JP3220545B2 - リューマチ性因子決定法および該方法実施用試薬 - Google Patents
リューマチ性因子決定法および該方法実施用試薬Info
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、特異的な結合相手とし
て免疫複合体を用いるリューマチ性因子の検出および決
定のための免疫学的手法、並びにこの方法に適した試薬
の調製に関する。
て免疫複合体を用いるリューマチ性因子の検出および決
定のための免疫学的手法、並びにこの方法に適した試薬
の調製に関する。
【０００２】
【従来の技術および発明が解決しようとする課題】血清
学的検査法はリューマチ診断に広く利用できることが判
明している。これらの方法では、生体がこれらの疾患の
結果、内在性物質に対して形成する抗体の存在につい
て、血清を用いて検査を行う。これらの抗体はしたがっ
て“自己抗体”とも呼ばれる。
学的検査法はリューマチ診断に広く利用できることが判
明している。これらの方法では、生体がこれらの疾患の
結果、内在性物質に対して形成する抗体の存在につい
て、血清を用いて検査を行う。これらの抗体はしたがっ
て“自己抗体”とも呼ばれる。
【０００３】類リューマチ診断では、特に２グループの
自己抗体が重要であることが分かった。それらはリュー
マチ性因子（ＲＦ）および抗核抗体（ＡＮＡ）である。
リューマチ性因子は内在性免疫グロブリンに対する抗
体、すなわち抗免疫グロブリン抗体であり、抗核抗体は
内在性細胞核の構造物に対する抗体である。リューマチ
性因子は、すべての種類の免疫グロブリンで見つけられ
ているが、主にＩｇＭ、ＩｇＧおよびＩｇＡの免疫グロ
ブリンクラスに属する。
自己抗体が重要であることが分かった。それらはリュー
マチ性因子（ＲＦ）および抗核抗体（ＡＮＡ）である。
リューマチ性因子は内在性免疫グロブリンに対する抗
体、すなわち抗免疫グロブリン抗体であり、抗核抗体は
内在性細胞核の構造物に対する抗体である。リューマチ
性因子は、すべての種類の免疫グロブリンで見つけられ
ているが、主にＩｇＭ、ＩｇＧおよびＩｇＡの免疫グロ
ブリンクラスに属する。
【０００４】リューマチ性因子検出用の既知の試験方法
は、赤血球またはラッテクス（例えばヒトまたは動物の
ＩｇＧで被覆したもの）凝集に基づいている。これらの
方法は、単にリューマチ性因子の定性的または半定量的
検出を許容するだけで、さらに、この凝集試験の結果の
判読は、肉眼的な判定の結果として主観的である。リュ
ーマチ性因子検出のために、この他に用いられる凝集法
（ラテックス凝集、Waaler-Rose試験）、放射性免疫ア
ッセーおよび酵素免疫アッセーは比朧分析的または比濁
分析的手法である。結果として、比朧分析的または比濁
分析的手法の光分散性および感度は、抗原または抗体の
“粒子サイズ”に依存する。既知の方法は、ヒト免疫グ
ロブリンを、それ自身光を分散させるラテックス粒子に
結合させることから成る。
は、赤血球またはラッテクス（例えばヒトまたは動物の
ＩｇＧで被覆したもの）凝集に基づいている。これらの
方法は、単にリューマチ性因子の定性的または半定量的
検出を許容するだけで、さらに、この凝集試験の結果の
判読は、肉眼的な判定の結果として主観的である。リュ
ーマチ性因子検出のために、この他に用いられる凝集法
（ラテックス凝集、Waaler-Rose試験）、放射性免疫ア
ッセーおよび酵素免疫アッセーは比朧分析的または比濁
分析的手法である。結果として、比朧分析的または比濁
分析的手法の光分散性および感度は、抗原または抗体の
“粒子サイズ”に依存する。既知の方法は、ヒト免疫グ
ロブリンを、それ自身光を分散させるラテックス粒子に
結合させることから成る。
【０００５】定量的試験と同様、放射性免疫アッセーお
よび酵素免疫アッセー法もリューマチ性因子の種類、Ｉ
ｇＭ、ＩｇＧおよびＩｇＡの識別ができる。しかしそれ
らは非常に労働集約的で、決定には数時間を要する。
よび酵素免疫アッセー法もリューマチ性因子の種類、Ｉ
ｇＭ、ＩｇＧおよびＩｇＡの識別ができる。しかしそれ
らは非常に労働集約的で、決定には数時間を要する。
【０００６】J．Grangeおよび共同研究者らの研究（J．
