JP4035152B2

JP4035152B2 - Synovial cell protein

Info

Publication number: JP4035152B2
Application number: JP2006241812A
Authority: JP
Inventors: 利博中島; 徹也天野
Original assignee: 株式会社ロコモジェン
Priority date: 2000-12-22
Filing date: 2006-09-06
Publication date: 2008-01-16
Anticipated expiration: 2021-12-21
Also published as: JP2007082545A

Description

本発明は、慢性関節リウマチ（以下RAと省略する）に関連する新規なタンパク質、このタンパク質をコードするポリヌクレオチド、そしてこれらタンパク質やポリヌクレオチドの用途に関するものである。より具体的には、RAの特異的な診断マーカーとして期待できる新規なタンパク質に関する。また、RAの治療薬開発に新しいアプローチを与える新規な遺伝子にも関連している。 The present invention relates to a novel protein associated with rheumatoid arthritis (hereinafter abbreviated as RA), a polynucleotide encoding this protein, and uses of these proteins and polynucleotides. More specifically, the present invention relates to a novel protein that can be expected as a specific diagnostic marker for RA. It is also associated with novel genes that give new approaches to the development of therapeutics for RA.

RAは、関節の滑膜組織に異常な増殖が見られる全身性の慢性炎症性疾患である。滑膜細胞（synovial cell）は、関節の滑膜で１−６層の上皮様層を形成する繊維芽細胞様の細胞で、滑液にプロテオグリカンやヒアルロン酸を供給するものとされている。RA患者の関節では、滑膜組織の増殖、その結果として引き起こされる多層構造、滑膜細胞の他の組織への浸潤といったような症状が観察される。またRA患者の血清中には、自己のIgGのFc領域に対する自己抗体が存在することから、自己免疫疾患のひとつとして考えられているがその病因については未だに解明されていない。 RA is a systemic chronic inflammatory disease with abnormal growth in the synovial tissue of the joints. Synovial cells are fibroblast-like cells that form 1-6 epithelial-like layers in the joint synovium, and are said to supply proteoglycan and hyaluronic acid to the synovial fluid. Symptoms such as synovial tissue proliferation, the resulting multilayer structure, and infiltration of synovial cells into other tissues are observed in the joints of RA patients. In addition, since autoantibodies against the Fc region of autologous IgG exist in the serum of RA patients, it is considered as one of the autoimmune diseases, but the etiology has not yet been elucidated.

前述の自己のIgGを認識する自己抗体の存在は、RAの特徴的な診断指標として古くから利用されてきた。最近では、変性ヒトIgGを主成分とする自己抗体検出用キットが商業的に供給されている。なお、この自己抗体はRA因子とも呼ばれている。RA因子の検出に基づくRAの診断は、疾患に対する特異性、抗体が生じるシステムの解明がなされておらず病因との関連がはっきりしていない、といった問題点がある。 The existence of the aforementioned autoantibodies that recognize self-IgG has been used for a long time as a characteristic diagnostic indicator of RA. Recently, autoantibody detection kits based on denatured human IgG are commercially available. This autoantibody is also called RA factor. The diagnosis of RA based on the detection of RA factors has problems such as specificity to the disease, and the elucidation of the system in which the antibody is generated, and its relation to the etiology is not clear.

RAの病態を、生体内における多彩な免疫反応と骨破壊を伴った関節滑膜の増殖性疾患という２つの側面からとらえた場合、前者の免疫反応に関しては多くの研究がなされ、その分子機序が明らかにされつつある。しかし後者の関節滑膜細胞の研究に関しては、それがRAの主座であるのにも関わらず、その細胞生物学的な特徴すら明らかにされていないのが現状である。RAのような、慢性・難治性疾患の発症や進展の背後にある分子機序を解明することは、疾患の診断、予防、そして治療に必要不可欠である。更に、高齢化の進行がとどまる気配の無い現状では、加齢性疾患でもあるRAの病態解明は社会的に見ても重要な課題である。 When the pathogenesis of RA is considered from the two aspects of various immune responses in vivo and proliferative disease of the synovial membrane accompanied by bone destruction, many studies have been conducted on the former immune response, and its molecular mechanism. Is being revealed. However, regarding the study of the latter synovial cells, even though it is the mainstay of RA, even its cell biological characteristics have not been clarified. Elucidating the molecular mechanisms behind the development and progression of chronic and refractory diseases such as RA is essential for the diagnosis, prevention, and treatment of the disease. Furthermore, in the current situation where there is no sign of aging progress, elucidation of the pathology of RA, which is also an age-related disease, is an important issue from a social perspective.

本発明は、RAの診断や治療に新しいアプローチをもたらす新規なタンパク質、ならびにこのタンパク質をコードする新規な遺伝子の提供を課題としている。本発明が提供するタンパク質とそれをコードするポリヌクレオチドは、RAの病因により密接に関連し、診断においては有用な情報を与え、治療技術の開発に当たっては創薬に結びつくものである。さらに本発明は、該タンパク質をコードする遺伝子を発現するトランスジェニック動物、および該遺伝子を欠損させたノックアウト動物を提供することを課題としている。これらの動物は、本発明の遺伝子の機能を解析し、モデル動物としてRAの治療法や治療薬を開発するために有用である。 An object of the present invention is to provide a novel protein that provides a new approach to the diagnosis and treatment of RA, and a novel gene encoding this protein. The protein provided by the present invention and the polynucleotide encoding the protein are more closely related to the pathogenesis of RA, provide useful information in diagnosis, and lead to drug discovery in the development of therapeutic techniques. Another object of the present invention is to provide a transgenic animal that expresses a gene encoding the protein, and a knockout animal that lacks the gene. These animals are useful for analyzing the function of the gene of the present invention and developing RA treatments and drugs as model animals.

本発明者らは、RA患者の培養ヒト滑膜細胞を免疫原として得た抗ヒト滑膜細胞抗体を用い、RA患者の滑膜細胞のcDNAライブラリーをイムノスクリーニングすることにより、RA患者の滑膜組織で発現している新規な遺伝子の単離に成功した。そしてこの遺伝子がコードするタンパク質を、この遺伝子が発現している組織である滑膜細胞（synovial cell）にちなんでシノビオリン（Synoviolin）と名づけた。 The present inventors used an anti-human synovial cell antibody obtained by using cultured human synovial cells of RA patients as an immunogen, and immunoscreened a cDNA library of RA patient's synovial cells, thereby synthesizing RA patients. We succeeded in isolating a novel gene expressed in membrane tissue. The protein encoded by this gene was named Synoviolin after the synovial cell, the tissue in which this gene is expressed.

本発明者らは、前記培養滑膜細胞の分子量約 80kDa、140kDa、そして 220kDa 分画に対する抗ヒト滑膜細胞抗体の反応性が、前記シノビオリン遺伝子の発現産物により吸収されることを確認した。また、これらのバンドや、前記シノビオリン遺伝子の発現産物が、RA患者の血中に存在する抗体との反応性を示すことを見出した。更に、抗ヒト滑膜細胞抗体は、RA患者の滑膜組織に対して強い反応性を示すことを確認した。 The present inventors have confirmed that the reactivity of the anti-human synovial cell antibody to the molecular weight fractions of the cultured synovial cells of about 80 kDa, 140 kDa, and 220 kDa is absorbed by the expression product of the synoviolin gene. Moreover, it discovered that these bands and the expression product of the said Synoviolin gene showed the reactivity with the antibody which exists in the blood of RA patient. Furthermore, it was confirmed that the anti-human synovial cell antibody showed a strong reactivity to the synovial tissue of RA patients.

また本発明者らは、生化学的な結合実験により、シノビオリンの天然リガンドであるシノビオリンリガンド（以下、SLと省略する）の存在を明らかにした。SLは、シノビオリンのリガンドとして本発明者らが初めて単離したタンパク質である。しかしSLをコードするDNAの塩基配列に基づく検索を試みたところ、S1-5と呼ばれる公知の遺伝子が、5'末端領域と3'末端領域において共通の塩基配列を含むことが明らかとなった。本発明者らが単離したSLとS1-5は、DNAの部分配列のみならず遺伝子の大きさ、発現産物の分子量などがほぼ同じであり、同一のタンパク質である可能性が高い。S1-5［"FBNL"(fibrillin-like) または "EFEMP1"(EGF-containing fibrillin-like extracellular matrix protein 1) とも呼ばれる］は、ヒト２倍体繊維芽細胞（human diploid fibroblast）で過剰発現している遺伝子として単離された（Lecka-Czernik, B. et al., Molecular and Cellular Biology, 15, 120-128, 1995）。構造的には、DNA合成を促進するEGF様ドメイン（Epidermal Growth Factor-like domein）を持つ。S1-5については構造と核酸合成の促進活性（細胞増殖活性）は見出されている。また、最近S1-5の変異が Malattia Leventinese（ML）および Doyne honeycomb retinal dystrophy（DHRD）と関連していることが報告（Stone, E. M. et al., Nature Genetics 22, 199-202, 1999）されているものの、RAとの関連については知られていない。またシノビオリンとの親和性については、本発明者らによるまったく新規な知見であることは言うまでもない。 In addition, the present inventors have clarified the presence of a Synoviolin ligand (hereinafter abbreviated as SL), which is a natural ligand of Synoviolin, through a biochemical binding experiment. SL is a protein isolated by the present inventors for the first time as a ligand for Synoviolin. However, a search based on the base sequence of the DNA encoding SL revealed that a known gene called S1-5 contained a common base sequence in the 5 'end region and the 3' end region. SL and S1-5 isolated by the present inventors have not only partial DNA sequences but also gene sizes, expression product molecular weights and the like that are almost the same, and are likely to be the same protein. S1-5 ["FBNL" (fibrillin-like) or "EFEMP1" (also called EGF-containing fibrillin-like extracellular matrix protein 1) is overexpressed in human diploid fibroblasts (Lecka-Czernik, B. et al., Molecular and Cellular Biology, 15, 120-128, 1995). Structurally, it has an EGF-like domain (Epidermal Growth Factor-like domein) that promotes DNA synthesis. S1-5 has been found to have structure and nucleic acid synthesis promoting activity (cell proliferation activity). Recently, it has been reported that S1-5 mutation is associated with Malattia Leventinese (ML) and Doyne honeycomb retinal dystrophy (Stone, EM et al., Nature Genetics 22, 199-202, 1999). However, it is not known about the relationship with RA. It goes without saying that the affinity with Synoviolin is a completely new finding by the present inventors.

さらに本発明者らは、シノビオリン遺伝子を導入したトランスジェニックマウスおよびシノビオリン遺伝子を欠損させたノックアウトマウスを作製し、その表現型を観察した。シノビオリン分子をマウスで過剰に発現させた場合、関節では滑膜の増生、骨、軟骨破壊が認められ、慢性リウマチ関節炎と酷似した症状を示した。一方、シノビオリン遺伝子を完全（ホモ）に欠損させた場合には、胎生期のマウスで不完全な肢芽発生と骨格形成が認められた。これらの表現型によると、滑膜組識だけでなく、軟骨・骨組識の発生・分化・再生、および代謝へのシノビオリンの関与が示唆される。また、シノビオリン強発現マウスの関節症の病変化部位では、滑膜、軟骨、骨組識への代謝、再生が積極的に誘導されていた。これらの結果は、シノビオリン分子がRAを含む関節症へ関与していることを明確に示すものである。更に、シノビオリン強発現マウスが関節症モデル動物として有用であることが確認された。 Furthermore, the present inventors produced a transgenic mouse into which the synoviolin gene was introduced and a knockout mouse in which the synoviolin gene was deleted, and observed its phenotype. When synoviolin molecules were overexpressed in mice, synovial hyperplasia, bone and cartilage destruction were observed in the joints, and the symptoms were very similar to those of chronic rheumatoid arthritis. On the other hand, when the synoviolin gene was completely (homo) -deficient, incomplete limb bud development and skeleton formation were observed in embryonic mice. These phenotypes suggest the involvement of Synoviolin not only in synovial tissue, but also in cartilage / bone tissue development, differentiation, regeneration, and metabolism. Moreover, metabolism and regeneration to synovium, cartilage, and bone tissue were positively induced in the disease-change sites of arthropathy in mice with strong synoviolin expression. These results clearly show that Synoviolin molecules are involved in arthropathy including RA. Furthermore, it was confirmed that a synoviolin strongly expressing mouse is useful as an arthropathy model animal.

本発明者らは、これらの新規な知見に基づいて、シノビオリンとその遺伝子、その抗体、あるいはリガンドの治療や診断への有用性を明らかにすることにより本発明を完成した。さらに本発明者らは、シノビオリン遺伝子を導入したトランスジェニック動物を作製し、RAの疾患モデルとしての有用性を示した。また本発明者らはシノビオリン遺伝子をlacZ遺伝子に置換したノックイン動物を作成した。シノビオリン遺伝子のノックイン動物は、シノビオリン遺伝子の欠損による影響の解析が可能となる他、シノビオリン遺伝子の内因性プロモーターにより発現されるLacZ（β-ガラクトシダーゼ活性として）の検出により、シノビオリン遺伝子プロモーターの活性を容易に検出することができる。このノックイン動物を利用して、シノビオリン遺伝子の発現を調節する化合物をスクリーニングすることが可能となる。リウマチ患者の関節でのシノビオリン遺伝子の発現亢進を抑制することにより、滑膜増生を防ぎ疾患を寛解させることも可能と考えられる。 Based on these novel findings, the present inventors have completed the present invention by clarifying the usefulness of synoviolin and its gene, its antibody, or ligand for treatment and diagnosis. Furthermore, the present inventors produced a transgenic animal into which a synoviolin gene was introduced, and showed its usefulness as a disease model for RA. The present inventors also created a knock-in animal in which the synoviolin gene was replaced with the lacZ gene. Synoviolin gene knock-in animals can analyze the effects of Synoviolin gene deletion, and facilitate the activity of Synoviolin gene promoter by detecting LacZ (as β-galactosidase activity) expressed by the endogenous promoter of Synoviolin gene Can be detected. Using this knock-in animal, it becomes possible to screen for compounds that regulate the expression of the Synoviolin gene. By suppressing the increased expression of the Synoviolin gene in the joints of rheumatic patients, it is considered possible to prevent synovial hyperplasia and ameliorate the disease.

本発明者らが見出した遺伝子は、RAの疾患の主座である滑膜組織の増殖に密接に関連しており、診断においてはきわめて重要な情報を与えるものである。また、RAの病因である滑膜組織の増殖に関与する本発明の遺伝子、その発現産物、発現産物に対する自己抗体、更に発現産物のリガンドも、RAの病態を説明する上で不可欠な物資と考えられる。特にシノビオリンを認識する自己抗体がRA患者の血中に見出されることは、RAの診断上まったく新しいアプローチをもたらすものである。またこれらの物質は、RAの治療方法の開発においても、今までに無い新しいアプローチをもたらすものでもある。 The genes found by the present inventors are closely related to the growth of synovial tissue, which is the mainstay of RA disease, and provide extremely important information in diagnosis. In addition, the gene of the present invention involved in the proliferation of synovial tissue that is the etiology of RA, its expression product, autoantibodies to the expression product, and the ligand of the expression product are also considered essential materials for explaining the pathology of RA. It is done. In particular, the discovery of autoantibodies that recognize synoviolin in the blood of RA patients provides a completely new approach to the diagnosis of RA. These substances also provide a new approach in the development of therapeutic methods for RA.

また、シノビオリンリガンドとして同定されたS1-5の変異が、MLおよびDHRDに関連していることから、シノビオリンもまた、これらの疾患の関与している可能性がある。従って、シノビオリンはこれらの疾患の診断に利用され得る他、シノビオリンリガンドとシノビオリンとの結合を調節する化合物や、シノビオリンのリガンドとして作用する化合物等は、これらの疾患に対する医薬の候補となる。 Synoviolin may also be implicated in these diseases, since the mutation of S1-5 identified as a synoviolin ligand is associated with ML and DHRD. Therefore, synoviolin can be used for diagnosis of these diseases, and compounds that modulate the binding of synoviolin ligand and synoviolin, compounds that act as synoviolin ligands, and the like are candidates for drugs for these diseases.

また、シノビオリンは発生において未分化間葉系細胞で発現している。したがってシノビオリンを細胞マーカーとして未分化間葉系細胞をセルソーターなどにより分離することができる。分離された未分化間葉系細胞は、試験管内での組織再生のために利用することができる。試験管内で関節を再構築することができれば、慢性リウマチ患者のみならず、関節破壊に苦しむ多くの患者に対する再生医療に有用である。 Synoviolin is also expressed in undifferentiated mesenchymal cells during development. Therefore, undifferentiated mesenchymal cells can be separated by a cell sorter using synoviolin as a cell marker. The separated undifferentiated mesenchymal cells can be used for tissue regeneration in vitro. If the joint can be reconstructed in vitro, it is useful for regenerative medicine not only for patients with rheumatoid arthritis but also for many patients suffering from joint destruction.

すなわち本発明は、以下のシノビオリンタンパク質、その抗体、それをコードするポリヌクレオチド、それらの用途、シノビオリンリガンドとその用途、ならびにシノビオリン遺伝子の発現が改変されたトランスジェニック動物およびその用途に関する。
〔１〕下記（ａ）から（ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチド。
（ａ）配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質をコードするポリヌクレオチド、
（ｂ）配列番号：１に記載の塩基配列の蛋白質コード領域を含むポリヌクレオチド、
（ｃ）配列番号：２に記載のアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸が置換、欠失、挿入、および／または付加したアミノ酸配列を有し、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質と機能的に同等な蛋白質をコードするポリヌクレオチド。
（ｄ）配列番号：１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質と機能的に同等な蛋白質をコードするポリヌクレオチド
（ｅ）配列番号：１に記載の塩基配列と少なくとも７０％以上の相同性を有する塩基配列からなり、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質と機能的に同等な蛋白質をコードするポリヌクレオチド
〔２〕配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質の部分ペプチドをコードするポリヌクレオチド。
〔３〕〔１〕、または〔２〕に記載のポリヌクレオチドによりコードされる蛋白質またはペプチド。
〔４〕次の（１）−（３）からなる群から選択される少なくとも１つの活性を有する〔３〕に記載の蛋白質またはペプチド。
（１）慢性関節リウマチ患者の血液中に見出される抗体と結合する
（２）シノビオリンリガンドS1-5と結合する
（３）滑膜増生を促進する
〔５〕〔１〕、または〔２〕に記載のポリヌクレオチドが挿入されたベクター。
〔６〕〔１〕に記載のポリヌクレオチドまたは〔５〕に記載のベクターを保持する形質転換細胞。
〔７〕〔６〕に記載の形質転換細胞を培養し、該形質転換細胞またはその培養上清から発現させた蛋白質またはペプチドを回収する工程を含む、〔３〕に記載の蛋白質またはペプチドの製造方法。
〔８〕〔３〕に記載の蛋白質またはペプチドに結合する抗体。
〔９〕〔３〕に記載のタンパク質またはペプチドを含む、〔３〕に記載のタンパク質またはペプチドを認識する抗体を分析するための免疫学的分析用試薬。
〔１０〕慢性関節リウマチの診断、または治療効果の判定を目的とするものである〔９〕の免疫学的分析用試薬。
〔１１〕〔３〕に記載のタンパク質またはペプチドと反応する抗体を含む、〔３〕に記載のタンパク質を分析するための免疫学的分析用試薬。
〔１２〕慢性関節リウマチの診断、または治療効果の判定を目的とするものである〔１１〕に記載の免疫学的分析用試薬。
〔１３〕分析すべき〔３〕に記載のタンパク質が滑膜細胞に存在するものである〔１２〕の免疫学的分析用試薬。
〔１４〕次の工程を含む、生体試料中の〔３〕に記載の蛋白質、および／またはその部分ペプチドに結合する抗体の測定方法。
(1)生体試料を〔３〕に記載の蛋白質、および／またはその部分ペプチドと接触させる工程、および
(2)〔３〕に記載の蛋白質、および／またはその部分ペプチドに結合する抗体を検出する工程
〔１５〕次の工程を含む、生体試料中の〔３〕に記載の蛋白質、および／またはその部分ペプチドの測定方法。
(1)生体試料を〔８〕に記載の抗体と接触させる工程、および
(2)〔３〕に記載の蛋白質、および／またはその部分ペプチドに結合する、〔８〕に記載の抗体を検出する工程
〔１６〕配列番号：１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドまたはその相補鎖に相補的な少なくとも１５ヌクレオチドを含むポリヌクレオチド。
〔１７〕次の工程を含む、生体試料中の〔１〕または〔２〕に記載のポリヌクレオチドの測定方法。
(1)生体試料を〔１６〕に記載のポリヌクレオチドと接触させる工程、および
(2)〔１〕または〔２〕に記載のポリヌクレオチドにハイブリダイズする、〔１６〕に記載のポリヌクレオチドを検出する工程
〔１８〕〔１６〕に記載のポリヌクレオチドを含む、〔１〕または〔２〕に記載のポリヌクレオチドの測定用キット。
〔１９〕〔３〕に記載のタンパク質または該タンパク質をコードする遺伝子の発現を指標に、該タンパク質を発現する細胞を検出または分離する方法。
〔２０〕細胞がリウマチ滑膜細胞である、〔１９〕に記載の方法。
〔２１〕細胞が未分化間葉系細胞である、〔１９〕に記載の方法。
〔２２〕〔８〕に記載の抗体を含む、〔３〕に記載のタンパク質を発現する細胞の検出または分離用試薬。
〔２３〕次の工程を含む、慢性関節リウマチの検出方法であって、慢性関節リウマチのマーカーが、〔１〕に記載のポリヌクレオチド、〔３〕に記載のタンパク質、〔３〕に記載のペプチド、〔３〕に記載のタンパク質に結合する抗体、および〔３〕に記載のペプチドに結合する抗体からなる群から選択された少なくともひとつのマーカーである方法。
i) 被検者の生体試料中に存在する慢性関節リウマチのマーカーを検出する工程、および
ii) 工程 i)の検出結果を、慢性関節リウマチと関連付ける工程
〔２４〕生体試料が被検者の血液であり、慢性関節リウマチのマーカーが〔３〕に記載のタンパク質に結合する抗体、および／または〔３〕に記載のペプチドに結合する抗体である〔２３〕に記載の方法。
〔２５〕生体試料が被検者の滑膜組織または滑膜細胞であり、慢性関節リウマチのマーカーが〔１〕に記載のポリヌクレオチド、および／または〔３〕に記載のタンパク質である〔２３〕に記載の方法。
〔２６〕次の工程を含む、被験化合物の〔３〕に記載のタンパク質またはペプチドと結合する活性の検出方法。
ａ）被験化合物を〔３〕に記載のタンパク質またはペプチドと接触させる工程、および
ｂ）被験化合物と前記タンパク質またはペプチドとの結合を観察する工程
〔２７〕次の工程を含む、〔３〕に記載のタンパク質またはペプチドと結合する活性を有する化合物のスクリーニング方法。
ａ）〔２６〕に記載の方法によって被験化合物の〔３〕に記載の蛋白質またはペプチドに対する結合活性を検出する工程、および
ｂ）対照と比較して前記結合活性が高い被験化合物を選択する工程
〔２８〕次の工程を含む、〔３〕に記載のタンパク質とそのリガンドとの結合を阻害する活性の検出方法。
ａ）被験化合物存在下で〔３〕に記載のタンパク質またはペプチドとそのリガンドとを接触させる工程、および
ｂ）前記タンパク質またはペプチドに結合するリガンド、および／または被験化合物を検出する工程
〔２９〕リガンドがシノビオリンリガンドS1-5である〔２８〕に記載の方法。
〔３０〕次の工程を含む、〔３〕に記載のタンパク質とそのリガンドとの結合を阻害する化合物のスクリーニング方法。
ａ）〔２８〕に記載の方法によって、被験化合物の〔３〕に記載のタンパク質とそのリガンドとの結合を阻害する活性を検出する工程、および
ｂ）対照と比較して前記阻害活性が高い被験化合物を選択する工程
〔３１〕次の工程を含む、被験化合物の〔３〕に記載のタンパク質によるシグナル伝達を調節する活性を検出する方法。
ａ）前記タンパク質のリガンドの存在下または不存在下で、被験化合物と前記タンパク質を接触させる工程、および
ｂ）前記タンパク質を介するシグナル伝達を検出する工程
〔３２〕次の工程を含む、〔３〕に記載のタンパク質によるシグナル伝達を調節する活性を有する化合物のスクリーニング方法。
ａ）〔３１〕に記載の方法によって、被験化合物の前記タンパク質によるシグナル伝達を調節する活性を検出する工程、および
ｂ）対照と比較して前記調節の活性が高い被験化合物を選択する工程
〔３３〕次の工程を含む、〔１〕に記載のポリヌクレオチドの発現を調節する活性の検出方法であって、
ａ）被験化合物の存在下で〔１〕に記載のポリヌクレオチドを発現する細胞を培養する工程、および
ｂ）前記ポリヌクレオチドの発現レベルを測定する工程、
〔３４〕次の工程を含む、〔１〕に記載のポリヌクレオチドの発現を調節する化合物のスクリーニング方法。
ａ）〔３３〕に記載の方法によって、被験化合物の〔１〕に記載のポリヌクレオチドの発現を調節する活性を検出する工程、および
ｂ）対照と比較して前記活性に差を有する被験化合物を選択する工程
〔３５〕〔２７〕に記載のスクリーニング方法によって得ることができる化合物を有効成分として含む、シノビオリン刺激剤。
〔３６〕〔３０〕に記載のスクリーニング方法によって得ることができる化合物を有効成分として含む、シノビオリンとシノビオリンリガンドとの結合阻害剤。
〔３７〕〔３０〕または〔３２〕のスクリーニング方法によって得ることができる化合物を有効成分として含む、滑膜増生阻害剤。
〔３８〕〔１〕若しくは〔２〕に記載のポリヌクレオチド、〔３〕に記載の蛋白質若しくはペプチド、および〔５〕に記載のベクターからなる群から選択されるいずれかの成分を有効成分として含有する医薬組成物。
〔３９〕〔１〕または〔２〕に記載のポリヌクレオチドの発現が改変されているか、または該改変を誘導することができるトランスジェニック非ヒト脊椎動物。
〔４０〕〔１〕または２に記載のポリヌクレオチドが外来的に導入されている、〔３９〕に記載のトランスジェニック非ヒト脊椎動物。
〔４１〕慢性関節リウマチモデル動物である、〔４０〕に記載のトランスジェニック非ヒト脊椎動物。
〔４２〕内因性に持つ〔１〕または〔２〕のいずれかに記載のポリヌクレオチドの発現が抑制されているトランスジェニック非ヒト脊椎動物。
〔４３〕他の遺伝子がノックインされている、〔４２〕に記載のトランスジェニック非ヒト脊椎動物。
〔４４〕〔４０〕または〔４２〕に記載のトランスジェニック非ヒト脊椎動物に由来する細胞。
〔４５〕次の工程を含む、〔１〕または〔２〕に記載のポリヌクレオチドの内因性プロモーターの活性を調節する活性の検出方法。
ａ）〔１〕または〔２〕に記載のポリヌクレオチドの内因性プロモーターの制御下にレポーター遺伝子を発現することができる発現系に、被験化合物を接触させる工程、および
ｂ）レポーター遺伝子の発現レベルを測定する工程
〔４６〕前記発現系が、〔４３〕に記載のトランスジェニック非ヒト脊椎動物またはこの動物に由来する細胞である〔４５〕に記載の方法。
〔４７〕次の工程を含む、〔１〕または〔２〕に記載のポリヌクレオチドの内因性プロモーターの活性を調節する化合物のスクリーニング方法。
ａ）〔４５〕に記載の方法によって、被験化合物の〔１〕または〔２〕に記載のポリヌクレオチドの内因性プロモーターの活性を調節する活性を測定する工程、および
ｂ）対照と比較して、前記活性に差がある被験化合物を選択する工程
〔４８〕〔３４〕、または〔４７〕に記載のスクリーニング方法によって得ることができる化合物を有効成分として含む、〔１〕に記載のポリヌクレオチドの発現を調節するための医薬組成物。 That is, the present invention relates to the following synoviolin protein, antibody thereof, polynucleotide encoding the same, use thereof, synoviolin ligand and use thereof, and transgenic animal in which expression of synoviolin gene is modified and use thereof.
[1] The polynucleotide according to any one of (a) to (e) below.
(A) a polynucleotide encoding a protein comprising the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2;
(B) a polynucleotide comprising the protein coding region of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1;
(C) a protein having an amino acid sequence in which one or more amino acids are substituted, deleted, inserted and / or added in the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 2, and comprising the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 2; A polynucleotide encoding a functionally equivalent protein.
(D) a polynucleotide that hybridizes with a polynucleotide comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 1 under stringent conditions and encodes a protein functionally equivalent to the protein comprising the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2. Nucleotide (e) consisting of a base sequence having at least 70% homology with the base sequence described in SEQ ID NO: 1, and encoding a protein functionally equivalent to the protein consisting of the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 2 Polynucleotide [2] A polynucleotide encoding a partial peptide of a protein consisting of the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2.
[3] A protein or peptide encoded by the polynucleotide according to [1] or [2].
[4] The protein or peptide according to [3], which has at least one activity selected from the group consisting of the following (1) to (3).
(1) binds to an antibody found in blood of patients with rheumatoid arthritis (2) binds to synoviolin ligand S1-5 (3) promotes synovial hyperplasia [5] [1] or [2] A vector in which the polynucleotide is inserted.
[6] A transformed cell carrying the polynucleotide according to [1] or the vector according to [5].
[7] The production of the protein or peptide according to [3], comprising culturing the transformed cell according to [6] and recovering the protein or peptide expressed from the transformed cell or the culture supernatant thereof. Method.
[8] An antibody that binds to the protein or peptide of [3].
[9] A reagent for immunological analysis for analyzing an antibody that recognizes the protein or peptide according to [3], comprising the protein or peptide according to [3].
[10] The reagent for immunological analysis according to [9], which is intended for diagnosis of rheumatoid arthritis or determination of therapeutic effect.
[11] An immunological analysis reagent for analyzing the protein according to [3], comprising an antibody that reacts with the protein or peptide according to [3].
[12] The immunological analysis reagent according to [11], which is intended for diagnosis of rheumatoid arthritis or determination of a therapeutic effect.
[13] The reagent for immunological analysis according to [12], wherein the protein according to [3] to be analyzed is present in synovial cells.
[14] A method for measuring an antibody that binds to the protein according to [3] and / or a partial peptide thereof in a biological sample, comprising the following steps.
(1) contacting the biological sample with the protein according to [3] and / or a partial peptide thereof, and
(2) A step of detecting an antibody that binds to the protein according to [3] and / or a partial peptide thereof [15] The protein according to [3] in a biological sample and / or the step thereof comprising the following steps: Method for measuring partial peptide.
(1) contacting the biological sample with the antibody according to [8], and
(2) A step of detecting the antibody according to [8], which binds to the protein according to [3] and / or a partial peptide thereof [16] a polynucleotide comprising the nucleotide sequence according to SEQ ID NO: 1 or its A polynucleotide comprising at least 15 nucleotides complementary to a complementary strand.
[17] A method for measuring a polynucleotide according to [1] or [2] in a biological sample, comprising the following steps.
(1) contacting the biological sample with the polynucleotide according to [16], and
(2) The step of detecting the polynucleotide according to [16], which hybridizes to the polynucleotide according to [1] or [2] [18] comprising the polynucleotide according to [16], [1] or A kit for measuring the polynucleotide according to [2].
[19] A method for detecting or separating a cell expressing the protein, using the expression of the protein according to [3] or a gene encoding the protein as an index.
[20] The method of [19], wherein the cell is a rheumatoid synoviocyte.
[21] The method of [19], wherein the cell is an undifferentiated mesenchymal cell.
[22] A reagent for detecting or separating a cell expressing the protein according to [3], comprising the antibody according to [8].
[23] A method for detecting rheumatoid arthritis, comprising the following steps, wherein the rheumatoid arthritis marker is the polynucleotide according to [1], the protein according to [3], and the peptide according to [3] A method which is at least one marker selected from the group consisting of an antibody that binds to the protein of [3] and an antibody that binds to the peptide of [3].
i) detecting a marker of rheumatoid arthritis present in a biological sample of the subject; and
ii) A step of associating the detection result of step i) with rheumatoid arthritis [24] The biological sample is blood of a subject, and the rheumatoid arthritis marker is an antibody that binds to the protein according to [3], and / or Alternatively, the method according to [23], which is an antibody that binds to the peptide according to [3].
[25] The biological sample is a subject's synovial tissue or synovial cell, and the rheumatoid arthritis marker is the polynucleotide according to [1] and / or the protein according to [3] [23] The method described in 1.
[26] A method for detecting an activity of binding to the protein or peptide of [3] of the test compound, comprising the following step.
a) contacting the test compound with the protein or peptide according to [3], and b) observing the binding between the test compound and the protein or peptide [27] comprising the following steps: A method for screening a compound having an activity of binding to a protein or peptide.
a) detecting the binding activity of the test compound to the protein or peptide described in [3] by the method described in [26], and b) selecting the test compound having a higher binding activity compared to the control [ [28] A method for detecting an activity that inhibits the binding between the protein of [3] and its ligand, which comprises the following steps.
a) contacting the protein or peptide of [3] with its ligand in the presence of a test compound; and b) detecting a ligand and / or test compound that binds to the protein or peptide [29] ligand. [28] is a Synoviolin ligand S1-5.
[30] A screening method for a compound that inhibits the binding between the protein of [3] and its ligand, which comprises the following steps.
a) a step of detecting an activity of inhibiting the binding of the protein described in [3] of the test compound to its ligand by the method described in [28], and b) a test having a higher inhibitory activity than the control A step of selecting a compound [31] A method for detecting an activity of regulating the signal transduction by the protein of [3] of a test compound, comprising the following step.
a) a step of bringing the test compound into contact with the protein in the presence or absence of a ligand of the protein; and b) a step of detecting signal transduction via the protein [32] comprising the following steps: [3] A method for screening a compound having an activity of regulating signal transduction by the protein described in 1.
a) detecting the activity of the test compound to modulate signal transduction by the protein by the method described in [31], and b) selecting the test compound having a higher activity of the modulation compared to the control [33 A method for detecting an activity of regulating the expression of the polynucleotide according to [1], comprising the following steps:
a) culturing cells expressing the polynucleotide of [1] in the presence of a test compound; and b) measuring the expression level of the polynucleotide.
[34] A screening method for a compound that regulates the expression of the polynucleotide according to [1], comprising the following steps.
a) a step of detecting an activity of regulating the expression of the polynucleotide according to [1] of the test compound by the method according to [33], and b) a test compound having a difference in the activity compared to the control Synoviolin stimulator comprising, as an active ingredient, a compound obtainable by the screening method according to the step [35] [27] of selecting.
[36] A binding inhibitor between synoviolin and a synoviolin ligand, comprising as an active ingredient a compound obtainable by the screening method according to [30].
[37] A synovial hyperplasia inhibitor comprising as an active ingredient a compound obtainable by the screening method of [30] or [32].
[38] Contains as an active ingredient any component selected from the group consisting of the polynucleotide of [1] or [2], the protein or peptide of [3], and the vector of [5] A pharmaceutical composition.
[39] A transgenic non-human vertebrate in which the expression of the polynucleotide according to [1] or [2] is modified or capable of inducing the modification.
[40] The transgenic non-human vertebrate according to [39], wherein the polynucleotide according to [1] or 2 is introduced exogenously.
[41] The transgenic non-human vertebrate according to [40], which is a rheumatoid arthritis model animal.
[42] A transgenic non-human vertebrate in which expression of the polynucleotide according to any one of [1] or [2] is suppressed.
[43] The transgenic non-human vertebrate according to [42], wherein another gene is knocked in.
[44] A cell derived from the transgenic non-human vertebrate according to [40] or [42].
[45] A method for detecting an activity for regulating the activity of an endogenous promoter of the polynucleotide according to [1] or [2], comprising the following steps.
a) contacting a test compound with an expression system capable of expressing a reporter gene under the control of an endogenous promoter of the polynucleotide according to [1] or [2], and b) expressing the expression level of the reporter gene Step [46] The method according to [45], wherein the expression system is the transgenic non-human vertebrate according to [43] or a cell derived from this animal.
[47] A screening method for a compound that regulates the activity of an endogenous promoter of the polynucleotide according to [1] or [2], comprising the following steps.
a) measuring the activity of the test compound to modulate the activity of the endogenous promoter of the polynucleotide according to [1] or [2] by the method according to [45], and b) as compared with the control, The expression of the polynucleotide according to [1], comprising as an active ingredient a compound obtainable by the screening method according to [48], [34], or [47], wherein a test compound having a difference in activity is selected. A pharmaceutical composition for regulating

また本発明は、〔２７〕に記載のスクリーニング方法によって得ることができる化合物を投与する工程を含む、シノビオリンの刺激方法に関する。あるいは本発明は、〔３０〕に記載のスクリーニング方法によって得ることができる化合物を投与する工程を含む、シノビオリンとシノビオリンリガンドとの結合阻害方法に関する。更に本発明は、〔３０〕または〔３２〕のスクリーニング方法によって得ることができる化合物を投与する工程を含む、滑膜増生阻害方法に関する。加えて本発明は、〔１〕若しくは〔２〕に記載のポリヌクレオチド、〔３〕に記載の蛋白質若しくはペプチド、および〔５〕に記載のベクターからなる群から選択されるいずれかの成分を投与する工程を含む、滑膜増生促進方法に関する。更に本発明は、〔３４〕、または〔４７〕に記載のスクリーニング方法によって得ることができる化合物を投与する工程を含む、〔１〕に記載のポリヌクレオチドの発現を調節するための方法に関する。 The present invention also relates to a method for stimulating synoviolin comprising the step of administering a compound obtainable by the screening method according to [27]. Alternatively, the present invention relates to a method for inhibiting the binding between Synoviolin and Synoviolin ligand, comprising the step of administering a compound obtainable by the screening method according to [30]. Furthermore, the present invention relates to a method for inhibiting synovial hyperplasia comprising the step of administering a compound obtainable by the screening method of [30] or [32]. In addition, the present invention administers any component selected from the group consisting of the polynucleotide described in [1] or [2], the protein or peptide described in [3], and the vector described in [5]. The present invention relates to a method for promoting synovial membrane growth, including Furthermore, the present invention relates to a method for regulating the expression of a polynucleotide according to [1], comprising a step of administering a compound obtainable by the screening method according to [34] or [47].

