JP3654591B2

JP3654591B2 - Specific binding analysis method and specific binding analysis device

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Publication number: JP3654591B2
Application number: JP2002247605A
Authority: JP
Inventors: 達朗河村; 明仁亀井; 文久北脇; 紀子権丈
Original assignee: Panasonic Corp; Matsushita Electric Industrial Co Ltd
Current assignee: Panasonic Corp; Panasonic Holdings Corp
Priority date: 2001-09-14
Filing date: 2002-08-27
Publication date: 2005-06-02
Anticipated expiration: 2022-08-27
Also published as: JP2003161733A

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、試料中の分析対象物の定性分析または定量分析を行う特異結合分析方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
近年、家庭内および地域での医療の充実、ならびに緊急性の高い臨床検査などの増加に伴い、臨床検査の専門家でなくとも、迅速簡便でかつ正確に計測が実施できる特異結合分析方法の開発が富みに望まれるようになってきた。
このような特異結合分析方法としては、抗原抗体反応を応用したイムノアッセイ、受容体を用いたレセプターアッセイ、および相補的核酸配列のハイブリダイゼーションを用いた核酸プローブアッセイなどの多くの方法が知られており、その特異性の高さから、臨床検査をはじめとする広い分野で汎用されている。
【０００３】
さらに、イムノアッセイの１種であるクロマトグラフ分析法においては、例えば、特異結合物質が不溶化ないし固定化された多孔性担体または微粒子充填型担体からなるマトリクスに液状試料を接触させ、液状試料がマトリクスに沿って毛細管現象による浸透力によって流出する現象を利用することにより試料中の分析対象物の存否を分析する（例えば、日本国特許第２５０４９２３号、日本国特許第２６６７７９３号、特公平７−７８５０３号、特開平１０−７３５９２号、および特開平８−２４０５９１号各公報）。
【０００４】
具体的には、裸眼または光学的方法などにより任意に検知できる標識材によって標識された特異結合物質と、分析対象物とを特異結合反応させる。そして、分析対象物と特異結合反応した特異結合物質をマトリクス上に固定化された結合材に結合させ、マトリクス上に固定された標識量に応じて、最終的に試料中の分析対象物の存否を分析する。
このクロマトグラフ分析法は、マトリクスにおける担体の表面積が大きいため、多量の特異結合物質を不溶化させることができ、特異結合反応を引き起こしうる反応分子間の衝突頻度が液相中における反応の場合に比して大きいため、計測感度および計測時間の面から有利である。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、従来のクロマトグラフ分析法では、プロゾーン現象と呼ばれる問題が存在する。プロゾーン現象とは、特異結合反応に由来する信号強度に対して分析対象物の濃度を一義的に決定することができない現象である。
具体的には、試料中に分析対象物が過剰に存在する場合、標識された特異結合物質と特異結合した分析対象物（標識材−特異結合物質−分析対象物の結合体）と、標識された特異結合物質と特異結合しなかった分析対象物単体とがマトリクス上に存在することとなる。
【０００６】
そして、標識された特異結合物質と特異結合した分析対象物と、分析対象物単体とが、マトリクス上に固定化された結合材に対して競合して特異結合反応することとなる。そのため、結合材に分析対象物単体が結合されてしまい、標識された特異結合物質と特異結合した分析対象物が毛細管現象による浸透力によって流出されてしまう場合がある。これにより、結合材に結合される標識された特異結合物質の量が少なくなり、特異結合物質の特異結合反応に基づく信号強度と、試料中に含まれる分析対象物の量とが対応しなくなる。
【０００７】
従って、試料中の分析対象物の量が過剰に存在する場合には、標識量から特定される分析対象物の量が異常に小さく計測されてしまい、試料中の分析対象物の存否を正確に把握できないケースが存在する。
これに対し、プロゾーン現象に影響されずに分析対象物を正確に計測するため、希釈した異なった濃度の試料を用いて複数回信号の強度を計測することにより、分析対象物が高濃度に存在するかを確認する方法が提案されている。しかし、複数個の反応容器を用いる必要があり、計測工程が煩雑となって分析装置の大型化および複雑化に起因することになる。
【０００８】
そこで、本発明は、プロゾーン現象の影響がなく、試料中の分析対象物を、小型で簡易な計測装置によっても、正確に定性および定量計測することができる特異結合分析方法、および特異結合分析装置を提供することを目的とする。なかでも、本発明は、標識材−第１の特異結合物質−分析対象物の結合体を、第２の特異結合物質を固定した第１の検出部に固定し、当該第１の検出部での信号の強度に基づいて定量を行うため、特に低濃度域での測定精度が高い。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
本発明は、（Ａ）検出可能な標識材により標識された第１の特異結合物質に分析対象物を含む試料を接触させ、第１の特異結合物質に前記分析対象物を結合させて標識材−第１の特異結合物質−分析対象物の結合体を得る工程、（Ｂ）第２の特異結合物質を固定した第１の検出部に前記試料を接触させ、第１の特異結合物質に結合しなかった過剰な分析対象物、および前記結合体を第２の特異結合物質に結合させて第１の検出部に固定する工程、（Ｃ）前記分析対象物と同じまたは類似の物質を固定した第２の検出部に、前記試料を接触させ、前記結合体中の第１の特異結合物質を前記物質に結合させて前記結合体を第２の検出部に固定する工程、（Ｄ）第１の検出部および第２の検出部において得られる前記標識材に由来した信号１および信号２の強度をそれぞれ計測する工程、ならびに（Ｅ）前記信号１および信号２の強度に基づいて、前記試料中の分析対象物の濃度を求めて定性または定量を行う工程を有することを特徴とする特異結合分析方法に関する。
【００１０】
前記工程（Ｅ）において、前記工程（Ｄ）で得られた信号１の強度に基づいて前記分析対象物の濃度を特定する際に、２つの互いに異なる濃度１および濃度２が導かれたとき、前記信号２の強度に基づいて濃度１および濃度２のいずれが真かを判定して前記分析対象物の濃度を決定するのが好ましい。
前記工程（Ｄ）で得られた信号２の強度に基づいてプロゾーン現象を判定するのが好ましい。
【００１１】
第２の特異結合物質を固定した第１の検出部に工程（Ａ）を経た前記試料を接触させ、第１の特異結合物質に結合しなかった過剰な分析対象物、および前記結合体を第２の特異結合物質に結合させて第１の検出部に固定する工程（Ｂ）を行い、ついで前記分析対象物と同じまたは類似の物質を固定した第２の検出部に、工程（Ｂ）を経た前記試料を接触させ、前記結合体中の第１の特異結合物質を前記物質に結合させて前記結合体を第２の検出部に固定する工程（Ｃ）を行うのが好ましい。
【００１２】
また、前記分析対象物と同じまたは類似の物質を固定した第２の検出部に、工程（Ａ）を経た前記試料を接触させ、前記結合体中の第１の特異結合物質を前記物質に結合させて前記結合体を第２の検出部に固定する工程（Ｃ）を行い、ついで第２の特異結合物質を固定した第１の検出部に工程（Ｃ）を経た前記試料を接触させ、第１の特異結合物質に結合しなかった過剰な分析対象物、および前記結合体を第２の特異結合物質に結合させて第１の検出部に固定する工程（Ｂ）を行うこともできる。
【００１３】
また、あらかじめ工程（Ａ）を行い、第１の検出部および第２の検出部をシート状クロマトグラフ用マトリクス上に設け、工程（Ａ）を経た前記試料を第１の検出部および第２の検出部の上流側に滴下して、前記マトリクス内において毛細管現象による浸透力によって前記試料を第１の検出部および第２の検出部に移動させ、工程（Ｂ）〜（Ｅ）を行うのも好ましい。
【００１４】
また、検出可能な標識材により標識された第１の特異結合物質を保持する保持部、第１の検出部および第２の検出部をシート状クロマトグラフ用マトリクス上に設け、前記試料を前記保持部またはその上流側に滴下し、前記マトリクス内において毛細管現象による浸透力によって前記試料を前記保持部、第１の検出部および第２の検出部に移動させ、工程（Ａ）〜（Ｅ）を行うのも好ましい。
【００１５】
前記標識材に由来した信号が、呈色、蛍光または発光を示す信号であるのが好ましい。
第１の特異結合物質および第２の特異結合物質のうち少なくとも一方が抗体であるのが好ましい。
前記標識材が、金属ゾル、染料ゾルもしくは蛍光物質を含む粒子、または着色ラテックス粒子であるのが好ましい。
【００１６】
また、前記工程（Ｄ）において、前記信号１および信号２を前記分析対象物の移動方向に沿ってこの順で連続的に計測するのが好ましい。
前記工程（Ｄ）において、連続的に計測した信号１および信号２と前記分析対象物の移動方向の位置との関係を示す対応曲線を作成し、前記工程（Ｅ）において、前記対応曲線に基づいて定性または定量を行うのが好ましい。
前記工程（Ｅ）において、分析対象物の濃度が既知の試料から得られた定量情報と、前記工程（Ｄ）で得られた信号１および信号２とに基づいて前記分析対象物の定量を行うのが好ましい。
【００１７】
さらに本発明は、シート状クロマトグラフ用マトリクスと、前記マトリクス上に設けられ特異結合物質を固定した第１の検出部と、前記マトリクス上に設けられ分析対象物と同じまたは類似の物質を固定した第２の検出部とを具備し、分析対象物と特異結合物質を含む試料を、毛細管現象による浸透力によって第１の検出部および第２の検出部に移動させて特異結合反応を生じさせ、前記特異結合反応に由来した信号を検出することにより前記分析対象物を定性または定量することを特徴とする特異結合分析デバイスを提供する。
【００１８】
さらに、前記デバイスは、前記マトリクス上において第１の検出部の上流側に設けられた保持部であって、検出可能な標識材により標識された特異結合物質を保持する保持部を具備し、前記試料を毛細管現象による浸透力によって前記保持部から第１の検出部および第２の検出部に移動させるのが好ましい。
【００１９】
また、前記デバイスは、前記保持部に加えて、前記マトリクス上において前記保持部の上流側に設けられた試料点着部を具備し、前記試料を毛細管現象による浸透力によって前記試料点着部から前記保持部、第１の検出部および第２の検出部に移動させるのが好ましい。
【００２０】
前記デバイスは、前記保持部を有さず、前記マトリクス上において第１の検出部の上流側に設けられた試料点着部を具備し、前記試料を毛細管現象による浸透力によって前記試料点着部から第１の検出部および第２の検出部に移動させるのも好ましい。
【００２１】
【発明の実施の形態】
まず、図面を参照しながら本発明に係る特異結合分析方法について説明する。図１は、本発明の特異結合分析方法に用いることのできる特異結合分析デバイスである試験ストリップの概略斜視図である。
試験ストリップ１はシート状の試験片であり、例えばクロマトグラフィー用試験片の面上に、分析対象物が含まれた試料が浸透展開し得る領域であるマトリクス２を有する。ストリップ１は、例えば毛細管現象により試料を浸透展開させることができるような多孔性担体または微粒子充填型担体からなる。
【００２２】
また、マトリクス２上には、試料点着部３、保持部４、第１の検出部５および第２の検出部６が配置されている。試料点着部３は、マトリクス２に設けられた領域であり、ここに試料が点着される。保持部４は試料点着部３と第１の検出部５および第２の検出部６との間に配置され、点着された試料が流入する領域であって、標識材により標識された第１の特異結合物質が設けられる。第１の検出部５は、保持部４を経由して試料が流入する領域であり、結合材として第２の特異結合物質が固定化されている。第２の検出部６は、保持部４に続いて第１の検出部５を経由した試料が流入する領域であり、分析対象物またその類似物が固定化されている。
【００２３】
ここで、本発明の特異結合分析方法に用いられる試料は、分析対象物が含まれると予測される液状の試料である。例えば、尿、血清、血漿、全血、唾液、涙液、髄液、および乳頭などからの分泌液などが挙げられる。また、粘液、体組織または細胞などの固形状、ゲル状またはゾル状物を、緩衝液、抽出液または溶解液などの液体に懸濁または溶解させて得られる試料であってもよい。
【００２４】
また、本発明における分析対象物は、当該分析対象物と特異的に結合する特性を有する特異結合物質が存在するものであればよく、例えば、抗体や抗原として機能する各種蛋白質、ポリペプチド、糖蛋白質、多糖類、複合糖脂質、核酸、エフェクター分子、レセプター分子、酵素およびインヒビターなどが挙げられる。さらに具体的には、α―フェトプロテイン、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、ＣＡ１２５、ＣＡ１９−９などの腫瘍マーカー、β２−ミクログロブリン（β２ｍ）、フェリチンなどの各種蛋白質、糖蛋白質または複合糖脂質、エストラジオール（Ｅ２）、エストリオール（Ｅ３）、ヒト絨毛性性線刺激ホルモン（ｈＣＧ）、黄体形成ホルモン（ＬＨ）、ヒト胎盤ラクトゲン（ｈＰＬ）などの各種ホルモン、ＨＢｓ抗原、ＨＢｓ抗体、ＨＢｃ抗原、ＨＢｃ抗体、ＨＣＶ抗体、ＨＩＶ抗体などの各種ウィルス関連抗原およびウィルス関連抗体、各種アレルゲンおよびこれに対応するＩｇＥ抗体、麻薬性薬物、医療性薬物およびこれらの代謝産物、ウィルスおよび腫瘍関連ポリヌクレオチド配列の核酸などが挙げられる。
【００２５】
本発明における特異結合物質は分析対象物に対して特異的に結合する物質であればよく、例えば、抗体、抗原、糖蛋白質、多糖類、複合糖脂質、核酸、エフェクター分子、レセプター分子、酵素、インヒビターなどが挙げられる。
本発明において、標識材により標識された第１の特異結合物質と、第２の特異結合物質とを用い、標識された前記第１の特異結合物質と前記第２の特異結合物質とが分析対象物を介して結合し得ることが好ましい。そして特異性が高いという点で、第１の特異結合物質と第２の特異結合物質の少なくとも一つが抗体であることが望ましい。さらにはモノクローナル抗体が好ましい。
【００２６】
なお、第１の特異結合物質と第２の特異結合物質とは、必ずしも同じものを用いることは必要とされない。また、分析対象物が同一のエピトープを複数有さない場合には、第１の特異結合物質および第２の特異結合物質は、異なるエピトープに対してそれぞれ特異性を有するものを用いることが好ましい。もっとも、分析対象物が同一のエピトープを複数有する場合には同一の特異結合物質を用いてもよい。
【００２７】
また、第２の検出部６に固定化する物質は、分析対象物そのものでも良く、また、その分析対象物と同様の挙動を示す類似物でもよい。すなわち、標識材により標識された第１の特異結合物質と結合する物質であればよい。例えば、第１の特異結合物質と結合する分析対象物のエピトープと同一のエピトープを有する物質でもよい。
【００２８】
本発明において用いる標識材は、その存在を任意に検出できる物質である。例えば、自然状態にあるときに裸眼で見える直接標識、または光学フィルタの使用、もしくは紫外光などの刺激を加えて蛍光を促進する方法などの使用により容易に見える直接標識だけでなく、基質のような展開試薬を添加することにより、可視信号を検出し得る間接標識をも含む。
【００２９】
直接標識としては、染料ゾル、金属ゾル、着色ラテックス粒子のような微細な着色粒子、および蛍光物質を含む粒子が挙げられる。間接標識としては、アルカリ性フォスファターゼ、ホースラディッシュぺルオキシターゼなどの酵素類が挙げられる。直接標識は、別の試薬を添加しなくても検出可能な信号を生成するために、分析結果を瞬時に得ることができ、さらに、丈夫で安定性があるため直接標識を用いる方がよい。
【００３０】
以下においては、試料として尿を、試料に含まれる分析対象物としてｈＣＧを、第１の特異結合物質および第２の特異結合物質にｈＣＧとのサンドイッチ反応に参加し得る抗ｈＣＧモノクローナル抗体を、標識材として金コロイドを用いた本発明の一実施の形態について説明する。
ここで金コロイドのような着色粒子を用いる場合、着色粒子が微細なため、標識を小さな区域または容積の中に集中させることが可能であり、第１の検出部５および第２の検出部６において第１の特異結合物質の標識材である金コロイドが寄与する反応に由来する信号を用いてｈＣＧの定性および／または定量を正確に行うことができる。
【００３１】
まず、定量分析または定性分析をする試料を試料点着部３に点着する。点着された試料は、マトリクス２を毛細管現象により、試料点着部３から浸透展開しながら、保持部４に至る。すなわち、検出可能な標識材により標識された第１の特異結合物質を保持する保持部に、分析対象物を含む試料を接触させ、第１の特異結合物質に前記分析対象物を結合させて標識材−第１の特異結合物質−分析対象物の結合体を得る（工程（Ａ））。
マトリクス２は、上述のように、分析対象物および特異結合物質が展開される場であればよく、多孔性担体やゲル担体などが挙げられる。ここでは、ニトロセルロースを用いる場合について説明する。
【００３２】
ニトロセルロースは、あらかじめ増感しなくても固有に蛋白質と結合する能力を有するため、紙のような他のマトリクス材料に比べて優れている。抗体のような特異結合物質を直接ニトロセルロースに塗布することで、確実に固定化することができ、特異結合物質の持つ特異結合能力の妨げとなるような化学処理を全く必要としない。例えばマトリクス材料が紙の場合は、抗体を固定化するのにＣＮＢｒ、カルボニルジミダゾール、塩化トレシルなどを用いた化学結合を行うことが必要となる。
【００３３】
さらに、ニトロセルロースはいろいろな大きさの気孔のものを入手することができるため、試料流量のような要件にあわせてマトリクス材料を選択することが容易になる。ニトロセルロースシートを用いる場合は、このシートの裏にプラスチックなどの材料からなるシート状の補強材などを張り合わせ（裏打ちし）て、取り扱い上の強度を大きくするのが望ましい。これは、補強材の上にニトロセルロースの薄膜を形成することによって容易に製造することができる。
【００３４】
検出部に抗体を固定化した後、マトリクスをブロッキングし、マトリクスへの非特異吸着を低減させることが好ましい。ブロッキングは、蛋白質（例えば牛の血清アルブミンもしくは乳蛋白質など）、ポリビニルアルコール、エタノールアミン、またはこれらの組み合わせなどを用いて処理することで達成できる。
【００３５】
保持部４には、分析対象物であるｈＣＧと免疫学的な結合特性を有する第１の特異結合物質である抗ｈＣＧモノクローナル抗体を設ける。抗ｈＣＧモノクローナル抗体は、標識材としての金コロイドによって標識化されている。
試料である尿に含まれる分析対象物ｈＣＧは保持部４に流入し、第１の特異結合物質と特異結合して、標識材−第１の特異結合物質−分析対象物の結合体が得られる。すなわち、分析対象物であるｈＣＧには、抗ｈＣＧモノクローナル抗体を介して金コロイドが付与されることとなる。
【００３６】
ここで、第１の特異結合物質は、乾燥状態で保持部４に設けられることが好ましい。例えば、ブロッキング後のマトリクスに第１の特異結合物質を含む試薬を塗布し、凍結乾燥処理を施して第１の特異結合物質を乾燥状態で保持部４に担持させる。これにより、保持部４が乾燥状態にあるときは、第１の特異結合物質は保持部４に保持され、液体試料がマトリクス２を浸透展開することにより、マトリクス２が湿潤されると、第１の特異結合物質は、マトリクス２上を自由に移動することができるようになる。
【００３７】
ゆえに、分析対象物と第１の特異結合物質とが結合した状態を有する前記結合体を含む試料は、マトリクス２を浸透展開しながら、マトリクス２にある第１の検出部５および第２の検出部６に流入する。
第１の検出部５には、分析対象物ｈＣＧと結合し得る第２の特異結合物質である抗ｈＣＧモノクローナル抗体が実質的に固定化されている。例えば、マトリクスがニトロセルロースからなる場合、前記抗体を含む試薬を前記マトリクスに塗布することによって、前記抗体を当該マトリクスに物理的および化学的に吸着させ、固定化させることができる。この第２の特異結合物質である抗ｈＣＧモノクローナル抗体は、湿潤された状態でも、移動しない。
第２の検出部６では、第１の特異結合物質である抗ｈＣＧモノクローナル抗体と結合する分析対象物（ｈＣＧ）またはその類似物が実質的に固定化されている。これも湿潤された状態で移動しない。
【００３８】
なお、試料は、あらかじめ試験試薬ストリップ外で第１の特異結合物質と反応させた後に、試料点着部に点着してもよい。このストリップ外で試料と反応させる第１の特異結合物質は、標識材と結合していないものでもよく、さらに、マトリクス内の標識された第１の特異結合物質とは異なる信号を生成する標識材と結合しているものでもかまわない。ストリップ外で、標識された第１の特異結合物質と試料をあらかじめ反応させる場合、第１の特異結合物質を設けた保持部４をマトリクス２に配置しなくてもよい。
【００３９】
第１の検出部５に至った試料中の分析対象物は、第２の特異結合物質と特異結合する。これにより、分析対象物は、第２の特異結合物質を介して第１の検出部５に固定されることとなる。すなわち、金コロイドで標識された第１の特異結合物質である抗ｈＣＧモノクローナル抗体は、分析対象物ｈＣＧを介して第１の検出部５に固定化された第２の特異結合物質である抗ｈＣＧモノクローナル抗体と結合する。
これが、第２の特異結合物質を固定した第１の検出部に、工程（Ａ）を経た前記試料を接触させ、第１の特異結合物質に結合しなかった過剰な分析対象物を第２の特異結合物質に結合させて第１の検出部に固定する工程（Ｂ）である。
【００４０】
