JP2022529280A - 抗癌活性が増大されたナチュラルキラー細胞、及びその免疫治療用途 - Google Patents
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Abstract
抗癌活性が増大されたナチュラルキラー細胞、及びその免疫治療用途に係り、一様態によるナチュラルキラー細胞によれば、膠芽腫を含む癌に対し、有意の特定受容体の相対的ＭＦＩが増大されており、効果的な抗癌免疫治療が可能であるという効果がある。【選択図】図９
Description
本発明は、抗癌活性が増大されたナチュラルキラー細胞、及びその免疫治療用途に関する。
免疫細胞治療法に利用されているナチュラルキラー細胞（natural killer cell；ＮＫ細胞とも称する）は、形態学的に、細胞質に大きい顆粒を有する細胞であり、血液内リンパ球の約５～１５％を占める。これまで明らかにされたナチュラルキラー細胞の主要機能としては、腫瘍細胞を殺害することができる能力、ウイルス感染細胞に対する細胞毒性、及び細菌と真菌とを殺害する能力などがある。従って、ナチュラルキラー細胞は、抗腫瘍、免疫、及び微生物に対する保護免疫において、重要な役割を行うと期待される。
ナチュラルキラー細胞は、免疫受容体（immune receptor）として、表面受容体を有している。ナチュラルキラー細胞には、Ｂ細胞のＢＣＲ、Ｔ細胞のＴＣＲ（Ｔ cell receptor）のような優性（dominant）受容体が存在しないために、他の免疫細胞と区別される活性化メカニズムが存在すると予測される。また、ナチュラルキラー細胞は、非特異的に癌を殺傷することができる能力がある細胞と知られている。そのようなナチュラルキラー細胞の殺害能は、リンフォカイン活性殺生細胞（ＬＡＫ：lymphokine activated killer cell）及び腫瘍浸潤リンパ球（ＴＩＬ：tumor infiltration lymphocytes）と共に、固形癌治療に活用されたり、または供与者リンパ球注入（donor lymphocyte infusion）を介する免疫治療法（Tilden. A. B. et al., J. Immunol., 136）を行うことにより、骨髄移植時や臓器移植時に生じる拒絶反応を防止するための新たな細胞治療法に応用されたりもする。
一方、神経膠腫（glioma）は、原発性脳腫瘍（primary brain tumor）の６０％を占める腫瘍であり、現在までも、放射線治療以外には、特別な治療法がない悪性腫瘍である。また、悪性に分類される膠芽腫（glioblastoma）は、他の癌と比較し、放射線及び抗癌剤の治療に対する抵抗性が非常に高く、一応診断されれば、期待生存期間が１年に過ぎない。悪性膠芽腫は、全体脳腫瘍の１２～１５％を占め、脳に生じる単一腫瘍のうち、最も多く生じる腫瘍である。
膠芽腫を含む癌患者のための既存治療オプションにもかかわらず、効能が増進され、自己寛容を克服することができる治療法が研究されており、そのために、特定免疫受容体の活性を増大させたナチュラルキラー細胞の開発が必要となっている。
一様態は、特定範囲の相対的ＭＦＩ（mean fluorescence intensity）値の受容体発現特性を有する抗癌活性が増大されたナチュラルキラー細胞を提供するものである。
他の様態は、前記ナチュラルキラー細胞またはその集団を、有効成分として含む細胞治療剤または薬学的組成物を提供するものである。
さらに他の様態は、前記ナチュラルキラー細胞またはその集団の有効量を、それを必要とする個体に投与する段階を含む癌を治療する方法を提供するものである。
一様態は、特定範囲の相対的ＭＦＩ（mean fluorescence intensity）値の受容体発現特性を有する抗癌活性が増大されたナチュラルキラー細胞を提供する。
本明細書において、用語「ナチュラルキラー細胞（natural killer cells）」または「ＮＫ細胞」は、先天性免疫系の主要成分を構成する細胞毒性リンパ球であり、大型顆粒リンパ球（ＬＧＬ：large granular lymphocyte）と定義され、リンパ系前駆細胞（ＣＬＰ：common lymphoid progenitor、ＣＬＰ）生成のＢリンパ球及びＴリンパ球から分化された第３の細胞を構成する。前記「ナチュラルキラー細胞」または前記「ＮＫ細胞」は、任意の組織供給源（source）に由来するさらなる変形がないナチュラルキラー細胞を含み、成熟したナチュラルキラー細胞だけではなく、ナチュラルキラー前駆細胞を含んでもよい。前記ナチュラルキラー細胞は、インターフェロンまたは大食細胞由来サトカインに対する反応で活性化され、ナチュラルキラー細胞は、「活性化受容体」及び「抑制性受容体」と標識される、細胞の細胞毒性活性を制御する２種類型の表面受容体を含む。ナチュラルキラー細胞は、任意の供給源、例えば、胎盤組織、胎盤貫流液、臍帯血、胎盤血、末梢血、脾臓、肝臓などからの造血細胞、例えば、造血幹細胞または造血前駆細胞、胎盤由来または臍帯由来の幹細胞、誘導万能幹細胞、またはそこから分化された細胞からも生成される。
前記ナチュラルキラー細胞は、例えば、末梢血液単核細胞に由来するものでもある。用語「末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ：peripheral blood mononuclear cells）」は、哺乳動物、望ましくは、ヒト末梢血液から分離された単核の細胞であり、主に、Ｂ細胞、Ｔ細胞、ナチュラルキラー細胞のような免疫細胞；及び好塩基球（basophil）、好酸球（eosinophil）、好中球（neutrophil）のような顆粒球などを含む。前記末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ）は、生体から採取した末梢血液から、通常の製造方法によって準備することができる。望ましくは、前記ＰＢＭＣは、フィコール（Ficoll）を利用した比重遠心分離法を利用し、末梢血液から分離することができる。
また、血液から白血球を分離する白血球除去療法（leukapheresis）の産物から、赤血球を除去する方法でナチュラルキラー細胞を得ることができる。
一具体例において、本明細書のナチュラルキラー細胞は、下記（ａ）ないし下記（ｅ）のうちから選択される１以上の特性を有するものでもある：
（ａ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＮＫＧ２Ｄの相対的ＭＦＩ値が、１．２倍ないし１２倍、２倍ないし１２倍、４倍ないし１２倍、２倍ないし１０倍、２倍ないし８倍、４倍ないし８倍、３倍ないし６倍、または３．５倍ないし４．５倍増加したこと；
（ｂ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＮＫｐ３０の相対的ＭＦＩ値が、１．５倍ないし１５倍、１．５倍ないし１２倍、２倍ないし１２倍、４倍ないし１０倍、２倍ないし１０倍、４倍ないし８倍、３倍ないし６倍、または４倍ないし６倍増加したこと；
（ｃ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目に、ＮＫｐ４４の相対的ＭＦＩ値が、１２倍ないし２２倍、１２倍ないし２０倍、１４倍ないし２２倍、１６倍ないし２２倍、１６倍ないし２０倍、１２倍ないし１８倍、１４倍ないし１８倍、または１６倍ないし１８倍増加したこと；
（ｄ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＩＴＧＡ１の相対的ＭＦＩ値が、１．８倍ないし２５倍、２倍ないし２５倍、４倍ないし２２倍、４倍ないし１８倍、６倍ないし１６倍、６倍ないし１０倍、または６倍ないし８．５倍増加したこと；及び
（ｅ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＩＴＧＡ２の相対的ＭＦＩ値が、１．４倍ないし６倍、１．８倍ないし６倍、１．８倍ないし５倍、２倍ないし５．５倍、２倍ないし５倍、２倍ないし４倍、または２．５倍ないし３．５倍増加したものである。
（ａ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＮＫＧ２Ｄの相対的ＭＦＩ値が、１．２倍ないし１２倍、２倍ないし１２倍、４倍ないし１２倍、２倍ないし１０倍、２倍ないし８倍、４倍ないし８倍、３倍ないし６倍、または３．５倍ないし４．５倍増加したこと；
（ｂ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＮＫｐ３０の相対的ＭＦＩ値が、１．５倍ないし１５倍、１．５倍ないし１２倍、２倍ないし１２倍、４倍ないし１０倍、２倍ないし１０倍、４倍ないし８倍、３倍ないし６倍、または４倍ないし６倍増加したこと；
（ｃ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目に、ＮＫｐ４４の相対的ＭＦＩ値が、１２倍ないし２２倍、１２倍ないし２０倍、１４倍ないし２２倍、１６倍ないし２２倍、１６倍ないし２０倍、１２倍ないし１８倍、１４倍ないし１８倍、または１６倍ないし１８倍増加したこと；
（ｄ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＩＴＧＡ１の相対的ＭＦＩ値が、１．８倍ないし２５倍、２倍ないし２５倍、４倍ないし２２倍、４倍ないし１８倍、６倍ないし１６倍、６倍ないし１０倍、または６倍ないし８．５倍増加したこと；及び
（ｅ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＩＴＧＡ２の相対的ＭＦＩ値が、１．４倍ないし６倍、１．８倍ないし６倍、１．８倍ないし５倍、２倍ないし５．５倍、２倍ないし５倍、２倍ないし４倍、または２．５倍ないし３．５倍増加したものである。
前記相対的ＭＦＩ値は、ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目の相対的ＭＦＩ値でもある。
本明細書において、用語相対的ＭＦＩは、アイソタイプ対比の陽性細胞の発現強度値を意味し、下記数式１によって定義される。
該相対的ＭＦＩは、アイソタイプ対比の陽性細胞の発現比率を測定する発現比率とは区分された概念であり、同じ％の発現比率を有しても、ＭＦＩ値により、各受容体機能の強度は異なり、相対的ＭＦＩ値が高くあってこそ、実在的な機能が増大されたとも理解される。
本明細書は、ＰＢＭＣからのナチュラルキラー細胞培養時、新規物質、例えば、ＰＤＧＦ－ＡＡ、ＰＤＧＦ－ＢＢ、ＰＤＧＦ－ＣＣ、ＰＤＧＦ－ＤＤまたはＰＤＧＦ－ＡＢに処理された新規したナチュラルキラー細胞を提供する。前記新規のナチュラルキラー細胞は、公知の他のナチュラルキラー細胞とは、製造方法が異なり、抗癌活性、及びナチュラルキラー細胞の活性化に係わる因子であるＮＫＧ２Ｄ、ＮＫｐ３０、ＮＫｐ４４、ＩＴＧＡ１及びＩＴＧＡ２の相対的ＭＦＩ値が、ＰＢＭＣ培養前対比で、少なくは１．２倍から、多くは３０倍まで増大された細胞である。
