JP4242447B2 - Ｃｄ４０リガンド遺伝子の突然変異の検出および治療 - Google Patents

Description

発明の技術分野
本発明は、細胞表面抗原ＣＤ４０のリガンドであるＣＤ４０リガンド（ＣＤ４０Ｌ）に関する。更に詳しくは、本発明は、ＣＤ４０Ｌ遺伝子における突然変異を検出する方法、および血清ＩｇＭ濃度を増加させ且つ免疫グロブリンの他のイソタイプ全部の濃度を減少させる症候群の治療法に関する。
発明の背景
ヒトＸ連鎖高ＩｇＭ症候群は、高濃度の血清ＩｇＭおよび低（実際的に検出不能な）濃度の免疫グロブリンの他のイソタイプを特徴とする。男性患者は、通常、生後１年以内に反復感染の開始を経験している。臨床経過としては、間欠性好中球減少症およびニューモシスティス（Ｐｎｅｕｍｏｃｙｓｔｉｓ）肺炎、並びに低ガンマグロブリン血症を一層代表する感染、例えば、細菌性耳炎、静脈洞炎および肺炎がありうる。この症状は医学的介入の不存在下において致命的であるが；しかしながら、患者は、特に、誕生後すぐに治療を開始した場合、典型的に、静脈内ガンマグロブリンから成る持続療法に対して十分に反応する。
男性患者は、正常な数の循環性ＢおよびＴリンパ球を有するが、胚中心の不存在によるリンパ節増殖症は共通している（ノタランジェロ（Ｎｏｔａｒａｎｇｅｌｏ）ら、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１０：２１５，１９９２）。このような患者からのＢ細胞は、正常なＢ細胞培養においてクラスを変化させることが知られているＴ細胞系と一緒にインビトロで循環された場合にイソタイプを変化させることができ、それらは正常であると考えられる（ヘンドリックス（Ｈｅｎｄｒｉｃｋｓ）ら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０：２６０３，１９９１；メーヤー（Ｍａｙｅｒ）ら、Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３１４：４０９，１９８６）。
高濃度の血清ＩｇＭは、複合可変免疫欠乏症（ＣＶＩＤ）および後先天性風疹を含む他の症候群で生じる。一次遺伝免疫欠乏症の結果としてかまたは後天性ＣＤ４＋Ｔ細胞異常（例えば、ＡＩＤＳ）の結果としてのＴ細胞の活性化の変化は、ＣＤ４０Ｌに誘導されたＢ細胞活性化シグナルを減少させることもあり、したがって、これらの状態で見られるＢ細胞機能の二次異常を部分的に説明することができる。
ＣＤ４０細胞表面抗原は、Ｂ細胞増殖および分化においてある重要な役割を果たすことが示された。Ｂ細胞の表面上に存在する細胞表面抗原であるヒトＣＤ４０タンパク質（ＣＤ４０）は、２７７アミノ酸を有する分子量３０，６００のペプチドであり、１９アミノ酸分泌シグナルペプチドは主として疎水性アミノ酸を含む。ヒトＣＤ４０をコードしているｃＤＮＡは、バーキットリンパ腫細胞系ラジ（Ｒａｊｉ）から製造されたｃＤＮＡライブラリーから単離された（スタメンコビック（Ｓｔａｍｅｎｋｏｖｉｃ）ら、ＥＭＢＯ Ｊ．８：１４０３，１９８９）。
活性ＣＤ４＋Ｔ細胞は、ＣＤ４０のリガンド（ＣＤ４０Ｌ）を高レベルで発現する。膜に結合した糖タンパク質であるヒトＣＤ４０Ｌは、最近、本明細書中に参考として開示が包含されているスプリッグス（Ｓｐｒｉｇｇｓ）ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７６：１５４３（１９９２）および１９９２年１０月２３日出願の米国特許出願第０７／９６９，７０３号明細書に記載されたように、末梢血Ｔ細胞からクローン化された。ネズミＣＤ４０Ｌのクローニングは、アーミタージ（Ａｒｍｉｔａｇｅ）ら、Ｎａｔｕｒｅ ３５７：８０，１９９２に記載されている。ＣＤ４０Ｌは、いずれの補助刺激剤も不存在下においてＢ細胞増殖および各種免疫グロブリンイソタイプ（ＩｇＥ以外）の分泌を誘導するし、更に、サイトカイン存在下においてＩｇＥを生産することができる。
したがって、ＣＤ４０Ｌは、ＣＤ４０＋Ｔヘルパー細胞とＢ細胞との間の同族相互作用において重要な役割を果たすと考えられる。Ｘ連鎖高ＩｇＭ症候群およびその関連症候群の患者についての更に詳細な分析は、体液性免疫反応に関与するＴ細胞−Ｂ細胞相互作用についての貴重な情報を提供する。Ｘ連鎖高ＩｇＭ症候群およびその関連症候群の初期検出は、適切な治療の開始を促すことができる。したがって、当該技術分野において、Ｘ連鎖高ＩｇＭ症候群並びにＣＤ４０およびＣＤ４０Ｌがある役割を果たしているＢ細胞−Ｔ細胞相互作用の他の異常を検出するおよび確認する方法を開発する必要がある。このような症候群の別の治療法も必要とされている。
発明の概要
本発明は、ＣＤ４０Ｌ遺伝子の１種類または複数の突然変異を検出する方法であって、個体から核酸（ＲＮＡまたはＤＮＡ）を単離し、ＣＤ４０リガンド遺伝子に由来する核酸を選択的に増幅させ、そして増幅された核酸を分析して、ＣＤ４０Ｌ遺伝子に１種類の（または複数の）突然変異が存在するかどうかを決定することを含む上記方法に関する。この遺伝子の突然変異は、ＣＤ４０ＬおよびＣＤ４０の相互作用の異常を引き起こし、その結果、Ｔ細胞およびＢ細胞の相互作用に変化が生じる。このようなＴ細胞−Ｂ細胞相互作用の変化は、ヒトのＸ連鎖高ＩｇＭ症候群においてある役割を果たしているし、しかも他の症候群を引き起こすこともある。
本発明は、更に、Ｔ細胞およびＢ細胞の相互作用が影響を受けている症候群（例えば、Ｘ連鎖高ＩｇＭ症候群）の個体を治療する方法であって、有効量の可溶性ＣＤ４０Ｌを投与することを含む上記方法を提供する。可溶性の形のＣＤ４０ＬはＣＤ４０Ｌの細胞外部分を含み、例えば、ＣＤ４０Ｌの細胞外部分およびヒト免疫グロブリンのＦｃ部分を含む融合タンパク質並びにＣＤ４０Ｌの細胞外部分に対してマルチマー生成ペプチドを加えることによって生成されたＣＤ４０Ｌマチルマーがある。
本発明は、更に、Ｘ連鎖高ＩｇＭ症候群およびＣＤ４０Ｌ遺伝子が生物学的に活性なＣＤ４０Ｌをコードしていない他の症候群を矯正するために遺伝子療法を用いる方法を提供する。このような症候群を矯正する遺伝子療法は、罹患した個体からＣＤ４＋Ｔ細胞を単離し、単離されたＴ細胞を、生物学的に活性なＣＤ４０Ｌを発現するトランスフェクションベクターによってトランスフェクトし、そして生物学的に活性なＣＤ４０Ｌを発現するトランスフェクトされたＴ細胞を該個体に対して投与することを含む。
更に、胚幹細胞を用いる遺伝子を標的とする技術によって、インビボで非機能性ＣＤ４０−Ｌを発現する動物を提供する。このような動物はノックアウト動物と称され、インビボでＴおよびＢ細胞の同族相互作用を研究する場合に有用な非ヒトモデルを提供する。
【図面の簡単な説明】
図１は、ＣＤ４０−Ｌノックアウトマウスを生じさせるのに用いられた標的に到達するベクターの構築を表わすフローチャートである。エクソンは、ＣＤ４０−Ｌ遺伝子地図上で黒一色の箱形で表わされ、左から右へ１〜５までの番号を付けられている。黒一色の矢印はＰＧＫ−Ｎｅｏ遺伝子を表わし；大型の塗りつぶされていない矢印はＨＳＶ ＴＫ遺伝子を表わす。
図２は、ｐＨＲＶ−ＭＣＤ４０Ｌ＃３のための遺伝子を標的とするスキームを図示する。
図３は、遺伝子型決定のためのＰＣＲスキームを示す。ＰＣＲプライマー３は配列番号：１３に対応し；ＰＣＲプライマー４は配列番号：１４に対応し；ＰＣＲプライマー１は配列番号：１５に対応し、そしてＰＣＲプライマー２は配列番号：１６に対応する。
発明の詳細な説明
本発明は、ＣＤ４０の膜結合リガンドをコードしている遺伝子の欠乏によってＴ細胞およびＢ細胞間の相互作用が異常である症候群または症状に関する。ＴＮＦ受容体超系列のメンバーであるＣＤ４０は、Ｂリンパ球、上皮細胞およびある種の癌腫細胞系で発現されることが分かった膜結合受容体タンパク質である。ＣＤ４０に対して向けられた単クローン性抗体は、相同接着性；加した細胞寸法；抗ＩｇＭ、抗ＣＤ２０単クローン性抗体（ｍＡｂ）、ホルボールエステルまたはインターロイキン−４（ＩＬ−４）と組合わされたホルボールエステルによって活性化されたＢ細胞の増殖；並びにＩＬ−４で刺激されたＴ細胞減少培養からのＩｇＥおよびＩｇＭの生産を含むヒトＢ細胞の各種機能的作用を媒介する。これらの結果は、Ｂ細胞の増殖および分化におけるＣＤ４０およびＣＤ４０Ｌの重要性を示唆している。
ＣＤ４０Ｌは、そのＣ末端にある細胞外部分、トランスメンブラン部分およびＮ末端にある細胞内部分を有する膜結合ポリペプチドである。ＣＤ４０Ｌの可溶性変種は、細胞外部分またはそのフラグメントから製造することができる。ＣＤ４０Ｌの生物学的活性はＣＤ４０に対して結合することによって媒介され、Ｂ細胞の増殖および活性Ｂ細胞からの免疫グロブリン分泌の誘導を含む。ＣＤ４０Ｌ（可溶性オリゴマーの形、更には膜に結合した形を含む）は、活性を媒介するＩＬ−４および架橋を必要とする抗ＣＤ４０抗体とは対照的に、加えられたＩＬ−４の存在を必要とすることなくＢ細胞増殖および免疫グロブリン分泌（ＩｇＥ以外）をもたらすことができる。ＣＤ４０Ｌのクローニングおよびその各種活性のいくつかは、１９９２年１０月２３日出願の米国特許出願第０７／９６９，７０３号明細書に記載されている。