Immunol．Meth．18（1977）p.365〜375）から明らかな
ように、凝集が増えるにつれその粒子数が減少するの
で、ラテックスに結合させた抗体で抗原の力価を測定す
るとき、分散光シグナルは初めは減少する。凝集が進む
につれ粒子数が減少するからである。続いて抗原濃度が
さらに増加すれば凝集サイズが増加し、その結果分散光
密度が増加する。これは、抗原量が抗原過剰レベルにま
でさらに増加するので、もう一度分散光シグナルが減少
するまで続く。定量的試験では、ラテックス結合抗体と
抗原との定量において、またはラテックス結合抗原と抗
体との定量において、凝集の増加を可能な限り広い範囲
にわたって分散光の密度増加として測定できるように、
ラテックスの凝集状態を調節することが重要である。
Immunol．Meth．18（1977）p.365〜375）から明らかな
ように、凝集が増えるにつれその粒子数が減少するの
で、ラテックスに結合させた抗体で抗原の力価を測定す
るとき、分散光シグナルは初めは減少する。凝集が進む
につれ粒子数が減少するからである。続いて抗原濃度が
さらに増加すれば凝集サイズが増加し、その結果分散光
密度が増加する。これは、抗原量が抗原過剰レベルにま
でさらに増加するので、もう一度分散光シグナルが減少
するまで続く。定量的試験では、ラテックス結合抗体と
抗原との定量において、またはラテックス結合抗原と抗
体との定量において、凝集の増加を可能な限り広い範囲
にわたって分散光の密度増加として測定できるように、
ラテックスの凝集状態を調節することが重要である。
【０００７】リューマチ性因子決定のための粒子支援型
凝集試験を実施するには、結局、血清の段階希釈を行わ
なければならない。不利な点は、ラテックス試薬の高い
バックグラウンド値の他、測定時の分散光密度の曖昧な
変化、非常に狭い測定可能範囲（すなわち標準曲線は急
勾配である）である。とりわけ、測定範囲を広げるため
に二種の異なるサイズ範囲のラテックス粒子を混合する
という提案が為された（ドイツ特許公開公報第2918342
号）。さらに、異なるサイズ範囲のこれらラテックス粒
子を、それぞれ異なる量の抗体で各場合につきロードし
なければならない。不利な点は、さらに１５分後にレー
ザー比朧分析計で分散光を測定しなければならないとい
うことの他に、１時間に及ぶインキュベーション時間が
必要であるということである。最近になって、また別
の、ある場合には自動化されたリューマチ性因子決定法
が開示された。しかし、希釈による影響排除、高感度お
よび測定範囲の広さの問題は解決されていない。
凝集試験を実施するには、結局、血清の段階希釈を行わ
なければならない。不利な点は、ラテックス試薬の高い
バックグラウンド値の他、測定時の分散光密度の曖昧な
変化、非常に狭い測定可能範囲（すなわち標準曲線は急
勾配である）である。とりわけ、測定範囲を広げるため
に二種の異なるサイズ範囲のラテックス粒子を混合する
という提案が為された（ドイツ特許公開公報第2918342
号）。さらに、異なるサイズ範囲のこれらラテックス粒
子を、それぞれ異なる量の抗体で各場合につきロードし
なければならない。不利な点は、さらに１５分後にレー
ザー比朧分析計で分散光を測定しなければならないとい
うことの他に、１時間に及ぶインキュベーション時間が
必要であるということである。最近になって、また別
の、ある場合には自動化されたリューマチ性因子決定法
が開示された。しかし、希釈による影響排除、高感度お
よび測定範囲の広さの問題は解決されていない。
【０００８】
【課題を解決するための手段】驚くべきことには、今
や、ヒトガンマグロブリンに代わって抗ヒトＩｇＧ・ヒ
ツジ抗体とヒトＩｇＧから成る免疫複合体または抗ヒト
ガンマグロブリン・ウサギ抗体とヒトガンマグロブリン
から成る免疫複合体を用いるならば、これらの問題は排
除できることが分かった。該免疫複合体は既知の方法に
よって、ラテックス粒子に結合させる。得られたラテッ
クス試薬は手操作によるラッテクス凝集試験、またはキ
ネティクス法もしくは最終希釈点法を用いる比朧分析も
しくは比濁分析法において使用することができる。
や、ヒトガンマグロブリンに代わって抗ヒトＩｇＧ・ヒ
ツジ抗体とヒトＩｇＧから成る免疫複合体または抗ヒト