また本発明は、〔２７〕に記載のスクリーニング方法によって得ることができる化合物の、シノビオリンの刺激剤の製造における使用に関する。あるいは本発明は、〔３０〕に記載のスクリーニング方法によって得ることができる化合物の、シノビオリンとシノビオリンリガンドとの結合阻害剤の製造における使用に関する。更に本発明は、〔３０〕または〔３２〕のスクリーニング方法によって得ることができる化合物の、滑膜増生阻害剤の製造における使用に関する。加えて本発明は、〔１〕若しくは〔２〕に記載のポリヌクレオチド、〔３〕に記載の蛋白質若しくはペプチド、および〔５〕に記載のベクターからなる群から選択されるいずれかの成分の、滑膜増生促進剤の製造における使用に関する。更に本発明は、〔３４〕、または〔４７〕に記載のスクリーニング方法によって得ることができる化合物の、〔１〕に記載のポリヌクレオチドの発現を調節するための医薬品製剤の製造における使用に関する。 The present invention also relates to the use of the compound obtainable by the screening method according to [27] in the production of a synoviolin stimulant. Alternatively, the present invention relates to the use of a compound obtainable by the screening method according to [30] in the manufacture of a binding inhibitor between synoviolin and a synoviolin ligand. Furthermore, the present invention relates to the use of a compound obtainable by the screening method [30] or [32] in the production of a synovial hyperplasia inhibitor. In addition, the present invention provides any component selected from the group consisting of the polynucleotide described in [1] or [2], the protein or peptide described in [3], and the vector described in [5]. The present invention relates to use in the production of a synovial membrane growth promoter. The present invention further relates to the use of the compound obtainable by the screening method according to [34] or [47] in the production of a pharmaceutical preparation for regulating the expression of the polynucleotide according to [1].

本発明は、配列番号：１に示す塩基配列の蛋白質コード領域を含むシノビオリンをコードするポリヌクレオチドを提供する。本発明においてポリヌクレオチドは、DNAまたはRNAであってよい。また、修飾されたヌクレオチドを含むものであってもよい。本発明によるシノビオリンをコードするポリヌクレオチドは、前記RA患者の滑膜細胞から公知の方法によりクローニングすることができる（Nucleic Acid Res. 16:7583-7600, 1988）。具体的には、滑膜組織や培養細胞として回収したRA患者の関節炎を発症した組織に由来する滑膜細胞から抽出したmRNAをもとにcDNAライブラリーを得る（Nucleic Acid Research, 16, 7583, 1988）。配列番号：１に示した塩基配列に基づいて設定したプローブを用いて、このライブラリーからハイブリダイズするクローンをスクリーニングすることによってシノビオリン遺伝子を単離することができる。 The present invention provides a polynucleotide encoding synoviolin comprising the protein coding region of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1. In the present invention, the polynucleotide may be DNA or RNA. Moreover, the modified nucleotide may be included. The polynucleotide encoding synoviolin according to the present invention can be cloned from synovial cells of the RA patient by a known method (Nucleic Acid Res. 16: 7583-7600, 1988). Specifically, a cDNA library is obtained based on mRNA extracted from synovial cells collected from synovial tissue and cultured tissue cells from RA patients with arthritis (Nucleic Acid Research, 16, 7583, 1988). Synoviolin gene can be isolated by screening clones that hybridize from this library using a probe set based on the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1.

本発明はまた、先に述べたシノビオリンと機能的に同等なタンパク質をコードするポリヌクレオチドをも含む。本発明においてシノビオリンと機能的に同等な蛋白質をコードするポリヌクレオチドを、シノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチドと言う。機能的に同等なタンパク質とは、第１にシノビオリンと免疫学的に同等なタンパク質を示すことができる。すなわち本発明におけるシノビオリンと機能的に同等なタンパク質とは、シノビオリンを特異的に認識し、RA患者の血清中に存在する抗体と反応するものであれば、シノビオリンのドメインであることができる。あるいはこの免疫学的に活性なドメインを含むタンパク質の断片であることもできる。これらの変異体は、RA患者血清パネルと正常者の血清を使ってシノビオリンの断片をスクリーニングすることによって当業者であれば容易に選択することができる。 The present invention also includes a polynucleotide that encodes a protein that is functionally equivalent to the aforementioned Synoviolin. In the present invention, a polynucleotide encoding a protein functionally equivalent to Synoviolin is referred to as a polynucleotide functionally equivalent to Synoviolin. A functionally equivalent protein can first be a protein that is immunologically equivalent to Synoviolin. That is, a protein functionally equivalent to Synoviolin in the present invention can be a Synoviolin domain as long as it specifically recognizes Synoviolin and reacts with an antibody present in the serum of RA patients. Alternatively, it can be a fragment of a protein containing this immunologically active domain. These mutants can be easily selected by those skilled in the art by screening synoviolin fragments using a RA patient serum panel and normal serum.

本発明によるシノビオリンと機能的に同等なタンパク質は、免疫学的な特性のみならずSL（S1-5）との結合特性に基づいても定義される。すなわち本発明は、SL（S1-5）との親和性を備えるシノビオリンの断片を含む。これらの変異体は、SL（S1-5）を使って候補タンパク質をスクリーニングすることによって当業者であれば容易に選択することができる。たとえば本発明者らが見出した SL（S1-5）は、実施例に示したようにシノビオリンのcDNAにおいて1233-1592番目に相当する120アミノ酸残基をシノビオリンとの結合に必要な領域として要求する。したがって、この領域を構成するアミノ酸配列からなるタンパク質、あるいはこのアミノ酸配列を含むタンパク質は本発明によるシノビオリンと機能的に同等なタンパク質を構成する。SLとしては accession number AAA65590 (nucleotide accession U03877)、I38449、NP_061489 (nucleotide accession NM_018894)、NP_004096 (nucleotide accession NM_004105)、または Q12805 に特定される S1-5タンパク質や、それらに類似したタンパク質であってヒトシノビオリンタンパク質（配列番号：２）に結合する活性を有するタンパク質を用いることができる（Lecka-Czernik, B. et al., Mol. Cell. Biol. 15, 120-128, 1995; Heon, E. et al., Arch. Ophthalmol. 114, 193-198, 1996; Ikegawa, S. et al., Genomics 35, 590-592, 1996; Katsanis, N. et al., Hum. Genet. 106, 66-72, 2000; Giltay, R. et al., Matrix Biol. 18, 469-480, 1999; Stone, E. M. et al., Nat. Genet. 22, 199-202, 1999）。 Proteins functionally equivalent to Synoviolin according to the present invention are defined not only based on immunological properties but also based on binding properties with SL (S1-5). That is, the present invention includes a synoviolin fragment having affinity for SL (S1-5). These mutants can be easily selected by those skilled in the art by screening candidate proteins using SL (S1-5). For example, SL (S1-5) found by the present inventors requires 120 amino acid residues corresponding to positions 1233 to 1592 in the synoviolin cDNA as a region necessary for synoviolin binding as shown in the Examples. . Therefore, a protein consisting of an amino acid sequence constituting this region or a protein containing this amino acid sequence constitutes a protein functionally equivalent to Synoviolin according to the present invention. SL includes S1-5 protein identified by accession number AAA65590 (nucleotide accession U03877), I38449, NP_061489 (nucleotide accession NM_018894), NP_004096 (nucleotide accession NM_004105), or Q12805, and similar proteins, human synoviolin A protein having an activity of binding to the protein (SEQ ID NO: 2) can be used (Lecka-Czernik, B. et al., Mol. Cell. Biol. 15, 120-128, 1995; Heon, E. et al ., Arch. Ophthalmol. 114, 193-198, 1996; Ikegawa, S. et al., Genomics 35, 590-592, 1996; Katsanis, N. et al., Hum. Genet. 106, 66-72, 2000 Giltay, R. et al., Matrix Biol. 18, 469-480, 1999; Stone, EM et al., Nat. Genet. 22, 199-202, 1999).

また、ヒトシノビオリンと機能的に同等なタンパク質としては、滑膜増生を促進する活性を有するタンパク質が挙げられる。ヒトシノビオリン遺伝子が導入されたトランスジェニックマウスは、有意な頻度で関節炎を伴う指の膨脹が認められた。組織学的には、これらの指関節では滑膜増生を伴う骨破壊と異常な骨新生が認められた。ヒトシノビオリンタンパク質と機能的に同等なタンパク質は、滑膜増生を促進する活性に基づいても定義される。滑膜増生の促進は、トランスジェニック動物の作製により検証することができる他、関節への局所的な遺伝子導入、あるいはインビトロ培養滑膜細胞においてタンパク質を発現させることにより検証することができる。本発明のポリヌクレオチドを用いてトランスジェニック動物を得る方法は、後に述べる。 Examples of proteins functionally equivalent to human synoviolin include proteins having an activity of promoting synovial hyperplasia. Transgenic mice introduced with the human synoviolin gene showed finger swelling with arthritis at a significant frequency. Histologically, bone destruction with synovial hyperplasia and abnormal bone formation were observed in these finger joints. Proteins that are functionally equivalent to human synoviolin proteins are also defined based on activity that promotes synovial hyperplasia. The promotion of synovial hyperplasia can be verified by producing a transgenic animal, and can also be verified by local gene transfer into a joint or by expressing a protein in an in vitro cultured synovial cell. A method for obtaining a transgenic animal using the polynucleotide of the present invention will be described later.

また、ヒトシノビオリンと機能的に同等なタンパク質としては、正常な骨形成または四肢の発達に貢献する活性を有するタンパク質が挙げられる。シノビオリンは発生において頭頂骨、四肢、耳などの骨および軟骨が形成される部位に強く発現しており、四肢形成期においては Apical Ectodermal Ridge（AER;外胚葉頂堤）および軟骨・骨原基に強い発現が観察された。ターゲティングにより内因性シノビオリン遺伝子を欠損させたノックアウトマウス胚は、頭頂部から臀部までの長さが短く、頭蓋や四肢の形成が未熟である傾向が認められ、ホモ接合体では肢芽、上下顎骨および耳に形態異常を示し高い確率で胎生致死となった。シノビオリン遺伝子ホモノックアウトマウスは、胎生期において肢芽の発生異常が認められ、また、軟骨及び骨への形成が認められず、肢芽と軟骨、骨の発生部位にシノビオリンの発現が認められたことから、シノビオリン分子が骨格形成および四肢の発達に関与していることが示される。 Examples of proteins functionally equivalent to human synoviolin include proteins having an activity that contributes to normal bone formation or limb development. Synoviolin is strongly expressed in the sites where bone and cartilage are formed in the parietal bone, limbs, ears, etc. during development, and apical ectodermal ridge (AER) and cartilage / bone primordia during limb formation Strong expression was observed. Knockout mouse embryos that lack the endogenous Synoviolin gene by targeting have a short length from the parietal region to the buttocks and tend to be immature in the formation of the skull and limbs. The morphological abnormalities were observed in the ears, and fetal death occurred with high probability. Synoviolin gene homo-knockout mice showed abnormal limb bud development during embryonic period, no formation of cartilage and bone, and expression of synoviolin at the limb bud, cartilage, and bone development sites. Indicate that the Synoviolin molecule is involved in skeletal formation and limb development.

explant法による培養系を用いた解析では、シノビオリンノックアウト（lacZ遺伝子のノックイン）マウス胎仔の肢芽由来の細胞におけるLacZの発現は軟骨・骨および肢の原基となると考えられる未分化間葉系細胞にのみ認められた。さらにアルカリフォスファターゼ染色、Kossaの染色などにより、骨・軟骨形成能がホモノックアウト由来の細胞では遅延していることが確認された。正常な骨形成または四肢の発達への関与は、ノックアウト動物の作製により検証することができる他、インビトロ培養における骨・軟骨細胞のマーカー遺伝子の発現の解析や骨形成能の解析などを利用して行うことも考えられる。またある蛋白質が正常な骨形成または四肢の発達に貢献する活性を有することは、本発明のポリヌクレオチドの発現を抑制されたノックアウト動物や培養細胞において、当該ポリヌクレオチドがコードする蛋白質の投与、あるいは当該蛋白質をコードするDNAまたはRNAの発現によって失われた機能が相補されることによっても確認することができる。 In analysis using explant culture system, synoviolin knockout (lacZ gene knock-in) undifferentiated mesenchymal cells in which LacZ expression in cells derived from limb buds of mouse fetuses is considered to be the basis of cartilage, bone and limb Only allowed. Furthermore, it was confirmed by alkaline phosphatase staining, Kossa staining, and the like that the ability to form bone and cartilage was delayed in cells derived from homo-knockout. Involvement in normal bone formation or limb development can be verified by creating knockout animals, as well as analysis of bone and chondrocyte marker genes in vitro culture and analysis of bone formation ability. It is possible to do it. In addition, the fact that a certain protein has an activity that contributes to normal bone formation or limb development means that in a knockout animal or cultured cell in which expression of the polynucleotide of the present invention is suppressed, administration of the protein encoded by the polynucleotide, or It can also be confirmed by complementation of a function lost by expression of DNA or RNA encoding the protein.

加えて本発明によるシノビオリンと機能的に同等なタンパク質は、シノビオリンが有する生化学的な活性に基づいても定義される。シノビオリンの生化学的な活性とは、たとえばチロシンキナーゼやユビキチンリガーゼ活性を示すことができる。これらの生化学的な活性は、シノビオリンに見出された各種のモチーフや、実施例の結果に裏付けられている。すなわち本発明は、シノビオリンが有する少なくとも一つの生化学的な活性を維持したシノビオリンの断片を含む。シノビオリンの生化学的な活性の確認方法や、それぞれの生化学的な活性を保持している領域については後に具体的に述べる。 In addition, a protein functionally equivalent to Synoviolin according to the present invention is also defined based on the biochemical activity of Synoviolin. Synoviolin biochemical activity can indicate, for example, tyrosine kinase or ubiquitin ligase activity. These biochemical activities are supported by various motifs found in Synoviolin and the results of Examples. That is, the present invention includes a Synoviolin fragment that maintains at least one biochemical activity of Synoviolin. A method for confirming the biochemical activity of Synoviolin and the region that retains each biochemical activity will be specifically described later.

これらのシノビオリンに機能的に同等なタンパク質は、他のタンパク質との融合タンパク質とすることができる。たとえば、FLAGタグ、HAタグ、あるいはヒスチジンタグなどの付加的なアミノ酸配列が付加され、前記シノビオリンに機能的に同等なタンパク質としての少なくとも一つの性状を維持したタンパク質は、前記機能的に同等なタンパク質に含まれる。付加するタンパク質が、シノビオリンとは異なる活性を有している場合も、シノビオリンが有する少なくとも一つの機能を維持している場合には、その融合タンパク質は、本発明に置ける機能的に同等なタンパク質に含まれる。 Proteins functionally equivalent to these synoviolins can be fusion proteins with other proteins. For example, a protein having an additional amino acid sequence such as a FLAG tag, an HA tag, or a histidine tag and having maintained at least one property as a protein functionally equivalent to the synoviolin is a protein that is functionally equivalent. include. Even if the protein to be added has an activity different from that of Synoviolin, if the Synoviolin retains at least one function, the fusion protein is a functionally equivalent protein in the present invention. included.

前記本発明のポリヌクレオチドに対して変異を含む塩基配列で構成されるポリヌクレオチドも、当業者によって公知の方法（実験医学別冊・遺伝子工学ハンドブック, pp246-251、羊土社、1991年発行）で単離することができる。たとえば類似する遺伝子を含むライブラリーを対象に、配列番号：１に示す塩基配列（またはその断片）をプローブとしてスクリーニングすれば、相同性の高い塩基配列を持ったDNAをクローニングすることが可能である。このようなライブラリーとしては、配列番号：１の塩基配列に対してランダムに変異を入れたもの、ヒト以外の種に由来する滑膜組織のcDNAライブラリー等を示すことができる。 A polynucleotide composed of a base sequence containing a mutation relative to the polynucleotide of the present invention is also known by a person skilled in the art (Experimental Medicine Separate Volume / Genetic Engineering Handbook, pp246-251, Yodosha, 1991). Can be isolated. For example, if a base sequence (or a fragment thereof) shown in SEQ ID NO: 1 is screened for a library containing similar genes as a probe, DNA having a highly homologous base sequence can be cloned. . Examples of such a library include a library obtained by randomly mutating the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1, a cDNA library of synovial tissue derived from species other than humans, and the like.

与えられた塩基配列に対してランダムに変異を加える方法としては、たとえばDNAの亜硝酸処理による塩基対の置換が知られている（Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 79:7258-7260, 1982）。この方法では、変異を導入したいセグメントを亜硝酸処理することにより、特定のセグメント内にランダムに塩基対の置換を導入することができる。あるいはまた、目的とする変異を任意の場所にもたらす技術としてはgapped duplex法等がある（Methods in Enzymol., 154:350-367, 1987）。変異を導入すべき遺伝子をクローニングした環状２本鎖のベクターを１本鎖とし、目的とする部位に変異を持つ合成オリゴヌクレオチドをハイブリダイズさせる。制限酵素により切断して線状化させたベクター由来の相補１本鎖DNAを、前記環状１本鎖ベクターにアニールさせ、前記合成ヌクレオチドとの間のギャップをDNAポリメラーゼで充填し、更にライゲーションすることにより完全な２本鎖環状ベクターとする。 As a method of randomly mutating a given base sequence, for example, substitution of base pairs by nitrite treatment of DNA is known (Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 79: 7258-7260 , 1982). In this method, a base pair substitution can be randomly introduced into a specific segment by treating the segment into which a mutation is to be introduced with nitrous acid. Alternatively, there is a gapped duplex method or the like as a technique for bringing a target mutation to an arbitrary place (Methods in Enzymol., 154: 350-367, 1987). A circular double-stranded vector in which a gene to be introduced with a mutation is cloned is made into a single strand, and a synthetic oligonucleotide having a mutation at the target site is hybridized. A complementary single-stranded DNA derived from a vector that has been linearized by cutting with a restriction enzyme is annealed to the circular single-stranded vector, and a gap between the synthetic nucleotide is filled with DNA polymerase, and further ligated. To make a complete double-stranded circular vector.

改変されるアミノ酸の数は、典型的には50アミノ酸以内であり、好ましくは30アミノ酸以内であり、さらに好ましくは5アミノ酸以内（例えば、1アミノ酸）であると考えられる。
アミノ酸を人為的に置換する場合、性質の似たアミノ酸に置換すれば、もとのタンパク質の活性が維持されやすいと考えられる。本発明のタンパク質には、上記アミノ酸置換において保存的置換が加えられたタンパク質であって、ヒトシノビオリン蛋白質（配列番号：２）と機能的に同等なタンパク質が含まれる。保存的置換は、タンパク質の活性に重要なドメインのアミノ酸を置換する場合などにおいて重要であると考えられる。このようなアミノ酸の保存的置換は、当業者にはよく知られている。 The number of amino acids to be modified is typically within 50 amino acids, preferably within 30 amino acids, and more preferably within 5 amino acids (eg, 1 amino acid).
When an amino acid is artificially substituted, it is considered that the activity of the original protein is easily maintained if the amino acid is substituted with an amino acid having similar properties. The protein of the present invention includes a protein to which a conservative substitution has been added in the above amino acid substitution, and is functionally equivalent to the human synoviolin protein (SEQ ID NO: 2). Conservative substitution is considered to be important, for example, when substituting amino acids of domains important for protein activity. Such amino acid conservative substitutions are well known to those skilled in the art.

保存的置換に相当するアミノ酸のグループとしては、例えば、塩基性アミノ酸（例えばリジン、アルギニン、ヒスチジン）、酸性アミノ酸 (例えばアスパラギン酸、グルタミン酸）、非荷電極性アミノ酸 (例えばグリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシン、システイン）、非極性アミノ酸 (例えばアラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン）、β分岐アミノ酸 (例えばスレオニン、バリン、イソロイシン）、および芳香族アミノ酸 (例えばチロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン）などが挙げられる。
また、非保存的置換によりタンパク質の活性などをより上昇（例えば恒常的活性化型タンパク質などを含む）または下降（例えばドミナントネガティブなどを含む）させることも考えられる。 Examples of amino acid groups corresponding to conservative substitutions include basic amino acids (eg, lysine, arginine, histidine), acidic amino acids (eg, aspartic acid, glutamic acid), uncharged polar amino acids (eg, glycine, asparagine, glutamine, serine, Threonine, tyrosine, cysteine), nonpolar amino acids (eg, alanine, valine, leucine, isoleucine, proline, phenylalanine, methionine, tryptophan), β-branched amino acids (eg, threonine, valine, isoleucine), and aromatic amino acids (eg, tyrosine, phenylalanine) , Tryptophan, histidine) and the like.
Moreover, it is also conceivable to increase the protein activity or the like by non-conservative substitution (for example, including a constitutively activated protein) or decrease (for example, by including a dominant negative).

配列番号：２に記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数のアミノ酸が、置換、欠失、挿入、および／または付加したアミノ酸配列を有し、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質と機能的に同等な蛋白質は、天然に存在する蛋白質を含む。一般に真核生物の遺伝子は、インターフェロン遺伝子等で知られているように、多型現象(polymorphism)を有する。この多型現象によって生じた塩基配列の変化によって、１または複数個のアミノ酸が、置換、欠失、挿入、および／または付加される場合がある。このように自然に存在する蛋白質であって、かつ配列番号：２に記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数のアミノ酸が、置換、欠失、挿入、および／または付加したアミノ酸配列を有し、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質と機能的に同等な蛋白質は、本発明に含まれる。 A protein having the amino acid sequence in which one or a plurality of amino acids are substituted, deleted, inserted and / or added in the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 2, and comprising the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 2 and a function Equivalent proteins include naturally occurring proteins. In general, eukaryotic genes have a polymorphism, as is known for interferon genes and the like. One or more amino acids may be substituted, deleted, inserted, and / or added due to a change in the base sequence caused by this polymorphism. A naturally occurring protein as described above, and having the amino acid sequence in which one or more amino acids are substituted, deleted, inserted and / or added in the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2, A protein functionally equivalent to the protein consisting of the amino acid sequence of No. 2 is included in the present invention.

実際に本発明者らは、本発明の遺伝子を複数の個体からクローニングし、その塩基配列を決定することによって、１アミノ酸を欠失したクローンを確認した。このようなアミノ酸配列に変異を含む蛋白質、並びにそれをコードする塩基配列からなるポリヌクレオチドは、本発明に含まれる。本発明者らが確認した１アミノ酸を欠失したクローンの塩基配列を配列番号：６に、そしてこの塩基配列によってコードされるアミノ酸配列を配列番号：７に示した。配列番号：６の塩基配列は、配列番号：１における1293-1295に相当するgcaを欠損している。その結果、配列番号：７に記載のアミノ酸配列は、配列番号：２における412位のAlaを欠損している。 In fact, the present inventors have confirmed a clone lacking one amino acid by cloning the gene of the present invention from a plurality of individuals and determining its nucleotide sequence. Such a protein having a mutation in its amino acid sequence and a polynucleotide comprising a base sequence encoding it are included in the present invention. The base sequence of the clone deleted by 1 amino acid confirmed by the present inventors is shown in SEQ ID NO: 6, and the amino acid sequence encoded by this base sequence is shown in SEQ ID NO: 7. The base sequence of SEQ ID NO: 6 lacks gca corresponding to 1293-1295 in SEQ ID NO: 1. As a result, the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 7 lacks Ala at position 412 in SEQ ID NO: 2.

あるいは多型現象によって塩基配列に変化はあっても、アミノ酸配列が変わらない場合もある。このような塩基配列の変異は、サイレント変異と呼ばれる。サイレント変異を有する塩基配列からなる遺伝子も、本発明に含まれる。なおここで言う多型現象とは、集団内において、ある遺伝子が個体間で異なる塩基配列を有することを言う。多型現象は、異なる遺伝子が見出される割合とは無関係である。 Alternatively, the amino acid sequence may not change even if the base sequence changes due to the polymorphism. Such a nucleotide sequence variation is called a silent variation. A gene comprising a base sequence having a silent mutation is also included in the present invention. The polymorphism referred to here means that a certain gene has a different base sequence among individuals within a population. Polymorphism is independent of the rate at which different genes are found.

この他、シノビオリンと機能的に同等なタンパク質を得る方法として、ハイブリダイゼーションを利用する方法を挙げることができる。すなわち、配列番号：１に示すような本発明によるシノビオリンをコードするポリヌクレオチド、あるいはその断片をプローブとし、これとハイブリダイズすることができるポリヌクレオチドを単離するのである。ハイブリダイゼーションをストリンジェントな条件下で実施すれば、塩基配列としては相同性の高いポリヌクレオチドが選択され、その結果として単離されるタンパク質にはシノビオリンと機能的に同等なタンパク質が含まれる可能性が高まる。相同性の高い塩基配列とは、たとえば70%以上、望ましくは90%以上の同一性を示すことができる。
なおストリンジェントな条件とは、具体的には例えば 6×SSC、40%ホルムアミド、25℃でのハイブリダイゼーションと、1×SSC、55℃での洗浄といった条件を示すことができる。ストリンジェンシーは、塩濃度、ホルムアミドの濃度、あるいは温度といった条件に左右されるが、当業者であればこれらの条件を必要なストリンジェンシーを得られるように設定することは自明である。 In addition, examples of a method for obtaining a protein functionally equivalent to Synoviolin include a method using hybridization. That is, a polynucleotide encoding the synoviolin according to the present invention as shown in SEQ ID NO: 1 or a fragment thereof is used as a probe, and a polynucleotide capable of hybridizing with this is isolated. If hybridization is carried out under stringent conditions, a highly homologous polynucleotide is selected as the base sequence, and the protein isolated as a result may contain a protein functionally equivalent to Synoviolin. Rise. A highly homologous base sequence can show, for example, 70% or more, desirably 90% or more identity.
The stringent conditions can be specifically exemplified by conditions such as 6 × SSC, 40% formamide, hybridization at 25 ° C. and washing at 1 × SSC, 55 ° C. Stringency depends on conditions such as salt concentration, formamide concentration, or temperature, but those skilled in the art will readily set these conditions to obtain the required stringency.

ハイブリダイゼーションを利用することによって、たとえばヒト以外の動物種におけるシノビオリンのホモログをコードするポリヌクレオチドの単離が可能である。ヒト以外の動物種、すなわちマウス、ラット、ウサギ、ブタ、あるいはヤギ等の動物種から得ることができるポリヌクレオチドがコードするシノビオリンのホモログは、本発明における機能的に同等なタンパク質を構成する。 By utilizing hybridization, for example, a polynucleotide encoding a synoviolin homolog in a non-human animal species can be isolated. Synoviolin homologs encoded by polynucleotides obtainable from animal species other than humans, ie, animal species such as mice, rats, rabbits, pigs, and goats, constitute functionally equivalent proteins in the present invention.

本発明によるポリヌクレオチドは、その由来を問わない。すなわち、cDNA、ゲノムDNAのほか、合成によって得ることもできる。また、本発明のタンパク質をコードしうる限り、遺伝暗号の縮重に基づく任意の塩基配列を有するポリヌクレオチドが含まれる。
ヒトシノビオリン（配列番号：２）に変異を導入して得たタンパク質や、上記のようなハイブリダイゼーション技術等を利用して単離されるポリヌクレオチドがコードするタンパク質は、通常、ヒトシノビオリン（配列番号：２）とアミノ酸配列において高い相同性を有する。高い相同性とは、少なくとも30％以上、好ましくは50％以上、さらに好ましくは80％以上（例えば、95％以上）の配列の同一性を指す。塩基配列やアミノ酸配列の同一性は、インターネットを利用したホモロジー検索サイトを利用して行うことができる［例えば日本DNAデータバンク（DDBJ）において、FASTA、BLAST、PSI-BLAST、および SSEARCH 等の相同性検索が利用できる［例えば日本DNAデータバンク（DDBJ）のウェブサイトの相同性検索（Search and Analysis）のページ ; http://www.ddbj.nig.ac.jp/E-mail/homology-j.html］。また、National Center for Biotechnology Information (NCBI) において、BLASTを用いた検索を行うことができる（例えばNCBIのホームページのウェブサイトのBLASTのページ; http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/; Altschul, S.F. et al., J. Mol. Biol., 1990, 215(3):403-10; Altschul, S.F. & Gish, W., Meth. Enzymol., 1996, 266:460-480; Altschul, S.F. et al., Nucleic Acids Res., 1997, 25:3389-3402）］。 The polynucleotide according to the present invention may be of any origin. That is, it can be obtained by synthesis in addition to cDNA and genomic DNA. Moreover, as long as it can code the protein of this invention, the polynucleotide which has arbitrary base sequences based on the degeneracy of a genetic code is contained.
A protein obtained by introducing a mutation into human synoviolin (SEQ ID NO: 2), or a protein encoded by a polynucleotide isolated using the above-described hybridization technique or the like is usually human synoviolin (SEQ ID NO: 2). 2) and high homology in amino acid sequence. High homology refers to sequence identity of at least 30% or more, preferably 50% or more, more preferably 80% or more (eg, 95% or more). The identity of base sequences and amino acid sequences can be performed using a homology search site using the Internet [for example, homology such as FASTA, BLAST, PSI-BLAST, and SSEARCH in Japan DNA Data Bank (DDBJ). Search is available [For example, the search and analysis page of the Japan DNA Data Bank (DDBJ) website; http://www.ddbj.nig.ac.jp/E-mail/homology-j. html]. In addition, a search using BLAST can be performed in the National Center for Biotechnology Information (NCBI) (for example, the BLAST page of the NCBI website; http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST Altschul, SF et al., J. Mol. Biol., 1990, 215 (3): 403-10; Altschul, SF & Gish, W., Meth.Enzymol., 1996, 266: 460-480; Altschul , SF et al., Nucleic Acids Res., 1997, 25: 3389-3402)].

例えば Advanced BLAST 2.1におけるアミノ酸配列の同一性の算出は、プログラムにblastpを用い、Expect値を10、Filterは全てOFFにして、MatrixにBLOSUM62を用い、Gap existence cost、Per residue gap cost、および Lambda ratioをそれぞれ 11、1、0.85（デフォルト値）に設定して検索を行い、同一性（identity）の値（%）を得ることができる（Karlin, S. and S. F. Altschul (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:2264-68; Karlin, S. and S. F. Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:5873-7）。 For example, amino acid sequence identity in Advanced BLAST 2.1 is calculated using blastp as the program, Expect value is 10, Filter is all OFF, BLOSUM62 is used for Matrix, Gap existence cost, Per residue gap cost, and Lambda ratio Can be set to 11, 1, 0.85 (default values), respectively, to obtain identity values (%) (Karlin, S. and SF Altschul (1990) Proc. Natl. Acad Sci. USA 87: 2264-68; Karlin, S. and SF Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 5873-7).

本発明は、これらのポリヌクレオチドのタンパク質生産以外の用途も提供するものである。すなわち本発明は、本発明によって提供されるシノビオリンをコードするポリヌクレオチド、あるいはその一部に対するアンチセンスポリヌクレオチドを含む。アンチセンスは、遺伝子の転写を有効に阻害するために、15-20ヌクレオチド程度の鎖長とすることが好ましい。シノビオリンが滑膜細胞の異常な増殖を支えているとすれば、RAの治療においてシノビオリンのアンチセンスが果たす役割は大きい。遺伝子発現の制御という観点から見ると、アンチセンスのみならずリボザイムの設計も可能である。すなわち、配列番号：１で示すDNAのコード領域から転写されたRNAを認識し、これを切断するリボザイムを設計することができる。 The present invention also provides uses other than protein production of these polynucleotides. That is, the present invention includes a polynucleotide encoding synoviolin provided by the present invention, or an antisense polynucleotide to a part thereof. Antisense preferably has a chain length of about 15-20 nucleotides in order to effectively inhibit gene transcription. Given that synoviolin supports abnormal growth of synoviocytes, synoviolin antisense plays a major role in the treatment of RA. From the viewpoint of control of gene expression, not only antisense but also ribozyme can be designed. That is, a ribozyme that recognizes and cleaves RNA transcribed from the coding region of DNA represented by SEQ ID NO: 1 can be designed.

本発明はまた、これら本発明のポリヌクレオチドまたはその相補鎖と相補的な少なくとも１５ヌクレオチドの鎖長を持つポリヌクレオチドに関する。これらのポリヌクレオチドは、好ましくは上記の本発明のポリヌクレオチドまたはその相補鎖と相補的な20ヌクレオチド以上、より好ましくは25ヌクレオチド以上、さらに好ましくは30ヌクレオチド以上の鎖長を持つポリヌクレオチドである。ここで「相補鎖」とは、A:T（ただしRNAの場合は U）、G:Cの塩基対からなる2本鎖核酸の一方の鎖に対する他方の鎖を指す。また、「相補的」とは、少なくとも15個の連続したヌクレオチド領域で完全に相補配列である場合に限られず、少なくとも70％、好ましくは少なくとも80％、より好ましくは90％、さらに好ましくは95％以上の塩基配列上の相同性を有する塩基配列を含む。相同性を決定するためのアルゴリズムは本明細書に記載したものを使用することができる。これらには、例えば上記の本発明のポリヌクレオチドとハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、少なくとも１５ヌクレオチドの鎖長を持つポリヌクレオチドが含まれる。 The present invention also relates to a polynucleotide having a chain length of at least 15 nucleotides complementary to these polynucleotides of the present invention or a complementary strand thereof. These polynucleotides are preferably polynucleotides having a chain length of 20 nucleotides or more, more preferably 25 nucleotides or more, and further preferably 30 nucleotides or more complementary to the above-described polynucleotide of the present invention or a complementary strand thereof. Here, “complementary strand” refers to the other strand with respect to one strand of a double-stranded nucleic acid consisting of A: T (U in the case of RNA) and G: C base pairs. In addition, “complementary” is not limited to the case where the sequence is completely complementary in at least 15 consecutive nucleotide regions, and is at least 70%, preferably at least 80%, more preferably 90%, and even more preferably 95% It includes base sequences having homology on the above base sequences. As an algorithm for determining homology, those described in the present specification can be used. These include, for example, polynucleotides that hybridize with the above-described polynucleotides of the present invention and have a chain length of at least 15 nucleotides.

ハイブリダイゼーションは、本発明のポリヌクレオチドに対して特異的であることが好ましい。特異的とは、ストリンジェントなハイブリダイゼーションの条件下で、他のタンパク質をコードするポリヌクレオチドとのクロスハイブリダイゼーションが有意に生じないことを意味する。 Hybridization is preferably specific for the polynucleotide of the present invention. Specific means that there is no significant cross-hybridization with a polynucleotide encoding another protein under stringent hybridization conditions.

これらのポリヌクレオチドは、シノビオリン遺伝子の検出や増幅を可能とするプローブやプライマーとして有用である。本発明によるプローブやプライマーは、与えられたストリンジェンシーの基で特異的なハイブリダイズが可能となるように少なくとも15mer程度の鎖長を備え、配列番号：１に示した塩基配列の中でも、シノビオリンに特異的な配列に対してハイブリダイズできる塩基配列を持つものが好ましい。与えられた塩基配列に基づいて、プローブやプライマーに有用な塩基配列を設定することは当業者にとって自明である。本発明に基づいて提供されるシノビオリン遺伝子特異プローブやプライマーを利用すれば、滑膜細胞標本のインサイチュにおけるハイブリダイゼーションやPCRが可能となる。シノビオリンはRA患者の滑膜組織に強発現していることから、その細胞内における発現状態の把握は、RA関節炎症状を把握するための重要な情報を与えるものと考えられる。 These polynucleotides are useful as probes and primers that enable detection and amplification of the Synoviolin gene. The probe or primer according to the present invention has a chain length of at least about 15 mer so that specific hybridization with a given stringency group is possible, and among the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1, synoviolin Those having a base sequence capable of hybridizing to a specific sequence are preferred. It is obvious to those skilled in the art to set a useful base sequence for a probe or primer based on a given base sequence. By using the synoviolin gene-specific probe or primer provided based on the present invention, in situ hybridization or PCR of synovial cell specimens becomes possible. Since synoviolin is strongly expressed in the synovial tissue of RA patients, grasping the expression state in the cells is considered to give important information for grasping the symptoms of RA joint inflammation.

本発明による新規なタンパク質であるシノビオリンは、RA患者滑膜組織から得ることができる。滑膜細胞はインビトロで培養することができるので、この培養物からシノビオリンを回収することが可能である。具体的には、RA患者から滑膜切除術（synovectomy）により外科的に切除された滑膜組織等をもとにこの組織から滑膜細胞を分離する。分離した細胞を培養すれば、滑膜細胞を付着性細胞として回収することができる（J. Clin. Invest. 92:186-193, 1993）。回収した細胞からは、公知のタンパク質精製技術を組み合わせてシノビオリンを抽出・精製する。 Synoviolin, a novel protein according to the present invention, can be obtained from RA patient synovial tissue. Since synovial cells can be cultured in vitro, synoviolin can be recovered from this culture. Specifically, synovial cells are separated from this tissue based on synovial tissue or the like surgically excised from RA patients by synovectomy. When the separated cells are cultured, synoviocytes can be collected as adherent cells (J. Clin. Invest. 92: 186-193, 1993). Synoviolin is extracted and purified from the collected cells by combining known protein purification techniques.

本発明は、滑膜細胞から抽出されるヒト・シノビオリンのみならず、シノビオリンと機能的に同等なタンパク質をも含むものである。すなわち、本発明のタンパク質としては、人工的か自然に生じたものかを問わず、ヒト・シノビオリンのアミノ酸配列（配列番号：２）において１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、付加および／または挿入などにより変異したタンパク質であって、ヒトシノビオリンと機能的に同等なタンパク質が含まれる。これらタンパク質におけるアミノ酸の変異数や変異部位は、シノビオリンの機能が保持される限り制限はない。 The present invention includes not only human synoviolin extracted from synoviocytes but also proteins functionally equivalent to synoviolin. That is, as the protein of the present invention, regardless of whether it is artificial or naturally occurring, one or more amino acids in the amino acid sequence of human synoviolin (SEQ ID NO: 2) are substituted, deleted, added and / or Proteins that have been mutated due to insertion or the like and that are functionally equivalent to human synoviolin are included. The number of amino acid mutations and mutation sites in these proteins are not limited as long as the function of Synoviolin is maintained.

シノビオリンの断片は、プロテアーゼを使った消化により得ることができる。また、配列番号：１に示したシノビオリンをコードするDNAをランダムに切断し、それをファージベクターに挿入してドメインペプチドを提示したファージライブラリーを作成することによっても得ることができる。これらのライブラリーを、シノビオリンを認識する抗体でイムノスクリーニングすれば、免疫学的に活性なドメインを決定することができる。免疫学的に活性なドメインを特定するための手法は、そのままリガンドとの結合活性を持つドメインを特定するための手法としても利用することができる。クローニングしたファージについて、挿入断片の塩基配列を決定すれば、活性ドメインのアミノ酸配列も明らかにすることができる。 Synoviolin fragments can be obtained by digestion with a protease. It can also be obtained by randomly cutting the DNA encoding synoviolin shown in SEQ ID NO: 1 and inserting it into a phage vector to create a phage library displaying domain peptides. If these libraries are immunoscreened with antibodies that recognize Synoviolin, immunologically active domains can be determined. The technique for specifying an immunologically active domain can be used as a technique for specifying a domain having a binding activity to a ligand as it is. By determining the base sequence of the inserted fragment of the cloned phage, the amino acid sequence of the active domain can also be clarified.