ここで、試料中のｈＣＧが過剰に存在する場合、金コロイドで標識された抗ｈＣＧモノクローナル抗体と特異結合していないｈＣＧと、金コロイドで抗ｈＣＧモノクローナル抗体と特異結合したｈＣＧとが、第１の検出部５における第２の特異結合物質との特異結合反応において競合する。
その結果、単体のｈＣＧが優先的に第１の検出部５に固定化された特異結合物質と反応して結合する。そして、第１の検出部５に結合される金コロイドで標識された抗ｈＣＧモノクローナル抗体の量が減少し、金コロイドの寄与する信号強度は低下し、第１の検出部５で検出される信号強度は、試料中のｈＣＧの量を反映しなくなる。このように、過剰に存在する分析対象物により信号強度が分析対象物の量に応じて増加しなくなる現象を、上述のようにプロゾーン現象という。
【００４１】
第２の検出部６に至った金コロイドで標識された第１の特異結合物質である抗ｈＣＧモノクローナル抗体の内、さらに分析対象物ｈＣＧと結合できる第１の特異結合物質である抗ｈＣＧモノクローナル抗体は、固定化された分析対象物ｈＣＧと特異結合して第２の検出部６に固定されることになる。すなわち、金コロイドで標識された第１の特異結合物質である抗ｈＣＧモノクローナル抗体は、分析対象物ｈＣＧを介して第２の検出部６に固定化される。
これが、前記分析対象物と同じまたは類似の物質を固定した第２の検出部に、工程（Ｂ）を経た前記試料を接触させ、前記結合体中の第１の特異結合物質を前記物質に結合させて前記結合体を第２の検出部に固定する工程（Ｃ）である。
【００４２】
ここで、試料が第１の検出部５および第２の検出部６を越えても、試料が引き続き流れるように展開されることが好ましい。そのためには、十分な試料を試料点着部３に点着し、第１の検出部５および第２の検出部６において、結合反応に参加しない余分な標識された第１の特異結合物質が、検出部を越えて続く試料の流れによって、第１の検出部５および第２の検出部６から洗い流されるようにする。このために、マトリクス２の試料が展開される末端部に吸収部を設けてもよい。吸収部の材料としては、分析対象物以外の試料を洗い流せるように十分な吸収能力を持つものであればよく、例えば、ガラス繊維濾紙ＧＡ２００（東洋（株）製）が挙げられる。
【００４３】
このように吸収部を設けると、試料の流れと共に未反応物が洗い流されるため、特異結合反応後、未反応物の分離操作を行うことなく特異結合反応に由来する信号を第１の検出部５および第２の検出部６で検出することができる。したがって、本発明の特異結合分析方法において、分析対象物と特異結合物質との特異結合反応に由来して得られた信号の強度の計測は、特異結合反応が行われる場の任意の箇所で行うことが可能だが、第１の検出部５および第２の検出部６、または第１の検出部５および第２の検出部６を含んだ領域で信号強度の分布状況を検知し、信号強度の分布状況から試料中の分析対象物を定性または定量することが好ましい。
【００４４】
そうして、第１の検出部および第２の検出部において得られる前記標識材に由来した信号１および信号２の強度をそれぞれ計測する工程（Ｄ）、ならびに前記信号１および信号２の強度に基づいて、前記試料中の分析対象物の濃度を求めて定性または定量を行う工程（Ｅ）を行う。
あらかじめ既知の濃度の分析対象物を含む試料を用いた計測により得られた信号強度の分布状況分と濃度との対応関係を示す定量情報を作成しておき、この定量情報と分析で得られた信号強度の分布状況から、濃度を決定してもよい。
【００４５】
図２は、本発明に係る特異結合分析方法において前記ストリップ１とともに用いる分析装置の構成を示す概略図である。この分析装置は、例えば第一の電極１１、第二の電極１２、計測開始検知器１０、解析器９、光源７および光検出器８を備える。第一の電極１１と第二の電極１２は、試料点着部３の導電率を計測する電極である。計測開始検知器１０は、導電率の変化から試料点着部３に試料が点着されたことを検知する機器で、検知信号を解析器９へ供給する。解析器９は、検知信号を受信した後、所定時間経過時に、ステージ１３を制御して試験試薬ストリップ１全体をＺ方向に走査させる。さらに、光源７を制御し、光検出器８の出力信号を解析する。光源７は、第１の検出部５および第２の検出部６に光を照射する機器である。光検出器８は、第１の検出部５および第２の検出部６からの反射光を検知する機器である。
【００４６】
この分析装置の動作について説明する。まず、試料点着前に、乾燥状態における試料点着部３の導電率と、試料点着時の湿潤状態の試料点着部３の導電率を計測しておく。それにより得られた情報を計測開始情報として、計測開始検知器１０に入力しておく。
そして、ｈＣＧを含む試料を試料点着部３に点着し、試料点着部３が乾燥状態から湿潤状態に変わると、第一の電極１１と第二の電極１２がモニタリングしている試料点着部の導電率が変化する。計測開始検知器１０は、この導電率の変化と計測開始情報とを参照することにより、試料が、試料点着部３に点着されたことを検知することができる。
【００４７】
試料点着部３への試料の点着は、分析装置内に試験試薬ストリップ１を装着した後に実施するのが好ましいが、試料を点着した試験試薬ストリップ１を分析装置に装着してもよい。
計測開始検知器１０が試料の点着を検知すると、解析器９がステージ１３を制御して、試験試薬ストリップ１をＺ方向へ走査する。同時に、解析器９は光源７及び光検出器８を制御して、走査に伴う信号の強度の変化を計測して、図３および４に示すクロマトグラムを得る。
光源７は、第１の検出部５および第２の検出部６を含んだ領域へ所定の波長（例えば６５０ｎｍ）の光を照射し、その反射光を光検出器８は検知する。計測波長は第１の検出部５および第２の検出部６での試料や標識材の呈色に適した波長を選べばよい。
【００４８】
ここで、信号としては標識材が寄与する反応によって生成し、検出可能なものであればよく、例えば、蛍光光度計で計測可能な蛍光、発光光度計で計測可能な発光、または第１の検出部５および第２の検出部６における目視判定および色差計で計測可能な呈色などであってもよい。この場合、第１の検出部５および第２の検出部６では反射された光、第１の検出部５および第２の検出部６において発生した蛍光または発光の強度などを検出することになる。
この信号の検知は、試験試薬ストリップ１と、光源７および光検出器８との位置関係を試料の浸透方向と平行即ちＺ方向に相対的に変化させながら連続して実施される。試験試薬ストリップ１または光源７と光検出器８のどちらかを試料の浸透方向と平行に移動させてもよいし、両者共に移動させてもよい。
【００４９】
光検出器８は、この信号を解析器９に送る。解析器９は、光検出器８からの信を解析することにより、信号の強度を計測する。解析器９は、計測された信号の強度と走査距離とからなる対応曲線、すなわちクロマトグラムを作成し、これを解析する。
図３および４は、それぞれ第１の検出部５および第２の検出部６近傍の信号強度の分布状況を解析して描いた対応曲線（クロマトグラム）の概略図である。このクロマトグラムは、試験試薬ストリップ１または光源７を走査させながらマトリクス２上に光源７から光を照射し、光検出器８が検出した反射光を解析器９で解析して描いたものである。このクロマトグラムは、縦軸が第１の検出部５および第２の検出部６近傍における信号の強度を、横軸が検出部の領域（試料点着部３からの走査距離）を表している。
【００５０】
このクロマトグラムの高さＨを、特異結合反応に基づく信号の強度として計測する。ここで、このクロマトグラムの面積Ｓを、特異結合反応に基づく信号の強度としてもよい。第１の検出部５および第２の検出部６のクロマトグラムの高さをそれぞれＨｓおよびＨｒとし、第１の検出部５および第２の検出部６のクロマトグラムの面積をそれぞれＳｓおよびＳｒと示している。
なお、ここでは試験試薬ストリップ１または光源７を走査させて第１の検出部５および第２の検出部６を含んだ領域での反射光を連続的に計測してクロマトグラムを得る。例えば、第１の検出部５および第２の検出部６を挟んで点着部３に近い上流とその反対側の下流の信号強度を直線で結び、第１の検出部５および第２の検出部６でのクロマトグラムの最高値の高さから直線の高さを差し引いて求めた距離をクロマトグラムの高さＨとすること、また、クロマトグラムと直線との囲まれた領域の面積をクロマトグラムの面積Ｓとすることにより、第１の検出部５および第２の検出部６での信号強度からバックグラウンドに由来する信号強度を差し引いた特異結合反応に基づく信号強度を得ることができる。試料が全血などの着色しているものであっても、バックグラウンドや共雑物に由来する影響を受けることなく、試料中の分析対象物を定性または定量することができる。
【００５１】
このとき、第１の検出部５および第２の検出部６以外のマトリクス２上の任意の箇所の信号強度をバックグラウンドに由来する強度であるとしてもよく、例えば、第１の検出部５および第２の検出部６近傍における信号強度のうち最小の値を選んでもよい。
バックグラウンドとは、分析対象物を含有していない試料が示す挙動のことである。例えば、第１の検出部５および第２の検出部６における特異結合物質等の非特異吸着や、呈色による信号を計測する場合の試料自身の呈色はバックグラウンドに影響し、計測精度を低下させている。そして、共雑物とは、試料中に含まれる分析対象物以外の物質であるが、特異結合分析方法で問題となる共雑物は、特異結合物質との結合反応において分析対象物と同様の挙動を示す物質（例えば、分析対象物の構造類縁物質等）や、分析対象物と結合する等して、分析対象物と特異結合物質との特異結合反応を妨害する物質などである。
解析器９は、メモリ（図示せず）に定量情報を有し、分析値であるＨｓおよびＨｒ、またはＳｓおよびＳｒとこの定量情報を参照することにより、分析対象物の濃度を特定する。
以下に、図１に示すストリップおよび図２に示す分析装置を用いて行った実施例に基づいて本発明に係る特異結合分析方法について説明するが、本発明はこれらのみに限定されるものではない。
【００５２】
【実施例】
《実施例》
図１に示すストリップ１および図２に示す分析装置を用いて本発明の特異結合分析方法を行った。ここでは、解析器９で、ＨｓおよびＨｒより分析対象物の濃度を特定した。
第１の検出部５に６５０ｎｍ波長の光を照射した場合の信号強度ＨｓとｈＣＧ濃度との関係を示すグラフを図５に表した。ｈＣＧ濃度が実質的にゼロである精度管理用のコントロール尿にｈＣＧを添加したものを試料として用いた。各試料のｈＣＧ濃度は、０（ＩＵ／Ｌ）、１０（ＩＵ／Ｌ）、３０（ＩＵ／Ｌ）、５０（ＩＵ／Ｌ）、１００（ＩＵ／Ｌ）、３００（ＩＵ／Ｌ）５００（ＩＵ／Ｌ）、１０００（ＩＵ／Ｌ）、１５００（ＩＵ／Ｌ）、２０００（ＩＵ／Ｌ）、３０００（ＩＵ／Ｌ）、５０００（ＩＵ／Ｌ）、７５００（ＩＵ／Ｌ）または１００００（ＩＵ／Ｌ）とし、各濃度において２または３回計測した。
【００５３】
図５からわかるように、試料中のｈＣＧ濃度が低濃度の場合は、ほとんどの分析対象物が標識された第１の特異結合物質と結合し、第１の検出部５に固定化された第２の特異結合物質と結合した。したがって、第１の検出部５で検出される標識材の寄与する反応に由来する信号強度Ｈｓは、濃度が増加すると増加した。試料中のｈＣＧ濃度が高濃度の場合には、標識された第１の特異結合物質と特異結合していない分析対象物が反応系に過剰に存在するため、標識された第１の特異結合物質と特異結合した分析対象物と、標識された第１の特異結合物質と特異結合していない分析対象物とが競合して第１の検出部５に固定化された第２の特異結合物質と特異結合反応する結果、第１の検出部５で検出される標識材の寄与する反応に由来する信号強度Ｈｓは、濃度が増加すると低下した。
この図５の点線を検量線とすることで、分析対象物の濃度を特定することができた。すなわち、縦軸である信号強度Ｈｓがある値を示したとき、この値を示す点線の横軸が濃度に相当した。例えば、信号強度Ｈｓが５．０とすると、約１２００（ＩＵ/Ｌ）と特定することができた。
【００５４】
しかし、ここで、解析器９が、図５の点線を検量線として参照したとき特定される濃度が複数存在し、信号強度に対する分析対象物の濃度が一義的に定まらない場合があった。ｈＣＧ濃度が６０００（ＩＵ/Ｌ）以上を示す可能性がある場合、信号強度Ｈｓが１０の時、ｈＣＧ濃度が約３５００（ＩＵ/Ｌ）または約７６００（ＩＵ/Ｌ）のいずれか区別がつかなかった。このような信号強度Ｈｓに対する分析対象物の濃度が一義的に定まらない場合に、以下のように、第２の検出部６のクロマトグラムより信号強度Ｈｒを同時に求め、このＨｒとＨｓを同時に解析して濃度を特定することができた。
【００５５】
図６に、第２の検出部６に６５０ｎｍ波長の光を照射した場合の信号強度ＨｒとｈＣＧ濃度との関係を表したグラフを示した。
ｈＣＧ濃度が実質的にゼロである精度管理用のコントロール尿にｈＣＧを添加したものを試料として用いた。各試料のｈＣＧ濃度は、０（ＩＵ／Ｌ）、１０（ＩＵ／Ｌ）、３０（ＩＵ／Ｌ）、５０（ＩＵ／Ｌ）、１００（ＩＵ／Ｌ）、３００（ＩＵ／Ｌ）５００（ＩＵ／Ｌ）、１０００（ＩＵ／Ｌ）、１５００（ＩＵ／Ｌ）、２０００（ＩＵ／Ｌ）、３０００（ＩＵ／Ｌ）、５０００（ＩＵ／Ｌ）、７５００（ＩＵ／Ｌ）または１００００（ＩＵ／Ｌ）とし、各濃度で２または３回計測した。
【００５６】
図６からわかるように、分析対象物と結合していない標識された第１の特異結合物質が第２の検出部６に固定化された分析対象物もしくは類似物と結合するため、標識材の寄与する反応に由来する信号強度Ｈｒは、濃度が増加すると低下した。すなわち、濃度が低下し、分析対象物と結合していない標識された第１の特異結合物質が存在するときは、これらが第２の検出部６に固定化された分析対象物もしくは類似物と結合するため、標識材の寄与する反応に由来する信号強度Ｈｒが発生した。しかし、濃度が高く大過剰の分析対象物が存在すると、実質的にすべての標識された第１の特異結合物質が分析対象物と結合しているため、第２の検出部６に到達しても、固定化された分析対象物もしくは類似物と結合することができず、洗い流されてしまうため、標識材の寄与する反応に由来する信号強度Ｈｒは、実質的に発生しなかった。
【００５７】
ここで、より厳密には、本実施例のように、第１の特異結合物質が抗体のように結合部位を複数有する場合（ＩｇＧ抗体の場合は２個所）、これら各々の結合部位の結合状態が信号強度に反映した。すなわち、すべての結合部位が分析対象物で埋まっている第１の特異結合物質は、新たに分析対象物と結合できる確率が極めて低いため、第２の検出部６に固定化された分析対象物と結合する確率も、極めて低かった。しかし、一つでも分析対象物と結合可能な結合部位が、残留していれば、第２の検出部６に固定化された分析対象物と結合する確率は、残留結合部位の割合に応じて増加した。いずれにせよ、図６の点線に示した信号増加Ｈｒは、分析対象物濃度が増加するに従って低下した。
【００５８】
この図６の点線と図５の点線を定量情報とすることで、次のように分析対象物の濃度を特定することができた。
上述のように、図５の点線のみを参照したとき特定される濃度が複数存在し、信号強度に対する分析対象物の濃度が一義的に定まらない場合があった。例えば、ｈＣＧ濃度が６０００（ＩＵ/Ｌ）以上を示す可能性がある場合、信号強度Ｈｓが１０の時、ｈＣＧ濃度が約３５００（ＩＵ/Ｌ）または約７６００（ＩＵ/Ｌ）のいずれであるかが区別できなかった。しかし、図６の点線をさらに参照することで、濃度を特定することができた。すなわち、図６の信号強度Ｈｒが１．２であれば、点線より濃度は約３５００（ＩＵ/Ｌ）となり、信号強度Ｈｒが０．４５であれば、点線より濃度は約７６００（ＩＵ/Ｌ）であると確認できた。
このように、図５の信号強度Ｈｓのみからでは、分析対象物の濃度が一義的に定まらない場合にも、第２の検出部６のクロマトグラムより信号強度Ｈｒを求め、このＨｒおよびＨｓ両者を併用して解析することで、濃度を特定することが可能であった。
【００５９】
ここで、図６のＨｒのみから濃度を特定することも可能であったが、低濃度域における点線の濃度に対する傾きが小さいため、計測されたＨｒより、濃度を特定するときの精度が、図５のＨｓより濃度を特定するときより低下した。したがって、Ｈｒは、Ｈｓより導かれた２つの濃度のうち、どちらが真であるかのみを決定するのに活用して、濃度特定にはＨｓのみから活用することが好ましかった。
また、簡単のために、図６のＨｒが所定値以上の場合にのみ、図５のＨｓより濃度を特定することも可能であった。例えば、本実施例の場合、Ｈｒが０．６以上のときのみ図５のＨｓより濃度を特定し、Ｈｒが０．６以下の場合はプロゾーン現象が発生していると判定して、濃度は６０００（ＩＵ/Ｌ）以上であると限定するのみで、濃度を特定しないと簡単であった。すなわち、Ｈｒはプロゾーン判定にのみ活用すると簡単化に効果的であった。
【００６０】
さらに、本実施例では、第２の検出部６が第１の検出部５より液体試料が展開していく方向（Ｚ方向）の下流側に配置したが、このように配置することで、定量精度が向上した。なぜなら、抗体などのタンパク質が固定化されたマトリクス中を液体が通過すると、流れが乱れ、マトリクスの特定部分のみに液体試料が流れる現象が発生しやすくなり、下流側の検出部での結合度合いにむらが発生した。これにより再現性が低下した。マトリクスに固定化されたタンパク質による液体試料の流れの妨害は、空間的障害や、固定化密度むらによる親水性のむらなどにより発生した。濃度を特定、すなわち定量する第１の検出部５で発生する信号の再現性を確保することによって、定量精度を向上させることができたため、定量用検出部を上流側に配置することが好ましかった。
【００６１】
以上のように、ＨｓおよびＨｒ両者を定量情報として解析することで、いわゆるプロゾーン現象の影響を受けることなく、濃度を特定することができた。
なお、本実施例では、ＨｓおよびＨｒを活用した例を示したが、図３および４に示したＳｓおよびＳｒを同様に活用しても、同様の効果が得られた。すなわち、Ｓｓで定量し、Ｓｒでプロゾーン判定を実施することができた。
以上、説明したように、本実施例による特異結合分析方法によれば、プロゾーン現象が生じている場合においても、簡易かつ迅速に、試料中の分析対象物の定性または定量を行うことができた。
【００６２】
【発明の効果】
以上のように、本発明によれば、２箇所の検出部で発生した特異結合物質の特異結合反応に基づく信号強度の分析値と、分析対象物の濃度との対応を示した定量情報とを参照して試料中の分析対象物の量を特定するため、プロゾーン現象の影響を受けず、簡易かつ迅速に試料中の分析対象物の正確な定性または定量分析を行うことができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明に係る特異結合分析方法に用いる試験試薬用のストリップの一実施の形態の概略斜視図である。
【図２】本発明に係る特異結合分析方法に用いる分析装置の一実施の形態の構成を示す概略図である。
【図３】図２に示す分析装置により検出したストリップ１の第１の検出部５の信号強度の分布状況を表す概略図である。
【図４】図２に示す分析装置により検出したストリップ１の第２の検出部６の信号強度の分布状況を表す概略図である。
【図５】第１の検出部５において６５０ｎｍ波長の光を照射した場合のｈＣＧ濃度と信号強度Ｈｓとの関係を表すグラフである。
【図６】第２の検出部６において６５０ｎｍ波長の光を照射した場合のｈＣＧ濃度と信号強度Ｈｒとの関係を表したグラフである。
【符号の説明】
１ストリップ
２マトリクス
３試料点着部
４保持部
５第１の検出部
６第２の検出部
７光源
８光検出器
９解析器
１０計測開始検知器
１１第一の電極
１２第二の電極[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a specific binding analysis method for performing qualitative analysis or quantitative analysis of an analyte in a sample.
[0002]
[Prior art]
In recent years, with the expansion of medical care at home and in the community, and the increase in urgent clinical tests, development of specific binding analysis methods that enable quick, simple and accurate measurement even if you are not a clinical laboratory specialist Has come to be desired in abundance.
As such a specific binding analysis method, many methods such as an immunoassay applying an antigen-antibody reaction, a receptor assay using a receptor, and a nucleic acid probe assay using hybridization of complementary nucleic acid sequences are known. Because of its high specificity, it is widely used in a wide range of fields including clinical tests.
[0003]
Furthermore, in a chromatographic analysis method which is a kind of immunoassay, for example, a liquid sample is brought into contact with a matrix comprising a porous carrier or a fine particle-packed carrier in which a specific binding substance is insolubilized or immobilized, and the liquid sample is brought into contact with the matrix. The presence or absence of the analyte in the sample is analyzed by utilizing the phenomenon of flowing out due to the osmotic force due to the capillary phenomenon (for example, Japanese Patent No. 2504923, Japanese Patent No. 2667793, Japanese Patent Publication No. 7-78503) JP-A-10-73592 and JP-A-8-240591).
