JP2022514689A - 補体因子ｉおよび補体因子ｉ補因子、それらをコードするベクターおよび治療的使用 - Google Patents

Abstract

治療において同時に、個別にまたは順次使用するための組み合わせ調製物として、（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、またはそれをコードするヌクレオチド配列を含む生成物。【選択図】なし

Description

本発明は、遺伝子治療で使用するための剤に関する。特に、本発明は、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）および補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）などのＣＦＩ補因子の組み合わせ、それらをコードするポリヌクレオチド、ならびに補体介在性のおよび補体関連の障害（加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）などの、補体介在性眼疾患を含む）の治療または予防におけるそれらの使用に関する。

黄斑は、眼の網膜中の小さい領域であり、サイズが約３～５ミリメートルであり、視神経に隣接している。これは網膜の最も敏感な領域であり、高い視力を可能にするくぼんだ領域である中心窩を含み、および色覚を担う光受容体である錐体の密集域を含む。

加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）は、先進国における５０歳以上の人の機能的失明の最も一般的な原因である（Ｓｅｄｄｏｎ，Ｊ．Ｍ．，Ｅｐｉｄｅｍｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ａｇｅ－ｒｅｌａｔｅｄ ｍａｃｕｌａｒ ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ．Ｉｎ：Ｏｇｄｅｎ，Ｔ．Ｅら、編、Ｒｙａｎ Ｓ．Ｊ．，ｅｄ－ｉｎ－ｃｈｉｅｆ．Ｒｅｔｉｎａ Ｖｏｌ ＩＩ．第３版、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｏ．：Ｍｏｓｂｙ；２００１年：１０３９－１０５０）。ＡＭＤは、脈絡膜血管系から発生し網膜下腔中に延びる血管新生に関連する。さらに、ＡＭＤは、網膜、網膜色素上皮（ＲＰＥ）、および下にある脈絡膜（網膜と強膜の間で、ＲＰＥの下にある血管の多い組織）の進行性変性を特徴とする。

酸化ストレス、自己免疫成分の可能性を有する炎症、遺伝的背景（突然変異など）、喫煙および食事などの環境的要因または行動的要因を含む様々な要因が、ＡＭＤの病因に関与し得る。

ＡＭＤの臨床的進行は、黄斑の変化に応じた段階で特徴づけられる。初期のＡＭＤの特徴は、ドルーゼンの出現であり、ドルーゼンは、網膜の下の細胞外破片の蓄積であり、臨床検査中および眼底写真で網膜に黄色い斑点として現れる。ドルーゼンは、サイズにより小（＜６３μｍ）、中（６３～１２４μｍ）、および大（＞１２４μｍ）に分類される。それらはまた、眼科検査でのそれらの縁の外観に応じて、ハードまたはソフトと見なされる。ハードドルーゼンは明確に画定された縁を有するが、ソフトドルーゼンはそれほど画定されていない流動的な縁を有する。加齢性眼疾患研究（ＡＲＥＤＳ）眼底写真の重症度スケールは、この状態に対して使用される主要な分類システムの１つである。

中等度のＡＭＤは、大きいドルーゼンおよび／または任意の網膜色素の異常により診断される。中等度のＡＭＤは、若干の視力の喪失を引き起こし得るが、初期ＡＭＤと同様に、通常は無症候性である。

後期ＡＭＤは、「乾性」および「湿性」（滲出性または新生血管）の形態に分類されている。乾性ＡＭＤは湿性ＡＭＤよりも一般的であるが、乾性型は湿性型に進行する可能性があり、この２つはかなりの数の場合において同時に発生する。乾性ＡＭＤは典型的には、ＲＰＥ層中の細胞とその上にある光受容体細胞、および多くの場合脈絡膜毛細血管層の基礎となる細胞の進行性アポトーシスを特徴とする。重なる光受容体萎縮を伴うＲＰＥ細胞死のコンフルエント領域は、地図状萎縮（ＧＡ）と呼ばれる。このＡＭＤ形態（進行形乾燥形態）を有する患者は、中心視力の緩慢で進行性の悪化を経験する。

湿性ＡＭＤは、ＲＰＥおよび黄斑の下の脈絡膜血管（脈絡毛細管板）から成長した異常な血管からの出血および／または体液の漏出を特徴とし、それは、突然の視力喪失の原因であり得る。患者が経験する視力喪失の多くは、そのような脈絡膜血管新生（ＣＮＶ）およびその二次的合併症によるものと推定されている。新生血管ＡＭＤのサブタイプは、網膜血管腫状増殖（ＲＡＰ）と呼ばれる。ここで、血管腫状増殖は網膜から始まり、網膜下腔中に後方に広がり、最終的に場合によっては脈絡膜の新しい血管と連通する。

補体系（ＣＳ）は、ＡＭＤ患者の眼からのドルーゼン中のＣＳ成分の同定に基づき、初期のＡＭＤ病因に関与している。ＡＭＤでは、様々なアポリポタンパク質タイプ（Ｅ、Ｂ、またはＡーＩ）、いくつかのアミロイドペプチド（Ｐ、Ａβ、またはＳＡ－１）、ＴＩＭＰ－３、血清アルブミン、および細胞機能に関連する特定のタンパク質（例えば、ＡＴＰシンターゼβサブユニット、スカベンジャー受容体Ｂ２、およびレチノールデヒドロゲナーゼ）を含む、少なくとも１２９種類のドルーゼン沈着タンパク質が同定されている。ＡＭＤ由来ドルーゼンは、調節タンパク質（ＣＦＨ、補体受容体１（ＣＲ１）、ビトロネクチン、およびクラステリン）、ＣＳの活性化および分解の産物（Ｃ１ｑ、Ｃ３、Ｃ３ａ、Ｃ３ｂ、およびＣ５ａ）、および分離された複雑な形態のＭＡＣ成分（すなわち、５、６、８（α、βおよびγ）および９）を含む末端ＣＳ経路のメンバーを含む、ほぼすべての補体タンパク質も含む。蓄積するドルーゼンは、ＣＳを活性化し、炎症性メディエーターの局所的産生を引き起こし、白血球を引き付け、それが今度はＡＭＤに存在する局所的な炎症状態を増強し得る。

