JP3401022B2 - ヒトパピローマウイルス18のタンパク質における血清反応性エピトープ - Google Patents

ヒトパピローマウイルス18のタンパク質における血清反応性エピトープ

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Description

【発明の詳細な説明】
【0001】本発明はヒトパピローマウイルス(HP
V)18のタンパク質E1、E6及びE7における血清
反応性領域に関する。
【0002】本発明は上記ウイルスタンパク質の血清反
応性領域のアミノ酸配列を有するペプチドを含有したワ
クチン及び上記ペプチドを含有した診断用キットにも関
する。
【0003】HPV18は最初にProc.Natl.Acad.Sci.U
SA,80,3813-3815(1983) で記載された特定タイプのヒト
パピローマウイルスである。
【0004】HPV18のウイルスゲノムのDNA配列
及び構成はVirology,145,181-185(1985)で公表された。
【0005】HPV18は肛門性器路の良性病変ばかり
でなく子宮頸部、ペニス及び膣の悪性腫瘍をも誘導す
る。しかしながら、HPV18は臨床的症状のない個体
からの生殖器切片でもみられる。現在まで、HPV18
及び他のパピローマウイルスによる感染に対する免疫応
答性に関してはほとんど知られていない。
【0006】最初の実験では、STD患者、頸部腫瘍の
ある患者及び健康体からのヒト血清がウイルスタンパク
質に対する抗体の存在に関して試験された。これらのウ
イルスタンパク質は様々な原核生物ペプチドにそれらの
N末端を介して共有結合した融合タンパク質として発現
された。そこでこのタイプの融合タンパク質がウェスタ
ーンブロット実験で抗原として用いられた。しかしなが
ら、この試験は比較的時間浪費的かつ複雑であって、多
大な費用でのみ行うことができ、そのため多量のヒト血
清の定量分析には適さないようである。加えて、様々な
パピローマウイルスタイプがそれらのタンパク質コアの
面でも関連し合い、このため異なるパピローマウイルス
タイプからのタンパク質又は融合タンパク質と抗体との
交差反応が除外しえないことから、この試験はさほど特
異的でない。
【0007】したがって、本発明の目的はヒトにおける
HPV18起因性疾患の予防、診断及び治療における補
助として適したHPV18のウイルス構造を確認するこ
とである。このような構造(タンパク質ドメイン)に関
する知識は、多量のヒト血清が特定HPVの存在に関し
て検査されうる試験の確立上必須である。
【0008】従って、本発明は下記アミノ酸配列:
【化4】 を有するHPV18のE1タンパク質における血清反応
性エピトープ、下記アミノ酸配列:
【化5】 のうち1つを有するHPV18のE6タンパク質におけ
る血清反応性エピトープ、及び下記アミノ酸配列:
【化6】 のうち1つを有するHPV18のE7タンパク質におけ
る血清反応性エピトープ、に関する。
【0009】本発明は前記血清反応性エピトープの本発
明によるアミノ酸配列のいずれか1種またはそれ以上を
含んだペプチドにも関する。
【0010】本発明はHPV18のタンパク質の前記血
清反応性エピトープの1種またはそれ以上のアミノ酸配
列を含んだペプチドに基づくワクチンにも関する。
【0011】HPV18 E1、E6及びE7タンパク
質に対する特異的抗体は本発明による診断用キットを用
いて患者血清において検出することができる。このキッ
トは本発明によるペプチドを含有している。
【0012】更に、血清反応性領域を含んだ特定ウイル
スタンパク質がこれらの領域に対するポリクローナル抗
体又はモノクローナル抗体を用いて適時に血清中で同定
されることも予防目的から可能である。したがって、本
発明はHPV18の血清反応性領域に特異的なポリクロ
ーナル又はモノクローナル抗体を含有した診断用キット
にも関する。
【0013】下記の相互に独立した方法は血清反応性エ
ピトープを同定するために用いられた:A.ショットガ
ン発現バンクのスクリーニング:細菌プラスミドベクタ
ーpSP65でクローニングされたHPV18 DNA
は超音波剪断しかる後DNアーゼ処理で平均サイズ10
0塩基対の断片に変換された。これら断片の末端はT4
DNAポリメラーゼで補充され、ファージ発現ベクター
fuse1に結合された。fuse1はバクテリオファ
ージfdから誘導され、Science,228,1315-1317(1985)
で記載されている。そのファージは大腸菌K91と共に
プレーティングされ、レプリカがニトロセルロースフィ
ルターで作製され、フィルターが適切なポリクローナル
ウサギ血清と共にインキュベートされた。陽性クローン
はいくつかの選抜ステップで単離され、免疫反応性ペプ
チド配列はDNA配列決定により確認された。
【0014】B.ペプチド重複 HPV18 E6及びE7タンパク質の短いセグメント