[0004]
Specifically, a specific binding substance labeled with a labeling material that can be arbitrarily detected by the naked eye or an optical method is subjected to a specific binding reaction between the analyte. Then, the specific binding substance that has undergone specific binding reaction with the analyte is bound to the binding material immobilized on the matrix, and finally the presence or absence of the analyte in the sample is determined according to the amount of label immobilized on the matrix. Analyze.
In this chromatographic analysis method, since the surface area of the support in the matrix is large, a large amount of specific binding substances can be insolubilized, and the collision frequency between reaction molecules that can cause specific binding reactions is higher than that in the case of reactions in the liquid phase. Therefore, it is advantageous in terms of measurement sensitivity and measurement time.
[0005]
[Problems to be solved by the invention]
However, the conventional chromatographic analysis method has a problem called a prozone phenomenon. The prozone phenomenon is a phenomenon in which the concentration of the analyte cannot be uniquely determined with respect to the signal intensity derived from the specific binding reaction.
Specifically, when an analyte is excessively present in a sample, it is labeled with an analyte that is specifically bound to the labeled specific binding substance (labeled material-specific binding substance-analyte conjugate). The specific binding substance and the single analyte that did not specifically bind exist on the matrix.
[0006]
Then, the analyte specifically bound to the labeled specific binding substance and the analyte alone compete with the binding material immobilized on the matrix and undergo a specific binding reaction. For this reason, a single analyte may be bound to the binding material, and the analyte specifically bound to the labeled specific binding substance may flow out due to osmotic force due to capillary action. As a result, the amount of the labeled specific binding substance bound to the binding material decreases, and the signal intensity based on the specific binding reaction of the specific binding substance does not correspond to the amount of the analyte contained in the sample.
[0007]
Therefore, when the amount of the analyte in the sample is excessive, the amount of the analyte specified from the labeled amount is measured to be abnormally small, and the presence or absence of the analyte in the sample is accurately determined. There are cases that cannot be grasped.
On the other hand, in order to accurately measure the analyte without being affected by the prozone phenomenon, the analyte is increased in concentration by measuring the intensity of the signal multiple times using different diluted samples. A method for confirming the existence has been proposed. However, it is necessary to use a plurality of reaction vessels, resulting in a complicated measurement process and an increase in size and complexity of the analyzer.
[0008]
Therefore, the present invention provides a specific binding analysis method and a specific binding analysis that are not affected by the prozone phenomenon and can accurately and qualitatively and quantitatively measure an analyte in a sample even with a small and simple measuring device. An object is to provide an apparatus. In particular, the present invention fixes the conjugate of the labeling material-first specific binding substance-analyte to the first detection unit to which the second specific binding substance is fixed, and the first detection unit uses the first detection unit. Since the quantification is performed based on the intensity of the signal, the measurement accuracy is particularly high in the low concentration range.
[0009]
[Means for Solving the Problems]
In the present invention, (A) a sample containing an analyte is brought into contact with a first specific binding substance labeled with a detectable labeling substance, and the analyte is bound to the first specific binding substance to thereby label the substance. -First specific binding substance-a step of obtaining a conjugate of the analyte, (B) the sample is brought into contact with the first detection unit to which the second specific binding substance is immobilized, and bound to the first specific binding substance An excess analyte that was not, and a step of binding the conjugate to the second specific binding substance and immobilizing it on the first detection unit, (C) immobilizing the same or similar substance as the analyte A step of bringing the sample into contact with a second detection unit, binding the first specific binding substance in the conjugate to the substance, and fixing the conjugate to the second detection unit; The signal 1 derived from the labeling material obtained in the detection unit and the second detection unit And (E) qualitatively or quantitatively determining the concentration of the analyte in the sample based on the intensity of the signal 1 and the signal 2, respectively. To a specific binding analysis method.
[0010]
In the step (E), when specifying the concentration of the analyte based on the intensity of the signal 1 obtained in the step (D), when two different concentrations 1 and 2 are derived, It is preferable to determine which one of the concentration 1 and the concentration 2 is true based on the intensity of the signal 2 to determine the concentration of the analyte.
It is preferable to determine the prozone phenomenon based on the intensity of the signal 2 obtained in the step (D).
[0011]
The first detection unit to which the second specific binding substance is immobilized is brought into contact with the sample that has undergone the step (A), and the excess analyte that has not bound to the first specific binding substance and the conjugate are converted into the first detection part. The step (B) of binding to the first specific binding substance by binding to the two specific binding substances is performed, and then the step (B) is applied to the second detection part to which the same or similar substance as the analyte is fixed. It is preferable to perform the step (C) of contacting the passed sample, binding the first specific binding substance in the conjugate to the substance, and fixing the conjugate to the second detection unit.
[0012]
In addition, the sample that has undergone the step (A) is brought into contact with a second detection unit in which a substance that is the same as or similar to the analyte is fixed, and the first specific binding substance in the conjugate is bound to the substance. Then, the step (C) of fixing the conjugate to the second detection unit is performed, and then the sample having undergone the step (C) is brought into contact with the first detection unit to which the second specific binding substance has been immobilized. It is also possible to perform the step (B) of binding the excess analyte to be bound to one specific binding substance and the conjugate to the second specific binding substance and immobilizing it on the first detection unit.
[0013]
In addition, the step (A) is performed in advance, the first detection unit and the second detection unit are provided on a sheet-like chromatographic matrix, and the sample that has undergone the step (A) is provided with the first detection unit and the second detection unit. The sample is dropped on the upstream side of the detection unit, and the sample is moved to the first detection unit and the second detection unit by osmotic force due to capillary action in the matrix, and steps (B) to (E) are performed. preferable.
[0014]
In addition, a holding unit for holding the first specific binding substance labeled with a detectable labeling material, a first detection unit, and a second detection unit are provided on a sheet-like chromatographic matrix, and the sample is held by the holding unit. And the sample is moved to the holding unit, the first detection unit, and the second detection unit by osmotic force due to capillary action in the matrix, and steps (A) to (E) are performed. It is also preferable to do this.
[0015]
The signal derived from the labeling material is preferably a signal indicating coloration, fluorescence or luminescence.
It is preferable that at least one of the first specific binding substance and the second specific binding substance is an antibody.
The labeling material is preferably a metal sol, a dye sol or particles containing a fluorescent substance, or colored latex particles.
[0016]
In the step (D), it is preferable that the signal 1 and the signal 2 are continuously measured in this order along the moving direction of the analysis object.
In the step (D), a corresponding curve indicating the relationship between the signal 1 and the signal 2 continuously measured and the position in the moving direction of the analysis object is created, and in the step (E), based on the corresponding curve. Qualitative or quantitative determination is preferred.
In the step (E), the analyte is quantified based on the quantitative information obtained from the sample whose concentration of the analyte is known and the signals 1 and 2 obtained in the step (D). Is preferred.
[0017]