ＣＤ４０Ｌの遺伝子は、Ｈｐｒｔ遺伝子座に連鎖したネズミＸ染色体の近位部分に地図で表わされた。プローブされたヒトＣＤ４０Ｌ ｃＤＮＡを用いるヒト中期染色体のｉｎ ｓｉｔｕハイブリッド形成実験は、ヒトにおいて同様の位置を確証しており、最大数の木目模様はバンドｑ２６に地図で表わされた。ＣＤ４０Ｌの染色***置と一緒にその機能についてのインビトロの生物学的データは、この遺伝子がＸ連鎖免疫欠乏症においてある役割を果たしうることを示唆した。特に、Ｘ連鎖高ＩｇＭ症候群の患者の表現型およびこの症候群の連鎖地図位置は、機能性ＣＤ４０Ｌの発現の欠損と最も一致していた。Ｘ連鎖高ＩｇＭ症候群は、ＨＰＲＴに近いＸｑ２６に地図で表された（パタヤチー（Ｐａｄａｙａｃｈｅｅ）ら、Ｇｅｎｏｍｉｃｓ １４：５５１，１９９２年；メンシンク（Ｍｅｎｓｉｎｋ）ら、Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅｔ．７６：９６，１９８７年）。
ＣＤ４０Ｌ遺伝子の発現は、一次Ｘ連鎖高ＩｇＭ症候群の患者において、フィコル・ハイパクーでの分離によって精製された後にＣＤ３に対して免疫感作された単クローン性抗体によって活性化された末梢血Ｔ細胞を用いて実験された。可溶性ＣＤ４０タンパク質（ヒトＩｇＧ１のＦｃ部分に融合したヒトＣＤ４０の細胞外ドメインを含む融合タンパク質；本明細書中においてＣＤ４０．Ｆｃと称され、ＵＳＳＮ０７／９６９，７０３号明細書およびファンスロー（Ｆａｎｓｌｏｗ）ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９：６５５，１９９２年に記載された）を用いて、刺激されたＴ細胞を蛍光活性細胞選別（ＦＡＣＳ）によって分析した。対照細胞（正常な成人ドナーおよび／または無関係のＸ連鎖免疫欠乏症と診断された患者から精製されたＴ細胞）を同様に分析した。Ｘ連鎖高ＩｇＭ患者からのＴ細胞は、ＣＤ３抗体による活性化によって何等かの検出可能なＣＤ４０Ｌを発現することができなかったが（いくつかの実験において、一人の患者からの活性Ｔ細胞はＣＤ４０にして弱く結合すると考えられたが）、ＩＬ−２受容体（Ｔ細胞表面活性化マーカー）のα鎖を、対照ドナーからのＴ細胞について見られたのと同様のレベルで発現した。高ＩｇＭ患者からのＴ細胞は、更に、ＰＨＡまたはＣＤ３ ｍＡｂおよびＩＬ−７に対する正常な増殖反応を示した。
ＲＮＡは、前記のように刺激された患者およびドナー細胞から抽出され、そしてＰＣＲ反応のための鋳型として役立つｃＤＮＡを生じさせるのに用いられた。得られたｃＤＮＡのヌクレオチド配列分析は、４人の高ＩｇＭ患者の内の３人のＣＤ４０Ｌにおいて単点突然変異が引き起こされたことを示した。それぞれのヌクレオチド変化は独特であって、いずれもＣＤ４０Ｌの細胞外ドメインで生じた。四人目の患者から生じたＣＤ４０Ｌ ｃＤＮＡは、コーディング領域中に何等かのヌクレオチド変化を含むとは考えられず、おそらくは５′または３′非コーディング配列を必要とする別の機序が、この患者からのＴ細胞上のＣＤ４０Ｌの不存在の原因であるに違いないことが示された。
これらの突然変異が全く天然に存在しない遺伝子多形性ではなかったことを確かめるために、見出されたヌクレオチド変化の内の２種類を、ヒトＣＤ４０Ｌの完全なコーディング領域を含む哺乳動物発現ベクター中に、特定部位の突然変異誘発を用いて別個に導入した。細胞を、野生型かまたは突然変異誘発ＣＤ４０Ｌを有するベクターによってトランスフェクトし、代謝的に放射性標識し、そしてヒトＣＤ４０Ｌを発現するＣＶ１／ＥＢＮＡ細胞に対して向けられた多クローン性血清とのまたはＣＤ４０．Ｆｃとの沈降によってＣＤ４０Ｌタンパク質の発現について試験した。野生型ＣＤ４０Ｌによってトランスフェクトされた細胞は、ＣＤ４０．Ｆｃを用いて検出された３３ｋＤタンパク質を発現した。対照的に、ＣＤ４０Ｌのそれぞれの突然変異型によってトランスフェクトされた細胞は、ＣＤ４０．Ｆｃによって認識されたタンパク質を発現しなかった。多クローン性抗血清を用いる同一の溶解産物の免疫沈降の結果として、突然変異体および野生型の両方でトランスフェクトされた細胞からの、ＣＤ４０．Ｆｃによって認識されたＣＤ４０Ｌタンパク質と一緒に共移動した３３ｋＤタンパク質が認識された。ノーザンブロット分析は、野生型および突然変異体両方でトランスフェクトされた細胞において同様のレベルのＣＤ４０Ｌ特異的ＲＮＡを示した。更に、ＣＤ４０Ｌのそれぞれの突然変異型によってトランスフェクトされた細胞は、ＣＤ４０．Ｆｃ結合について完全に負であったが、野生型ＣＤ４０Ｌを発現する細胞は強いＣＤ４０．Ｆｃ結合を示した。それぞれの形の突然変異誘発ＣＤ４０Ｌを発現する細胞は、更に、Ｂ細胞増殖またはＩｇＥ分泌を誘導することができず、それらの細胞表面上の機能性ＣＤ４０Ｌの不存在が確証された。
Ｘ連鎖高ＩｇＭ患者からのＴ細胞減少末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ；Ｂ細胞に富む集団）は、対照ドナーからの同様に精製されたＰＢＭＣについて見られたのと同様のＣＤ４０Ｌに対する増殖反応を示した。正常ドナーからのＰＢＭＣは、ＩＬ−４と一緒に培養された場合、測定しうる量のＩｇＥを生産したが、同様の条件下で培養されたいずれの高ＩｇＭ患者の細胞においてもＩｇＥ生産は検出されなかった。高ＩｇＭ患者のＰＢＭＣを含む培養に対する組換え体ＣＤ４０ＬまたはＣＤ４０ｍＡｂの添加は、４人の患者の内３人からのＰＢＭＣのＩｇＥを分泌する能力を回復した。
これらの実験の結果は、ＣＤ４＋Ｔヘルパー細胞およびＢ細胞間の同族相互作用においてＣＤ４０Ｌが果たすと考えられる重要な役割を例証している。この相互作用は、大部分の抗原に対して体液性免疫応答がうまく機能する主要な要件の一つである。高ＩｇＭ症候群および関連症候群の更に別の研究は、ＣＤ４０およびＣＤ４０Ｌの構造的／機能的関係について並びに体液性免疫応答に関与する種々の細胞の相互作用についての貴重な情報を提供する。ＣＤ４０Ｌの異常を検出する方法は、高ＩｇＭ症候群、更にはＣＤ４０およびＣＤ４０Ｌがある役割を果たしているＢ細胞−Ｔ細胞相互作用の他の異常についての様々な推定上の形（常染色体劣性、常染色体優性）を説明する。
ＣＤ４０Ｌにおける突然変異は、個体から核酸（ＤＮＡ、ＲＮＡ）を単離し、ＣＤ４０Ｌ遺伝子に由来する核酸を選択的に増幅させ、そして増幅された核酸を分析して、ＣＤ４０Ｌ遺伝子に１種類または複数の突然変異が存在するかどうかを決定することによって検出することができる。核酸は、末梢血細胞、または羊水穿刺若しくは絨毛膜絨毛試料採取によって得られた胎児細胞などの細胞から単離することができる。他の核酸源としては、生検組織および核酸が存在する他の組織試料があった。
核酸は、ＣＤ４０Ｌ遺伝子に特異的なオリゴヌクレオチドプローブを用いて、ＣＤ４０Ｌ遺伝子に由来するこれら核酸に対して選択的にハイブリッド形成させ且つそれらを増幅させるポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって増幅させることができる。ＣＤ４０Ｌ遺伝子に由来するＲＮＡを増幅させるのに有用であるオリゴヌクレオチドプローブとしては、配列番号：１〜４によって定義されたプローブがある。ＣＤ４０Ｌ遺伝子の配列に由来する更に別のオリゴヌクレオチドプローブは、核酸の５′および３′非コーディング領域並びにｍＲＮＡに転写されないＣＤ４０Ｌ遺伝子に存在する任意のイントロンの配列を分析するのに用いることができるが、機能性ＣＤ４０Ｌ遺伝子生産物の発現に影響を及ぼすことがある。
ヌクレオチド配列分析を行なうことによって核酸を分析して、遺伝子に１種類または複数の突然変異が存在するかどうかを決定することができる。ヌクレオチド配列分析は、例えば、ジデオキシアナログチェインターミネーター法によって手動で行なうことができる。或いは、自動シークエンサーを用いてヌクレオチド配列分析を行なうことができる。増幅された核酸のヌクレオチド配列は、参考として開示が包含されたＵＳＳＮ０７／９６９，７０３号明細書、およびスプリッグスら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７６：１５４３（１９９２）にも開示されているＣＤ４０Ｌの公表された配列（配列番号：７）と比較される。
増幅された核酸とＣＤ４０Ｌの公開された配列との間のヌクレオチド配列の相違は、核酸から発現されたＣＤ４０Ｌペプチドの突然変異をもたらすことがある。このような突然変異としては、ＣＤ４０Ｌペプチド中の１種類（または複数）の異なるアミノ酸の置換、ＣＤ４０Ｌペプチドからの１種類またはそれ以上のアミノ酸の欠失、ＣＤ４０Ｌペプチドの未成熟終結およびＣＤ４０Ｌペプチドに対するアミノ酸の付加がある。他の種類の突然変異は、エクソンの不適当なスプライシング、読取りできない（ナンセンス）核酸コドンを生じるフレームシフトを引き起こすことがあるし、または生物学的に活性なＣＤ４０Ｌの転写および翻訳に必要な他の要素に影響を及ぼすことがある。したがって、突然変異は、ＣＤ４０Ｌ遺伝子のコーディング領域かまたはＣＤ４０Ｌの非コーディング領域にありうる。
