｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰに由来する分子量４３０００のバンドのみが観測された。得られたろ過液は清澄であり、大腸菌の破砕物の除去も同時に行うことができた。この様に、アフィニティー機能を有する多孔膜によれば、大腸菌の破砕物を予め前処理で分離することなく、一段のプロセスの分離精製により、高純度の目的タンパク質を回収できることが示された。

［実施例３］
実施例１の（アフィニティー機能を有する多孔膜の製造）と同様の操作において、セルロースジアセテートに対するＡＢ−ＮＴＡ化合物の質量の比率を０〜０．１の範囲で変化させ、薄膜状の多孔膜を得た。さらに、得られた種々の量のＡＢ−ＮＴＡ化合物を含有する多孔膜を用い、実施例１に記載の（タンパク質の分離精製）の手順に従って、０．０４ｍｇ／ｍＬのＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰ溶液２ｍＬをろ過し、Ｈｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰが多孔膜に捕捉された量を調べた。得られた結果を図４に示した。その結果、ＡＢ−ＮＴＡ化合物の比率が０．０５〜０．１の範囲でＨｉｓ−ｔａｇ ＥＧＦＰの捕捉量は飽和した。

本発明は、タンパク質の分離精製の分野において産業上の利用可能性を有する。

１…ポリマー相、２…細孔、３…疎水性鎖、４…リガンド、５…アフィニティーリガンド及びこれに結合した疎水性鎖を有する有機化合物（リガンド化合物）、１０…多孔膜。

Claims (4)

1. ポリマーと、前記ポリマーに対して親和性を有する有機液体と、アフィニティーリガンド及びこれに結合した疎水性鎖を有する有機化合物と、を含有し、前記ポリマーの濃度が高い濃厚相と、前記濃厚相よりも前記ポリマーの濃度が低い希薄相とに相分離している相分離混合物を形成させる工程を備え、
   前記疎水性鎖がオレイン酸に由来する基であり、
   前記アフィニティーリガンドがニトリロ三酢酸に由来する基であり、
   前記ポリマーがセルロース誘導体である、多孔膜を製造する方法。
2. 前記有機化合物の前記ポリマーに対する質量比が、０．０５〜０．１である請求項１記載の多孔膜を製造する方法。
3. 請求項１又は２記載の多孔膜を製造する方法によって得ることのできる多孔膜を用いたろ過により、目的タンパク質を分離精製する方法。
4. 前記目的タンパク質がヒスチジン残基を末端に有するタンパク質である請求項３記載の目的タンパク質を分離精製する方法。

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