Furthermore, the present invention provides a sheet-like chromatographic matrix, a first detection unit provided on the matrix and fixed with a specific binding substance, and a substance provided on the matrix and the same or similar to the analyte. A second detection unit, and a sample containing an analyte and a specific binding substance is moved to the first detection unit and the second detection unit by osmotic force by capillary action to cause a specific binding reaction, Provided is a specific binding analysis device characterized in that the analyte is qualitatively or quantitatively detected by detecting a signal derived from the specific binding reaction.
[0018]
Further, the device includes a holding unit provided on the upstream side of the first detection unit on the matrix, the holding unit holding a specific binding substance labeled with a detectable labeling material, It is preferable to move the sample from the holding unit to the first detection unit and the second detection unit by osmotic force due to capillary action.
[0019]
In addition to the holding unit, the device includes a sample spotting unit provided on the upstream side of the holding unit on the matrix, and the sample is separated from the sample spotting unit by osmotic force due to capillary action. It is preferable to move to the holding unit, the first detection unit, and the second detection unit.
[0020]
The device does not have the holding unit, and includes a sample spotting unit provided on the upstream side of the first detection unit on the matrix, and the sample spotting unit is caused to penetrate the sample by osmotic force due to capillary action. It is also preferable to move the first detector to the first detector.
[0021]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
First, a specific binding analysis method according to the present invention will be described with reference to the drawings. FIG. 1 is a schematic perspective view of a test strip which is a specific binding analysis device that can be used in the specific binding analysis method of the present invention.
The test strip 1 is a sheet-like test piece, and has, for example, a matrix 2 on the surface of a chromatographic test piece, which is a region in which a sample containing an analyte can permeate and develop. The strip 1 is made of a porous carrier or a fine particle-packed carrier that can permeate and develop a sample by capillary action, for example.
[0022]
On the matrix 2, a sample spotting unit 3, a holding unit 4, a first detection unit 5 and a second detection unit 6 are arranged. The sample spotting unit 3 is an area provided in the matrix 2, and a sample is spotted thereon. The holding unit 4 is disposed between the sample spotting unit 3 and the first detection unit 5 and the second detection unit 6, and is an area into which the spotted sample flows, and is labeled with a labeling material. One specific binding substance is provided. The 1st detection part 5 is an area | region into which a sample flows in via the holding | maintenance part 4, and the 2nd specific binding substance is fix | immobilized as a binding material. The second detection unit 6 is a region into which the sample flows through the first detection unit 5 following the holding unit 4, and the analysis object or the like is immobilized thereon.
[0023]
Here, the sample used in the specific binding analysis method of the present invention is a liquid sample that is predicted to contain the analyte. For example, urine, serum, plasma, whole blood, saliva, tears, cerebrospinal fluid, and secretions from the nipple are included. Alternatively, it may be a sample obtained by suspending or dissolving a solid, gel or sol such as mucus, body tissue or cells in a liquid such as a buffer, extract or lysate.
[0024]
In addition, the analyte in the present invention may be any substance as long as a specific binding substance having the property of specifically binding to the analyte is present, for example, various proteins, polypeptides, sugars that function as antibodies or antigens. Examples include proteins, polysaccharides, complex glycolipids, nucleic acids, effector molecules, receptor molecules, enzymes and inhibitors. More specifically, α-fetoprotein, carcinoembryonic antigen (CEA), tumor markers such as CA125 and CA19-9, various proteins such as β2-microglobulin (β2m) and ferritin, glycoproteins or complex glycolipids, estradiol (E2), estriol (E3), various hormones such as human chorionic gonadotropin (hCG), luteinizing hormone (LH), human placental lactogen (hPL), HBs antigen, HBs antibody, HBc antigen, HBc antibody Various virus-related antigens and virus-related antibodies such as HCV antibody and HIV antibody, various allergens and corresponding IgE antibodies, narcotic drugs, medical drugs and metabolites thereof, nucleic acids of virus and tumor-related polynucleotide sequences, etc. Is mentioned.
[0025]
The specific binding substance in the present invention may be any substance that specifically binds to the analyte, such as an antibody, an antigen, a glycoprotein, a polysaccharide, a complex glycolipid, a nucleic acid, an effector molecule, a receptor molecule, an enzyme, And inhibitors.
In the present invention, the first specific binding substance labeled with the labeling material and the second specific binding substance are used, and the first specific binding substance and the second specific binding substance labeled are analyzed. It is preferable that it can couple | bond together through a thing. In view of high specificity, at least one of the first specific binding substance and the second specific binding substance is preferably an antibody. Furthermore, a monoclonal antibody is preferable.
[0026]
Note that the first specific binding substance and the second specific binding substance are not necessarily required to be the same. Moreover, when the analysis object does not have two or more same epitopes, it is preferable to use the 1st specific binding substance and the 2nd specific binding substance which have specificity with respect to a different epitope, respectively. However, when the analyte has a plurality of the same epitope, the same specific binding substance may be used.
[0027]
In addition, the substance immobilized on the second detection unit 6 may be the analysis object itself, or may be a similar substance that exhibits the same behavior as the analysis object. That is, any substance that binds to the first specific binding substance labeled with the labeling material may be used. For example, a substance having the same epitope as the epitope of the analyte to be bound to the first specific binding substance may be used.
[0028]
The labeling material used in the present invention is a substance whose presence can be arbitrarily detected. For example, a direct label that is visible with the naked eye when in the natural state, or a direct label that is easily visible by using an optical filter or a method that promotes fluorescence by applying a stimulus such as ultraviolet light, as well as a substrate Indirect labels that can detect visible signals by adding a simple developing reagent are also included.
[0029]
Direct labels include finely colored particles such as dye sols, metal sols, colored latex particles, and particles containing fluorescent materials. Indirect labels include enzymes such as alkaline phosphatase and horseradish peroxidase. Since direct labeling generates a detectable signal without adding another reagent, it is possible to obtain an analysis result instantaneously, and it is better to use direct labeling because it is robust and stable.
[0030]
In the following, urine is labeled as a sample, hCG is labeled as an analyte contained in the sample, and an anti-hCG monoclonal antibody capable of participating in a sandwich reaction with hCG as a first specific binding substance and a second specific binding substance is labeled. An embodiment of the present invention using a gold colloid as a material will be described.
When colored particles such as gold colloid are used here, since the colored particles are fine, the label can be concentrated in a small area or volume, and the first detection unit 5 and the second detection unit 6 are used. Thus, hCG can be qualitatively and / or quantitatively accurately determined using a signal derived from a reaction contributed by colloidal gold, which is a labeling material for the first specific binding substance.
[0031]
First, a sample for quantitative analysis or qualitative analysis is spotted on the sample spotting unit 3. The spotted sample reaches the holding part 4 while penetrating the matrix 2 from the sample spotting part 3 by capillary action. That is, a sample containing an analyte is brought into contact with a holding unit that holds the first specific binding substance labeled with a detectable labeling material, and the analyte is bound to the first specific binding substance to label. A material-first specific binding substance-analyte conjugate is obtained (step (A)).
As described above, the matrix 2 may be any place where the analyte and the specific binding substance are developed, and examples thereof include a porous carrier and a gel carrier. Here, the case where nitrocellulose is used will be described.
[0032]
Nitrocellulose is superior to other matrix materials such as paper because it has the ability to bind to proteins inherently without prior sensitization. By directly applying a specific binding substance such as an antibody to nitrocellulose, the specific binding substance can be reliably fixed, and no chemical treatment is required to interfere with the specific binding ability of the specific binding substance. For example, when the matrix material is paper, it is necessary to perform chemical bonding using CNBr, carbonyl dimidazole, tresyl chloride or the like to immobilize the antibody.
[0033]