本発明によるタンパク質、またはその機能的に同等なタンパク質は、糖鎖等の生理的な修飾、蛍光や放射性物質のような標識、あるいは他のタンパク質との融合といった各種の修飾を加えたタンパク質であることができる。ことに後に述べる遺伝子組み換え体においては、発現させる宿主によって糖鎖による修飾に差異が生じる可能性がある。しかしたとえ糖鎖の修飾に違いを持っていても、本明細書中に開示されたシノビオリンタンパク質と同様の性状を示すものであれば、いずれも本発明によるシノビオリン、または機能的に同等なタンパク質である。 The protein according to the present invention or a functionally equivalent protein thereof is a protein to which various modifications such as physiological modifications such as sugar chains, labels such as fluorescence and radioactive substances, or fusion with other proteins are added. be able to. In particular, in the recombinants described later, there may be a difference in modification with sugar chains depending on the host to be expressed. However, even if there is a difference in the modification of the sugar chain, any synoviolin or functionally equivalent protein according to the present invention can be used as long as it exhibits the same properties as the synoviolin protein disclosed in this specification. is there.

シノビオリンは、生体材料のみならず、これをコードする遺伝子を適当な発現系に組み込んで遺伝子組み換え体（recombinant）として得ることもできる。シノビオリンを遺伝子工学的な手法によって得るためには、先に述べたシノビオリンをコードするポリヌクレオチドを適当な発現系に組み込んで発現させれば良い。本発明に応用可能なホスト／ベクター系としては、発現ベクターpGEX-5X-3と大腸菌を示すことができる。pGEX-5X-3は外来遺伝子をグルタチオン S-トランスフェラーゼ（GST）との融合タンパク質として発現させることができる（Gene, 67:31-40, 1988）ので、シノビオリンをコードする遺伝子を組み込んだpGEX-5X-3をヒートショックでBL21のような大腸菌株に導入し、適当な培養時間の後に isopropylthio-β-D-galactoside（IPTG）を添加してGST融合シノビオリンの発現を誘導する。シノビオリンをコードする遺伝子は、滑膜細胞のcDNAライブラリー等を鋳型としてPCR等で増幅することにより得ることができる。本発明によるGSTはグルタチオンセファロース4Bに吸着するため、発現生成物はアフィニティクロマトグラフィーによって容易に分離・精製することが可能である。 Synoviolin can be obtained not only as a biomaterial but also as a gene recombinant by incorporating a gene encoding it into an appropriate expression system. In order to obtain synoviolin by a genetic engineering technique, the above-described polynucleotide encoding synoviolin may be incorporated into an appropriate expression system for expression. Examples of host / vector systems applicable to the present invention include expression vector pGEX-5X-3 and E. coli. pGEX-5X-3 can express a foreign gene as a fusion protein with glutathione S-transferase (GST) (Gene, 67: 31-40, 1988). -3 is introduced into an E. coli strain such as BL21 by heat shock, and after an appropriate culture time, isopropylthio-β-D-galactoside (IPTG) is added to induce expression of GST-fused synoviolin. A gene encoding synoviolin can be obtained by amplification by PCR or the like using a synovial cell cDNA library or the like as a template. Since GST according to the present invention is adsorbed to glutathione sepharose 4B, the expression product can be easily separated and purified by affinity chromatography.

シノビオリンの recombinant を得るためのホスト／ベクター系としては、この他にも次のようなものを応用することができる。まず細菌をホストに利用する場合には、ヒスチジンタグ、HAタグ、Flagタグ等を利用した融合タンパクの発現用ベクターが市販されている。酵母では、Pichia属酵母が糖鎖を備えたタンパク質の発現に有効なことが公知である。糖鎖の付加という点では、昆虫細胞をホストとするバキュロウイルスベクターを利用した発現系も有用である（Bio/Technology, 6:47-55, 1988）。更に、哺乳動物の細胞を利用して、CMV、RSV、あるいはSV40等のプロモーターを利用したベクターのトランスフェクションが行われており、これらのホスト／ベクター系は、いずれもシノビオリンの発現系として利用することができる。また、レトロウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター等のウイルスベクターを利用して遺伝子を導入することもできる。 In addition to the above, the following can be applied as a host / vector system for obtaining a synoviolin recombinant. First, when a bacterium is used as a host, a fusion protein expression vector using a histidine tag, an HA tag, a Flag tag or the like is commercially available. In yeast, it is known that yeasts of the genus Pichia are effective for the expression of proteins with sugar chains. In terms of glycosylation, an expression system using a baculovirus vector hosted by insect cells is also useful (Bio / Technology, 6: 47-55, 1988). Furthermore, mammalian cells are used to transfect vectors using promoters such as CMV, RSV, or SV40, and these host / vector systems are all used as synoviolin expression systems. be able to. In addition, the gene can be introduced using a viral vector such as a retrovirus vector, an adenovirus vector, or an adeno-associated virus vector.

本発明によって提供される新規なタンパク質シノビオリン、またはその免疫学的に同等なタンパク質は、その免疫学的な特性を利用してRAの診断において有用である。RA患者の血中にはシノビオリンを認識する抗体が高い頻度で検出され、正常者の血中には実質的に検出されない。したがって、本発明によるシノビオリンを抗原として被検者が有する抗体を免疫学的に分析すれば、RAの診断において有用な情報を与える。すなわち、被検者の体液中にシノビオリンに反応する抗体が検出されたときには、被検者がRAであると診断することができる。 The novel protein Synoviolin provided by the present invention, or an immunologically equivalent protein thereof, is useful in the diagnosis of RA by utilizing its immunological properties. Antibodies that recognize Synoviolin are frequently detected in the blood of RA patients, and are not substantially detected in the blood of normal subjects. Therefore, immunological analysis of antibodies possessed by the subject using synoviolin according to the present invention as an antigen provides useful information in the diagnosis of RA. That is, when an antibody that reacts with Synoviolin is detected in the body fluid of the subject, the subject can be diagnosed as having RA.

抗体の免疫学的分析方法には多くの方法が一般に普及している。抗原感作プレートをサンプル中の抗体と反応させ、プレート表面に捕捉される検出対象となる抗体を、抗体特異的な標識抗体で検出する方法は、抗体の免疫学的分析方法としてはもっともポピュラーな方法である（Immunochemistry, 8:871-879, 1971）。標識に酵素を用いた方法はELISA法と呼ばれ、広く普及している。また抗原を吸着させたラテックス粒子をサンプルと混合し、免疫学的な凝集反応として抗体を検出する方法も公知である（Am. J. Med., 21:888-892, 1956）。免疫学的粒子凝集反応は１試薬で迅速な分析が可能な方法であり、大規模なスクリーニングには好適な方法である。 Many methods are widely used for immunological analysis of antibodies. The most popular method for immunological analysis of antibodies is to react an antigen-sensitized plate with the antibody in the sample and detect the antibody to be detected captured on the plate surface with an antibody-specific labeled antibody. Method (Immunochemistry, 8: 871-879, 1971). A method using an enzyme for labeling is called an ELISA method and is widely used. Also known is a method in which latex particles adsorbed with an antigen are mixed with a sample and an antibody is detected as an immunological agglutination reaction (Am. J. Med., 21: 888-892, 1956). Immunological particle agglutination is a method that allows rapid analysis with one reagent, and is suitable for large-scale screening.

更に、最近ではイムノクロマトグラフ法が簡易分析方法として一般化している。この方法を抗体の免疫学的分析方法に応用するには、標識シノビオリンと抗シノビオリン抗体との反応をサンプル中の抗体が阻害するような反応系を構成する。具体的には、たとえば標識シノビオリンとサンプルを最初に接触させ、クロマトグラフ的な展開によって試薬成分である抗シノビオリン抗体と接触するように配置する。サンプル中にシノビオリン抗体が存在する場合には、既に標識シノビオリンが反応してしまっているので、試薬成分である抗シノビオリン抗体とはもはや反応することができない。抗シノビオリン抗体を固定しておいて、その領域における標識シノビオリンの反応状態を観察すれば、サンプルの滴下のみでイムノアッセイを行うことができる。 Furthermore, recently, the immunochromatography method has been generalized as a simple analysis method. In order to apply this method to an immunological analysis method of an antibody, a reaction system is constructed in which the antibody in the sample inhibits the reaction between the labeled synoviolin and the anti-sinoviolin antibody. Specifically, for example, a labeled synoviolin and a sample are first brought into contact with each other, and arranged so as to come into contact with an anti-synoviolin antibody as a reagent component by chromatographic development. When the Synoviolin antibody is present in the sample, the labeled Synoviolin has already reacted, so that it can no longer react with the anti-Synoviolin antibody as the reagent component. By immobilizing an anti-synoviolin antibody and observing the reaction state of the labeled synoviolin in that region, the immunoassay can be performed only by dropping the sample.

多くのイムノアッセイにおいて、抗体をクラス別に分析することが可能である。特定のクラスの抗体に関する情報が必要な場合には、IgGやIgMといったイムノグロブリンのクラスを識別しうる抗体を組み合わせれば良い。感染症では、通常、感染初期のIgM抗体測定値の上昇、その後に続くIgM抗体測定値の低下とIgG抗体測定値の上昇という遷移が観察される。このようなクラス別の抗体測定値が、本発明においてもRAの臨床的な症状と関連性を持つ可能性がある。より具体的には、抗体のクラス別測定により、薬効の判定や、RA発症の予知に結びつく可能性がある。 In many immunoassays, antibodies can be analyzed by class. When information about a specific class of antibodies is required, antibodies that can identify immunoglobulin classes such as IgG and IgM may be combined. In infectious diseases, usually, a transition is observed in which the IgM antibody measurement value in the early stage of infection is increased, followed by a decrease in IgM antibody measurement value and an increase in IgG antibody measurement value. Such class-specific antibody measurement values may be related to the clinical symptoms of RA in the present invention. More specifically, measurement by antibody class may lead to determination of drug efficacy and prediction of RA onset.

抗体の検出においては、抗原分子そのもののみならず、化学的に合成したオリゴペプチドを抗原として用いる方法が採用されることも多い。これは、特に優勢なエピトープ、あるいは臨床的になんらかの意味を持つエピトープに特異的な分析系としたほうが非特異的な反応の影響を受けにくくなるためである。シノビオリンについても、このようなアプローチは有効である。具体的には、先に述べた免疫学的に活性なドメインペプチドを得る方法に基づいて、エピトープとして機能するドメインを決定することができる。エピトープは少なくとも3アミノ酸残基で構成できる場合のある事が知られている。また他のタンパク質との免疫学的な識別は、少なくとも8アミノ酸残基で可能となるといわれている。したがって、シノビオリンのアミノ酸配列から選択された少なくとも連続した8アミノ酸残基、通常９アミノ酸残基、好ましくは１０アミノ酸残基、より好ましくは１１アミノ酸残基からなり、患者血清中の抗体と反応する断片は、本発明における抗体検出用の抗原として望ましい。更に、エピトープを構成するオリゴペプチドに対して、様々な修飾を加えて免疫学的な反応性を向上させる方法も当業者には公知である。たとえば、ヒト血清アルブミンのような不活性タンパク質、あるいは無意味なアミノ酸配列の付加といった修飾が免疫学的な反応性の向上に寄与する。 In antibody detection, not only the antigen molecule itself but also a chemically synthesized oligopeptide is often used as an antigen. This is because an analysis system specific to a particularly dominant epitope or an epitope having some clinical significance is less susceptible to non-specific reactions. Such an approach is also effective for Synoviolin. Specifically, a domain functioning as an epitope can be determined based on the method for obtaining an immunologically active domain peptide described above. It is known that an epitope can be composed of at least 3 amino acid residues. It is said that immunological discrimination from other proteins is possible with at least 8 amino acid residues. Accordingly, a fragment comprising at least 8 consecutive amino acid residues selected from the amino acid sequence of Synoviolin, usually 9 amino acid residues, preferably 10 amino acid residues, more preferably 11 amino acid residues, and reacts with an antibody in patient serum Is desirable as an antigen for antibody detection in the present invention. Furthermore, methods for improving immunological reactivity by adding various modifications to oligopeptides constituting epitopes are also known to those skilled in the art. For example, modifications such as addition of an inactive protein such as human serum albumin or a meaningless amino acid sequence contribute to the improvement of immunological reactivity.

本発明に基づくRAの検出方法に有用なシノビオリン、またはその機能的に同等なタンパク質、あるいはそれらの部分ペプチドは、これらの分子を認識する抗体を分析するための免疫学的分析用試薬とすることができる。本発明による免疫学的分析用試薬は、RAの診断や治療効果の判定に有用である。 Synoviolin useful for the detection method of RA based on the present invention, or a functionally equivalent protein thereof, or a partial peptide thereof should be used as an immunological analysis reagent for analyzing an antibody that recognizes these molecules. Can do. The reagent for immunological analysis according to the present invention is useful for diagnosis of RA and determination of therapeutic effect.

本発明によるシノビオリンは、RAの治療や予防を目的としたワクチンの開発をも可能とする。シノビオリンがそのリガンドとの結合によって滑膜細胞の増殖をもたらしていると考えられるため、シノビオリンとリガンドとの結合をブロックする抗体を与えるワクチンが提供されれば、RAの治療や予防が実現する。シノビオリンのワクチンを得るには、シノビオリンのエピトープとなるドメインペプチドを中心に、もともとヒトのタンパクであるシノビオリンのドメインペプチドによる免疫刺激をもたらすアジュバントやキャリアタンパク質との組み合わせにより製剤化する方法が一般的である。 Synoviolin according to the present invention also makes it possible to develop vaccines for the treatment and prevention of RA. Since synoviolin is thought to cause synovial cell proliferation by binding to its ligand, if a vaccine that provides an antibody that blocks the binding of synoviolin to the ligand is provided, the treatment and prevention of RA will be realized. Synoviolin vaccines are generally formulated by combining them with an adjuvant or carrier protein that provides immunostimulation with the domain peptide of Synoviolin, which is originally a human protein, centering on the domain peptide that is the Synoviolin epitope. is there.

更に本発明は、シノビオリンを認識する抗体を提供する。本発明によるシノビオリン、または免疫学的に同等のタンパク質、あるいはその断片を免疫原として、公知の方法によりシノビオリンの抗体を得ることができる。通常の免疫操作によってポリクローナル抗体を得ることもできるし（Harlow, E. & Lane, D.; Antibodies; A Laboratry manual. Cold Spring Harbor, New York, 1988）、抗体産生細胞をクローニングすることによりモノクローナル抗体を得ることもできる（Kohler, G. & Milstein, C., Nature 256: 495-7, 1975）。モノクローナル抗体はイムノアッセイにおいて高い感度と特異性を達成するための重要なツールである。 Furthermore, the present invention provides an antibody that recognizes Synoviolin. Synoviolin antibodies can be obtained by known methods using synoviolin according to the present invention, or an immunologically equivalent protein, or a fragment thereof as an immunogen. Polyclonal antibodies can be obtained by routine immunization (Harlow, E. & Lane, D .; Antibodies; A Laboratry manual. Cold Spring Harbor, New York, 1988), or monoclonal antibodies can be obtained by cloning antibody-producing cells. (Kohler, G. & Milstein, C., Nature 256: 495-7, 1975). Monoclonal antibodies are important tools for achieving high sensitivity and specificity in immunoassays.

免疫には、本発明に基づくシノビオリン（もしくはそれと免疫学的に同等なタンパク質、またはそれらの断片）を適当なアジュバントとともに免疫動物に免疫する。免疫原として有用なシノビオリンの断片として、以下のアミノ酸配列を含むペプチドを示すことができる。
Syno-P3（SLALTGAVVAHAYYC／配列番号：３）、
Syno-P2（TCRMDVLRASLPAQS／配列番号：４）、および
Syno-P1（GAATTTAAGTSATAC／配列番号：５） For immunization, immunized animals are immunized with Synoviolin (or an immunologically equivalent protein or fragment thereof) according to the present invention together with an appropriate adjuvant. As a Synoviolin fragment useful as an immunogen, a peptide containing the following amino acid sequence can be shown.
Syno-P3 (SLALTGAVVAHAYYC / SEQ ID NO: 3),
Syno-P2 (TCRMDVLRASLPAQS / SEQ ID NO: 4), and
Syno-P1 (GAATTTAAGTSATAC / SEQ ID NO: 5)

これらのペプチドを担体蛋白質と結合させて調製された免疫原は、シノビオリンに対して特異的で、かつ十分な結合親和性を有する抗体を与える。免疫原を得るための担体蛋白質には、スカシガイヘモシアニン(KLH)、あるいはウシ血清アルブミン(BSA)等を用いることができる。免疫動物には、ウサギ、マウス、ラット、ヤギ、あるいはヒツジなどが一般に利用される。アジュバントとしては、フロイントのコンプリートアジュバント（FCA）等が一般に用いられる（Adv. Tubercl. Res., 1:130-148, 1956）。適当な間隔で免疫を追加し、抗体価の上昇を確認したところで採血し抗血清を得ることができる。更にその抗体画分を精製すれば、精製抗体とすることもできる。 Immunogens prepared by conjugating these peptides to a carrier protein provide antibodies that are specific for synoviolin and have sufficient binding affinity. As the carrier protein for obtaining the immunogen, mussel hemocyanin (KLH), bovine serum albumin (BSA) or the like can be used. Rabbits, mice, rats, goats or sheep are generally used as immunized animals. Freund's complete adjuvant (FCA) or the like is generally used as an adjuvant (Adv. Tubercl. Res., 1: 130-148, 1956). Immunization is added at appropriate intervals, and when an increase in antibody titer is confirmed, blood is collected to obtain antiserum. If the antibody fraction is further purified, a purified antibody can be obtained.

あるいはまた、抗体産生細胞を採取して細胞融合法などによりクローニングすれば、モノクローナル抗体を得ることもできる。このときの抗体産生細胞とは、免疫動物に由来するものの他、シノビオリンに対する自己抗体を産生するRA患者から採取した抗体産生細胞を利用することもできる。更に、こうして得られた免疫動物に由来するモノクローナル抗体産生細胞の抗体遺伝子をもとに、キメラ抗体やヒト化抗体の構築が可能である。抗体をヒトに投与する場合、動物の抗体は異物として排除されるため望ましくない。そこで抗原性の強い抗体の定常領域をヒトの抗体で置換したキメラ抗体や、あるいは定常領域のみならず可変領域のフレームワークまでヒトの遺伝子で置換したヒト化抗体が必要になる。その点、RA患者の抗体産生細胞に由来する抗体の可変領域を利用すれば、ヒト型の抗体を再構成できるので、より容易に安全性の高い抗体の構築が可能である。 Alternatively, monoclonal antibodies can also be obtained by collecting antibody-producing cells and cloning them by a cell fusion method or the like. The antibody-producing cells at this time can be derived from immunized animals, as well as antibody-producing cells collected from RA patients who produce autoantibodies against Synoviolin. Furthermore, it is possible to construct a chimeric antibody or a humanized antibody based on the antibody gene of the monoclonal antibody-producing cells derived from the immunized animal thus obtained. When antibodies are administered to humans, animal antibodies are undesirable because they are excluded as foreign bodies. Therefore, a chimeric antibody in which the constant region of a highly antigenic antibody is replaced with a human antibody, or a humanized antibody in which not only the constant region but also the variable region framework is replaced with a human gene is required. On the other hand, if the variable region of an antibody derived from an RA-producing antibody-producing cell is used, a human-type antibody can be reconstituted, so that a highly safe antibody can be constructed more easily.

本発明に基づいて提供されるシノビオリンを認識するキメラ抗体、あるいはヒト化抗体は、RA患者の滑膜細胞を標的とした薬物移送システム（Drug Delivery System; DDS）に有用である。本発明によるシノビオリンを認識する抗体を使ったDDSにおいて、抗体とリンクさせることにより有用性が期待できる物質としては、Fasリガンドや、抗SL抗体などを示すことができる。 The chimeric antibody or humanized antibody recognizing Synoviolin provided based on the present invention is useful for a drug delivery system (DDS) targeting synovial cells of RA patients. In a DDS using an antibody that recognizes synoviolin according to the present invention, Fas ligand, anti-SL antibody, and the like can be shown as substances that can be expected to be useful by linking with an antibody.

あるいは本発明の抗体は、シノビオリンの検出に有用である。シノビオリンはRA患者の滑膜組織において強発現している。したがって、滑膜細胞、滑膜組織、あるいは体液中におけるシノビオリンの検出は、RAの診断において有用な情報を与える。具体的には、滑膜組織や血液中にシノビオリンが検出されるときには、RAが進行していると考えられる。本発明の抗体は、シノビオリンの免疫学的検出用試薬とすることができる。組織や血中に存在するタンパク質を、抗体を用いて免疫学的に検出する方法は公知である。本発明の抗体を含む免疫学的分析用試薬は、RAの診断や治療効果の判定に有用である。 Alternatively, the antibody of the present invention is useful for detecting synoviolin. Synoviolin is strongly expressed in the synovial tissue of RA patients. Thus, the detection of Synoviolin in synovial cells, synovial tissue, or body fluids provides useful information in the diagnosis of RA. Specifically, RA is considered to be progressing when synoviolin is detected in synovial tissue or blood. The antibody of the present invention can be used as a reagent for immunological detection of Synoviolin. Methods for immunologically detecting proteins present in tissues and blood using antibodies are known. The reagent for immunological analysis containing the antibody of the present invention is useful for diagnosis of RA and determination of therapeutic effect.

また本発明の抗体は、シノビオリンを発現する細胞の分離あるいは検出に利用することができる。本発明のシノビオリンタンパク質は、発生においてはAERで発現が見られる他、滑膜、骨・軟骨および肢の原基となる未分化間葉系細胞において強く発現していた。従ってシノビオリンは、AERおよび未分化間葉系細胞のマーカーとして使用されうる。すなわちシノビオリンの発現を指標に、AERおよび未分化間葉系細胞を検出したり分離したりすることができる。抗体は適宜蛍光等により標識される。例えば、シノビオリンに対する抗体を用い、セルソーティング等によりシノビオリンを発現する細胞を分離することができる。分離された未分化間葉系細胞は、試験管内における骨・軟骨の形成、あるいは関節の再構築に有用である。 The antibody of the present invention can be used for separation or detection of cells expressing synoviolin. The synoviolin protein of the present invention was expressed in AER during development, and was strongly expressed in undifferentiated mesenchymal cells which are the primordium of synovium, bone / cartilage and limb. Synoviolin can therefore be used as a marker for AER and undifferentiated mesenchymal cells. That is, AER and undifferentiated mesenchymal cells can be detected or separated using synoviolin expression as an index. The antibody is appropriately labeled with fluorescence or the like. For example, cells expressing Synoviolin can be isolated by cell sorting using an antibody against Synoviolin. The separated undifferentiated mesenchymal cells are useful for bone / cartilage formation or joint reconstruction in vitro.

未分化間葉系細胞からは、試験管内（in vitro）または生体内（in vivo）において、骨、軟骨、筋、腱、脂肪、および骨髄等の間質（stroma）が形成される（S. A. Kuznetsov et al., J. Bone Miner. Res. 12, 1335-47, 1997; D. J. Prockop Science 276, 71-4, 1997; C. M. Thompson and R. A. Young, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92, 4587-90, 1995; A. I. Caplan, J. Orthop. Res. 9, 641-50, 1991; A. J. Friedenstein, Int. Rev. Cytol. 47, 327-59, 1976; M. Owen and A. J. Friedenstein, in "Cell and Molecular Biology of Vertebrate Hard Tissues", D. Evered and S. Harnett, Eds., Wiley, Chichester, UK, 1988, pp. 42-60; A. J. Friedenstein et al., Cell Tissue Kinet. 20, 263-72, 1987; B. A. Ashton et al., Clin. Orthop. Relat. Res. 151, 294-307, 1980; I. Bab et al., Clin. Orthop. Relat. Res. 187, 243-54, 1984; S. E. Haynesworth et al., Bone 13, 81-8, 1992; A. I. Caplan, Clin. Plast. Surg. 21, 429-35, 1994; 例えばGenzyme社のウェブサイトも参照, http://www.genzymebiosurgery.com/）。 Undifferentiated mesenchymal cells form stroma such as bone, cartilage, muscle, tendon, fat, and bone marrow in vitro (in vitro) or in vivo (SA Kuznetsov et al., J. Bone Miner. Res. 12, 1335-47, 1997; DJ Prockop Science 276, 71-4, 1997; CM Thompson and RA Young, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92, 4587-90 , 1995; AI Caplan, J. Orthop. Res. 9, 641-50, 1991; AJ Friedenstein, Int. Rev. Cytol. 47, 327-59, 1976; M. Owen and AJ Friedenstein, in "Cell and Molecular Biology of Vertebrate Hard Tissues ", D. Evered and S. Harnett, Eds., Wiley, Chichester, UK, 1988, pp. 42-60; AJ Friedenstein et al., Cell Tissue Kinet. 20, 263-72, 1987; BA Ashton et al., Clin. Orthop. Relat. Res. 151, 294-307, 1980; I. Bab et al., Clin. Orthop. Relat. Res. 187, 243-54, 1984; SE Haynesworth et al., Bone 13, 81-8, 1992; AI Caplan, Clin. Plast. Surg. 21, 429-35, 1994; see also Genzyme website, http: // www .genzymebiosurgery.com /).

例えば、未分化間葉系細胞を試験管内において分化させ、脂肪細胞系列（adipocytic lineage）、軟骨細胞（chondrocytic lineage）、および骨細胞系列（osteocytic lineage）の細胞を形成させることができる（M. F. Pittenger et al., Science 284, 143-7, 1999）。 For example, undifferentiated mesenchymal cells can be differentiated in vitro to form cells of adipocytic lineage, chondrocytic lineage, and osteocytic lineage (MF Pittenger et al. al., Science 284, 143-7, 1999).

脂肪細胞への分化は、例えば、1-メチル-3-イソブチルキサンチン、デキサメタゾン、インシュリン、およびインドメタシン処理により誘導することができる（M. F. Pittenger, 米国特許第5827740号, 1998）。軟骨細胞への分化は、例えば、遠心等により細胞を微小塊にした後、血清を含まない培地中で transforming growth factor (TGF)-β3 で刺激することにより分化させることができる（A. M. Mackay et al., Tissue Eng. 4, 415-28, 1998; J. U. Yoo et al., J. Bone Joint Surg. Am. 80A, 1745-57, 1998）。骨細胞への分化は、例えば 10％ウシ胎児血清の存在下、デキサメタゾン、β-グリセロールリン酸、およびアスコルビン酸で誘導することができる（S. A. Kuznetsov et al., J. Bone Miner. Res. 12, 1335-47, 1997; D. J. Prockop Science 276, 71-4, 1997; C. M. Thompson and R. A. Young, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92, 4587-90, 1995; A. I. Caplan, J. Orthop. Res. 9, 641-50, 1991; A. J. Friedenstein, Int. Rev. Cytol. 47, 327-59, 1976; M. Owen and A. J. Friedenstein, in "Cell and Molecular Biology of Vertebrate Hard Tissues", D. Evered and S. Harnett, Eds., Wiley, Chichester, UK, 1988, pp. 42-60; S. P. Bruder et al., J. Cell. Biochem. 64, 278-94, 1997; N. Jaiswal et al., J. Cell. Biochem. 64, 295-312, 1997; S. P. Bruder et al., J. Bone Miner. Res. 13, 655-63 1998）。 Adipocyte differentiation can be induced, for example, by treatment with 1-methyl-3-isobutylxanthine, dexamethasone, insulin, and indomethacin (M. F. Pittenger, US Pat. No. 5,827,740, 1998). Differentiation into chondrocytes can be differentiated by, for example, centrifuging the cells into microclumps and then stimulating with transforming growth factor (TGF) -β3 in a serum-free medium (AM Mackay et al , Tissue Eng. 4, 415-28, 1998; JU Yoo et al., J. Bone Joint Surg. Am. 80A, 1745-57, 1998). Bone cell differentiation can be induced with dexamethasone, β-glycerol phosphate, and ascorbic acid, for example in the presence of 10% fetal calf serum (SA Kuznetsov et al., J. Bone Miner. Res. 12, 1335-47, 1997; DJ Prockop Science 276, 71-4, 1997; CM Thompson and RA Young, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92, 4587-90, 1995; AI Caplan, J. Orthop. Res. 9 , 641-50, 1991; AJ Friedenstein, Int. Rev. Cytol. 47, 327-59, 1976; M. Owen and AJ Friedenstein, in "Cell and Molecular Biology of Vertebrate Hard Tissues", D. Evered and S. Harnett , Eds., Wiley, Chichester, UK, 1988, pp. 42-60; SP Bruder et al., J. Cell. Biochem. 64, 278-94, 1997; N. Jaiswal et al., J. Cell. Biochem 64, 295-312, 1997; SP Bruder et al., J. Bone Miner. Res. 13, 655-63 1998).

また、生体内においても、例えば未分化間葉系細胞の子宮内（in utero）への移植により、軟骨細胞、脂肪細胞、筋細胞、心筋細胞、骨髄間質細胞、胸腺間質細胞へ分化させることができる（K. W. Liechty et al., Nature Medicine 6, 1282-1286, 2000）。これらの方法により、分離された未分化間葉系細胞から、試験管内または生体内において組織を再構築させることができる。再構築された組織や器官は、再生医学的応用が期待される。 In vivo, for example, by transplanting undifferentiated mesenchymal cells in utero, the cells are differentiated into chondrocytes, adipocytes, muscle cells, cardiomyocytes, bone marrow stromal cells, and thymic stromal cells. (KW Liechty et al., Nature Medicine 6, 1282-1286, 2000). By these methods, tissue can be reconstructed from the separated undifferentiated mesenchymal cells in vitro or in vivo. Reconstructed tissues and organs are expected to be applied to regenerative medicine.

また、シノビオリンは、リウマチ滑膜細胞で強発現していることから、リウマチ滑膜細胞に対する細胞マーカーとしても用いられ得る。本発明の抗体を細胞の分離または検出用試薬として用いる場合には、抗体を他の溶媒や溶質と組み合わせて組成物とすることができる。例えば、蒸留水、pH緩衝試薬、塩、タンパク質、界面活性剤などを組み合わせることができる。 Synoviolin is also strongly expressed in rheumatoid synoviocytes, and thus can be used as a cell marker for rheumatoid synoviocytes. When the antibody of the present invention is used as a reagent for cell separation or detection, the antibody can be combined with other solvents or solutes to form a composition. For example, distilled water, pH buffer reagent, salt, protein, surfactant and the like can be combined.

シノビオリンはRA患者の滑膜組織において強発現している。また、RA患者の血中においては、シノビオリンを認識する抗体（自己抗体）が高い頻度で検出される。他方健常者の血中では、シノビオリンの抗体は実質的に検出することができない。更にシノビオリンは、インビトロにおいて培養滑膜細胞の増殖を抑制する。これは、滑膜細胞の増殖を促進するリガンドに対して、シノビオリンが競合するためであると考えられる。これらの情報を基に、次のような機序が予想できる。すなわち、シノビオリンの滑膜細胞における強発現が、滑膜細胞に対して増殖促進作用を持つシノビオリンのリガンドとの結合を促し、結果として滑膜細胞の増殖が促進される。そしてこの滑膜細胞の異常増殖こそがRAの病態に他ならない。 Synoviolin is strongly expressed in the synovial tissue of RA patients. Further, antibodies (autoantibodies) recognizing Synoviolin are frequently detected in the blood of RA patients. On the other hand, synoviolin antibodies cannot be substantially detected in the blood of healthy individuals. Furthermore, Synoviolin suppresses the growth of cultured synoviocytes in vitro. This is considered to be because Synoviolin competes with a ligand that promotes the proliferation of synovial cells. Based on this information, the following mechanism can be expected. That is, strong expression of synoviolin in synoviocytes promotes the binding of synoviolin with a synoviolin ligand having a growth promoting action on the synoviocytes, and as a result, the proliferation of synoviocytes is promoted. And this abnormal growth of synovial cells is nothing but the pathology of RA.

以上の知見に基づいて、本発明は次の工程を含む、慢性関節リウマチの検出方法、あるいは診断方法を提供する。
i) 被検者の生体試料中に存在するRAのマーカーを検出する工程、および
ii) 工程 i)の検出結果を、RAと関連付ける工程 Based on the above findings, the present invention provides a method for detecting or diagnosing rheumatoid arthritis including the following steps.
i) detecting a marker of RA present in the biological sample of the subject, and
ii) The step of associating the detection result of step i) with RA

本発明におけるRAの検出方法、あるいは診断方法におけるマーカーは、以下に示すいずれかのマーカーを用いることができる。これらのマーカーの測定方法は、既に述べたとおりである。
・シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチド、
・シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なタンパク質、
・シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なペプチド、
・シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なタンパク質に結合する抗体、および
・シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なペプチドに結合する抗体 Any of the following markers can be used as the marker in the RA detection method or diagnosis method in the present invention. The method for measuring these markers is as described above.
Synoviolin or a polynucleotide functionally equivalent to Synoviolin,
Synoviolin or a protein functionally equivalent to Synoviolin,
Synoviolin or a peptide functionally equivalent to synoviolin,
・ An antibody that binds to Synoviolin or a protein functionally equivalent to Synoviolin, and ・ An antibody that binds to Synoviolin or a peptide functionally equivalent to Synoviolin

たとえば、患者から採取された血液試料中に、シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なタンパク質もしくはペプチドと反応する抗体が見出されれば、その患者はRAである可能性が高い。あるいは、患者から採取された滑膜組織におけるシノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なタンパク質の発現は、RAに起因する滑膜組織の増成を示している。蛋白質の発現は、蛋白質やmRNAの存在を指標として検出することができる。 For example, if an antibody that reacts with synoviolin or a protein or peptide functionally equivalent to synoviolin is found in a blood sample taken from the patient, the patient is likely to have RA. Alternatively, the expression of synoviolin or a protein functionally equivalent to synoviolin in synovial tissue taken from a patient indicates synovial tissue augmentation due to RA. Protein expression can be detected using the presence of protein or mRNA as an indicator.

また上記のような機序に基づいて、本発明のシノビオリンとその遺伝子の提供により、RAの治療薬開発の新たなアプローチがもたらされる。まず本発明のシノビオリンにより、シノビオリンに対する結合活性を指標としてシノビオリンのリガンドを検出することができる。すなわち本発明は、以下の工程を含むシノビオリンに対する結合活性の検出方法に関する。
ａ）被験化合物を、シノビオリンもしくはシノビオリンと機能的に同等なタンパク質、またはペプチドと接触させる工程、および
ｂ）被験化合物と前記タンパク質またはペプチドとの結合を観察する工程 Also, based on the above mechanism, the provision of synoviolin and its gene of the present invention provides a new approach for the development of therapeutic agents for RA. First, with the synoviolin of the present invention, a synoviolin ligand can be detected using the binding activity to synoviolin as an index. That is, this invention relates to the detection method of the binding activity with respect to Synoviolin including the following processes.
a) contacting the test compound with Synoviolin or a protein or peptide functionally equivalent to Synoviolin; and b) observing the binding between the test compound and the protein or peptide.

更に上記検出方法に基づいて、シノビオリンに対するリガンドのスクリーニングが可能となる。本発明のスクリーニング方法は、具体的には次の工程を含む。
ａ）上記のシノビオリンに対する結合活性の検出方法によって、被験化合物のシノビオリンもしくはシノビオリンと機能的に同等な蛋白質に対する結合活性を検出する工程、および
ｂ）対照と比較して前記結合活性が高い被験化合物を選択する工程 Furthermore, based on the above detection method, it is possible to screen for a ligand for Synoviolin. Specifically, the screening method of the present invention includes the following steps.
a) a step of detecting the binding activity of the test compound to synoviolin or a protein functionally equivalent to synoviolin by the above-described method for detecting the binding activity to synoviolin; and b) a test compound having a higher binding activity compared to a control. Process to select

リガンドの候補化合物は、天然の物質やその変異体のみならず、低分子の有機化合物であっても良い。前記タンパク質と候補化合物の結合については、候補化合物を標識しておけば直接検出することができる。あるいは既知のSLとの結合阻害を指標として確認することも可能である。すなわち、S1-5のような本発明の蛋白質との結合活性を有することが明らかな分子の共存下で、候補化合物と本発明の蛋白質を接触させるのである。あるいは、候補化合物と本発明の蛋白質の接触後に、更にSLを接触させることによって、候補化合物の結合活性を評価することもできる。結合阻害を指標とする場合には、標識の必要なのはこの既知のSLのみとなるので、簡便なスクリーニング法となる。 Ligand candidate compounds may be not only natural substances and mutants thereof, but also low molecular organic compounds. The binding between the protein and the candidate compound can be directly detected by labeling the candidate compound. Alternatively, it is also possible to confirm the inhibition of binding with a known SL as an index. That is, the candidate compound and the protein of the present invention are brought into contact with each other in the presence of a molecule that clearly has binding activity with the protein of the present invention such as S1-5. Alternatively, the binding activity of the candidate compound can be evaluated by further contacting SL after contacting the candidate compound with the protein of the present invention. When binding inhibition is used as an index, only the known SL is required for labeling, and thus a simple screening method is provided.

対照としては、被験化合物の不存在下で工程ａ）と同じ操作を行うことが好適である。あるいは、工程ａ）に比べ、被験化合物をより低い濃度で含む場合であってもよい。また、例えば被験化合物の代わりにシノビオリンに結合することが分かっている分子を用いて工程ａ）と同じ操作を行い、その分子よりもより高い結合活性を持つ化合物を選択することもできる。 As a control, it is preferable to perform the same operation as in step a) in the absence of the test compound. Alternatively, the test compound may be contained at a lower concentration than in step a). Further, for example, a compound having a higher binding activity than that molecule can be selected by performing the same operation as in step a) using a molecule known to bind to synoviolin instead of the test compound.

この他実施例に示した遺伝子に基づくリガンドのスクリーニング法が可能である。例えば市販の Two-hybrid system を利用し、候補リガンドをコードする遺伝子を含むライブラリーからシノビオリンに結合するタンパク質をコードする遺伝子をスクリーニングすることができる。この方法は、天然のリガンドをスクリーニングするときに有用な方法である。あるいは、cDNAを組み込んだファージライブラリーと標識シノビオリンを用いた発現スクリーニングによりリガンドをクローニングすることも可能である。本発明者らは、このスクリーニング方法によって、シノビオリンの天然リガンドであるSLを発見した。SLは、滑膜細胞表面にあるシノビオリンに結合して細胞増殖を刺激している可能性が有るので、SLの血中レベルの測定がRAの病態と関連する可能性がある。SLは、シノビオリンとの結合活性に基づいて、測定することができる。もちろん抗SL抗体によりイムノアッセイを行うことも可能であるし、両者を組み合わせたサンドイッチ法によってSLを測定することもできる。 In addition, the screening method of the ligand based on the gene shown in the Example is possible. For example, using a commercially available Two-hybrid system, a gene encoding a protein that binds to synoviolin can be screened from a library containing a gene encoding a candidate ligand. This method is useful when screening for natural ligands. Alternatively, the ligand can be cloned by expression screening using a phage library in which cDNA is incorporated and labeled synoviolin. The present inventors have discovered SL which is a natural ligand of Synoviolin by this screening method. Since SL may bind to synoviolin on the surface of synovial cells and stimulate cell proliferation, measurement of SL blood levels may be associated with RA pathology. SL can be measured based on the binding activity with Synoviolin. Of course, an immunoassay can be performed with an anti-SL antibody, and SL can also be measured by a sandwich method combining both.