ＡＭＤの現在の治療オプションとしては、ベンゾポルフィリンによる光線力学療法（Ａｒｃｈ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ（１９９９年）１１７：１３２９－１３４５）および血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）経路を標的とする複数の治療法が挙げられる。このようなＶＥＧＦ標的療法の例としては、ラニビズマブ（Ｌｕｃｅｎｔｉｓ（商標）として販売（Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ，Ｉｎｃ））、およびベバシズマブ（Ａｖａｓｔｉｎ（商標）、Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ，Ｉｎｃ、およびアフリベルセプト（Ｅｙｌｅａ（商標）、Ｂａｙｅｒ）などの抗体が挙げられる。しかし、これらの抗ＶＥＧＦ抗体療法は非常に効果的であるが、それらはＡＭＤの湿性または新生血管型の治療のためにのみ承認されており、これは全ＡＭＤ患者の約１０～１５％を占める。抗体療法は、手術室またはクリーンルームで月に１回硝子体内注射により投与され、これは、典型的には高齢者である患者に負担をかける。

現在、ＡＭＤの初期段階または進行（乾性）形態に対する承認された治療法はない。

補体系は、多くの炎症性疾患の治療のための十分に裏付けられた標的である。過剰に反応するまたは不適切に機能する補体系は、ＡＭＤを含む多くの慢性炎症状態の病状に関与している（Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ（２０１５年）１４：８５７－８７７）。結果として、いくつかの補体標的治療法が提唱されている、または現在開発中であり、それらはＣ３ｂフィードバックを減少させるかまたはＣ３ｂ分解を増加させる手段として代替経路増幅ループ／Ｃ３ｂフィードバックサイクルを標的とする（図１）。

ランパリズマブ（Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ／Ｒｏｃｈｅ）は、補体因子Ｄを阻害するヒト化モノクローナル抗体であり、月に１回硝子体内注射により投与されて地図状萎縮の進行速度を停止させる。ランパリズマブは、第２相臨床試験において地図状萎縮の拡大率の若干の低下を示した。しかし、９０６名の参加者が参加した第ＩＩＩ相ランダム化臨床試験では、ランパリズマブは、４８週間にわたる疑似と比較した場合、ＧＡの拡大を減少させることができなかった。結果は、年間平均約２ｍｍ^２での、ＧＡの実質的でかつ一貫した拡大を示した。

しかし、補体介在性または補体関連疾患、特にＡＭＤなどの眼疾患、特に幅広いＡＭＤ集団において有効であり、かつＡＭＤおよび他の補体関連障害に対して個人の素因となり得る特定の遺伝子型に限定されない、治療のための代替的療法の必要性が依然としてある。

出願人は、過剰活性な補体Ｃ３ｂフィードバックサイクルの回復またはリバランスのために患者に送達するための補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、ＣＦＩ補因子（補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）、補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、補体受容体１型（ＣＲ１）および膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）などの、Ｃ３ｂのＣＦＩ介在性切断において補因子活性を有するタンパク質）の治療的組み合わせを同定した。これらの組み合わせは、補因子がＣＦＩに対し化学量論的に過剰に提供されることを確実にするモル比でＣＦＩおよびＣＦＩ補因子を提供して、Ｃ３ｂ分解（および過剰活性補体系のダウンレギュレーション）におけるＣＦＩの最大活性を保証する。これは、特定の補体系タンパク質に遺伝的欠陥を有し得る患者にとって、および／または補因子レベルが全身レベル、例えば、眼または腎臓中と比較して低下され得る組織または器官に投与される治療にとって重要である。

さらに、出願人は、患者へのＣＦＩおよびＣＦＩ補因子（例えば、ＦＨＬ１）の両方の送達および共発現に使用できる、バイシストロン性ベクターを提供した。特に、出願人は、良好な力価で産生されかつＣＦＩおよび補因子の両方をコードするヌクレオチド配列を含む機能的ＡＡＶベクターを首尾よく設計し、したがって、ＡＡＶの限られた能力によりもたらされる課題を克服した。本発明のバイシストロン性ベクターはまた有利に、ＣＦＩおよび補因子の両方の良好な発現、ならびに本明細書において有益であると特定された比率でのＣＦＩおよび補因子の共発現を可能にする。

一態様では、本発明は、治療において同時に、個別にまたは順次に使用するための組み合わせ調製物として、（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列、を含む生成物を提供する。

別の態様では、本発明は、治療において同時に、個別にまたは順次に使用するための組み合わせ調製物として、（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列、を含む生成物を提供する。

特定の実施形態では、生成物は、補体介在性障害、特に慢性炎症状態、さらにより具体的には、補体Ｃ３ｂフィードバックサイクルの過活動に関連するもの、の治療に使用される。

別の態様では、本発明は、補体介在性障害、好ましくは眼の補体介在性障害を治療するかまたは予防する際に、同時に、個別にまたは順次に使用するための組み合わせ調製物として、（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列、を含む生成物を提供する。

別の態様では、本発明は、眼の補体介在性障害を治療するかまたは予防する際に、同時に、個別にまたは順次に使用するための組み合わせ調製物として、（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列、を含む生成物を提供する。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）；補体因子Ｈ（ＣＦＨ）；補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片；および膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片からなる群から選択される。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ（ＣＦＨ）である。いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片である。いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片である。

好ましい実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）である。

好ましい実施形態では、この生成物は、（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、またはそれをコードするヌクレオチド配列を含む。他の実施形態では、生成物は、（ｉ）補体因子Ｈ（ＣＦＨ）；および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、またはそれをコードするヌクレオチド配列を含む。他の実施形態では、生成物は、（ｉ）補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片；および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列を含む。他の実施形態では、生成物は、（ｉ）膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片；および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列を含む。

いくつかの実施形態では、障害は、補体Ｃ３ｂフィードバックサイクルの過剰活性および／またはＣ３ｂ分解サイクルの低活性に関連している（図１を参照されたい）。

いくつかの実施形態では、障害は、眼の補体介在性慢性炎症状態である。

いくつかの実施形態では、障害は、加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）または糖尿病網膜症である。他の実施形態では、障害は、緑内障、シュタルガルト病、中心性漿液性脈絡網膜症または網膜色素変性症である。

好ましい実施形態では、疾患は、ＡＭＤである。いくつかの実施形態では、ＡＭＤは、乾性ＡＭＤである。

いくつかの実施形態では、生成物は、少なくとも２：１、少なくとも３：１、少なくとも４：１、少なくとも５：１、少なくとも６：１、少なくとも７：１、少なくとも８：１、少なくとも９：１、少なくとも１０：１、少なくとも１５：１、少なくとも２０：１、少なくとも２５：１、少なくとも３０：１、少なくとも４０：１、少なくとも５０：１または少なくとも６０：１の（ｉ）対（ｉｉ）のモル比で、対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する。

いくつかの実施形態では、生成物は、少なくとも２：１の（ｉ）：（ｉｉ）のモル比で、対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する。いくつかの実施形態では、生成物は、少なくとも３：１の（ｉ）：（ｉｉ）のモル比で、対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する。好ましい実施形態では、生成物は、少なくとも８：１の（ｉ）：（ｉｉ）のモル比で、対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する。