ガンマグロブリン・ウサギ抗体とヒトガンマグロブリン
から成る免疫複合体を用いるならば、これらの問題は排
除できることが分かった。該免疫複合体は既知の方法に
よって、ラテックス粒子に結合させる。得られたラテッ
クス試薬は手操作によるラッテクス凝集試験、またはキ
ネティクス法もしくは最終希釈点法を用いる比朧分析も
しくは比濁分析法において使用することができる。
【０００９】したがって本発明は、免疫複合体という特
異的な結合相手をもちいる、リューマチ性因子（アナラ
イト）の検出および決定のための免疫化学的手法に関す
る。
異的な結合相手をもちいる、リューマチ性因子（アナラ
イト）の検出および決定のための免疫化学的手法に関す
る。
【００１０】本発明における好ましい方法は、免疫複合
体が、ヒト、動物または植物由来の、該アナライトでは
ない抗原で免疫された動物から得た抗血清で調製されて
いるものである。特に好ましい方法は、免疫複合体の抗
体：抗原比が１：０.０５から５であるものである。と
りわけ好ましい方法は、免疫複合体が固相に結合してい
るものである。ヒツジまたはウサギ抗血清が好ましくは
用いられる。さらに好ましい方法は上記に述べたような
ものであって、その判定に粒子支援型免疫学的手法が用
いられるものである。
体が、ヒト、動物または植物由来の、該アナライトでは
ない抗原で免疫された動物から得た抗血清で調製されて
いるものである。特に好ましい方法は、免疫複合体の抗
体：抗原比が１：０.０５から５であるものである。と
りわけ好ましい方法は、免疫複合体が固相に結合してい
るものである。ヒツジまたはウサギ抗血清が好ましくは
用いられる。さらに好ましい方法は上記に述べたような
ものであって、その判定に粒子支援型免疫学的手法が用
いられるものである。
【００１１】本発明はまた上記の方法に用いる免疫複合
体の調製方法にも関する。この場合、該免疫複合体は水
溶液中で、５０容量％までの環式アミドの存在下で、好
ましくはγ−アミノ−ブチロラクタムの存在下で調製さ
れる。
体の調製方法にも関する。この場合、該免疫複合体は水
溶液中で、５０容量％までの環式アミドの存在下で、好
ましくはγ−アミノ−ブチロラクタムの存在下で調製さ
れる。
【００１２】ラッテクス粒子は蛋白を吸着または共有結
合させることによってロードされる。共有結合のために
は、隣接するヒドロキシル基の他に、フリーのカルボキ
シル基、アミノ基アルデヒド基およびエポキシ基が用い
られる。多くの場合、吸着によるラッテクスへの蛋白の
結合がもっとも有利であることが分かった。ラッテクス
粒子を蛋白および／またはペプチドとともにロードする
方法は当業者にとり既知である。
合させることによってロードされる。共有結合のために
は、隣接するヒドロキシル基の他に、フリーのカルボキ
シル基、アミノ基アルデヒド基およびエポキシ基が用い
られる。多くの場合、吸着によるラッテクスへの蛋白の
結合がもっとも有利であることが分かった。ラッテクス
粒子を蛋白および／またはペプチドとともにロードする
方法は当業者にとり既知である。
【００１３】本発明の試薬を調製するために用いること
ができるラテックスは、例えば不飽和オレフィンモノマ
ーを重合させることによって得ることができる。好まし
くは、スチレンコポリマー（例えばスチレン−ブタジエ
ンコポリマーおよびアクリロニトリル−ブタジエン−ス
チレンコポリマー）、酢酸ビニル−アクリレートコポリ
マーまたは塩化ビニル−アクリレートコポリマーであ
る。
ができるラテックスは、例えば不飽和オレフィンモノマ
ーを重合させることによって得ることができる。好まし
くは、スチレンコポリマー（例えばスチレン−ブタジエ
ンコポリマーおよびアクリロニトリル−ブタジエン−ス
チレンコポリマー）、酢酸ビニル−アクリレートコポリ
マーまたは塩化ビニル−アクリレートコポリマーであ
る。
【００１４】適切な粒子サイズ（５０〜５００ｎｍ）の
ポリスチレンラテックス懸濁液または乳濁液は、いろい
ろなメーカーから種々の商標名のものを得ることができ
る。単分散系および多分散系ラテックス懸濁液が適切で
ある。
ポリスチレンラテックス懸濁液または乳濁液は、いろい
ろなメーカーから種々の商標名のものを得ることができ
る。単分散系および多分散系ラテックス懸濁液が適切で