本発明者らは、シノビオリンを培養滑膜細胞に添加すると、細胞増殖に対して抑制的に作用することを確認した。これを、培地中のSLの中和で説明すると、シノビオリンとそのリガンドとの結合を阻害することが滑膜細胞の異常増殖抑制につながり、結果としてRAの治療効果をもたらすものと考えられる。本発明のスクリーニング方法によって得ることができるリガンドは、シノビオリンとその天然リガンドとの結合を競合的に阻害するので、RAの滑膜細胞の増殖を効果的に抑制する活性（アンタゴニスト）を期待できる。 The present inventors have confirmed that when Synoviolin is added to cultured synoviocytes, it acts to suppress cell proliferation. This can be explained by neutralizing SL in the medium. Inhibition of the binding between Synoviolin and its ligand leads to suppression of abnormal growth of synovial cells, resulting in a therapeutic effect for RA. Since the ligand obtained by the screening method of the present invention competitively inhibits the binding between Synoviolin and its natural ligand, an activity (antagonist) that effectively suppresses the proliferation of RA synovial cells can be expected.

また本発明のスクリーニング方法によって得ることができるシオノビオリンのリガンドには、上記SLと同様にシノビオリンの活性を刺激する活性（アゴニスト）が期待できる。シノビオリンを刺激するリガンドは、シノビオリン刺激剤、あるいは骨形成促進剤として有用である。より具体的には、シノビオリンを刺激するリガンドは、骨粗鬆症、骨折、あるいはスポーツ外傷等の治療薬として利用することができる。 Further, the ligand for shionoviolin obtainable by the screening method of the present invention can be expected to have an activity (agonist) that stimulates the activity of synoviolin as in the case of the above-mentioned SL. A ligand that stimulates synoviolin is useful as a synoviolin stimulator or osteogenesis promoter. More specifically, the ligand that stimulates Synoviolin can be used as a therapeutic agent for osteoporosis, fractures, sports injuries and the like.

これらの結合活性の検出方法、並びにスクリーニング方法を発展させ、更に本発明はシノビオリン、またはその機能的に同等なタンパク質とシノビオリンリガンドとの結合を阻害する活性の検出方法、および化合物のスクリーニング方法を提供する。本発明に基づく、シノビオリンとシノビオリンリガンドとの結合を阻害する活性の検出方法は以下の工程を含む。
ａ）被験化合物存在下で、シノビオリンもしくはシノビオリンと機能的に同等な蛋白質またはペプチドとそのリガンドとを接触させる工程、および
ｂ）前記タンパク質またはペプチドに結合するリガンド、および／または被験化合物を検出する工程 The present invention has developed a method for detecting these binding activities and a screening method, and the present invention further provides a method for detecting the activity of inhibiting the binding of synoviolin or a functionally equivalent protein thereof to a synoviolin ligand, and a method for screening a compound. To do. The detection method of the activity that inhibits the binding between Synoviolin and Synoviolin ligand based on the present invention includes the following steps.
a) contacting synoviolin or a protein or peptide functionally equivalent to synoviolin with its ligand in the presence of the test compound; and b) detecting a ligand and / or test compound that binds to the protein or peptide.

そして上記検出方法に基づいて、シノビオリン、またはその機能的に同等なタンパク質とシノビオリンリガンドとの結合を阻害する化合物のスクリーニング方法が提供される。すなわち本発明は、以下のスクリーニング方法に関する。
ａ）上記検出方法に基づいて、被験化合物のシノビオリンもしくはシノビオリンと機能的に同等な蛋白質とそのリガンドとの結合を阻害する活性を検出する工程、および
ｂ）対照と比較して前記阻害活性が高い被験化合物を選択する工程 And based on the said detection method, the screening method of the compound which inhibits the coupling | bonding of Synoviolin or its functionally equivalent protein, and Synoviolin ligand is provided. That is, the present invention relates to the following screening method.
a) a step of detecting the activity of inhibiting the binding between the test compound synoviolin or a protein functionally equivalent to synoviolin and its ligand based on the above detection method; and b) the inhibitory activity is higher than that of the control. Step of selecting test compound

対照としては、被験化合物の不存在下で工程ａ）と同じ操作を行うことが好適である。あるいは、工程ａ）に比べ、被験化合物をより低い濃度で含む場合であってもよい。また、例えば被験化合物の代わりに、シノビオリンとそのリガンドとの結合を阻害することが分かっている分子を用いて工程ａ）と同じ操作を行い、その分子よりもより高い結合活性を持つ化合物を選択することもできる。 As a control, it is preferable to perform the same operation as in step a) in the absence of the test compound. Alternatively, the test compound may be contained at a lower concentration than in step a). In addition, for example, instead of the test compound, the same operation as in step a) is performed using a molecule known to inhibit the binding between Synoviolin and its ligand, and a compound having a higher binding activity than that molecule is selected. You can also

このスクリーニングにより、シノビオリンまたはその機能的に同等なタンパク質に対するアンタゴニストとして作用する化合物を得ることもできる。シノビオリンのリガンドとしては、例えば実施例に記載のSL（S1-5）を用いることができる。具体的には accession number AAA65590、I38449、NP_061489、NP_004096、または Q12805 に特定されるS1-5タンパク質や、シノビオリンタンパク質に結合する活性を有する限り、それらに類似したタンパク質を用いることができる（Lecka-Czernik, B. et al., Mol. Cell. Biol. 15, 120-128, 1995; Heon, E. et al., Arch. Ophthalmol. 114, 193-198, 1996; Ikegawa, S. et al., Genomics 35, 590-592, 1996; Katsanis, N. et al., Hum. Genet. 106, 66-72, 2000; Giltay, R. et al., Matrix Biol. 18, 469-480, 1999; Stone, E. M. et al., Nat. Genet. 22, 199-202, 1999）。シノビオリンとシノビオリンリガンドとの接触は、候補化合物を適用する前もしくは後、または同時に行うことができる。 This screening can also yield a compound that acts as an antagonist to Synoviolin or a functionally equivalent protein thereof. As a Synoviolin ligand, for example, SL (S1-5) described in Examples can be used. Specifically, as long as it has an activity that binds to S1-5 protein specified by accession number AAA65590, I38449, NP_061489, NP_004096, or Q12805 or Synoviolin protein, proteins similar to them can be used (Lecka-Czernik , B. et al., Mol. Cell. Biol. 15, 120-128, 1995; Heon, E. et al., Arch. Ophthalmol. 114, 193-198, 1996; Ikegawa, S. et al., Genomics 35, 590-592, 1996; Katsanis, N. et al., Hum. Genet. 106, 66-72, 2000; Giltay, R. et al., Matrix Biol. 18, 469-480, 1999; Stone, EM et al., Nat. Genet. 22, 199-202, 1999). Contacting the synoviolin and the synoviolin ligand can be done before or after applying the candidate compound, or simultaneously.

ここでスクリーニングすべき化合物としては、シノビオリン側に結合してリガンドとの結合をブロックするものと、リガンド側をブロックするものが考えられる。シノビオリン側に結合する化合物をスクリーニングするには、リガンドを標識しておき候補化合物と競合させると良い。リガンド側に結合する化合物が候補となっていれば、その逆となる。いずれのスクリーニングにおいても、標識に当たっては放射性同位元素を用いるのが、活性に対する影響が小さいため望ましい。こうして得ることができるシノビオリンのアンタゴニストについても、滑膜細胞の増殖を抑制する作用を持つものと推測され、RAの治療効果を期待できる。 As compounds to be screened here, compounds that bind to the synoviolin side to block the binding to the ligand and compounds that block the ligand side can be considered. In order to screen for a compound that binds to the synoviolin side, it is preferable to label the ligand and compete with the candidate compound. If a compound that binds to the ligand side is a candidate, the opposite is true. In any screening, it is desirable to use a radioisotope for labeling because it has a small effect on activity. Synoviolin antagonists that can be obtained in this way are also presumed to have an action of suppressing the proliferation of synovial cells, and the therapeutic effect of RA can be expected.

また、シノビオリンリガンドであるS1-5は、Malattia Leventinese（ML）および Doyne honeycomb retinal dystrophy（DHRD）の原因遺伝子であることが示唆されている（Stone, E. M. et al., Nature Genetics 22, 199-202, 1999）。これらの疾患は、結晶腔（drusen）と呼ばれる沈着物を生じ、加齢黄斑変性症（age-related macular degeneration; AMD）と類似した症状を示す。これらのことから、シノビオリンもまた、MLおよびDHRDに関与している可能性がある。シノビオリンの変異や多型の検査により、MLおよびDHRDの診断を行うことが考えられる。また、本発明のスクリーニングによって得られる、シノビオリンのリガンドとして作用する化合物や、シノビオリンとS1-5との相互作用を阻害する化合物等は、これらの疾患の予防や治療に貢献する医薬としての利用が期待される。 Synoviolin ligand S1-5 is suggested to be the causative gene of Malattia Leventinese (ML) and Doyne honeycomb retinal dystrophy (Stone, EM et al., Nature Genetics 22, 199-202 1999). These diseases produce deposits called drusen and display symptoms similar to age-related macular degeneration (AMD). From these, Synoviolin may also be involved in ML and DHRD. Diagnosis of ML and DHRD can be considered by examining synoviolin mutations and polymorphisms. Further, compounds obtained by screening of the present invention that act as ligands for synoviolin, compounds that inhibit the interaction between synoviolin and S1-5, and the like can be used as pharmaceuticals that contribute to the prevention and treatment of these diseases. Be expected.

また、本発明のシノビオリンを用いて、化合物のシノビオリンによるシグナル伝達を調節する活性を評価したり、あるいはシノビオリンによるシグナル伝達を調節する化合物をスクリーニングすることができる。具体的には本発明は、次の工程を含む、被験化合物のシノビオリンによるシグナル伝達を調節する活性を検出する方法を提供する。
ａ）シノビオリンリガンドの存在下または不存在下で、被験化合物とシノビオリンを接触させる工程、および
ｂ）シノビオリンを介するシグナル伝達を検出する工程 In addition, the synoviolin of the present invention can be used to evaluate the activity of a compound that modulates signal transduction by synoviolin, or to screen for a compound that modulates signal transduction by synoviolin. Specifically, the present invention provides a method for detecting an activity of modulating signal transduction by synoviolin of a test compound, comprising the following steps.
a) contacting a test compound with synoviolin in the presence or absence of a synoviolin ligand; and b) detecting signal transduction via synoviolin.

また本発明は、次の工程を含む、シノビオリンによるシグナル伝達を調節する活性を有する化合物のスクリーニング方法に関する。
ａ）前記の方法によって、被験化合物のシノビオリンによるシグナル伝達を調節する活性を検出する工程、および
ｂ）対照と比較して前記調節の活性が高い被験化合物を選択する工程 The present invention also relates to a method for screening a compound having an activity of regulating signal transduction by synoviolin, comprising the following steps.
a) detecting the activity of the test compound to modulate signal transduction by synoviolin by the above method; and b) selecting a test compound having a higher activity of the modulation compared to the control.

対照としては、被験化合物の不存在下で工程ａ）と同じ操作を行うことが好適である。あるいは、工程ａ）に比べ、被験化合物をより低い濃度で含む場合であってもよい。また、例えば被験化合物の代わりに、シノビオリンによるシグナル伝達を促進または阻害する活性を有することが分かっている分子を用いて工程ａ）と同じ操作を行い、その分子よりもより高い調節活性を持つ化合物を選択することもできる。 As a control, it is preferable to perform the same operation as in step a) in the absence of the test compound. Alternatively, the test compound may be contained at a lower concentration than in step a). In addition, for example, a compound having a higher regulatory activity than that of the test compound by performing the same operation as in step a) using a molecule known to have an activity of promoting or inhibiting signal transduction by synoviolin. Can also be selected.

本発明において、シノビオリンによるシグナル伝達とは、シノビオリンに与えられた刺激が、異なる分子に伝えられることを言う。刺激の種類は限定されない。生体におけるシグナル伝達には、多くの様式が存在することが知られている。代表的なシグナル伝達は、蛋白質の修飾による活性の調節である。たとえば、ある種の蛋白質は、リン酸化やアセチル化によって、その蛋白質の活性が調節されている。また蛋白質の切断によって、その活性が制御されるものも知られている。蛋白質の切断をより特異的に行うために、ユビキチンのような分子の存在が重要である。シグナル伝達は、シグナルの伝達によって生じるシグナル伝達を構成する分子の活性や構造の変化を指標として検出することができる。あるいは、シグナル伝達のための複合体の形成を指標として、シグナル伝達を検出することもできる。 In the present invention, signal transmission by Synoviolin means that a stimulus given to Synoviolin is transmitted to different molecules. The type of stimulation is not limited. It is known that there are many modes of signal transduction in a living body. A typical signal transduction is the regulation of activity by protein modification. For example, the activity of certain proteins is regulated by phosphorylation and acetylation. Also known are proteins whose activity is controlled by cleaving the protein. In order to cleave proteins more specifically, the presence of molecules such as ubiquitin is important. Signal transduction can be detected by using, as an index, a change in activity or structure of a molecule constituting signal transduction caused by signal transduction. Alternatively, signal transduction can be detected using the formation of a complex for signal transduction as an index.

シグナル伝達としては、特にリン酸化または脱リン酸化シグナルが挙げられる。細胞増殖シグナルの多くは蛋白質リン酸化または脱リン酸化による蛋白質修飾を介して下流のシグナル分子に伝達されることが知られている。本発明のシノビオリンも細胞増殖作用を有することから、シノビオリンを介したシグナル伝達もまた蛋白質のリン酸化により伝達されることが示唆される。実際、本発明者らは、シノビオリン発現によるリン酸化作用を見出した。従って、シノビオリンを介するシグナル伝達を、蛋白質のリン酸化の検出により測定することができる。 Signal transduction includes in particular phosphorylation or dephosphorylation signals. It is known that many cell proliferation signals are transmitted to downstream signal molecules through protein modification by protein phosphorylation or dephosphorylation. The synoviolin of the present invention also has a cell proliferating action, suggesting that signal transduction via synoviolin is also transmitted by protein phosphorylation. In fact, the present inventors have found a phosphorylation effect by synoviolin expression. Thus, signal transduction via Synoviolin can be measured by detecting protein phosphorylation.

細胞増殖または分化に関わる受容体は、その酵素活性部位として次のようなドメインを有している（実験医学別冊、Bioscience用語ライブラリー、改訂版サイトカイン・増殖因子、羊土社、1998年発行）。
チロシンキナーゼドメイン（VEGF受容体、PDGF受容体、HGF受容体、EGF受容体など）、
チロシンホスファターゼドメイン（RPTPなど）、または
セリン/スレオニンキナーゼドメイン（TGFβ受容体など） Receptors involved in cell growth or differentiation have the following domains as enzyme active sites (Experimental Medicine separate volume, Bioscience terminology library, revised cytokine / growth factor, Yodosha, 1998) .
Tyrosine kinase domain (VEGF receptor, PDGF receptor, HGF receptor, EGF receptor, etc.)
Tyrosine phosphatase domain (such as RPTP) or serine / threonine kinase domain (such as TGFβ receptor)

シノビオリンもこれらの酵素活性を直接または間接的に保持していると予想される。酵素活性を間接的に有するとは、シノビオリン分子内に酵素活性サイトは持たないが、シノビオリンに会合する分子が酵素活性を持つことを言う。このような分子としては例えばTNF受容体やGM-CSF受容体などが知られている。したがって、例えばチロシン、セリン、および/またはスレオニンのリン酸化活性を検出することにより、シノビオリンによるシグナル伝達を評価することができる。このとき、シノビオリンリガンドの存在下で、被験化合物の作用を評価することにより、シノビオリンリガンドによってトリガーされるシノビオリンのシグナル伝達に与える被験化合物の影響を評価することができる。具体的には、シノビオリンリガンドによるシオノビオリンに対するシグナル伝達を阻害、または抑制する活性を検出することができる。シノビオリンリガンドとしては、本明細書において述べられたシノビオリンリガンドS1-5を用いることができる。あるいはシノビオリンリガンドの不存在下で被験化合物の作用を評価することにより、被験化合物によるシノビオリンに対する刺激活性を評価することもできる。 Synoviolin is also expected to retain these enzyme activities directly or indirectly. Indirectly having enzyme activity means that a molecule associated with Synoviolin has enzyme activity, although Synoviolin molecule does not have an enzyme active site. As such a molecule, for example, a TNF receptor and a GM-CSF receptor are known. Thus, for example, by detecting phosphorylation activity of tyrosine, serine and / or threonine, signal transduction by synoviolin can be evaluated. At this time, by evaluating the action of the test compound in the presence of the synoviolin ligand, the influence of the test compound on the signal transmission of synoviolin triggered by the synoviolin ligand can be evaluated. Specifically, it is possible to detect an activity that inhibits or suppresses signal transduction to shionoviolin by a synoviolin ligand. As the synoviolin ligand, the synoviolin ligand S1-5 described in this specification can be used. Or the stimulating activity with respect to synoviolin by a test compound can also be evaluated by evaluating the effect | action of a test compound in absence of a synoviolin ligand.

蛋白質のリン酸化を検出するには、シノビオリンリガンドの存在下または不存在下で、例えば被験化合物および [³²P]正リン酸とともにシノビオリン発現細胞をインキュベートする。次いでこの細胞の溶解物から免疫沈降によりリン酸化された蛋白質を回収する。回収した蛋白質はSDS-PAGEで展開後、オートラジオグラフィーにより、リン酸化を検出することができる。リン酸化アミノ酸は、TLCやその他の公知のペプチド分析により同定することができる。
あるいは、リン酸化チロシン抗体など、リン酸化蛋白質に対する特異的抗体を用いて特定のアミノ酸のリン酸化を検出することもできる。 To detect protein phosphorylation, synoviolin-expressing cells are incubated with, for example, a test compound and [ ³² P] orthophosphate in the presence or absence of a synoviolin ligand. The protein phosphorylated by immunoprecipitation is then recovered from the cell lysate. The recovered protein can be detected by autoradiography after development by SDS-PAGE. The phosphorylated amino acid can be identified by TLC or other known peptide analysis.
Alternatively, phosphorylation of a specific amino acid can be detected using a specific antibody against a phosphorylated protein such as a phosphorylated tyrosine antibody.

一般に、細胞内におけるシグナル伝達因子のリン酸化は、次々に複数の分子に伝達される。つまり一連の伝達経路は、カスケードを構成している。そのため、細胞内の蛋白質全体のリン酸化レベルの変化を評価することによって、その細胞に起きたリン酸化シグナルの大きさを比較することができる。細胞内の全蛋白質を対象にリン酸化レベルを評価する方法は公知である。たとえば、細胞をシノビオリンリガンド等で刺激後、タンパク質をSDS-APGEで展開し、フィルターにブロットした後、抗リン酸化チロシン抗体などを用いたウエスタンブロットによって蛋白質全体のリン酸化レベルを評価することができる。また、例えば[³²P]正リン酸で細胞を標識し、細胞をシノビオリンリガンド等で刺激後、細胞タンパク質を二次元電気泳動で展開する。タンパク質をクマシーブルーで染色し、オートラジオグラフィーを行う。リン酸化されたスポットを検出することにより、リン酸化レベルを評価することができる。 In general, phosphorylation of a signal transduction factor in a cell is sequentially transmitted to a plurality of molecules. That is, the series of transmission paths constitutes a cascade. Therefore, the magnitude of the phosphorylation signal generated in the cell can be compared by evaluating the change in the phosphorylation level of the whole protein in the cell. Methods for evaluating phosphorylation levels for all proteins in cells are known. For example, after stimulating cells with Synoviolin ligand, etc., the protein can be developed with SDS-APGE, blotted on a filter, and then the phosphorylation level of the whole protein can be evaluated by Western blot using anti-phosphotyrosine antibody etc. . In addition, for example, cells are labeled with [ ³² P] orthophosphate, cells are stimulated with a synoviolin ligand or the like, and then cellular proteins are developed by two-dimensional electrophoresis. Stain the protein with Coomassie Blue and perform autoradiography. By detecting phosphorylated spots, the phosphorylation level can be evaluated.

あるいは、シノビオリンの基質となるリン酸化蛋白質におけるリン酸化のレベルの変化を特異的に測定することもできる。シノビオリンの基質となるリン酸化蛋白質は、たとえば上記の二次元電気泳動においてリン酸化されたスポットを回収し、マイクロシークエンスやマススペクトロメトリーによって同定することができる。同定された基質蛋白質のリン酸化レベルの変化は、例えば基質蛋白質に対する特異抗体を用いて免疫沈降を行い、SDS-APGEで展開後、[³²P]の取り込みをオートラジオグラフィーで測定したり、あるいは抗リン酸化チロシン抗体を用いたウェスタンブロッティングなどによって評価することができる（バイオマニュアルシリーズ分子生物学研究のためのタンパク実験法竹縄忠臣稲垣昌樹編）。 Alternatively, a change in phosphorylation level in a phosphorylated protein that is a substrate for Synoviolin can also be specifically measured. A phosphorylated protein serving as a substrate for synoviolin can be identified by, for example, collecting a phosphorylated spot in the above-described two-dimensional electrophoresis and microsequencing or mass spectrometry. The change in the phosphorylation level of the identified substrate protein can be determined, for example, by performing immunoprecipitation using a specific antibody against the substrate protein, developing with SDS-APGE, and measuring [ ³² P] incorporation by autoradiography, or It can be evaluated by Western blotting using an anti-phosphotyrosine antibody (Protein Experiment Method for Molecular Biology Research, Tadaomi Takenoha, Masaki Inagaki).

上記方法に用いる細胞としては、滑膜細胞（例えばRTF）や外来的にシノビオリン遺伝子を導入した細胞などが挙げられる。被験化合物によりシノビオリンによるリン酸化または脱リン酸化のレベルが低下すれば、この化合物はシノビオリンによるシグナル伝達を阻害する化合物と判断される。また被験化合物によりシノビオリンによるリン酸化または脱リン酸化のレベルが上昇すれば、この化合物はシノビオリンによるシグナル伝達を促進する化合物と判断される。 Examples of cells used in the above method include synovial cells (for example, RTF), cells that have exogenously introduced a synoviolin gene, and the like. If the level of phosphorylation or dephosphorylation by synoviolin is decreased by the test compound, this compound is judged to be a compound that inhibits signal transduction by synoviolin. If the level of phosphorylation or dephosphorylation by synoviolin is increased by the test compound, this compound is judged to be a compound that promotes signal transduction by synoviolin.

例えばシノビオリンが受容体型チロシンキナーゼとして機能し、チロシンリン酸化を介して下流の分子を活性化しシグナルを伝達する場合、被験化合物によりチロシンリン酸化が抑制されれば、この化合物はシノビオリンによるシグナル伝達を阻害する化合物と判断される。また本発明は、例えばチロシンキナーゼ、チロシンホスファターゼ、またはセリン/スレオニンキナーゼなどの蛋白質キナーゼまたはホスファターゼの阻害剤を用いて、シノビオリンによるシグナル伝達を阻害する方法にも関する。 For example, when synoviolin functions as a receptor tyrosine kinase and activates a downstream molecule via tyrosine phosphorylation and transmits a signal, if the test compound suppresses tyrosine phosphorylation, this compound inhibits synoviolin signal transduction. It is judged that it is a compound. The present invention also relates to a method of inhibiting signal transduction by synoviolin using an inhibitor of protein kinase or phosphatase such as tyrosine kinase, tyrosine phosphatase, or serine / threonine kinase.

また、シノビオリンによるシグナル伝達の好適な他の一例としては、ユビキチン化シグナルが挙げられる。蛋白質構造予測システム（SMART: Simple Modular Architecture Research Tool (ウェブサイトも参照 http://smart.embl-heidelberg.de/) Schultz et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95, 5857-5864, 1998; Schultz et al., Nucleic Acids Res. 28, 231-234, 2000）により、シノビオリンに Ring finger モチーフ（Joazeiro, C. A. et al., Secience 286, 309-312, 1999）の存在が示された。このモチーフは蛋白質の分解に関わるE3ユビキチン-蛋白質リガーゼに存在することが知られている。またRing finger モチーフは、E2ユビキチン結合酵素の結合部位と考えられている。 Moreover, a ubiquitination signal is mentioned as another suitable example of the signal transmission by Synoviolin. Protein structure prediction system (SMART: Simple Modular Architecture Research Tool (see also http://smart.embl-heidelberg.de/) Schultz et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95, 5857-5864, 1998; Schultz et al., Nucleic Acids Res. 28, 231-234, 2000) showed the presence of a ring finger motif (Joazeiro, CA et al., Secience 286, 309-312, 1999) in Synoviolin. This motif is known to exist in the E3 ubiquitin-protein ligase involved in protein degradation. The Ring finger motif is thought to be the binding site of E2 ubiquitin-conjugating enzyme.

従って、シノビオリンによるユビキチン化シグナルを検出することにより、シノビオリンによるシグナル伝達を評価することができる。ユビキチン化シグナルは、例えば抗ユビキチン抗体を用いて基質蛋白質のユビキチン化を検出することにより、評価される。また、シノビオリンとE2ユビキチン結合酵素または基質蛋白質との結合、あるいはシノビオリンを含むユビキチンリガーゼ複合体などを検出してもよい。具体的には、例えばタグを付けたシノビオリンを発現するベクターをトランスフェクションした細胞を破砕し、[³²P]標識ユビキチンを添加し反応後、抗タグ抗体により免疫沈降する。SDS-PAGEにより展開し、オートラジオグラフィーを行うことによりシノビオリンのユビキチンリガーゼ活性を検出することができる（Hashizume, R. et al., J. Biol. Chem. 276, 14537-14540, 2001）。 Therefore, signal transduction by synoviolin can be evaluated by detecting a ubiquitination signal by synoviolin. The ubiquitination signal is evaluated, for example, by detecting ubiquitination of the substrate protein using an anti-ubiquitin antibody. In addition, a binding between Synoviolin and E2 ubiquitin-conjugating enzyme or substrate protein, or a ubiquitin ligase complex containing Synoviolin may be detected. Specifically, for example, cells transfected with a tagged synoviolin-expressing vector are disrupted, [ ³² P] -labeled ubiquitin is added and reacted, and then immunoprecipitated with an anti-tag antibody. Synoviolin ubiquitin ligase activity can be detected by SDS-PAGE and autoradiography (Hashizume, R. et al., J. Biol. Chem. 276, 14537-14540, 2001).

シノビオリンの基質蛋白質におけるユビキチン化のレベルの変化を特異的に測定することもできる。シノビオリンの基質蛋白質は、たとえばシノビオリンをベイトとした酵母two-hybridスクリーニングなどによって同定することができる。同定された基質蛋白質のユビキチン化レベルの変化は、タグつき基質を精製し、そこに、精製したE1、E2、E3およびユビキチンを添加し、反応後、抗タグ抗体で免疫沈降し、抗ユビキチン抗体による染色によって評価することができる（Yokouchi, M. et al., J. Biol. Chem. 274, 31707-31712, 1999）。 A change in the level of ubiquitination in the synoviolin substrate protein can also be specifically measured. Synoviolin substrate protein can be identified by, for example, yeast two-hybrid screening using synoviolin as a bait. Changes in the level of ubiquitination of the identified substrate protein can be achieved by purifying the tagged substrate, adding purified E1, E2, E3, and ubiquitin to the reaction, followed by immunoprecipitation with anti-tag antibody and anti-ubiquitin antibody. (Yokouchi, M. et al., J. Biol. Chem. 274, 31707-31712, 1999).

被験化合物によりシノビオリンによるユビキチン化シグナルの活性化が低下すれば、この化合物はシノビオリンによるシグナル伝達を阻害する化合物と判定される。また被験化合物によりシノビオリンによるユビキチン化シグナルの活性化が上昇すれば、この化合物はシノビオリンによるシグナル伝達を促進する化合物と判定される。例えばシノビオリンとE2ユビキチン活性化酵素との相互作用を阻害する化合物は、シノビオリンによるユビキチン化シグナルを有効に阻害することができる。また本発明は、ユビキチン化シグナルに関与する酵素の阻害剤を用いて、シノビオリンによるシグナル伝達を遮断する方法を提供する。例えばE2ユビキチン結合酵素、あるいはE3ユビキチンリガーゼの阻害剤を細胞に適用することにより、シノビオリンによるシグナル伝達を阻害することも可能である。 If the activation of the ubiquitination signal by synoviolin is decreased by the test compound, this compound is determined to be a compound that inhibits signal transduction by synoviolin. If the activation of the ubiquitination signal by synoviolin is increased by the test compound, this compound is determined to be a compound that promotes signal transduction by synoviolin. For example, a compound that inhibits the interaction between Synoviolin and an E2 ubiquitin activating enzyme can effectively inhibit a ubiquitination signal by Synoviolin. The present invention also provides a method for blocking signal transduction by synoviolin using an inhibitor of an enzyme involved in a ubiquitination signal. For example, by applying an E2 ubiquitin-conjugating enzyme or an E3 ubiquitin ligase inhibitor to cells, it is also possible to inhibit signal transduction by synoviolin.

以上のような方法によりシノビオリンを介するシグナル伝達を調節する活性を有する化合物を選択することができる。シノビオリンによるシグナル伝達を阻害する化合物は、シノビオリンの活性化に起因する疾患の治療剤として有用である。例えばシノビオリンによるシグナル伝達を阻害する化合物は、滑膜増生阻害として有用である。この化合物を投与することにより滑膜増生を抑制することができ、これによりRAなどの滑膜増生を伴う疾患の予防および治療を行うことが可能となる。また、これらの化合物はMLおよびDHRDに対する医薬としても用いられ得る。あるいは、このシグナル伝達を促進する化合物は、シノビオリン刺激剤、あるいは骨形成促進剤などに用いることができる。例えば、骨粗鬆症、骨折、あるいはスポーツ外傷等の治療薬として利用され得る。 A compound having an activity of regulating signal transduction via Synoviolin can be selected by the method as described above. A compound that inhibits signal transduction by Synoviolin is useful as a therapeutic agent for a disease caused by the activation of Synoviolin. For example, compounds that inhibit signal transduction by Synoviolin are useful as synovial hyperplasia inhibition. By administering this compound, synovial hyperplasia can be suppressed, thereby enabling prevention and treatment of diseases associated with synovial hyperplasia such as RA. These compounds can also be used as medicaments for ML and DHRD. Alternatively, the compound that promotes signal transduction can be used as a synoviolin stimulator, an osteogenesis promoter, or the like. For example, it can be used as a therapeutic agent for osteoporosis, fractures, sports injuries and the like.

シノビオリン遺伝子の発見に基づいて、たとえば次のようなRAおよびシノビオリンが関与するその他の疾患に関する新たな研究が可能となる。まず、シノビオリンの発現を制御しているプロモーターやエンハンサーの構造決定が可能となる。すなわち、配列番号：１に示したシノビオリン遺伝子の塩基配列をもとにゲノムのクローニングを進め、発現制御領域の配列を分析することができる。その結果得られるシノビオリンの転写調節領域は、シノビオリンの転写調節因子の探索に利用することができる。 Based on the discovery of the Synoviolin gene, for example, the following new research on RA and other diseases involving Synoviolin will be possible. First, it becomes possible to determine the structure of a promoter or enhancer that controls the expression of Synoviolin. That is, genome cloning can be performed based on the base sequence of the Synoviolin gene shown in SEQ ID NO: 1, and the sequence of the expression control region can be analyzed. The transcriptional regulatory region of Synoviolin obtained as a result can be used for searching for a Synoviolin transcriptional regulatory factor.

また、本発明のシノビオリンノックアウト動物において、マーカー遺伝子をノックインし、シノビオリン遺伝子の内因性プロモーターの制御下にマーカー遺伝子を発現させれば、この動物またはこの動物由来の細胞を用いて、マーカー遺伝子の発現を指標にシノビオリン遺伝子の発現を制御する薬剤をスクリーニングすることができる。例えば転写調節因子の認識配列を２本鎖として与えれば、デコイ核酸医薬として機能する。 Further, in the Synoviolin knockout animal of the present invention, if the marker gene is knocked in and the marker gene is expressed under the control of the endogenous promoter of Synoviolin gene, expression of the marker gene can be performed using this animal or cells derived from this animal. It is possible to screen for drugs that control the expression of Synoviolin gene using For example, if a transcription regulatory factor recognition sequence is provided as a double strand, it functions as a decoy nucleic acid drug.

また、本発明のポリヌクレオチドを用いて、動物における本発明の蛋白質の生物学的な役割を調べることが可能である。このためには、例えば本発明のDNAを導入して、本発明の蛋白質を過剰発現または異所発現（または異時発現）させ、その効果を検証することによってその役割を調べることができる。遺伝子を全身に導入するには、本発明のDNAのトランスジェニック動物を作製すればよい。あるいは、ジーンターゲティングやアンチセンスオリゴヌクレオチド、リボザイム等の投与により本発明のDNAの発現や機能を抑制する loss-of-function（機能喪失）実験も有効である。すなわち本発明は、本発明のDNAの発現が改変されているか、または該改変を誘導することができるトランスジェニック非ヒト脊椎動物を提供する。発現の改変は、野生型と比較して改変されていてもよく、改変を誘導する場合においては、誘導前と比較して改変していてもよい。 Moreover, it is possible to investigate the biological role of the protein of the present invention in animals using the polynucleotide of the present invention. For this purpose, for example, by introducing the DNA of the present invention, the protein of the present invention is overexpressed or ectopicly expressed (or expressed at different times), and its effect can be verified to examine its role. In order to introduce the gene into the whole body, a transgenic animal of the DNA of the present invention may be prepared. Alternatively, a loss-of-function experiment that suppresses the expression and function of the DNA of the present invention by administration of gene targeting, antisense oligonucleotide, ribozyme or the like is also effective. That is, the present invention provides a transgenic non-human vertebrate in which the expression of the DNA of the present invention is altered or can be induced. The modification of expression may be modified as compared with the wild type, and when the modification is induced, the expression may be modified as compared with that before the induction.

本発明においてトランスジェニック動物とは、外来的に核酸がゲノムに導入された動物が含まれる。また、「DNAの発現」とは、DNAの転写レベルであってもよく、その転写産物の翻訳レベルであってもよい。また「改変を誘導する」とは、例えば外的な刺激や時期特異的に発現の改変が誘導されたり、掛け合わせによる後代において発現が改変されることを含む。また、一部の細胞または組織における発現の改変も含まれる。本発明のトランスジェニック非ヒト脊椎動物としては、哺乳動物（例えばマウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ブタ、ヤギ、ヒツジ、ウマ、ならびにウシ等）が好ましく、特にげっ歯類、例えばマウスまたはラットなどを用いることが好適である。 In the present invention, a transgenic animal includes an animal in which a nucleic acid has been introduced into the genome exogenously. In addition, “DNA expression” may be the transcription level of DNA or the translation level of the transcription product. In addition, “inducing modification” includes, for example, inducing expression modification in an external stimulus or time-specific manner, or modifying expression in a progeny by crossing. Also included is modification of expression in some cells or tissues. The transgenic non-human vertebrate of the present invention is preferably a mammal (eg, mouse, rat, hamster, rabbit, pig, goat, sheep, horse, and cow), particularly rodents such as mouse or rat. It is preferable to use it.

本発明のトランスジェニック非ヒト脊椎動物には、本発明の蛋白質をコードするDNAが外来的に導入されているトランスジェニック非ヒト脊椎動物が含まれる。このようなトランスジェニック動物は、例えば本発明の蛋白質をコードするDNAを発現するベクターを、受精卵に導入することにより製造することができる。 The transgenic non-human vertebrate of the present invention includes a transgenic non-human vertebrate into which a DNA encoding the protein of the present invention has been introduced exogenously. Such a transgenic animal can be produced, for example, by introducing a vector expressing a DNA encoding the protein of the present invention into a fertilized egg.

ベクターの導入は、ベクターと卵を混合後リン酸カルシウムによる処理、エレクトロポレーション、または倒立顕微鏡下におけるマイクロインジェクション法等により行うことができる。または、胚性幹細胞（ES細胞）に本発明のベクターを導入し、選別したES細胞を受精卵（肺盤胞）にマイクロインジェクションにより導入してもよい。
得られた受精卵は、輸精管結紮雄個体との交配により偽妊娠させたレシピエントの卵管内に移植し、産仔を得ることができる。産仔の尾などからDNAを調製し、PCRにより導入DNAの保持を確認する（Brigid Hogan et al. eds., "Manipulating the Mouse Embryo : A Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, 1994, Gordon, J. W. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77: 7380-7384, 1980; Jaenisch, R. and B. Mintz, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 71: 1250-1254, 1974）。生殖系列に遺伝子が導入されたキメラ動物からは、正常動物と交配することによりヘテロ接合体が得られる。ヘテロ接合体同士の交配によりホモ接合体を得ることができる。本発明のトランスジェニック非ヒト脊椎動物には、これらの子孫も含む。 The vector can be introduced by mixing the vector and egg and then treating with calcium phosphate, electroporation, microinjection under an inverted microscope, or the like. Alternatively, the vector of the present invention may be introduced into embryonic stem cells (ES cells), and the selected ES cells may be introduced into fertilized eggs (alveolar cysts) by microinjection.
The resulting fertilized egg can be transplanted into the oviduct of a recipient who has been pseudo-pregnant by mating with a zygote ligated male individual, and a litter can be obtained. DNA is prepared from the tail of a litter and the introduced DNA is confirmed by PCR (Brigid Hogan et al. Eds., "Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, 1994, Gordon, JW et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77: 7380-7384, 1980; Jaenisch, R. and B. Mintz, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 71: 1250-1254, 1974). From a chimeric animal into which a gene has been introduced into the germ line, a heterozygote can be obtained by mating with a normal animal. Homozygotes can be obtained by crossing heterozygotes. The transgenic non-human vertebrates of the present invention also include these progeny.