生物学的に活性なＣＤ４０Ｌの発現に対する１種類または複数の突然変異の影響は、生物学的に活性なＣＤ４０Ｌをコードする発現ベクター中に１種類または複数の突然変異を導入することによって評価することができる。ｈＣＤ４０−Ｌと称するヒトＣＤ４０Ｌ配列を含むクローニングベクターは、１９９１年１２月６日にアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）、ロックビル、ＭＤ（ＡＴＣＣ）に受託番号６８８７３で寄託された。突然変異体は、例えば、オーバーラップエクステンション（ＳＯＥｉｎｇ）法（ホートン（Ｈｏｒｔｏｎ）ら、ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ８：５２８，１９９０年）によるまたは当該技術分野において知られている他の方法による遺伝子スプライシングを用いることによって構築することができる。次に、突然変異体発現ベクターを細胞中で発現させ、そして突然変異体によってコードされたＣＤ４０Ｌの生物学的活性を、本明細書中並びにＵＳＳＮ０７／９６９，７０３号明細書、アーミタージら、Ｎａｔｕｒｅ ３５７：８０，１９９２年、ファンスローら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９：６５５，１９９２年およびスプリッグスら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７６：１５４３（１９９２）に記載された１種類またはそれ以上の生物学的活性検定を用いて決定する。
正常なＢ細胞機能が、外因性の生物学的活性ＣＤ４０Ｌの添加によって回復されうるという知見は、この分子の治療的使用を支持する。この種の療法は、精製されたＣＤ４０Ｌを、適当な希釈剤または担体中に有効量のＣＤ４０Ｌを含む治療用組成物で投与することを含むことがありうる。治療的使用のために、精製されたＣＤ４０Ｌまたはその生物学的活性類似体は、指示に適した方法での治療用に患者に投与される。ＣＤ４０Ｌ薬剤組成物は（例えば、マルチマー可溶性細胞外ドメインまたはそのフラグメントの形で）、ボーラス注射、連続注入、植込み物からの徐放または他の適当な技法によって与えることができる。
典型的に、ＣＤ４０Ｌ治療薬は、精製ＣＤ４０Ｌポリペプチドを生理学的に許容しうる担体、賦形剤または希釈剤と一緒に含む薬剤組成物の形で投与される。このような担体は、用いられる用量および濃度において患者に対して無毒性である。通常、このような組成物の製法は、ＣＤ４０Ｌポリペプチドと、緩衝剤；アスコルビン酸などの酸化防止剤；低分子量（約１０残基未満）ポリペプチド；タンパク質；アミノ酸；グルコース、スクロース若しくはデキストランを含む炭水化物；ＥＤＴＡなどのキレート化剤；グルタチオンおよび他の安定剤；並びに賦形剤とを混合することを伴う。中性に緩衝された食塩水または同種血清アルブミンと混合された食塩水は、典型的な適当な希釈剤である。
生物学的に活性なＣＤ４０Ｌをコードしている遺伝子は、更に、遺伝子転移技術を用いて、異常なまたは欠陥ＣＤ４０Ｌを有する個体から得られたＴ細胞（好ましくは、ＣＤ４＋Ｔ細胞）中に導入することができる。Ｔ細胞を単離し、そして生物学的活性ＣＤ４０Ｌによってトランスフェクトし；引続き、それらを個体に再投与した後、生物学的活性ＣＤ４０Ｌを生産することによって症候群の症状を矯正する。
外因性遺伝子を、例えば、トランスフェクションによってまたは感染によって哺乳動物細胞中に導入するための多数の方法が開発されてきた。これらの形質導入法は物理的性質の方法であってもよく、またはそれらは、ＲＮＡに転写され、感染ウイルス粒子中に包装され、そして標的細胞を感染させることによって望ましい遺伝物質を与えるのに用いることができる組換えレトロウイルスベクターをコードしているＤＮＡの使用に頼ることができる。
多数の異なる種類の哺乳動物遺伝子転移および発現ベクターが開発された（ミラー（Ｍｉｌｌｅｒ）およびカロス（Ｃａｌｏｓ）監修、「哺乳動物細胞のための遺伝子転移ベクター（Ｇｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｒ Ｖｅｃｔｏｒｓ ｆｏｒ Ｍａｍｍａｌｉａｎ Ｃｅｌｌｓ）」、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｃｏｍｍ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ），ニューヨーク，１９８７年を参照されたい）。裸のＤＮＡは、制限されないが、リン酸カルシウムトランスフェクション（ベルマン（Ｂｅｒｍａｎ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４ ８１：７１７６，１９８４年）ＤＥＡＥ−デキストラントランスフェクション、プロトプラスト融合（ディーンス（Ｄｅａｎｓ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４ ８１：１２９２，１９８４年）、エレクトロポレーション（ポター（Ｐｏｔｔｅｒ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４ ８１：７１６１，１９８４年）、リポフェクション（フェルグナー（Ｆｅｌｇｎｅｒ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４：７４１３，１９８７年）、ポリブレントランスフェクション（カワイ（Ｋａｗａｉ）およびニシザワ（Ｎｉｓｈｚａｗａ）、Ｍｏｌｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ． ４：１１７２，１９８４年）および細胞膜のレーザー微小穿刺による直接遺伝子転移（タオ（Ｔａｏ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４ ８４：４１８０，１９８７年）がある多数の技術のいずれか一つを用いるトランスフェクションによって哺乳動物細胞中に物理的に導入することができる。
遺伝子供給用に組換え感染性ウイルス粒子を用いる各種感染技術が開発された。これは、本発明に対する好ましいアプローチを表わす。この方法で用いられてきたウイルスベクターとしては、シミアンウイルス４０（ＳＶ４０；カールソン（Ｋａｒｌｓｓｏｎ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８４ ８２：１５８，１９８５年）、アデノウイルス（カールソンら、ＥＭＢＯ Ｊ．５：２３７７，１９８６年）、アデノ関連ウイルス（ラフェイス（ＬａＦａｃｅ）ら、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ １６２：４８３，１９８８年）およびレトロウイルス（コフィン（Ｃｏｆｆｉｎ）、１９８５年、ワイス（Ｗｅｉｓｓ）ら（監修）、ＲＮＡ Ｔｕｍｏｒ Ｖｉｒｕｓｅｓ，第二版，２巻，コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー、ニューヨークの１７〜７１頁）に由来するウイルスベクターがある。
したがって、遺伝子転移および発現法は多数であるが、本質的には、哺乳動物細胞中において遺伝物質を導入するおよび発現するように働く。上記技術のいくつかは、造血系またはリンパ系細胞への形質導入に用いられており、リン酸カルシウムトランスフェクション（ベルマンら、上記、１９８４年）、プロトプラスト融合（ディーンスら、上記、１９８４年）、エレクトロポレーション（カン（Ｃａｎｎ）ら、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ ３：１２３，１９８８年）および組換え体アデノウイルスによる感染（カールソンら、上記；ルーター（Ｒｕｅｔｈｅｒ）ら、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．６：１２３，１９８６年）アデノ関連ウイルス（ラフェイスら、上記）およびレトロウイルスベクター（オーヴェレル（Ｏｖｅｒｅｌｌ）ら、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ ４：１４２５，１９８９年）がある。初代Ｔリンパ球は、エレクトロポレーション（カンら、上記、１９８８年）によっておよびレトロウイルス感染（ニシハラ（Ｎｉｓｈｉｈａｒａ）ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．４８：４７３０，１９８８年；カシド（Ｋａｓｉｄ）ら、上記、１９９０年）によってうまく形質導入された。