いくつかの実施形態では、２：１～３４：１、２：１～２５：１、２：１～１５：１、２：１～１２：１、３：１～１０：１の（ｉ）：（ｉｉ）のモル比で、対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する。

好ましい実施形態では、生成物は、３：１～１０：１の（ｉ）：（ｉｉ）のモル比で、対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する。

提供されるモル比は、例えば、タンパク質、ポリヌクレオチド、またはベクターを対象に送達することにより達成できる。タンパク質レベルは、例えば本明細書に記載されるように、ＥＬＩＳＡなどの、当技術分野において公知である技術を使用して当業者により容易に測定され得る。同様に、ポリヌクレオチドまたはそれをコードするベクターから発現されるタンパク質の量は、同様のアプローチを使用して測定できる。

別の態様では、本発明は、（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）をコードするヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチドを提供する。

別の態様では、本発明は、（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）および補体因子Ｉ（ＣＦＩ）をコードするヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチドを提供する。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）；補体因子Ｈ（ＣＦＨ）；補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片；および膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片からなる群から選択される。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ（ＣＦＨ）である。いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片である。いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片である。

好ましい実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）である。

好ましい実施形態では、ポリヌクレオチドは、（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）をコードするヌクレオチド配列を含む。他の実施形態では、ポリヌクレオチドは、（ｉ）補体因子Ｈ（ＣＦＨ）；および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）をコードするヌクレオチド配列を含む。他の実施形態では、ポリヌクレオチドは、（ｉ）補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）をコードするヌクレオチド配列を含む。他の実施形態では、ポリヌクレオチドは、（ｉ）膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）をコードするヌクレオチド配列を含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、ＣＭＶプロモーターをコードするヌクレオチド配列をさらに含む。好ましくは、ＣＭＶプロモーターは、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の上流にある。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、ＷＰＲＥ調節エレメントをコードするヌクレオチド配列をさらに含む。好ましくは、ＷＰＲＥ調節エレメントは、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の下流にある。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、ポリＡシグナルをコードするヌクレオチド配列をさらに含む。好ましくは、ポリＡシグナルは、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の下流にある。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、ウシ成長ホルモンポリＡシグナルをコードするヌクレオチド配列をさらに含む。好ましくは、ウシ成長ホルモンポリＡシグナルは、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の下流にある。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、以下をコードするヌクレオチド配列をさらに含む：
（ａ）ＣＭＶプロモーターであって、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の上流にある、ＣＭＶプロモーター、ならびに
（ｂ）ウシ成長ホルモンポリＡシグナルであって、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の下流にある、ウシ成長ホルモンポリＡシグナル。

他の実施形態では、ポリヌクレオチドは、以下をコードするヌクレオチド配列をさらに含む：
（ａ）ＣＭＶプロモーターであって、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の上流にある、ＣＭＶプロモーター、ならびに
（ｂ）ＷＰＲＥ調節エレメントであって、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の下流にある、ＷＰＲＥ調節エレメント、ならびに
（ｃ）ウシ成長ホルモンポリＡシグナルであって、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の下流にある、ウシ成長ホルモンポリＡシグナル。

好ましい実施形態では、ＷＰＲＥ調節エレメントは、ＷＰＲＥ３調節エレメントである。

好ましい実施形態では、（ｉ）をコードするヌクレオチド配列は、（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の上流である。

他の実施形態では、（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列は、（ｉ）をコードするヌクレオチド配列の上流である。

いくつかの実施形態では、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列は、リンカーによって作動可能に連結される。いくつかの実施形態では、リンカーは、フューリン、ＧＳＧ、１ａａ１ＤまたはＦ２Ａリンカーである。好ましい実施形態では、リンカーは、自己切断２Ａペプチド配列、例えば、Ｐ２Ａ、またはフューリン切断部位、ＧＳＧ、１１ａ１Ｄ、およびＦ２Ａ配列を含むかまたはそれらにより画定される配列を含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、１つ以上のアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）逆方向末端反復（ＩＴＲ）をさらに含む。好ましい実施形態では、ポリヌクレオチドは２つのＡＡＶ ＩＴＲをさらに含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、その５’末端にＡＡＶ ＩＴＲおよびその３’末端にＡＡＶ ＩＴＲを含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、
（ａ）５’ＡＡＶ ＩＴＲ；
（ｂ）ＣＭＶプロモーター；
（ｃ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、好ましくは、ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列；
（ｄ）リンカーであって、任意により、フューリン切断部位、ＧＳＧ、１１ａ１ＤおよびＦ２Ａ配列を含む、リンカー；
（ｅ）ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列；
（ｆ）ポリ－Ａシグナル、好ましくは、ウシ成長ホルモンポリ－Ａシグナル；および
（ｇ）３’ＡＡＶ ＩＴＲ
を含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、
（ａ）５’ＡＡＶ ＩＴＲ；
（ｂ）ＣＭＶプロモーター；
（ｃ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、好ましくは、ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列；
（ｄ）リンカーであって、任意により、フューリン切断部位、ＧＳＧ、１１ａ１ＤおよびＦ２Ａ配列を含む、リンカー；
（ｅ）ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列；
（ｆ）ＷＰＲＥ調節エレメント、好ましくは、ＷＰＲＥ３調節エレメントである、ＷＰＲＥ調節エレメント；
（ｇ）ポリ－Ａシグナル、好ましくは、ウシ成長ホルモンポリ－Ａシグナル；および
（ｈ）３’ＡＡＶ ＩＴＲ
を含む。

好ましい実施形態では、ポリヌクレオチドは、
（ａ）５’ＡＡＶ ＩＴＲ；
（ｂ）ＣＭＶプロモーター；
（ｃ）ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列；
（ｄ）フューリン切断部位、ＧＳＧ、１１ａ１ＤおよびＦ２Ａ配列を含むリンカー；
（ｅ）ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列；
（ｆ）ＷＰＲＥ３調節エレメント；
（ｇ）ポリ－Ａシグナル、好ましくは、ウシ成長ホルモンポリ－Ａシグナル；および
（ｈ）３’ＡＡＶ ＩＴＲ
を含む。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）；補体因子Ｈ（ＣＦＨ）；補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片；および膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片からなる群から選択される。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ （ＣＦＨ）である。いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片である。いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片である。

好ましい実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）である。

いくつかの実施形態では、ＡＡＶ ＩＴＲは、ＡＡＶ２またはＡＡＶ８ ＩＴＲである。好ましい実施形態では、ＡＡＶ ＩＴＲは、ＡＡＶ２ ＩＴＲである。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子（ＦＨＬ１またはＣＦＨなど）をコードするヌクレオチド配列は、最適化されたコドンである。いくつかの実施形態では、ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列は、最適化されたコドンである。好ましい実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子（ＦＨＬ１またはＣＦＨなど）をコードするヌクレオチド配列は、最適化されたコドンである。