他の具体例において、本明細書のナチュラルキラー細胞は、８ないし１４０、１０ないし１４０、８ないし４０、１５ないし３０、８０ないし１４０、１００ないし１４０、または１１０ないし１３０のＭＦＩ値のＣＤ１６；２０ないし１６０、３０ないし１６０、３０ないし１５０、２０ないし６０、２５ないし５０、１２０ないし１６０、または１３５ないし１５０のＭＦＩ値のＬＦＡ－１；２ないし３０、５ないし３０、５ないし２５、６ないし１５、１２ないし３０、または１４ないし２５のＭＦＩ値のＮＫＧ２Ｄ；２ないし２５、５ないし２５、５ないし２０、２ないし１４、７ないし２０、または１０ないし１８のＭＦＩ値のＮＫｐ３０；１０ないし４０、１２ないし３０、１２ないし２５、１４ないし２２、１２ないし１８、または１８ないし２２のＭＦＩ値のＮＫｐ４４；２ないし３０、４ないし２５、４ないし２２、２ないし１６、４ないし１２、１０ないし２５、または１４ないし２５のＭＦＩ値のＩＴＧＡ１；１ないし１０、１．５ないし１０、２ないし１０、１．６ないし４、２ないし８、４ないし８、または４ないし６のＭＦＩ値のＩＴＧＡ２；２０ないし１８０のＭＦＩ値のＣＤ２；０．１ないし１．５のＭＦＩ値のＣＤ２７；１ないし１０のＭＦＩ値のＣＤ６９；２ないし１２のＭＦＩ値のＣＤ２２６；２ないし８のＭＦＩ値のＮＫｐ４６；０．１ないし４のＭＦＩ値のＣＤ１６０；０．１ないし４のＭＦＩ値のＫＩＲ２ＤＬ１；０．１ないし５のＭＦＩ値のＫＲ２ＤＬ３；０．１ないし４のＭＦＩ値のＫＩＲ３ＤＬ１；０．４ないし１６のＭＦＩ値のＮＫＧ２Ａ；０．２ないし１２のＭＦＩ値のＣＤ１６１；０．３ないし３のＭＦＩ値のＣＣＲ３；０．５ないし４のＭＦＩ値のＣＣＲ５；０．８ないし６のＭＦＩ値のＣＣＲ６；０．４ないし５のＭＦＩ値のＣＸＣＲ３；０．４ないし５のＭＦＩ値のＣＸＣＲ１；０．１ないし３のＭＦＩ値のＣＸＣＲ２；及び１ないし１６のＭＦＩ値のＩＴＧＢ７のうちから選択される１以上の特性をさらに有するものでもある。
他の具体例において、ナチュラルキラー細胞は、下記（ｆ）の特性をさらに有するものでもある；
（ｆ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目に、ＫＩＲ２ＤＳ４遺伝子の発現量が、少なくとも１０倍以上、詳細には、１０倍ないし６０倍、１０倍ないし５０倍、２０倍ないし４０倍、２０倍ないし４５倍、または２５倍ないし４０倍である。
（ｆ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目に、ＫＩＲ２ＤＳ４遺伝子の発現量が、少なくとも１０倍以上、詳細には、１０倍ないし６０倍、１０倍ないし５０倍、２０倍ないし４０倍、２０倍ないし４５倍、または２５倍ないし４０倍である。
他の具体例において、ナチュラルキラー細胞は、下記（ｇ）または下記（ｈ）の特性をさらに有するものでもある；
（ｇ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目に、ＣＤ１６の相対的ＭＦＩ値が、０．０２倍ないし０．８５倍、０．０４倍ないし０．８倍、０．０８倍ないし０．８倍、０．１倍ないし０．６倍、０．１倍ないし０．４倍、または０．１２倍ないし０．３倍低減したこと；または
（ｈ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目に、ＬＦＡ－１の相対的ＭＦＩ値が、０．０８倍ないし０．８倍、０．１倍ないし０．８倍、０．１倍ないし０．７倍、０．１倍ないし０．６倍、０．２倍ないし０．６倍、０．４倍ないし０．６倍、または０．２倍ないし０．５倍低減したものである。
（ｇ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目に、ＣＤ１６の相対的ＭＦＩ値が、０．０２倍ないし０．８５倍、０．０４倍ないし０．８倍、０．０８倍ないし０．８倍、０．１倍ないし０．６倍、０．１倍ないし０．４倍、または０．１２倍ないし０．３倍低減したこと；または
（ｈ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目に、ＬＦＡ－１の相対的ＭＦＩ値が、０．０８倍ないし０．８倍、０．１倍ないし０．８倍、０．１倍ないし０．７倍、０．１倍ないし０．６倍、０．２倍ないし０．６倍、０．４倍ないし０．６倍、または０．２倍ないし０．５倍低減したものである。
他の具体例において、前記ナチュラルキラー細胞は、ＮＫＧ２Ｄ、ＮＫｐ３０、ＮＫｐ４４、ＣＤ１６、ＬＦＡ－１、ＩＴＧＡ１、ＩＴＧＡ２、ＫＩＲ２ＤＳ１、ＫＩＲ２ＤＳ２、ＫＩＲ２ＤＳ３、ＫＩＲＤＳ４、ＣＸＣＲ１、ＣＸＣＲ２、ＣＸＣＲ３、ＣＣＲ３、ＣＣＲ５、ＣＣＲ６、ＰＳＡ－ＮＣＡＭ、ネスチン（nestin）、チロシンヒドロキシラーゼ（tyrosine hydroxylase）、ＣＤ１４７、ＣＤ１２７、ＣＤ１５、ＣＤ３１、ＣＤ１４６、ＣＤ４９ｃ、ＣＤ１０７ａ、ＮＫＧ２Ａ、ＣＤ４５、ＣＤ１４０ａ及びＣＤ１１ｂのうちから選択されたいずれか１つの受容体を発現するものでもある。
ナチュラルキラー細胞の活性化受容体は、主に、標的細胞が異常な状態にあるとき、時発現が増大する配位子を認識し、細胞毒性作用を起こして標的細胞を除去する。
ＰＳＡ－ＮＣＡＭは、神経細胞の分化能マーカーであり、胚芽発達において、神経系におけるニューロンの発達シナプス形成に係わる表示因子でもあるし、チロシンヒドロシキラーゼは、神経伝達物質ホルモン合成に必要な酵素でもあり、ＣＤ１４７は、胚芽の脳発達に係わる因子であり、脳内皮において、インテグリン媒介付着（integrin-mediated adhesion）機能を有するものでもある。Ｓ１００Ｂは、血管脳障壁透過性を向上させるものでもある。前記ＣＤ１５は、走化性（chemotaxis）、食作用（phagocytosis）及び／または抗菌力（bactericidal activity）に係わる機能を行うものでもあり、ＣＤ３１は、ＣＤ３８と結合し、傷を治療したり、血管新生及び細胞移動に関与したりするものでもある。また、ＣＤ１４６は、活性Ｔ細胞、間葉系幹細胞などで発現する細胞表面マーカーであり、白血球の血管外流出（extravasation）に関与するものでもあり、ＣＤ４９ｃは、神経移動に関与したり、細胞・細胞間、細胞・基質間の付着役割を行うものでもある。
ＮＫＧ２Ｄは、ＤＮＡ損傷時、発癌時、ウイルス感染時に発現が増大される細胞内分子であるＵＬ１６結合蛋白質（ＵＬＢＰｓ）とＭＩＣ Ａ／Ｂ、ＲＡＥ１、Ｈ６０、ＭＵＬＴ１とを感知して細胞毒性活性を提供する。
ＮＫｐ３０は、ＢＡＧ６及びＮＣＲ３ＬＧ１、Ｂ７－Ｈ６を含む細胞外配位子の結合によって活性化される受容体であり、それら配位子と結合して細胞毒性を刺激する。
ＮＫｐ４４は、細胞表面の糖蛋白質及びプロテオグリカン、細胞外部に露出されうる核蛋白質（nuclear proteins）、細胞外空間に放出されたり、細胞外小胞（vesicle）に移動したりする分子を配位子と認識する。最近では、ＮＫｐ４４は、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）由来糖蛋白質、または成長因子（growth factors）のような可溶性血漿蛋白質（例えば、ＰＤＧＦ－ＤＤ）を認識すると報告されている（Cell. 2018 January 25; 172(3): 534-548. e19., Front Immunol. 2019; 10: 719）。
ＫＩＲ２ＤＳ４は、癌、妊娠障害及びＨＩＶに対する耐性を含む多数の疾病に係わっており、正確な配位子は、定義されていないが、ＨＬＡ－Ｃ＊０５：０１によって提示されたペプチド（例えば、組み換えペプチド：ＨＬＡ－Ｃコンプレックス）を認知し、ＮＫ細胞を活性化させ、活性化されたＮＫ細胞は、ＴＮＦ－アルファとＩＦＮ－ガンマとを生成し、脱顆粒させる。従って、ＫＩＲ２ＤＳ４は、高いペプチド特異的活性化受容体でもあり、免疫防御に十分な役割を遂行する（J Immunol May 1, 2019, 202 (1 Supplement) 177.24）。
ＩＴＧＡ１は、ラミニン及びコラーゲンに対する受容体であり、細胞・細胞接着に関与する。コラーゲンの一部配列を認識し、ＥＧＦ刺激された細胞成長の陰性調節に関与する。
ＩＴＧＡ２は、ラミニン、コラーゲン、コラーゲンＣ－プロペプチド、フィブロネクチン、Ｅ－カドヘリンに対する受容体であり、血小板、及び他の細胞との接着、コラーゲン調節、合成された細胞外基質の構成を担当する。
前記ナチュラルキラー細胞は、細胞集団の少なくとも５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９８％または約９９％、あるいは５０％ないし１００％、５０％ないし９０％、６０％ないし９０％、６０％ないし８０％、または６０％ないし７０％が、ＮＫＧ２Ｄ、ＮＫｐ３０、ＮＫｐ４４、ＣＤ１６、ＬＦＡ－１、ＩＴＧＡ１、ＩＴＧＡ２、ＫＩＲ２ＤＳ１、ＫＩＲ２ＤＳ２、ＫＩＲ２ＤＳ３、ＫＩＲＤＳ４、ＣＸＣＲ１、ＣＸＣＲ２、ＣＸＣＲ３、ＣＣＲ３、ＣＣＲ５、ＣＣＲ６、ＰＳＡ－ＮＣＡＭ、ネスチン、チロシンヒドロキシラーゼ、ＣＤ１４７、ＣＤ１２７、ＣＤ１５、ＣＤ３１、ＣＤ１４６、ＣＤ４９ｃ、ＣＤ１０７ａ、ＮＫＧ２Ａ、ＣＤ４５、ＣＤ１４０ａまたはＣＤ１１ｂを発現するものでもある。
また、該ナチュラルキラー細胞は、細胞集団の少なくとも５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９８％または約９９％、あるいは５０％ないし１００％、５０％ないし９０％、６０％ないし９０％、６０％ないし８０％、または６０％ないし７０％がＫＩＲ２ＤＳ１＋、ＫＩＲ２ＤＳ２＋、ＫＩＲ２ＤＳ３＋、ＫＩＲ２ＤＳ４＋、ＣＸＣＲ１＋、ＣＸＣＲ２＋、ＣＸＣＲ３＋、ＣＣＲ３＋、ＣＣＲ５＋、ＣＣＲ６＋、ＰＳＡ－ＮＣＡＭ＋、ネスチン＋、ＣＤ１２７＋、ＣＤ１５＋、ＣＤ３１＋、ＣＤ１４６＋、ＣＤ４９ｃ＋、ＣＤ１０７ａ＋、ＮＫＧ２Ａ＋、ＣＤ４５＋、ＣＤ１４０ａ＋及びＣＤ１１ｂ＋のうちから選択されたいずれか１つの特性を示すものでもある。
また、ナチュラルキラー細胞は、細胞集団の少なくとも４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９８％または約９９％、あるいは５０％ないし１００％、５０％ないし９０％、６０％ないし９０％、または６０％ないし８０％が、ＣＤ８７－、ＣＤ１０－及びＣＤ８０－からなる群のうちから選択されたいずれか１つの特性を示すものでもある。
本発明において、用語「陽性または＋」は、細胞標識に係わり、その標識が基準になる他の細胞と比べたとき、さらに多くの量、またはさらに高い濃度で存在することを意味しうる。すなわち、細胞は、ある標識が、細胞の内部または表面に存在するために、その標識を利用し、その細胞を１以上の他の細胞類型と区別することができれば、その標識について陽性になる。また、細胞が背景値よりさらに大きい値でもって、信号、例えば、細胞測定装置の信号を出すことができるほどの量でその標識を有しているということを意味しうる。例えば、細胞を、ＮＫｐ４４特異的な抗体で検出可能に標識することができ、その抗体からの信号が、対照群（例えば、背景値）より、検出可能にさらに大きければ、その細胞は、「ＮＫｐ４４＋」である。本明細書において、用語「陰性または－」は、特定細胞表面標識に特異的な抗体を使用しても、背景値に比較し、その標識を検出することができないことを意味する。例えば、ＣＤ８７－に特異的な抗体で、細胞を検出可能に標識することができなければ、その細胞は、「ＣＤ８７－」である。