Further, since nitrocellulose having pores of various sizes can be obtained, it becomes easy to select a matrix material in accordance with requirements such as a sample flow rate. When a nitrocellulose sheet is used, it is desirable to increase the strength in handling by attaching (lining) a sheet-like reinforcing material made of a material such as plastic to the back of the sheet. This can be easily manufactured by forming a nitrocellulose thin film on the reinforcement.
[0034]
After the antibody is immobilized on the detection unit, it is preferable to block the matrix and reduce nonspecific adsorption to the matrix. Blocking can be achieved by treatment with a protein (such as bovine serum albumin or milk protein), polyvinyl alcohol, ethanolamine, or a combination thereof.
[0035]
The holding unit 4 is provided with an anti-hCG monoclonal antibody which is a first specific binding substance having immunological binding characteristics with hCG which is an analysis object. The anti-hCG monoclonal antibody is labeled with a gold colloid as a labeling material.
The analyte hCG contained in the sample urine flows into the holding unit 4 and specifically binds to the first specific binding substance, whereby a conjugate of labeling material-first specific binding substance-analyte is obtained. . In other words, the colloidal gold is imparted to the hCG that is the analysis object via the anti-hCG monoclonal antibody.
[0036]
Here, the first specific binding substance is preferably provided in the holding unit 4 in a dry state. For example, a reagent containing a first specific binding substance is applied to the matrix after blocking, and a freeze-drying process is performed so that the first specific binding substance is supported on the holding unit 4 in a dry state. Thus, when the holding unit 4 is in a dry state, the first specific binding substance is held in the holding unit 4, and when the matrix 2 is wetted by the liquid sample permeating and developing the matrix 2, This specific binding substance can move freely on the matrix 2.
[0037]
Therefore, the sample including the conjugate having a state in which the analyte and the first specific binding substance are bound to each other is infiltrated and expanded through the matrix 2 while the first detection unit 5 and the second detection in the matrix 2 are detected. Flows into section 6.
An anti-hCG monoclonal antibody that is a second specific binding substance that can bind to the analyte hCG is substantially immobilized on the first detection unit 5. For example, when the matrix is made of nitrocellulose, the antibody can be physically and chemically adsorbed and immobilized on the matrix by applying a reagent containing the antibody to the matrix. This second specific binding substance, the anti-hCG monoclonal antibody, does not migrate even when wet.
In the second detection unit 6, the analyte (hCG) or the like that binds to the anti-hCG monoclonal antibody that is the first specific binding substance is substantially immobilized. This also does not move in a wet state.
[0038]
Note that the sample may be spotted on the sample spotting portion after reacting with the first specific binding substance outside the test reagent strip in advance. The first specific binding substance to be reacted with the sample outside the strip may not be bound to the labeling material, and further, the labeling material generates a signal different from the labeled first specific binding substance in the matrix. It does not matter if it is combined with. When the labeled first specific binding substance and the sample are reacted in advance outside the strip, the holding unit 4 provided with the first specific binding substance does not have to be arranged in the matrix 2.
[0039]
The analyte in the sample that reaches the first detection unit 5 specifically binds to the second specific binding substance. As a result, the analysis object is fixed to the first detection unit 5 via the second specific binding substance. That is, the anti-hCG monoclonal antibody that is the first specific binding substance labeled with colloidal gold is the anti-hCG that is the second specific binding substance immobilized on the first detection unit 5 via the analyte hCG. Binds to a monoclonal antibody.
This is because the sample that has undergone the step (A) is brought into contact with the first detection unit to which the second specific binding substance is immobilized, and the excess analyte that has not bound to the first specific binding substance is removed from the second detection target. This is a step (B) of binding to the specific binding substance and fixing it to the first detection unit.
[0040]
Here, when the hCG in the sample is excessive, hCG not specifically bound to the anti-hCG monoclonal antibody labeled with the gold colloid and hCG specifically bound to the anti-hCG monoclonal antibody with the gold colloid are the first. In the specific binding reaction with the second specific binding substance in the detection unit 5.
As a result, a single hCG preferentially reacts and binds to the specific binding substance immobilized on the first detection unit 5. Then, the amount of the anti-hCG monoclonal antibody labeled with the gold colloid bound to the first detection unit 5 decreases, the signal intensity contributed by the gold colloid decreases, and the signal detected by the first detection unit 5 The intensity no longer reflects the amount of hCG in the sample. As described above, the phenomenon that the signal intensity does not increase according to the amount of the analysis object due to the excessive analysis object is referred to as the prozone phenomenon as described above.
[0041]
Among the anti-hCG monoclonal antibodies that are the first specific binding substances labeled with the colloidal gold that has reached the second detection unit 6, the anti-hCG monoclonal antibodies that are the first specific binding substances that can further bind to the analyte hCG Is specifically bound to the immobilized analyte hCG and immobilized on the second detection unit 6. That is, the anti-hCG monoclonal antibody, which is the first specific binding substance labeled with colloidal gold, is immobilized on the second detection unit 6 via the analyte hCG.
This is caused by bringing the sample that has undergone the step (B) into contact with a second detection unit to which the same or similar substance as the analyte is fixed, and binding the first specific binding substance in the conjugate to the substance. And (c) fixing the combined body to the second detection unit.
[0042]
Here, it is preferable that the sample is developed so that the sample continues to flow even if the sample exceeds the first detection unit 5 and the second detection unit 6. For this purpose, a sufficient sample is spotted on the sample spotting unit 3, and in the first detection unit 5 and the second detection unit 6, an extra labeled first specific binding substance that does not participate in the binding reaction is present. The first detection unit 5 and the second detection unit 6 are washed away by the sample flow that continues beyond the detection unit. For this purpose, an absorption part may be provided at the end part where the sample of the matrix 2 is developed. As the material of the absorption part, any material having sufficient absorption ability to wash away samples other than the analysis target may be used, and examples thereof include glass fiber filter paper GA200 (manufactured by Toyo Co., Ltd.).
[0043]
When the absorption part is provided in this manner, unreacted substances are washed away together with the flow of the sample. Therefore, after the specific binding reaction, a signal derived from the specific binding reaction is detected without performing the separation operation of the unreacted substances. It can be detected by the second detector 6. Therefore, in the specific binding analysis method of the present invention, the measurement of the intensity of the signal obtained from the specific binding reaction between the analyte and the specific binding substance is performed at any place where the specific binding reaction is performed. It is possible to detect the signal intensity distribution in the region including the first detection unit 5 and the second detection unit 6 or the region including the first detection unit 5 and the second detection unit 6. It is preferable to qualitatively or quantitatively determine the analyte in the sample from the distribution situation.
[0044]
Then, the step (D) of measuring the intensity of the signal 1 and the signal 2 derived from the labeling material obtained in the first detection unit and the second detection unit, respectively, and the intensity of the signal 1 and the signal 2 Based on this, the step (E) of obtaining the concentration of the analyte in the sample and performing qualitative or quantitative determination is performed.
Quantitative information showing the correspondence between signal intensity distribution and concentration obtained by measurement using a sample containing an analyte with a known concentration was created in advance, and this quantitative information and analysis were obtained. The concentration may be determined from the signal intensity distribution.
[0045]