いくつかの実施形態では、ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号１２に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有する。

好ましい実施形態では、ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号１２である。

いくつかの実施形態では、ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１０に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有する。

好ましい実施形態では、ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１０である。

好ましい実施形態では、ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号１２であり、ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１０である。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号２２のヌクレオチド配列、または配列番号２２に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号２３のヌクレオチド配列、または配列番号２３に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、ポリヌクレオチドは、５．２、５．１、５．０、４．９、４．８、または４．７ｋｂ以下である。好ましい実施形態では、ポリヌクレオチドは、４．７ｋｂ以下である。

別の態様では、本発明は、本発明のポリヌクレオチドを含むベクターを提供する。

いくつかの実施形態では、ベクターは、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）、レトロウイルス、レンチウイルス、またはアデノウイルスベクターである。

好ましい実施形態では、ベクターは、ＡＡＶベクターである。

いくつかの実施形態では、ベクターは、ウイルスベクター粒子の形態である。

いくつかの実施形態では、ＡＡＶベクターは、ＡＡＶ２またはＡＡＶ８ゲノムを含む。

いくつかの実施形態では、ＡＡＶベクター粒子は、ＡＡＶ２またはＡＡＶ８キャプシドタンパク質を含む。

いくつかの実施形態では、ＡＡＶベクター粒子は、ＡＡＶ２ゲノムおよびＡＡＶ２キャプシドタンパク質（ＡＡＶ２／２）を含む。他の実施形態では、ＡＡＶベクター粒子は、ＡＡＶ２ゲノムおよびＡＡＶ８キャプシドタンパク質（ＡＡＶ２／８）を含む。他の実施形態では、ＡＡＶベクター粒子は、ＡＡＶ８ゲノムおよびＡＡＶ８キャプシドタンパク質（ＡＡＶ８／８）を含む。

別の態様では、本発明は、本発明のポリヌクレオチドを含む細胞を提供する。

別の態様では、本発明は、本発明のベクターで形質導入された細胞を提供する。

別の態様では、本発明は、本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を、薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤と組み合わせて含む医薬組成物を提供する。

好ましい実施形態では、医薬組成物は、眼内投与用である。

別の態様では、本発明は、治療において使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。

別の態様では、本発明は、眼障害を治療するかまたは予防する際に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。

別の態様では、本発明は、補体介在性のまたは補体関連の障害を治療するかまたは予防する際に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。

別の態様では、本発明は、補体介在性の眼の障害を治療するかまたは予防する際に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。

別の態様では、本発明は、補体介在性のもしくは補体関連の腎障害または中枢神経系（ＣＮＳ）の補体介在性のもしくは補体関連の障害を治療するかまたは予防する際に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。

別の態様では、本発明は、補体介在性のまたは補体関連の眼の障害を治療するかまたは予防する方法であって、それを必要とする対象に本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を投与することを含む、方法を提供する。

別の態様では、本発明は、対象に（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）を提供する方法であって、対象に、好ましくは対象の眼に本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を送達することを含む、方法を提供する。

別の態様では、本発明は、対象に（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）を提供する方法であって、対象の眼に本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を送達することを含む、方法を提供する。

いくつかの実施形態では、障害は、補体Ｃ３ｂフィードバックサイクルの過剰活性および／またはＣ３ｂ分解サイクルの低活性に関連している（図１を参照されたい）。

いくつかの実施形態では、障害は、慢性補体介在性のまたは慢性補体関連の炎症状態である。

いくつかの実施形態では、障害は、眼の補体介在性慢性炎症状態である。

いくつかの実施形態では、障害は、加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）または糖尿病網膜症である。他の実施形態では、障害は、緑内障、シュタルガルト病、中心性漿液性脈絡網膜症、網膜色素変性症またはブドウ膜炎である。好ましくは、ブドウ膜炎は、後部ブドウ膜炎である。

好ましい実施形態では、疾患は、ＡＭＤである。いくつかの実施形態では、ＡＭＤは、乾性ＡＭＤである。

いくつかの実施形態では、対象は、ＡＭＤと診断されているか、ＡＭＤを得るリスクがある。

いくつかの実施形態では、使用は、以下の対象において障害を治療するかまたは予防するためのものである：
（ａ）眼および／または血清中において通常よりも低い補体因子Ｉ活性または濃度を有し、好ましくは血清中０～３０、０～２０または０～１０μｇ／ｍＬの濃度または同等の活性を有する；および／または
（ｂ）加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）関連ＳＮＰ、好ましくはまれな補体因子Ｉバリアントに対しヘテロ接合性またはホモ接合性である。

いくつかの実施形態では、使用は、以下の対象において障害を治療するかまたは予防するためのものである：
（ａ）眼および／または血清中において正常レベル、好ましくは少なくとも３０μｇ／ｍＬ、例えば血清中３０～４０μｇ／ｍＬの補体因子Ｉ活性または濃度を有する；および／または
（ｂ）まれな補体因子Ｉ変異対立遺伝子を保持していない。

別の態様では、本発明は、加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）を治療するかまたは予防する際に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。好ましい実施形態では、ＡＭＤは、乾性ＡＭＤである。

別の態様では、本発明は、糖尿病網膜症を治療するかまたは予防する際に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。

いくつかの実施形態では、地図状萎縮の形成が防止されるかもしくは低減される、かつ／または地図状萎縮の量が減少する。

いくつかの実施形態では、地図状萎縮の進行が遅くなる。

いくつかの実施形態では、同じ期間の未治療の眼と比較して、対象の治療された眼への投与後１２ヶ月間にわたって、地図状萎縮領域の増加が少なくとも１０％減少する。他の実施形態では、同じ期間の未治療の眼と比較して、対象の治療された眼への投与後１２ヶ月間にわたって、地図状萎縮領域の増加が少なくとも２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％または９０％減少する。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞の投与は、対象において、または対象の網膜色素上皮（ＲＰＥ）においてなどの、眼において、Ｃ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルを、任意により対象、またはその眼またはＲＰＥでの正常レベルを超えるレベルに、増加させる。

別の態様では、本発明は、例えば、本明細書に開示される眼障害などの、眼障害に罹患している対象において、視覚または視力の改善または回復に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。別の態様では、本発明は、視覚または視力の喪失、例えば、本明細書に開示される眼障害などの、眼障害に関連する視覚または視力の喪失の軽減に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。

