JP2022532214A - メッセンジャーrnaの精製方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年5月15日に出願された米国仮出願第62/848,412号および2019年8月26日に出願された同第62/891,781号に対する優先権を主張するものであり、これらのそれぞれは、全ての目的のためにその全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明がより容易に理解されるように、ある特定の用語が以下で最初に定義される。以下の用語および他の用語の追加の定義は、明細書全体を通して記載される。
mRNAの精製における苛性溶媒または可燃性溶媒の使用は、特に大規模な調製において、安全性およびコストの課題を呈することがある。本発明は、苛性溶媒または可燃性溶媒を使用することなくmRNAを精製する方法に関する。本明細書に提供される方法は、ほとんどの臨床的および商業的ニーズを満たすことができる規模で製造されたmRNAの効率的な捕捉、洗浄、および高収率単離を可能にする。したがって、本開示は、mRNA補充療法の進路を提供し、それが、現在利用可能なより伝統的な酵素補充療法および生物学的療法の実行可能かつ成功した代替物となることを可能にする。
mRNAを精製する方法は、高モル塩溶液と両親媒性ポリマーとを含む懸濁液中でmRNAを沈殿させる工程とmRNAを捕捉する工程と、mRNAを洗浄する工程と、を含み、それによって、混入物を実質的に含まないmRNAを得る。
本明細書に記載されるmRNAを精製する方法の別の工程は、mRNAを捕捉することを含む。mRNAを捕捉する様々な方法が当該技術分野で公知である。いくつかの実施形態では、沈殿したmRNAを含有する不純調製物は、膜またはフィルタによって沈殿したmRNAが捕捉または保持されるように、膜濾過を伴う精製プロセスに供される。したがって、いくつかの実施形態では、不純調製物は、不溶性物質を除去するために前処理することなく、沈殿後に膜濾過にかけられる。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の方法では、濾過助剤が使用される。濾過遠心分離機を使用して沈殿したmRNAを精製する場合に、濾過助剤を使用できる。濾過助剤は、濾過遠心分離機のフィルタ上に沈殿したmRNAを保持すること、および濾過遠心分離機のフィルタの表面から保持されたmRNAを取り出すことを可能にするのを補助し得る。
mRNAを精製する方法はまた、膜上に保持された不純物を取り除くために溶出する前に、捕捉された不溶性mRNAを洗浄することを含む。
典型的には、捕捉または保持されたmRNAは、沈殿したmRNAを溶液に再可溶化することによって溶出または収集され得る。例えば、捕捉されたmRNAは、RNAseを含まない水で溶出されてもよい。特定の実施形態では、捕捉されたmRNAを溶出することは、RNAseを含まない水を再循環させることを伴う。例えば、RNAseを含まない水は、約5~30分間(例えば、約5~25分間、約5~20分間、または約5~15分間)循環させることができる。特定の実施形態では、RNAseを含まない水は、約5~10分間(例えば、約5、6、7、8、9または10分間)再循環される。TEおよび/またはクエン酸ナトリウムなどの他の緩衝液を使用して、mRNAを再可溶化することができる。用語「溶出」は、例えば、深層濾過が関与する精製プロセスに関連して使用され得るが、用語「収集」は、遠心分離が関与する精製プロセスに関連して使用され得る。
本発明によって提供される特定の利点は、mRNA、特にインビトロで合成されたmRNAを、大規模または商業規模で精製する能力である。例えば、いくつかの実施形態では、インビトロで合成されたmRNAは、バッチ当たり約100ミリグラム、1グラム、10グラム、50グラム、100グラム、200グラム、300グラム、400グラム、500グラム、600グラム、700グラム、800グラム、900グラム、1kg、5kg、10kg、50kg、100kg、1メートルトン、10メートルトンまたはそれ以上のスケールで精製される。実施形態では、インビトロで合成されたmRNAは、約1kg以上のスケールで精製される。
