JP2023553252A - 筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法及びその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
(1)第1のゲル材の調製:アルギン酸ナトリウムと水を均一に混合・溶解してアルギン酸ナトリウム溶液を得た後、前記アルギン酸ナトリウム溶液に一定量の炭酸カルシウムを加えて前記炭酸カルシウムを均一分散となるように撹拌し、第1のゲル材を得るステップ;
(2)第2のゲル材の調製:デキストラン(Dex)と水を均一に混合・溶解してデキストラン溶液を得た後、前記デキストラン溶液にキトサン(CS)を加えて前記キトサンを均一分散となるように撹拌し、第2のゲル材を得るステップ;
(3)キトサン/デキストラン/アルギン酸塩/カルシウムイオンのダブルネットワークの架橋型ハイドロゲルの調製:第1のゲル材と第2のゲル材を均一に混合して鋳型に流し込み、さらに、前記鋳型を、塩酸溶液を入れた密閉容器に入れ、塩酸を用いてスラリーを12~36時間封入し、CS/Dex/Alg/Ca2+のダブルネットワークの架橋型ハイドロゲルを得るステップ;
(4)ヘパリンコーティングのための浸漬:ステップ(3)で調製して得られたハイドロゲルをヘパリンナトリウム溶液に15~45分間浸漬し、ヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルを得るステップ;
(5)コラーゲンコーティングのための浸漬:ステップ(4)で調製して得られた、ヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルをコラーゲン溶液に15~45分間浸漬し、コラーゲンとヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルを得た後、凍結乾燥により前記筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルを得るステップ。
1.本発明は、半溶解酸性化ゾル-ゲル転移法と内部ゲル化法を組み合わせて、炭酸カルシウム及びキトサンの溶解を開始し、当該溶解過程でアルギン酸ナトリウムとデキストランとのネットワークを形成し、最終的にダブルネットワーク型物理架橋のCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルが成功裏に調製される。このハイドロゲルでは、2つのネットワークの相乗作用により機械的特性の完全性が確保されているため、その後の幹細胞培養の過程でハイドロゲルが崩壊しにくく、有毒な化学架橋剤の使用を避けながら強力に架橋されたハイドロゲルを得ることができる。
2.本発明は、ハイドロゲル系にヘパリンが導入されていることにより、幹細胞成長因子の固定・保存に有利であり、成長因子の長期的放出が可能となる。同時に、ヘパリンの導入は、ハイドロゲルとコラーゲンとの架橋に役立っている。
3.本発明は、ハイドロゲル系にさらにコラーゲンを導入することにより、幹細胞への接着に有利であり、ハイドロゲルの生体適合性を向上させることができる。
ビーカーにアルギン酸ナトリウム(AR、120kDa、G/M比35/65)1gと脱イオン水99mLを加え、アルギン酸ナトリウムが溶解してアルギン酸ナトリウムの1wt%溶液を得るように撹拌した後、アルギン酸ナトリウム溶液に炭酸カルシウム0.1gを加え、炭酸カルシウムが均一に分散するまで撹拌してスラリーと類似する第1のゲル材とした。次に、ビーカーにデキストラン(AR、80~100kDa)1gと脱イオン水99mLを加え、デキストランが溶解してデキストランの1wt%溶液を得るように撹拌した後、デキストラン溶液にキトサン(脱アセチル化度90.24%、230kDa)2gを加え、キトサンが均一に分散するまで撹拌してスラリーと類似する第2のゲル材とした。第1のゲル材と第2のゲル材とを質量比1:1で均一に混合するまで撹拌した。スラリーを鋳型に流し込み、前記鋳型を、塩酸(1mol/L)100mLを入れた密閉プラスチックボックスに入れ、24時間ゾル-ゲル転移を行った。調製されたハイドロゲルを型から出し、脱イオン水で洗浄した。
ビーカーにヘパリンナトリウム(0.5g)と脱イオン水(100mL)を加え、ヘパリン溶液(5.0g/L)を得た。調製されたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルをPBSに30分間浸漬した後、ヘパリン溶液に15分間浸漬することを、3回繰り返した。PBSで洗浄して、表面に吸着されていないヘパリンを除去し、静電吸着によって、ヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルを得た。