に相当する127の重複ペプチドは、Fmoc化学を用
いてポリエチレンピン上で合成した〔Proc.Natl.Acad.S
ci.82,178(1985)〕。E6及びE7タンパク質のタンパ
ク質配列は次のペプチドと8アミノ酸で一致する10マ
ー(mer)に分割された。そのペプチドは適切な抗血清中
でELISAにより調べられた。
【0015】
【実施例】例 1 線維状ファージfdの誘導体を用いて、HPV18
DNA断片に関する発現系を得た。このため、fuse
1〔fd‐tet‐J6,Science,228,1315-1317(198
5);Gene,73,305-318(1988)〕を単一PvuII開裂部位で
切断した。DNA修復後のDNアーゼI消化によるゲノ
ムHPV18 DNA断片をT4DNAリガーゼで平滑
末端結合させた。fuse1ベクターを形質転換するた
め、大腸菌K802株〔F- galK2 galT22 metB1 supE4
4 hsdr(2);Journal ofMolecular Biology,16,118-133(1
966) 〕をJournal of Molecular Biology,166,557-580
(1988)におけるHanahan の方法で用いた。tet耐性コ
ロニーは、それらのF- 表現型のために細菌に感染しな
いバクテリオファージを産生する。ファージを培養する
ため、大腸菌K91株〔F+ ,大腸菌K38の誘導体,V
irology,49,45-60(1972)〕を用いた。
【0016】例 2 前記ランダムバンクから約50,000の組換えファ
ージを最少寒天プレート上で10mMMgSO含有0.
5%アガロース3.5ml中指数的増殖大腸菌K91細胞
0.2mlと共にプレーティングした。プレートのレプリ
カをニトロセルロースフィルターで作製し、しかる後シ
グナルを高めるため新鮮最少寒天上37℃で更に6時間
インキュベートした。次いでフィルターをPBS中10
%低脂肪ミルクで60分間ブロックし、1:100〜
1:1000のHPV特異性抗血清希釈の5%ミルク/
PBS中において一夜インキュベートした。特異的HP
V抗血清の代わりにモノクローナル抗体を用いることも
可能である。抗血清を音波処理K91細胞で前吸着させ
た。次いでフィルターを特にPBS/0.1%ツイーン
20で5分間しかる後ヤギ抗ウサギ抗体と共に室温で3
時間、で5回洗浄するか、又はモノクローナル抗体が用
いられる場合には5%低脂肪ミルク中で抗マウスペルオ
キシダーゼ抗体(1:1000)と共にインキュベート
した。フィルターを洗浄した後、それらをジアミノベン
ジジン30mg、30%強度H30μl及び1%強
度NiSO1.5ml含有PBS50mlで染色した。次
いでフィルターをHOで30分間洗浄し、しかる後濾
紙上で乾燥させた。最初に25のファージをHPV18
E7に対するポリクローナルウサギ血清を用いて単離
し、そのうち18が次の精製ステップで陽性とわかっ
た。次いでファージ粒子を培養増殖させ、一本鎖DNA
を得た。
【0017】例 3 例2の場合と同じ方法をでHPV18 E6タンパク
質に関しても選択した。用いられたポリクローナルウサ
ギ血清は非ウイルスエピトープと交差反応したため、ウ
ェスターンブロット法以外ではすべての反応性組換え体
の中からHPV18 E6部分のあるものを同定するた
めに特定DNA断片がプローブとして用いられた。7
0,000の組換えファージから15を単離し、最後に
配列決定した。エピトープHPV18 E6 No.1は、
例えば調べられたファージバンクの中で合計10回みつ
けられた。
【0018】例 4 fuse1組換え体からの一本鎖DNAの製造 このためにProc.Natl.Acad.Sci.USA,74,5463-5467(197
7) の操作を用いた。LM50mlをfuse1プラスミ
ドを有するtet耐性大腸菌K91細胞と共にインキュ
ベートし、この混合物を37℃で16時間インキュベー
トした。次いで細菌を6000rpm で30分間かけてペ
レット化した。上澄に40%強度PEG6000の2ml
及びpH6.5の5M酢酸ナトリウム2mlの添加後、フ
ァージを0℃で60分間かけて沈降させ、沈降物を60
00rpm で60分間遠心した。ペレットをTE0.3ml
に再懸濁した。2回のフェノール抽出の後、DNA沈降
させた。次いで約25%の調製物を配列決定に用いた。
【0019】例 5 配列決定 標準USB〔ユナイテッド・ステーツ・バイオケミカル
ズ(United StatesBiochemicals) 〕法(USB,1987) をD
NA配列決定に用いた。ユニバーサルプライマーを20
マーオリゴヌクレオチド(5'-TCCAGACGTTAGTAAATGAA-3')
に代えた。
【0020】例 6 ペプチド合成 短いセグメントでORFのHPV18 E6及びE7を
表す127の重複ペプチドをProc.Natl.Acad.Sci.USA,8