本明細書に提供されるmRNA精製方法は、短鎖不全型RNA種、長鎖不全型RNA種、二本鎖RNA(dsRNA)、残留プラスミドDNA、残留インビトロ転写酵素、残留溶媒、および/または残留塩を含む混入物を実質的に含まない精製mRNA組成物をもたらす。
任意の種類の核酸を、本明細書に記載される方法を使用して精製することができる。いくつかの実施形態では、核酸は、インビトロ転写された(IVT)mRNAである。簡潔には、IVTは、典型的には、プロモーター、リボヌクレオチド三リン酸のプール、DTTおよびマグネシウムイオンを含み得る緩衝系、および適切なRNAポリメラーゼ(例えば、T3、T7、またはSP6 RNAポリメラーゼ)、DNAse I、ピロホスファターゼ、および/またはRNAse阻害剤を含む線状または環状DNA鋳型を用いて実行される。いくつかの実施形態では、IVT反応は、2段階プロセスを含み、第1段階は、mRNAのインビトロ転写とそれに続く精製工程を含み、第2段階は、インビトロ転写されたmRNAのキャッピングおよびテーリングとそれに続く第2の精製工程を含む。いくつかの実施形態では、IVT反応は、キャッピングおよびテーリングされたmRNAのインビトロ転写をもたらす1段階プロセスである。例えば、いくつかの実施形態では、インビトロ転写は、キャップピングおよびテーリングされたmRNAが産生され、その後精製される。これは、例えば、ポリT領域および/またはCleanCap(登録商標)を含むプラスミドを使用することによって達成される。正確な条件は、特定の用途により異なる。これらの試薬の存在は、いくつかの実施形態による最終産物中では望ましくなく、それ故に、不純物と称され得、これらの不純物のうちの1つ以上を含む調製物は、不純調製物と称され得る。したがって、一態様では、本発明は、(a)(i)プロモーターを含むDNA鋳型と(ii)RNAポリメラーゼとを混合することによってインビトロ転写(IVT)を行い、完全長mRNAを含む不純調製物を生成する工程と、(b)高モル塩および両親媒性ポリマーを懸濁液に提供して、完全長mRNAを沈殿させ、懸濁液中に沈殿した完全長mRNAを提供する工程と、(c)懸濁液をフィルタに適用することによって、沈殿した完全長mRNAを捕捉する工程と、(d)工程(c)の沈殿した完全長mRNAを水性溶媒で洗浄して、水溶液中に精製された完全長mRNAを得る工程と、(e)工程(d)からの沈殿したmRNAを可溶化して、精製されたmRNA組成物を得る工程であって、工程(d)から得られる水溶液中の精製された完全長mRNAが、(i)プロモーターを含む前記DNA鋳型および(ii)RNAポリメラーゼを実質的に含まない、得る工程と、を含む、mRNAを製造する方法を提供する。
IVT反応条件
以下の実施例では、別段の記載がない限り、T7ポリメラーゼまたはSP6ポリメラーゼのいずれかを使用して、インビトロ転写(IVT)を介してmRNAを合成した。簡潔に述べると、SP6ポリメラーゼIVT反応では、転写されたmRNAの各グラムについて、RNAポリメラーゼ特異的プロモーター、SP6 RNAポリメラーゼ、RNase阻害剤、ピロホスファターゼ、5mM NTPs、10mM DTT、および反応緩衝液(10x-250mMのトリス-HCl、pH7.5、20mMのスピルミジン、50mMのNaCl)と、20mgの線状化二本鎖DNAプラスミドを含有する反応物をRNaseを含まない水で調製し、次いで、37Cで、60分間でインキュベートした。次に、反応をDNase IおよびDNase I緩衝液(10x-100mMのトリス-HCl、5mMのMgCl2および25mMのCaCl2、pH7.6)の添加によりクエンチして、精製のための調製において二本鎖DNA鋳型の消化を促進した。最終反応体積は204mLであった。