ビーカーにコラーゲンと脱イオン水を加え、コラーゲン溶液(20wt%)を得た。調製された、ヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルをPBSに30分間浸漬した後、コラーゲン溶液に15分間浸漬することを、3回繰り返した。PBSで洗浄して表面のコラーゲンを除去した。コラーゲンとヘパリンとの間の相互作用により、コラーゲン及びヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルを得た。その後、このハイドロゲルを真空凍結乾燥機で凍結乾燥(-80℃)した。
物理的に架橋されたダブルネットワーク型ハイドロゲルをPBSで洗浄し、得られたハイドロゲルを75%エタノールに20分間浸漬した。その後、無菌脱イオン水に5分間浸漬して無菌水でエタノールを洗浄する操作を、3回繰り返することにより、残ったエタノールをすべて除去した(Food Hydrocolloids、2017、72、210-218)。その後、成長因子であるビタミンC(0.05μg/mL)及びbFGF(10ng/mL)を含んでいる溶液にハイドロゲルを移し、24時間膨潤させた。最後に、残った溶液中のbFGF(450nm)及びビタミンC(536nm)の含有量を酵素結合免疫測定法(ELISA)により測定し、溶液中のbFGF及びビタミンCの初期濃度と残った溶液の濃度との差から、ハイドロゲルの成長因子に対する吸着を算出した。
実施例4による、成長因子を吸着したハイドロゲルを1mLの無菌PBS溶液に入れ、24時間ごとに、実験中のPBS液をピペットで採集し、さらに、等量の新たな無菌PBS溶液と交換した。ウェルプレートに採集された前記液体を、EP管で保存し、-20℃の冷蔵庫に入れて測定用とした。採集された液体におけるbFGF(450nm)及びビタミンC(536nm)の含有量は、酵素結合免疫測定法(ELISA)により測定した。
実施例4で得られた成長因子含有ハイドロゲルを用い、調製されたダブルネットワーク型ハイドロゲルに細胞を1500個/mm2の密度で接種し、成長培地(79%DMEM、10%FBS、1%二重抗体、79%DMEM)で24時間培養した。その後、前記培地を分化培地(97%DMEM、2%ウマ血清、1%二重抗体)に交換し、前記細胞をさらに7日間培養した。培養7日後の毛細管構造において、有意に増殖した細胞が多く観察された。
ハイドロゲルについては、インストロン社製メカニカルテストのフレーム(モデル5565A)を用いて一軸圧縮試験を行った。応力は、力曲線σ=F/A0に従って計算した。FとA0は試料を圧縮するための力、及び試料の初期面積である。ゲルの弾性率は、G(t)=σ(t)/γに従って計算した。試料について、試験を少なくとも3回繰り返した。試験の前に、ハイドロゲルに亀裂や変形がないかどうかをよく検査した。ゲルをステンレス製圧縮板の中央に揃えた。ゲルは非常に滑りやすいので、圧縮される際にゲルが自由に膨張するようにした。初期クロスヘッド速度を4%ひずみ/秒とし、5%、10%、20%ひずみの圧縮における試料の応力緩和を調査した。その結果、本発明により調製されたハイドロゲルは、その緩和時の応力応答が300秒にも及ぶことが分かった。
ハイドロゲルの形態について、Hitachi S-4800 SEM(日立、日本)を用いて、凍結乾燥されたハイドロゲルに対して5kVの加速電圧をかけてイメージングした。試験の前に、ハイドロゲルの断面を導電性テープで金属基材に固定し、金でスパッタリングメッキを行った。この調査により、本発明により調製されたハイドロゲルは、複数の孔径を有する多孔質構造であり、それらの構造は成長因子の膨潤に有利であり、成長因子のハイドロゲル内部への拡散を促進できることが判明した。さらに、これらの孔は、大きな比表面積を提供し、筋肉幹細胞の接着に有利である。
ビーカーにアルギン酸ナトリウム(AR、120kDa、G/M比70/30)2gと脱イオン水98mLを加え、アルギン酸ナトリウムが溶解してアルギン酸ナトリウムの2wt%溶液を得るように撹拌した後、アルギン酸ナトリウム溶液に炭酸カルシウム0.3gを加え、炭酸カルシウムが均一に分散するまで撹拌してスラリーと類似する第1のゲル材とした。次に、ビーカーにデキストラン(AR、80~100kDa)2gと脱イオン水98mLを加え、デキストランが溶解してデキストランの2wt%溶液を得るように撹拌した後、デキストラン溶液にキトサン(脱アセチル化度90.24%、230kDa)3gを加え、キトサンが均一に分散するまで撹拌してスラリーと類似する第2のゲル材とした。第1のゲル材と第2のゲル材とを質量比2:1で均一に混合するまで撹拌した。スラリーを鋳型に流し込み、前記鋳型を、塩酸(1mol/L)100mLを入れた密閉プラスチックボックスに入れ、12時間ゾル-ゲル転化を行った。調製されたハイドロゲルを型から出し、脱イオン水で洗浄した。ビーカーにヘパリンナトリウム(0.1g)と脱イオン水(100mL)を加え、ヘパリン溶液(1.0g/L)を得た。調製されたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルをPBSに15分間浸漬した後、ヘパリン溶液に45分間浸漬することを、5回繰り返した。