別の態様では、本発明は、例えば、本明細書に開示される眼障害などの、眼障害に罹患している対象において、読み取り速度の向上または回復に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。別の態様では、本発明は、対象における読み取り速度の低下、例えば、本明細書に開示される眼障害などの、眼障害に関連する読み取り速度の低下の軽減に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。

別の態様では、本発明は、光受容体の喪失および／または網膜色素上皮（ＲＰＥ）、例えば、光受容体の喪失および／または本明細書に開示される眼障害などの、眼障害に関連するＲＰＥを低減するかまたは防止する際に使用するための本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を提供する。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞は、眼内投与される。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞は、網膜下、直接網膜、脈絡膜上または硝子体内注射により対象の眼に投与される。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞は、網膜下注射により対象の眼に投与される。

いくつかの実施形態では、本発明のポリヌクレオチドまたはベクターは、ｈＡＡＴプロモーターを含まない。いくつかの実施形態では、本発明のポリヌクレオチドまたはベクターは、ＡｐｏＲエンハンサーを含まない。他の実施形態では、本発明のポリヌクレオチドまたはベクターは、２つのＡｐｏＲエンハンサーを含まない。

いくつかの実施形態では、本発明のベクターは、ＡＡＶ２ゲノムおよびＡＡＶ８キャプシドタンパク質を含まない、すなわち、本発明のベクターは、ＡＡＶ２／８ベクターではない。

いくつかの実施形態では、本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞は、全身投与されない。他の実施形態では、本発明のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞は、静脈内投与されない。

当業者であれば、ＡＭＤの治療に関する上の説明が、過剰活性化補体系を調節する理論（過活性Ｃ３ｂフィードバックサイクルおよび／または過小活性Ｃ３ｂ分解サイクルの結果としての）に基づき、したがって（眼内投与に特に関連するテキストを除いて）この説明は、補体系が関与している他の慢性炎症状態にも同様に適用されることが理解されるであろう。そのような障害は、全身投与（例えば、末梢静脈注入を介して）、局所投与（例えば、髄腔内）、または標的組織もしくは器官（例えば、肝臓、腎臓）への直接送達による、本明細書に記載の生成物、タンパク質、ベクター、細胞および組成物の投与により治療され得る。

脊椎動物の補体の代替経路のＣ３ｂフィードバック（増幅）および分解（ダウンレギュレーション）サイクル（「Ｉ」＝補体因子Ｉ；「Ｈ」＝補体因子Ｈ；「Ｂ」＝補体因子Ｂ；および「Ｄ」＝補体因子Ｄ）。 （Ａ）Ｃ３ｂからｉＣ３ｂへの切断のＥＬＩＳＡベースの測定に基づく補因子アッセイ。ＣＦＩおよびＣ３ｂの濃度を固定し、ＣＦＨまたはＦＨＬ１を指定の比率で滴定した。（Ｂ）正常血清に補体因子Ｉ（Ｆ１）、補体因子Ｈ（ＦＨ）、または補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）の補充に基づくＬＰＳ沈着アッセイ。 ＨＥＫ２９３細胞のベクター形質導入からの上清のウエスタンブロット分析（ＲＣ００１、野生型ＦＨＬ１を含む対照ベクター；ＧＴ００５、野生型ＣＦＩを含む対照ベクター）。 ＨＥＫ２９３細胞のベクター形質導入からの上清のＥＬＩＳＡ分析（ＲＣ００１、野生型ＦＨＬ１を含む対照ベクター；ＧＴ００５、野生型ＣＦＩを含む対照ベクター）。 ベクターゲノムパッケージングのアルカリゲル分析（上部パネル）。ｑＰＣＲおよびキャプシドＥＬＩＳＡにより決定されたｆｕｌｌ／ｅｍｐｔｙウイルス粒子の比率の比較（下部パネル）（ＲＣ００１、野生型ＦＨＬ１を含む対照ベクター；ＧＴ００５、野生型ＣＦＩを含む対照ベクター）。 ウエスタンブロット分析（上部パネル）およびＥＬＩＳＡ（下部パネル）を使用したＣ３ｂ切断アッセイ（ＲＣ００１、野生型ＦＨＬ１を含む対照ベクター；ＧＴ００５、野生型ＣＦＩを含む対照ベクター）。 血漿（ｎ＝８０）および硝子体液（ｎ＝２９）における補体因子Ｉ（ＦＩ）：補体因子Ｈ（ＦＨ）比の比較。 Ｃ３沈着を測定するためのＬＰＳ沈着アッセイ。Ｆｌ＝補体因子Ｉ、ｓＣＲ１＝可溶性補体受容体１、ＦＨ＝補体因子Ｈ、ＦＨＬ１＝因子Ｈ様タンパク質１。各バーの上の数字は、血清のみと比較したＣ３沈着の減少率を示す。 Ｉｎ ｖｉｔｒｏで形質導入されたＨＥＫ－２９３細胞の上清のウエスタンブロット分析。ＵＴＣ＝非形質導入細胞、ＧＴ００５＝ＣＦＩ発現ＡＡＶ、ＧＴ００７＝ＣＦＩおよびＦＨＬ１発現ＡＡＶ、ＲＣ００１＝ＦＨＬ１発現ＡＡＶ。 コンストラクトの機能的活性を試験するための補因子アッセイのＣ３ｂウエスタンブロットおよびｉＣ３ｂＥＬＩＳＡ。（Ａ）Ｃ３ｂ補因子アッセイのウエスタンブロット。（Ｂ）Ｃ３ｂ補因子アッセイのｉＣ３ｂＥＬＩＳＡ。Ｃ３ｂ＝補体Ｃ３ｂ、ＣＦＩ＝補体因子Ｉ、ＦＨＬ１＝補体因子Ｈ様タンパク質１、ＵＴＤ＝非形質導入細胞。 脈絡膜フラットマウント（ｃｈｏｒｏｉｄａｌ ｆｌａｔｍｏｕｎｔ）のイソレクチン染色領域。イソレクチン染色領域データは、コルモゴロフ－スミルノフ検定によって評価されるとおり非正規分布であり、観察された差異の統計的有意性を、一般化線形モデル分析を使用して決定した。＊＝Ｐ＜０．０５；＊＊＊＝ｐ＜０．０００１、＊＊＊＊＝Ｐ＜０．００００１。点は個々のレーザー燃焼の結果を表し、線は平均値を表す。

本明細書で使用される「含まれている（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」および「構成されている（ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｏｆ）」という用語は、「含んでいる（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」または「含む（ｉｎｃｌｕｄｅｓ）」、または「含んでいる（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」もしくは「含む（ｃｏｎｔａｉｎｓ）」と同義であり、包括的またはオープンエンドであり、追加の、引用されていないメンバー、エレメント、またはステップを除外するものではない。「含まれている（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」および「構成されている（ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｏｆ）」という用語は、用語「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ）」も含む。
補体系