別段の記載がない限り、IVT転写mRNAは、IVT反応の一部としてキャップ構造を含めるか、またはその後の酵素的工程で、その5’末端でキャップされた。IVT反応の一部としてのキャッピングについては、キャップ類似体を、新生RNA鎖の最初の「塩基」として組み込むことができる。キャップ類似体は、Cap0、Cap1、Cap2、m6Am、または非天然キャップであってもよい。あるいは、キャップのないかつ精製されたインビトロ転写(IVT)mRNAは、IVT後に酵素的に修飾されて、例えば、グアニル酸トランスフェラーゼを使用する5’N7-メチルグアニル酸キャップ0構造の付加により、およびFechter,P.;Brownlee,G.G.“Recognition of mRNA cap structures by viral and cellular proteins”J.Gen.Virology2005,86,1239-1249に記載されているように、2’O-メチルトランスフェラーゼを使用してCap1構造をもたらす最後から2番目のヌクレオチドの2’O位置でのメチル基の付加により、キャップを含むことができる。
別段の記載がない限り、IVT転写されたmRNAは、その3’末端で、線状化プラスミドにテール鋳型を含めることによってテーリングされ、これは、IVT反応の一部として、またはその後の酵素的工程でmRNAをテーリングする。IVT反応の一部としてのテーリングについては、ポリAテールまたは類似の適切なテールが、IVTプロセスの一部としてmRNA上に形成されるように、ポリTまたは類似のテーリング機能をpDNA鋳型に組み込むことが行われる。あるいは、ポリAテールは、IVT反応の後に、例えば、ポリAポリメラーゼを使用して、IVT産生mRNAの3’末端に酵素的に付加することができる。
この実施例は、mRNA精製のmRNA沈殿工程中に、エタノールなどの揮発性有機化合物(VOC)の代わりにポリマーを使用できることを示す。かかるポリマー誘導沈殿法は、治療用途に適した最終収率および純度レベルを提供する。
1体積のmRNAを、2.3体積の5M GSCN-10mM DTT緩衝液と混合し、最終濃度を2M GSCNとした。その後、1.7体積の100%のエタノールを懸濁液に加え、エタノールの最終濃度を34%とした。
1体積のmRNAを、2.3体積の5M GSCN-10mM DTT緩衝液と混合し、最終濃度を2M GSCNとした。その後、1.7体積の50%のPEG-6000を懸濁液に加え、PEG-6000の最終濃度を17%とした。
沈殿工程を、Schmitz et al.,Notes&Tips,Anal Biochem.(2006)311-313に記載される条件下で行った。1体積のmRNAを、NaClと混合し、NaClの最終濃度を500mMで得た。次いで、50%のPEG-6000を懸濁液に加え、PEG-6000の最終濃度を19%とした。
残留IVT酵素および任意選択でのキャップおよび/またはテール酵素に関して、mRNA純度を銀染色によって評価した。具体的にいうと、以下の残留プロセス酵素の各々は、このアプローチを使用して検出することができる。RNAポリメラーゼ、RNA阻害剤、ピロホスファターゼ、グアニリルトランスフェラーゼ(GuaT)、2’-OM、およびポリAポリメラーゼ、ならびに銀染色ゲル調製物の一部として使用される酵素、RNase I。具体的には、以下の染色前試料調製物を用いて、銀染色ゲルをInvitrogenキットに従って実行した。15.5μlの1mg/mLのRNAを、4μlのRNaseI(100U/mL、Invitrogen)で37Cで30分間処理した。試料を、還元試薬を用いてInvitrogen LDSローディング緩衝液中で調製し、最終的に10%のBis-Trisゲルにロードした。電気泳動を200Vで35分間行った。ゲルを、Silver Quest染色キットを使用して染色し、8分間現像した。精製されたmRNAを含む試料は、特定のプロセス酵素のバンドが見えない場合、特定のプロセス酵素を実質的に含まないと見なされた。
本実施例は、様々な実施形態によると、治療用途に適したmRNAを精製するために、異なる比率のポリマーが、mRNAのポリマー誘導沈殿に使用できることを示す。
本実施例は、mRNA沈殿工程および洗浄工程の両方で、エタノールなどのVOCを使わずにポリマーを使用して、治療用途に適した収量および純度レベルでmRNAを精製できることを示す。
本実施例は、上述のエタノールを含まないmRNA精製方法を使用して、構築物のサイズまたはヌクレオチド組成物に関係なくmRNAを精製できることを示す。さらに、本明細書に記載の方法による精製mRNAは、高収率、純度、および完全性をもたらす。
RNA完全性分析(フラグメントアナライザー-キャピラリー電気泳動)