PBSで洗浄して、表面に吸着されていないヘパリンを除去した。静電吸着によって、ヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルが得られた。ビーカーにコラーゲンと脱イオン水を加え、コラーゲン溶液(10wt%)が得られた。調製された、ヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルをPBSに15分間浸漬した後、コラーゲン溶液に45分間浸漬することを、5回繰り返した。PBSで洗浄して、表面のコラーゲンを除去した。コラーゲンとヘパリンとの間の相互作用により、コラーゲン及びヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルが得られた。その後、このハイドロゲルを真空凍結乾燥機で凍結乾燥(-80℃)させた。調製して得られたハイドロゲルは、多孔質であり、ハイドロゲルでブタ筋肉幹細胞を7日間培養した後、毛細管構造において多くのブタ筋肉幹細胞が観察された。
キトサンとアルギン酸ナトリウムのみが架橋された場合について、すなわち、第1のゲル材に炭酸カルシウムが含まれておらず、第2のゲル材にデキストランが含まれていないこと以外は、残りのステップを実施例1~3と同様にして、ハイドロゲルを調製した。
アルギン酸ナトリウムとカルシウムイオンのみを含んでいる場合について、すなわち、第2のゲル材が含まれていないこと以外は、残りのステップを実施例1~3と同様にして、ハイドロゲルを調製した。
デキストランを含んでいない場合について、即ち、第2のゲル材にキトサンのみが含まれていること以外は、残りのステップを実施例1~3と同様にして、ハイドロゲルを調製した。
実施例1に従って2つのゲル材料を調製して混合した後、スラリーを鋳型に流し込み、前記鋳型を、PBS(1mol/L)100mLを入れた密閉プラスチックボックスに入れ、24時間転化を行った。型から出した後、依然としてスラリーであることが確認された。このスラリーは、ハイドロゲルの基本的な機械的特性を具備していなく、この状態では成長因子を吸着・放出する能力、応力特性を有していないため、ブタ筋肉幹細胞について、このスラリーで細胞培養実験を実施することができなかった。
ビーカーにアルギン酸ナトリウム(AR、120kDa、G/M比35/65)1gと脱イオン水49mLを加え、アルギン酸ナトリウムが溶解してアルギン酸ナトリウムの2wt%溶液を得るように撹拌した後、もう1つのビーカーに塩化カルシウム0.1gと脱イオン水49mLを加え、塩化カルシウムが溶解して塩化カルシウムの0.2wt%溶液を得るように撹拌した。その後、もう1つのビーカーにデキストラン(AR、80~100kDa)1gと脱イオン水49mLを加え、デキストランが溶解してデキストランの2wt%溶液を得るように撹拌した後、もう1つのビーカーにキトサン(脱アセチル化度90.24%、230kDa)2gと塩酸(1mol/L)49mLを加え、キトサンが溶解してキトサンの4wt%溶液を得るように撹拌した。アルギン酸ナトリウム溶液、塩化カルシウム溶液、デキストラン溶液、キトサン溶液を質量比1:1:1:1で均一に撹拌して混合し、24時間静置してハイドロゲルを得た。その後、実施例2及び3の手順に従って処理してハイドロゲルを調製した。
Claims (16)
- まず、アルギン酸ナトリウムを溶解して溶液とした後、当該アルギン酸ナトリウム溶液に一定量の炭酸カルシウムを均一分散となるように加えてスラリーを得るステップと、
その後、デキストランを溶解して溶液とした後、当該デキストラン溶液にキトサンを均一分散となるように加えてスラリーを得るステップと、
先の2つのスラリーを混合してなるスラリーを鋳型に流し込み、さらに、塩酸を入れた密閉容器に入れて、架橋させることで、ダブルネットワークの物理架橋型ハイドロゲルを得るステップと、
その後、ヘパリンナトリウム溶液に浸漬して、ヘパリンがコーティングされたハイドロゲルを得た後、コラーゲン溶液に浸漬して、コラーゲン及びヘパリンがコーティングされた、ダブルネットワークの架橋型ハイドロゲルを得るステップと、
を含むことを特徴とする、筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。 - (1)アルギン酸ナトリウムと水を均一に混合・溶解してアルギン酸ナトリウム溶液を得た後、前記アルギン酸ナトリウム溶液に一定量の炭酸カルシウムを加えて、前記炭酸カルシウムを均一分散となるように撹拌し、第1のゲル材を得る第1のゲル材の調製ステップと、
(2)デキストラン(Dex)と水を均一に混合・溶解してデキストラン溶液を得た後、前記デキストラン溶液にキトサン(CS)を加えて、前記キトサンを均一分散となるように撹拌し、第2のゲル材を得る第2のゲル材の調製ステップと、
(3)第1のゲル材と第2のゲル材を均一に混合して鋳型に流し込み、さらに、前記鋳型を、塩酸溶液を入れた密閉容器に入れ、塩酸を用いてスラリーを12~36時間封入し、ダブルネットワークのCS/Dex/Alg/Ca2+の架橋型ハイドロゲルを得る、ダブルネットワークのキトサン/デキストラン/アルギン酸塩/カルシウムイオン架橋型ハイドロゲルの調製ステップと、