一具体例において、前記ナチュラルキラー細胞は、母細胞、例えば、造血細胞またはナチュラルキラー前駆細胞に比べ、細胞毒性、またはナチュラルキラー細胞の本然の免疫調節量が活性化されたり、前述のような免疫受容体の発現が増大されたりする細胞を意味しうる。具体的実施様態において、ナチュラルキラー細胞は、ＣＤ３－ＣＤ５６＋である。具体的実施様態において、活性化されたナチュラルキラー細胞は、ＣＤ３－ＣＤ５６＋ＣＤ１６＋である。他の具体的実施様態において、活性化されたナチュラルキラー細胞は、さらにＣＤ９４＋ＣＤ１１７＋である。他の具体的実施様態において、活性化されたナチュラルキラー細胞は、さらにＣＤ１６１－である。他の具体的実施様態において、活性化されたナチュラルキラー細胞は、さらにＮＫＧ２Ｄ＋である。他の具体的実施様態において、活性化されたナチュラルキラー細胞は、さらにＮＫｐ４６＋である。他の具体的実施様態において、活性化されたナチュラルキラー細胞は、さらにＣＤ２２６＋である。特定実施様態において、前記活性化されたナチュラルキラー細胞の５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９２％、９４％、９６％、９８％の超過は、ＣＤ５６＋及びＣＤ１６－である。他の実施様態において、前記活性化されたナチュラルキラー細胞の少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、８２％、８４％、８６％、８８％または９０％は、ＣＤ３－及びＣＤ５６＋である。他の実施様態において、前記活性化されたナチュラルキラー細胞の少なくとも５０％、５２％、５４％、５６％、５８％または６０％は、ＮＫＧ２Ｄ＋である。他の実施様態において、前記細胞の３０％、２０％、１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％または３％は、ＮＫＢ１＋である。特定他の実施様態において、前記活性化されたナチュラルキラー細胞の３０％、２０％、１０％、８％、６％、４％または２％未満は、ＮＫＡＴ２＋である。さらに具体的な実施様態において、前述のＣＤ３－，ＣＤ５６＋活性化されたナチュラルキラー細胞の少なくとも１０％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％または８５％は、ＮＫｐ４６＋である。他のさらに具体的な実施様態において、前述のＣＤ３－，ＣＤ５６＋活性化されたナチュラルキラー細胞の少なくとも１０％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％または８５％は、ＣＤ１１７＋である。他のさらに具体的な実施様態において、前述のＣＤ３－，ＣＤ５６＋活性化されたナチュラルキラー細胞の少なくとも１０％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、４５％または５０％は、ＣＤ９４＋である。他のさらに具体的な実施様態において、ＣＤ３－，ＣＤ５６＋活性化されたナチュラルキラー細胞の少なくとも１０％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、４５％または５０％は、ＣＤ１６１－である。他のさらに具体的な実施様態において、前述のＣＤ３－，ＣＤ５６＋活性化されたナチュラルキラー細胞の少なくとも１０％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％または９５％は、ＣＤ２２６＋である。他のさらに具体的な実施様態において、前述のＣＤ３－，ＣＤ５６＋活性化されたナチュラルキラー細胞の少なくとも２０％、２５％、３０％、３５％または４０％は、ＣＤ７＋である。さらに具体的な実施様態において、前述のＣＤ３－，ＣＤ５６＋活性化されたナチュラルキラー細胞の少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％または６０％は、ＣＤ５＋である。
一具体例において、活性化されたナチュラルキラー細胞、または活性化されたナチュラルキラー細胞が豊富な（enriched）集団は、１種以上の機能的に関連したマーカー、例えば、ＣＤ９４、ＣＤ１６１、ＤＮＡＭ－１、２Ｂ４、ＮＫｐ４６、ＫＩＲ、及び活性化受容体のＮＫＧ２ファミリー（例えば、ＮＫＧ２Ｄ）を検出することによっても評価される。
一具体例において、活性化されたナチュラルキラー細胞は、前述の造血細胞からも生成される。特定実施様態において、活性化されたナチュラルキラー細胞は、増殖された造血細胞、例えば、造血幹細胞及び／または造血前駆細胞からも得られる。具体的実施様態において、該造血細胞は、栄養細胞の使用なしに、第１培地で持続的に増殖されて分化される。その後、細胞は、栄養細胞の存在下で、第２培地で培養される。そのような分離（単離）、増殖及び分化は、中央施設で行われ、それは、使用地点、例えば、病院などにおける増殖及び分化のための増殖された造血細胞を提供する。
一具体例において、活性化されたナチュラルキラー細胞の生成は、造血細胞の集団を増殖させる段階を含む。細胞増殖の間、造血細胞集団内の複数個の造血細胞は、ナチュラルキラー細胞に分化する。
本明細書において、用語「ナチュラルキラー前駆細胞」または「ＮＫ前駆細胞」、あるいはその細胞集団は、例えば、１種以上の表現型マーカー、例えば、ＣＤ５６、ＣＤ１６、及びＫＩＲの発現レベルで示したような、まだ成熟したナチュラルキラー細胞に発展していないナチュラルキラー細胞系の細胞を含む細胞またはその集団を意味しうる。一実施様態において、ナチュラルキラー前駆細胞集団は、低いＣＤ１６及び高いＣＤ５６を有する細胞を含む。例えば、該ナチュラルキラー前駆細胞集団は、約５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、４５％または５０％のＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞を含む。他の具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団は、５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、４５％または５０％以下のＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞を含む。他の具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団は、０％ないし５％、５％ないし１０％、１０％ないし１５％、１５％ないし２０％、２０％ないし２５％、２５％ないし３０％、３０％ないし３５％、３５％ないし４０％、４０％ないし４５％、または４５％ないし５０％のＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞を含む。
一具体例において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞は、さらにＣＤ１１７＋である。具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の約６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９８％または９９％がＣＤ１１７＋である。他の具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９８％または９９％以上がＣＤ１１７＋である。他の具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の６５％ないし７０％、７０％ないし７５％、７５％ないし８０％、８０％ないし８５％、８５％ないし９０％、９０％ないし９５％、または９５％ないし９９％がＣＤ１１７＋である。
他の具体例において、ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞は、さらにＣＤ１６１＋である。具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の約４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％または７５％がＣＤ１６１＋である。他の具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％または７５％以上がＣＤ１６１＋である。他の具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の４０％ないし４５％、４５％ないし５０％、５０％ないし５５％、５５％ないし６０％、６０％ないし６５％、６５％ないし７０％、または７０％ないし７５％がＣＤ１６１＋である。
さらに他の具体例において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞は、さらにＮＫｐ４６＋である。具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の約２５％、３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、またはそれ以上がＮＫｐ４６＋である。他の具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の約２５％、３０％、３５％、４０％、４５％、５０％または５５％がＮＫｐ４６＋である。他の具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の２５％、３０％、３５％、４０％、４５％、５０％または５５％以下がＮＫｐ４６＋である。他の具体的実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の２５％ないし３０％、３０％ないし３５％、３５％ないし４０％、４０％ないし４５％、４５％ないし５０％、５０％ないし５５％、５５％ないし６０％、６０％ないし６５％、６５％ないし７０％、７０％ないし７５％、７５％ないし８０％、８０％ないし８５％、８５％ないし９０％、またはそれ以上がＮＫｐ４６＋である。さらに具体的な実施様態において、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団において、前記ＣＤ３－ＣＤ５６＋細胞の２５％ないし３０％、３０％ないし３５％、３５％ないし４０％、４０％ないし４５％、４５％ないし５０％、または５０％ないし５５％がＮＫｐ４６＋である。
また、例えば、前記ナチュラルキラー前駆細胞集団は、ＣＤ５２＋、ＣＤ１６＋、ＣＤ２４４＋ＣＤ９４＋またはＣＤ９４＋についても、前述の通りである。
本明細書において、前記ナチュラルキラー細胞は、前述の受容体を発現すたり、それらの発現または活性が増大されたりするように培養されるか、あるいは遺伝的に操作されたものでもある。
本明細書において、前記培養は、任意の供給源、例えば、胎盤組織、胎盤貫流液、臍帯血、胎盤血、末梢血、脾臓、肝臓などからの造血細胞、例えば、造血幹細胞または造血前駆細胞から、前述のような受容体の発現または活性が増大されるように培養されたものを意味しうる。
本明細書において、「遺伝的操作（genetic engineering）」、または「遺伝的に操作された（genetically engineered）」は、細胞につき、１以上の遺伝的変形（genetic modification）を導入する行為、またはそれによって作られた細胞を意味する。
本明細書において使用された用語「活性増大（increase in activity）」、または「増大された活性（increased activity）」は、蛋白質または酵素の活性検出可能な増大を示すことができる。「活性増大」、または「増大された活性」は、与えられた母細胞、野生型細胞または培養前細胞（例えば、ＰＢＭＣ）に比べ、さらに高レベルの蛋白質または酵素の活性を意味する。
他の具体例において、前記ナチュラルキラー細胞は、遺伝的に変形または操作されたものでもある。前記ナチュラルキラー細胞は、遺伝的に変形され、標的特異性及び／またはホーミング特異性が向上したものでもある。
他の具体例において、前記ナチュラルキラー細胞は、パーフォリン、グランザイム（granzyme）またはインターフェロンを分泌するものでもある。
前記グランザイムは、グランザイムＡ、グランザイムＢ、グランザイムＨ、グランザイムＫ及びグランザイムＭからなる群のうちから選択された１以上のものでもある。
前記インターフェロンは、１型インターフェロン（例えば、インターフェロンα、インターフェロンβ、インターフェロンκ、インターフェロンω）、２型インターフェロン（例えば、インターフェロンγ）または３型インターフェロンでもある。