RNAの完全性およびテール長は、CEフラグメントアナライザーおよび市販のRNA検出キットを使用して評価した。完全性のピークプロファイルおよびテール長のサイズシフトの分析を、未加工データならびに正規化データセットに対して行った。
最終精製されたmRNA産物中に存在するキャップ種を、米国特許第9,970,047号に記載されるクロマトグラフィー法を使用して定量化した。この方法は、キャップされていないmRNAを総mRNAのパーセントとして正確に定量化することができる。この方法はまた、CapG、Cap0、およびCap1の量などの特定のキャップ構造の量を定量化することもでき、総mRNAのパーセンテージとして報告され得る。
個々のmRNA試料中のdsRNAの存在は、Kariko et al,Nucleic Acids Research,2011.39,No.21によって以前に記述されたJ2抗dsRNAドットブロットを使用して測定された。簡潔に述べると、200ngのRNAまたは25ngのdsRNA対照のいずれかを、超荷電(super charged)Nytran上にブロットした。ブロットを乾燥させ、5%脱脂粉乳でブロックし、次いでブロット当たり1μgのJ2抗体でプローブした。ブロットを洗浄し、HRPコンジュゲートロバ抗マウスでプローブしてから、再度洗浄した。ブロットを、ECLとウェスタンブロット検出試薬とで検出し、画像をフィルムに捕捉した。精製されたmRNAを含む試料は、それぞれのブロットが、dsDNAを欠いた対照と比較して、目に見えるほど暗い着色を示さなかった場合、dsRNAを実質的に含まないと見なされた。
mRNA試料中の様々な分子量PEG種の存在を、AbcamからのPEG-ELISAキットを使用して決定した。簡潔に述べると、10ng/mLという低い試料中のPEGを検出し、そのレベルで高分子量PEGを正確に定量できる競合阻害ELISAを使用した。標準的なエタノールベースの沈殿法、ならびに溶媒なし、1/10希釈および1/100希釈での下記のエタノールを含まない方法を用いてmRNA試料を精製した。検出限界は、10ng/mgのRNA、100ng/mgのRNA、および1ug/mgのRNAを、それぞれ、溶媒なしの濃度で、1/10希釈で、および1/100希釈で検出する。
本実施例は、上述のエタノールを含まないmRNA精製方法を使用して、治療用途に必要な規模および品質でmRNAを精製できることを示す。本明細書に記載される方法に従って1グラムおよび10グラムのスケールで精製されたmRNAは、高収率、純度、および完全性をもたらし、方法のスケーラビリティを示す。
本実施例は、両親媒性ポリマーMTEGを、エタノールなどのVOCを使わずに、洗浄工程中に使用して、治療用途に適した収率および純度レベルでmRNAを精製できることを示す。
本実施例は、両親媒性ポリマーMTEGを、エタノールなどのVOCを使わずに、mRNA沈殿工程および洗浄工程の両方で使用して、治療用途に適した収率および純度レベルでmRNAを精製できることを示す。
本実施例は、その低粘度および関連する優れた取り扱い特性により、MTEGが驚くほど多用途であり、様々なスケールで様々なエタノールを含まないmRNA精製方法に利用することができ、収量回収率が90%を超えることを実証する。
より小さなバッチについては、7.5gのOTC mRNAをIVT合成を介して合成し、5’キャップおよび3’ポリAテールを、実施例1およびスケーリング反応条件に記載されるように付加した。mRNAを、実施例7に示したのと同じMTEGポリマー誘導沈殿を使用して沈殿させた。したがって、沈殿反応におけるmRNA、GSCN(5M GSCN-10mM DTT緩衝液)およびMTEG(100重量/体積%)の体積比は1:2.3:1であった。懸濁液を、底部に取り付けられたインペラを備えた60LのLee容器(Lee vessel)内で60Hzで混合した後、68g/m2の負荷容量を有する0.11m2の深層型フィルタ上に60L/分/m2の流量でロードした。沈殿した保持されたmRNAを、流量60L/分/m2の90%のMTEGを使用して洗浄した。