FIG. 2 is a schematic diagram showing a configuration of an analyzer used together with the strip 1 in the specific binding analysis method according to the present invention. The analyzer includes, for example, a first electrode 11, a second electrode 12, a measurement start detector 10, an analyzer 9, a light source 7, and a photodetector 8. The first electrode 11 and the second electrode 12 are electrodes for measuring the conductivity of the sample spotting part 3. The measurement start detector 10 is a device that detects that a sample is spotted on the sample spotting unit 3 from a change in conductivity, and supplies a detection signal to the analyzer 9. After receiving the detection signal, the analyzer 9 controls the stage 13 to scan the entire test reagent strip 1 in the Z direction when a predetermined time has elapsed. Further, the light source 7 is controlled and the output signal of the photodetector 8 is analyzed. The light source 7 is a device that irradiates light to the first detection unit 5 and the second detection unit 6. The photodetector 8 is a device that detects reflected light from the first detection unit 5 and the second detection unit 6.
[0046]
The operation of this analyzer will be described. First, before the sample spotting, the conductivity of the sample spotting part 3 in the dry state and the conductivity of the sample spotting part 3 in the wet state at the time of sample spotting are measured. Information thus obtained is input to the measurement start detector 10 as measurement start information.
Then, when a sample containing hCG is spotted on the sample spotting part 3 and the sample spotting part 3 changes from a dry state to a wet state, the sample points monitored by the first electrode 11 and the second electrode 12 The conductivity of the landing portion changes. The measurement start detector 10 can detect that the sample is spotted on the sample spotting unit 3 by referring to the change in conductivity and the measurement start information.
[0047]
The sample is preferably spotted on the sample spotting unit 3 after the test reagent strip 1 is mounted in the analyzer, but the test reagent strip 1 spotted with the sample may be mounted on the analyzer. .
When the measurement start detector 10 detects spotting of the sample, the analyzer 9 controls the stage 13 to scan the test reagent strip 1 in the Z direction. At the same time, the analyzer 9 controls the light source 7 and the photodetector 8 to measure the change in the intensity of the signal accompanying the scanning, and obtain the chromatograms shown in FIGS.
The light source 7 irradiates a region including the first detection unit 5 and the second detection unit 6 with light having a predetermined wavelength (for example, 650 nm), and the photodetector 8 detects the reflected light. As the measurement wavelength, a wavelength suitable for the coloration of the sample and the labeling material in the first detection unit 5 and the second detection unit 6 may be selected.
[0048]
Here, the signal may be any signal that is generated by a reaction contributed by the labeling material and can be detected. For example, fluorescence that can be measured with a fluorometer, luminescence that can be measured with a luminescence photometer, or first detection. The visual determination in the unit 5 and the second detection unit 6 and coloration that can be measured with a color difference meter may be used. In this case, the first detection unit 5 and the second detection unit 6 detect the reflected light, the intensity of fluorescence or light emission generated in the first detection unit 5 and the second detection unit 6, and the like. .
This signal detection is continuously performed while the positional relationship between the test reagent strip 1 and the light source 7 and the photodetector 8 is changed in parallel with the penetration direction of the sample, that is, relative to the Z direction. Either the test reagent strip 1 or the light source 7 and the photodetector 8 may be moved in parallel with the penetration direction of the sample, or both may be moved.
[0049]
The photodetector 8 sends this signal to the analyzer 9. The analyzer 9 measures the intensity of the signal by analyzing the signal from the photodetector 8. The analyzer 9 creates a corresponding curve consisting of the measured signal intensity and the scanning distance, that is, a chromatogram, and analyzes it.
FIGS. 3 and 4 are schematic diagrams of corresponding curves (chromatograms) drawn by analyzing the signal intensity distribution in the vicinity of the first detector 5 and the second detector 6, respectively. This chromatogram is drawn by irradiating light from the light source 7 onto the matrix 2 while scanning the test reagent strip 1 or the light source 7, and analyzing the reflected light detected by the photodetector 8 with the analyzer 9. . In this chromatogram, the vertical axis represents the signal intensity in the vicinity of the first detection unit 5 and the second detection unit 6, and the horizontal axis represents the region of the detection unit (scanning distance from the sample spotting unit 3). .
[0050]
The height H of this chromatogram is measured as the intensity of the signal based on the specific binding reaction. Here, the area S of the chromatogram may be the signal intensity based on the specific binding reaction. The heights of the chromatograms of the first detector 5 and the second detector 6 are Hs and Hr, respectively, and the areas of the chromatograms of the first detector 5 and the second detector 6 are Ss and Sr, respectively. Show.
Here, the test reagent strip 1 or the light source 7 is scanned, and the reflected light in the region including the first detection unit 5 and the second detection unit 6 is continuously measured to obtain a chromatogram. For example, the first detection unit 5 and the second detection unit 6 are connected to each other with a straight line connecting the upstream signal strength near the spotting unit 3 and the downstream signal intensity on the opposite side. The distance obtained by subtracting the height of the straight line from the height of the maximum value of the chromatogram in section 6 is set as the height H of the chromatogram, and the area of the area surrounded by the chromatogram and the straight line is chromatographed. By setting the area S in grams, the signal intensity based on the specific binding reaction obtained by subtracting the signal intensity derived from the background from the signal intensity in the first detection unit 5 and the second detection unit 6 can be obtained. Even if the sample is colored, such as whole blood, the analyte in the sample can be qualitatively or quantified without being affected by the background or the contaminants.
[0051]
At this time, the signal intensity at an arbitrary location on the matrix 2 other than the first detection unit 5 and the second detection unit 6 may be the intensity derived from the background. For example, the first detection unit 5 and You may choose the minimum value among the signal strengths in the 2nd detection part 6 vicinity.
Background is the behavior of a sample that does not contain the analyte. For example, the non-specific adsorption of specific binding substances or the like in the first detection unit 5 and the second detection unit 6 or the coloration of the sample itself when measuring a signal due to coloration affects the background, and the measurement accuracy is reduced. It is decreasing. The contaminant is a substance other than the analyte contained in the sample, but the contaminant that is a problem in the specific binding analysis method is the same as the analyte in the binding reaction with the specific binding substance. A substance that exhibits behavior (for example, a structurally related substance of the analysis target) or a substance that interferes with the specific binding reaction between the analysis target and the specific binding substance by binding to the analysis target.
The analyzer 9 has quantitative information in a memory (not shown), and specifies the concentration of the analyte by referring to the analytical values Hs and Hr or Ss and Sr and the quantitative information.
Hereinafter, the specific binding analysis method according to the present invention will be described on the basis of an example carried out using the strip shown in FIG. 1 and the analyzer shown in FIG. 2, but the present invention is not limited to these. .
[0052]
【Example】
"Example"
The specific binding analysis method of the present invention was performed using the strip 1 shown in FIG. 1 and the analyzer shown in FIG. Here, the analyzer 9 specifies the concentration of the analysis object from Hs and Hr.
A graph showing the relationship between the signal intensity Hs and the hCG concentration when the first detection unit 5 is irradiated with light having a wavelength of 650 nm is shown in FIG. A sample obtained by adding hCG to a control urine for accuracy control whose hCG concentration is substantially zero was used. The hCG concentration of each sample is 0 (IU / L), 10 (IU / L), 30 (IU / L), 50 (IU / L), 100 (IU / L), 300 (IU / L) 500 ( IU / L), 1000 (IU / L), 1500 (IU / L), 2000 (IU / L), 3000 (IU / L), 5000 (IU / L), 7500 (IU / L) or 10000 (IU) / L) and measured 2 or 3 times at each concentration.
[0053]
As can be seen from FIG. 5, when the hCG concentration in the sample is low, most of the analyte binds to the labeled first specific binding substance and is immobilized on the first detection unit 5. Bound to two specific binding substances. Therefore, the signal intensity Hs derived from the reaction contributed by the labeling material detected by the first detection unit 5 increased as the concentration increased. When the hCG concentration in the sample is high, an analyte that is not specifically bound to the labeled first specific binding substance is excessively present in the reaction system, and therefore the labeled first specific binding substance And the second specific binding substance immobilized on the first detection unit 5 by competing with the labeled first specific binding substance and the non-specific binding analyte. As a result of the specific binding reaction, the signal intensity Hs derived from the reaction contributed by the labeling material detected by the first detector 5 decreased as the concentration increased.