胚幹細胞を用いる遺伝子標的技術は、ある選択された遺伝子において特定の変化を有する形質転換マウスを生じさせることを可能にした（ワルドマン（Ｗａｌｄｍａｎ）Ａ．Ｓ．１９９２年、Ｃｒｉｔ．Ｒｅｖ．Ｏｎｃｏｌ．Ｈｅｍａｔｏｌ．１２（１）：４９〜６４；ホワン（Ｈｕａｎｇ）Ｍ．Ｔ．１９９３年、Ｌａｂ．Ａｎｉｍ．Ｓｃｉ．４３（２）：１５６〜１５９；コラー（Ｋｏｌｌｅｒ）およびスミシーズ（Ｓｍｉｔｈｉｅｓ）、１９９２年、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ１０：７０５〜７３０；ジョイナー（Ｊｏｙｎｅｒ）Ａ．Ｌ．１９９１年、Ｂｉｏｅｓｓａｙｓ．１３（１２）：６４９〜６５６；スミシーズ Ｏ．、１９９３年、Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．９（４）：１１２〜１１６）。例えば、プローブを、所望の遺伝子のｃＤＮＡから製造し且つ用いて、ゲノムライブラリー中の実際の遺伝子を識別する。遺伝子の構造を決定し、そして所望の１種類（または複数）の変化を生じさせる。組換えＤＮＡ技術を用いて、相同的組換えによる胚幹細胞の遺伝子の所望の１種類（または複数）の変化を導入するベクターを製造する。
次に、変更された胚幹細胞（ＥＳ細胞）を胚盤胞に注入し、生殖細胞を含む全組織種の形成に寄与させる。このような胚盤胞から発生する動物をキメラと称する。キメラ動物を繁殖させた場合、突然変異を有する生殖細胞は、機能性遺伝子を欠いた動物を生じる。このような動物を「ノックアウト」（ＫＯ）動物と称する。ＫＯマウスについて多数の実施例が知られており；これらの動物の多くは、ある種のヒト遺伝病で見られるのと同様の表現型を示し、したがって有用な動物モデルとして役立つ。
ＣＤ４０−Ｌ ＫＯマウスは、胸腺依存性抗体反応におけるＴおよびＢ細胞間の同族相互作用並びに免疫グロブリンイソタイプスイッチングの各種態様を研究する科学者にとって極めて興味深いと考えられる。ヒトＸ連鎖高ＩｇＭ症候群におけるＣＤ４０−Ｌの役割は、ＣＤ４０−Ｌ ＫＯマウスが、高ＩｇＭに可能な治療（すなわち、可溶性組換え体リガンドの投与）を試験するための貴重な手段になったことを示している。更に、ＣＤ４０−Ｌノックアウトマウスは、多数の様々な種類の研究にとって興味深く、すなわち、これらの動物は、免疫応答に不可欠な一つの特異的細胞相互作用を無力にすると予想される極めて明確な遺伝的欠損を有する。したがって、ＣＤ４０−Ｌ ＫＯマウスは、種々の疾患および症候群（感染性疾患を含む）におけるＴ細胞およびＢ細胞の役割を定義する場合、そして高ＩｇＭ症候群並びにＴおよびＢ細胞の相互作用の異常に起因するまたはそれに関連した他の症状の治療法を開発する場合に、ワクチン製剤または免疫応答調節剤を試験するためのモデルとして有用であると考えられる。
以下の実施例は、特定の実施態様を例証することを目的とし、本発明の範囲を制限するためのものではない。全ての参考文献の適切な開示は本明細書中に参考として包含される。
実施例１：ＣＤ４０Ｌ遺伝子の地図表示
ネズミＣＤ４０Ｌ遺伝子のコーディング領域に対応するｃＤＮＡを用いて（アーミタージら、Ｎａｔｕｒｅ ３５７：８０，１９９２年）、ネズミＣＤ４０遺伝子座の染色***置を、［（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊｘマス・スプレタス（Ｍｕｓ ｓｐｒｅｔｕｓ））Ｆ１ＸＣ５７ＢＬ／６Ｊ］マウスの交配に由来する子孫を用いる種間戻し交雑分析によって決定した。この種間戻し交雑地図表示パネルは、常染色体全部並びにＸ染色体中に適当に分布している１１００遺伝子座について知られている（コプランド（Ｃｏｐｅｌａｎｄ）およびジェンキンス（Ｊｅｎｋｉｎｓ）、Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．７：１１３，１９９１年）。Ｃ５７ＢＬ／６Ｊおよびマス・スプレタスＤＮＡをいくつかの制限エンドヌクレアーゼで消化し、そしてマウスＣＤ４０Ｌ ｃＤＮＡプローブを用いる有益な制限フラグメント長さ多形性（ＲＦＬＰ）についてサザンブロットハイブリッド形成によって分析した。地図表示結果は、ＣＤ４０Ｌ遺伝子（ＣＤ４０ｌ）が、ヒポキサンチン−グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（Ｈｐｒｔ）、骨形態形成タンパク質−２ｂ２（Ｂｍｐ−２ｂ２）およびコネクシン（ｃｏｎｎｅｘｉｎ）−３２（Ｃｎｘ−３２）に対して連鎖したネズミＸ染色体の近位部分に位置することを示している。Ｈｐｒｔ、Ｂｍｐ−２ｂ２およびＣｎｘ−３２を含むＣｄ４０ｌに連鎖した遺伝子座についてのプローブおよびＲＦＬＰの説明は前に報告された（Ｍ．Ｅ．ディキンソン（Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）ら、Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ６：５０５，１９９０年；Ｊ．Ａ．ヘフリガー（Ｈａｅｆｌｉｇｅｒ）ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６７：２０５７，１９９２年）。組換え距離は、計算機プログラムスプレタス・マドネス（ＳＰＲＥＴＵＳ ＭＡＤＮＥＳＳ）を用いて（Ｅ．Ｌ．グリーン（Ｇｒｅｅｎ）、Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ Ｐｒｏｂａｂｉｌｉｔｙ ｉｎ Ａｎｉｍａｌ Ｂｒｅｅｄｉｎｇ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ，オックスフォード・ユニバーシティー・プレス（Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ）、ニューヨーク、１９９２年，７７〜１１３頁に）記載のように計算された。遺伝子順序は、対立遺伝子分布パターンを説明するのに必要な組換え回数を最小限にすることによって決定された。決定された組換え頻度は、Ｃｄ４０ｌ遺伝子をＨｐｒｔ遺伝子座から１．５＋／−１．１センチモルガン遠位に置く。ＨＰＲＴはヒトＸ染色体ではｑ２６部分に地図で表わされ、ＣＤ４０Ｌのヒト相同染色体もこの部分に地図で表わされるであろうということが示唆される。これは、ヒトＣＤ４０Ｌ ｃＤＮＡプローブを用いるヒト中期染色体についてのｓｉｔｕハイブリッド形成実験によって確証された。ヒト中期染色体は、二人の正常な男性ドナーのリンパ球から得られた。ハイブリッド形成は、文献記載のように（Ｊ．Ｄ．マース（Ｍａｒｔｈ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８３：７４００，１９８６年）、１Ｘ１０^６ｃｐｍ／μｇの比活性に対して^３Ｈで標識されたヒトＣＤ４０Ｌプローブを用いて行なわれた。最終プローブ濃度は、ハイブリッド形成混合物０．４ｎｇ／μｇであった。スライドを５〜７週間暴露した。染色体をＱ−バンド法によって識別した。記録されたハイブリッド形成の１１５部位の内１８（１６％）は、Ｘ染色体の長アームの遠位部分に位置した。最大数の木目模様はバンドｑ２６にあり、他のヒト染色体上にハイブリッド形成はほとんどなかった。
実施例２：高ＩｇＭ患者Ｔ細胞でのＣＤ４０Ｌ発現の分析
ＣＤ４０Ｌの発現を、臨床的および実験室知見が一次Ｘ連鎖高ＩｇＭ症候群と一致した４人の青年期患者において実験した。これら患者の３人の症状は散在性であり、同様の症状の男性血縁者はいなかった。４人目の患者は、高ＩｇＭ症候群の典型的Ｘ連鎖遺伝を示す実証された３世代系図を有する家系に属した。
ＣＤ４０Ｌの発現は、４人の高ＩｇＭ患者から精製された末梢血Ｔ細胞で直接的に調べた。休止末梢血Ｔ細胞は、検出不能なレベルのＣＤ４０Ｌ ｍＲＮＡおよびタンパク質両方を発現するが、しかしながら、ＣＤ３に特異的な抗体による１６時間の刺激は、ｍＲＮＡおよび細胞表面タンパク質のレベルを有意に増加させる（スプリッグスら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７６：１５４３，１９９２年）。したがって、末梢血白血球は、フィコル・ハイパクーでの分離によって患者または対照ドナーのヘパリン処理された全血から精製された。Ｔ細胞を、固定化ＣＤ３ ｍＡｂによって活性化し、そして可溶性型ＣＤ４０を用いるフローサイトメトリーによって分析した。この可溶性ＣＤ４０タンパク質（ＣＤ４０．Ｆｃ）は、ＵＳＳＮ０７／９６９，７０３およびファンスローら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９：６５５，１９９２年に記載されており、ヒトＩｇＧ１のＦｃ部分に対して融合したヒトＣＤ４０の細胞外ドメインを含む融合タンパク質である。実験はいずれも、正常成人ドナーから並びに患者１、３および４の場合は同年齢の非罹患男性からの対照細胞を含んだ。患者２の対照細胞としては、無関係の免疫欠乏症であるＸ連鎖無ガンマグロブリン血症（ＸＬＡ）と診断された同年齢、同人種の男性が含まれた。対照ドナーからのＴ細胞とは対照的に、患者２、３および４からのＴ細胞は、ＣＤ３抗体による活性化の際に検出可能なＣＤ４０Ｌを全く発現できなかった。若干の実験において、患者１からの活性Ｔ細胞は、ＣＤ４０を弱く結合すると考えられた。しかしながら、固定化ＣＤ３ ｍＡｂによる４人の患者全部からのＴ細胞の活性化は、共通のＴ細胞表面マーカーであるＩＬ−２受容体（ＩＬ−２Ｒα）のα鎖の発現に関しては、対照ドナーからのＴ細胞で見られたのと同様のレベルで引き起こした。更に、高ＩｇＭ患者からのＴ細胞は、ＰＨＡまたはＣＤ３ ｍＡｂおよびＩＬ−７に対する正常な増殖反応を示した。これらのデータは、高ＩｇＭ患者のＴ細胞はマイトジェンに対してまたはそれらのＴ細胞受容体による活性に対して正常に反応するが、それらの細胞表面上に野生型ＣＤ４０Ｌを発現しないことを示す。