補体系は、体液性免疫系の不可欠な部分であり、組織の炎症、細胞のオプソニン作用、および細胞溶解に関与している。補体系は、微生物に対する保護を提供し、宿主組織からの外因性および内因性の細胞破片のクリアランスを仲介する。

補体系カスケードは、３つの活性化経路で構成されている。経路はすべて、最終的にはＣ３因子の中央切断と、その活性断片Ｃ３ａおよびＣ３ｂの生成で終了する。Ｃ３ａは、炎症細胞の動員および微小血管系の透過性の増加などの、様々な走化性および炎症誘発性応答を引き起こすアナフィラトキシンであり、一方でＣ３ｂは、Ｃ３ｂに共有結合した外来表面のオプソニン作用を担う。活性化されたＣ３断片（Ｃ３ｂおよびｉＣ３ｂ）によるオプソニン化は、３つの主要な機能：（ｉ）食細胞（例えば、マクロファージまたはミクログリア）による細胞破片の除去および適応免疫系（Ｂ細胞およびＴ細胞）の刺激、（ｉｉ）表面結合Ｃ３転換酵素の形成を介した補体活性化の増幅、および（ｉｉｉ）Ｃ５転換酵素の集合、を果たす。

Ｃ５転換酵素の集合は、Ｃ５切断を担い、これは、細胞膜に穿孔を生成できる細胞溶解膜侵襲複合体（ＭＡＣ）の形成をもたらし、それにより細胞溶解および不要な細胞の排除を促進する。これらの活動のすべてを通じて、自然補体カスケードは、宿主組織の完全性を保護する免疫系の下流メカニズムの機能を支持し、促進する。全体として、補体系経路の活性化は、細胞溶解を媒介するＭＡＣの生成、炎症細胞を損傷部位に引き付けるためのケモカインの放出、および浸潤性白血球の血管外遊出を促進するための毛細血管透過性の増強を含む、炎症誘発性応答をもたらす。生理学的条件下では、補体の活性化は、可溶性および膜結合型の補体調節分子（ＣＲＭ）の協調作用により効果的に制御される。Ｃ１阻害剤、アナフィラトキシン阻害剤、Ｃ４ｂ結合タンパク質（Ｃ４ＢＰ）、補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、クラステリン、およびビトロネクチンなどの可溶性補体調節因子は、カスケード反応の複数の部位で、ヒト組織における補体の作用を制限する。さらに、各々の個別の細胞は、補体受容体１（ＣＲ１、ＣＤ３５）、膜補因子タンパク質（ＣＤ４６）などの表面タンパク質、および崩壊促進因子（ＣＤ５５）またはＣＤ５９分子などのグリコシルホスファチジルイノシトールアンカータンパク質により相同補体の攻撃から保護される。注目すべきことに、補体攻撃からの保護が不十分である宿主細胞および組織は、バイスタンダー細胞溶解を受ける可能性がある。

本発明は、例えば眼の、補体介在性障害の治療または予防に関する。例えば、補体介在性障害は、代替経路調節の欠陥、特に補体Ｃ３ｂフィードバックサイクルの過剰活性および／またはＣ３ｂ分解サイクルの低活性に関連する障害であり得る。

いくつかの実施形態では、本発明の生成物、ポリヌクレオチド、ベクター、細胞または医薬組成物の投与前に、対象は、低レベル（例えば、通常レベルよりも低い）の補体因子Ｉ活性、例えば、眼における低レベルの補体因子Ｉ活性、および／または低血清レベルの補体因子Ｉ活性を有する。補体因子Ｉ活性の正常より低いレベルは、正常に機能する補体因子Ｉの正常より低い発現、または補体因子Ｉの非機能的バリアントまたは亜機能的バリアントの少なくとも部分的な（例えばヘテロ接合の）発現（正常または正常より低いレベル）に起因し得る（このような対象は、ＡＭＤ関連ＳＮＰの１つ以上のコピーを保有し得、例えば、対象は、以下でさらに説明するまれな補体因子Ｉバリアントの１つについてホモ接合またはヘテロ接合であり得る）。したがって、対象は、眼および／または血清中に低濃度（例えば、通常よりも低い濃度）の補体因子Ｉを有し得る。ヒト対象の場合、正常レベルの補体因子Ｉ活性（Ｃ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性）は、対象の血清中の３０～４０μｇ／ｍＬの補体因子Ｉにより提供されるものと同等であり得る。したがって、低活性の補体因子Ｉを有する対象では、血清中の補体因子Ｉ活性は、３０μｇ／ｍＬ未満および０μｇ／ｍＬを超える補体因子Ｉ（０～２０または０～１０μｇ／ｍＬなど）に対応し得る（これらは補体因子Ｉの血清濃度の範囲であり、それは低濃度の補体因子Ｉを有する対象を含み得る）。

したがって、本発明によって治療される対象は、ＡＭＤ、より具体的には乾性ＡＭＤなどの補体介在性の眼の障害（例えば、地図状萎縮を特徴とする）に罹患し得るか、またはそのような障害を発症するリスクがあり得る。例えば、対象は、補体介在性障害に関連する１つ以上のＳＮＰに対し感受性のあるホモ接合性またはヘテロ接合性であり得る。

いくつかの実施形態では、対象は、ＡＭＤを発症するリスクがある。例えば、対象は、ＡＭＤに関連する１つ以上のＳＮＰ、例えば、一般に血清補体因子Ｉレベルの低下をもたらす進行性ＡＭＤに関連する補体因子Ｉでのまれな突然変異に対し感受性のあるホモ接合性またはヘテロ接合性であり得る（Ｋａｖａｎａｇｈら、（２０１５年）Ｈｕｍ Ｍｏｌ Ｇｅｎｅｔ ２４：３８６１－３８７０）。特に、対象は、以下のまれな補体因子Ｉバリアントの１つ以上の１つまたは２つのコピーを保有し得る：ｒｓ１４４０８２８７２（Ｐ５０Ａをエンコード）；４：１１０６８７８４７（Ｐ６４Ｌをエンコード）；ｒｓ１４１８５３５７８（Ｇ１１９Ｒをエンコード）；４：１１０６８５７２１（Ｖ１５２Ｍをエンコード）；４：１１０６８２８４６（Ｇ１６２Ｄをエンコード）；４：１１０６８２８０１（Ｎ１７７Ｉをエンコード）；ｒｓ１４６４４４２５８（Ａ２４０Ｇをエンコード）；ｒｓ１８２０７８９２１（Ｇ２８７Ｒをエンコード）；ｒｓ４１２７８０４７（Ｋ４４１Ｒをエンコード）；およびｒｓ１２１９６４９１３（Ｒ４７４をエンコード）。