ある。
【００１５】免疫複合体は、抗原と特異抗体とを混合す
ることにより既知の方法にしたがって調製することがで
きる。このための適切な抗体は、特異抗血清、抗血清の
ガンマグロブリン分画、免疫吸着により精製した抗体ま
たはモノクローナル抗体である。動物を免疫した結果と
して既に免疫複合体を含んでいる、血清または抗血清の
ガンマグロブリン分画もまた適切である。免疫複合体の
例は、ヒトＩｇＧ／抗ヒトＩｇＧ・ヒツジ抗血清、ヒト
ガンマグロブリン／抗ヒトガンマグロブリン・ウサギ抗
血清である。免疫複合体の抗原／抗体比は抗体濃度に依
存するが、結局１：０.０５〜５、好ましくは０.０５：
２、特に好ましくは１：０.１になる。
ることにより既知の方法にしたがって調製することがで
きる。このための適切な抗体は、特異抗血清、抗血清の
ガンマグロブリン分画、免疫吸着により精製した抗体ま
たはモノクローナル抗体である。動物を免疫した結果と
して既に免疫複合体を含んでいる、血清または抗血清の
ガンマグロブリン分画もまた適切である。免疫複合体の
例は、ヒトＩｇＧ／抗ヒトＩｇＧ・ヒツジ抗血清、ヒト
ガンマグロブリン／抗ヒトガンマグロブリン・ウサギ抗
血清である。免疫複合体の抗原／抗体比は抗体濃度に依
存するが、結局１：０.０５〜５、好ましくは０.０５：
２、特に好ましくは１：０.１になる。
【００１６】本発明は、したがって本方法に用いる免疫
複合体の調製法にも関する。粒子支援型凝集法の場合に
は沈殿剤（例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ））
が通常用いられるので、複合体は沈殿剤によって沈殿さ
せられることがあってはならない。さらに、複合体は比
較的長期の、一般には少なくとも３カ月、好ましくは少
なくとも１２カ月の保存に安定でなければならない。
複合体の調製法にも関する。粒子支援型凝集法の場合に
は沈殿剤（例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ））
が通常用いられるので、複合体は沈殿剤によって沈殿さ
せられることがあってはならない。さらに、複合体は比
較的長期の、一般には少なくとも３カ月、好ましくは少
なくとも１２カ月の保存に安定でなければならない。
【００１７】複合体の調製は水溶液中で、好ましくは水
に容易に混合できる極性溶媒（例えばジメチルスルホキ
シドまたはジメチルホルムアミド）の存在下で行う。環
式アミドの存在下での複合体調製が好ましく、ピロリド
ン（γ−アミノブチロラクタム）が特に適切である。こ
のようにして調製した免疫複合体は、水溶液中で少なく
とも３カ月、好ましくは少なくとも１２カ月の保存に安
定である。
に容易に混合できる極性溶媒（例えばジメチルスルホキ
シドまたはジメチルホルムアミド）の存在下で行う。環
式アミドの存在下での複合体調製が好ましく、ピロリド
ン（γ−アミノブチロラクタム）が特に適切である。こ
のようにして調製した免疫複合体は、水溶液中で少なく
とも３カ月、好ましくは少なくとも１２カ月の保存に安
定である。
【００１８】免疫複合体とラテックス粒子のローディン
グは、当業者にとり既知の方法で実施することができ
る。ローディングは、例えば以下のように行うことがで
きる:抗血清／抗原から調製した免疫複合体を、およそ
５０から２００、好ましくは１００ｇ／ｌの濃度のラテ
ックス粒子の懸濁液と混合し、０.５から５時間、０か
ら＋６０℃、好ましくは＋２０から＋６０℃の間の温度
でインキュベートする。
グは、当業者にとり既知の方法で実施することができ
る。ローディングは、例えば以下のように行うことがで
きる:抗血清／抗原から調製した免疫複合体を、およそ
５０から２００、好ましくは１００ｇ／ｌの濃度のラテ
ックス粒子の懸濁液と混合し、０.５から５時間、０か
ら＋６０℃、好ましくは＋２０から＋６０℃の間の温度
でインキュベートする。
【００１９】ラテックス粒子に結合していない免疫複合
体は、遠心沈殿し固形物質を再浮遊させることによって
除去することができる。使用には、試薬を緩衝溶液、好
ましくはグリシン−ＮａＣｌ緩衝液（ｐＨ７〜８.５）
に再浮遊し、必要があれば、蛋白質（例えばヒトアルブ
ミンまたはウシアルブミン）と混合することができる。