本発明のDNAを生体内で発現させるために用いるプロモーターとしては、例えば全身発現性のプロモーターや、その他の組織特異的、時期特異的プロモーターを用いることができる。
全身性プロモーターとしては、例えばβアクチンプロモーター等が挙げられる。例えば、pCAGGS等に含まれている、ヒトサイトメガロウイルスエンハンサーが連結されたニワトリβアクチンプロモーターを用いることができる。部位特異的または時期特異的に本発明のDNAを発現するトランスジェニック動物を作製する場合、Cre-loxPの系などを利用することが可能である。例えば、部位特異的または時期特異的なプロモーターの下流にCreリコンビナーゼ遺伝子を有するトランスジェニック動物を作製し、別に汎用プロモーターの下流に本発明のポリペプチドをコードするDNAを連結させたベクターを保持するトランスジェニック動物を作製する。この時、プロモーターと本発明のポリペプチドをコードするDNAとの間に一対のloxPに挟まれたストップコドンまたは転写終結シグナル等を挿入しておく。２つの個体を掛け合わせることにより、Creの発現に伴なって本発明のポリペプチドを発現させることができる。 As a promoter used for expressing the DNA of the present invention in vivo, for example, a systemically expressed promoter and other tissue-specific and time-specific promoters can be used.
Examples of the systemic promoter include β-actin promoter. For example, a chicken β-actin promoter linked to a human cytomegalovirus enhancer contained in pCAGGS or the like can be used. When producing a transgenic animal that expresses the DNA of the present invention in a site-specific or time-specific manner, a Cre-loxP system or the like can be used. For example, a transgenic animal having a Cre recombinase gene downstream of a site-specific or time-specific promoter and a vector in which a DNA encoding the polypeptide of the present invention is linked downstream of a general-purpose promoter is maintained. Create a transgenic animal. At this time, a stop codon sandwiched between a pair of loxPs or a transcription termination signal is inserted between the promoter and the DNA encoding the polypeptide of the present invention. By crossing two individuals, the polypeptide of the present invention can be expressed along with the expression of Cre.

また、本発明のトランスジェニック非ヒト脊椎動物には、内因性の本発明の蛋白質をコードするDNAの発現が抑制されているトランスジェニック非ヒト脊椎動物が含まれる。このようなトランスジェニック動物は、例えば、ジーンターゲティングにより製造することができる。このようなトランスジェニック非ヒト脊椎動物を作製するには、例えば本発明のDNAの一部または全部を置換、欠失、付加および／または挿入等により欠損させたターゲティングベクターを胚性幹(ES)細胞に導入し、染色体DNAと相同組み換えを起した細胞を選択する。相同組み換え体の選択のためには公知のポジティブ・ネガティブ選択を行うことができる。ポジティブ選択用マーカーとしては、ネオマイシン耐性遺伝子などの薬剤耐性遺伝子、ネガティブ選択用マーカーとしては、ジフテリア毒素(DT)-A遺伝子や HSV-tk遺伝子などが挙げられる。サザンブロッティングやPCR等により、正しく組み換えられた細胞を選択することができる。得られた細胞は、8細胞期程度の受精卵または胚盤胞の胚盤胞腔などに注入し、輸精管結紮雄と交配させて作製した偽妊娠メス個体の子宮内に移植する。産仔のゲノムDNA解析は上記と同様に行い、ヘテロ接合体およびホモ個体を得ることができる。目的の遺伝子をノックアウトするだけでなく、他の遺伝子をノックインすることもできる。ノックインする遺伝子に特に制限はない。例えばlacZ遺伝子等のマーカー遺伝子が挙げられる。 In addition, the transgenic non-human vertebrate of the present invention includes a transgenic non-human vertebrate in which the expression of DNA encoding the endogenous protein of the present invention is suppressed. Such transgenic animals can be produced, for example, by gene targeting. In order to prepare such a transgenic non-human vertebrate, for example, a targeting vector in which a part or all of the DNA of the present invention is deleted by substitution, deletion, addition and / or insertion or the like is used as an embryonic stem (ES). Select a cell that has been introduced into the cell and has undergone homologous recombination with the chromosomal DNA. For selection of homologous recombinants, known positive / negative selection can be performed. Examples of the positive selection marker include drug resistance genes such as neomycin resistance gene, and examples of the negative selection marker include diphtheria toxin (DT) -A gene and HSV-tk gene. Correctly recombined cells can be selected by Southern blotting or PCR. The obtained cells are injected into fertilized eggs of about 8 cell stage or blastocyst space of blastocysts and transplanted into the uterus of pseudopregnant female individuals produced by mating with vas deferens ligation males. The genomic DNA analysis of the litter is performed in the same manner as described above, and heterozygotes and homozygous individuals can be obtained. In addition to knocking out the gene of interest, other genes can also be knocked in. There is no particular restriction on the gene to be knocked in. For example, a marker gene such as lacZ gene can be mentioned.

また、内因性の本発明の蛋白質をコードするDNAの発現が抑制されているトランスジェニック非ヒト脊椎動物は、アンチセンス法またはリボザイム法を利用して作製することもできる。アンチセンス法においては、本発明の蛋白質をコードするDNAの転写産物に相補的なRNAをコードするDNAを含むベクターを、また、リボザイム法においては、例えば本発明の蛋白質をコードするDNAの転写産物を切断するRNAをコードするDNAを含むベクターを、上記と同様に哺乳動物の胚性幹細胞に導入し、これを哺乳動物の胚に注入し、該胚から個体を得ればよい。 In addition, transgenic non-human vertebrates in which the expression of the DNA encoding the protein of the present invention is suppressed can also be produced using an antisense method or a ribozyme method. In the antisense method, a vector containing a DNA encoding RNA complementary to the transcription product of the DNA encoding the protein of the present invention is used. In the ribozyme method, for example, a transcription product of the DNA encoding the protein of the present invention. A vector containing a DNA encoding an RNA that cleaves can be introduced into a mammalian embryonic stem cell in the same manner as described above, and this can be injected into a mammalian embryo to obtain an individual from the embryo.

シノビオリンがRAの滑膜細胞増殖症状をもたらしていることから、トランスジェニック動物には次のような用途が考えられる。すなわち、シノビオリン遺伝子、あるいはSLの遺伝子を、適当な動物に組み込んでトランスジェニック動物とし、これを強発現させればRAのモデルとすることができる。このトランスジェニック動物において、滑膜増殖機構を制御する薬剤のスクリーニングを進めることが可能となる。あるいは、ヒトのシノビオリン／SLでRA症状を起こさない動物においては、これらの遺伝子を強発現させることで、シノビオリンやSLの供給源として活用することも可能である。 Since synoviolin causes RA synovial cell proliferation symptoms, transgenic animals have the following uses. That is, if a Synoviolin gene or SL gene is incorporated into an appropriate animal to produce a transgenic animal, which can be strongly expressed, a RA model can be obtained. In this transgenic animal, it is possible to proceed with screening for drugs that control the synovial growth mechanism. Alternatively, in an animal that does not cause RA symptoms with human Synoviolin / SL, it is possible to use these genes as a source of Synoviolin or SL by strongly expressing these genes.

シノビオリン遺伝子を発現するトランスジェニック動物は、滑膜増生を伴う関節炎など、RAと共通する症状を起す。すなわちこの動物は慢性関節リウマチモデル動物となる。この動物を用いて、RAに対する医薬候補化合物を含む、種々の化合物の試験またはスクリーニングを行うことができる。被験化合物をトランスジェニック動物に投与し、症状の寛解または増悪を観察して化合物の効果を検証したり、あるいはスクリーニングを行うことができる。本発明のトランスジェニック動物を利用した試験またはスクリーニングの方法としては、以下の方法が挙げられる。
関節異常を寛解または増悪させる化合物を試験またはスクリーニングする方法であって、（ａ）本発明のDNAが外来的に導入されているトランスジェニック非ヒト脊椎動物に被験化合物を投与する工程、および（ｂ）投与された動物の関節異常を評価する工程、を含む方法。 Transgenic animals expressing the Synoviolin gene develop symptoms common with RA, such as arthritis with synovial hyperplasia. That is, this animal becomes a rheumatoid arthritis model animal. This animal can be used to test or screen various compounds, including drug candidate compounds for RA. A test compound can be administered to a transgenic animal, and the effect of the compound can be verified or screened by observing remission or exacerbation of symptoms. Examples of the test or screening method using the transgenic animal of the present invention include the following methods.
A method for testing or screening a compound that ameliorates or exacerbates joint abnormality, comprising: (a) administering a test compound to a transgenic non-human vertebrate into which the DNA of the present invention has been introduced exogenously; and (b) ) Assessing joint abnormalities in the administered animal.

またシノビオリン遺伝子のノックアウト動物は、シノビオリンの作用の抑制による副作用を調べたり、その副作用を低減する薬剤のアッセイやスクリーニングに利用することができる。またノックアウト動物に局所的、または一過的にシノビオリンを発現させ、シノビオリンの効果を特異的に検証することもできる。また、SL（S1-5）とML/DHRDとの関連より、シノビオリンがSLの細胞内シグナル伝達に関与する可能性があることにより、シノビオリンノックアウト動物は、MLおよびDHRDのモデルとなり得る。例えば組織特異的、時期特異的にシノビオリン遺伝子を（ホモまたはヘテロに）ノックアウトすることが考えられる。 Synoviolin gene knockout animals can be used for investigating side effects caused by inhibition of synoviolin action, and for assaying and screening for drugs that reduce the side effects. In addition, synoviolin can be expressed locally or transiently in knockout animals to specifically verify the effect of synoviolin. In addition, synoviolin knockout animals can be models of ML and DHRD because synoviolin may be involved in intracellular signal transduction of SL due to the relationship between SL (S1-5) and ML / DHRD. For example, it is conceivable to knock out the synoviolin gene (homo or hetero) in a tissue-specific and time-specific manner.

シノビオリン遺伝子のノックアウト時にマーカー遺伝子等を導入したノックイン動物を用い、化合物のシノビオリン遺伝子の発現を上昇または下降させる活性を検出することができる。すなわち本発明は、以下の工程を含む被験化合物のシノビオリン遺伝子の発現を調節する活性の検出方法に関する。
ａ）被験化合物を前記ノックイン動物またはノックイン細胞に適用する工程、および
ｂ）マーカー遺伝子の発現レベルを測定する工程、 Using a knock-in animal into which a marker gene or the like has been introduced at the time of knockout of the synoviolin gene, the activity of increasing or decreasing the synoviolin gene expression of the compound can be detected. That is, this invention relates to the detection method of the activity which regulates the expression of the synoviolin gene of a test compound including the following processes.
a) applying the test compound to the knock-in animal or knock-in cell; and b) measuring the expression level of the marker gene.

この検出方法は、シノビオリン遺伝子の発現を調節する化合物のスクリーニングに利用することができる。この方法は、シノビオリン遺伝子の発現を調節する化合物のスクリーニング方法であり、ａ）上記ノックイン動物またはノックイン細胞に、被験化合物を適用する工程、ｂ）マーカー遺伝子の発現レベルを測定する工程、およびｃ）ノックインされた遺伝子の発現を上昇または低下させる化合物を選択する工程、を含む方法である。
すなわち、被験化合物を適用した動物または細胞において、マーカー遺伝子の発現を検出し、マーカー遺伝子の発現を上昇または低下させる化合物を選択する。LacZをマーカーに用いた場合のマーカー遺伝子の発現の検出は、実施例に記載の方法により行うことができる。この方法により、個体を用いた試験やスクリーニングに加え、例えば器官や組織を単離して用いたり、トランスジェニック動物から得られた細胞を用いて同様の試験やスクリーニングを行うことも可能である。 This detection method can be used for screening compounds that regulate the expression of Synoviolin gene. This method is a screening method for a compound that regulates the expression of a synoviolin gene, a) applying a test compound to the knockin animal or knockin cell, b) measuring the expression level of the marker gene, and c) Selecting a compound that increases or decreases the expression of the knocked-in gene.
That is, in the animal or cell to which the test compound is applied, the expression of the marker gene is detected, and the compound that increases or decreases the expression of the marker gene is selected. Detection of marker gene expression when LacZ is used as a marker can be performed by the method described in the Examples. By this method, in addition to tests and screenings using individuals, it is possible to isolate and use organs and tissues, for example, or perform similar tests and screenings using cells obtained from transgenic animals.

個体を用いたスクリーニングにおいては、被験化合物は、適当なルートを介して投与される。被験化合物は、例えば静脈注射、皮下注射、筋肉内注射、腹腔内注入、経口投与、経腸投与、経鼻投与などの公知の投与方法により投与され得る。試験管培養系を用いてスクリーニングを行う場合は、被験化合物は例えば培地中に添加される。または、マイクロインジェクション等により細胞内に注入されてもよい。被験化合物が遺伝子である場合は、naked DNAとして、所望のトランスフェクション試薬と組み合わせて、あるいは公知の発現ベクターに組み込んで細胞に遺伝子を導入することができる。シノビオリン遺伝子のプロモーター領域の配列を含む核酸は、デコイとして作用し、シノビオリンの発現を抑制することが期待される。 In screening using individuals, the test compound is administered via an appropriate route. The test compound can be administered by a known administration method such as intravenous injection, subcutaneous injection, intramuscular injection, intraperitoneal injection, oral administration, enteral administration, or nasal administration. When screening is performed using a test tube culture system, the test compound is added to a medium, for example. Alternatively, it may be injected into cells by microinjection or the like. When the test compound is a gene, the gene can be introduced into cells as naked DNA, in combination with a desired transfection reagent, or incorporated into a known expression vector. A nucleic acid containing the sequence of the promoter region of the synoviolin gene is expected to act as a decoy and suppress the expression of synoviolin.

シノビオリン遺伝子の発現を調節する活性は、たとえば以下の工程によって検出することができる。
ａ）シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチドの内因性プロモーターの制御下にレポーター遺伝子を発現することができる発現系に、被験化合物を接触させる工程、および
ｂ）レポーター遺伝子の発現レベルを測定する工程 The activity that regulates the expression of the synoviolin gene can be detected, for example, by the following steps.
a) contacting a test compound with an expression system capable of expressing a reporter gene under the control of Synoviolin or an endogenous promoter of a polynucleotide functionally equivalent to Synoviolin, and b) measuring the expression level of the reporter gene Process

そしてこの検出方法に基づいて、シノビオリン遺伝子の発現を調節する化合物をスクリーニングすることができる。すなわち本発明は、以下の工程を含む、シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチドの内因性プロモーターの活性を調節する化合物のスクリーニング方法に関する。
ａ）前記活性の検出方法に基づいて、被験化合物のシノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチドの内因性プロモーターの活性を調節する活性を測定する工程、および
ｂ）対照と比較して、前記活性に差がある被験化合物を選択する工程 Based on this detection method, compounds that regulate the expression of the synoviolin gene can be screened. That is, the present invention relates to a method for screening a compound that regulates the activity of Synoviolin or an endogenous promoter of a polynucleotide functionally equivalent to Synoviolin, comprising the following steps.
a) measuring the activity of modulating the activity of the endogenous promoter of the test compound synoviolin or a polynucleotide functionally equivalent to synoviolin based on the method for detecting the activity, and b) comparing with the control, Selecting a test compound having a difference in activity

対照としては、被験化合物の不存在下で工程ａ）と同じ操作を行った場合、あるいは工程ａ）に比べ被験化合物をより低い濃度で含む場合などが挙げられる。また、例えば別の化合物を用いて工程ａ）と同じ操作を行い、その化合物よりもより高い作用を持つ化合物を選択することもできる。遺伝子の発現には、転写レベルの発現、および翻訳レベルの発現が含まれる。シノビオリン遺伝子の内因性プロモーターの下流に結合されている遺伝子は、天然のシノビオリン遺伝子自体であってもよく、人工的に連結されたレポーター遺伝子であってもよい。シノビオリン遺伝子の内因性プロモーター活性は、例えば下流に連結されている遺伝子のcDNA断片をプローブとしたノーザンハイブリダイゼーション、RT-PCR、該遺伝子がコードする蛋白質に対する抗体を用いたウェスタンブロッティング、免疫沈降、ELISA等により、該遺伝子の転写産物または翻訳残物を検出することにより行うことができる。 Examples of the control include the case where the same operation as in step a) is performed in the absence of the test compound, or the case where the test compound is contained at a lower concentration than in step a). Further, for example, the same operation as in step a) can be performed using another compound, and a compound having a higher action than that compound can be selected. Gene expression includes transcriptional level expression and translational level expression. The gene linked downstream of the endogenous promoter of the Synoviolin gene may be the natural Synoviolin gene itself or an artificially linked reporter gene. The endogenous promoter activity of the Synoviolin gene is, for example, Northern hybridization using a cDNA fragment of the gene linked downstream as a probe, RT-PCR, Western blotting using an antibody against the protein encoded by the gene, immunoprecipitation, ELISA Etc., by detecting the transcription product or translation residue of the gene.

また、シノビオリン遺伝子のプロモーターの下流にレポーター遺伝子を結合した構築物を作製すれば、これを細胞にトランスフェクションして得られた形質転換細胞を用いて、レポーター遺伝子の発現を指標にスクリーニングを行うこともできる。このような構築物は、シノビオリン遺伝子のプロモーターを含むシノビオリン遺伝子の上流領域のゲノムDNAの下流に、所望のレポーター遺伝子を連結させることにより作製することができる。レポーター遺伝子に特に制限はなく、LacZ、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ（CAT）、ルシフェラーゼ、GFP（green fluorescent protein）等を挙げることができる。シノビオリン遺伝子の発現を低下させる化合物は、RAの治療薬の候補となる。 In addition, if a construct in which a reporter gene is bound downstream of the Synoviolin gene promoter is prepared, a transformed cell obtained by transfecting the cell with the reporter gene can be used for screening using the reporter gene expression as an indicator. it can. Such a construct can be prepared by linking a desired reporter gene downstream of the genomic DNA in the upstream region of the Synoviolin gene including the Synoviolin gene promoter. There is no restriction | limiting in particular in a reporter gene, LacZ, chloramphenicol acetyltransferase (CAT), luciferase, GFP (green fluorescent protein) etc. can be mentioned. A compound that decreases the expression of the synoviolin gene is a candidate for a therapeutic drug for RA.

本発明の試験またはスクリーニングに用いる被験化合物としては特に制限はなく、無機化合物、有機化合物、ペプチド、蛋白質、天然または合成低分子化合物、天然または合成高分子化合物、組織または細胞抽出液、微生物の培養上清や、植物、海洋生物由来の天然成分などが挙げられるがこれらに制限されない。遺伝子ライブラリーの発現産物または発現cDNAライブラリーなどを用いることもできる。また、上述した、シノビオリンに結合する化合物のスクリーニングや、シノビオリンとSLとの結合を阻害する化合物のスクリーニングにより得られた化合物を被験化合物として投与することもできる。 The test compound used for the test or screening of the present invention is not particularly limited, and is an inorganic compound, an organic compound, a peptide, a protein, a natural or synthetic low molecular compound, a natural or synthetic high molecular compound, a tissue or cell extract, or a microorganism culture. Examples include, but are not limited to, supernatants, natural components derived from plants and marine organisms. An expression product of a gene library or an expression cDNA library can also be used. Moreover, the compound obtained by the screening of the compound which couple | bonds with synoviolin mentioned above, and the screening of the compound which inhibits the coupling | bonding of synoviolin and SL can also be administered as a test compound.

化合物の投与方法は特に制限はなく、in vitroであれば、培養液への添加を含む細胞への接触、マイクロインジェクターやトランスフェクション試薬を用いた細胞への導入などにより実施することができる。in vivoであれば、動脈内注射、静脈内注射、皮下注射、腹腔内投与、経口投与、経腸投与、筋肉内投与、点眼、経鼻投与、関節等への局所注入など当業者に公知の方法により行いうる。化合物は、適宜組成物として投与される。例えば水、生理食塩水、緩衝液、塩、安定剤、保存剤、懸濁剤などと混合され得る。 The administration method of the compound is not particularly limited, and if in vitro, it can be carried out by contacting the cell including addition to the culture solution, introducing it into the cell using a microinjector or transfection reagent, and the like. In vivo, known to those skilled in the art, such as intraarterial injection, intravenous injection, subcutaneous injection, intraperitoneal administration, oral administration, enteral administration, intramuscular administration, eye drops, nasal administration, local injection into joints, etc. It can be done by a method. The compound is suitably administered as a composition. For example, it can be mixed with water, saline, buffer solution, salt, stabilizer, preservative, suspending agent and the like.

また、シノビオリン遺伝子の発現を調節する化合物のスクリーニングは、トランスジェニック動物ではなく通常の動物またはその動物に由来する細胞等を用いて行うことも可能である。たとえば本発明は、以下の工程を含むシノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチドの発現を調節する活性の検出方法に関する。
ａ）被験化合物の存在下で、シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチドを発現する細胞を培養する工程、および
ｂ）前記ポリヌクレオチドの発現レベルを測定する工程、 In addition, screening for a compound that regulates the expression of the synoviolin gene can be performed using not a transgenic animal but a normal animal or cells derived from the animal. For example, the present invention relates to a method for detecting an activity that regulates the expression of Synoviolin or a polynucleotide functionally equivalent to Synoviolin, comprising the following steps.
a) culturing cells expressing synoviolin or a polynucleotide functionally equivalent to synoviolin in the presence of a test compound; and b) measuring the expression level of the polynucleotide.

そしてこの検出方法に基づいて、シノビオリン遺伝子の発現を調節する化合物をスクリーニングすることができる。すなわち本発明は、以下の工程を含む、シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチドの発現を調節する化合物のスクリーニング方法に関する。
ａ）前記活性の検出方法に基づいて、被験化合物のシノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチドの発現を調節する活性を検出する工程、および
ｂ）対照と比較して前記活性に差を有する被験化合物を選択する工程 Based on this detection method, compounds that regulate the expression of the synoviolin gene can be screened. That is, the present invention relates to a method for screening a compound that regulates the expression of synoviolin or a polynucleotide functionally equivalent to synoviolin, comprising the following steps.
a) detecting the activity of modulating the expression of synoviolin or synoviolin functionally equivalent to the test compound based on the method for detecting the activity, and b) having a difference in the activity compared to the control Step of selecting test compound

シノビオリンまたはシノビオリンと機能的に同等なポリヌクレオチドの発現レベルは、先に述べたような方法によって測定することができる。またこのスクリーニング方法には、先に述べたようなその他のスクリーニング方法において被験化合物として用いることができるあらゆる化合物を被験化合物とすることができる。対照としては上記と同様、被験化合物の不存在下で工程ａ）と同じ操作を行う場合などが挙げられる。 The expression level of Synoviolin or a polynucleotide functionally equivalent to Synoviolin can be measured by the method as described above. In this screening method, any compound that can be used as a test compound in the other screening methods described above can be used as the test compound. Examples of the control include the same operation as in step a) in the absence of the test compound as described above.

本発明の試験またはスクリーニング方法により同定された化合物は、RAやシノビオリンが関与するその他の疾患に対する医薬の候補となり、RA等の疾患の予防または治療に利用することができる。これらの化合物は、有効成分以外に適宜他の溶質や溶媒と組み合わせて医薬組成物とすることができる。本発明のスクリーニング方法により単離される化合物を医薬品として用いる場合には、単離された化合物自体を直接患者に投与する以外に、公知の製剤学的方法により製剤化した医薬組成物として投与を行うことも可能である。 The compounds identified by the test or screening method of the present invention are candidates for drugs for other diseases involving RA and Synoviolin, and can be used for the prevention or treatment of diseases such as RA. These compounds can be combined with other solutes or solvents as appropriate in addition to the active ingredient to form a pharmaceutical composition. When the compound isolated by the screening method of the present invention is used as a pharmaceutical, it is administered as a pharmaceutical composition formulated by a known pharmaceutical method in addition to directly administering the isolated compound to a patient. It is also possible.

例えば、薬理学上許容される担体もしくは媒体、具体的には、滅菌水や生理食塩水、植物油、乳化剤、懸濁剤などと適宜組み合わせて製剤化して投与することが考えられる。本発明の医薬組成物は、水溶液、錠剤、カプセル、トローチ、バッカル錠、エリキシル、懸濁液、シロップ、点鼻液、または吸入液などの形態であり得る。化合物の含有率は適宜決定すればよい。患者への投与は、一般的には、例えば、動脈内注射、静脈内注射、皮下注射、経口投与、関節内注入、その他の当業者に公知の方法により行いうる。 For example, it is conceivable to formulate and administer a pharmacologically acceptable carrier or medium, specifically, sterilized water, physiological saline, vegetable oil, emulsifier, suspending agent or the like in appropriate combination. The pharmaceutical composition of the present invention may be in the form of an aqueous solution, tablet, capsule, troche, buccal tablet, elixir, suspension, syrup, nasal solution or inhalation solution. What is necessary is just to determine the content rate of a compound suitably. Administration to a patient can be generally performed by, for example, intraarterial injection, intravenous injection, subcutaneous injection, oral administration, intraarticular injection, and other methods known to those skilled in the art.

投与量は、患者の体重や年齢、投与方法、症状などにより変動するが、当業者であれば適当な投与量を適宜選択することが可能である。一般的な投与量は、薬剤の有効血中濃度や代謝時間により異なるが、１日の維持量として約0.1mg/kg〜約1.0g/kg、好ましくは約0.1mg/kg〜約10mg/kg、より好ましくは約0.1mg/kg〜約1.0mg/kgであると考えられる。投与は１回から数回に分けて行うことができる。また、該化合物がポリヌクレオチドによりコードされうるものであれば、該ポリヌクレオチドを遺伝子治療用ベクターに組み込み、遺伝子治療を行うことも考えられる。
なお本明細書において引用された全ての先行技術文献は、参照として本明細書に組み入れられる。 The dose varies depending on the weight and age of the patient, the administration method, symptoms, etc., but those skilled in the art can appropriately select an appropriate dose. The general dose varies depending on the effective blood concentration of the drug and the metabolic time, but the daily maintenance dose is about 0.1 mg / kg to about 1.0 g / kg, preferably about 0.1 mg / kg to about 10 mg / kg. More preferably, it is considered to be about 0.1 mg / kg to about 1.0 mg / kg. Administration can be divided into 1 to several times. In addition, if the compound can be encoded by a polynucleotide, gene therapy may be performed by incorporating the polynucleotide into a gene therapy vector.
It should be noted that all prior art documents cited in the present specification are incorporated herein by reference.

［実施例１］抗滑膜細胞抗血清の作製
抗滑膜細胞抗血清は、以下のような操作で調製した滑膜細胞を免疫原として用いて得た。１０人の慢性関節リウマチ(RA)患者の滑膜除去手術により摘出された関節滑膜組織を、無菌的な状態でphosphate buffered saline（PBS）で洗浄した。洗浄した組織を約5mm立方の大きさに細断し、37℃、20分 0.25%トリプシン/PBS消化を行った。消化された滑膜組織より余分な組織片を取り除き、得られた細胞を10%牛胎仔血清を含むダルベッコ改変イーグル培地（Virology, 8, 396, 1959）（10%FCS-DMEM）を用いて懸濁し、細胞培養用の滅菌シャーレ上で、5%CO₂、37℃、24時間培養した。培養上清を捨て、10%FCS-DMEMを用いて洗浄し非接着細胞を取り除き、シャーレに付着した細胞としてリウマチ患者由来滑膜細胞を取得した（The Journal of Clinical Investigation, 92, 186, 1993）。培養された細胞をプールして、RA患者由来の以下の滑膜細胞として実験に用いた。 [Example 1] Preparation of anti-synovial cell antiserum Anti-synovial cell antiserum was obtained using synovial cells prepared as follows as an immunogen. Articular synovial tissue removed by synovial removal surgery from 10 patients with rheumatoid arthritis (RA) was washed with phosphate buffered saline (PBS) in an aseptic manner. The washed tissue was chopped into approximately 5 mm cubes and digested with 0.25% trypsin / PBS at 37 ° C. for 20 minutes. Excess tissue fragments are removed from the digested synovial tissue, and the resulting cells are suspended using Dulbecco's modified Eagle medium (Virology, 8, 396, 1959) (10% FCS-DMEM) containing 10% fetal calf serum. It became cloudy and cultured on a sterile petri dish for cell culture at 5% CO ₂ at 37 ° C. for 24 hours. The culture supernatant was discarded, washed with 10% FCS-DMEM to remove non-adherent cells, and rheumatic patient-derived synovial cells were obtained as cells attached to the petri dish (The Journal of Clinical Investigation, 92, 186, 1993) . The cultured cells were pooled and used in the experiment as the following synovial cells from RA patients.

1×10⁵ 個の患者由来滑膜細胞を、10%FCS-DMEM 20mLに懸濁して76cm² の培養フラスコ中で培養した。３日ごとに培地を交換し、2週間後に培養面を細胞が満たした状態になったところで培地を除き、0.05%EDTA/PBSと0.1%トリプシン/PBSを7mLづつ加えて細胞を剥がして回収した。回収した細胞をPBSで洗浄して培地成分を除去し、1mLのPBSに懸濁して免疫原とした。 1 × 10 ⁵ patient-derived synovial cells were suspended in 20 mL of 10% FCS-DMEM and cultured in a 76 cm ² culture flask. The medium was changed every 3 days, and after 2 weeks, when the culture surface was filled with cells, the medium was removed, and 7 mL of 0.05% EDTA / PBS and 0.1% trypsin / PBS were added and detached to recover the cells. . The collected cells were washed with PBS to remove the medium components, and suspended in 1 mL of PBS to obtain an immunogen.

この免疫原を、作成後2時間以内にウサギ（１羽）の耳に静脈注射することにより免疫した。免疫は1週間間隔で合計6回行った。6回目の免疫のときに、ウサギの耳から数mL採血して抗血清を試験したところ、蛍光抗体法によってリウマチ患者の滑膜細胞と反応することが確認できた。6回目の免疫操作の更に1週間後にカテーテルを使って心臓から可能な限りの血液を採取した。この血液を4℃で一晩放置して凝固させ血清を分離した。血清には保存剤として0.1%のアジ化ナトリウムを加え、抗滑膜細胞抗血清として4℃で保存した。 This immunogen was immunized by intravenous injection into the ear of a rabbit (one) within 2 hours after preparation. Immunization was performed 6 times at weekly intervals. During the sixth immunization, several mL of blood was collected from rabbit ears and tested for antiserum. It was confirmed that the antibody reacted with synovial cells of rheumatic patients by the fluorescent antibody method. One week after the sixth immunization, as much blood as possible was collected from the heart using a catheter. The blood was allowed to clot overnight at 4 ° C. to separate serum. The serum was supplemented with 0.1% sodium azide as a preservative and stored at 4 ° C. as anti-synovial cell antiserum.

［実施例２］抗滑膜細胞抗血清が認識する抗原（シノビオリン）の遺伝子クローニング
実施例１で得たRA患者10名分の滑膜細胞からAcid guanidine/phenol chloroform法にてtotal RNAを抽出し、poly Tビーズを用いmRNAを精製した（Analytical Biochemistry, 162, 159, 1987）。λZAPベクター（STRATAGENE社）を用いてRA患者滑膜細胞のcDNAライブラリーを常法に従い作製した。picoBlue immunoscreening kit（STRATAGENE社）により、上記実施例１の抗滑膜細胞抗血清によるimmunoscreeningを行った（図１）。得られた陽性クローン（ファージ）をヘルパーファージによりプラスミドpBluescript II SK(+)へと変換した。pBluescripte II SK(+)に挿入されたDNAの塩基配列はM13PrimerM4及びM13PrimerRV（Takara）を用いダイターミネーター法（Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 74, 5463, 1977）に基づきABI PRISM 377 DNA Sequencer（PERKIN ELMER）により決定した。前述の抗滑膜細胞抗血清が認識する抗原をコードする遺伝子（「シノビオリン」と名付けた）の３'末端から塩基配列を決定し、poly(A)⁺ 鎖を含む2990bpの塩基配列を明らかにした（配列番号：１の42-3031番目）。この塩基配列を用い、滑膜細胞cDNAライブラリーから5'-RACE（Rapid Amplification of cDNA Ends）法（Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 85:8998-9002, 1988）により全長シノビオリンの翻訳領域と5'-非翻訳領域の一部及びpoly(A)⁺ 鎖を含む3031bpの塩基配列を決定した（配列番号：１）。この塩基配列を GenBank によりホモロジーサーチした結果、類似の配列は報告されておらず新規な遺伝子であった。 Example 2 Gene Cloning of Antigen (Synoviolin) Recognized by Anti-Synovial Cell Antiserum Total RNA was extracted from the synovial cells of 10 RA patients obtained in Example 1 by the Acid guanidine / phenol chloroform method. MRNA was purified using poly T beads (Analytical Biochemistry, 162, 159, 1987). Using a λZAP vector (STRATAGENE), a cDNA library of RA patient synovial cells was prepared according to a conventional method. Immunoscreening with the anti-synovial cell antiserum of Example 1 was performed using a picoBlue immunoscreening kit (STRATAGENE) (FIG. 1). The obtained positive clone (phage) was converted into a plasmid pBluescript II SK (+) with helper phage. The base sequence of DNA inserted into pBluescripte II SK (+) is ABI PRISM 377 DNA based on the dye terminator method (Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 74, 5463, 1977) using M13PrimerM4 and M13PrimerRV (Takara). Determined by Sequencer (PERKIN ELMER). The nucleotide sequence is determined from the 3 'end of the gene encoding the antigen recognized by the anti-synovial cell antiserum (named “Synoviolin”), and the 2990 bp nucleotide sequence including the poly (A) ⁺ chain is revealed. (Positions 42-3031 of SEQ ID NO: 1). Using this nucleotide sequence, translation of full-length synoviolin from a synovial cell cDNA library by the 5'-RACE (Rapid Amplification of cDNA Ends) method (Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 85: 8998-9002, 1988) The base sequence of 3031 bp including the region, a part of the 5′-untranslated region and the poly (A) ⁺ chain was determined (SEQ ID NO: 1). As a result of homology search of this nucleotide sequence by GenBank, no similar sequence was reported and it was a novel gene.

［実施例３］大腸菌での部分シノビオリン組み換えタンパク質の発現
抗滑膜細胞抗血清を用いたイムノスクリーニングで得られたcDNAクローンから、シノビオリンの一部をコードするcDNA（1799bp; 配列番号：１の1233-3031番）を制限酵素EcoRI及びXhoI処理し抽出した。EcoRI/XhoIの認識配列を末端に持つcDNAを、グルタチオン S-トランスフェラーゼ（GST）融合タンパク質発現ベクターpGEX-5X-3に挿入してサブクローニングした。シノビオリンcDNAの一部を挿入したpGEX-5X-3をBL21大腸菌株に42℃、45秒ヒートショックにより導入し、BL21/synoviolin-GST gene/pGEX-5X-3を得た。このBL21を0.1mg/mLアンピシリンを含むLB培地で培養し、0.1mM isopropylthio-β-D-galactoside（IPTG）を添加して37℃で更に2時間培養し前記融合タンパク質の発現を誘導した。遠心分離法で回収したBL21をPBSで洗浄後、1mg/mLリゾチーム消化し0.1% TritonX-100により可溶化した。可溶化されたGST融合タンパク質を含むBL21由来タンパク質懸濁液をグルタチオンセファロース4B（GS4B）に適用後PBSで洗浄し、50mM還元型グルタチオン/PBSにより目的とするGST-部分シノビオリン融合タンパク質を精製した。 [Example 3] Expression of a partial synoviolin recombinant protein in E. coli From a cDNA clone obtained by immunoscreening using anti-synovial cell antiserum, a cDNA encoding a part of synoviolin (1799 bp; 1233 of SEQ ID NO: 1) -3031) was extracted by treatment with restriction enzymes EcoRI and XhoI. A cDNA having an EcoRI / XhoI recognition sequence at its end was inserted into a glutathione S-transferase (GST) fusion protein expression vector pGEX-5X-3 and subcloned. PGEX-5X-3 into which a part of the synoviolin cDNA was inserted was introduced into the BL21 E. coli strain by heat shock at 42 ° C. for 45 seconds to obtain BL21 / synoviolin-GST gene / pGEX-5X-3. This BL21 was cultured in an LB medium containing 0.1 mg / mL ampicillin, 0.1 mM isopropylthio-β-D-galactoside (IPTG) was added, and further cultured at 37 ° C. for 2 hours to induce expression of the fusion protein. BL21 recovered by centrifugation was washed with PBS, digested with 1 mg / mL lysozyme, and solubilized with 0.1% TritonX-100. The BL21-derived protein suspension containing the solubilized GST fusion protein was applied to glutathione sepharose 4B (GS4B) and washed with PBS, and the target GST-partial synoviolin fusion protein was purified with 50 mM reduced glutathione / PBS.

［実施例４］大腸菌での全長シノビオリン組み換えタンパク質の発現
実施例２で得られたシノビオリンをコードするcDNA（1851bp; 配列番号：１の60-1910番）の3'-末端に、２分子のインフルエンザ赤血球凝集素（hemagglutinin；HA）-tagを付加したシノビオリンcDNA（syno-HAHA）を、グルタチオン S-トランスフェラーゼ(GST)融合タンパク質発現ベクターpGEX-5X-1に挿入してサブクローニングした。syno-HAHA遺伝子を挿入したpGEX-5X-1をBL21大腸菌株に42℃、45秒ヒートショックにより導入し、BL21/syno-HAHA/pGEX-5X-1を得た。このBL21を0.1mg/mlアンピシリンを含むLB培地で培養し、0.1mM isopropylthio-β-D-galactoside（IPTG）を添加して30℃で更に3時間培養しN末端にGST、C末端にHAを融合したシノビオリン（GST-シノビオリン-HAHA）タンパク質の発現を誘導した。遠心分離法で回収したBL21をPBSで洗浄した後、1mg/mlリゾチーム消化し0.1% TritonX-100により可溶化した。可溶化したGST-シノビオリン-HAHAタンパク質を含むBL21由来タンパク質懸濁液をグルタチオンセファロース4B（GS4B）に適用後PBSで洗浄し、50mM還元型グルタチオン/Tris-HCl（pH8.0）により目的とするGST-シノビオリン-HAHAタンパク質を精製した。 [Example 4] Expression of full-length synoviolin recombinant protein in E. coli Two molecules of influenza at the 3'-end of the cDNA encoding synoviolin obtained in Example 2 (1851 bp; SEQ ID NO: 60-1910) Synoviolin cDNA (syno-HAHA) added with hemagglutinin (HA) -tag was inserted into glutathione S-transferase (GST) fusion protein expression vector pGEX-5X-1, and subcloned. pGEX-5X-1 inserted with the syno-HAHA gene was introduced into the BL21 E. coli strain by heat shock at 42 ° C. for 45 seconds to obtain BL21 / syno-HAHA / pGEX-5X-1. This BL21 is cultured in LB medium containing 0.1 mg / ml ampicillin, 0.1 mM isopropylthio-β-D-galactoside (IPTG) is added, and further cultured at 30 ° C. for 3 hours, GST at the N-terminus and HA at the C-terminus Expression of fused Synoviolin (GST-Synoviolin-HAHA) protein was induced. BL21 collected by centrifugation was washed with PBS, digested with 1 mg / ml lysozyme, and solubilized with 0.1% TritonX-100. A BL21-derived protein suspension containing solubilized GST-synoviolin-HAHA protein is applied to glutathione sepharose 4B (GS4B), washed with PBS, and the target GST is obtained with 50 mM reduced glutathione / Tris-HCl (pH 8.0). -Synoviolin-HAHA protein was purified.