15gのCFTR mRNAをIVT合成を介して合成し、5’キャップおよび3’ポリAテールを、実施例1およびスケーリング反応条件に記載されるように付加した。mRNAを、実施例7に示したのと同じMTEGポリマー誘導沈殿を使用して沈殿させた。したがって、沈殿反応におけるmRNA、GSCN(5M GSCN-10mM DTT緩衝液)およびMTEG(100重量/体積%)の体積比は1:2.3:1であった。懸濁液を、底部に取り付けられたインペラを備えた60LのLee容器内で60Hzで混合し、セルロース濾過助剤を、1:10のmRNA:濾過助剤の質量比で添加した。懸濁液を濾過遠心分離機に装填し、95%MTEGで洗浄した。
7.5g以上のバッチサイズでは、沈殿ポリマーおよび洗浄緩衝液成分としてのMTEGの使用により、mRNAの非常に高い%回収率を確保した。表7に示すように、同じ沈殿プロトコルを使用して、MTEGを、遠心分離機ベースの精製プロセス、ならびに、フィルタ膜またはフィルタカートリッジベースの精製プロセス、例えば、深層濾過(DF)などの両方で、沈殿緩衝液および洗浄緩衝液の両方として用いることができる。遠心分離の使用により、mRNAのほぼ100%の回収が得られた(以下の表7を参照されたい)。
当業者は、本明細書に記載される本発明の特定の実施形態の多くの均等物を認識するか、または日常的な実験作業を越えない手法を使用して確認できるであろう。本発明の範囲は、上記の記載に限定されることは意図されず、むしろ以下の特許請求の範囲に記述されるとおりである。
Claims (93)
- メッセンジャーRNA(mRNA)を精製する方法であって、
a)高モル塩溶液および両親媒性ポリマーを含む懸濁液中で前記mRNAを沈殿させて、沈殿したmRNAを提供することと、
b)前記沈殿したmRNAを捕捉することと、
c)工程b)で捕捉された前記沈殿したmRNAを、洗浄溶液で洗浄して、前記沈殿したmRNAを精製することと、
d)工程c)からの前記沈殿したmRNAを可溶化して、精製されたmRNA組成物を得ることと、を含む、方法。 - 前記精製されたmRNA組成物が、短鎖不全型(short abortive)RNA種、長鎖不全型(long abortive)RNA種、二本鎖RNA(dsRNA)、残留プラスミドDNA、残留インビトロ転写酵素、残留溶媒、および/または残留塩を含む混入物を実質的に含まない、請求項1に記載の方法。
- 前記残留プラスミドDNAが、10pg/mg以下である、請求項2に記載の方法。
- 前記両親媒性ポリマーが、プルロニクス、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、ポリエチレングリコール(PEG)、またはそれらの組み合わせから選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記両親媒性ポリマーがPEGである、請求項4に記載の方法。
- 前記懸濁液が、約10重量/体積%~約100重量/体積%の濃度のPEGを含む、請求項5に記載の方法。
- 前記懸濁液が、約50重量/体積%の濃度のPEGを含む、請求項6に記載の方法。
- 前記高モル塩溶液が、チオシアン酸グアニジニウム(GSCN)を含む、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 両親媒性ポリマーを含む洗浄溶液が、工程c)で前記mRNAを洗浄するために使用される、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記両親媒性ポリマーがPEGを含む、請求項9に記載の方法。
- PEGが、約10重量/体積%~約100重量/体積%の濃度で前記洗浄溶液中に存在する、請求項10に記載の方法。
- PEGが、約50~約90重量/体積%の濃度で前記洗浄溶液中に存在する、請求項10に記載の方法。
- 前記PEGが、約90重量/体積%の濃度で前記洗浄溶液中に存在する、請求項12に記載の方法。
- PEGの分子量が、約200~40,000g/molである、請求項5~13のいずれか一項に記載の方法。
- 前記PEGが、線状、分岐状、Y字形状、またはマルチアーム形状である、請求項14に記載の方法。
- 前記PEGが、線状である、請求項15に記載の方法。
- 前記PEG溶液が、トリエチレングリコール、テトラエチレングリコール、PEG200、PEG300、PEG400、PEG600、PEG1,000、PEG1,500、PEG2,000、PEG3,000、PEG3,350、PEG4,000、PEG6,000、PEG8,000、PEG10,000、PEG20,000、PEG35,000、およびPEG40,000から選択されるPEGを含む、請求項16に記載の方法。