体は、遠心沈殿し固形物質を再浮遊させることによって
除去することができる。使用には、試薬を緩衝溶液、好
ましくはグリシン−ＮａＣｌ緩衝液（ｐＨ７〜８.５）
に再浮遊し、必要があれば、蛋白質（例えばヒトアルブ
ミンまたはウシアルブミン）と混合することができる。
【００２０】ラテックス粒子をロードする別の方法で
は、免疫複合体をグリシン−ＮａＣｌ緩衝液に取り、必
要な場合にはヒトまたはウシアルブミンで安定化させ、
所望の感度に達するまで０.５から２％のポリスチレン
−ラテックス懸濁液と混ぜ合わせる。このようにして調
製した試薬は＋４℃で保存し、または凍結乾燥させるこ
とができる。
は、免疫複合体をグリシン−ＮａＣｌ緩衝液に取り、必
要な場合にはヒトまたはウシアルブミンで安定化させ、
所望の感度に達するまで０.５から２％のポリスチレン
−ラテックス懸濁液と混ぜ合わせる。このようにして調
製した試薬は＋４℃で保存し、または凍結乾燥させるこ
とができる。
【００２１】抗体を調製するために用いることができる
抗血清は、動物、特にウサギ、ヒツジおよびヤギをヒ
ト、動物または植物由来の蛋白で免疫することによって
得られる。例えば、抗ヒトＩｇＧ・ウサギ血清、抗ヒト
ガンマグロブリン・ウサギ血清、抗ウサギガンマグロブ
リン・ヒツジ血清、抗ヒトＩｇＧ・ヒツジ血清である。 特に適切なものは、抗ヒトＩｇＧ・ヒツジ血清および抗
ヒトガンマグロブリン・ウサギ血清である。免疫は既知
の方法にしたがって実施する。免疫量および免疫期間
は、当該蛋白の免疫原性および分子量に依存する。モノ
クローナル抗体も本発明の目的のための抗体として用い
ることができる。
抗血清は、動物、特にウサギ、ヒツジおよびヤギをヒ
ト、動物または植物由来の蛋白で免疫することによって
得られる。例えば、抗ヒトＩｇＧ・ウサギ血清、抗ヒト
ガンマグロブリン・ウサギ血清、抗ウサギガンマグロブ
リン・ヒツジ血清、抗ヒトＩｇＧ・ヒツジ血清である。 特に適切なものは、抗ヒトＩｇＧ・ヒツジ血清および抗
ヒトガンマグロブリン・ウサギ血清である。免疫は既知
の方法にしたがって実施する。免疫量および免疫期間
は、当該蛋白の免疫原性および分子量に依存する。モノ
クローナル抗体も本発明の目的のための抗体として用い
ることができる。
【００２２】
【実施例】以下の実施例により本発明の方法を詳述す
る。
る。
【００２３】〔実施例１〕Ａ）免疫複合体の調製 等張塩化ナトリウム溶液中のヒトガンマグロブリン（１
６ｇ／ｌ）の５６ｍｌを、激しく撹拌しながら２５ｍｌ
の抗ヒトガンマグロブリン抗血清および２５ｍｌの等張
塩化ナトリウム溶液に加えた。続いてこの溶液を＋５６
℃で５時間インキュベートし、さらに５ｍｌのピロリド
ンと混合した。
６ｇ／ｌ）の５６ｍｌを、激しく撹拌しながら２５ｍｌ
の抗ヒトガンマグロブリン抗血清および２５ｍｌの等張
塩化ナトリウム溶液に加えた。続いてこの溶液を＋５６
℃で５時間インキュベートし、さらに５ｍｌのピロリド
ンと混合した。
【００２４】Ｂ）ラテックス試薬の調製 免疫複合体６ｍｌおよびポリスチレンラッテクス（１０
ｇ／ｌ）４５０ｍｌを用いた。比濁分析のために、この
懸濁液を固形物が０.０６５ｇ／ｌとなるよう希釈し、
さらに超音波処理を施した。リューマチ性因子７０ＩＵ
／ｍｌを含む標準血清を用い、機器で自動的に１：２.
５から１６０まで希釈した（すなわちＲＦ濃度が２８Ｉ
Ｕ、１４、７、・・・０.４５ＩＵ／ｍｌ）スタンダー
ドシリーズを得た。測定しようとする血清をリン酸塩／
塩化ナトリウム緩衝液で希釈した。測定には、患者血清
を希釈したもの３０μｌおよびラテックス／免疫複合体
試薬４０μｌを用いた。測定は室温で６分後比濁分析計
で行った（ＢＮＡ，Behringwerke AG，Marburg）。標準
血清測定による標準曲線を作成し、患者血清の測定値を
その標準曲線から求めた。既知ＲＦ濃度を有する血清を
テストした。１：２０の血清希釈で、測定可能範囲は１
８から５６０ＩＵ／ｍｌ（通常範囲：≦２０ＩＵ ＲＦ
／ｍｌ）であった。
ｇ／ｌ）４５０ｍｌを用いた。比濁分析のために、この
懸濁液を固形物が０.０６５ｇ／ｌとなるよう希釈し、
さらに超音波処理を施した。リューマチ性因子７０ＩＵ
／ｍｌを含む標準血清を用い、機器で自動的に１：２.