発現の確認は、50mM還元型グルタチオン溶出画分をPBSで200倍、2000倍希釈し、25mM Tris-HCl（pH6.8）、0.25% sodium dodecyl sulfate（SDS）、0.05%メルカプトエタノール、0.1%グリセロールで処理した後、8% SDS polyacrylamide電気泳動（SDS-PAGE）に適用した。SDS-PAGE後、GST-シノビオリン-HAHAタンパク質は、エレクトロブロッティング法によりナイロン膜に転写した。このナイロン膜は、5%スキンミルクを含むPBSで室温、60分ブロッキングを行い、0.5%スキムミルクを含むPBSで400倍に希釈した抗HAモノクローナル抗体（Boehringer mannheim社）で室温、60分免疫反応させた。反応後、0.1% Tween20/PBSで洗浄し、horse radish peroxidase（HRP）標識マウスIgG抗体を2次抗体として室温で60分免疫反応させ、0.1% Tween20/PBSで洗浄し、HRP活性を検出することにより目的抗原を検出した。HRP活性の検出にはECLキット（Amersham社）を用いた（Clinical Chemistry. 25, p1531, 1979）。結果を図２に示した。上記GST-シノビオリン-HAHA融合タンパク質の分子量サイズから、シノビオリンタンパク質の分子量は約80kDaと推測された。 For confirmation of expression, the 50 mM reduced glutathione elution fraction was diluted 200-fold and 2000-fold with PBS, 25 mM Tris-HCl (pH 6.8), 0.25% sodium dodecyl sulfate (SDS), 0.05% mercaptoethanol, 0.1% glycerol. And then applied to 8% SDS polyacrylamide electrophoresis (SDS-PAGE). After SDS-PAGE, GST-Synoviolin-HAHA protein was transferred to a nylon membrane by electroblotting. This nylon membrane was blocked with PBS containing 5% skin milk for 60 minutes at room temperature, and then immunoreacted with anti-HA monoclonal antibody (Boehringer mannheim) diluted 400 times with PBS containing 0.5% skim milk at room temperature for 60 minutes. It was. After the reaction, wash with 0.1% Tween20 / PBS, immunoreact with horse radish peroxidase (HRP) -labeled mouse IgG antibody as a secondary antibody for 60 minutes at room temperature, wash with 0.1% Tween20 / PBS, and detect HRP activity Was used to detect the target antigen. An ECL kit (Amersham) was used for detection of HRP activity (Clinical Chemistry. 25, p1531, 1979). The results are shown in FIG. From the molecular weight size of the GST-synoviolin-HAHA fusion protein, the molecular weight of the synoviolin protein was estimated to be about 80 kDa.

［実施例５］ in vitroにおける全長シノビオリン組み換えタンパク質の発現
シノビオリン遺伝子（配列番号：１）の末端を制限酵素EcoRI修飾し、pBluescript II KSベクターに挿入した（syno/pBluescript）。その後、syno/pBluescript（1μg）とTNT-coupled Translation System（Promega社）を用いin vitro translation法により、シノビオリンタンパク質を試験管内で[³⁵S]ラベル体として発現させた。[³⁵S]ラベルしたシノビオリンタンパク質は、10% SDS-PAGEに適用しイメージアナライザー（BAS2000, Fujix）により放射活性を検出した。結果を図３に示した。シノビオリン遺伝子から試験管内で翻訳されるシノビオリンタンパク質のSDS-PAGEによる分子量は、約80kDaであることが認められた。 [Example 5] Expression of full-length synoviolin recombinant protein in vitro The end of the synoviolin gene (SEQ ID NO: 1) was modified with restriction enzyme EcoRI and inserted into a pBluescript II KS vector (syno / pBluescript). Thereafter, synoviolin protein was expressed as a [ ³⁵ S] -labeled body in a test tube by in vitro translation method using syno / pBluescript (1 μg) and TNT-coupled Translation System (Promega). [ ³⁵ S] -labeled Synoviolin protein was applied to 10% SDS-PAGE, and radioactivity was detected by an image analyzer (BAS2000, Fujix). The results are shown in FIG. The molecular weight of the Synoviolin protein translated in vitro from the Synoviolin gene by SDS-PAGE was found to be about 80 kDa.

［実施例６］ノーザンブロッティング法によるシノビオリン遺伝子の発現確認
実施例１で得られたRA患者由来の滑膜細胞、A549細胞株、Jurkat細胞株そしてHeLa細胞株より常法に従いmRNAを採取した。このmRNA 1μgを1%アガロースゲル電気泳動で分離し、ナイロン膜にコンタクトブロッティング法で転写した。ナイロン膜を80℃、2時間処理し、デンハルト液中で42℃、2時間のプレハイブリダイゼイションを行った。次いで³²P放射ラベルしたシノビオリンのcDNA（1799bp; 配列番号：１の1233-3031番）をプローブとして42℃、12時間ハイブリダイズさせた。反応後のナイロン膜を300mM NaCl、30mM sodium citrateで洗浄後、15mM NaCl、1.5mM sodium citrateを使って50℃で再度洗浄を行った。目的のmRNAはX線フィルムを感光させることにより検出した。この結果得られたオートラジオグラフを図４に示した。シノビオリン遺伝子が、RA患者由来滑膜細胞に強く発現していることを認めた。 [Example 6] Confirmation of Synoviolin Gene Expression by Northern Blotting Method mRNA was collected from RA patient-derived synovial cells, A549 cell line, Jurkat cell line and HeLa cell line obtained in Example 1 according to a conventional method. 1 μg of this mRNA was separated by 1% agarose gel electrophoresis, and transferred to a nylon membrane by contact blotting. The nylon membrane was treated at 80 ° C. for 2 hours, and prehybridization was performed in Denhardt's solution at 42 ° C. for 2 hours. Next, ³² P radiolabeled Synoviolin cDNA (1799 bp; 1233-3031 of SEQ ID NO: 1) was used as a probe for hybridization at 42 ° C. for 12 hours. The nylon membrane after the reaction was washed with 300 mM NaCl and 30 mM sodium citrate, and then washed again at 50 ° C. with 15 mM NaCl and 1.5 mM sodium citrate. The target mRNA was detected by exposing the X-ray film. The autoradiograph obtained as a result is shown in FIG. The synoviolin gene was strongly expressed in RA patient-derived synovial cells.

［実施例７］ウエスタンブロッティング法による各種細胞におけるシノビオリンの発現確認
以下の細胞を試料として、シノビオリンの発現状態をウエスタンブロッティング法で確認した。
・実施例１で調製したRA患者由来の滑膜細胞
・ヒト臍帯血管内皮細胞（HUVEC）
・HEK（human embryonic kidney）-293T
・実施例３で調製したGST-部分シノビオリン融合タンパク質（陽性コントロール） [Example 7] Confirmation of Synoviolin Expression in Various Cells by Western Blotting Method Using the following cells as samples, the expression state of synoviolin was confirmed by Western blotting method.
-Synovial cells derived from RA patients prepared in Example 1-Human umbilical cord vascular endothelial cells (HUVEC)
・ HEK (human embryonic kidney) -293T
-GST-partial synoviolin fusion protein prepared in Example 3 (positive control)

まず試料とする各種細胞から、1%NP-40で可溶化した細胞溶解液を調製した。各細胞溶解液は25mM Tris-HCl（pH6.8）、0.25% sodium dodecyl sulfate（SDS）、0.05%メルカプトエタノール、0.1%グリセロールで処理し、8% SDS polyacrylamide電気泳動（SDS-PAGE）により分離した。SDS-PAGE後各種細胞由来タンパク質は、エレクトロブロッティング法によりニトロセルロース（NC）膜に転写した。このNC膜に対し、抗滑膜細胞抗血清を、2.0mg/mLのGST-部分シノビオリン融合タンパク質と5%スキムミルクを加えた Tris buffered saline（TBS）で1000倍に希釈して室温で60分免疫反応させた。また、陰性コントロールとして同じ抗体溶液をNC膜と反応させる実験、あるいは抗体溶液中のGST-部分シノビオリン融合タンパク質をGSTのみに代えた実験を同時に行った。反応後のNC膜を 0.1% Tween20/TBSで洗浄し、horse radish peroxidase（HRP）標識抗ウサギIgG抗体を２次抗体として室温で60分免疫反応させ、0.1% Tween20/TBSで洗浄し、HRP活性を検出することにより目的抗原を検出した。HRP活性の検出にはECLキット（Amersham社）を用いた（Clinical Chemistry, 25, p1531, 1979）。結果を図５に示した。 First, a cell lysate solubilized with 1% NP-40 was prepared from various cells as samples. Each cell lysate was treated with 25 mM Tris-HCl (pH 6.8), 0.25% sodium dodecyl sulfate (SDS), 0.05% mercaptoethanol, 0.1% glycerol and separated by 8% SDS polyacrylamide electrophoresis (SDS-PAGE). . After SDS-PAGE, various cell-derived proteins were transferred to a nitrocellulose (NC) membrane by electroblotting. This NC membrane is immunized for 60 minutes at room temperature with anti-synovial cell antiserum diluted 1000-fold with Tris buffered saline (TBS) supplemented with 2.0 mg / mL GST-partial synoviolin fusion protein and 5% skim milk. Reacted. Further, as a negative control, an experiment in which the same antibody solution was reacted with an NC membrane, or an experiment in which the GST-partial synoviolin fusion protein in the antibody solution was replaced with GST alone was simultaneously performed. After the reaction, the NC membrane was washed with 0.1% Tween20 / TBS, and a horseradish peroxidase (HRP) -labeled anti-rabbit IgG antibody was used as a secondary antibody for 60 minutes at room temperature, washed with 0.1% Tween20 / TBS, and HRP activity The target antigen was detected by detecting. An ECL kit (Amersham) was used to detect HRP activity (Clinical Chemistry, 25, p1531, 1979). The results are shown in FIG.

コントロール実験（図５;+GST）においてRA患者由来滑膜細胞に検出され、HUVECおよびHEK-293T細胞に検出されない220kDaタンパク質に対する抗滑膜細胞抗血清の免疫反応をGST-部分シノビオリンは阻害し、約140kDaタンパク質、ならびに185kDaタンパク質に対する免疫反応も一部阻害した（図５;+GST-部分シノビオリン）。 GST-partial synoviolin inhibits the immune response of anti-synovial cell antiserum against a 220 kDa protein that is detected in RA patient-derived synovial cells but not in HUVEC and HEK-293T cells in a control experiment (FIG. 5; + GST) The immune response against the approximately 140 kDa protein as well as the 185 kDa protein was also partially inhibited (FIG. 5; + GST-partial synoviolin).

220kDa以外のバンドで観察された反応性は、他の抗体との反応性をもとにフィブロネクチン（分子量約240kDa）、あるいはラミニンのサブユニット（分子量約200kDa）等と推測され、この実験の結果に基づけばシノビオリンの分子量は約220kDaであることが推測された。しかしながら、実施例５で確認したシノビオリンの分子量は約80kDaである。両者の差から、シノビオリンがSDSでは解離しない多量体構造をとっている可能性が考えられた。 The reactivity observed in bands other than 220 kDa was estimated to be fibronectin (molecular weight about 240 kDa) or laminin subunits (molecular weight about 200 kDa) based on the reactivity with other antibodies. Based on this, the molecular weight of Synoviolin was estimated to be about 220 kDa. However, the molecular weight of Synoviolin confirmed in Example 5 is about 80 kDa. From the difference between the two, it is possible that Synoviolin has a multimeric structure that does not dissociate in SDS.

［実施例８］ウエスタンブロッティング法によるRA患者由来滑膜細胞におけるシノビオリンタンパク質の発現確認
実施例１で調製したRA患者由来の滑膜細胞を 1% NP-40で可溶化した細胞破砕画分を調製した。この滑膜細胞破砕液は、25mM Tris-HCl（pH6.8）、0.25%sodium dodecyl sulfate（SDS）、0.05%メルカプトエタノール、0.1%グリセロールで処理し、8% SDS polyacrylamide電気泳動（SDS-PAGE）により分離した。SDS-PAGE後、滑膜細胞由来タンパク質は、エレクトロブロッティング法によりニトロセルロース（NC）膜に転写した。このNC膜に対し、5%スキンミルクを加えた Tris buffered saline（TBS）で室温、1時間ブロッキングした後、RA患者由来滑膜細胞を免疫し得られた抗滑膜細胞抗血清（図中の免疫後）を5%スキンミルクを加えたTBSで1000倍希釈して室温、1時間免疫反応させた。同時に、ウサギに滑膜細胞を免疫する前に採取した血清（プレイミューン）を陰性コントロールとして用いた。反応後のNC膜を0.1% Tween20/TBSで洗浄し、horse radish peroxidase（HRP）標識抗ウサギIgG抗体を2次抗体として室温、1時間免疫反応させ、0.1% Tween20/TBSで洗浄し、HRP活性を検出することにより目的抗原を検出した。HRP活性の検出にはECLキット（Amersham社）を用いた（Clinical Chemistry. 25, p1531, 1979）。結果を図６に示した。 [Example 8] Confirmation of expression of synoviolin protein in RA patient-derived synovial cells by Western blotting Preparation of cell disruption fraction in which RA patient-derived synovial cells prepared in Example 1 were solubilized with 1% NP-40 did. This synovial cell lysate was treated with 25 mM Tris-HCl (pH 6.8), 0.25% sodium dodecyl sulfate (SDS), 0.05% mercaptoethanol, 0.1% glycerol, and 8% SDS polyacrylamide electrophoresis (SDS-PAGE). Separated by. After SDS-PAGE, the synovial cell-derived protein was transferred to a nitrocellulose (NC) membrane by electroblotting. After blocking this NC membrane with Tris buffered saline (TBS) with 5% skin milk for 1 hour at room temperature, anti-synovial cell antiserum obtained by immunizing RA patient-derived synoviocytes (in the figure) After immunization) was diluted 1000 times with TBS supplemented with 5% skin milk and allowed to undergo an immunoreaction for 1 hour at room temperature. At the same time, sera collected before immunizing rabbits with synovial cells (prey mues) were used as negative controls. After the reaction, the NC membrane was washed with 0.1% Tween20 / TBS, and a horseradish peroxidase (HRP) -labeled anti-rabbit IgG antibody was used as a secondary antibody for 1 hour at room temperature, washed with 0.1% Tween20 / TBS, and HRP activity The target antigen was detected by detecting. An ECL kit (Amersham) was used for detection of HRP activity (Clinical Chemistry. 25, p1531, 1979). The results are shown in FIG.

［実施例９］免疫染色法による各種細胞や滑膜組織におけるシノビオリンの発現確認
免疫染色法は、滑膜細胞を常法に従いスライドガラス上に固定し、実施例１の抗滑膜細胞抗血清を用いた免疫染色を行った。1% 牛血清アルブミン（BSA）で30分ブロッキングを行った標本に、1%BSAで100倍希釈した抗滑膜細胞抗血清を室温で60分免疫反応させた。また抗血清による観察とともに、この抗血清から精製した精製抗滑膜細胞抗体を用いた実験も行った。精製抗滑膜細胞抗体は、GST-部分シノビオリン融合タンパク質をリガンドとしてイムノアフィニティ精製することにより調製した。リガンドには、配列番号：１の1233-3031番までのシノビオリン遺伝子1799bp挿入したGST-融合タンパク質発現ベクターpGEX-5X-3をBL21に導入後発現させた融合タンパク質を用い、グルタチオンセファロースカラムをファルマシア社の方法により作製してGST-部分syno-GSカラムとした。精製抗滑膜細胞抗体を用いる場合のコントロールには、GSTをリガンドとして同じように抗血清をイムノアフィニティ精製して得た抗GST抗体を用いた。 Example 9 Confirmation of Synoviolin Expression in Various Cells and Synovial Tissues by Immunostaining Method In immunostaining method, synoviocytes are fixed on a slide glass according to a conventional method, and the anti-synovial cell antiserum of Example 1 is used. The used immunostaining was performed. A sample that had been blocked with 1% bovine serum albumin (BSA) for 30 minutes was immunoreacted with an anti-synovial cell antiserum diluted 100-fold with 1% BSA at room temperature for 60 minutes. In addition to observation with antiserum, experiments were also conducted using purified anti-synovial cell antibodies purified from this antiserum. A purified anti-synovial cell antibody was prepared by immunoaffinity purification using GST-partial synoviolin fusion protein as a ligand. As a ligand, a fusion protein in which a GST-fusion protein expression vector pGEX-5X-3 inserted with 1799 bp of the synoviolin gene of SEQ ID NO: 1 up to 1233-3031 was introduced into BL21 and expressed was used, and a glutathione sepharose column was used by Pharmacia Thus, a GST-partial syno-GS column was prepared. In the case of using a purified anti-synovial cell antibody, an anti-GST antibody obtained by immunoaffinity purification of antiserum in the same manner using GST as a ligand was used.

反応後の標本をPBSで洗浄後、fluorescein isothiocyanate標識抗ウサギIgG抗体を２次抗体として免疫反応させた。抗滑膜細胞抗血清に免疫反応する抗原の確認は、共焦点レーザー顕微鏡で行った。結果を図７に示した。本抗血清はRA患者由来滑膜細胞に強く免疫反応することが認められ、この免疫反応は実施例３で作製したGST-部分シノビオリン融合タンパク質によって阻害されることが確認できた（図７上段）。更にこの抗血清から精製した精製抗滑膜細胞抗体では、免疫反応が更に強まり強陽性となることも確認できた（図７下）。 After the reaction, the specimen was washed with PBS, and immunoreacted with a fluorescein isothiocyanate-labeled anti-rabbit IgG antibody as a secondary antibody. Confirmation of the antigen immunoreactive with the anti-synovial cell antiserum was performed with a confocal laser microscope. The results are shown in FIG. This antiserum was observed to strongly immunoreact with RA patient-derived synovial cells, and it was confirmed that this immune reaction was inhibited by the GST-partial synoviolin fusion protein prepared in Example 3 (upper part of FIG. 7). . Furthermore, it was confirmed that the purified anti-synovial cell antibody purified from this antiserum further strengthened the immune reaction and became strongly positive (bottom of FIG. 7).

RA患者由来滑膜組織の染色は、常法に従い滑膜組織をスライドガラス上に固定して行った。1% BSAで30分ブロッキングした標本に対して、1% BSAで100倍希釈した抗滑膜細胞抗血清を室温で60分間免疫反応させた。反応後の標本をPBSで洗浄し、HRP標識抗ウサギIgG抗体を２次抗体として免疫反応させた。抗滑膜細胞抗血清に免疫反応する抗原は、HRP活性に基づく 3,3'-ジアミノベンジジン四塩酸塩の発色により確認した。前述のウエスタンブロッティング法と同様にして、GST-部分シノビオリン融合タンパク質を用いた抗滑膜細胞抗血清吸収試験を滑膜組織染色に対して行った。GST-部分シノビオリン融合タンパク質を2.0mg/mLあるいはGST（2.0mg/mL）を抗滑膜細胞抗血清に加え組織染色を行った。結果は図８に示した。コントロールで認められた抗滑膜細胞抗血清の滑膜組織に対する染色性は、GST-部分シノビオリン融合タンパク質により弱められることが認められた（図８）。加えて上記GST-部分Syno-GSからの精製抗体を使った滑膜組織に対する免疫染色は、GST-GSから得られた抗体と比較し、強陽性に反応することが認められた（図９）。
ウエスタンブロッティング法（実施例８）および免疫染色法の結果より、抗滑膜細胞抗血清が認識するシノビオリンタンパク質はRA患者由来滑膜細胞及び滑膜組織に発現していることが確認された。 The RA patient-derived synovial tissue was stained by fixing the synovial tissue on a glass slide according to a conventional method. A sample blocked with 1% BSA for 30 minutes was immunoreacted with anti-synovial cell antiserum diluted 100-fold with 1% BSA at room temperature for 60 minutes. The sample after the reaction was washed with PBS and immunoreacted with HRP-labeled anti-rabbit IgG antibody as a secondary antibody. Antigens that immunoreact with anti-synovial cell antiserum were confirmed by color development of 3,3′-diaminobenzidine tetrahydrochloride based on HRP activity. In the same manner as the Western blotting method described above, an anti-synovial cell antiserum absorption test using GST-partial synoviolin fusion protein was performed on synovial tissue staining. Tissue staining was performed by adding 2.0 mg / mL of GST-partial synoviolin fusion protein or GST (2.0 mg / mL) to anti-synovial cell antiserum. The results are shown in FIG. It was observed that the staining property of the anti-synovial cell antiserum observed in the control to the synovial tissue was weakened by the GST-partial synoviolin fusion protein (FIG. 8). In addition, immunostaining for synovial tissue using the purified antibody from the GST-partial Syno-GS was found to react strongly positively compared with the antibody obtained from GST-GS (FIG. 9). .
From the results of Western blotting (Example 8) and immunostaining, it was confirmed that the synoviolin protein recognized by the anti-synovial cell antiserum is expressed in RA patient-derived synovial cells and synovial tissue.

［実施例１０］ RA患者血清中抗シノビオリン抗体の存在
GST-部分シノビオリン融合タンパク質を抗原として、ウエスタンブロッティング法によってRA患者血清中の抗シノビオリン抗体の検出を試みた。実施例７と同様の操作により、まずGST-部分シノビオリン融合タンパク質（100ng/lane）をSDS-PAGEにより泳動し、NC膜に転写した。１次抗体としてRA患者血清（５例）を Tris buffered saline（TBS）で1000倍希釈し、GST-部分シノビオリン融合タンパク質を転写したNC膜に対して室温で60分免疫反応させた。0.1% Tween20/TBSでNC膜を洗浄した後HRP標識抗ヒトIgG抗体を２次抗体として室温で60分免疫反応させ、0.1% Tween20/TBSで洗浄し、HRP活性を検出することにより目的抗原と反応したヒトIgGを検出した。HRP活性の検出は実施例７と同様に行った。結果を図１０に示した。RA患者の血清中（５例中５例）にはGST-部分シノビオリン融合タンパク質に対する抗IgG抗体が存在することが認められた（図１０）。一方、変形性関節症（OA）患者由来血清及び正常ヒト血清中にはGST-部分シノビオリンを認識する抗体は認められなかった。 [Example 10] Presence of anti-synoviolin antibody in serum of RA patients
We tried to detect anti-sinoviolin antibodies in serum of RA patients by Western blotting using GST-partial synoviolin fusion protein as an antigen. By the same operation as in Example 7, first, a GST-partial synoviolin fusion protein (100 ng / lane) was electrophoresed by SDS-PAGE and transferred to an NC membrane. RA patient serum (5 cases) as a primary antibody was diluted 1000 times with Tris buffered saline (TBS) and immunoreacted at room temperature for 60 minutes against an NC membrane to which a GST-partial synoviolin fusion protein was transferred. After washing the NC membrane with 0.1% Tween20 / TBS, an HRP-labeled anti-human IgG antibody was used as a secondary antibody for 60 minutes at room temperature, washed with 0.1% Tween20 / TBS, and detected for HRP activity. Reacted human IgG was detected. Detection of HRP activity was performed in the same manner as in Example 7. The results are shown in FIG. It was confirmed that anti-IgG antibody against GST-partial synoviolin fusion protein was present in the serum of RA patients (5 out of 5 cases) (FIG. 10). On the other hand, no antibody recognizing GST-partial synoviolin was found in sera from osteoarthritis (OA) patients and normal human serum.

［実施例１１］発現ライブラリーのスクリーニングによるシノビオリンリガンドの同定
実施例２で作製したRA患者滑膜細胞由来のcDNA発現ライブラリーを用いて、シノビオリンリガンドのスクリーニングを行った（竹縄忠臣、渡邉俊樹編、バイオマニュアルUPシリーズ"タンパク質の分子間相互作用実験法"、pp. 66-67、羊土社; Kaelin, W. G. et al., Cell 70, 351-364, 1992; Skolnik, E. Y. et al., Cell 65, 83-90, 1991; Sambrook, J. et al., Molecular Cloning, a laboratory manual second edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press 12.16-12.20, 1989）。ライブラリーファージを大腸菌（XL1-Blue MRF'）に37℃20分間インキュベートして感染させ、Topアガロースと混和後プレートに広げた。42℃で3.5時間培養後、10mM IPTG に浸漬した後乾燥させたニトロセルロースメンブレンをプレートに載せ、さらに37℃で3.5時間培養を行った。メンブレンを回収後、洗浄バッファー［10mM Tris-HCl (pH8.0), 0.5% Skim milk, 0.1% TritonX-100, 150mM NaCl, 1mM EDTA, 5mM MgCl₂, 1mM DTT, protease inhibitor（complete, Boehringer Mannheim社）］で5分間の洗浄を5回行った後、ブロッキングバッファー［10mM Tris-HCl (pH8.0), 5% Skim milk, 0.1% Triton X-100, 150mM NaCl, 1mM EDTA, 5mM MgCl₂, 1mM DTT, 5% glycerol, protease inhibitor（complete, Boehringer Mannheim社）］に1時間浸漬した。洗浄バッファーで5分間の洗浄を5回行った後、プロテインキナーゼAで ³²Pラベルした GST-シノビオリン（実施例３で精製した GST-部分シノビオリン融合タンパク質）をプローブとして加え（約10⁶ cpm/ml）、インキュベートした。メンブレン1枚のカウントが約1kcpmになるまで洗浄バッファーを変えながら洗浄を繰り返し、オートラジオグラフィーによりシグナルを検出した。その結果、シノビオリンに結合するクローンが得られた。このクローンをシノビオリンリガンド（SL）と名付けた。 [Example 11] Identification of Synoviolin Ligand by Screening Expression Library Using the cDNA expression library derived from RA patient synoviocytes prepared in Example 2, screening for synoviolin ligand was performed (Tadaomi Takenori, Toshiki Watanabe). Ed., Biomanual UP series "Experimental method for intermolecular interaction of proteins", pp. 66-67, Yodosha; Kaelin, WG et al., Cell 70, 351-364, 1992; Skolnik, EY et al., Cell 65, 83-90, 1991; Sambrook, J. et al., Molecular Cloning, a laboratory manual second edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press 12.16-12.20, 1989). The library phage was infected with E. coli (XL1-Blue MRF ′) by incubation at 37 ° C. for 20 minutes, mixed with Top agarose and spread on a plate. After culturing at 42 ° C. for 3.5 hours, a nitrocellulose membrane immersed in 10 mM IPTG and dried was placed on a plate and further cultured at 37 ° C. for 3.5 hours. After recovering the membrane, wash buffer [10 mM Tris-HCl (pH 8.0), 0.5% Skim milk, 0.1% TritonX-100, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 5 mM MgCl ₂ , 1 mM DTT, protease inhibitor (complete, Boehringer Mannheim )] For 5 minutes, then blocking buffer [10 mM Tris-HCl (pH 8.0), 5% Skim milk, 0.1% Triton X-100, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 5 mM MgCl ₂ , 1 mM] DTT, 5% glycerol, protease inhibitor (complete, Boehringer Mannheim)]] was soaked for 1 hour. After washing with washing buffer for 5 minutes 5 times, ³² P-labeled GST-synoviolin (GST-partial synoviolin fusion protein purified in Example 3) was added as a probe (about 10 ⁶ cpm / ml). ) And incubated. Washing was repeated while changing the washing buffer until the count of one membrane reached about 1 kcpm, and the signal was detected by autoradiography. As a result, clones that bind to Synoviolin were obtained. This clone was named Synoviolin ligand (SL).

SLのcDNAについて、その5'末端付近の100bp、ならびに3'末端付近の100bpについて塩基配列を決定した。得られた塩基配列情報を基にデータベースの検索を行ったところ、末端部分の100bpにおいてはS1-5［Lecka-Czernik, B. et al., Molecular and Cellular Biology, 15, 120-128, 1995; accession number U03877 (cDNA), AAA65590 (protein)、"EFEMP1"とも呼ばれる: Stone, E. M. et al., Nature Genetics 22, 199-202, 1999; accession number Q12805 (protein)］と呼ばれる公知の遺伝子と共通の配列であることが明らかとなった。両者の遺伝子とその翻訳産物の大きさはほぼ同じであり、同一のタンパク質であることが示唆された。 Regarding the cDNA of SL, the nucleotide sequence was determined for 100 bp near the 5 ′ end and 100 bp near the 3 ′ end. When the database was searched based on the obtained nucleotide sequence information, S1-5 [Lecka-Czernik, B. et al., Molecular and Cellular Biology, 15, 120-128, 1995; accession number U03877 (cDNA), AAA65590 (protein), also called "EFEMP1": Stone, EM et al., Nature Genetics 22, 199-202, 1999; accession number Q12805 (protein)] It became clear that it was a sequence. Both genes and their translation products are almost the same size, suggesting that they are the same protein.

［実施例１２］ノーザンブロッティング法によるSL遺伝子の発現
実施例６と同様に各種細胞よりmRNAを採取し、実施例１１で得られたSLのcDNAをプローブとしてノーザンブロッティング法を行った。用いた細胞は以下のとおりである。RA患者由来滑膜細胞は、SL遺伝子を強発現していることが認められた（図１１）。
HEK-293T
実施例１で調製したRA患者由来の滑膜細胞
A549
HeLa [Example 12] Expression of SL gene by Northern blotting method mRNA was collected from various cells in the same manner as in Example 6, and Northern blotting was performed using the SL cDNA obtained in Example 11 as a probe. The cells used are as follows. RA patient-derived synovial cells were found to strongly express the SL gene (FIG. 11).
HEK-293T
Synovial cells derived from RA patients prepared in Example 1
A549
HeLa

［実施例１３］シノビオリンとSLの結合
SL cDNAを実施例３と同様にpGEXベクターに挿入し、GST-SL融合タンパク質を作製し、10% SDS-PAGEにGST-SL（500ng）、コントロールとしてGST（1μg）を適用した。SDS-PAGE後、エレクトロブロッティング法によりナイロン膜に転写した。このナイロン膜を、6M guanidine hydrochrolide、5mM 2-Mercaptoethanolを含む50mM Tris-HCl（pH8.0）で1時間、室温で変性させ、5mM 2-Mercaptoethanol、0.05% Tween20を含む50mM Tris-HCl（pH8.0）で4℃、一晩再生した。再生されたナイロン膜は、Blocking buffer［10mM Tris-HCl (pH8.0), 5% Skim milk, 0.1% Triton X-100, 150mM NaCl, 1mM EDTA, 5mM MgCl₂, 1mM DTT, 5% glycerol, protease inhibitor（complete, Boehringer Mannheim社）］で処理し、Blocking buffer（0.5% skim milk以外は上記と同じ組成)で洗浄した。その後、TNT-coupled Translation System（Promega社）及びpcDNA3-HA-シノビオリン-HAHA（配列番号：１のシノビオリンcDNA 1851bp;60-1910にHA-tagを付加したシノビオリンcDNAを発現ベクターpcDNA3に挿入した）を用い、in vitro translationを行い[³⁵S]ラベルしたHA-シノビオリン-HAHA融合タンパク質（[³⁵S]HA-シノビオリン-HAHA）をプローブとして用いナイロン膜上のGST-SL及びGSTと室温で2時間反応させた。そのナイロン膜は、10mM Tris-HCl (pH8.0), 0.5% Skim milk, 0.1% TritonX-100, 150mM NaCl, 1mM EDTA, 5mM MgCl₂, 1mM DTT, protease inhibitor（complete, Boehringer Mannheim社）で洗浄し、イメージアナライザー（BAS2000, Fujix）で放射活性を検出した。ナイロン膜に転写されたGST-SL融合タンパク質と[³⁵S]HA-シノビオリン-HAHAは、両者の結合が観察された。またコントロールであるGSTと[³⁵S]HA-シノビオリン-HAHAとの結合は認められなかった（図１２）。この結果から、シノビオリンとSLは、タンパク質の相互作用により結合することが推測された。 [Example 13] Binding of Synoviolin and SL
SL cDNA was inserted into the pGEX vector in the same manner as in Example 3 to prepare a GST-SL fusion protein, and GST-SL (500 ng) was applied to 10% SDS-PAGE, and GST (1 μg) was applied as a control. After SDS-PAGE, it was transferred to a nylon membrane by electroblotting. This nylon membrane was denatured with 50 mM Tris-HCl (pH 8.0) containing 6 M guanidine hydrochrolide and 5 mM 2-Mercaptoethanol for 1 hour at room temperature, and 50 mM Tris-HCl (pH 8.5 containing 5 mM 2-Mercaptoethanol, 0.05% Tween20). 0) at 4 ° C. overnight. Regenerated nylon membrane, Blocking buffer [10mM Tris-HCl (pH8.0), 5% Skim milk, 0.1% Triton X-100, 150mM NaCl, 1mM EDTA, 5mM MgCl 2, 1mM DTT, 5% glycerol, protease Inhibitor (complete, Boehringer Mannheim)] and washed with Blocking buffer (same composition as above except 0.5% skim milk). After that, TNT-coupled Translation System (Promega) and pcDNA3-HA-Synoviolin-HAHA (Synoviolin cDNA of SEQ ID NO: 1 1851bp; Synoviolin cDNA with HA-19 added to 60-1910 was inserted into the expression vector pcDNA3) In vitro translation and [ ³⁵ S] -labeled HA-Synoviolin-HAHA fusion protein ([ ³⁵ S] HA-Synoviolin-HAHA) as a probe reacted with GST-SL and GST on nylon membrane for 2 hours at room temperature I let you. The nylon membrane is washed with 10 mM Tris-HCl (pH 8.0), 0.5% Skim milk, 0.1% TritonX-100, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 5 mM MgCl ₂ , 1 mM DTT, protease inhibitor (complete, Boehringer Mannheim) The radioactivity was detected with an image analyzer (BAS2000, Fujix). The binding between the GST-SL fusion protein and [ ³⁵ S] HA-synoviolin-HAHA transferred to the nylon membrane was observed. In addition, binding between GST as a control and [ ³⁵ S] HA-Synoviolin-HAHA was not observed (FIG. 12). From this result, it was speculated that Synoviolin and SL were bound by protein interaction.

また実施例１４では、シノビオリンによる培養物中のシノビオリンリガンドの中和を通じて滑膜細胞の増殖が阻害されることを示唆する結果が得られている。これらの結果に基づいて、SLのシノビオリン結合部位に相当する構造を持ったSLの変異体は、シノビオリン-SL間の結合に対する拮抗阻害作用によって滑膜細胞の増殖を抑制する作用を持つ可能性が考えられる。更に、シノビオリンのSL結合部位に相当する構造を持ったシノビオリン変異体についても、SL変異体と同様の拮抗阻害作用を期待できる可能性が有る。 Moreover, in Example 14, the result which suggests that the proliferation of a synovial cell is inhibited through neutralization of the synoviolin ligand in a culture by synoviolin is obtained. Based on these results, SL mutants with a structure corresponding to the synoviolin binding site of SL may have the effect of suppressing synoviocyte proliferation by competitive inhibition of synoviolin-SL binding. Conceivable. Furthermore, the synoviolin mutant having a structure corresponding to the SL binding site of synoviolin may be expected to have the same antagonistic inhibitory action as the SL mutant.

［実施例１４］ MTTアッセイ
実施例１で調製したRA患者由来滑膜細胞を5×10³ cell/wellとなるように 96 well plateを用い調製し、GSTまたはGST-部分シノビオリンを最終濃度0.01〜1μMとなるように細胞上清に添加した。培養３日後 3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2H-tetrazolium bromide (MTT)/PBSを細胞上清に添加し、37℃、5% CO₂ の条件で３時間培養を行った。培養後細胞上清を取り除きdimethyl sulfoxideによりMTT formazanの結晶を溶解し吸光度測定を行った（Journal of Immunological Methods, 65, 55, 1983）。10%-FCS/DMEM、37℃、5% CO₂ の条件下でのRA患者由来滑膜細胞増殖はGST-部分シノビオリン（1μM）によって有意に抑制された（図１３）。 [Example 14] MTT assay The RA patient-derived synovial cells prepared in Example 1 were prepared using a 96-well plate at 5 × 10 ³ cells / well, and GST or GST-partial synoviolin was added at a final concentration of 0.01 to It added to the cell supernatant so that it might become 1 micromol. After 3 days of culture 3- (4,5-dimethyl-2-thiazolyl) -2,5-diphenyl-2H-tetrazolium bromide (MTT) / PBS was added to the cell supernatant, and the conditions were 37 ° C and 5% CO ₂ . The culture was performed for 3 hours. After culturing, the cell supernatant was removed and crystals of MTT formazan were dissolved with dimethyl sulfoxide and the absorbance was measured (Journal of Immunological Methods, 65, 55, 1983). The proliferation of RA patient-derived synoviocytes under conditions of 10% -FCS / DMEM, 37 ° C., 5% CO ₂ was significantly suppressed by GST-partial synoviolin (1 μM) (FIG. 13).

［実施例１５］シノビオリン遺伝子導入マウスの作製
シノビオリン蛋白質をコードするDNAのN末にFlagタグを連結させ、3'側下流にポリA シグナルを結合させたシノビオリン遺伝子導入用ベクターを構築した。ベクターはpCAGGS（Niwa, H. et al., Gene 108: 193-9, 1991）を基にして構築し、プロモーターには、βアクチンプロモーター、エンハンサーには、ヒトサイトメガロウイルス前期エンハンサー（human cytomegalovirus immediate early enhancer）を用いた（図１４）。 [Example 15] Preparation of Synoviolin Gene-Introduced Mice A Synoviolin gene introduction vector was constructed in which a Flag tag was linked to the N-terminus of DNA encoding a Synoviolin protein and a poly A signal was bound downstream of the 3 'side. The vector was constructed based on pCAGGS (Niwa, H. et al., Gene 108: 193-9, 1991). The promoter was β-actin promoter, the enhancer was human cytomegalovirus immediate enhancer (human cytomegalovirus immediate An early enhancer was used (FIG. 14).

シノビオリン遺伝子導入用ベクターは、顕微鏡下でマニピュレーターに接続した微小ガラスピペットを用いマイクロインジェクション法によりマウスの卵細胞に導入した。受精卵の雄性前核にDNAを注入し、注入した操作卵は、精管結紮雄マウスとの交配により偽妊娠を誘起した雌マウス（レシピエントマウス）の卵管内に移植した。移植19日後に自然分娩または帝王切開により仔マウスを得た。帝王切開の場合は、別に準備しておいた雌マウスを里親として仔マウスを哺育させた。各出産仔の尾からDNAを採取し、PCR法を用いて導入遺伝子が保持されていることを確認した。 The vector for introducing a synoviolin gene was introduced into mouse egg cells by a microinjection method using a small glass pipette connected to a manipulator under a microscope. DNA was injected into the male pronucleus of the fertilized egg, and the injected manipulated egg was transplanted into the fallopian tube of a female mouse (recipient mouse) in which pseudopregnancy was induced by mating with a vas deferens male mouse. 19 days after transplantation, pups were obtained by spontaneous delivery or caesarean section. In the case of cesarean section, pups were bred using a female mouse prepared separately as a foster parent. DNA was collected from the tail of each birth and confirmed that the transgene was retained using the PCR method.