2,178(1985) 及びProc.Natl.Acad.Sci.81,3998(1985)で
記載されたようにポリエチレンピン上でFmoc化学に
より合成した。β‐アラニンで誘導されたポリエチレン
ピンはCRBイングランド(CRBEngland) から得た。前
記文献とは異なり、タンパク質配列は隣接ペプチドと8
アミノ酸で重複したデカペプチドに分割した。合成はF
moc化学及びBOP〔カストロ(Castro)試薬〕による
in situ 活性化を利用して行った〔Tetrahedron Letter
s,14,1219(1975) 〕。Fmocアミノ酸誘導体(6μmo
l)、BOP及びN‐メチルモルホリン溶液を合成される
ペプチド配列に応じてポリエチレンピン(CRB)に分
配した。すべての他の反応はCRBプロトコールに従い
行った。
【0021】例 7 ポリエチレンピンをELISAアッセイ法で前記ポリ
クローナルウサギ血清と共にインキュベートし、結合抗
体をプロテインAペルオキシダーゼを用いて検出した。
非特異的結合で生じるバックグラウンドは第一抗体なし
にプロテインAインキュベーションで定量した。反応性
ペプチドは血清反応性エピトープとしてファージスクリ
ーニングにより確認された領域に位置する。すべてのア
ッセイはポリエチレンピンに共有結合されたペプチドで
行われ、また、そのピン上にそれらが最初に合成されて
いた。マイクロタイタープレートのウェルに導入されう
るような配置で固定された96ピンを有するラックを用
いた。ELISAのためのインキュベーションを行い、
一方でピンをウェルに浸漬した。ピンをメタノール及び
PBSで洗浄し、次いでPBS中0.25%ゼラチン、
0.1%ツイーン20により37℃で2時間かけてブロ
ックし、しかる後0.125%ゼラチン及び0.05%
ツイーン20で1:200〜1:4000希釈された血
清と共に37℃で1時間インキュベートした。PBS/
0.1%ツイーン20によるもう1回の洗浄ステップ
後、ピンをプロテインA‐ペルオキシダーゼ1:400
0と共に37℃で1時間インキュベートし、しかる後も
う1回洗浄ステップ及びテトラメチルベンジジン(TM
B)で15分間染色を行った。染色ステップは染色溶液
からピンを引上げて0.2モルHSO溶液100μ
lを加えることにより停止させた。次いで吸着量を自動
ELISA読取機で測定した。ELISA法の後に抗体
‐酵素複合体を除去するため、ピンをPBS/1%SD
S/0.1%β‐メルカプトエタノール中60℃で1時
間超音波(水浴、30W、48KHz)下でインキュベート
し、最後にメタノールで洗浄した。この操作の効率は一
次血清を含むことなしにプロテインA/ペルオキシダー
ゼを用いてELISAにより試験した。同じペプチドは
下記ELISAで40回以上調べた。
【0022】
【表1】
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI // C12P 21/02 C12P 21/02 C (72)発明者 マーチン、ミュラー ドイツ連邦共和国ハイデルベルク、フザ ーレンシュトラーセ、14 (56)参考文献 特表 昭60−500684(JP,A) EMBO J.,Vol.6(1), p.139−144(1987) J.Gen.Virol.,Vol. 67(9),p.1909−1916(1986) EMBO J.,VOl.5(9), p.2285−2292(1986) J.Virol.,Vol.62 (5),p.1640−1646(1988) (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C07K 14/025 C07K 7/08 - 7/10 A61K 39/12 C12P 21/08 C12Q 1/70 G01N 33/569 C12P 21/02 SwissProt/PIR/GeneS eq CA/BIOSIS/MEDLINE/R EGISTRY/WPIDS(STN)

Claims (3)

    (57)【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】下記のアミノ酸配列で表されるHPV18
    のE6タンパク質の血清反応性エピトープである抗原決
    定部位からなるペプチド。 【化1】
  2. 【請求項2】ヒトパピローマウイルス18のタンパク質
    E6に対する特異的抗体を同定するための診断用組成物
    であって、請求項1に記載されたペプチドを含むことを
    特徴とする組成物。
  3. 【請求項3】患者血清中のヒトパピローマウイルス18
    タンパク質を同定するための診断用組成物であって、請
    求項1に記載されたペプチドに特異的なポリクローナル
    又はモノクローナル抗体を含むことを特徴とする組成
    物。
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