他の様態は、前記免疫細胞またはその細胞集団を、有効成分として含む細胞治療剤または薬学的組成物を提供する。
前記細胞治療剤または前記薬学的組成物は、癌または感染性疾患の予防用または治療用でもある。
さらに他の様態は、前記ナチュラルキラー細胞またはその細胞集団を医薬製造に使用するための用途を提供する。
さらに他の様態は、前記ナチュラルキラー細胞またはその細胞集団を個体に投与する段階を含む疾患を治療する方法を提供する。
本明細書において、用語「疾患」は、１つの病理的状態、特に、癌、感染性疾患、炎症性疾患、代謝性疾患、自家免疫性障害、退行性疾患、細胞死滅関連疾患及び移植片拒否を意味しうる。
本明細書において、用語「治療」は、疾患、障害または病態、またはその１以上の症状の軽減、進行抑制または予防を指すか、あるいはそれを含み、「有効成分」または「薬剤学的有効量」は、疾患、障害または病態、またはその１以上の症状の軽減、進行抑制または予防に十分な、本願で提供される発明を実施する過程で利用される組成物の任意量を意味しうる。
本明細書において、用語「投与する」、「導入する」及び「移植する」は、相互交換的に使用され、一具体例による組成物の所望する部位への少なくとも部分的局所化をもたらす方法または経路による個体内への、一具体例による組成物の配置を意味しうる。一具体例による組成物の細胞または細胞成分の少なくとも一部を、生存する個体内における、所望する位置に伝達する任意の適切な経路によっても投与される。個体投与後、細胞の生存期間は、短ければ、数時間、例えば、２４時間ないし数日、あるいは、長ければ、数年でもある。
前記投与は、さらなる抗癌剤と併用投与されるものでもある。さらなる抗癌剤の例示は、アルキル化剤（alkylating agent）、アンチメタボライト、紡錘体阻害剤、植物アルカロイド、細胞障害性／抗腫瘍抗生物質、トポイソメラーゼ阻害薬、抗体、光増減剤及びキナーゼ阻害薬が含まれうる。前記抗癌剤の例示は、ターゲッティング療法、と従来の化学療法とに使用される化合物を含んでもよい。また、前記抗体の例示は、アレムツズマブ、アポリズマブ、アセリズマブ、アトリズマブ、バピネウズマブ、ベバシズマブ、ビバツズマブメルタンシン、カンツズマブメルタンシン、セデリズマブ、セルトリズマブペゴル、シドプシツズマブ、シドツズマブ、ダクリズマブ、エクリズマブ、エファリズマブ、エプラツズマブ、エクリズマブ、フェルビズマブ、フォントリズマブ、ゲムツズマブオゾガマイシン、イノツズマブオゾガマイシン、イピリムマブ、ラベツズマブ、リンツズマブ、マツズマブ、メポリズマブ、モタビズマブ、モトビズマブ、ナタリズマブ、ニモツズマブ、ノロビズマブ、ヌマビズマブ、オクレリズマブ、オマリズマブ、パリビズマブ、パスコリズマブ、ペクフシツズマブ、ペクツズマブ、ペルツズマブ、ペクセリズマブ、ラリビズマブ、ラニビズマブ、レスリビズマブ、レスリズマブ、レシビズマブ、ロベリズマブ、ルプリズマブ、シブロツズマブ、シプリズマブ、ソンツズマブ、タカツズマブテトラキセタン、タドシズマブ、タリズマブ、テフィバズマブ、トシリズマブ、トラリズマブ、トラスツズマブ、ツコツズマブセルモロイキン、ツクシツズマブ、ウマビズマブ、ウルトキサズマブ及びビシリズマブが含まれてもよい。
本明細書において、用語「分離された細胞」、例えば、「分離されたナチュラルキラー細胞」は、細胞が起源する組織、例えば、末梢血から実質的に分離された細胞を意味する。
本発明の組成物は、新生物に由来した腫瘍または癌を治療または予防するために使用されうる。該新生物は、悪性または陽性でもあり、癌は、原発性または転移性でもあり、新生物または癌は、初期または末期でもある。治癒されうる新生物または癌の非制限的例には、肺癌、喉頭癌、胃癌、大腸癌、直腸癌、肝臓癌、胆嚢癌、膵臓癌、乳癌、卵巣癌、子宮癌、子宮頸部癌、前立腺癌、腎臓癌、皮膚癌、骨癌、筋肉癌、脂肪癌、纎維細胞癌、血液癌、白血病、リンパ腫、多発性骨髄腫及び神経膠腫からなる群のうちから選択された１種以上を含むものでもある。
また、前記神経膠腫は、星細胞腫（astrocytic tumors）、乏突起膠細胞腫（oligodendroglial tumors）、混合神経膠腫（mixed gliomas）または上衣細胞種（ependymal tumors）でもある。さらに詳細には、前記星細胞腫は、膠芽腫、抗癌剤耐性膠芽腫または再発性膠芽腫でもある。
特定理論に制限されることなしに、膠芽腫から分泌されるＰＤＧＦ－ＤＤ（platelet-derived growth factor－ＤＤ）と、ナチュラルキラー細胞のＮＫｐ４４との相互作用が報告されている。また、特定理論に制限されることなしに、膠芽腫で発現するＭＩＣＡ（ＭＨＣ class I polypeptide-related sequenceＡ）と、ナチュラルキラー細胞のＮＫＧ２Ｄとの相互作用が報告されている。また、特定理論に制限されることなしに、ＫＩＲ２ＤＳ２陽性ナチュラルキラー細胞と、膠芽腫との関連性が報告されている。
従って、一具体例によるナチュラルキラー細胞は、ＭＩＣＡまたはＰＤＦＧ－ＤＤを分泌または発現する癌（例えば、神経膠腫、膠芽腫など）にさらに効果的でもある。
さらに、一具体例によるナチュラルキラー細胞は、自己寛容を抑制することができる。従って、一具体例によるナチュラルキラー細胞は、免疫活性、血管脳障壁透過、細胞移動促進または自己寛容を抑制することができるものでもある。
一具体例の薬学的組成物の投与方法は、特別に制限されるものではないが、目的とする方法により、静脈内、皮下、腹腔内、吸入または局所適用のように、非経口投与であったり経口投与であったりもする。投与量は、患者の体重・年齢・性別・健康状態、食餌、投与時間、投与方法、***率、及び疾患の重症度などにより、その範囲が多様である。１日投与量は、治療を必要とする個体に投与されることによって軽減された疾病状態に対する治療に十分な一様態による治療用物質の量を意味する。治療用物質の効果的な量は、特定化合物、疾病状態及びその深刻度、治療を必要とする個体によって異なり、それは、当業者によって一般的に定められうる。非制限的例として、一様態による組成物の人体に対する投与量は、患者の年齢・体重・性別、投与形態、健康状態及び疾患程度によっても異なる。体重が７０kgである成人患者を基準にするとき、例えば、約１，０００～１０，０００細胞／回、１，０００～１００，０００細胞／回、１，０００～１０００，０００細胞／回、１，０００～１０，０００，０００、１，０００～１００，０００，０００細胞／回、１，０００～１，０００，０００，０００細胞／回、１，０００～１０，０００，０００，０００細胞／回または１，０００～１００，０００，０００，０００細胞／回であり、一定時間間隔で、１日に１回ないし数回に分割投与することもでき、一定時間間隔で何回か投与することができる。
「個体」とは、疾患の治療を必要とする対象を意味し、さらに具体的には、ヒトまたは非ヒトである霊長類、マウス（mouse）、鼠（rat）、犬、猫、馬及び牛のような哺乳類を意味する。
一具体例による薬学的組成物は、薬学的に許容可能な担体及び／または添加物を含んでもよい。例えば、滅菌水、生理食塩水、慣用の緩衝剤（リン酸、クエン酸、それ以外の有機酸など）、安定剤、塩、酸化防止剤（アスコルビン酸など）、界面活性剤、懸濁液剤、等張化剤または保存剤などを含んでもよい。局所投与のために、生体高分子（biopolymer）のような有機物、ヒドロキシアパタイトのような無機物、具体的には、コラーゲンマトリックス、ポリ乳酸重合体またはポリ乳酸共重合体、ポリエチレングリコール重合体またはポリエチレングリコール共重合体、及びその化学的誘導体などと組み合わせるものも含まれてもよい。一具体例による薬学的組成物が、注射に適する剤形に調剤される場合には、免疫細胞、またはその活性を増大させる物質は、薬学的に許容可能な担体中に溶解されているか、あるいは溶解されている溶液状態に凍結されたものでもある。
一具体例による薬学的組成物は、その投与方法や剤形により、必要な場合、懸濁液剤、溶解補助剤、安定化剤、等張化剤、保存剤、吸着防止剤、界面活性化剤、希釈剤、賦形剤、ｐＨ調整剤、無痛化剤、緩衝剤、還元剤、酸化防止剤などを適切に含んでもよい。前述のところに例示されたものを含め、本発明に適する薬学的に許容される担体及び製剤は、文献［Remington's Pharmaceutical Sciences, 19th ed., 1995］に詳細に記載されている。一具体例による薬学的組成物は、当該発明が属する技術分野において当業者であるならば、容易に実施することができる方法により、薬学的に許容される担体及び／または賦形剤を利用して製剤化することにより、単位用量形態に製造されるか、あるいは多用量容器内に内入させても製造される。このとき、該剤形は、油性媒質中または水性媒質中の溶液、懸濁液または乳化液の形態であるか、あるいは粉末、顆粒、錠剤またはカプセル型でもある。
一様態によるナチュラルキラー細胞によれば、膠芽腫を含む癌に対し、有意の特定受容体の相対的ＭＦＩが増大されており、効果的な抗癌免疫治療が可能である効果がある。
以下、本発明について、実施例を介し、さらに詳細に説明する。しかし、それら実施例は、本発明について例示的に説明するためのものであり、本発明の範囲は、それら実施例に限定されるものではない。
実施例．免疫受容体の活性が増大されたナチュラルキラー細胞の製造
膠芽腫に対する有意の免疫受容体を発現するナチュラルキラー細胞を製造するために、次のようにナチュラルキラー細胞を培養した。
膠芽腫に対する有意の免疫受容体を発現するナチュラルキラー細胞を製造するために、次のようにナチュラルキラー細胞を培養した。
１．末梢血液単核細胞の製造
１．１．血液から末梢血液単核細胞（ＰＭＢＣ）及び血漿分離
血液は、正常人の静脈から採血して準備した。このとき、採血容器は、ヘパリンが含まれた採血チューブを使用した。患者から採取した血液を、フィコール（Ficoll）（＃１７－１４４０－０２、ＧＥ Healthcare、またはそれと同等以上）が入れられたチューブ（＃３５２０７０、ＢＤ、またはそれと同等以上）２個に、それぞれ３０ｍｌずつ慎重に移し入れた。血液が入れられたチューブを、２，５００ｒｐｍで１０分間、ブレイクオフ（break off）状態で遠心分離した後、上層の血漿部分を新たなチューブに移し入れた。移し入れた血漿を、ヒートブロック（heat block）で３０分間不活性化させた後、４，０００ｒｐｍで５分間遠心分離した。遠心分離されたチューブでから、上澄み液を新たなチューブに移し、血漿と表記した後、２～８℃で保管した。
１．１．血液から末梢血液単核細胞（ＰＭＢＣ）及び血漿分離
血液は、正常人の静脈から採血して準備した。このとき、採血容器は、ヘパリンが含まれた採血チューブを使用した。患者から採取した血液を、フィコール（Ficoll）（＃１７－１４４０－０２、ＧＥ Healthcare、またはそれと同等以上）が入れられたチューブ（＃３５２０７０、ＢＤ、またはそれと同等以上）２個に、それぞれ３０ｍｌずつ慎重に移し入れた。血液が入れられたチューブを、２，５００ｒｐｍで１０分間、ブレイクオフ（break off）状態で遠心分離した後、上層の血漿部分を新たなチューブに移し入れた。移し入れた血漿を、ヒートブロック（heat block）で３０分間不活性化させた後、４，０００ｒｐｍで５分間遠心分離した。遠心分離されたチューブでから、上澄み液を新たなチューブに移し、血漿と表記した後、２～８℃で保管した。