実施例３：高ＩｇＭ患者からのＣＤ４０Ｌのヌクレオチド配列分析
実施例２の高ＩｇＭ患者からのｃＤＮＡのヌクレオチド配列を分析した。患者または対照ドナーからの末梢血白血球（ＰＢＬ）をヘパリン処理された全血からフィコール・ハイパクーで精製した。次に、細胞を固定化ＣＤ３抗体またはＰＨＡと一緒に一晩中インキュベートすることによって刺激した。刺激されたＰＢＬから、ＲＡＮゾル（バイオテクス（Ｂｉｏｔｅｃｘ）、ハウストン、ＴＸ）を用いてＲＮＡを抽出した。全ＲＮＡ５〜１０μｇを水１０μｌで希釈し且つ６８℃で５分間加熱した。この混合物に対して、ＲＮアシン１μｌ、１０Ｘパーキン・エルマー（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ）ＰＣＲ緩衝液２μｌ、２０ｍＭ ｄＮＴＰ １μｌ、ランダムヘキサマープライマー（ファーマシア（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）、ウプサラ、スウェーデン）２μｌおよび１００Ｕ逆転写酵素を加えた。混合物を室温で１０分間、続いて３７℃で１分間インキュベートし、そして９５℃で５分間加熱失活させた。この反応からのｃＤＮＡを、以下の反応条件、すなわち、総容量５０μｌに対して１０Ｘパーキン・エルマー緩衝液５μｌ、５０μＭ ｄＮＴＰ、１μＭプライマー、ｃＤＮＡ反応２μｌおよび１．２５Ｕ Ｔａｑポリメラーゼ（パーキン・エルマー）を用いるＰＣＲ反応において鋳型として用いた。混合物を９５℃で５分間変性させ、そしてＴａｑポリメラーゼを加えた後、５５℃で１分間、７２℃で１分間および９４℃で１分間を３サイクル行なった。ｃＤＮＡ全体にわたるようにＰＣＲ反応を２回行なった。ｃＤＮＡの５′部分を増幅させるのに用いられたプライマーは、５′−ＣＣＡＧＡＡＧＡＴＡＣＣＡＴＴＴＣ−３′（配列番号：１）および５′−ＡＧＣＣＣＡＣＴＧＴＡＡＣＡＣＡＧ−３′（配列番号：２）であった。ｃＤＮＡの３′部分のためのプライマーは、５′−ＣＡＴＧＴＣＡＴＡＡＧＴＧＡＧＧＣ−３′（配列番号：３）および５′−ＣＡＴＡＡＧＧＡＧＧＡＴＣＣＴＡＧ−３′（配列番号：４）であった。ＰＣＲフラグメントにクレノウ（ファーマシア、ウプサラ、スウェーデン）をフィルインし、１．５％アガロースゲル上で分離し、そして精製されたフラグメントを配列決定のためにＳｍａＩ−カットｐＴＺ１９Ｒに連結した。二本鎖配列決定は、シークエナーゼ（Ｓｅｑｕｅｎａｓｅ）キット（ＵＳＢ、クリーブランド、ＯＨ）を用いて手動で行なわれた。自動配列決定は、アプライド・バイオシステムズ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）３７３Ａ型シークエンサーで行なわれた。これらの実験において、対照細胞は、罹患していない同年齢対照によってかまたは、いずれの場合にも少なくとも一人の正常な成人ドナーによって提供された。更に、無関係の免疫欠乏症であるＸ連鎖リンパ増殖性障害（ＸＬＰ）と診断された一人の青年期男性が患者１の対照として含まれた。得られたｃＤＮＡのヌクレオチド配列分析は、単点突然変異が４人の高ＩｇＮ患者の内の３人のＣＤ４０Ｌに存在したことを示した。これらの変化がＰＣＲ増幅中に導入された人工物ではなかったということを確かめるために、最初のｃＤＮＡ合成反応を含む全ての反応を少なくとも二重反復試験で行なった。それぞれのヌクレオチド変化は独特であり、全てＣＤ４０Ｌの細胞外ドメインに存在する。これらの変化は、以下のアミノ酸変化、すなわち、患者１における２２７位のグリシン対バリンの変化；患者２における１５５位のロイシン対プロリンの変化；および患者３における２１１位のトレオニン対アスパラギンの変化を引き起こす。患者４から生じたＣＤ４０Ｌ ｃＤＮＡは、コーディング領域中に何等かのヌクレオチド変化を含むとは考えられなかった。この患者について行なわれた生物学的分析は機能性ＣＤ４０Ｌの欠損を明らかに示しているので、おそらくは５′または３′非コーディング配列を必要とするもう一つの機序が、患者４におけるＴ細胞上のＣＤ４０Ｌの不存在の原因であるにちがいない。ＸＬＰ患者を含むどの対照試料からのＣＤ４０Ｌ ｃＤＮＡにおいてもヌクレオチド変化は見られなかった。
実施例４：ＣＤ４０Ｌ ｃＤＮＡの特定部位の突然変異誘発
実施例３で検出されたヌクレオチド変化がＣＤ４０Ｌの発現またはＣＤ４０に対して結合するその能力に影響を及ぼすかどうかを試験するために、実施例２の患者１および患者２で見られた２種類のヌクレオチド変化を、部位特異的変異誘発を用いて、ヒトＣＤ４０Ｌの完全なコーディング領域を含む哺乳動物発現ベクター中に別個に導入した。ｈＣＤ４０−Ｌと称するヒトＣＤ４０Ｌ配列を含むクローニングベクターは、１９９１年１２月６日にアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）、受託番号６８８７３として寄託された。突然変異体は、オーバーラップエクステンション（ＳＯＥｉｎｇ）法（ホートンら、ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ８：５２８，１９９０年）による遺伝子スプラシングを用いて構築された。患者１で見出された突然変異を再現するのに用いられたプライマーは、５′−ＴＧＣＧＧＧＣＡＡＣＡＡＴＣＣＡＴＴＣＡＣＴＴＧＧＧＡＧＴＡＴＴＴＧＡＡＴＴＴＧＣＡＡ（配列番号：５）であった。患者２で見出された突然変異を再現するのに用いられたプライマーは、５′−ＣＣＡＴＧＡＧＣＡＡＣＡＡＣＴＴＧＧＴＡＡＣＣＣＣＧＧＡＡＡＡＴＧＧＧＡＡＡＣＡＧＣ（配列番号：６）であった。必要なプライマーの残り部分は、ＣＤ４０Ｌ配列から生成された（ＵＳＳＮ０７／９６９，７０３号明細書並びにアーミタージら、Ｎａｔｕｒｅ ３５７：８０，１９９２年およびスプリッグスら、Ｊ．ＥＸｐ．Ｍｅｄ．１７６：１５４３，１９９２年）。得られたベクターをそれぞれミュータント１およびミュータント２と称した。適当なヌクレオチド変化が導入されたことは、完全なコーディング領域の配列分析によって実際の発現ベクターにおいて確証された。ヒト胚腎細胞系２９３を、野生型ＣＤ４０Ｌかまたは突然変異誘発を有するベクターによってトランスフェクトし、トランスフェクション後３日目に、細胞を^３３Ｓトランス標識（ＩＣＮラジオケミカルズ（Ｒａｄｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、アービン、ＣＡ）によって代謝的に放射性標識した。細胞溶解産物を調製し、そしてヒトＣＤ４０Ｌを発現するＣＶ１／ＥＢＮＡ細胞に対して向けられた多クローン性血清とのまたはＣＤ４０．Ｆｃとの沈降によってＣＤ４０Ｌタンパク質の発現について試験した。野生型ＣＤ４０Ｌによってトランスフェクトされた細胞は、ＣＤ４０．Ｆｃを用いて容易に沈降させることができる３３ｋＤタンパク質を発現した。対照的に、各突然変異体の形のＣＤ４０Ｌによってトランスフェクトされた細胞は、ＣＤ４０．Ｆｃによって認識されたタンパク質を発現しなかった。多クローン性抗血清を用いる同一溶解産物の免疫沈降は、しかしながら、突然変異体並びに野生型でトランスフェクトされた細胞からの３３ｋＤタンパク質を認識した。このタンパク質は、ＣＤ４０．Ｆｃによって認識されたＣＤ４０Ｌタンパク質と共移動し、ベクターのみによってトランスフェクトされた溶解産物中には存在しなかった。これらの結果と一致して、ノーザンブロット分析は、野生型および突然変異体両方でトランスフェクトされた細胞において同様のレベルのＣＤ４０Ｌ特異的ＲＮＡを示した。
更に、トランスフェクトされた細胞をフローサイトメトリー分析によって検査した。ＣＤ４０Ｌのどちらの突然変異体の形によってトランスフェクトされた細胞も、ＣＤ４０．Ｆｃ結合について完全に陰性であったが、野生型ＣＤ４０Ｌを発現する細胞は強いＣＤ４０．Ｆｃ結合を示した。突然変異ＣＤ４０Ｌタンパク質の生物学的活性に取り組むために、野生型または突然変異誘発ＣＤ４０Ｌによってトランスフェクトされた細胞を、増殖およびＩＬ−４と一緒に共培養された精製扁桃Ｂ細胞からのＩｇＥ分泌を誘導するそれらの能力について試験した。野生型リガンド（表１）によってトランスフェクトされた細胞とは対照的に、それぞれの形の突然変異誘発ＣＤ４０Ｌを発現する細胞は、Ｂ細胞増殖またはＩｇＥ分泌を誘導できず、それらの細胞表面上の機能性ＣＤ４０Ｌの不存在が確証された。