By using the dotted line in FIG. 5 as a calibration curve, the concentration of the analysis object could be specified. That is, when the signal intensity Hs on the vertical axis indicates a certain value, the horizontal axis of the dotted line indicating this value corresponds to the density. For example, when the signal intensity Hs is 5.0, it can be specified as about 1200 (IU / L).
[0054]
However, there are cases where there are a plurality of concentrations specified when the analyzer 9 refers to the dotted line in FIG. 5 as a calibration curve, and the concentration of the analysis object relative to the signal intensity may not be uniquely determined. When the hCG concentration may be 6000 (IU / L) or higher, when the signal strength Hs is 10, the hCG concentration is about 3500 (IU / L) or about 7600 (IU / L). There wasn't. When the concentration of the analysis object with respect to the signal intensity Hs is not uniquely determined, the signal intensity Hr is obtained simultaneously from the chromatogram of the second detector 6 as follows, and the Hr and Hs are analyzed simultaneously. The concentration could be specified.
[0055]
FIG. 6 shows a graph showing the relationship between the signal intensity Hr and the hCG concentration when the second detector 6 is irradiated with light having a wavelength of 650 nm.
A sample obtained by adding hCG to a control urine for accuracy control whose hCG concentration is substantially zero was used. The hCG concentration of each sample is 0 (IU / L), 10 (IU / L), 30 (IU / L), 50 (IU / L), 100 (IU / L), 300 (IU / L) 500 ( IU / L), 1000 (IU / L), 1500 (IU / L), 2000 (IU / L), 3000 (IU / L), 5000 (IU / L), 7500 (IU / L) or 10000 (IU) / L), and was measured 2 or 3 times at each concentration.
[0056]
As can be seen from FIG. 6, since the labeled first specific binding substance that is not bound to the analyte binds to the analyte or similar substance immobilized on the second detector 6, The signal intensity Hr derived from the contributing reaction decreased with increasing concentration. That is, when there is a labeled first specific binding substance that is reduced in concentration and not bound to the analyte, these are the analyte or similar substance immobilized on the second detector 6. Due to the binding, a signal intensity Hr derived from the reaction contributed by the labeling material was generated. However, when there is a large excess of the analyte having a high concentration, substantially all of the labeled first specific binding substances are bound to the analyte, so that the second detection unit 6 is reached. However, the signal intensity Hr derived from the reaction contributed by the labeling material was not substantially generated because it could not be bound to the immobilized analyte or the like and was washed away.
[0057]
Here, more strictly, when the first specific binding substance has a plurality of binding sites as in the case of an antibody (two in the case of an IgG antibody) as in this example, the binding state of each of these binding sites Reflected in signal strength. That is, since the first specific binding substance in which all the binding sites are buried with the analysis object has a very low probability of being able to newly bind to the analysis object, the analysis object immobilized on the second detection unit 6 The probability of combining with was also very low. However, if at least one binding site that can bind to the analyte remains, the probability of binding to the analyte immobilized on the second detection unit 6 depends on the ratio of the residual binding site. Increased. In any case, the signal increase Hr indicated by the dotted line in FIG. 6 decreased as the analyte concentration increased.
[0058]
By using the dotted line in FIG. 6 and the dotted line in FIG. 5 as quantitative information, the concentration of the analysis object could be specified as follows.
As described above, there are cases where there are a plurality of concentrations specified when only the dotted line in FIG. 5 is referenced, and the concentration of the analyte with respect to the signal intensity may not be uniquely determined. For example, when there is a possibility that the hCG concentration may be 6000 (IU / L) or more, when the signal intensity Hs is 10, the hCG concentration is about 3500 (IU / L) or about 7600 (IU / L). Could not be distinguished. However, the concentration could be specified by further referring to the dotted line in FIG. That is, if the signal intensity Hr in FIG. 6 is 1.2, the density is about 3500 (IU / L) from the dotted line, and if the signal intensity Hr is 0.45, the density is about 7600 (IU / L) from the dotted line. ).
As described above, the signal intensity Hr is obtained from the chromatogram of the second detection unit 6 even when the concentration of the analyte is not uniquely determined only from the signal intensity Hs in FIG. 5, and both the Hr and Hs are obtained. It was possible to specify the concentration by analyzing in combination.
[0059]
Here, it was possible to specify the concentration only from Hr in FIG. 6, but since the inclination with respect to the density of the dotted line in the low concentration region is small, the accuracy when specifying the concentration from the measured Hr is shown in FIG. It was lower than when Hs of 5 was specified. Therefore, it is preferable to use Hr only for determining which of the two concentrations derived from Hs is true, and to use only Hs for specifying the concentration.
For simplicity, it is possible to specify the concentration from Hs in FIG. 5 only when Hr in FIG. 6 is a predetermined value or more. For example, in the case of this embodiment, the concentration is specified from Hs in FIG. 5 only when Hr is 0.6 or more, and when Hr is 0.6 or less, it is determined that the prozone phenomenon has occurred, and the concentration Was only limited to 6000 (IU / L) or more, and it was simple if the concentration was not specified. That is, Hr was effective for simplification if it was used only for pro-zone determination.
[0060]
Further, in the present embodiment, the second detection unit 6 is arranged downstream of the first detection unit 5 in the direction in which the liquid sample is developed (Z direction). Improved accuracy. This is because when a liquid passes through a matrix on which a protein such as an antibody is immobilized, the flow is disturbed and a liquid sample tends to flow only in a specific part of the matrix, and the degree of binding at the downstream detection unit is increased. Unevenness occurred. As a result, reproducibility decreased. The obstruction of the flow of the liquid sample by the protein immobilized on the matrix occurred due to spatial obstacles or uneven hydrophilicity due to uneven immobilization density. Since the quantification accuracy can be improved by ensuring the reproducibility of the signal generated by the first detection unit 5 that specifies the concentration, that is, quantifies, it is preferable to arrange the quantification detection unit upstream. won.
[0061]
As described above, by analyzing both Hs and Hr as quantitative information, the concentration could be specified without being affected by the so-called prozone phenomenon.
In this embodiment, an example in which Hs and Hr are used has been described. However, the same effect can be obtained by using Ss and Sr shown in FIGS. 3 and 4 in the same manner. That is, it was quantified with Ss, and prozone determination could be performed with Sr.
As described above, according to the specific binding analysis method according to the present embodiment, even when the prozone phenomenon occurs, the qualitative or quantitative analysis of the analyte in the sample can be performed easily and quickly. It was.
[0062]
【The invention's effect】
As described above, according to the present invention, the analysis value of the signal intensity based on the specific binding reaction of the specific binding substance generated in the two detection units and the quantitative information indicating the correspondence between the concentration of the analysis target are obtained. Since the amount of the analyte in the sample is specified with reference, accurate and qualitative or quantitative analysis of the analyte in the sample can be performed easily and quickly without being affected by the prozone phenomenon.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a schematic perspective view of an embodiment of a strip for a test reagent used in a specific binding analysis method according to the present invention.
FIG. 2 is a schematic diagram showing the configuration of an embodiment of an analyzer used in the specific binding analysis method according to the present invention.
FIG. 3 is a schematic diagram showing a signal intensity distribution state of the first detection unit 5 of the strip 1 detected by the analysis apparatus shown in FIG. 2;
FIG. 4 is a schematic diagram showing a signal intensity distribution state of the second detection unit 6 of the strip 1 detected by the analyzer shown in FIG. 2;
FIG. 5 is a graph showing the relationship between hCG concentration and signal intensity Hs when the first detector 5 is irradiated with light having a wavelength of 650 nm.
FIG. 6 is a graph showing the relationship between hCG concentration and signal intensity Hr when the second detection unit 6 emits light having a wavelength of 650 nm.
[Explanation of symbols]
1 strip
2 Matrix
3 Sample spotting part
4 Holding part
5 1st detection part
6 Second detector
7 Light source
8 Photodetector
9 Analyzer
10 Measurement start detector
11 First electrode
12 Second electrode