前記血液とフィコールとを入れて遠心分離したチューブから血漿を採取して残った下層にある微黄色層を、新たなチューブに赤血球層と混入されないように、慎重に移し入れた後、Ｃａ／Ｍｇ遊離（free）ＤＰＢＳ（Dulbecco’s Phosphate-Buffered Saline）（＃１４１９０、Gibco）を入れた。その後、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上澄み液を除去した。上澄み液を除去して残った沈澱細胞を、ＲＢＣ溶解バッファ（red blood cell lysis buffer）（＃１５８９０４、Qiagen）５ｍｌに浮遊させた。その後、細胞懸濁液を、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離し、上澄み液を除去し、上澄み液が除去されたチューブに、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳを入れ、さらに１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離した。上澄み液が除去されて残った沈澱細胞を、Ａｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸ（＃０１４１０Ｐ１０、ＣＳＴＩ）培地１ｍｌに浮遊させた。
前記Ａｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸに浮遊させた細胞懸濁液から少量を取り、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳで、前記量の１００倍に希釈した後、希釈液少量を取り、同一体積のトリパンブルーと混ぜた後、血球計算板（hemocytometer）に載せ、細胞数及び生存率を測定した。
１．２．ＰＢＭＣの凍結
前述の実施例１．１で得られる全ての細胞懸濁液を、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上澄み液を除去した。２℃ないし８℃に保管しておいたCryostor ＣＳ１０またはＡＬｙＳ５０５ＮＫ－ＥＸ＋アルブミン＋ＤＭＳＯ混合液で細胞を浮遊させ、細胞数が、１～１００Ｘ１０６細胞／ｍｌになるようにした。浮遊した細胞を、２ｍｌ凍結バイアル（cryogenic vial）に１ｍｌずつ分注した後、ＣＲＦ（controlled rate freezers）を使用し、０℃で１０～１５分、－１２℃で５～１０分、及び－４２℃で０．５～１分の条件で、第１段階凍結させ、第１凍結段階後、－２５℃で１～３分、及び－１５℃で１～３分の条件で凍結させ、第２凍結段階後、－４２℃で２０～４０分、及び－１２０℃で２０～５０分の条件で凍結させるか、あるいは４～－４０℃範囲で３℃／ｍで、第１段階凍結し、第１凍結段階後、－４０～－９０℃範囲で５℃／ｍの条件で、第２段階凍結させ、第２凍結段階後、－９０～－１２０℃範囲で５℃／ｍの条件で凍結させた。凍結された細胞をＬＮ２タンクに移して保管した（－１３０℃以下）。
前述の実施例１．１で得られる全ての細胞懸濁液を、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上澄み液を除去した。２℃ないし８℃に保管しておいたCryostor ＣＳ１０またはＡＬｙＳ５０５ＮＫ－ＥＸ＋アルブミン＋ＤＭＳＯ混合液で細胞を浮遊させ、細胞数が、１～１００Ｘ１０６細胞／ｍｌになるようにした。浮遊した細胞を、２ｍｌ凍結バイアル（cryogenic vial）に１ｍｌずつ分注した後、ＣＲＦ（controlled rate freezers）を使用し、０℃で１０～１５分、－１２℃で５～１０分、及び－４２℃で０．５～１分の条件で、第１段階凍結させ、第１凍結段階後、－２５℃で１～３分、及び－１５℃で１～３分の条件で凍結させ、第２凍結段階後、－４２℃で２０～４０分、及び－１２０℃で２０～５０分の条件で凍結させるか、あるいは４～－４０℃範囲で３℃／ｍで、第１段階凍結し、第１凍結段階後、－４０～－９０℃範囲で５℃／ｍの条件で、第２段階凍結させ、第２凍結段階後、－９０～－１２０℃範囲で５℃／ｍの条件で凍結させた。凍結された細胞をＬＮ２タンクに移して保管した（－１３０℃以下）。
１．３．凍結されたＰＢＭＣの解凍
ヒートブロックを、３７℃になるようにセッティングした後、Ｔフラスコに１０％血漿が添加された培養液を入れた。細胞濃度によって培養液体積は、例えば、４ｍｌ、６ｍｌ、８ｍｌまたは１０ｍｌなどに多様に調節することができる。前述の実施例２．２で凍結しておいた凍結バイアルをヒートブロックに入れ、凍結されたＰＢＭＣを溶かした。凍結されたＰＢＭＣが半分ほど溶けたとき、培養液が入れられたＴフラスコに移した。次に、３７℃ ５％ ＣＯ２インキュベータに入れ、１日培養した。培養されたＰＢＭＣをチューブに集めた後、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳを添加し、１，５００ｒｐｍ、５分間遠心分離した後、上澄み液を除去した。遠心分離によって分離された細胞を、少量の培養液に浮遊させた後、細胞数を測定した。凍結保管された細胞の解凍後生存率は、表１に記載する。表１から分かるように、本発明によって凍結保管された後で解凍したＰＭＢＣは、９３％以上が生存しているが、高い生存率が維持されるということを確認することができた。
ヒートブロックを、３７℃になるようにセッティングした後、Ｔフラスコに１０％血漿が添加された培養液を入れた。細胞濃度によって培養液体積は、例えば、４ｍｌ、６ｍｌ、８ｍｌまたは１０ｍｌなどに多様に調節することができる。前述の実施例２．２で凍結しておいた凍結バイアルをヒートブロックに入れ、凍結されたＰＢＭＣを溶かした。凍結されたＰＢＭＣが半分ほど溶けたとき、培養液が入れられたＴフラスコに移した。次に、３７℃ ５％ ＣＯ２インキュベータに入れ、１日培養した。培養されたＰＢＭＣをチューブに集めた後、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳを添加し、１，５００ｒｐｍ、５分間遠心分離した後、上澄み液を除去した。遠心分離によって分離された細胞を、少量の培養液に浮遊させた後、細胞数を測定した。凍結保管された細胞の解凍後生存率は、表１に記載する。表１から分かるように、本発明によって凍結保管された後で解凍したＰＭＢＣは、９３％以上が生存しているが、高い生存率が維持されるということを確認することができた。
２．ナチュラルキラー細胞の培養
２．１．フィブロネクチン及びγガンマグロブリンにコーティングされた培養フラスコ準備（一次）
１５ｍｌチューブに、０．０１ｍｌフィブロネクチン（＃ＦＣ－０１０、Millipore）、及び０．１２１ｍｌ γグロブリン（＃０２０Ａ１００４、緑十字）の溶液を入れた後、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳ ９．８５９ｍｌを添加した。製造されたコーティング液を、ピペットを利用し、Ｔ７５フラスコ（＃１５６４９９、Ｎｕｎｃ）に入れ、１６時間以上２～８℃で反応させた。細胞培養前、残余コーティング液をＣａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳで洗浄した後に除去した。
２．１．フィブロネクチン及びγガンマグロブリンにコーティングされた培養フラスコ準備（一次）
１５ｍｌチューブに、０．０１ｍｌフィブロネクチン（＃ＦＣ－０１０、Millipore）、及び０．１２１ｍｌ γグロブリン（＃０２０Ａ１００４、緑十字）の溶液を入れた後、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳ ９．８５９ｍｌを添加した。製造されたコーティング液を、ピペットを利用し、Ｔ７５フラスコ（＃１５６４９９、Ｎｕｎｃ）に入れ、１６時間以上２～８℃で反応させた。細胞培養前、残余コーティング液をＣａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳで洗浄した後に除去した。
２．２．ナチュラルキラー細胞の一次培養
実施例１で準備した細胞懸濁液を取り、前述の実施例２．１で製造されたコーティングフラスコに入れ、自家血漿１．５ｍｌ、及びＩＬ－１８（＃Ｂ００３－２、Ｒ＆Ｄ）０．０７５ｍｌ、ＰＤＧＦ－ＤＤ（１１５９－ＳＢ、Ｒ＆Ｄ）０．０７５ｍｌ、抗ＮＫｐ４６（＃ＭＡＢ１８５０、Ｒ＆Ｄ）０．０３ｍｌ、Ａｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸ（＃０１４１０Ｐ１０、ＣＳＴＩ）１３．４６２５ｍｌを添加し、ＣＯ２インキュベータで２～３日間培養した。その後、フラスコに自家血漿１．５ｍｌ及びＡｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸ１３．５ｍｌを添加し、ＣＯ２インキュベータで１～２日間培養した。
実施例１で準備した細胞懸濁液を取り、前述の実施例２．１で製造されたコーティングフラスコに入れ、自家血漿１．５ｍｌ、及びＩＬ－１８（＃Ｂ００３－２、Ｒ＆Ｄ）０．０７５ｍｌ、ＰＤＧＦ－ＤＤ（１１５９－ＳＢ、Ｒ＆Ｄ）０．０７５ｍｌ、抗ＮＫｐ４６（＃ＭＡＢ１８５０、Ｒ＆Ｄ）０．０３ｍｌ、Ａｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸ（＃０１４１０Ｐ１０、ＣＳＴＩ）１３．４６２５ｍｌを添加し、ＣＯ２インキュベータで２～３日間培養した。その後、フラスコに自家血漿１．５ｍｌ及びＡｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸ１３．５ｍｌを添加し、ＣＯ２インキュベータで１～２日間培養した。
２．３．フィブロネクチン及びγグロブリンにコーティングされた培養フラスコ準備（二次）
５０ｍｌチューブに、０．０２５ｍｌフィブロネクチン（＃ＦＣ－０１０、Millipore）、及び０．３０３ｍｌ γグロブリン（＃０２０Ａ１００４、緑十字）溶液を入れた後、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳ ２４．６４７ｍｌを添加した。製造されたコーティング液を、ピペットを利用し、Ｔ１７５フラスコ（＃１５９９１０、Ｎｕｎｃ）に入れ、１６時間以上２～８℃で反応させた。細胞培養前、残余コーティング液を、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳで洗浄した後に除去した。
５０ｍｌチューブに、０．０２５ｍｌフィブロネクチン（＃ＦＣ－０１０、Millipore）、及び０．３０３ｍｌ γグロブリン（＃０２０Ａ１００４、緑十字）溶液を入れた後、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳ ２４．６４７ｍｌを添加した。製造されたコーティング液を、ピペットを利用し、Ｔ１７５フラスコ（＃１５９９１０、Ｎｕｎｃ）に入れ、１６時間以上２～８℃で反応させた。細胞培養前、残余コーティング液を、Ｃａ／Ｍｇ遊離ＤＰＢＳで洗浄した後に除去した。
２．４．ナチュラルキラー細胞の二次培養、及び機能強化新規物質の処理
実施例２．２の一次培養後、インキュベータで細胞が培養されているＴ７５フラスコを取り出して細胞を集めた後、Ｔ１７５フラスコ（＃１５９９１０、Ｎｕｎｃ）に移した。血漿３ｍｌ、抗ＮＫｐ４６（＃ＭＡＢ１８５０、Ｒ＆Ｄ）０．０６ｍｌ、及びＡｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸ（＃０１４１０Ｐ１０、ＣＳＴＩ）２７ｍｌをＴ１７５フラスコに添加し、ＣＯ２インキュベータで１～２日間培養した。その後、残っている血漿、及び抗ＮＫｐ４６溶液０．１２ｍｌ、ＩＬ－１８ ０．０３ｍｌ、ＰＤＧＦ－ＤＤ（１１５９－ＳＢ、Ｒ＆Ｄ）０．０３ｍｌ、Ａｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸ（＃０１４１０Ｐ１０、ＣＳＴＩ） ５３．８５ｍｌ、並びに機能強化新規物質として、ＰＤＧＦ－ＡＡ、ＰＤＧＦ－ＢＢ、ＰＤＧＦ－ＣＣ、ＰＤＧＦ－ＤＤ（１１５９－ＳＢ、Ｒ＆Ｄ）及びＰＤＧＦ－ＡＢ５０ｎｇ／ｍｌのうちから一つまたは二つ以上を添加した後、さらにＣＯ２インキュベータで１～２日間培養した。