- 前記PEG溶液が、PEG6,000を含む、請求項17に記載の方法。
- 前記PEG溶液が、PEG6,000を含まない、請求項5~17のいずれか一項に記載の方法。
- 前記PEGが、PEG400である、請求項17に記載の方法。
- 前記PEG溶液が、1つ以上のPEGポリマーの混合物を含む、請求項5~20のいずれか一項に記載の方法。
- 前記PEGポリマーの混合物が、別個の分子量を有するポリマーを含む、請求項21に記載の方法。
- 前記PEGポリマーの混合物が、別個の幾何学的形状を有するポリマーを含む、請求項22に記載の方法。
- 前記洗浄溶液が、水性である、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記洗浄溶液が、アルコールを含まない、請求項24に記載の方法。
- 前記洗浄溶液が、エタノール、イソプロピルアルコール、またはベンジルアルコールを含まない、請求項25に記載の方法。
- 前記PEG溶液が、非水性成分を含む、請求項5~23のいずれか一項に記載の方法。
- 前記非水性成分が、エタノール、イソプロピルアルコール、またはベンジルアルコールである、請求項27に記載の方法。
- 前記沈殿したmRNAを捕捉することが、フィルタ上で起こる、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記フィルタが、精密濾過フィルタまたは限外濾過フィルタから選択される、請求項29に記載の方法。
- 前記精密濾過フィルタが、0.05μm~1.0μmの細孔サイズを有する、請求項30に記載の方法。
- 前記精密濾過フィルタが、1,000キロダルトン(kDa)を超える公称分子量限界(NMWL)を有する、請求項31に記載の方法。
- 前記限外濾過フィルタが、0.05μm未満の細孔サイズを有する、請求項30に記載の方法。
- 前記限外濾過フィルタが、約1kDa~1,000kDAのNMWLを有する、請求項33に記載の方法。
- 接線流濾過(TFF)または透析濾過が、工程c)で前記沈殿したmRNAを精製するために使用される、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 濾過助剤が、使用される、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記濾過助剤が、セルロース系である、請求項36に記載の方法。
- 前記濾過助剤が、珪藻土、および/または火山灰を含む、請求項37に記載の方法。
- 前記方法が、クロマトグラフィー工程を含まない、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記沈殿したmRNAを遠心分離して、mRNAペレットを得る、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記mRNAペレットが、緩衝液中に再懸濁される、請求項40に記載の方法。
- 前記緩衝液が、水、トリス-EDTA(TE)、クエン酸ナトリウム、またはこれらの組み合わせから選択される、請求項41に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの収率が、約50%~約100%である、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの前記収率が、約70%~約99%である、請求項43に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの前記収率が、約90~約99%である、請求項44に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの純度が、約60%~約100%である、先行請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの前記純度が、約80%~99%である、請求項46に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの前記純度が、約90%~約99%である、請求項47に記載の方法。