その結果、シノビオリン強発現マウスには顕著な関節の腫脹が認められた。シノビオリン遺伝子導入マウスにおける関節症発症率は33％（10匹／30匹）であったことから、関節の腫脹は自然発症的なマウスの奇形（C57B6マウスの水頭症発症率は１％未満）ではなく、シノビオリン分子の関与によるものと考えられる。シノビオリン強発現マウスの左後肢を軟X線撮影した写真を示す（図１５）。 As a result, significant joint swelling was observed in mice with strong synoviolin expression. Since the incidence of arthropathy in Synoviolin transgenic mice was 33% (10/30), joint swelling is not a spontaneous mouse malformation (C57B6 mice have a hydrocephalus incidence of less than 1%) This is probably due to the involvement of Synoviolin molecules. A soft X-ray photograph of the left hind limb of a strong synoviolin-expressing mouse is shown (FIG. 15).

[実施例１６] 関節の組識学的検討
シノビオリン遺伝子導入マウス（1匹）の指関節の組識学的な検討を行った。指関節部分の組識切片をヘマトキシリンエオジン（HE）染色した。ヘマトキシリンエオジン染色は、公知の方法により実施した。
HE染色の結果、関節症を呈した部分においては著しい滑膜増生に伴う骨破壊と異常な骨新生が認められた（図１６）。一方、対照とした遺伝子導入マウスの正常な指関節においては、上記所見は観察されなかった（図１７上）。
また、指関節における抗Flag抗体による免疫染色を行った結果、シノビオリン遺伝子導入マウスにおいては、増生を示した滑膜組織および軟骨細胞にシノビオリンの発現が認められた（図１８）が、遺伝子導入マウスの正常な指関節においては上記所見は観察されなかった（図１７下）。 [Example 16] Tissue histological examination of joints Tissue histological examination of synovioline gene-introduced mice (one mouse) was conducted. Tissue sections of the finger joints were stained with hematoxylin and eosin (HE). Hematoxylin and eosin staining was performed by a known method.
As a result of HE staining, bone destruction accompanying abnormal synovial hyperplasia and abnormal bone formation were observed in the part exhibiting arthropathy (FIG. 16). On the other hand, the above findings were not observed in the normal finger joint of the transgenic mouse as a control (upper part of FIG. 17).
In addition, as a result of immunostaining with anti-Flag antibody in the finger joint, synoviolin expression was observed in the synovial tissue and chondrocytes that showed growth in the synoviolin transgenic mice (FIG. 18). The above findings were not observed in normal finger joints (lower side of FIG. 17).

[実施例１７] ノックアウトマウスの作成
マウスシノビオリン遺伝子断片の翻訳開始点（第一メチオニンを翻訳するATGコドン）にlacZ遺伝子を導入し、ターゲティングベクターを構築した。マーカー遺伝子としてネオマイシン耐性（neo）遺伝子を導入し、またジフテリア毒素A（DT-A）遺伝子も結合させ非相同的な組換えを起こした細胞株を排除できるようにした（図１９）。 [Example 17] Creation of a knockout mouse A lacZ gene was introduced at the translation start point of the mouse synoviolin gene fragment (ATG codon that translates the first methionine) to construct a targeting vector. A neomycin resistance (neo) gene was introduced as a marker gene, and a diphtheria toxin A (DT-A) gene was also linked so that non-homologous recombination cell lines could be excluded (FIG. 19).

このターゲティングベクターをマウスのES細胞 TT-2 にエレクトロポレーションにより導入し相同組み換えを生じた細胞株を選抜した。得られた細胞をマウスの胚胎盤胞または8細胞期胚に注入し直接仮親の卵管に移植するか、一日培養して胚盤胞まで発生したものを仮親の子官に移植した。その後は、トランスジェニック動物の作製と同様の手法により、ノックアウトマウスを作製した。得られたヘテロ変異マウス（F1）同士を交配させ、ヘテロ及びホモ変異マウスを得た。こうして得られた変異マウスにおいては、本来シノビオリンが発現すべき組織で、シノビオリンに代わってLacZタンパク質（β-ガラクトシダーゼ）が発現する。 This targeting vector was introduced into mouse ES cell TT-2 by electroporation to select a cell line in which homologous recombination occurred. The obtained cells were injected into mouse embryo placental cysts or 8-cell stage embryos and transplanted directly into the foster tube of the foster parent, or cells that had been cultured for one day and developed up to the blastocyst were transplanted into the foster parent's cousin. Thereafter, knockout mice were produced by the same method as that for producing transgenic animals. The obtained heterozygous mutant mice (F1) were mated to obtain heterozygous and homozygous mutant mice. In the mutant mice thus obtained, LacZ protein (β-galactosidase) is expressed in place of synoviolin in tissues where synoviolin should be expressed.

遺伝子型はサザンブロット解析により確認した。野生型マウス（１４匹）およびシノビオリンヘテロノックアウトマウス（３２匹）に関しては、生後2週齢ほどのマウスの尾先端3mm程度からDNAを抽出した。シノビオリンホモノックアウトマウスでは、胎生14.5日の胎仔から実体顕微鏡下に尾部および上、下肢の一部を採取し、DNAを抽出した。得られたDNAを制限酵素PstIでDNAを消化したものを用いた。解析結果を図２０に示す。野生型では6.5kbp、ホモ変異マウスでは8.5kbp、ヘテロ変異マウスでは両方の位置にバンドが検出された。 Genotype was confirmed by Southern blot analysis. For wild-type mice (14 mice) and Synoviolin hetero knockout mice (32 mice), DNA was extracted from about 3 mm of the tail tip of mice about 2 weeks old. In synoviolin homo knockout mice, DNA was extracted from the fetus at 14.5 days by collecting the tail, upper and lower limbs under a stereomicroscope. The DNA obtained was digested with the restriction enzyme PstI. The analysis result is shown in FIG. Bands were detected at 6.5 kbp in the wild type, 8.5 kbp in the homozygous mouse, and in both positions in the heterozygous mouse.

シノビオリン遺伝子の発現をノーザンブロッティングにより確認した。野生型、ヘテロノックアウトマウス、およびホモノックアウトマウス（胎生12.5日の胚全体）からmRNAを抽出し、1.2％アガロースゲルの各レーンに20μgずつ電気泳動した。その結果、ホモノックアウトマウス（-/-）ではシノビオリンmRNAは検出されず、ヘテロノックアウトマウス（+/-）では、野生型（+/+）に比べ弱いmRNAの発現が見られた（図２１）。 Synoviolin gene expression was confirmed by Northern blotting. MRNA was extracted from wild-type, hetero knockout mice, and homo knockout mice (embryonic day 12.5 whole embryos), and electrophoresed on each lane of a 1.2% agarose gel at 20 μg. As a result, no synoviolin mRNA was detected in the homo knockout mouse (− / −), and weaker mRNA expression was observed in the hetero knockout mouse (+/−) than in the wild type (+ / +) (FIG. 21). .

[実施例１８] シノビオリン発現部位の検討
実施例１７で得た変異マウスにおけるシノビオリン発現部位をLacZ染色により検討した。すなわち、5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactoside（X-Gal）を用いて胚全体を発色させ、LacZ（β-ガラクトシダーゼ活性として）の発現分布を調べた。観察した胚の数は、３２個である。
その結果、胎生12.5日齢では、頭頂骨および四肢に、13.5日齢では耳および四肢にLacZの強い発現が認められた（図２２）。いずれも骨および軟骨が形成される部位であった。更に四肢形成期における四肢組識切片のLacZ染色およびHE染色を行った結果、Apical Ectodermal Ridge（AER;外胚葉頂堤）および軟骨・骨原基（または軟骨・骨）に強い発現が観察された（図２３）。 Example 18 Examination of Synoviolin Expression Site The synoviolin expression site in the mutant mouse obtained in Example 17 was examined by LacZ staining. That is, the entire embryo was colored using 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactoside (X-Gal), and the expression distribution of LacZ (as β-galactosidase activity) was examined. The number of embryos observed was 32.
As a result, strong expression of LacZ was observed in the parietal bone and limbs at 12.5 days of gestation, and in the ears and limbs at 13.5 days of age (FIG. 22). Both were sites where bone and cartilage were formed. Furthermore, as a result of LacZ staining and HE staining of limb tissue sections during limb formation, strong expression was observed in Apical Ectodermal Ridge (AER) and cartilage / bone primordium (or cartilage / bone). (FIG. 23).

さらに、胎生13日齢の肢芽（limb bud）を取りだし、凍結切片を作製後、ヘマトキシリン・エオジン（HE）染色またLacZ染色を行った。具体的には、凍結切片をPBS(-)で5分、3回洗浄し、X-gal染色液［X-gal (20mg/ml) 1.25ml, HEPES (1M) 2.2ml, フェリシアン化カリウム溶液 (100mM) 1.5ml, NaCl (5M) 150μl, MgCl₂ (1M) 65μl, 10×PBS(-) 5ml をミリQ水（ミリポア）で50mlとしたもの］に切片をのせたスライドグラスを浸し、37℃で反応を開始させた。染色後、エタノールシリーズおよびキシレンで脱水し、封入した。その結果、LacZの青色の染色が、未分化間葉系の細胞（骨・軟骨の原基）に濃染されていた（図２４および２５）。 Further, 13-day-old limb buds were taken out and frozen sections were prepared, followed by hematoxylin-eosin (HE) staining or LacZ staining. Specifically, the frozen section was washed 3 times with PBS (-) for 5 minutes, X-gal staining solution [X-gal (20 mg / ml) 1.25 ml, HEPES (1M) 2.2 ml, potassium ferricyanide solution (100 mM 1.5ml, NaCl (5M) 150μl, MgCl ₂ (1M) 65μl, 10 × PBS (-) 5ml made up to 50ml with Milli-Q water (Millipore)] Soak the slide glass with the section at 37 ° C The reaction was started. After staining, it was dehydrated with an ethanol series and xylene and sealed. As a result, blue staining of LacZ was intensely stained in undifferentiated mesenchymal cells (bone / cartilage primordium) (FIGS. 24 and 25).

[実施例１９] 表現型の検討
更にシノビオリン遺伝子ノックアウトマウスの表現型について検討を行った。
胎生12.5日齢では、ホモはヘテロと比較し、頭頂部から臀部までの長さが短く、頭蓋や四肢の形成が未熟である傾向が認められたが、胎生13日齢ではヘテロと野生型の表現型の間に顕著な差は認められなかった（図２６）。なお、ホモマウスでは出生が認められず、さらに少なくとも胎生17日以降のホモの胎仔の生存が確認できなかったことにより、胎生致死と考えられた（表１）。 [Example 19] Examination of phenotype Further, the phenotype of Synoviolin gene knockout mice was examined.
At 12.5 days of gestation, homo was shorter in length from the top of the head to the buttock than hetero, and the tendency of the formation of the skull and limbs to be immature was observed. There was no significant difference between phenotypes (Figure 26). In addition, the birth was not observed in homozygous mice, and at the same time, the survival of homozygous fetuses at least after embryonic day 17 was not confirmed.

胎生14.5日齢では、ヘテロとホモの間において、頭頂部から臀部までの長さに顕著な差は認められなかった。しかし、ヘテロでは指及び関節が形成されているのに対し、ホモでは形成されず、肢芽異常が認められた（図２７）。
更に、ホモで異常を示した後肢に対しLacZおよびHE染色を行った結果、AER及び未分化間葉系細胞の濃縮部位（将来指骨を形成する部位）にシノビオリンの発現を反映するLacZの発現が認められた（図２８）。 At 14.5 days of gestation, there was no significant difference in length from the top of the head to the buttocks between hetero and homo. However, in hetero, fingers and joints were formed, whereas in hetero, they were not formed, and abnormal limb buds were observed (FIG. 27).
Furthermore, as a result of LacZ and HE staining of the hind limbs that showed abnormalities in homo, LacZ expression reflecting the expression of Synoviolin at the site where AER and undifferentiated mesenchymal cells are concentrated (the site that will form the phalange in the future) It was recognized (FIG. 28).

胎生15.5日齢では、ホモは肢芽、上下顎骨および耳に形態異常を示し、死亡していた（図２９）。更にアルシャンブルーにより軟骨組識、アリザリンレッドにより骨（石灰化）組識の染色を行った。すなわち、マウスの表皮・真皮・内容物を取り除き、固定液（エタノール：過酸化水素水＝９：１）に漬け、その後アルコールシリーズで脱水後、アリザリンレッドおよびアルシャンブルーにより染色し、アルカリ溶液により組識を透明化した。透明化終了後、グリセリン溶液中に保存し染色を観察した。結果、ホモでは軟骨組識（青く染色）、及び骨（石灰化）組識（赤く染色）のいずれも形成が認められなかった（図３０）。
以上の結果より、シノビオリン遺伝子ホモノックアウトマウスは、胎生期において肢芽の発生異常が認められ、また、軟骨及び骨への形成が認められず、肢芽と軟骨、骨の発生部位にシノビオリンの発現が認められたことから、シノビオリン分子の骨格形成への関与が強く考えられた。 At 15.5 days of gestation, homozygos showed morphological abnormalities in limb buds, maxilla and mandible and ears and died (Figure 29). Furthermore, cartilage tissue was stained with Alshan Blue, and bone (calcified) tissue was stained with Alizarin Red. That is, the epidermis, dermis and contents of the mouse are removed, soaked in a fixative (ethanol: hydrogen peroxide solution = 9: 1), dehydrated with an alcohol series, dyed with alizarin red and alshan blue, and combined with an alkaline solution. The knowledge was made transparent. After clearing, it was stored in a glycerin solution and observed for staining. As a result, in the homozygote, neither cartilage tissue (stained blue) or bone (calcification) tissue (stained red) was formed (FIG. 30).
From the above results, synoviolin gene homo-knockout mice showed abnormal development of limb buds in the embryonic period, formation of cartilage and bone was not observed, and expression of synoviolin at the limb bud, cartilage, and bone development sites Therefore, the involvement of Synoviolin molecules in the skeleton formation was strongly considered.

[実施例２０] シノビオリン遺伝子ノックアウトマウスにおける関節炎用カクテル投与
マウスにおけるコラーゲン誘導関節炎（CIA）は、ヒト慢性関節リウマチの関節炎モデルとして広く利用されている。実施例１７で作製したシノビオリン遺伝子ノックアウトマウス（ヘテロ接合体）または野生型マウスに抗コラーゲン抗体カクテルを投与し、惹起される関節炎を観察した。その結果、シノビオリンのヘテロノックアウトマウスでは、野生型に比べ関節炎の惹起が弱いことが判明した（図３１）。この結果からも、シノビオリンがRAにおける関節炎誘発に貢献していることが支持される。 [Example 20] Cocktail administration for arthritis in Synoviolin gene knockout mice Collagen-induced arthritis (CIA) in mice is widely used as an arthritis model for human rheumatoid arthritis. Anti-collagen antibody cocktail was administered to the Synoviolin gene knockout mouse (heterozygote) or wild type mouse prepared in Example 17, and the induced arthritis was observed. As a result, synoviolin hetero-knockout mice were found to be less susceptible to arthritis than the wild type (FIG. 31). This result also supports that Synoviolin contributes to the induction of arthritis in RA.

[実施例２１] シノビオリン遺伝子ノックアウトマウスの胎仔肢芽細胞の初代培養の解析
ノックアウト（KO）マウスより得られた（explant法）細胞のうち、軟骨・骨および肢の原基となると考えられる未分化間葉系細胞にのみLacZ染色、すなわちシノビオリンの発現が認められた。また、胎仔肢芽細胞の初代培養において、LacZ陽性のコロニー（すなわちシノビオリン発現細胞）とアルシャンブルー染色陽性のコロニーは一致しており、さらに双核の典型的な軟骨細胞においてもLacZ（β-ガラクトシダーゼ活性として）の染色（シノビオリンの発現）が見られることから、骨・軟骨分化にシノビオリンが関与していることが支持された。さらにアルカリフォスファターゼ染色、Kossaの染色などにより、骨・軟骨形成能がホモノックアウト由来の細胞では遅延していることが確認された（図３２〜３８）。 [Example 21] Analysis of primary culture of fetal limb blasts of Synoviolin gene knockout mice Undifferentiated cells that are considered to be the primordium of cartilage, bone and limb among cells obtained from knockout (KO) mice (explant method) LacZ staining, ie, synoviolin expression was observed only in mesenchymal cells. In the primary culture of fetal limb blasts, LacZ-positive colonies (ie, synoviolin-expressing cells) and Alshan blue-stained colonies coincide, and LacZ (β-galactosidase activity is also found in typical binuclear chondrocytes. ) (Synoviolin expression) was observed, supporting the involvement of synoviolin in bone / cartilage differentiation. Furthermore, it was confirmed by alkaline phosphatase staining, Kossa staining, and the like that the ability to form bone and cartilage was delayed in cells derived from homo knockout (FIGS. 32 to 38).

Kossa染色は、細胞を洗浄後、硝酸銀溶液（5% w/v）で置換し、蒸留水で軽く洗浄後、チオ硫酸ナトリウム溶液（5% w/v）で還元・定着を行い、洗浄後、ケルンエヒトロート液（0.1% w/v ケルンエヒトロート（ヌクレア・ファストレッド）, 5% w/v 硫酸アルミニウム）で対比染色を行った（関正次, 「組織検査法−組織構造と局所化学−」, 257-258, 杏林書院, 1961; リゾン, L., 今泉正訳, 「組織化学および細胞化学−理論と方法」, 625-636, 白水社, 1962; 佐野豊, 「組織化学研究法−理論と術式」, 616-621, 南山堂, 1965）。アルカリフォスファターゼ活性の検出は、アルカリフォスファターゼ組織染色キット（Sigma, Diagnostic Kits and reagents, alkaline phosphatase (AP), leukocyte, Cat. No. 86-R）により行った。 In Kossa staining, cells are washed, replaced with silver nitrate solution (5% w / v), washed lightly with distilled water, reduced and fixed with sodium thiosulfate solution (5% w / v), washed, Counterstaining was performed with Cologne Echlot funnel (0.1% w / v Cologne Echlotroth (Nuclea Fastred), 5% w / v aluminum sulfate) (Shoji Seki, “Histological Examination-Tissue Structure and Local Chemistry-, 257-258, Kyorin Shoin, 1961; Lizon, L., Masami Imaizumi, "Histochemistry and cytochemistry-Theory and method", 625-636, Shiramizusha, 1962; Yutaka Sano, Histochemical research Law-theory and technique ", 616-621, Nanzan-do, 1965). Detection of alkaline phosphatase activity was performed using an alkaline phosphatase tissue staining kit (Sigma, Diagnostic Kits and reagents, alkaline phosphatase (AP), leukocyte, Cat. No. 86-R).

[実施例２２] シノビオリン遺伝子ノックアウトマウス由来の細胞を用いた被験化合物のアッセイ
シノビオリン遺伝子へテロノックアウトマウス（lacZ遺伝子ノックイン）の初代培養細胞を用いて、被験試料がシノビオリン遺伝子の発現に及ぼす効果をβ-galアッセイにより評価した。３回継代したシノビオリン遺伝子へテロノックアウトマウスの初代培養細胞を24ウェルプレートに1ウェル当たり 0、1×10³、3×10³、1×10⁴、3×10⁴、および 1×10⁵ 細胞播き、10％ウシ胎仔血清を含むダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）中で一晩培養した。まず、無刺激条件のまま細胞培養に細胞溶解液（プロメガ社製）を細胞層が完全に覆われるのに十分な量（100μl/well）加え、培養プレートを振とう機に移し、細胞層が溶解液に常に浸されるように室温で15分ゆっくりと振とうした。 [Example 22] Assay of test compound using cells derived from Synoviolin gene knockout mouse Using primary culture cells of Synoviolin gene heteroknockout mouse (lacZ gene knockin), the effect of the test sample on the expression of Synoviolin gene is expressed in β -Evaluated by gal assay. Synoviolin gene hetero-knockout mice passaged 3 times in a 24-well plate at 0, 1 × 10 ³ , 3 × 10 ³ , 1 × 10 ⁴ , 3 × 10 ⁴ , and 1 × 10 ⁵ per well Cells were seeded and cultured overnight in Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) containing 10% fetal calf serum. First, add a sufficient amount of cell lysate (Promega) to the cell culture under non-stimulated conditions (100 μl / well) to completely cover the cell layer, and transfer the culture plate to a shaker. It was gently shaken for 15 minutes at room temperature so that it was always immersed in the solution.

細胞のβ-ガラクトシダーゼ活性は、次のようにして測定した。得られた細胞抽出液 20μl に、Mg溶液（0.1M MgCl₂, 4.5M β-メルカプトエタノール）を 1μl、ONPG溶液(o-nitrophenyl-β-D-galactopyranoside)（0.1M リン酸緩衝液 (pH7.5)中に 4mg/ml の濃度）を 22μl、および 0.1M リン酸緩衝液 (pH7.5) 57μl を加え、全量を 100μl とした。乾燥しないように注意して、37℃で6時間インキュベートした。150μl の 1M 炭酸ナトリウム（Na₂CO₃ 21.2g を H₂O に溶かして 200 ml にメスアップし、0.45μm フィルターで濾過したもの）を加えて反応を停止させ、420nmの吸光度を測定してβ-ガラクトシダーゼ活性を定量した。実験は３連で行った。その結果、lacZ遺伝子ノックインマウス細胞において細胞数に依存したβ-ガラクトシダーゼ活性が検出された（図３９）。β-ガラクトシダーゼ活性を指標としてプロモーター活性を評価（β-galアッセイ）できることが確認された。 The β-galactosidase activity of the cells was measured as follows. To 20 μl of the obtained cell extract, 1 μl of Mg solution (0.1 M MgCl ₂ , 4.5 M β-mercaptoethanol), ONPG solution (o-nitrophenyl-β-D-galactopyranoside) (0.1 M phosphate buffer (pH 7. 5) was added at a concentration of 4 mg / ml) to 22 μl and 0.1 M phosphate buffer (pH 7.5) 57 μl to make a total volume of 100 μl. Care was taken not to dry, and incubated at 37 ° C. for 6 hours. 150 μl of 1M sodium carbonate (21.2 g of Na ₂ CO ₃ dissolved in H ₂ O, made up to 200 ml, filtered through a 0.45 μm filter) was added to stop the reaction, and the absorbance at 420 nm was measured. -Galactosidase activity was quantified. The experiment was performed in triplicate. As a result, β-galactosidase activity depending on the number of cells was detected in lacZ gene knock-in mouse cells (FIG. 39). It was confirmed that promoter activity can be evaluated (β-gal assay) using β-galactosidase activity as an index.

次に初代培養細胞に各種薬剤を添加して同様のβ-galアッセイを行い、シノビオリンプロモーター活性に対する各種薬剤の影響を評価した。陰性対照として、培地のみを添加して同様の測定を行った。被験薬剤としては、プレドニソロン（Prednisolone）(0.01-1 μM)、および12-O-tetradecanoylphorbol 13-acetate(TPA; 0.001-0.1 μM)を用いた。プレドニソロンはステロイド性抗炎症剤、TPAはプロテインキナーゼCの活性化剤である。 Next, various drugs were added to the primary cultured cells and the same β-gal assay was performed to evaluate the influence of the various drugs on the synoviolin promoter activity. As a negative control, the same measurement was performed with only the medium added. As test drugs, prednisolone (0.01-1 μM) and 12-O-tetradecanoylphorbol 13-acetate (TPA; 0.001-0.1 μM) were used. Prednisolone is a steroidal anti-inflammatory agent and TPA is an activator of protein kinase C.

ウエル当たり5×10⁴ の初代培養細胞を撒き、一晩培養後に上記濃度の各薬剤を添加した。薬剤添加後に７２時間培養して、各ウエルのβ-ガラクトシダーゼ活性を測定しプロモーター活性を評価した。その結果、これらの薬剤により、濃度依存的にシノビオリンプロモーター活性が影響を受けることが判明した（図４０）。すなわち、本発明に基づくアッセイ系によって、薬剤のシノビオリンプロモーターに与える活性を評価しうることが裏付けられた。以上の結果から、このようなアッセイにより、各種の薬剤がシノビオリンプロモーター活性に及ぼす効果を評価することが可能となり、シノビオリンプロモーター活性を促進または抑制する化合物をスクリーニングすることができる。 5 × 10 ⁴ primary cultured cells per well were seeded, and each concentration of each drug was added after overnight culture. After adding the drug, the cells were cultured for 72 hours, and β-galactosidase activity in each well was measured to evaluate the promoter activity. As a result, it was found that the synoviolin promoter activity was affected by these drugs in a concentration-dependent manner (FIG. 40). That is, it was confirmed that the activity of the drug on the synoviolin promoter can be evaluated by the assay system based on the present invention. From the above results, such an assay makes it possible to evaluate the effect of various drugs on the synoviolin promoter activity, and to screen for compounds that promote or suppress the synoviolin promoter activity.

[実施例２３] 抗シノビオリンモノクローナル抗体の作製
シノビオリンに対するモノクローナル抗体を以下のように調製した。免疫用のペプチドとして、以下に示すヒトシノビオリンの部分アミノ酸配列を含む３種類のペプチドを合成した。これらのアミノ酸配列は、抗原性を有すると推測された領域から選択した。
Syno-P3（SLALTGAVVAHAYYC／配列番号：３）、
Syno-P2（TCRMDVLRASLPAQS／配列番号：４）、および
Syno-P1（GAATTTAAGTSATAC／配列番号：５） Example 23 Production of Anti-Synoviolin Monoclonal Antibody A monoclonal antibody against synoviolin was prepared as follows. As peptides for immunization, three types of peptides including the partial amino acid sequence of human synoviolin shown below were synthesized. These amino acid sequences were selected from a region presumed to have antigenicity.
Syno-P3 (SLALTGAVVAHAYYC / SEQ ID NO: 3),
Syno-P2 (TCRMDVLRASLPAQS / SEQ ID NO: 4), and
Syno-P1 (GAATTTAAGTSATAC / SEQ ID NO: 5)

各合成ペプチドに、アミノ酸配列中のCysを介して、スカシガイヘモシアニン（KLH）を結合させた。KLHを結合した各合成ペプチドの 50μgを 0.1ml 生理食塩水に溶解し、フロイントの完全アジュバント（FCA）0.1mlを加えて免疫原を作製した。各免疫原をそれぞれ８匹のマウス（BALB/Cメス、5週齢）背部皮下に0.2ml注射し免疫した。免疫は2週間毎に計4回行い、その1週間後にさらに1回免疫した。最終免疫の8日後に、心臓から採血し血清200μl以上を分取した。ELISAによって抗体価の上昇を確認できた個体から脾細胞を採取し、細胞融合を行った。 Each synthetic peptide was bound with mussel hemocyanin (KLH) via Cys in the amino acid sequence. 50 μg of each synthetic peptide bound to KLH was dissolved in 0.1 ml physiological saline, and 0.1 ml of Freund's complete adjuvant (FCA) was added to prepare an immunogen. Each immunogen was immunized by injecting 0.2 ml subcutaneously into the back of 8 mice (BALB / C female, 5 weeks old). Immunization was performed 4 times every 2 weeks, and one week later, another immunization was performed. Eight days after the final immunization, blood was collected from the heart, and 200 μl or more of serum was collected. Spleen cells were collected from individuals who were able to confirm an increase in antibody titer by ELISA, and cell fusion was performed.

各免疫原につき３個体のマウス血清について、ELISAによる抗体価の測定結果を図４１〜図４３に示した。各血清試料は３連でアッセイを行い、その平均値をグラフに示した。いずれの免疫原を用いた場合にも、抗体価が上昇した個体が確認された。これらの免疫原がいずれもシノビオリンの免疫原として有用であることが確認された。 The antibody titer measurement results by ELISA for three mouse sera for each immunogen are shown in FIGS. Each serum sample was assayed in triplicate, and the average value was shown in the graph. When any immunogen was used, an individual with an increased antibody titer was confirmed. All of these immunogens were confirmed to be useful as synoviolin immunogens.

ミエローマ細胞株（P3U1）とマウス脾細胞を1:10で混和し、５０％のPEG（和光純薬社PEG1540）存在下で細胞融合させた。融合後、脾細胞数が 5×10⁵ 個/mlとなるように96ウェルプレートに播いた。HAT培地中で10〜14日培養した後、細胞の増殖を確認し、培養上清の検定した。培養上清の検定には、各合成ペプチドを固相化したELISAプレートを用いた。検定の操作は次のとおりである。ELISAプレートに培養上清を反応させた後、抗マウスIgGヤギ-poxを用いて陽性ウェルを選択した。クローニングに供するウェルを選択し、他の陽性ウェルの細胞については凍結保存した。 The myeloma cell line (P3U1) and mouse spleen cells were mixed at 1:10, and cell fusion was carried out in the presence of 50% PEG (Wako Pure Chemical Industries, Ltd. PEG1540). After the fusion, the cells were seeded in a 96-well plate so that the number of splenocytes was 5 × 10 ⁵ cells / ml. After culturing in HAT medium for 10-14 days, cell growth was confirmed and the culture supernatant was assayed. For assay of the culture supernatant, an ELISA plate on which each synthetic peptide was immobilized was used. The operation of the test is as follows. After reacting the culture supernatant to the ELISA plate, positive wells were selected using anti-mouse IgG goat-pox. Wells for cloning were selected, and cells in other positive wells were stored frozen.

数日後、一株につき96ウェルプレート１枚、100細胞/プレート（20細胞/ml）となるように撒き、10〜14日間培養した。コロニーを判定し、培養上清の検定を行った。培養上清の検定は、上清50μlを上記スクリーニング用抗原固相化ELISAプレートに適用して行った。第二抗体は、抗マウスIgGヤギ-poxを使用した。選択したコロニーは、培養後、リクローニングし、10〜14日間培養してコロニー判定および培養上清の検定を上記と同様に実施した。親株別にウェルを選択し、24ウェルプレートで培養し、上清を回収してクローンのチェックを行い、抗体のサブクラスおよび抗体産生を検定した。クローニングの結果、シノビオリンに対する高い親和性を有するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマとして、Syno-P2（配列番号：４）を免疫原として得られた２つのクローン10Dbおよび7Bcが選択された。 Several days later, one 96-well plate per strain was seeded at 100 cells / plate (20 cells / ml) and cultured for 10-14 days. Colonies were determined and the culture supernatant was assayed. The culture supernatant was assayed by applying 50 μl of the supernatant to the screening antigen-immobilized ELISA plate. Anti-mouse IgG goat-pox was used as the second antibody. The selected colonies were recloned after culture, cultured for 10 to 14 days, and colony determination and culture supernatant assay were performed as described above. Wells were selected for each parent strain, cultured in a 24-well plate, supernatants were collected, clones were checked, and antibody subclasses and antibody production were assayed. As a result of cloning, two clones 10Db and 7Bc obtained using Syno-P2 (SEQ ID NO: 4) as an immunogen were selected as hybridomas producing monoclonal antibodies having high affinity for Synoviolin.

[実施例２４] 抗シノビオリンモノクローナル抗体を用いた患者試料のシノビオリンの検出
〈１〉抗シノビオリンモノクローナル抗体による患者由来滑膜細胞のウェスタンブロッティング
実施例２３で得られたSyno-P2を認識する２種の抗シノビオリンモノクローナル抗体（10Dbおよび7Bc）を用いて、慢性関節リウマチ患者（RA）由来滑膜細胞の蛋白質をSDS-PAGEで分離し、ウェスタンブロッティング法を行った。ウェスタンブロッティング法の操作は、抗体として実施例２３のモノクローナル抗体10Dbおよび7Bcを、そして標識抗体として抗マウスIgGヒツジ-HRPを用いる他は実施例８に記載のとおりである。対照として、変形性関節症患者（OA）由来の滑膜細胞も解析した。その結果、RA患者由来の滑膜細胞で特異的なシグナルが検出された（図４４A）。実施例２３で得られたモノクローナル抗体は、RA患者の滑膜細胞を特異的に認識することが確認された。これらのモノクローナル抗体は、RAの検出に有用である。 [Example 24] Detection of Synoviolin in Patient Samples Using Anti-Synoviolin Monoclonal Antibody <1> Western blotting of patient-derived synoviocytes using anti-sinoviolin monoclonal antibody Two kinds of antibodies recognizing Syno-P2 obtained in Example 23 Using anti-Synoviolin monoclonal antibodies (10Db and 7Bc), proteins of synovial cells derived from rheumatoid arthritis patients (RA) were separated by SDS-PAGE and Western blotting was performed. The operation of the Western blotting method is as described in Example 8, except that the monoclonal antibodies 10Db and 7Bc of Example 23 are used as the antibody and anti-mouse IgG sheep-HRP is used as the labeled antibody. As a control, synovial cells from osteoarthritis patients (OA) were also analyzed. As a result, specific signals were detected in synovial cells derived from RA patients (FIG. 44A). It was confirmed that the monoclonal antibody obtained in Example 23 specifically recognizes synovial cells of RA patients. These monoclonal antibodies are useful for the detection of RA.

〈２〉抗シノビオリンモノクローナル抗体によるRA患者由来滑膜細胞の蛍光免疫染色
モノクローナル抗体10Dbを用いて、RA患者由来滑膜細胞の蛍光免疫細胞化学解析を行った。免疫染色の操作は、抗体として実施例２３のモノクローナル抗体10Dbを、そして標識抗体として抗マウスIgGヒツジ-FITCを用いる他は実施例９に記載のとおりである。シノビオリン蛋白質のシグナルは、RA患者由来滑膜細胞で強く検出されたが、二次抗体のみを反応させた対照では検出されなかった（図４４B）。 <2> Fluorescent immunostaining of RA patient-derived synovial cells with anti-synoviolin monoclonal antibody Fluorescent immunocytochemical analysis of RA patient-derived synovial cells was performed using monoclonal antibody 10Db. The immunostaining procedure is as described in Example 9, except that the monoclonal antibody 10Db of Example 23 is used as the antibody and anti-mouse IgG sheep-FITC is used as the labeled antibody. Synoviolin protein signal was strongly detected in RA patient-derived synovial cells, but not in the control in which only the secondary antibody was reacted (FIG. 44B).

〈３〉抗シノビオリンモノクローナル抗体によるRA患者由来滑膜組織の免疫染色
モノクローナル抗体10Dbおよび7Bcを用いて、RA患者から採取した滑膜組織切片の免疫染色を行った。免疫染色の操作は、抗体として実施例２３のモノクローナル抗体10Dbおよび7Bcを、そして標識抗体として抗マウスIgGヒツジ-HRPを用いる他は実施例９に記載のとおりである。シノビオリン蛋白質のシグナルは、RA患者由来滑膜組織で強く検出された（図４５）。同時に行ったHE染色により、滑膜細胞の増殖層が観察され、その部分がモノクローナル抗体で染色されていることが確認された。これらの結果から、本発明のモノクローナル抗体は、RA患者の滑膜組織を特異的に認識することが確認された。以上のように、シノビオリン抗体を用いて患者試料中のシノビオリンを検出することにより、RAの検査および診断を実施することができる。 <3> Immunostaining of RA patient-derived synovial tissue with anti-synoviolin monoclonal antibody Immunostaining of synovial tissue sections collected from RA patients was performed using monoclonal antibodies 10Db and 7Bc. The immunostaining procedure is as described in Example 9, except that the monoclonal antibodies 10Db and 7Bc of Example 23 are used as the antibody and anti-mouse IgG sheep-HRP is used as the labeled antibody. Synoviolin protein signal was strongly detected in RA patient-derived synovial tissue (FIG. 45). Simultaneously with HE staining, a proliferative layer of synovial cells was observed, and it was confirmed that the portion was stained with a monoclonal antibody. From these results, it was confirmed that the monoclonal antibody of the present invention specifically recognizes synovial tissue of RA patients. As described above, the detection and diagnosis of RA can be carried out by detecting synoviolin in a patient sample using a synoviolin antibody.

[実施例２５] シノビオリンのユビキチンリガーゼ活性の検出
E3ユビキチン-蛋白質リガーゼは、自己ユビキチン化をすることが知られている（Hashizume R et al., J. Biol. Chem. 276, 14537-14540, 2001）。そこで、シノビオリンについて自己ユビキチン化活性があるかどうか検討した。pCAGGSベクターにFLAG-シノビオリン遺伝子を挿入したプラスミドを、HEK-293細胞にトランスフェクションし、36時間後細胞を回収した。Buffer A [15 mM Tris-HCl pH 7.5、0.5 M NaCl、0.35% NP-40、1 mM PMSF、2μg/ml aprotinin、2μg/ml leupeptin] にて細胞破砕液を得た。細胞破砕液を高速遠心器にて遠心分離し、その上清0.6 mlに、3μgの抗FLAG抗体および7.5μlのプロテインAビーズを添加し、一晩免疫沈降を行った。Buffer Aもしくは0.1% SDS を添加した Buffer Aにて3回、Buffer B [25 mM Tris-HCl pH 7.5, 50 mM NaCl, 0.01% Nonidet P-40, 10% glycerol, 1 mM EDTA] にて2回ビーズを洗浄し、30μlのユビキチンリガーゼ反応液 [50 mM Tris-HCl pH 7.4, 5 mM MgCl₂, 2 mMNaF, 10 nM okadaic acid, 2 mM ATP, 0.6 mM DTT, 1.5μg GST-HA-ユビキチン, 40 ng 酵母由来E1, 0.3μg UbcH5c(E2)] を添加し、37℃で30分反応させた。0.1 M DTTを含む 2×Laemmli SDS-loading bufferを30μl加え、ボイルした後、SDS-PAGEにて展開し、ニトロセルロース膜にトランスファーした。一次抗体には抗FLAG抗体（SIGMA）および抗HA抗体（ロシュ・ダイアグノスティックス社）を用いた。HRP活性の検出は実施例７と同様に行った。なお、コントロールとして FLAG-シノビオリン遺伝子をトランスフェクションした細胞の破砕液のみ（免疫沈降前）、または、細胞破砕液を免疫沈降操作して得た溶液（すなわちFLAG-シノビオリンタンパク質とその免疫複合体のみ）を用いた。さらに、GST-HA-ユビキチン、ATP、E1またはE2のいずれかを添加しない反応も行った（GST-HA-ユビキチン非添加の場合はGSTを用いて反応を行った）。0.1% SDS添加Buffer A洗浄によりimmunopurificationしたシノビオリンを用いた結果を図４６に示した。抗HA抗体によるブロットにおいて、シノビオリンの分子量（図４６＊印）より約35 kDa大きなサイズのバンドが検出された（図４６矢印）。このバンドは抗FLAG抗体によるブロットにも見られ、GST-HA-ユビキチンがシノビオリンに付加したものと考えられた。さらに、ATP、E1またはE2のいずれかを欠損した反応系では、シノビオリンの自己ユビキチン化が起こらないことが示された。Buffer Aのみでビーズを洗浄した場合にも同様の結果となった。これらの結果より、１）シノビオリンを含む免疫複合体にE1およびE2依存的なユビキチンリガーゼ活性が存在し、かつ、immunopurificationの結果より、２）シノビオリンはE3ユビキチン-蛋白質リガーゼ活性を有することが明らかとなった。 [Example 25] Detection of ubiquitin ligase activity of Synoviolin
E3 ubiquitin-protein ligase is known to self-ubiquitinate (Hashizume R et al., J. Biol. Chem. 276, 14537-14540, 2001). Therefore, whether synoviolin has self-ubiquitination activity was examined. A plasmid in which the FLAG-synoviolin gene was inserted into the pCAGGS vector was transfected into HEK-293 cells, and the cells were collected after 36 hours. A cell disruption solution was obtained with Buffer A [15 mM Tris-HCl pH 7.5, 0.5 M NaCl, 0.35% NP-40, 1 mM PMSF, 2 μg / ml aprotinin, 2 μg / ml leupeptin]. The cell lysate was centrifuged with a high-speed centrifuge, 3 μg of anti-FLAG antibody and 7.5 μl of protein A beads were added to 0.6 ml of the supernatant, and immunoprecipitation was performed overnight. 3 times with Buffer A or Buffer A supplemented with 0.1% SDS, 2 times with Buffer B [25 mM Tris-HCl pH 7.5, 50 mM NaCl, 0.01% Nonidet P-40, 10% glycerol, 1 mM EDTA] Wash the beads and 30 μl ubiquitin ligase reaction solution [50 mM Tris-HCl pH 7.4, 5 mM MgCl ₂ , 2 mM NaF, 10 nM okadaic acid, 2 mM ATP, 0.6 mM DTT, 1.5 μg GST-HA-ubiquitin, 40 ng yeast-derived E1, 0.3 μg UbcH5c (E2)] were added and reacted at 37 ° C. for 30 minutes. 30 μl of 2 × Laemmli SDS-loading buffer containing 0.1 M DTT was added, boiled, developed on SDS-PAGE, and transferred to a nitrocellulose membrane. Anti-FLAG antibody (SIGMA) and anti-HA antibody (Roche Diagnostics) were used as the primary antibody. Detection of HRP activity was performed in the same manner as in Example 7. As a control, only the disruption solution of cells transfected with the FLAG-synoviolin gene (before immunoprecipitation) or the solution obtained by immunoprecipitation of the cell disruption solution (ie, only the FLAG-synoviolin protein and its immune complex) Was used. Furthermore, a reaction was carried out without adding any of GST-HA-ubiquitin, ATP, E1 or E2 (in the case where GST-HA-ubiquitin was not added, the reaction was performed using GST). The results using synoviolin immunopurified by washing Buffer A with 0.1% SDS were shown in FIG. In blotting with an anti-HA antibody, a band having a size approximately 35 kDa larger than the molecular weight of Synoviolin (Fig. 46 *) was detected (Fig. 46 arrow). This band was also observed in the blot with anti-FLAG antibody, and it was considered that GST-HA-ubiquitin was added to Synoviolin. Furthermore, it was shown that the reaction system lacking either ATP, E1 or E2 does not cause synoviolin self-ubiquitination. Similar results were obtained when beads were washed with Buffer A alone. From these results, it is clear that 1) E1 and E2 dependent ubiquitin ligase activity exists in the immune complex containing synoviolin, and that immunosynchronization results 2) Synoviolin has E3 ubiquitin-protein ligase activity. became.