５から１６０まで希釈した（すなわちＲＦ濃度が２８Ｉ
Ｕ、１４、７、・・・０.４５ＩＵ／ｍｌ）スタンダー
ドシリーズを得た。測定しようとする血清をリン酸塩／
塩化ナトリウム緩衝液で希釈した。測定には、患者血清
を希釈したもの３０μｌおよびラテックス／免疫複合体
試薬４０μｌを用いた。測定は室温で６分後比濁分析計
で行った（ＢＮＡ，Behringwerke AG，Marburg）。標準
血清測定による標準曲線を作成し、患者血清の測定値を
その標準曲線から求めた。既知ＲＦ濃度を有する血清を
テストした。１：２０の血清希釈で、測定可能範囲は１
８から５６０ＩＵ／ｍｌ（通常範囲：≦２０ＩＵ ＲＦ
／ｍｌ）であった。
【００２５】Ｃ） 患者血清中のリューマチ性因子を測定するためにラテッ
クス／免疫複合体試薬を用いた。ＲＦスタンダードは７
０ＩＵ ＲＦ／ｍｌのリューマチ性因子を含んでいた。
このスタンダードを燐酸塩／塩化ナトリウム緩衝液を用
いて比濁分析計で段階希釈した。ＲＦ濃度が減少するス
タンダードシリーズをこのようにして得た。測定しよう
とする患者血清を燐酸塩／塩化ナトリウム緩衝液で希釈
した。測定には、患者血清希釈または標準血清希釈３０
μｌを、４０μｌのラッテクス／免疫複合体試薬並びに
３０μｌの反応緩衝液（１.２ｇ／１００ｍｌのＮａＣ
ｌ、１.３ｇ／１００ｍｌのＮａ2ＨＰＯ4、０.２ｇ／１
００ｍｌのＮａ2ＰＯ4および５.６ｇのポリエチレング
リコール６０００を含む）で室温で６分間インキュベー
トした。続いて比濁分析計（Behringwerke AG，Marbur
g）で結果を測定した。１：２０の血清希釈では測定範
囲は９から５６０ＩＵ／ｍｌで、１：１００の血清希釈
では４５から７０００ＩＵ／ｍｌであった。
クス／免疫複合体試薬を用いた。ＲＦスタンダードは７
０ＩＵ ＲＦ／ｍｌのリューマチ性因子を含んでいた。
このスタンダードを燐酸塩／塩化ナトリウム緩衝液を用
いて比濁分析計で段階希釈した。ＲＦ濃度が減少するス
タンダードシリーズをこのようにして得た。測定しよう
とする患者血清を燐酸塩／塩化ナトリウム緩衝液で希釈
した。測定には、患者血清希釈または標準血清希釈３０
μｌを、４０μｌのラッテクス／免疫複合体試薬並びに
３０μｌの反応緩衝液（１.２ｇ／１００ｍｌのＮａＣ
ｌ、１.３ｇ／１００ｍｌのＮａ2ＨＰＯ4、０.２ｇ／１
００ｍｌのＮａ2ＰＯ4および５.６ｇのポリエチレング
リコール６０００を含む）で室温で６分間インキュベー
トした。続いて比濁分析計（Behringwerke AG，Marbur
g）で結果を測定した。１：２０の血清希釈では測定範
囲は９から５６０ＩＵ／ｍｌで、１：１００の血清希釈
では４５から７０００ＩＵ／ｍｌであった。
【００２６】
【表１】 （血清４は陰性であった） 表１は、本発明によるリューマチ性因子決定における、
非常に良好な回収性および希釈下の結果の一貫性を示し
ている。
非常に良好な回収性および希釈下の結果の一貫性を示し
ている。
【００２７】実施例２ Ａ）微量定量プレートの被覆 免疫複合体（１Ａにしたがって調製）を０.０５ｍｏｌ
／ｌのリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６.６）で１２μ
ｇ／ｍｌの濃度に希釈した。この希釈物１３５μｌを微
量定量プレート（例えばＮＵＮＣから購入）の各穴に分
注した。プレートをフィルムで覆い、室温で一晩インキ
ュベートした。インキュベーション後、プレートを各場
合につき２度、それぞれの穴当たり２５０μｌの０.１
ｍｏｌ／ｌのトリス／クエン酸塩緩衝液（ｐＨ４.９）
で洗浄し、さらに風乾した。
／ｌのリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６.６）で１２μ
ｇ／ｍｌの濃度に希釈した。この希釈物１３５μｌを微
量定量プレート（例えばＮＵＮＣから購入）の各穴に分
注した。プレートをフィルムで覆い、室温で一晩インキ
ュベートした。インキュベーション後、プレートを各場
合につき２度、それぞれの穴当たり２５０μｌの０.１
ｍｏｌ／ｌのトリス／クエン酸塩緩衝液（ｐＨ４.９）
で洗浄し、さらに風乾した。
【００２８】Ｂ）試験の実施 １） すべての試薬およびサンプルを＋１８から＋２５
℃に暖めた。このサンプルを蛋白含有トリス緩衝液（ｐ
Ｈ８.２）で１：１０１（１０μｌ＋１ｍｌ）に希釈
し、良く混合した。 ２） 各場合につき、それぞれの穴に１００μｌの希釈
サンプル、コントロールおよびスタンダードを加え、こ
の試料を注入したプレートにカバーをし、＋３７℃（±
１℃）で６０分インキュベートした。 ３） 続いてこの試験プレートを４度、各場合につき
０.３ｍｌのトゥイーン（Tween）含有リン酸緩衝液で洗
浄した。 ４） 次に１００μｌの抗ヒトＩｇＭ／ＰＯＤコンジュ
ゲートを各穴に加え、続いてプレートを＋３７℃で６０
分インキュベートし、さらに項目３）に従い洗浄した。 ５） １００μｌの色原体−緩衝液／基質溶液（過酸化
水素含有酢酸緩衝液中のテトラメチルベンジジンジヒド
ロクロリド）を各穴に加え、プレートにカバーをし、光
を防ぎながら＋２０から＋２５℃で３０分間インキュベ
ートした。各穴に１００μｌの停止液（０.５Ｎ硫酸）