実施例２．２の一次培養後、インキュベータで細胞が培養されているＴ７５フラスコを取り出して細胞を集めた後、Ｔ１７５フラスコ（＃１５９９１０、Ｎｕｎｃ）に移した。血漿３ｍｌ、抗ＮＫｐ４６（＃ＭＡＢ１８５０、Ｒ＆Ｄ）０．０６ｍｌ、及びＡｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸ（＃０１４１０Ｐ１０、ＣＳＴＩ）２７ｍｌをＴ１７５フラスコに添加し、ＣＯ２インキュベータで１～２日間培養した。その後、残っている血漿、及び抗ＮＫｐ４６溶液０．１２ｍｌ、ＩＬ－１８ ０．０３ｍｌ、ＰＤＧＦ－ＤＤ（１１５９－ＳＢ、Ｒ＆Ｄ）０．０３ｍｌ、Ａｌｙｓ５０５ＮＫ－ＥＸ（＃０１４１０Ｐ１０、ＣＳＴＩ） ５３．８５ｍｌ、並びに機能強化新規物質として、ＰＤＧＦ－ＡＡ、ＰＤＧＦ－ＢＢ、ＰＤＧＦ－ＣＣ、ＰＤＧＦ－ＤＤ（１１５９－ＳＢ、Ｒ＆Ｄ）及びＰＤＧＦ－ＡＢ５０ｎｇ／ｍｌのうちから一つまたは二つ以上を添加した後、さらにＣＯ２インキュベータで１～２日間培養した。
２．５．ナチュラルキラー細胞の三次培養
前述の実施例２．４で培養されたＴ１７５フラスコの細胞及び血漿を、２０００ＩＵ／ｍｌ ＩＬ－２を含む培養液に入れ、ＣＯ２インキュベータで培養した。２～３日後、新たな同一体積の培養液（２０００ＩＵ／ｍｌのＩＬ－２を含む培養液）を、細胞が培養されている細胞懸濁液と混ぜた後、ＣＯ２インキュベータで培養した。
前述の実施例２．４で培養されたＴ１７５フラスコの細胞及び血漿を、２０００ＩＵ／ｍｌ ＩＬ－２を含む培養液に入れ、ＣＯ２インキュベータで培養した。２～３日後、新たな同一体積の培養液（２０００ＩＵ／ｍｌのＩＬ－２を含む培養液）を、細胞が培養されている細胞懸濁液と混ぜた後、ＣＯ２インキュベータで培養した。
前記培養（一次培養、二次培養及び三次培養のいずれも）において、において、ＩＬ－２が添加された培養液の代わりに、ＩＬ－２が添加されていない免疫細胞培養液に、ＩＬ－２を所定量でそれぞれ添加して使用することもできる。
３．培養期間別ナチュラルキラー細胞の表現型分析
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞につき、培養前のＰＢＭＣからナチュラルキラー細胞に分化及び拡張するまでの培養期間の間、０日目、６日目、１０日目、１４日目に、細胞特性を分析した。
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞につき、培養前のＰＢＭＣからナチュラルキラー細胞に分化及び拡張するまでの培養期間の間、０日目、６日目、１０日目、１４日目に、細胞特性を分析した。
細胞特性を分析するために、主要マーカーとして、ＣＤ３、ＣＤ５６、ＣＤ１９、ＣＤ１６、ＣＤ１４、ＣＤ４、ＣＤ８で確認した。培養期間中、ＣＤ３－ＣＤ５６＋ ＮＫ細胞の比率が上昇し、培養後の１４日目には、ＮＫ細胞が、主成分として８５．５％（４．９２）を占めた。それ以外のＣＤ３＋ＣＤ５６－ Ｔ細胞は、培養１４日目に１０％にｇ低減、ＣＤ３＋ＣＤ５６＋ ＮＫＴ細胞は、５％に一定比率を維持しながら存在した。単球（monocyte）とＢ細胞は、０％と発見されなかった。また、培養後のＴ細胞において、ＣＤ４＋細胞よりＣＤ８＋細胞の比率が高かった。
図１Ａないし図１Ｃは、培養前対比で、高純度のナチュラルキラー細胞として分布していることを示す。
図２Ａないし図２Ｄは、図１Ａないし図１Ｃに係わる７人の培養評価をグラフで示した結果である。
図２Ｅ及び図２Ｆの結果を介し、１４日目の培養のいずれにおいても、９０％以上の高い生存率を維持し、１，２５９倍のナチュラルキラー細胞の増殖能を示した。
４．培養前（Ｄ０）と培養後（Ｄ１４）とにおける、ＮＫ細胞受容体発現の相対的ＭＦＩ値
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞の相対的ＭＦＩ値を測定した。
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞の相対的ＭＦＩ値を測定した。
該相対的ＭＦＩは、アイソタイプ対比の陽性細胞の発現強度値を意味し、下記数式１によって定義される。
［数１］
相対的ＭＦＩは、アイソタイプ対比の陽性細胞の発現比率を測定する発現比率とは、区分された概念であり、同じ％の発現比率を有しても、ＭＦＩ値により、各受容体機能の強度は異なり、相対的ＭＦＩ値が高くてこそ、実在的な機能が増大されたとも理解される。
本実施例においては、前述の２．５．でのように８、新規物質を処理した機能強化された新規のナチュラルキラー細胞を製造し、その特定受容体のＭＦＩ値を測定し、新規のナチュラルキラー細胞特性を定義した。
相対的ＭＦＩを測定するために、まず、培養前後の細胞を収去し、１ｘ１０７の細胞を準備し、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上澄み液を除去し、ＦＡＣＳバッファ（２％ ＦＢＳが含まれたＰＢＳ）で２ｍｌに希釈した。下記表２に記載された物質につき、蛍光物質を含む抗体を条件別に５ｍｌ ＦＡＣＳチューブに入れ、希釈された細胞溶液を１００μｌずつ分注し、冷蔵庫で３０分間染色した。染色された後、ＰＢＳを５００μｌずつ入れ、３，２００ｒｐｍで３分間遠心分離した後、上澄み液を除去した。染色された細胞のペレットを、１％ ＰＦＡ ５００μｌずつ入れて固定させた後、流細胞分析器（Bechman Coulter、米国）を利用し、細胞の免疫受容体の発現を分析し、前記数式１によって相対的ＭＦＩ値を測定した。
相対的ＭＦＩ値の結果は、下記表２に示した。
前掲の表２に示されているように、抗癌活性、及びナチュラルキラー細胞の活性化に係わる因子であるＮＫＧ２Ｄ、ＮＫｐ３０、ＮＫｐ４４、ＩＴＧＡ１及びＩＴＧＡ２の相対的ＭＦＩ値が、少なくは、１．５倍から、多くは、２５倍まで増大されたことが分かった。以上の結果は、一具体例による、新規物質処理されたナチュラルキラー細胞が、特定ＭＦＩ値を有する新規のナチュラルキラー細胞であり、抗癌活性、及び細胞自体の活性が増大されたことを意味する。
５．免疫受容体の発現比較分析
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞と、培養前ＰＢＭＣとの免疫受容体の発現を比較分析した。
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞と、培養前ＰＢＭＣとの免疫受容体の発現を比較分析した。
具体的には、前述の４．と同一方法で、下記表３に記載された物質につき、蛍光物質を含む抗体を利用し、細胞の免疫受容体の発現を分析し、その結果を、図３、及び図４Ａないし図４Ｃに示した。
図３は、一具体例によるナチュラルキラー細胞と、培養前ＰＢＭＣの免疫受容体との発現を比較したドットプロット結果である。図４Ａないし図４Ｃは、一具体例によるナチュラルキラー細胞と、培養前ＰＢＭＣの免疫受容体との発現の変化をグラフで示した結果である。
図３、及び図４Ａないし図４Ｃに示されているように、一具体例によるナチュラルキラー細胞は、ＮＫＧ２Ｄ、ＤＭＡＮ－１、ＣＤ６９、ＣＤ２、ＮＫｐ３０、ＮＫＧ２Ａ及びＮＫｐ４４の発現が増大され、ＮＫｐ４６、ＣＤ１６、ＫＩＲ２ＤＬ１、ＫＩＲ２ＤＬ２／３及びＫＩＲ３ＤＬ１の発現は、培養前ＰＭＢＣと比較し、発現量がほとんど変化していないということが分かった。
６．活性化ナチュラルキラー細胞の脳組織、血管脳障壁の透過性関連、または細胞移動促進関連因子の発現分析
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞の脳組織、血管脳障壁の透過性、または細胞移動促進に係わる因子の発現を比較分析した。
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞の脳組織、血管脳障壁の透過性、または細胞移動促進に係わる因子の発現を比較分析した。
具体的には、下記表４に記載された物質につき、蛍光物質を含む抗体を使用したという点を除いては、前述の４．と同一方法で遂行し、細胞の脳組織、血管脳障壁の透過性関連、または細胞移動促進関連因子の発現を分析し、その結果を表４に示した。
７．活性化ナチュラルキラー細胞のＫＩＲ２ＤＳ４の発現分析
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞のＫＩＲ２ＤＳ４のｍＲＮＡ発現様態を、培養前ＰＢＭＣと比較した。
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞のＫＩＲ２ＤＳ４のｍＲＮＡ発現様態を、培養前ＰＢＭＣと比較した。
具体的には、培養前細胞と培養後細胞とから、トリゾール分離方法でＲＮＡを抽出し、総ＲＮＡシークエンシングを行い、ｍＲＮＡの発現様態を確認した。前記結果は、下記表５に示した。
前掲の表５に示されているように、一具体例によるナチュラルキラー細胞は、培養前ＰＢＭＣ対比のＫＩＲ２ＤＳ４の発現が約３２倍増大されたということが分かった。
実験例１．抗癌物質の発現分析
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞と、培養前ＰＢＭＣの抗癌物質（グランザイムＢ、パーフォリン、インターフェロンγ及びＣＤ１０７ａ）との発現を比較分析した。
前述の実施例による培養方法によって培養された活性化ナチュラルキラー細胞と、培養前ＰＢＭＣの抗癌物質（グランザイムＢ、パーフォリン、インターフェロンγ及びＣＤ１０７ａ）との発現を比較分析した。
まず、グランザイムＢ及びパーフォリンは、次のように分析した。
各サンプル当たり５ｘ１０５の細胞を準備し、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上澄み液を除去し、細胞ペレットを得た。該細胞ペレットは、ＦＡＣＳバッファで１００μｌずつ希釈し、抗ＩｇＧ１ｋ－ＦＩＴＣ（eBioscience、１１－４７１４－４２）、抗ＩｇＧ１ｋ－ＡＰＣ（eBioscience、１７－４７１４－４２）と、抗ＣＤ３－ＦＩＴＣ（eBioscience、１１－００３８－４２）、抗ＣＤ５６－ＡＰＣ（eBioscience、１７－０５６７－４２）との抗体を入れ、常温で１５分間表面抗原を染色し、その後、ＰＢＳを５００μｌずつ入れ、６，０００ｒｐｍで３分間遠心分離した。細胞内染色を行うために、Fixation/Permeabilization Solution Kit（ＢＤ、５５４７１４）を利用し、Fixation/Permeabilization solutionを入れ、２０分間冷蔵庫で反応させ、Perm/Wash bufferを入れ、６，０００ｒｐｍで３分間２回遠心分離した。上澄み液を除去して得られた細胞ペレットは、Perm/Wash buffer１００μｌでそれぞれ希釈し、抗ＩｇＧ１ｋ－ＰＥ（eBioscience、１２－４７１４－４２）、抗ペルフォリン－ＰＥ（eBioscience、１２－９９９４－４２）、抗グランザイムＢ－ＰＥ（eBioscience、１２－８８９９－４１）の抗体を入れ、冷蔵庫で３０分間細胞内染色処理を行った。染色した後、細胞溶液は、ＰＢＳ ５００μｌずつ入れて遠心分離し、１％ ＰＦＡで固定した後、流細胞分析器を利用して分析した。