- メッセンジャーRNA(mRNA)を精製する方法であって、
a)高モル塩溶液および両親媒性ポリマーを含む懸濁液中で前記mRNAを沈殿させることと、
b)前記mRNAをフィルタ上に捕捉することと、
c)工程b)の前記mRNAをPEG溶液で洗浄して、混入物を実質的に含まない精製されたmRNA組成物を得ることと、を含む、方法。 - 前記精製されたmRNAの収率が、約50%~約100%である、請求項49に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの前記収率が、約70%~約99%である、請求項50に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの前記収率が、約90~約99%である、請求項51に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの純度が、約60%~約100%である、請求項49~52のいずれか一項に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの前記純度が、約80%~99%である、請求項53に記載の方法。
- 前記精製されたmRNAの前記純度が、約90%~約99%である、請求項54に記載の方法。
- 前記沈殿したmRNAが、少なくとも100mg、1g、10g、100g、1kg、10kg、100kg、1メートルトン、もしくは1メートルトンのmRNA、またはそれらの間の任意の量を含む、請求項49~55のいずれか一項に記載の方法。
- 前記沈殿したmRNAが、1kgを超えるmRNAを含む、請求項55に記載の方法。
- 前記両親媒性ポリマーが、プルロニック、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、ポリエチレングリコール(PEG)、またはそれらの組み合わせから選択される、請求項49~57のいずれか一項に記載の方法。
- 前記両親媒性ポリマーが、PEGである、請求項58に記載の方法。
- 前記高モル塩溶液が、グアニジニウムチオシアネート(GSCN)を含む、請求項49~59のいずれか一項に記載の方法。
- 前記方法が、エタノールを含まない、請求項49~60のいずれか一項に記載の方法。
- 前記精製されたmRNA組成物が、短鎖不全型RNA種、長鎖不全型RNA種、二本鎖RNA(dsRNA)、残留プラスミドDNA、残留インビトロ転写酵素、残留溶媒、および/または残留塩を含む混入物を実質的に含まない、請求項49~61のいずれか一項に記載の方法。
- メッセンジャーRNA(mRNA)を精製する方法であって、
a)PEGを含むグアニジンチオシアネート(GSCN)溶液中で前記mRNAを沈殿させることと、
b)工程a)の前記溶液を遠心分離して、mRNAペレットを作製することと、
c)前記mRNAペレットを緩衝液中に再懸濁することと、
d)前記mRNAをフィルタ上で捕捉することと、
e)工程d)の前記mRNAをPEG溶液で洗浄することと、
f)工程e)の前記洗浄されたmRNAを可溶化して、混入物を実質的に含まないmRNA組成物を得ることと、を含む、方法。 - 前記精製されたmRNA組成物が、短鎖不全型RNA種、長鎖不全型RNA種、二本鎖RNA(dsRNA)、残留プラスミドDNA、残留インビトロ転写酵素、残留溶媒および/または残留塩を含む混入物を実質的に含まない、請求項63に記載の方法。
- mRNAを作製する方法であって、
a)(i)プロモーターを含むDNA鋳型と、(ii)RNAポリメラーゼとを混合することによってインビトロ転写(IVT)を行い、完全長mRNAを含む不純調製物を生成する工程と、
b)高モル塩および両親媒性ポリマーを懸濁液に提供して、完全長mRNAを沈殿させ、前記懸濁液中に沈殿した完全長mRNAを提供する工程と、
c)前記懸濁液をフィルタに適用することによって、前記沈殿した完全長mRNAを捕捉する工程と、
d)工程(c)の前記沈殿した完全長mRNAを水性溶媒で洗浄して、水溶液中に精製された完全長mRNAを得る工程と、