を加えた後、分光光度計で測定波長４５０ｎｍ、リファ
レンス波長６５０ｎｍでプレートを判読した。スタンダ
ードの消光値を用いる標準曲線を使って（多辺形内挿
法）、結果の判定を行った。 表２は、免疫複合体ＥＬＩＳＡを用いたＲＦ値および現
在の技術水準による定量的ＲＦ試験のＲＦ値との比較を
示している。
℃に暖めた。このサンプルを蛋白含有トリス緩衝液（ｐ
Ｈ８.２）で１：１０１（１０μｌ＋１ｍｌ）に希釈
し、良く混合した。 ２） 各場合につき、それぞれの穴に１００μｌの希釈
サンプル、コントロールおよびスタンダードを加え、こ
の試料を注入したプレートにカバーをし、＋３７℃（±
１℃）で６０分インキュベートした。 ３） 続いてこの試験プレートを４度、各場合につき
０.３ｍｌのトゥイーン（Tween）含有リン酸緩衝液で洗
浄した。 ４） 次に１００μｌの抗ヒトＩｇＭ／ＰＯＤコンジュ
ゲートを各穴に加え、続いてプレートを＋３７℃で６０
分インキュベートし、さらに項目３）に従い洗浄した。 ５） １００μｌの色原体−緩衝液／基質溶液（過酸化
水素含有酢酸緩衝液中のテトラメチルベンジジンジヒド
ロクロリド）を各穴に加え、プレートにカバーをし、光
を防ぎながら＋２０から＋２５℃で３０分間インキュベ
ートした。各穴に１００μｌの停止液（０.５Ｎ硫酸）
を加えた後、分光光度計で測定波長４５０ｎｍ、リファ
レンス波長６５０ｎｍでプレートを判読した。スタンダ
ードの消光値を用いる標準曲線を使って（多辺形内挿
法）、結果の判定を行った。 表２は、免疫複合体ＥＬＩＳＡを用いたＲＦ値および現
在の技術水準による定量的ＲＦ試験のＲＦ値との比較を
示している。
【００２９】
【表２】
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭57−208459（ＪＰ，Ａ) 特開 昭62−34059（ＪＰ，Ａ) 特開 平２−259569（ＪＰ，Ａ) 特表 平５−508835（ＪＰ，Ａ) (58)調査した分野(Int.Cl.7，ＤＢ名) G01N 33/564 G01N 33/53 A61K 39/395
Claims (10)
- 【請求項１】 特異的結合相手による試料中のリューマ
チ性因子（アナライト）の検出または決定のための免疫
化学的方法であって、該特異的結合相手は、水溶液中で
抗原とそれに対する抗体とを混合して調製されその後固
相に固定化された免疫複合体である、免疫化学的方法。 - 【請求項２】 免疫複合体が、ヒト、動物または植物由
来の抗原であってアナライトではないもので免疫した動
物から抗血清で調製されたものである請求項１に記載の
方法。 - 【請求項３】 免疫複合体の抗体：抗原比が１：０.０
５〜５である、請求項１または２に記載の方法。 - 【請求項４】 抗血清がヒツジからのものである請求項
１〜３のいずれか１項に記載の方法。 - 【請求項５】 抗血清がウサギからのものである請求項
１〜３のいずれか１項に記載の方法。 - 【請求項６】 判定が粒子支援型免疫化学的方法を用い
て行われる請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。 - 【請求項７】 水溶液中で抗原とそれに対する抗体とを
混合して調製されその後固相に固定化された免疫複合体
である、請求項１に記載の方法で使用する試薬の製造方
法。 - 【請求項８】 試薬がラテックスである請求項７に記載
の製造方法。 - 【請求項９】 免疫複合体が５０容量％までの環状アミ
ドの存在下で調製される、請求項７または８に記載の製
造方法。 - 【請求項１０】 請求項７、８または９のいずれか１項
に記載の製造方法によって得られる、リューマチ性因子
の検出または決定のための試薬。
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| DE4202924A DE4202924A1 (de) | 1992-02-01 | 1992-02-01 | Verfahren zur bestimmung von rheumafaktoren und mittel zur durchfuehrung des verfahrens |
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| GB0803107D0 (en) * | 2008-02-20 | 2008-03-26 | Axis Shield Diagnostics Ltd | Method |
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| DE2918342A1 (de) * | 1979-05-07 | 1980-11-20 | Behringwerke Ag | Latex-reagenz |
| DE3026665A1 (de) * | 1980-07-14 | 1982-02-11 | Hoechst Ag, 6000 Frankfurt | Verfahren zum binden und trennen fuer den kompetitiven radioimmunoassay und reagenz hierzu |