インターフェロンγは、前述のところと同一方法で細胞ペレットを得た後、フェノールレッドが含まれていないＲＰＭＩ培地に、１０％ ＦＢＳと１％ペニシリンが添加された培養液を利用して希釈し、２４ウェルプレートに５００μｌずつ分注した。その後、ＰＭＡ／イオノマイシン（Biolegend）０．５μｌとGolgiPlugTM（ＢＤ Bioscience、米国）０．５μｌとで処理し、４時間３７℃ ５％ ＣＯ２インキュベータで反応させた。反応４時間後、細胞を収去し、６，０００ｒｐｍで３分間遠心分離し、上澄み液を除去した。細胞ペレットは、抗ＩｇＧ１ｋ－ＦＩＴＣ（eBioscience、１１－４７１４－４２）、抗ＩｇＧ１ｋ－ＡＰＣ（eBioscience、１７－４７１４－４２）と、抗ＣＤ３－ＦＩＴＣ（eBioscience、１１－００３８－４２）、抗ＣＤ５６－ＡＰＣ（eBioscience、１７－０５６７－４２）との抗体を利用し、表面抗原染色し、細胞内染色を進めた。細胞内染色は、抗ＩｇＧ１ｋ－ＰＥ（eBioscience、１２－４７１４－４２）と抗ＩＮＦ－γ－ＰＥ（eBioscience、１２－８８９９－４１）との抗体で染色し、１％ ＰＦＡで固定した後、流細胞分析器を利用して分析した。
前記のグランザイムＢ、パーフォリン及びインターフェロンγに係わる結果は、図５に示した。
図５は、一具体例によるナチュラルキラー細胞と、培養前ＰＢＭＣの抗癌物質（グランザイムＢ、パーフォリン及びインターフェロンγ）との発現を、流細胞分析器を利用し、ドットプロットとグラフとで示した結果である。
図５に示されているように、一具体例によるナチュラルキラー細胞は、抗癌物質であるグランザイムＢ、パーフォリン及びインターフェロンγを少なくとも８０％以上発現するということが分かった。それは、培養前ＰＢＭＣに比べ、少なくとも４倍以上増大された数値である。
また、一具体例によるナチュラルキラー細胞と、培養前ＰＢＭＣとのＣＤ１０７ａの脱顆粒化の発現を比較するために、慢性骨髄性白血病患者の骨髄から抽出したリムパ芽細胞であるＫ５６２を標的細胞にして反応させ、ＣＤ１０７ａの発現程度を分析した。
具体的には、標的細胞であるＫ５６２細胞は、条件当たり１ｘ１０５の細胞を準備し、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上澄み液を除去してペレットを得た。該細胞ペレットは、フェノールレッドが含まれていないＲＰＭＩ培地に、１０％ ＦＢＳと、１％ペニシリン・ストレプトマイシン（１０，０００Ｕ／ｍＬ）（Gibco、１５１４０１２２）が添加された培養液を２５０μｌずつ入れて希釈した。ナチュラルキラー細胞は、活性化ナチュラルキラー細胞と標的細胞とを５：１の比率で準備するために、条件当たり５ｘ１０５の細胞を準備した。準備された細胞を遠心分離した後、上澄み液を除去し、標的細胞を希釈したところと同じ培養液２５０μｌを入れて懸濁した。その後、２４ウェルプレートに、準備された活性化ナチュラルキラー細胞と標的細胞とを５：１の比率で入れた後、抗ＩｇＧ１ｋ－ＰＥ（eBioscience）と抗ＣＤ１０７ａ－ＰＥ（eBioscience）との抗体を添加し、４時間３７℃ ５％ ＣＯ２条件でインキュベータで反応させた。４時間の反応が完了すれば、細胞を収去し、抗ＩｇＧ１ｋ－ＦＩＴＣ（eBioscience）、抗ＩｇＧ１ｋ－ＡＰＣ（eBioscience）と、抗ＣＤ３－ＦＩＴＣ（eBioscience）、抗ＣＤ５６－ＡＰＣ（eBioscience）との蛍光物質を有した抗体で染色し、ナチュラルキラー細胞だけを区分した。染色した後、ＰＢＳ ５００μｌずつを入れて遠心分離して細胞を洗浄し、１％ ＰＦＡで固定した後、流細胞分析器を利用して分析し、その結果を図６に示した。
図６は、一具体例によるナチュラルキラー細胞と、培養前ＰＢＭＣとのＣＤ１０７ａの脱顆粒化の発現を、ドットプロットとグラフとで示した結果である。
図６に示されているように一具体例によるナチュラルキラー細胞は、ＣＤ１０７ａを少なくとも６０％以上発現するということが分かり、それは、培養前ＰＢＭＣに比べ、少なくとも３倍以上増大された数値である。
実験例２．膠芽腫細胞株の配位子と、活性化ナチュラルキラー細胞との相互作用分析
膠芽腫細胞株の配位子と、一具体例によるナチュラルキラー細胞との相互作用を分析した。
膠芽腫細胞株の配位子と、一具体例によるナチュラルキラー細胞との相互作用を分析した。
まず、膠芽腫細胞株であるＵ－８７ＭＧ細胞とＴ９８Ｇ細胞は、１０％ ＦＢＳと１％ペニシリン・ストレプトマイシン（１０，０００Ｕ／ｍＬ）とが添加されたＤＭＥＭ培地で培養し、他の膠芽腫細胞株であるＵ－３７３ＭＧ細胞とＡ１７２細胞は、１０％ ＦＢＳと１％ペニシリン・ストレプトマイシン（１０，０００Ｕ／ｍＬ）とが添加されたＲＰＭＩ培地で培養した。その後、膠芽腫細胞株Ｔ９８Ｇ及び膠芽腫細胞株Ｕ－８７ＭＧ，Ａ１７２，Ｕ－３７３ＭＧに対し、ナチュラルキラー細胞の配位子であるＨＬＡ－ＡＢＣ、ＨＬＡ－Ｅ、ＭＩＣＡ、ＭＩＣＢ、ＵＬＢＰ１、ＵＬＢＰ２、ＵＬＢＰ３、ＵＬＢＰ４、ＰＶＲ、ＩＣＡＭ－１、ＩＣＡＭ－２、ＩＣＡＭ－３、ＬＦＡ－３、Ｂ７－Ｈ６、ＰＶＲ、Ｎｅｃｉｎ－２の抗体を染色し、細胞の発現程度を分析した。
具体的には、Ｔ７５フラスコで培養した各癌細胞株につき、０．２５％トリプシン・ＥＤＴＡ（１Ｘ）、フェノールレッドを添加し、３分ないし５分間３７℃ ５％ ＣＯ２インキュベータで反応させた後、細胞を浮遊させ、１０％ ＦＢＳが添加された培養液で酵素を不活性化させて細胞を収去した。収去された細胞は、細胞数を測定し、８．５ｘ１０６細胞を準備し、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上澄み液を除去し、ＦＡＣＳバッファ（２％ ＦＢＳが含まれたＰＢＳ）で１．７ｍｌに希釈した。次に、下記表６に記載された蛍光物質を含む抗体を、条件別に５ｍｌ ＦＡＣＳチューブに入れ、希釈された細胞溶液を１００μｌずつ分注し、常温で１５分間染色した。染色された細胞は、１％ ＰＦＡ ５００μｌずつ入れて固定した後、流細胞分析器（Bechman Coulter、米国）を利用して分析し、その結果は図７に示した。
図７Ａないし図７Ｄは、一具体例によるナチュラルキラー細胞の膠芽腫細胞株に対する配位子の発現をドットプロットで示した結果である。
図７Ａないし図７Ｄに示されているように、Ｔ９８Ｇは、テモゾロミド（temozolomiede）耐性を有した膠芽腫細胞であり、Ｕ－３７３ＭＧとＵ－８７ＭＧは、それぞれグレード（grade）３，４の膠芽腫細胞株である。細胞に対する配位子の分析を介し、ＮＫ細胞の主要受容体との相互作用を介する殺傷能を期待することができる。特に、ＨＬＡ－ＡＢＣの発現が低く、ＮＫ配位子の発現が比較的高いＴ９８Ｇ（ｒＭＦＩ ２４．８）とＵ－８７ＭＧ（ｒＭＦＩ ３０．５）とにおいて、さらに有意の結果を予想することができる。
実験例３．膠芽腫細胞株に対する細胞殺傷能確認
一具体例によるナチュラルキラー細胞の直接的な細胞殺傷能を確認するために、ナチュラルキラー細胞に対する敏感性が高い血液癌細胞株Ｋ５６２と、膠芽腫細胞株のＡ１７２細胞、Ｕ－８７ＭＧ細胞、Ｕ－３７３ＭＧ細胞、Ｔ９８Ｇ細胞を対象に、細胞の殺傷能を評価した。
一具体例によるナチュラルキラー細胞の直接的な細胞殺傷能を確認するために、ナチュラルキラー細胞に対する敏感性が高い血液癌細胞株Ｋ５６２と、膠芽腫細胞株のＡ１７２細胞、Ｕ－８７ＭＧ細胞、Ｕ－３７３ＭＧ細胞、Ｔ９８Ｇ細胞を対象に、細胞の殺傷能を評価した。
ターゲット癌細胞（Ｋ５６２、Ｕ－８７ＭＧ、Ｕ－３７３ＭＧ、Ａ１７２、Ｔ９８Ｇ）を収去し、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離し、上澄み液を除去した。その後、ＤＰＢＳで希釈して洗浄し、洗浄後の細胞ペレットは、フェノールレッドが含まれていないＲＰＭＩ培地に、１０％ ＦＢＳが添加された培養液に浮遊させた。条件当たり１ｘ１０５の細胞を準備し、ＣＦＳＥ（Life Technologies）５μＭの濃度で、５％ ＣＯ２条件でインキュベータで１０分間静置して染色した。ＤＰＢＳで２回洗浄した後、フェノールレッドが含まれていないＲＰＭＩ培地に、１０％ ＦＢＳが添加された培養液で希釈した。活性化ナチュラルキラー細胞は、ターゲット細胞とのＥ：Ｔ比率（１：１、１．２５：１、２．５：１、５：１、１０：１、２０：１）別に細胞を準備し、２４ウェルプレートにターゲット細胞と共に分注して混ぜた。４時間反応を行い、反応終了２０分前、７－アミノアクチノマイシンＤ（７ＡＡＤ）で処理した。反応終了後には、細胞を５ｍｌ ＦＡＣＳチューブに収去し、流細胞分析器を介し、細胞の殺傷能を分析し、その結果を図８及び図９に示した。
図８は、一具体例によるナチュラルキラー細胞の血液癌細胞株Ｋ５６２に対するＥ：Ｔ比率別細胞殺傷能を示す結果である。
図９は、一具体例によるナチュラルキラー細胞の膠芽腫細胞株Ａ１７２，Ｕ－８７ＭＧ，Ｕ－３７３ＭＧ，Ｔ９８Ｇに対するＥ：Ｔ比率別細胞殺傷能を示す結果である。
図８及び図９に示されているように、培養前ＰＢＭＣの場合、膠芽腫に対する抗癌活性が有意ではないが、一具体例によるナチュラルキラー細胞は、血液癌細胞株及び膠芽腫細胞株において、顕著な抗癌活性を有するということを確認した。
以上の結果は、一具体例による新規のナチュラルキラー細胞は、膠芽腫に対し、有意な免疫受容体の発現するだけではなく、自己寛容を克服することができる免疫受容体を発現する細胞として、血液癌や膠芽腫などの治療に有用に使用されうる効果がある。
実験例４．ナチュラルキラー細胞のブロッキングアッセイ
一具体例によるナチュラルキラー細胞において、特定因子の発現が抑制される場合、癌細胞に対する細胞毒性が抑制されるか否かということを確認した。
一具体例によるナチュラルキラー細胞において、特定因子の発現が抑制される場合、癌細胞に対する細胞毒性が抑制されるか否かということを確認した。
具体的には、ＮＫｐ３０に係わる抗体、ＮＫｐ４４に係わる抗体、ＮＫＧ２Ｄに係わる抗体を利用し、それら受容体の活性が遮断されたナチュラルキラー細胞を製造した。その後、前記実験例３．と同一方法で、Ｕ－８７ＭＧ、Ｕ－３７３ＭＧ、Ａ１７２、Ｔ９８Ｇに対する細胞毒性を確認し、その結果を図１０に示した。
図１０は、一具体例によるナチュラルキラー細胞において、特定受容体を遮断した後、それらナチュラルキラー細胞の癌細胞株に対する細胞毒性を確認したグラフである。
図１０に示されているように、一具体例によるナチュラルキラー細胞において、ＮＫｐ３０、ＮＫｐ４４またはＮＫＧ２Ｄの活性を抑制した場合、細胞毒性が顕著に低減するということが分かった。特に、ＮＫＧ２Ｄの活性を抑制する場合、あるいは３個の受容体をいずれも抑制する場合には、細胞毒性効果が顕著に抑制されるということが分かった。
そのような結果は、一具体例によるナチュラルキラー細胞において、ＮＫｐ３０、ＮＫｐ４４及び／またはＮＫＧ２Ｄの活性が細胞毒性の主要因子であり、特定ＭＦＩ値のＮＫｐ３０、ＮＫｐ４４及び／またはＮＫＧ２Ｄを有する一具体例によるナチュラルキラー細胞は、抗癌活性が顕著に増大された細胞であるということを意味する。
実験例５．ナチュラルキラー細胞の抗癌活性分析
５．１．卵巣癌動物モデルにおける抗癌活性分析
一具体例によるナチュラルキラー細胞の抗癌活性をインビボ（in vivo）で確認した。
５．１．卵巣癌動物モデルにおける抗癌活性分析
一具体例によるナチュラルキラー細胞の抗癌活性をインビボ（in vivo）で確認した。
まず、ＮＯＤ－ＳＣＩＤマウスに、卵巣癌細胞株であるＯＶＣＡＲ３を１ｘ１０７細胞／匹を皮下投与し、異種移植動物モデルを製造した。その後、下記表７のように、試験群を設定した。
陰性対照群Ｇ１ビヒクル群は、５％アルブミン：デキストラン注＝１：１の比率で製造し、１００μｌ静脈投与した。陽性対照群Ｇ２シスプラチン群は、シスプラチン１．５ｍｇ／ｋｇを投与した。ナチュラルキラー細胞投与群のＧ３新鮮ＮＫ群とＧ４凍結ＮＫ群は、細胞の新鮮型と凍結型との差であり、Ｇ４凍結ＮＫ群は、凍結されたＮＫ細胞を解凍し、１ｘ１０７細胞を１匹当たり投与し、Ｇ３新鮮ＮＫ群は、培養中細胞を回収し、１ｘ１０７細胞を１匹当たり投与した。投与群は、１週２回投与で、総６回投与した。試験期間の間、マウスの生存率及び腫瘍サイズ、症状を観察し、７８日間モニタリングを行った。７８日以後には、動物を犠牲にして抽出した腫瘍の重さを測定し、その結果を、下記表８及び図１１に示した。