Claims

（Ａ）検出可能な標識材により標識された第１の特異結合物質に分析対象物を含む試料を接触させ、第１の特異結合物質に前記分析対象物を結合させて標識材−第１の特異結合物質−分析対象物の結合体を得る工程、
（Ｂ）第２の特異結合物質を固定した第１の検出部に前記試料を接触させ、第１の特異結合物質に結合しなかった過剰な分析対象物、および前記結合体を第２の特異結合物質に結合させて第１の検出部に固定する工程、
（Ｃ）前記分析対象物と同じまたは類似の物質を固定した第２の検出部に、前記試料を接触させ、前記結合体中の第１の特異結合物質を前記物質に結合させて前記結合体を第２の検出部に固定する工程、
（Ｄ）第１の検出部および第２の検出部において得られる前記標識材に由来した信号１および信号２の強度をそれぞれ計測する工程、ならびに
（Ｅ）前記信号１および信号２の強度に基づいて、前記試料中の分析対象物の濃度を求めて定性または定量を行う工程を有することを特徴とする特異結合分析方法。(A) A sample containing an analyte is brought into contact with a first specific binding substance labeled with a detectable labeling substance, and the analyte is bound to the first specific binding substance to thereby label the first Specific binding substance--obtaining a conjugate of the analyte;
(B) The sample is brought into contact with the first detection unit to which the second specific binding substance is immobilized, and the excess analyte that has not been bound to the first specific binding substance and the conjugate are second specific. A step of binding to a binding substance and fixing to a first detection unit;
(C) The sample is brought into contact with a second detection unit on which a substance the same as or similar to the analysis target is fixed, and the first specific binding substance in the conjugate is bound to the substance, thereby the conjugate. Fixing to the second detection unit,
(D) measuring the intensity of signal 1 and signal 2 derived from the labeling material obtained in the first detection unit and the second detection unit, respectively, and (E) based on the intensity of signal 1 and signal 2 A specific binding analysis method comprising the step of qualitatively or quantitatively determining the concentration of the analyte in the sample.

前記工程（Ｅ）において、前記工程（Ｄ）で得られた信号１の強度に基づいて前記分析対象物の濃度を特定する際に、２つの互いに異なる濃度１および濃度２が導かれたとき、前記信号２の強度に基づいて濃度１および濃度２のいずれが真かを判定して前記分析対象物の濃度を決定することを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。In the step (E), when specifying the concentration of the analyte based on the intensity of the signal 1 obtained in the step (D), when two different concentrations 1 and 2 are derived, The specific binding analysis method according to claim 1, wherein the concentration of the analyte is determined by determining which of concentration 1 and concentration 2 is true based on the intensity of the signal 2.

前記工程（Ｄ）で得られた信号２の強度に基づいてプロゾーン現象を判定することを特徴とする請求項１または２記載の特異結合分析方法。3. The specific binding analysis method according to claim 1, wherein the prozone phenomenon is determined based on the intensity of the signal 2 obtained in the step (D).

第２の特異結合物質を固定した第１の検出部に工程（Ａ）を経た前記試料を接触させ、第１の特異結合物質に結合しなかった過剰な分析対象物、および前記結合体を第２の特異結合物質に結合させて第１の検出部に固定する工程（Ｂ）を行い、ついで
前記分析対象物と同じまたは類似の物質を固定した第２の検出部に、工程（Ｂ）を経た前記試料を接触させ、前記結合体中の第１の特異結合物質を前記物質に結合させて前記結合体を第２の検出部に固定する工程（Ｃ）を行うことを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。The first detection unit to which the second specific binding substance is immobilized is brought into contact with the sample that has undergone the step (A), and the excess analyte that has not bound to the first specific binding substance and the conjugate are converted into the first detection part. The step (B) of binding to the first specific binding substance by binding to the two specific binding substances is performed, and then the step (B) is applied to the second detection part to which the same or similar substance as the analyte is fixed. The step (C) is performed, wherein the passed sample is brought into contact, the first specific binding substance in the conjugate is bound to the substance, and the conjugate is fixed to the second detection unit. 2. The specific binding analysis method according to 1.

前記分析対象物と同じまたは類似の物質を固定した第２の検出部に、工程（Ａ）を経た前記試料を接触させ、前記結合体中の第１の特異結合物質を前記物質に結合させて前記結合体を第２の検出部に固定する工程（Ｃ）を行い、ついで
第２の特異結合物質を固定した第１の検出部に工程（Ｃ）を経た前記試料を接触させ、第１の特異結合物質に結合しなかった過剰な分析対象物、および前記結合体を第２の特異結合物質に結合させて第１の検出部に固定する工程（Ｂ）を行うことを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。The second detection unit to which the same or similar substance as the analyte is fixed is brought into contact with the sample that has undergone the step (A), and the first specific binding substance in the conjugate is bound to the substance. The step (C) of fixing the conjugate to the second detection unit is performed, and then the sample that has undergone the step (C) is brought into contact with the first detection unit to which the second specific binding substance has been immobilized. The excessive analysis object not bound to the specific binding substance and the step (B) of binding the conjugate to the second specific binding substance and immobilizing it on the first detection unit are performed. 2. The specific binding analysis method according to 1.

あらかじめ工程（Ａ）を行い、第１の検出部および第２の検出部をシート状クロマトグラフ用マトリクス上に設け、工程（Ａ）を経た前記試料を第１の検出部および第２の検出部の上流側に滴下して、前記マトリクス内において毛細管現象による浸透力によって前記試料を第１の検出部および第２の検出部に移動させ、工程（Ｂ）〜（Ｅ）を行うことを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。The step (A) is performed in advance, the first detection unit and the second detection unit are provided on the sheet-like chromatographic matrix, and the sample after the step (A) is used as the first detection unit and the second detection unit. And the steps (B) to (E) are performed by moving the sample to the first detection unit and the second detection unit by osmotic force due to capillary action in the matrix. The specific binding analysis method according to claim 1.

検出可能な標識材により標識された第１の特異結合物質を保持する保持部、第１の検出部および第２の検出部をシート状クロマトグラフ用マトリクス上に設け、前記試料を前記保持部またはその上流側に滴下し、前記マトリクス内において毛細管現象による浸透力によって前記試料を前記保持部、第１の検出部および第２の検出部に移動させ、工程（Ａ）〜（Ｅ）を行うことを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。A holding unit that holds the first specific binding substance labeled with a detectable labeling material, a first detection unit, and a second detection unit are provided on a sheet-like chromatographic matrix, and the sample is placed in the holding unit or Dropping on the upstream side, and moving the sample to the holding unit, the first detection unit and the second detection unit by osmotic force due to capillary action in the matrix, and performing steps (A) to (E) The specific binding analysis method according to claim 1.

前記標識材に由来した信号が、呈色、蛍光または発光を示す信号であることを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。The specific binding analysis method according to claim 1, wherein the signal derived from the labeling material is a signal indicating coloration, fluorescence, or luminescence.

第１の特異結合物質および第２の特異結合物質のうち少なくとも一方が抗体であることを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。2. The specific binding analysis method according to claim 1, wherein at least one of the first specific binding substance and the second specific binding substance is an antibody.

前記標識材が、金属ゾル、染料ゾルもしくは蛍光物質を含む粒子、または着色ラテックス粒子であることを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。2. The specific binding analysis method according to claim 1, wherein the labeling material is a particle containing a metal sol, a dye sol or a fluorescent substance, or a colored latex particle.

前記工程（Ｄ）において、前記信号１および信号２を前記分析対象物の移動方向に沿ってこの順で連続的に計測することを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。2. The specific binding analysis method according to claim 1, wherein in the step (D), the signal 1 and the signal 2 are continuously measured in this order along the moving direction of the analysis object.

前記工程（Ｄ）において、連続的に計測した信号１および信号２と前記分析対象物の移動方向の位置との関係を示す対応曲線を作成し、前記工程（Ｅ）において、前記対応曲線に基づいて定性または定量を行うことを特徴とする請求項１１記載の特異結合分析方法。In the step (D), a corresponding curve indicating the relationship between the signal 1 and the signal 2 continuously measured and the position in the moving direction of the analysis object is created, and in the step (E), based on the corresponding curve. The specific binding analysis method according to claim 11, wherein the method is qualitative or quantitative.

前記工程（Ｅ）において、分析対象物の濃度が既知の試料から得られた定量情報と、前記工程（Ｄ）で得られた信号１および信号２とに基づいて前記分析対象物の定量を行うことを特徴とする請求項１記載の特異結合分析方法。In the step (E), the analyte is quantified based on the quantitative information obtained from the sample whose concentration of the analyte is known and the signals 1 and 2 obtained in the step (D). The specific binding analysis method according to claim 1.

シート状クロマトグラフ用マトリクスと、前記マトリクス上に設けられ特異結合物質を固定した第１の検出部と、前記マトリクス上に設けられ分析対象物と同じまたは類似の物質を固定した第２の検出部とを具備し、
分析対象物と特異結合物質を含む試料を、毛細管現象による浸透力によって第１の検出部および第２の検出部に移動させて特異結合反応を生じさせ、前記特異結合反応に由来した信号を検出することにより前記分析対象物を定性または定量することを特徴とする特異結合分析デバイス。A sheet-like chromatographic matrix, a first detection unit provided on the matrix and fixed with a specific binding substance, and a second detection unit provided on the matrix and fixed with the same or similar substance as the analyte And
A sample containing an analyte and a specific binding substance is moved to the first detection unit and the second detection unit by osmotic force due to capillary action to cause a specific binding reaction, and a signal derived from the specific binding reaction is detected. A specific binding analysis device characterized in that the analyte is qualitatively or quantitatively determined.

前記マトリクス上において第１の検出部の上流側に設けられた保持部であって、検出可能な標識材により標識された特異結合物質を保持する保持部を具備し、
前記試料を毛細管現象による浸透力によって前記保持部から第１の検出部および第２の検出部に移動させることを特徴とする請求項１４記載の特異結合分析デバイス。A holding unit provided on the upstream side of the first detection unit on the matrix, the holding unit holding a specific binding substance labeled with a detectable labeling material;
The specific binding analysis device according to claim 14, wherein the sample is moved from the holding unit to the first detection unit and the second detection unit by osmotic force due to capillary action.

前記マトリクス上において前記保持部の上流側に設けられた試料点着部を具備し、
前記試料を毛細管現象による浸透力によって前記試料点着部から前記保持部、第１の検出部および第２の検出部に移動させることを特徴とする請求項１５記載の特異結合分析デバイス。A sample spotting part provided on the upstream side of the holding part on the matrix;
The specific binding analysis device according to claim 15, wherein the sample is moved from the sample spotting unit to the holding unit, the first detection unit, and the second detection unit by an osmotic force due to capillary action.

前記マトリクス上において第１の検出部の上流側に設けられた試料点着部を具備し、
前記試料を毛細管現象による浸透力によって前記試料点着部から第１の検出部および第２の検出部に移動させることを特徴とする請求項１４記載の特異結合分析デバイス。A sample spotting unit provided on the upstream side of the first detection unit on the matrix;
The specific binding analysis device according to claim 14, wherein the sample is moved from the sample spotting unit to the first detection unit and the second detection unit by osmotic force due to capillary action.