実施例５：高ＩｇＭ患者Ｂ細胞は野生型ＣＤ４０Ｌに対して正常に反応する
野生型ＣＤ４０Ｌに反応するＸ連鎖高ＩｇＭ Ｂ細胞の能力に取り組むために、増殖およびイソタイプ分泌検定を行なった。実施例２の４人の患者全員からのＴ減少末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）（Ｂ細胞に富む集団）は、対照ドナーから同様に精製されたＰＢＭＣについて見られたのと同様のＣＤ４０Ｌに対する増殖反応を示した。対照的に、ＸＬＡ疾患は循環性成熟Ｂリンパ球の実質的不存在を特徴とするという事実と一致して、ＸＬＡ患者から得られたＰＢＭＣのＴ細胞減少培養においてこのような増殖反応は見られなかった。
以前行なった研究において、ＩＬ−４存在下の単一ドナーＰＢＭＣの培養が、ＩｇＥの生産を引き起こすことを示した（Ｔ減少のための分別をしていないＰＢＭＣの１ｘ１０^５個からのＩｇＥ分泌は、５ｎｇ／ｍｌのＩＬ−４を、２００ｎｇ／ｍｌのＧ２８−５抗体（ＣＤ４０に対する単クローン性抗体、Ｅ．Ａ．クラーク（Ｃｌａｒｋ）博士、ワシントン大学、シアトル、ＷＡから得られた）またはベクターのみ若しくはヒトＣＤ４０Ｌによってトランスフェクトされた１ｘ１０^４個の固定したＣＶ１／ＥＢＮＡ細胞と一緒に含む１０日間の培養後に決定された）。ＰＢＭＣの調製および分泌されたＩｇＥ濃度の決定は、ファンスローら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９：６５５，１９９２年に記載のように行なわれた。結果を、三重反復試験培養の平均＋／−ＳＥＭとして表わす。正常ドナー（対照１、３および４）からのＰＢＭＣは、ＩＬ−４と一緒に培養された場合、測定しうる量のＩｇＥを生産した（表２）。対照的に、同様の条件下で培養された４人の高ＩｇＭ患者のいずれからもＩｇＥ生産は検出されなかった。重要なことに、４つの症例の内の３つにおいて（患者１、２および４）、組換え体ＣＤ４０ＬまたはＣＤ４０ ｍＡｂであるＧ２８−５を高ＩｇＭ患者のＰＢＭＣ含有培養物に加えることにより、ＩｇＥを分泌するそれらの能力が回復した。同様に、試験されたこれら３人の患者および全対照からのＴ減少ＰＢＭＣ（Ｂ細胞に富む培養）は、ＩＬ−４および組換え体ＣＤ４０ＬかまたはＧ２８−５抗体の存在下でＩｇＥを分泌した（表２）。患者３の場合、ＩＬ−４および組換え体ＣＤ４０ＬまたはＧ２８−５抗体と一緒に培養されたＰＢＭＣにおいてＩｇＥは検出されなかった。これらの結果についての理由は不明である。追加のＰＢＭＣをこの患者から入手できなかったので、この応答の欠損が再現性があるかまたは実験変動によるのかどうかを決定することはできなかった。