本発明は、例えば、対象が補体介在性障害に関連する１つ以上のＳＮＰに対してホモ接合性またはヘテロ接合性感受性であるかを決定することにより（例えば、対象が上記のＡＭＤに関連するまれな補体因子Ｉバリアントの１つ以上に対してホモ接合性またはヘテロ接合性感受性であるかを決定することにより）、対象が補体介在性障害（例えば、ＡＭＤ）を発症するリスクがあるかを決定することをさらに含み得る。

あるいは、対象は、例えば、眼および／または血清において、正常レベルの内因性補体因子Ｉ活性または濃度を有し得、かつ／またはまれなバリアント補体因子Ｉ対立遺伝子を保有しない場合がある。

いくつかの実施形態では、本発明の生成物、ポリヌクレオチド、ベクター、細胞または医薬組成物の投与はそれにより、対象の眼におけるＣ３ｂを不活化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルを増加させる。他の実施形態では、本発明の生成物、ポリヌクレオチド、ベクター、細胞または医薬組成物の投与はそれにより、対象の眼におけるＣ３ｂを不活化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルを、眼における正常レベルを超えるレベルに増加させる。より具体的には、Ｃ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルは、眼のＲＰＥにおいて増加する。本発明の生成物の提供および／または本発明のポリヌクレオチドまたはベクターからの、補体因子Ｈ様タンパク質１などの、補体因子ＩおよびＣＦＩ補因子の発現に続く対象におけるＣ３ｂを不活化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性は、対象の内因性補体因子Ｉ（すなわち、生成物により提供されない、またはポリヌクレオチドもしくはベクターからの発現により生成されない対象の補体因子Ｉ）からのＣ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性、および本発明の生成物により供給されるか本発明のポリヌクレオチドまたはベクターからの発現により生成されるＣ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性を含み得、これにより対象におけるＣ３ｂを不活化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性の合計レベルが正常レベルを超えることが、認識されるであろう。

いくつかの実施形態では、対象における、例えば眼におけるＣ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルは、正常レベルより少なくとも５％、１０％、１５％、２０％または２５％高いレベルに増加する。

他の実施形態では、対象における、例えば眼におけるＣ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルは、通常のレベルの最大で２倍、または通常のレベルの最大で８０％、６０％、４０％、または２０％のレベルに増加する。

例えば、対象における、例えば眼におけるＣ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルは、通常レベルの５～１００％、５～８０％、５～６０％、５～４０％、５～２０％、１０～１００％、１０～８０％、１０～６０％、１０～４０％、１０～２０％、１５～１００％、１５～８０％、１５～６０％、１５～４０％、１５～２０％、２０～１００％、２０～８０％、２０～６０％、２０～４０％、２５～１００％、２５～８０％、２５～６０％または２５～４０％であるレベルに増加され得る。

いくつかの実施形態では、本発明の生成物、ポリヌクレオチド、ベクター、細胞または医薬組成物の投与は、対象の血漿／血清中のＣ３ｂを不活化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルを検出可能に増加させない。他の実施形態では、本発明の生成物、ポリヌクレオチド、ベクター、細胞または医薬組成物の投与は、通常のレベルより高いレベルに対象の血漿／血清中のＣ３ｂを不活化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルを検出可能に増加させない。

前のセクションでは、明らかに適用できない場合を除いて、補体因子ＩおよびＣ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性への言及は、ＣＦＩ補因子、好ましくは補体因子Ｈまたは補体因子Ｈ様タンパク質１、および補体因子Ｉが媒介するＣ３ｂの切断の補因子として作用しかつＣ３転換酵素およびＣ５転換酵素の解離速度をそれぞれ増加させる能力に置き換えられ得る。いくつかの実施形態では、本発明の生成物、ポリヌクレオチド、ベクター、細胞または医薬組成物の投与前に、対象は、低レベル（例えば、通常レベルよりも低い）の補体因子Ｈ、例えば、眼において低レベルの補体因子Ｈおよび／または低血清レベルの補体因子Ｈを有する。ヒト対象の場合、補体因子Ｈの正常レベルは、対象の血清中約２００～５００μｇ／ｍＬであり得る。したがって、低レベルの補体因子Ｈを有する対象では、血清中のレベルは、２００μｇ／ｍＬ未満、０ｐｇ／ｍＬを超える場合があり、例えば、０～１００μｇ／ｍＬである。あるいは、対象は、例えば、眼および／または血清において、正常レベルの内因性補体因子Ｈを有し得る。
補体因子Ｉ（ＣＦＩ）

Ｃ３ｂ／Ｃ４ｂ不活性化因子としても公知である補体因子Ｉ（因子Ｉ、ＣＦＩ）は、ヒトではＣＦＩ遺伝子によりコードされるタンパク質である。

補体因子Ｉは、約３５μｇ／ｍＬの濃度にて、チモーゲン様状態で循環するセリンプロテアーゼである（Ｒｏｖｅｒｓｉら、（２０１１年）ＰＮＡＳ １０８：１２８３９－１２８４４）（Ｎｉｌｓｓｏｎら、（２０１１年）Ｍｏｌ Ｉｍｍｕｎｏｌ ４８：１６１１－１６２０）。補体因子Ｉタンパク質は、単一のジスルフィド結合により結合された２つのポリペプチド鎖からなる高度にＮ－グリコシル化されたヘテロダイマーである。重鎖（５０ｋＤａ）は、Ｎ末端領域；Ｆｌ膜侵襲複合体（ＦＩＭＡＣ）ドメイン；ＣＤ５様ドメインまたはスカベンジャー受容体システインリッチ（ＳＲＣＲ）ドメイン；２つの低密度リポタンパク質受容体（ＬＤＬｒ）ドメイン；および種間において配列多様性の部位である不明の機能のＣ末端領域を含む（Ｒｏｖｅｒｓｉら、（２０１１年）ＰＮＡＳ １０８：１２８３９－１２８４４）。軽鎖（３８ｋＤａ）は、保存された触媒残基を有するセリンプロテアーゼ（ＳＰ）ドメインを含む（Ｇｏｌｄｂｅｒｇｅｒら、（１９８７年）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ２６２：１００６５－１００７１）。