本発明は、滑膜の発達、ならびに骨・軟骨および四肢の発達に関与する新規な蛋白質をコードする遺伝子「シノビオリン」を提供した。本発明の遺伝子はRAに関与しており、RA患者では、この遺伝子産物に対する抗体が産生されている。本発明の遺伝子およびタンパク質は、RAの診断に有用な新規なマーカーとなる。本発明の「シノビオリン」は、RA患者の関節滑膜細胞に強発現しており、インサイチュハイブリダイゼーションやインサイチュPCRにより、RA疾患の診断や治療効果の判定に貢献する。更に、RA患者の血中にはシノビオリンに対する抗体を高頻度で見出すことができる。これをマーカーとすることでRAの特異的な診断を可能とする。本発明によって提供されるシノビオリン蛋白質、またはその部分ペプチドは患者血清中のシノビオリンに対する抗体の検出に有用である。 The present invention has provided a gene “Synoviolin” encoding a novel protein involved in synovial membrane development and bone / cartilage and limb development. The gene of the present invention is involved in RA, and antibodies to this gene product are produced in RA patients. The genes and proteins of the present invention are novel markers useful for the diagnosis of RA. “Synoviolin” of the present invention is strongly expressed in synovial cells of RA patients and contributes to diagnosis of RA disease and determination of therapeutic effect by in situ hybridization and in situ PCR. Furthermore, antibodies against Synoviolin can be found frequently in the blood of RA patients. By using this as a marker, a specific diagnosis of RA is possible. The synoviolin protein provided by the present invention, or a partial peptide thereof, is useful for detecting an antibody against synoviolin in patient serum.

また、シノビオリンは未分化間葉系細胞において発現している。シノビオリンを細胞マーカーとして利用すれば、胚の細胞などから未分化間葉系細胞を回収することができる。未分化間葉系細胞は骨、軟骨に分化する細胞であり、再生医学的応用が期待されている。すなわち、シノビオリンを細胞マーカーとして回収した未分化間葉系細胞を試験管内または生体内で分化させ、骨・軟骨の形成や関節の再構築を行えば、傷害を受けた骨・軟骨組織や関節を新たに再生させることも可能になる。 Synoviolin is expressed in undifferentiated mesenchymal cells. If synoviolin is used as a cell marker, undifferentiated mesenchymal cells can be recovered from embryonic cells and the like. Undifferentiated mesenchymal cells are cells that differentiate into bone and cartilage and are expected to be applied to regenerative medicine. In other words, undifferentiated mesenchymal cells collected using synoviolin as a cell marker are differentiated in vitro or in vivo, and bone / cartilage formation or joint reconstruction is performed. New playback is also possible.

本発明のシノビオリン、並びにそのリガンドは、RAの主要な病態である関節滑膜細胞の増殖に密接に関連していることが明らかにされた。したがって、本発明によって提供されるシノビオリン、あるいはそのリガンドは、RAの治療方法の開発に当たって重要な知見を与える。より具体的には、シノビオリンとそのリガンドとの結合に関与する化合物をスクリーニングすることにより、これまでとはまったく異なったアプローチでRA治療技術の開発を進めることができるのである。さらにシノビオリンのトランスジェニックマウスは、高い頻度で関節の滑膜が増生し、関節炎を伴う指関節の膨脹を起した。本発明により提供されるシノビオリンのトランスジェニック動物は、RAのモデルとして、その治療技術や医薬品の開発に極めて有用である。 The synoviolin of the present invention, as well as its ligand, has been shown to be closely related to the proliferation of articular synovial cells, which is a major disease state of RA. Therefore, Synoviolin provided by the present invention, or its ligand, provides important knowledge in developing a method for treating RA. More specifically, by screening for compounds involved in the binding of Synoviolin and its ligand, it is possible to proceed with the development of RA treatment techniques using a completely different approach. In addition, synoviolin transgenic mice frequently experienced synovial growth of the joints, and swollen finger joints with arthritis. The synoviolin transgenic animal provided by the present invention is extremely useful for the development of therapeutic techniques and pharmaceuticals as a model of RA.

図１は、抗滑膜細胞抗血清によるイムノスクリーニングにおける陽性コロニーの写真である。FIG. 1 is a photograph of positive colonies in immunoscreening with anti-synovial cell antiserum. 図２は、大腸菌でのシノビオリン組み換えタンパク質の発現を示す写真である。FIG. 2 is a photograph showing the expression of recombinant Synoviolin protein in E. coli. 図３は、試験管内でのシノビオリンcDNAから翻訳されるシノビオリンタンパク質発現を示すオートラジオグラフの写真である。FIG. 3 is a photograph of an autoradiograph showing synoviolin protein expression translated from synoviolin cDNA in vitro. 図４は、シノビオリンのcDNAをプローブとするノーザンブロッティング法によるシノビオリン遺伝子発現の分析結果を示すオートラジオグラフの写真である。FIG. 4 is a photograph of an autoradiograph showing the results of analysis of synoviolin gene expression by Northern blotting using synoviolin cDNA as a probe. 図５は、各種細胞破砕液の抗滑膜細胞抗血清によるウエスタンブロッティング法の結果と、GST-部分シノビオリンによる抗体吸収実験の結果を示す写真である。矢印は吸収されたバンドを示す。各バンドの分子量は上から順に、約220、185、および 140kDaであった。FIG. 5 is a photograph showing the results of Western blotting using anti-synovial cell antiserum of various cell disruptions and the results of antibody absorption experiments using GST-partial synoviolin. The arrow indicates the absorbed band. The molecular weight of each band was approximately 220, 185, and 140 kDa in order from the top. 図６は、滑膜細胞破砕液に対する滑膜細胞抗血清を用いたウエスタンブロッティング法の結果を示すオートラジオグラフの写真である。左のレーン（プレイミューン）は滑膜細胞免疫前のウサギ抗血清、右のレーン（免疫後）は滑膜細胞抗血清を用いた。FIG. 6 is a photograph of an autoradiograph showing the results of Western blotting using synovial cell antiserum against synovial cell lysate. Rabbit antiserum before synovial cell immunization was used in the left lane (prey muen), and synovial cell antiserum was used in the right lane (after immunization). 図７は、滑膜細胞の抗滑膜細胞抗血清（A）および精製抗滑膜細胞抗体（B）による蛍光免疫染色の結果を示す蛍光顕微鏡写真である。FIG. 7 is a fluorescence micrograph showing the results of fluorescent immunostaining with synovial cell anti-synovial cell antiserum (A) and purified anti-synovial cell antibody (B). 図８は、滑膜組織の抗滑膜細胞抗血清による免疫染色と、GST-部分シノビオリンによる抗体吸収実験を示す顕微鏡写真である。FIG. 8 is a photomicrograph showing immunostaining of synovial tissue with anti-synovial cell antiserum and antibody absorption experiments with GST-partial synoviolin. 図９は、滑膜組織の精製抗滑膜細胞抗体による免疫染色の結果を示す顕微鏡写真である。GSTアフィニティーカラムにより精製した抗血清（上パネル）およびGST-部分シノビオリンアフィニティーカラムにより精製した抗血清（下パネル）を用いた結果を示す。FIG. 9 is a photomicrograph showing the results of immunostaining of purified synovial tissue antibodies with purified anti-synovial cell antibodies. The results using antiserum purified by GST affinity column (upper panel) and antiserum purified by GST-partial synoviolin affinity column (lower panel) are shown. 図１０は、各種ヒト血清中の抗シノビオリン抗体のウエスタンブロッティング法による検出結果を示すオートラジオグラムの写真である。FIG. 10 is a photograph of an autoradiogram showing the results of detection of anti-synoviolin antibodies in various human sera by Western blotting. 図１１は、SLのcDNAをプローブとするノーザンブロッティング法による滑膜細胞におけるSL遺伝子の発現を分析した結果を示すオートラジオグラフの写真である。FIG. 11 is a photograph of an autoradiograph showing the results of analysis of SL gene expression in synovial cells by Northern blotting using SL cDNA as a probe. 図１２は、[³⁵S]ラベルしたHA-シノビオリン-HAHAとGST-SL融合タンパク質との結合を示すオートラジオグラフの写真である。FIG. 12 is a photograph of an autoradiograph showing binding between [ ³⁵ S] -labeled HA-Synoviolin-HAHA and a GST-SL fusion protein. 図１３は、滑膜細胞の増殖に対するシノビオリンの影響をMTTアッセイで分析した結果を示す図である。GST-部分シノビオリンを用いた。FIG. 13 is a diagram showing the results of analyzing the effect of Synoviolin on the proliferation of synoviocytes by MTT assay. GST-partial synoviolin was used. 図１４は、シノビオリン遺伝子導入用ベクターの構造を示す図である。CMVエンハンサーを有するβ-アクチンプロモーターによりシノビオリンは全身的に発現する。抗Flagタグ（Flag-tag）抗体により、Flagタグ融合シノビオリン蛋白質の発現が確認できる。FIG. 14 is a diagram showing the structure of a vector for introducing a synoviolin gene. Synoviolin is systemically expressed by the β-actin promoter with CMV enhancer. The expression of a Flag tag-fused synoviolin protein can be confirmed by an anti-Flag-tag antibody. 図１５は、シノビオリン遺伝子のトランスジェニックマウスの関節炎を呈する指関節を示す写真である。シノビオリン強制発現マウスの指の外見および軟Ｘ線像を示す。右端に正常マウスの指の軟Ｘ線像を比較として示した。シノビオリン強制発現マウスは顕著な指の膨脹を示した。FIG. 15 is a photograph showing a finger joint exhibiting arthritis in a transgenic mouse of Synoviolin gene. The appearance of a finger and a soft X-ray image of a Synoviolin forced expression mouse are shown. A soft X-ray image of a normal mouse finger is shown as a comparison on the right end. Synoviolin-forced mice showed marked finger swelling. 図１６は、シノビオリン遺伝子トランスジェニックマウスの関節炎を呈する指関節の組織学的所見を示す写真である。顕著な膨脹を示した指の関節部分において著しい滑膜増生に伴う骨破壊と異常な骨新生が認められた。FIG. 16 is a photograph showing histological findings of a finger joint exhibiting arthritis in a Synoviolin gene transgenic mouse. Bone destruction and abnormal bone formation accompanying remarkable synovial hyperplasia were observed in the joints of the fingers that showed remarkable swelling. 図１７は、遺伝子導入マウスの正常な指関節の組織学的所見を示す写真である。関節軟骨の異常、骨破壊および滑膜の増生は認められない。右下パネルは抗Flag抗体による免疫染色の結果を示す。陽性シグナルは観察されない。FIG. 17 is a photograph showing histological findings of normal finger joints of transgenic mice. Articular cartilage abnormalities, bone destruction and synovial hyperplasia are not observed. The lower right panel shows the result of immunostaining with anti-Flag antibody. No positive signal is observed. 図１８は、シノビオリン遺伝子トランスジェニックマウスの関節炎を呈する指関節におけるシノビオリンの発現を示す写真である。抗Flag抗体により免疫染色を行った。顕著な膨脹を示した指の関節部位において増生した滑膜組織および軟骨細胞にシノビオリンの発現が認められた。FIG. 18 is a photograph showing the expression of Synoviolin in the finger joint exhibiting arthritis in Synoviolin gene transgenic mice. Immunostaining was performed with anti-Flag antibody. Synoviolin expression was observed in synovial tissue and chondrocytes that had proliferated in the joints of the finger that showed significant swelling. 図１９は、シノビオリン遺伝子を欠損させるターゲティングベクターの構造を示す図である。マウスシノビオリン遺伝子断片の翻訳開始点（第一メチオニンを翻訳するATGコドン; "*"で示す）にlacZ遺伝子を導入し、ポジティブセレクションマーカー遺伝子としてネオマイシン耐性（neo）遺伝子を導入した。またジフテリア毒素A（DT-A）遺伝子も結合させネガティブセレクションマーカーとした。相同組み換えを起した個体はシノビオリン遺伝子の発現が欠損する代わりにβ-ガラクトシダーゼが発現し、その酵素活性を利用たLacZ染色により、シノビオリン遺伝子のプロモーターからの発現を検出できる（図２２参照）。遺伝子型確認のためのサザンブロット解析（図２０参照）に用いたプローブの位置も図示した。FIG. 19 is a diagram showing the structure of a targeting vector for deleting the Synoviolin gene. The lacZ gene was introduced at the translation start point of the mouse synoviolin gene fragment (ATG codon for translating the first methionine; indicated by “*”), and the neomycin resistance (neo) gene was introduced as a positive selection marker gene. In addition, diphtheria toxin A (DT-A) gene was also combined to serve as a negative selection marker. Individuals who have undergone homologous recombination express β-galactosidase instead of deficient in the expression of the synoviolin gene, and the expression from the promoter of the synoviolin gene can be detected by LacZ staining using the enzyme activity (see FIG. 22). The position of the probe used for Southern blot analysis for genotype confirmation (see FIG. 20) is also shown. 図２０は、シノビオリン遺伝子欠損マウスの遺伝子型の解析の結果を示す写真である。生後約２週齢のマウス尾（野生型およびヘテロ欠損マウス）または胎生14.5日胎仔（ホモ欠損マウス）よりDNAを抽出し、PstIで消化後に、図１９に示したプローブを用いたサザンブロッティングを行った。FIG. 20 is a photograph showing the results of genotype analysis of Synoviolin gene-deficient mice. DNA was extracted from 2 weeks old mouse tail (wild type and hetero-deficient mouse) or embryonic day 14.5 day fetus (homo-deficient mouse), digested with PstI, and then subjected to Southern blotting using the probe shown in FIG. It was. 図２１は、シノビオリン遺伝子欠損マウスのノーザンブロット解析の結果を示す写真である。野生型（+/+）、シノビオリン遺伝子ヘテロノックアウトマウス（+/-）、およびホモノックアウトマウス（-/-）よりmRNAを抽出し、シノビオリン遺伝子断片をプローブにノーザンブロッティングを行った（上パネル）。下パネルにアガロースゲルのEtBr染色を示した。FIG. 21 is a photograph showing the results of Northern blot analysis of Synoviolin gene-deficient mice. MRNA was extracted from wild type (+ / +), synoviolin gene hetero knockout mouse (+/-), and homo knockout mouse (-/-), and Northern blotting was performed using the synoviolin gene fragment as a probe (upper panel). The lower panel shows agarose gel EtBr staining. 図２２は、LacZ染色によりシノビオリン発現部位を検討した結果を示す写真である。胎生12.5日齢または胎生13.5日齢の野生型およびヘテロ欠損マウスをLacZにより染色した。シノビオリンの胎生期における発現は、頭頂骨、四肢、耳などの、骨および軟骨が形成される部位に強く認められた。FIG. 22 is a photograph showing the result of examining the Synoviolin expression site by LacZ staining. Embryonic 12.5 day old or 13.5 day old wild type and heterozygous mice were stained with LacZ. Synoviolin expression during the embryonic period was strongly observed at sites where bone and cartilage were formed, such as the parietal bone, extremities, and ears. 図２３は、四肢形成期におけるシノビオリンの発現を示す写真である。四肢形成期におけるシノビオリンの発現は、FGF4、BMP2、BMP4 の発現と同様、Apical Ectodermal Ridge（AER; 外胚葉頂堤）に強く認められた。FIG. 23 is a photograph showing the expression of Synoviolin in the limb formation phase. Synoviolin expression during limb formation was strongly observed in Apical Ectodermal Ridge (AER) as well as FGF4, BMP2, and BMP4. 図２４は、ヘテロ欠損マウスの胎生13日齢の肢芽（limb bud）の凍結切片のLacZ染色を示す写真である。4時間染色を行った。LacZの青色が未分化間葉系の細胞（骨・軟骨の原基）に濃染されている。オリジナル倍率 ×40。FIG. 24 is a photograph showing LacZ staining of a frozen section of a 13-day-old limb bud of a heterozygous mouse. Staining was performed for 4 hours. The blue color of LacZ is deeply stained in undifferentiated mesenchymal cells (bone and cartilage primordia). Original magnification x40. 図２５は、ヘテロ欠損マウスの胎生13日齢の肢芽（limb bud）の凍結切片のLacZ染色を示す写真である。4時間染色を行った。LacZの青色が未分化間葉系の細胞（骨・軟骨の原基）に濃染されている。オリジナル倍率 ×200。A, B,および C は、図２４に対応する。FIG. 25 is a photograph showing LacZ staining of a frozen section of a 13-day-old limb bud of a hetero-deficient mouse. Staining was performed for 4 hours. The blue color of LacZ is deeply stained in undifferentiated mesenchymal cells (bone and cartilage primordia). Original magnification × 200. A, B, and C correspond to FIG. 図２６は、胎生12.5日齢および胎生13日齢におけるシノビオリン遺伝子ホモ欠損マウスの表現型を示す写真である。胎生12.5日齢および胎生13日齢におけるシノビオリン遺伝子ホモ欠損マウスは、ヘテロ欠損マウスと比較し、頭頂部から臀部までの長さが短く、頭蓋や四肢の形成が未熟である傾向が認められた。胎生13日齢のへテロ欠損マウスと野生型マウスの表現型には、顕著な差は認められなかった。FIG. 26 is a photograph showing the phenotype of synoviolin gene homo-deficient mice at embryonic day 12.5 and embryonic day 13; Synoviolin gene homo-deficient mice at 12.5 days and 13 days of age were shorter in length from the top of the head to the buttocks and tended to be immature in the formation of the skull and limbs compared to hetero-deficient mice. There was no significant difference in the phenotype of 13 day old heterodeficient and wild type mice. 図２７は、胎生14.5日齢におけるシノビオリン遺伝子欠損マウスの表現型を示す写真である。胎生14.5日齢のシノビオリン遺伝子ホモ欠損マウスに肢芽異常が認められた。FIG. 27 is a photograph showing the phenotype of a Synoviolin gene-deficient mouse at 14.5 days of gestation. Abnormal limb buds were observed in 14.5-day-old synoviolin gene homo-deficient mice. 図２８は、胎生14.5日齢のシノビオリン遺伝子ホモ欠損マウスの後肢におけるLacZの発現（シノビオリンの発現を反映）を示す写真である。ホモ欠損マウスの異常な後肢においてLacZは、AERおよび未分化間葉系細胞の濃縮部位に発現が認められた。FIG. 28 is a photograph showing LacZ expression (reflecting synoviolin expression) in the hind limb of embryonic 14.5 day-old synoviolin gene homo-deficient mice. In the abnormal hind limbs of homo-deficient mice, LacZ was expressed at the concentrated sites of AER and undifferentiated mesenchymal cells. 図２９は、胎生15.5日齢のシノビオリン遺伝子欠損マウスの表現型を示す写真である。ホモ欠損マウスは、肢芽異常、上顎、下顎骨の異常、耳の形態異常が認められた。心臓の拍動は認められず、生存していなかった。FIG. 29 is a photograph showing the phenotype of a 15.5-day-old synoviolin gene-deficient mouse. Homo-deficient mice showed abnormal limb buds, maxillary and mandibular abnormalities, and abnormal ear morphology. No heart beat was observed and he was not alive. 図３０は、胎生15.5日齢におけるシノビオリン遺伝子欠損マウスの骨格を示す写真である。アルシャンブルー、アリザリンレッド染色を示す。アルシャンブルーによって染色される軟骨およびアリザリンレッドによって染色される石灰化した骨は、シノビオリンホモ欠損マウスに認められなかった。FIG. 30 is a photograph showing the skeleton of a Synoviolin gene-deficient mouse at 15.5 days of gestation. Alshan blue and alizarin red staining are shown. Cartilage stained with Alshan Blue and calcified bone stained with Alizarin Red were not observed in Synoviolin homo-deficient mice. 図３１は、シノビオリンノックアウトマウスにおける、抗コラーゲン抗体カクテルを用いたマウス関節炎モデルを示す写真である。野生型マウス［373(+/+)］またはシノビオリンヘテロノックアウトマウス［372(-/+)］に抗コラーゲン抗体カクテルを投与して関節炎を惹起させた（図中 +）。非投与の野生型マウス（-）も観察した［371(+/+)］。その結果、前肢および後肢共に、関節の膨脹および発赤ともに野生型に比べシノビオリンヘテロノックアウトマウスでは軽度であった。すなわち、野生型マウスで誘発される関節炎に比べ、シノビオリンヘテロノックアウトマウスでは関節炎の惹起が弱いことが判明した。FIG. 31 is a photograph showing a mouse arthritis model using an anti-collagen antibody cocktail in Synoviolin knockout mice. Anti-collagen antibody cocktail was administered to wild-type mice [373 (+ / +)] or synoviolin hetero knockout mice [372 (− / +)] to induce arthritis (+ in the figure). Non-administered wild-type mice (-) were also observed [371 (+ / +)]. As a result, both forelimbs and hindlimbs were milder in synoviolin hetero knockout mice than in the wild type in terms of joint swelling and redness. That is, it was found that the induction of arthritis is weaker in Synoviolin hetero knockout mice than in arthritis induced in wild type mice. 図３２は、シノビオリン遺伝子ホモ欠損マウス（13dpc胎仔）の肢芽より得られた初代培養細胞のLacZ染色およびアルシャンブルー染色を示す写真である。LacZ陽性のコロニー（すなわちシノビオリン発現細胞）とアルシャンブルー染色陽性のコロニーは一致している。この結果は、骨・軟骨分化にシノビオリンが関与していることを示唆する。継代数1（p1）。FIG. 32 is a photograph showing LacZ staining and Alcian blue staining of primary cultured cells obtained from limb buds of synoviolin gene homo-deficient mice (13 dpc fetuses). LacZ-positive colonies (that is, Synoviolin-expressing cells) and Alshan blue-stained colonies coincide. This result suggests that Synoviolin is involved in bone / cartilage differentiation. Passage number 1 (p1). 図３３は、13dpcマウス胎仔の肢芽より得られた初代培養細胞のLacZ染色を示す写真である。野生型（+/+）、シノビオリン遺伝子ヘテロ（+/-）またはホモ（-/-）欠損マウス由来の細胞が示されている。シノビオリン遺伝子欠損マウス（lacZ遺伝子のノックイン）でのみLacZの発現が見られる。継代数1（p1）。FIG. 33 is a photograph showing LacZ staining of primary cultured cells obtained from the limb buds of 13 dpc mouse fetuses. Cells from wild type (+ / +), synoviolin gene heterozygous (+/−) or homozygous (− / −) deficient mice are shown. LacZ expression is observed only in the Synoviolin gene-deficient mice (lacZ gene knock-in). Passage number 1 (p1). 図３４は、シノビオリン遺伝子ヘテロ欠損マウス（13dpc胎仔）の肢芽より得られた初代培養細胞のLacZ染色およびアルシャンブルー染色を示す写真である。LacZ陽性のコロニー（すなわちシノビオリン発現細胞）とアルシャンブルー染色陽性のコロニーは一致している。継代数1（p1）。FIG. 34 is a photograph showing LacZ staining and Alcian blue staining of primary cultured cells obtained from limb buds of synoviolin gene hetero-deficient mice (13 dpc fetuses). LacZ-positive colonies (that is, synoviolin-expressing cells) and Alshan blue-stained colonies coincide. Passage number 1 (p1). 図３５は、野生型マウス（13dpc胎仔）の肢芽より得られた初代培養細胞のLacZ染色およびアルシャンブルー染色を示す写真である。LacZによる染色は観察されない。継代数1（p1）。FIG. 35 is a photograph showing LacZ staining and Alcian blue staining of primary cultured cells obtained from limb buds of wild-type mice (13 dpc fetuses). No staining with LacZ is observed. Passage number 1 (p1). 図３６は、シノビオリン遺伝子ヘテロ欠損マウス（13dpc胎仔）の肢芽より得られた初代培養細胞のLacZ染色を示す写真である。２核の典型的な軟骨細胞においても、LacZ染色（シノビオリンの発現）が認められる（200倍の像を参照）。FIG. 36 is a photograph showing LacZ staining of primary cultured cells obtained from limb buds of synoviolin gene hetero-deficient mice (13 dpc fetuses). LacZ staining (synoviolin expression) is also observed in binuclear typical chondrocytes (see 200x image). 図３７は、マウス胎仔の肢芽より得られた初代培養細胞の von Kossa染色を示す写真である。野生型（WT）、シノビオリン遺伝子ヘテロ（Hetero）またはホモ（Homo）欠損マウス由来の細胞が示されている。シノビオリン遺伝子欠損マウス（Homo）において骨形成能の低下が認められる。継代数1（p1）。FIG. 37 is a photograph showing von Kossa staining of primary cultured cells obtained from the limb buds of mouse fetuses. Cells from wild type (WT), Synoviolin gene heterozygous (Hetero) or homozygous (Homo) deficient mice are shown. In the Synoviolin gene-deficient mouse (Homo), a decrease in bone forming ability is observed. Passage number 1 (p1). 図３８は、シノビオリンホモ欠損マウス胎仔の肢芽より得られた初代培養細胞（継代数3; p3）のLacZ染色を示す写真である。サブコンフルエントになるまで培養した。LacZ染色（overnight）を行った後、ヘマトキシリンエオシン（HE）染色を行った。FIG. 38 is a photograph showing LacZ staining of primary cultured cells (passage number 3; p3) obtained from the limb buds of synoviolin homo-deficient mouse embryos. Cultured until subconfluent. After LacZ staining (overnight), hematoxylin eosin (HE) staining was performed. 図３９は、シノビオリン遺伝子へテロノックアウトマウス（lacZ遺伝子ノックイン）の初代細胞のβ-galアッセイの結果を示す図である。試料は３連で測定し、その平均と標準偏差を示した。FIG. 39 shows the results of β-gal assay of primary cells of Synoviolin gene hetero-knockout mice (lacZ gene knock-in). Samples were measured in triplicate and showed the average and standard deviation. 図４０は、シノビオリン遺伝子へテロノックアウトマウス（lacZ遺伝子ノックイン）の初代細胞のβ-galアッセイにより、シノビオリンプロモーター活性に対する各種薬剤の影響を調べた結果を示す図である。試料は３連で測定し、その平均と標準偏差を示した。FIG. 40 is a diagram showing the results of examining the effects of various drugs on the synoviolin promoter activity by β-gal assay of primary cells of synoviolin gene hetero knockout mice (lacZ gene knock-in). Samples were measured in triplicate and showed the average and standard deviation. 図４１は、Syno-P3を免疫したマウス血清のELISAの結果を示す図である。3個体（No.1〜3）から得た血清を図示した倍率で希釈してELISAを行った。非免疫マウスの血清（図中、正常）を対照に用いた。FIG. 41 is a diagram showing the results of ELISA of mouse serum immunized with Syno-P3. Serum obtained from 3 individuals (No. 1 to 3) was diluted at the indicated magnification and subjected to ELISA. Serum from a non-immunized mouse (normal in the figure) was used as a control. 図４２は、Syno-P2を免疫したマウス血清のELISAの結果を示す図である。3個体（No.1〜3）から得た血清を図示した倍率で希釈してELISAを行った。非免疫マウスの血清（図中、正常）を対照に用いた。FIG. 42 shows the results of ELISA on mouse serum immunized with Syno-P2. Serum obtained from 3 individuals (No. 1 to 3) was diluted at the indicated magnification and subjected to ELISA. Serum from a non-immunized mouse (normal in the figure) was used as a control. 図４３は、Syno-P1を免疫したマウス血清のELISAの結果を示す図である。3個体（No.1〜3）から得た血清を図示した倍率で希釈してELISAを行った。非免疫マウスの血清（図中、正常）を対照に用いた。FIG. 43 shows the results of ELISA on the serum of mice immunized with Syno-P1. Serum obtained from 3 individuals (No. 1 to 3) was diluted at the indicated magnification and subjected to ELISA. Serum from a non-immunized mouse (normal in the figure) was used as a control. 図４４は、抗シノビオリンモノクローナル抗体によるRAおよびOA患者由来滑膜細胞のウェスタンブロッティング（A）および蛍光免疫染色（B）の結果を示す写真である。FIG. 44 is a photograph showing the results of Western blotting (A) and fluorescent immunostaining (B) of RA and OA patient-derived synovial cells with an anti-synoviolin monoclonal antibody. 図４５は、抗シノビオリンモノクローナル抗体によるRA患者由来滑膜組織の免疫染色の結果を示す写真である。ヘマトキシリン・エオシン（HE）染色像も示した。FIG. 45 is a photograph showing the result of immunostaining of RA patient-derived synovial tissue with an anti-synoviolin monoclonal antibody. Hematoxylin and eosin (HE) stained images are also shown. 図４６は、シノビオリンの自己ユビキチン化活性を示す写真である。FLAG-シノビオリンを、GST-HA-ユビキチン、ATP、E1、およびE2の存在下で反応させ、抗FLAG抗体および抗HA抗体によりシノビオリンのユビキチン化を検出した。CE: 細胞抽出液。IP: 免疫沈降物。FIG. 46 is a photograph showing synoviolin's self-ubiquitination activity. FLAG-Synoviolin was reacted in the presence of GST-HA-ubiquitin, ATP, E1, and E2, and ubiquitination of Synoviolin was detected with anti-FLAG antibody and anti-HA antibody. CE: Cell extract. IP: immunoprecipitate.

Claims

被検者の生体試料中に存在する慢性関節リウマチのマーカーを検出する方法であって、慢性関節リウマチのマーカーが、配列番号：１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチド、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質に結合する抗体、および配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドに結合する抗体からなる群から選択された少なくともひとつのマーカーである方法。 A method for detecting a marker for rheumatoid arthritis present in a biological sample of a subject, wherein the rheumatoid arthritis marker is a polynucleotide comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1, described in SEQ ID NO: 2 A protein comprising the amino acid sequence of SEQ ID NOs: 3 to 5, a peptide comprising any one of the amino acid sequences described in SEQ ID NOs: 3 to 5, an antibody binding to a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, and SEQ ID NOs: 3 to 5 A method which is at least one marker selected from the group consisting of antibodies that bind to a peptide having any one of the amino acid sequences described.

次の工程を含む、生体試料中において慢性関節リウマチのマーカーである配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質に結合する抗体、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドに結合する抗体を測定する方法。
ａ）生体試料を、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドと接触させる工程、および
ｂ）配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質に結合する抗体、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドに結合する抗体を検出する工程 An antibody that binds to a protein consisting of the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2 that is a marker for rheumatoid arthritis in a biological sample, and / or any amino acid set forth in SEQ ID NOs: 3 to 5, including the following steps: A method for measuring an antibody that binds to a peptide comprising a sequence.
a) contacting a biological sample with a protein comprising the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2 and / or a peptide comprising any one of the amino acid sequences set forth in SEQ ID NOs: 3-5, and b) SEQ ID NO: A step of detecting an antibody that binds to a protein comprising the amino acid sequence described in 2, and / or an antibody that binds to a peptide comprising any one of the amino acid sequences described in SEQ ID NOs: 3 to 5

次の工程を含む、生体試料中において慢性関節リウマチのマーカーである配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドを測定する方法。
ａ）生体試料を、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質に結合する抗体、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドに結合する抗体と接触させる工程、および
ｂ）配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドを検出する工程 A protein comprising the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2 and / or a peptide consisting of any amino acid sequence set forth in SEQ ID NOs: 3-5, which is a marker for rheumatoid arthritis in a biological sample, including the following steps: How to measure.
a) contacting a biological sample with an antibody that binds to a protein consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 and / or an antibody that binds to a peptide consisting of any one of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 3 to 5 And b) detecting a protein comprising the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2 and / or a peptide comprising any amino acid sequence set forth in SEQ ID NOs: 3-5.

慢性関節リウマチのマーカーである配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、および／または配列番号：１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドの発現を指標に、該タンパク質またはポリヌクレオチドを発現する細胞を検出または分離する方法。 The protein or polynucleotide is expressed using as an index the expression of the protein consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 and / or the polynucleotide consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1, which is a marker for rheumatoid arthritis. A method of detecting or separating cells.

細胞がリウマチ滑膜細胞である、請求項４に記載の方法。 The method according to claim 4, wherein the cell is a rheumatoid synoviocyte.

細胞が未分化間葉系細胞である、請求項４に記載の方法。 The method according to claim 4, wherein the cell is an undifferentiated mesenchymal cell.

次の工程を含む、慢性関節リウマチの検出方法であって、慢性関節リウマチのマーカーが、配列番号：１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチド、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質に結合する抗体、および配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドに結合する抗体からなる群から選択された少なくともひとつのマーカーである方法。
ｉ）被検者の生体試料中に存在する慢性関節リウマチのマーカーを検出する工程
ｉｉ）工程ｉ）の検出結果を、慢性関節リウマチと関連付ける工程 A method for detecting rheumatoid arthritis comprising the following steps, wherein the rheumatoid arthritis marker is a polynucleotide comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 1, a protein comprising the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2, A peptide consisting of any one of the amino acid sequences set forth in SEQ ID NOs: 3 to 5, an antibody that binds to a protein consisting of the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2, and any one of the amino acid sequences set forth in SEQ ID NOs: 3 to 5 A method which is at least one marker selected from the group consisting of antibodies which bind to a peptide consisting of
i) a step of detecting a marker of rheumatoid arthritis present in a biological sample of a subject ii) a step of associating the detection result of step i) with rheumatoid arthritis

生体試料が被検者の血液であり、慢性関節リウマチのマーカーが配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質に結合する抗体、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドに結合する抗体である請求項７に記載の方法。 The biological sample is blood of a subject, an antibody that binds to a protein comprising the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2 as a marker for rheumatoid arthritis, and / or any amino acid set forth in SEQ ID NOs: 3-5 The method according to claim 7, wherein the antibody binds to a peptide consisting of a sequence.

生体試料が被検者の滑膜組織または滑膜細胞であり、慢性関節リウマチのマーカーが配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、および／または配列番号：１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドである請求項７に記載の方法。 The biological sample is the subject's synovial tissue or synovial cell, and the rheumatoid arthritis marker comprises the protein consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 and / or the base sequence shown in SEQ ID NO: 1. 8. The method of claim 7, which is a polynucleotide.

慢性関節リウマチの診断、または治療効果の判定を目的とする免疫学的分析用試薬であって、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドを含む、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質を認識する抗体、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドを認識する抗体を分析するための免疫学的分析用試薬。 A reagent for immunological analysis for the purpose of diagnosis of rheumatoid arthritis or determination of therapeutic effect , comprising a protein comprising the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2 and / or a protein described in SEQ ID NOs: 3-5 An antibody that recognizes a protein consisting of the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2 and / or a peptide consisting of any one of the amino acid sequences set forth in SEQ ID NOs: 3 to 5, including a peptide consisting of any amino acid sequence A reagent for immunological analysis for analyzing antibodies to be analyzed.

慢性関節リウマチの診断、または治療効果の判定を目的とする免疫学的分析用試薬であって、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質に結合する抗体、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドに結合する抗体を含む、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドを分析するための免疫学的分析用試薬。 A reagent for immunological analysis for the purpose of diagnosis of rheumatoid arthritis or determination of therapeutic effect, wherein the antibody binds to a protein comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2, and / or SEQ ID NO: 3 A protein consisting of the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2 and / or any one of the amino acid sequences set forth in SEQ ID NOs: 3 to 5, including an antibody that binds to a peptide consisting of any one of the amino acid sequences set forth in 5 An immunological analysis reagent for analyzing the peptide.

分析をすべき配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドが滑膜細胞に存在するものである請求項１１に記載の免疫学的分析用試薬。 Should analyzed SEQ ID NO: 2 protein comprising the amino acid sequence set forth in, and / or SEQ ID NO: 3-5 peptide consisting of any of the amino acid sequence set forth in are those present in the synovial cells Claim 11 The reagent for immunological analysis described in 1.

慢性関節リウマチの診断、または治療効果の判定を目的とする試薬であって、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質に結合する抗体、および／または配列番号：３〜５に記載のいずれかのアミノ酸配列からなるペプチドに結合する抗体を含む、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質を発現する細胞の検出または分離用試薬。 A reagent for diagnosis of rheumatoid arthritis or determination of therapeutic effect, which binds to a protein comprising the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2 and / or any of SEQ ID NOs: 3-5 A reagent for detecting or separating a cell expressing a protein comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2, comprising an antibody that binds to a peptide comprising the amino acid sequence.