実施例６：ＣＤ４０Ｌ遺伝子のヌクレオチド配列分析
ＣＤ４０Ｌのヌクレオチド配列を、ヒト細胞から製造されたゲノムライブラリーを用いて決定した。ゲノムライブラリーからのクローンを制限酵素で消化して、電気泳動によって分離することができる制限フラグメントを生成した。電気泳動によって分離された制限フラグメントを、ＣＤ４０Ｌのコーディング領域の各種部分から製造された長さ３０〜４０オリゴヌクレオチドのオリゴヌクレオチドプローブを用いるサザンブロットによって分析した。オーバーラップフラグメントを決定し且つ配列決定し、配列決定は、ＣＤ４０Ｌのコーディング領域全体を包含するのに十分なフラグメントについて行なわれた。ＰＣＲプローブは、全エクソンについてのイントロン−エクソン境界に隣接する部分の配列に基づいて製造することができる。ＰＣＲプローブを実施例３に記載されたのと同様に用いて、ＣＤ４０Ｌゲノム材料中に存在する任意の非コーディング領域の配列に異常があるかどうかを決定した。このような分析は、例えば、羊水穿刺または絨毛膜絨毛試料採取によって胎児から得られた細胞からのゲノム材料を分析する場合に有用である。この方法で誘導されたＰＣＲプローブは、ＣＤ４０Ｌ遺伝子のコーディング領域に異常が検出されない場合に必要であるかもしれないように、ゲノム材料を分析する場合にも有用である。
実施例７：ＣＤ４０Ｌノックアウトマウスの発生
製造されたＤＮＡ構築物の種類を、正に選択可能なマーカー（ネズミＰＧＫ−１プロモーターによって指令されたネオマイシン耐性遺伝子）が標的遺伝子（ＣＤ４０Ｌ）に対して相同な部分によって両側に隣接されている「置換型」ベクターとして分類する。このようなベクターは、標的に対して相同な２か所のベクター配列部分が関与する二重相互交差の結果により生じる相同的組換えによって野生型対立遺伝子を変更された変種と置換するように設計されている。対照的に、ランダム組込みは、分子全体を組込むと考えられる。したがって、標的に到達する効率を上げるために、負の選択マーカー（ＨＳＶチミジンキナーゼすなわちＴＫ遺伝子）を、ベクターの相同領域の一方の末端に挿入した。
標的用ベクターをＥＳ細胞中に導入した後、正−負選択（ＰＮＳ）を開始した。ネオマイシン耐性遺伝子は、Ｇ４１８に対する耐性を与えるが、ＨＳＶ ＴＫ遺伝子の生産物は、ガンシクロビア（ｇａｎｃｙｃｌｏｖｉｒ）を毒性化合物に変化させる。したがって、理論上、相同的に組換えされた細胞のみが両方の選択から生き残る。ベクター構築およびＰＮＳについてのこのスキームは十分に確立されている（マンサワー（Ｍａｎｓｏｕｒ）ら、１９８８年、Ｎａｔｕｒｅ．３３６：３４８〜３５２）。
ＣＤ４０Ｌのための遺伝子標的用ベクターの構築を容易にするために、１２９ＳＶ系統（ストラタジーン（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）、カタログ番号９４６３０５）から構築されたネズミゲノムＤＮＡライブラリーを、完全なコーディング領域を含む放射性標識されたネズミＣＤ４０Ｌ ｃＤＮＡプローブによってスクリーニングした（アーミタージら、１９９２年、Ｎａｔｕｒｅ．３５７：８０〜８２およびＵＳＳＮ０７／９６９，７０３号明細書）。６種類のクローンを単離し、そしてλ１およびλ２と称する二つを、それらが重なり合い且つそれぞれが遺伝子のかなり大きな部分を含んでいたという証拠に基づいて更に分析するために選択した。制限地図並びにエクソン位置および寸法は標準法を用いて決定されており、図１に示されている。
λ２からの６．８Ｋｂ ＢａｍＨ１−Ｓｐｅ１フラグメントを、ＢａｍＨ１＋Ｘｂａ１によって消化されたｐＧＥＭ１１中にサブクローン化した。得られたプラスミドｐλ２−６．８ＢＳをＢａｍＨ１によって消化し、そしてクレノウフラグメントによる処理によって末端をブラントにした。ｐＰＧＫ／Ｎｅｏ（ＷＴ）Ａ−からのブラントにされた１．５Ｋｂ ＥｃｏＲ１−ＢａｍＨ１フラグメントを挿入してｐ６．８Ｎｅｏを生成した。この構築物をＸｈｏ１によって消化し、クレノウフラグメントによってブラントにし、そしてλ１からの２．０ＫｂのブラントにされたＨｉｎｄ３−Ａｓｐ７１８フラグメントを挿入した。得られたプラスミドｐ６．８ＮｅｏＨＡをＸｈｏ１によって消化し、ｐＴＧＸ１０５−９（ＨＳＶ ＴＫ遺伝子含有）からの２．０Ｋｂ Ｘｈｏ１−Ｓａ１１フラグメントを挿入してｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃１を生成した。
ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃１は、相同的組換えによって、エクソン４のみを欠失したＣＤ４０Ｌ対立遺伝子を生じると考えられる。更に分析することにより、この突然変異は、ＣＤ４０−Ｌ遺伝子の機能を完全に損なわせていないらしいことが示された。したがって、エクソン３を以下の方法で更に欠失させた。ｐλ２−６．８ＢＳをＳｐｅ１＋ＢａｍＨ１によって消化し、そして得られた７．７Ｋｂフラグメントを精製した。これを、ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃１からの５．５Ｋｂ ＢａｍＨ１−Ｘｂａ１フラグメントと連結して、ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃２を生成した。このベクターは、相同的組換えによって、エクソン３および４を欠失した突然変異ＣＤ４０Ｌ対立遺伝子を生じるべきである。
ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃２を胚幹細胞中に２００Ｖおよび９６０μＦでエレクトロポレーションを行なった。細胞を、白血病阻止因子（ＬＩＦ）を発現するγ照射されたネオマイシン耐性ＳＴＯ細胞の支持層上で培養した。細胞は、１７５μｇ／ｍＬのＧ４１８＋２ｍＭガンシクロビア中で約１０日間選択された。次に、クローンを単独に平板培養し、そして５つのクローンのプールでのＰＣＲによって分析した。ＰＣＲは、ＣＤ４０Ｌ特異的プライマーＴＧＸ１０６．１９（５′−ＧＧＣＡＡＧＧＴＣＡＡＧＣＴＣＡＴＣＣ−３′；配列番号：９）を、アンチセンスネオマイシン耐性遺伝子プライマーＴＧＸ６３．２０（５′−ＧＡＴＡＴＴＧＣＴＧＡＡＧＡＧＣＴＴＧＧ−３′；配列番号：１０）と連結して用いて行なわれた。全部で８００の二重耐性クローン（１２９ＳＶ誘導ＥＳ系ＡＢ１の６８０およびＣ５７ＢＬ／６誘導ＥＳ系Ｂ２２の１２０）をこの方法で相同的組換え結果についてスクリーニングした。正のクローンは検出されなかった。
ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃２によるいくつかの不成功の試みの後、ＣＤ４０−Ｌ遺伝子の３′末端に対する相同の長いほうの部分を有する第三のプラスミドを製造した。ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃２をＸｂａ１およびＸｈｏ１によって消化し、そして４．７ＫｂフラグメントをｐＧＥＭ１１中にサブクローン化してｐＨＲＶ２−４．７ＸＸを生成した。１．９Ｋｂ Ｈｉｎｄ３−Ｓａｌ１フラグメントを、λ２からの２．７Ｋｂ Ｈｉｎｄ３−Ｓａｌ１フラグメントによって置換した。このプラスミドをｐＨＲＶ２−５．５ＸＳと称した。０．７Ｋｂ Ａｓｐ７１８−Ｓａｌ１フラグメントを、λ１からの１０．３Ｋｂ Ａｓｐ７１８−Ｓａｌ１フラグメントによって置換してｐＨＲＶ２−１５ＸＳを生成した。このプラスミドを引続きＳａｌ１によって消化し、ｐＴＧＸ１０５−９（ＨＳＶ ＴＫ遺伝し含有）からの２．０Ｋｂ Ｘｈｏ１−Ｓａｌ１フラグメントを挿入した。この結果、ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃３が得られ、これを、１９９３年１月１９日にブダペスト条約の規定に基づきアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（ＡＴＣＣ）に寄託し、そしてＡＴＣＣ受託番号 を与えられた。ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃３を用いる相同的組換えは、ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃２と同様の突然変異、すなわち、エクソン３および４の除去を引き起こす。
ｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃３のエレクトロポレーションを行ない且つ前記のようにＥＳ細胞を選択した。ＰＣＲスクリーニングは、ＣＤ４０Ｌ特異的プライマーＴＧＸ１２４．１９（５′−ＧＴＡＴＧＴＧＧＣＴＧＡＡＣＡＣＣＴＧ−３′；配列番号：１１）およびアンチセンスＰＧＫ／ＮｅｏプライマーＴＧＸ５３．１８（５′−ＣＴＴＧＴＧＴＡＧＣＧＣＣＡＡＧＴＧ−３′；配列番号：１２）を用いて行なわれた。全部で１１９１の二重耐性クローン（ＡＢ１の７６０、Ｂ２２の２３１、および１２９ＳＶ誘導ＥＳ系Ｄ３の２００）が得られた。いくつか正を識別し且つ核型分析を行ない、そしてＤ３系のクローンＤ３ ＣＤ４０Ｌ３＃９−７２は正常な核型を有することが分かった。
ＣＤ４０Ｌ遺伝子の標的突然変異は、ゲノムサザンプロット分析によって実証された。Ｄ３ ＣＤ４０Ｌ３＃９−７２および野生型Ｄ３からのゲノムＤＮＡをＰｓｔ１によって消化し、アガロース中で電気泳動を行ない、ニトロセルロースに対してブロットし、そしてｐＨＲＶ−ｍＣＤ４０Ｌ＃３の５′末端のすぐ上流にある放射性標識された４００ｂｐのＸｂａ１−Ｐｓｔ１フラグメントによってプローブした。このプローブは、野生型Ｄ３ゲノム中の９．０Ｋｂ Ｐｓｔ１フラグメントとハイブリッド形成した。しかしながら、遺伝子標的は、５′Ｐｓｔ１部位の新規のＰｓｔ１部位（ＰＧＫ／Ｎｅｏ中）２．２Ｋｂ ３′を導入した。したがって、２．２Ｋｂ Ｐｓｔ１フラグメントのみが、Ｄ３ ＣＤ４０Ｌ３＃９−７２ゲノム中のプローブとハイブリッド形成した。
Ｄ３ ＣＤ４０Ｌ３＃９−７２細胞を、黒色外被色を有するＣ５７ＢＬ／６マウスから単離された３．５日目の胚盤胞中に注射した。注射された胚盤胞は、偽妊娠スイス・ウェブスター（Ｓｗｉｓｓ Ｗｅｂｓｔｅｒ）雌マウスにおける出産予定日まで維持された。Ｄ３ ＣＤ４０Ｌ３＃９−７２は、黒色アグーチ（褐色）外被色を有する１２９ＳＶ系統に由来するＥＳ細胞中で生成された。キメラ子孫は、混合外被色（褐色および黒色）の存在によって識別された。雄のキメラを野生型Ｃ５７ＢＬ／６の雌と交配させた。突然変異ＣＤ４０−Ｌ対立遺伝子の生殖系列伝達は、黒色アグーチ雌子孫の存在によって識別された。これらの雌はＣＤ４０−Ｌ遺伝子座でヘテロ接合している。
ヘテロ接合雌を、野生型雄Ｃ５７ＢＬ／６マウスに交配させた。標準的なメンデル遺伝によると、雄の子孫全体の５０％は、ＣＤ４０−Ｌ突然変異についてヘミ接合であると予想されるので、高ＩｇＭ表現型を示すと予想される。ヘミ接合雄をヘテロ接合雌に交配させて、その系統を永続させる。更に、突然変異ＣＤ４０−Ｌ対立遺伝子を示す共通遺伝子系１２９ＳＶ系統は、例えば、ヘテロ接合雌を野生型１２９ＳＶ雄に戻し交雑することによって発生させることができる。或いは、突然変異ＣＤ４０−Ｌ遺伝子を効率よく伝達する雄キメラを１２９ＳＶ雌に交配させる。突然変異Ｘ染色体の生殖系列伝達は、ヘテロ接合１２９ＳＶ雌を生じ、これを野生型１２９ＳＶ雄に交配させて、突然変異体ＣＤ４０−Ｌを示すヘミ接合１２９ＳＶ雄を得る。ヘミ接合雄１２９ＳＶマウスをヘテロ接合１２９ＳＶ雌に交配させて、ホモ接合雌を生じる。
対立遺伝子の状態（すなわち、野生型対ヘテロ接合対ホモ接合突然変異体（雄のヘミ接合突然変異体））を、実施例３に記載の簡単なＰＣＲスキームによって決定する。組織試料（血液または耳生検試料）からのＤＮＡに、４種類のプライマーを用いるＰＣＲ増幅を施した。ＴＧＸ１５７．２３（５′−ＣＣＣＡＡＧＴＧＴＡＴＧＡＧＣＡＴＧＴＧＴＧＴ−３′；配列番号：１３）およびＴＧＸ１５６．２３（５′−ＧＴＴＣＣＴＣＣＡＣＣＴＡＧＴＣＡＴＴＣＡＴＣ−３′；配列番号：１４）は、エクソン４のちょうど３′のＣＤ４０−Ｌ遺伝子上の部分に特異的であり、２５０ｂｐフラグメントを増幅する。Ｎｅｏ１（５′−ＧＣＣＣＴＧＡＡＴＧＡＡＣＴＧＣＡＧＧＡＣＧ−３′；配列番号：１５）およびＮｅｏ２（５′−ＣＡＣＧＧＧＴＡＧＣＣＡＡＣＧＣＴＡＴＧＴＣ−３′；配列番号：１６）は、ネオマイシン耐性遺伝子の３′末端に特異的である。これらのプライマーは、突然変異対立遺伝子に特異的な５００ｂｐフラグメントを増幅する。突然変異対立遺伝子の存在は、実質的には前記のようなサザンブロット分析によって決定される。
ヘテロ接合雌を入手し、そしてその対立遺伝子の状態を前記および図２に概説されたＰＣＲスキームにしたがって分析した。それを、前記のように野生型Ｃ５７ＢＬ／６雄に交配させた。その潜在的ヘミ接合雄子孫１匹からの試料を前記および図３に概説されたように分析したが；その分析結果は、エクソン３および４がＣＤ４０−Ｌ遺伝子に不存在であったことを示しており、そのマウスがヘミ接合であったことが示された。
配列表
(2)情報SEQ ID NO:1:
(i)配列の特性：
(A)長さ：17塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(iii)ハイポセチカル：NO
(iv)アンチセンス：NO
(xi)配列SEQ ID NO:1:

(2)情報SEQ ID NO:2:
(i)配列の特性：
(A)長さ：17塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:2:

(2)情報SEQ ID NO:3:
(i)配列の特性：
(A)長さ：17塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:3:

(2)情報SEQ ID NO:4:
(i)配列の特性：
(A)長さ：17塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:4:

(2)情報SEQ ID NO:5:
(i)配列の特性：
(A)長さ：45塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:5:

(2)情報SEQ ID NO:6:
(i)配列の特性：
(A)長さ：42塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:6:

(2)情報SEQ ID NO:7:
(i)配列の特性：
(A)長さ：840塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：cDNA
(iii)ハイポセチカル：NO
(iv)アンチセンス：NO
(vi)起源：
(A)生物種：ヒト
(vii)直接の起源：
(B)クローン：CD40-L
(ix)特徴：
(A)NAME/KEY：CDS
(B)LOCATION：46..831
(xi)配列SEQ ID NO:7:

(2)情報SEQ ID NO:8:
(i)配列の特性：
(A)長さ：26１アミノ酸
(B)型：アミノ酸
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：タンパク質
(xi)配列SEQ ID NO:8:

(2)情報SEQ ID NO:9:
(i)配列の特性：
(A)長さ：19塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:9:

(2)情報SEQ ID NO:10:
(i)配列の特性：
(A)長さ：20塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:10:

(2)情報SEQ ID NO:11:
(i)配列の特性：
(A)長さ：19塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:11:

(2)情報SEQ ID NO:12:
(i)配列の特性：
(A)長さ：18塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:12:

(2)情報SEQ ID NO:13:
(i)配列の特性：
(A)長さ：23塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:13:

(2)情報SEQ ID NO:14:
(i)配列の特性：
(A)長さ：23塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:14:

(2)情報SEQ ID NO:15:
(i)配列の特性：
(A)長さ：22塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:15:

(2)情報SEQ ID NO:16:
(i)配列の特性：
(A)長さ：22塩基対
(B)型：核酸
(C)鎖の数：シングル
(D)トポロジー：リニヤー
(ii)分子型：オリゴヌクレオチド
(xi)配列SEQ ID NO:16:

Claims (9)

1. 個体におけるＣＤ４０リガンド遺伝子の変異を検出する方法であって、該個体から単離された核酸を分析して、ＣＤ４０リガンド遺伝子中に、当該遺伝子から発現されるＣＤ４０リガンドポリペプチド中のアミノ酸２２７位および／または１５５位におけるアミノ酸の変異をもたらす変異が存在するかどうかを決定することを含み、ここで当該変異の存在は、該個体がＸ連鎖高ＩｇＭ症候群であることの指標となる、前記方法。
2. ＣＤ４０リガンド遺伝子中に変異が存在するかどうかを決定するための分析工程が、
   （ｉ）個体から単離されたメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）から相補的ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）を生成し；
   （ｉｉ）ＣＤ４０リガンドのコーディング領域に由来するオリゴヌクレオチドプライマーを用いて、該ｃＤＮＡについてポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を行うことにより、該個体のＣＤ４０リガンド遺伝子に由来するＤＮＡを増幅し；そして、
   （ｉｉｉ）増幅されたＤＮＡについてヌクレオチド配列分析により配列を決定して、ＣＤ４０リガンド遺伝子に変異が存在するかどうかを決定すること；
   を含む、請求項１に記載の方法。
3. オリゴヌクレオチドプライマーが、配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３および配列番号：４によって定義されるものである、請求項２に記載の方法。
4. 核酸を末梢血リンパ球から単離する、請求項１ないし３のいずれか１項に記載の方法。
5. 核酸の単離の前に、末梢血リンパ球をマイトジェンによって刺激する、請求項４に記載の方法。
6. マイトジェンが、ＣＤ３と称する細胞表面抗原に対する抗体を含む、請求項５に記載の方法。
7. 核酸を、羊水穿刺または絨毛膜絨毛試料採取によって得られた胎児細胞から単離する、請求項１ないし３のいずれか１項に記載の方法。
8. 核酸がメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）である、請求項１ないし７のいずれか１項に記載の方法。
9. 核酸がＤＮＡである、請求項１および４ないし７のいずれか１項に記載の方法。

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