| DE3206729A1 (de) * | 1982-02-25 | 1983-09-01 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | Immunologisches agglutinationsverfahren |
| US4590156A (en) * | 1982-05-21 | 1986-05-20 | The University Of Tennessee Research Corporation | Agglutination assay and product for rubella antibody |
| DE3303083A1 (de) * | 1983-01-31 | 1984-08-02 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | Immunologisches latex-agglutinationsverfahren und mittel |
| US4547466A (en) * | 1983-06-01 | 1985-10-15 | Allied Corporation | Detecting rheumatoid factor with synthetic particles having immune complexes thereon |
| US4935339A (en) * | 1985-05-07 | 1990-06-19 | Nichols Institute Diagnostics | Delayed solid phase immunologic assay |
| US4670381A (en) * | 1985-07-19 | 1987-06-02 | Eastman Kodak Company | Heterogeneous immunoassay utilizing horizontal separation in an analytical element |
| JPS63235868A (ja) * | 1987-03-24 | 1988-09-30 | Nitto Electric Ind Co Ltd | リウマチ因子定量法 |
| JPH01180456A (ja) * | 1988-01-12 | 1989-07-18 | Toyobo Co Ltd | リウマチ因子定量用素子および定量法 |
| JPH02259569A (ja) * | 1989-03-31 | 1990-10-22 | Nitto Denko Corp | リウマチ因子測定方法 |
-
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- 1992-02-01 DE DE4202924A patent/DE4202924A1/de not_active Withdrawn
-
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- 1993-01-05 DE DE59309692T patent/DE59309692D1/de not_active Expired - Lifetime
- 1993-01-05 EP EP93100039A patent/EP0554656B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1993-01-05 AT AT93100039T patent/ATE182215T1/de not_active IP Right Cessation
- 1993-01-05 ES ES93100039T patent/ES2135421T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1993-01-29 AU AU32118/93A patent/AU667700B2/en not_active Ceased
- 1993-01-29 JP JP01301193A patent/JP3220545B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1993-01-29 CA CA002088471A patent/CA2088471C/en not_active Expired - Fee Related
-
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- 1994-09-22 US US08/310,042 patent/US5989922A/en not_active Expired - Lifetime
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| CA2088471A1 (en) | 1993-08-02 |
| ATE182215T1 (de) | 1999-07-15 |
| CA2088471C (en) | 2004-06-22 |
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