(4)ステップ(3)で調製して得られたハイドロゲルをヘパリンナトリウム溶液に15~45分間浸漬し、ヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルを得る、ヘパリンコーティングのための浸漬ステップと、
(5)ステップ(4)で調製して得られた、ヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルをコラーゲン溶液に15~45分間浸漬し、コラーゲンとヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルを得た後、凍結乾燥を行う、コラーゲンコーティングのための浸漬ステップと、を含むことを特徴とする、請求項1に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。 - ステップ(1)に記載のアルギン酸ナトリウムにおけるα-L-Guluronic acid(G)とβ-D-Mannuronic acid(M)との比率が、70/30~30/70であることを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。
- ステップ(1)において、アルギン酸ナトリウムAlg溶液におけるアルギン酸ナトリウムの含有量が、1~2wt%であり、第1のゲル材におけるCaCO3の含有量が、0.01~0.5wt%であることを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。
- 前記デキストラン溶液におけるデキストランの含有量が、0.5~2.0wt%であり、前記第2のゲル材におけるキトサンの含有量が、0.5~3wt%であることを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。
- 前記第1のゲル材と前記第2のゲル材とを質量比1:1~2:1で混合することを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。
- ステップ(3)における塩酸溶液の濃度が、5~10mol/Lであることを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。
- ステップ(4)におけるヘパリン溶液の濃度が、1~7g/Lであることを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。
- ステップ(4)において、ヘパリンコーティングのための浸漬の具体的な操作は、
調製されたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルをPBSに15~45分間浸漬した後、ヘパリン溶液に15~45分間浸漬することを3~5回繰り返し、さらにPBSで洗浄して、表面に吸着されていないヘパリンを除去するステップを含むことを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。 - ステップ(5)におけるコラーゲン溶液の濃度が、10~20wt%であることを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。
- ステップ(5)において、コラーゲンコーティングのための浸漬の具体的な操作は、
調製して得られた、ヘパリンがコーティングされたCS/Dex/Alg/Ca2+ハイドロゲルをPBSに15~45分間浸漬した後、コラーゲン溶液に15~45分間浸漬することを3~5回繰り返し、さらにPBSで洗浄して、表面に吸着されていないヘパリンを除去するステップを含むことを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。 - ステップ(5)において、前記凍結乾燥の温度は-60~80℃であり、前記凍結乾燥の時間は12~24時間であることを特徴とする、請求項2に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの調製方法。
- 請求項1から12のいずれか1項に記載の調製方法により調製される筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲル。
- 請求項13に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルを含む、培地。
- 請求項13に記載の筋肉幹細胞培養用架橋ハイドロゲルを培地として用いることを特徴とする、筋肉幹細胞の培養方法。
- 請求項1~12のいずれか1項に記載の調製方法又は請求項13に記載の筋肉幹細胞培養用架橋型ハイドロゲルの、培養肉分野における使用。
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