e)工程(d)からの前記沈殿したmRNAを可溶化して、精製されたmRNA組成物を得る工程であって、工程(d)から得られる前記水溶液中の前記精製された完全長mRNAが、(i)プロモーターを含む前記DNA鋳型および(ii)前記RNAポリメラーゼを実質的に含まない、得る工程と、を含む、方法。 - 工程(a)における、前記RNAポリメラーゼが、SP6ポリメラーゼである、請求項65に記載の方法。
- 工程(e)から得られる前記水溶液中の前記精製された完全長mRNAもまた、(v)二本鎖RNA(dsRNA)を実質的に含まない、請求項65または66に記載の方法。
- 前記両親媒性ポリマーが、MTEGを含む、請求項1、49および65のいずれか一項に記載の方法。
- 前記懸濁液が、沈殿したmRNA、前記高モル塩溶液、およびMTEGを含み、前記MTEGが、約15重量/体積%~約45重量/体積%の最終濃度である、請求項68に記載の方法。
- 前記懸濁液が、沈殿したmRNA、前記高モル塩溶液、およびMTEGを含み、前記MTEGが、約20重量/体積%~約40重量/体積%の最終濃度である、請求項69に記載の方法。
- 前記懸濁液が、沈殿したmRNA、前記高モル塩溶液、およびMTEGを含み、前記MTEGが、約20%、約25%、約30%、または約35重量/体積%の最終濃度である、請求項70に記載の方法。
- 前記懸濁液が、沈殿したmRNA、高モル塩溶液、およびPEGまたはMTEGを含む、請求項1、49および65のいずれか一項に記載の方法。
- 前記高モル塩が、約2~4Mの最終濃度であり、PEGが、約5重量/体積%~約20重量/体積%の最終濃度である、請求項5、59、または65に記載の方法。
- 前記高モル塩が、約2.5~3Mの最終濃度であり、前記PEGが、約10重量/体積%~約15重量/体積%の最終濃度である、請求項73に記載の方法。
- 前記高モル塩が、約2.7Mの最終濃度であり、前記PEGが、約12重量/体積%の最終濃度である、請求項74に記載の方法。
- 前記高モル塩溶液が、GCSNを含む、請求項69~75のいずれか一項に記載の方法。
- 前記PEGが、約6000g/mol(例えば、PEG-6000)の分子量を有する、請求項72~76のいずれか一項に記載の方法。
- 前記懸濁液が、2:1、5:1、10:1、または15:1の前記沈殿したmRNAとの質量比で濾過助剤をさらに含む、請求項69~77のいずれか一項に記載の方法。
- 前記濾過助剤が、10:1の前記沈殿したmRNAとの質量比にある、請求項78に記載の方法。
- 前記濾過助剤が、セルロース系である、請求項78または79に記載の方法。
- 前記両親媒性ポリマーが、MTEGを含む、請求項9に記載の方法。
- MTEGが、前記洗浄溶液中に、約75%、約80%、約85%、約90%、または約95重量/体積%の濃度で存在する、請求項81に記載の方法。
- 前記MTEGが、前記洗浄溶液中に約90重量/体積%~100重量/体積%の濃度で存在する、請求項82に記載の方法。
- 前記MTEGが、約95重量/体積%の濃度で前記洗浄溶液中に存在する、請求項83に記載の方法。
- 前記GSCNが、約2~4Mの最終濃度であり、PEGが、約5重量/体積%~約20重量/体積%の最終濃度である、請求項63の工程a)に記載の方法。
- 前記GSCNが、約2.7Mの最終濃度であり、前記PEGが、約12重量/体積%の最終濃度である、請求項85に記載の方法。
- 前記PEGが、約6000g/mol(例えば、PEG-6000)の分子量を有する、請求項85または86に記載の方法。
- 前記溶液が、2:1、5:1、10:1、または15:1の前記沈殿したmRNAとの質量比で濾過助剤をさらに含む、請求項85~87のいずれか一項に記載の方法。
- 前記濾過助剤が、10:1の前記沈殿mRNAとの質量比である、請求項88に記載の方法。
- 前記濾過助剤が、セルロース系である、請求項88または89に記載の方法。
- 前記PEG溶液中の前記PEGが、約50~約95重量/体積%の濃度である、請求項63の工程e)に記載の方法。
- 前記PEG溶液中の前記PEGが、約90~約100重量/体積%の濃度である、請求項63の工程e)に記載の方法。
- 前記PEG溶液中の前記PEGが、約90重量/体積%の濃度である、請求項90に記載の方法。
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