図１１は、一具体例によるナチュラルキラー細胞を、卵巣癌動物モデルに投与した後、腫瘍重量の減少を観察したグラフである（矢印は、薬物投与時期を示す）。
前掲の表８、及び図１１に示されているように、一具体例によるナチュラルキラー細胞を投与したとき、陽性対照群対比の腫瘍の重さが、約５０％ないし６０％低減したことを確認することができた。特に、陽性対照群は、５０日後、腫瘍成長が加速化され、腫瘍体積が早く増大したところに対し、一具体例によるナチュラルキラー細胞の投与群は、モニタリング期間の間、腫瘍成長が顕著に遅くなったことを確認することができた。
５．２．胃癌動物モデルにおける抗癌活性分析
一具体例によるナチュラルキラー細胞の抗癌活性を、インビボ（in vivo）で確認した。
一具体例によるナチュラルキラー細胞の抗癌活性を、インビボ（in vivo）で確認した。
まず、ＮＯＤ－ＳＣＩＤマウスに、胃癌細胞株であるＮＣＩ－Ｎ８７を、１ｘ１０６細胞／匹を投与し、異種移植動物モデルを製造した。腫瘍移植６日後、下記表９の試験群を設定した。
陰性対照群Ｇ１ビヒクル群は、５％アルブミン：デキストラン注＝１：１の比率で製造し、２００μｌ静脈投与した。陽性対照群Ｇ２ＨＥＲ２群は、ハーセプチン１ｍｇ／ｋｇでもって、１週２回ずつ総６回静脈投与した。Ｇ３新鮮ＮＫ群とＧ４凍結ＮＫ群は、ナチュラルキラー細胞単独投与群であり、１ｘ１０７細胞／匹を１週２回投与し、総６回静脈投与した。Ｇ３新鮮ＮＫ群は、培養中細胞を回収して得た細胞を投与し、Ｇ４凍結ＮＫ群は、凍結されたＮＫ細胞を解凍し、１ｘ１０７細胞を１匹当たり投与した。ＮＫ細胞とハーセプチンとの併用投与群であるＧ５ ＮＫＬ＋ハーセプチン群とＧ６ ＮＫＦ＋ハーセプチン群は、ＮＫ細胞単独投与群と同一細胞に、ハーセプチン１ｍｇ／ｋｇを併用投与した群であり、週２回ずつ総６回静脈投与した。
試験期間の間、マウスの生存率及び腫瘍サイズ、症状を観察し、５２日間モニタリングを行った。５２日以後には、動物を犠牲して抽出した腫瘍の重さを測定し、その結果を下記表１０及び図１２に示した。
図１２は、一具体例によるナチュラルキラー細胞を胃癌動物モデルに投与した後、腫瘍重量低減を観察したグラフである。
前掲の表１０、及び図１２に示されているように、一具体例によるナチュラルキラー細胞を投与したとき、陽性対照群対比の腫瘍の重さが約６０％ないし７０％低減したことを確認することができた。特に、陽性対照群は、２８日以後、腫瘍成長が加速化され、腫瘍体積が早く増大したところに対し、一具体例によるナチュラルキラー細胞の投与群は、モニタリング期間の間、腫瘍成長が顕著に遅くなったことを確認することができた。
また、ハーセプチンとナチュラルキラー細胞との併用投与群においては、ナチュラルキラー細胞単独投与群対比の腫瘍の重さが、約１７％ないし２０％低減することを確認することができた。それは、ナチュラルキラー細胞とハーセプチンとの併用投与のＡＤＣＣ（antibody-dependent cell cytotoxicity）を適用する場合、高い腫瘍成長の抑制効果と、抗癌効能の維持期間とを得ることができるということを意味する。
５．２．膠芽腫動物モデルにおける抗癌活性分析
一具体例によるナチュラルキラー細胞の抗癌活性を、インビボ（in vivo）で確認した。
一具体例によるナチュラルキラー細胞の抗癌活性を、インビボ（in vivo）で確認した。
まず、７週齢ＮＯＧメスマウスに、ヒト脳膠芽腫由来の細胞株Ｕ８７ＭＧに、ルシフェラーゼ遺伝子が形質導入されたＵ８７ＭＧ－ｌｕｃｉ細胞１×１０４個を、マウスモデルの右側大脳半球頭蓋骨（brain cerebral hemisphere skull）中に移植し、実験同所移植動物モデルを構築した。細胞を移植し、一定期間経過後、ＩＶＩＳバイオイメージング装備（PerkinElmer、米国）を利用し、腫瘍の光学映像ＢＬＩ（bioluminescence）を測定し、移植後７日目、ＢＬＩ値が平均値を有するように個体を選別した。選別された動物は、下記表１１のように、試験群別に区分した。
陰性対照群Ｇ１ビヒクル群は、５％アルブミン：デキストラン注＝１：１の比率で製造し、１匹当たり２００μｌずつ静脈投与した。試験群Ｇ２ ＮＫ細胞群は、ナチュラルキラー細胞１ｘ１０６細胞を１匹当たり静脈投与し、１週２回投与で、総６回投与を進めた。モニタリング期間の間、週２回、ＩＶＩＳバイオイメージング装備（PerkinElmer、米国）を利用し、腫瘍体積を測定した。腫瘍体積測定のために、１５０ｍｇ／ｋｇ用量のルシフェリン（luciferin）（Promega）を１０ｍＬ／ｋｇで腹腔投与し、１０分後、投与した各個体に対し、順次に吸入麻酔機を利用して麻酔を施した。麻酔が完全に施された個体に対し、順次にＩＶＩＳ装備を利用し、腫瘍の光学映像（ＢＬＩ）を測定し、測定された関心領域（ＲＯＩ:region of interest）の光学映像値は、委託研究機関である（株）ＷＯＯＪＵＮＧバイオ（京畿道、大韓民国）の内部基準に準ずる閾値（threshold）に準して分析した。前述の結果は、下記表１２及び図１３に示した。
図１３は、一具体例によるナチュラルキラー細胞を胃癌動物モデルに投与した後、腫瘍重量の低減を観察したグラフである。
前掲の表１２及び図１３に示されているように、陰性対照群（Ｇ１）は、投与後１６日目までの腫瘍体積の変動が、４．２８．Ｅ＋０８ｐ／ｓｅｃ／ｃｍ２／ｓｒから１．０９．Ｅ＋１０ｐ／ｓｅｃ／ｃｍ２／ｓｒと、実験期間の間、持続的に増大することが観察された。それに対し、一具体例によるナチュラルキラー細胞を投与したとき、３．１９．Ｅ＋０８ｐ／ｓｅｃ／ｃｍ２／ｓｒから１．７８．Ｅ＋０９ｐ／ｓｅｃ／ｃｍ２／ｓｒと、実験期間の間、ほとんど微々たる増大をなし、１６日目基準で、陰性対照群対比の約５倍以上腫瘍重量に違いがあることが分かった。それは、一具体例によるナチュラルキラー細胞が、膠芽腫において、高い腫瘍成長の抑制効果を有するということを意味する。
Claims (15)
- 下記（ａ）ないし下記（ｅ）のうちから選択される１以上の特性を有する分離された、ナチュラルキラー細胞：
（ａ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＮＫＧ２Ｄの相対的ＭＦＩ値が、１．２倍ないし１２倍増大したこと、
（ｂ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＮＫｐ３０の相対的ＭＦＩ値が、１．５倍ないし１５倍増大したこと、
（ｃ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＮＫｐ４４の相対的ＭＦＩ値が、１２倍ないし２２倍増大したこと、
（ｄ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＩＴＧＡ１の相対的ＭＦＩ値が、１．８倍ないし２５倍増大したこと、及び
（ｅ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、ＩＴＧＡ２の相対的ＭＦＩ値が、１．４倍ないし６倍増大し、
前記相対的ＭＦＩは、下記数式１によって定義される：
- 前記（ａ）の相対的ＭＦＩ値が、３倍ないし６倍増大したこと、
前記（ｂ）の相対的ＭＦＩ値が、３倍ないし６倍増大したこと、
前記（ｃ）の相対的ＭＦＩ値が、１２倍ないし１８倍増大したこと、
前記（ｄ）の相対的ＭＦＩ値が、６倍ないし１０倍増大したこと、及び
前記（ｅ）の相対的ＭＦＩ値が、２倍ないし４倍増大した、請求項１に記載のナチュラルキラー細胞。 - １０ないし１４０のＭＦＩ値のＣＤ１６、２０ないし１６０のＭＦＩ値のＬＦＡ－１、５ないし２５のＭＦＩ値のＮＫＧ２Ｄ、５ないし２０のＭＦＩ値のＮＫｐ３０、１２ないし２５のＭＦＩ値のＮＫｐ４４、４ないし２５のＭＦＩ値のＩＴＧＡ１、及び２ないし１０のＭＦＩ値のＩＴＧＡ２のうちから選択される１以上の特性を有する、請求項１に記載のナチュラルキラー細胞。
- ２０ないし１８０のＭＦＩ値のＣＤ２、０．１ないし１．５のＭＦＩ値のＣＤ２７、１ないし１０のＭＦＩ値のＣＤ６９、２ないし１２のＭＦＩ値のＣＤ２２６、２ないし８のＭＦＩ値のＮＫｐ４６、０．１ないし４のＭＦＩ値のＣＤ１６０、０．１ないし４のＭＦＩ値のＫＩＲ２ＤＬ１、０．１ないし５のＭＦＩ値のＫＲ２ＤＬ３、０．１ないし４のＭＦＩ値のＫＩＲ３ＤＬ１、０．４ないし１６のＭＦＩ値のＮＫＧ２Ａ、０．２ないし１２のＭＦＩ値のＣＤ１６１、０．３ないし３のＭＦＩ値のＣＣＲ３、０．５ないし４のＭＦＩ値のＣＣＲ５、０．８ないし６のＭＦＩ値のＣＣＲ６、０．４ないし５のＭＦＩ値のＣＸＣＲ３、０．４ないし５のＭＦＩ値のＣＸＣＲ１、０．１ないし３のＭＦＩ値のＣＸＣＲ２及び１ないし１６のＭＦＩ値のＩＴＧＢ７のうちから選択される１以上の特性をさらに有する、請求項１に記載のナチュラルキラー細胞。
- 下記（ｆ）の特性をさらに有する、請求項１に記載のナチュラルキラー細胞：
（ｆ）ＰＢＭＣの培養０日目対比で、培養１４日目に、ＫＩＲ２ＤＳ４遺伝子の発現量が、１０倍ないし５０倍である。 - ＫＩＲ２ＤＳ１＋、ＫＩＲ２ＤＳ２＋、ＫＩＲ２ＤＳ３＋、ＫＩＲＤＳ４＋、ＣＸＣＲ１＋、ＣＸＣＲ２＋、ＣＸＣＲ３＋、ＣＣＲ３＋、ＣＣＲ５＋、ＣＣＲ６＋、ＰＳＡ－ＮＣＡＭ＋、ネスチン＋、チロシンヒドロキシラーゼ＋、ＣＤ１４７＋、ＣＤ１２７＋、ＣＤ１５＋、ＣＤ３１＋、ＣＤ１４６＋、ＣＤ４９ｃ＋、ＣＤ１０７ａ＋、ＮＫＧ２Ａ＋、ＣＤ４５＋、ＣＤ４４－、ＣＤ１４０ａ＋、ＣＤ８７－、ＣＤ１１ｂ＋、ＣＤ１０－及びＣＤ８０－のうちから選択されたいずれか１つの特性を有する、請求項１に記載のナチュラルキラー細胞。
- 前記ナチュラルキラー細胞は、細胞集団の５０％ないし９０％がＮＫｐ４４を発現するか、細胞集団の５０％ないし９０％がＫＩＲ２ＤＳ２を発現するか、あるいは細胞集団の６０ないし１００％がＮＫＧ２Ｄを発現する、請求項１に記載のナチュラルキラー細胞。
- 前記ナチュラルキラー細胞は、ＰＢＭＣからの培養時、ＰＤＧＦ－ＡＡ、ＰＤＧＦ－ＢＢ、ＰＤＧＦ－ＣＣ、ＰＤＧＦ－ＤＤまたはＰＤＧＦ－ＡＢで処理された、請求項１に記載のナチュラルキラー細胞。
- 請求項１ないし８のうちいずれか１項に記載のナチュラルキラー細胞またはその細胞集団を、有効成分として含む、癌予防用または治療用の薬学的組成物。
- 前記ナチュラルキラー細胞は、免疫活性、血管脳障壁透過、細胞移動促進または自己寛容を抑制する、請求項９に記載の薬学的組成物。
- 前記癌は、肺癌、喉頭癌、胃癌、大腸癌、直腸癌、肝臓癌、胆嚢癌、膵臓癌、乳癌、卵巣癌、子宮癌、子宮頸部癌、前立腺癌、腎臓癌、皮膚癌、骨癌、筋肉癌、脂肪癌、纎維細胞癌、血液癌、白血病、リンパ腫、多発性骨髄腫及び神経膠腫からなる群のうちから選択された１種以上である、請求項９に記載の薬学的組成物。
- 前記神経膠腫は、星細胞腫、乏突起膠細胞腫、混合神経膠腫または上衣細胞種である、請求項１１に記載の薬学的組成物。
- 前記星細胞腫は、膠芽腫、抗癌剤耐性膠芽腫または再発性膠芽腫である、請求項１２に記載の薬学的組成物。
- 前記癌は、ＭＩＣＡ（ＭＨＣ class I polypeptide-related sequence Ａ）またはＰＤＦＧ－ＤＤ（platelet-derived growth factor－ＤＤ）を分泌するか、あるいは発現する、請求項９に記載の薬学的組成物。
- 請求項１ないし８のうちいずれか１項に記載のナチュラルキラー細胞またはその集団の有効量を、それを必要とする個体に投与する段階を含む癌を治療する方法。
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