補体因子Ｉは、Ｃ３ｂをｉＣ３ｂ、Ｃ３ｄ、およびＣ３ｄ、ｇに切断することによりＣ３ｂを不活性化し、同様の方法でＣ４ｂをＣ４ｃおよびＣ４ｄに切断することによりＣ４ｂを不活性化する。その機能を適切に実行するために、補体因子Ｉは、Ｃ４ｂ結合タンパク質（Ｃ４ＢＰ）、補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、補体受容体１（ＣＲ１／ＣＤ３５）、および膜補因子タンパク質（ＭＣＰ／ＣＤ４６）などの補因子タンパク質の存在を必要とする（Ｄｅｇｎら、（２０１１年）Ａｍ Ｊ Ｈｕｍ Ｇｅｎｅｔ ８８：６８９－７０５）。

ｉＣ３ｂは因子Ｂと結合できず、そのため補体カスケードの増幅または代替経路を介した活性化を永続させることはできない。したがって、Ｃ３ｂがｉＣ３ｂに切断されると、代替経路の開始も末端補体カスケードの活性化も発生しない。

ｉＣ３ｂは、多形核白血球（主に好中球）、ＮＫ細胞、およびマクロファージなどの単核貪食細胞上の補体受容体３（ＣＲ３）（ＣＤ１１ｂ／ＣＤ１８）に結合し、それを活性化することにより、炎症誘発作用を提供できる。

補体因子Ｉは、補因子ＣＲ１を必要とするプロテアーゼ活性を介してｉＣ３ｂをＣ３ｄｇにプロセシングできる。Ｃ３ｄｇは、ＣＲ３に結合できない。補体受容体ＣＲ３と反応するｉＣ３ｂは、補体活性化が炎症を引き起こす主要なメカニズムであるため、ｉＣ３ｂのＣ３ｄｇへの分解は、補体誘発性炎症を軽減するために不可欠である（Ｌａｃｈｍａｎｎ（２００９年）Ａｄｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１０４：１１５－１４９）。

Ｃ３ｂのｉＣ３ｂへの切断を促進し、かつｉＣ３ｂの分解を加速させる補体因子Ｉの独自の能力は、治療効果のために送達される必要のある量に影響する、ヒト血清中の比較的低濃度と組み合わされて、特に有利な標的になる。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉポリペプチドは、Ｃ３ｂを不活性な分解産物に切断できる。例えば、補体因子Ｉポリペプチドは、Ｃ３ｂをｉＣ３ｂに切断し得る。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉポリペプチドは、ｉＣ３ｂを不活性な分解産物にプロセシングできる。例えば、補体因子Ｉポリペプチドは、ｉＣ３ｂをＣ３ｄｇにプロセシングできる。

好ましい実施形態では、補体因子Ｉポリペプチドは、Ｃ３ｂをｉＣ３ｂに切断し、ｉＣ３ｂをＣ３ｄｇにプロセシングできる。

好適には、補体因子Ｉの断片または誘導体は、天然の補体因子Ｉの少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％または１００％のＣ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性を保持し得る。

補体因子Ｉ、またはその断片または誘導体のＣ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性は、当業者に公知である任意の好適な方法を使用して決定され得る。例えば、補体因子Ｉのタンパク質分解活性の測定は、Ｈｓｉｕｎｇら（Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．（１９８２年）２０３：２９３－２９８）に記載されている。ＣＦＩ活性の溶血性および凝集性アッセイは両方とも、Ｌａｃｈｍａｎｎ ＰＪ＆Ｈｏｂａｒｔ ＭＪ（１９７８年）「Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ」（Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ第３版、ＤＭ Ｗｅｉｒ Ｂｌａｃｋｗｅｌｌｓ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ Ｃｈａｐｔｅｒ ５Ａ ｐ１７）に記載されている。タンパク質分解アッセイも含む、より詳細な説明は、Ｈａｒｒｉｓｏｎ ＲＡ（１９９６年）により、「Ｗｅｉｒ’ｓ Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ」（第５版、編；Ｈｅｒｚｅｎｂｅｒｇ Ｌｅｏｎｏｒｅ Ａ’Ｗｅｉｒ ＤＭ，Ｈｅｒｚｅｎｂｅｒｇ Ｌｅｏｎａｒｄ Ａ＆Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｃ Ｂｌａｃｋｗｅｌｌｓ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ Ｃｈａｐｔｅｒ ７５ ３６－３７）に記載されている。凝集アッセイは高感度であり、固定されたＣ３ｂをｉＣ３ｂに変換しコングルチニンとの反応性を獲得する両方の最初の（ダブル）クリップの検出のために、および固定されたｉＣ３ｂから始めコングルチニンとの反応性の喪失を探すことにより、Ｃ３ｄｇへの最終クリップを検出するために使用できる。溶血アッセイは、Ｃ３ｂからｉＣ３ｂへの変換について使用され、タンパク質分解アッセイは、すべてのクリップを検出する。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉは、ヒト補体因子Ｉである。

ヒト補体因子Ｉタンパク質の例は、ＵｎｉＰｒｏｔＫＢアクセッション番号Ｐ０５１５６を有するヒト補体因子Ｉタンパク質である。この例示的配列は、長さが５８３アミノ酸（配列番号１として開示される）であり、そのアミノ酸１～１８はシグナル配列を形成する。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉのアミノ酸配列は、配列番号１である。

他の実施形態では、補体因子Ｉのアミノ酸配列は、配列番号１の１９位～５８３位として開示される配列である。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉのアミノ酸配列は配列番号９であり、ＮＣＢＩアクセッション番号ＮＰ＿０００１９５に対応する。他の実施形態では、補体因子Ｉのアミノ酸配列は、配列番号９の１９位～５８３位として開示される配列である。

補体因子Ｉをコードする例示的野生型ヌクレオチド配列は、配列番号２として本明細書に開示される、ＮＣＢＩアクセッション番号ＮＭ＿０００２０４を有するヌクレオチド配列である。

いくつかの実施形態では、本発明で使用される補体因子Ｉのヌクレオチド配列は、コドン最適化される。異なる細胞は、それらの特定のコドンの使用法が異なる。このコドンバイアスは、細胞型における特定のｔＲＮＡの相対的な存在量のバイアスに対応する。それらが対応するｔＲＮＡの相対的な存在量と一致するように調整されるように配列中のコドンを変更することにより、発現を増加させることができる。同様に、対応するｔＲＮＡが特定の細胞型においてまれであることが公知であるコドンを意図的に選択することにより、発現を減少させることができる。したがって、追加の翻訳制御が利用可能である。

補体因子Ｉをコードする好ましいヌクレオチド配列は、配列番号１０として開示されるヌクレオチド配列である。

補体因子Ｉをコードするさらなる例示的なコドン最適化ヌクレオチド配列は、配列番号８である。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１０、８または２、好ましくは配列番号１０に対し、少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有する。好ましくは、ヌクレオチド配列によってコードされるタンパク質は、配列番号１または９によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、補体因子Ｉをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１０、８または２、好ましくは配列番号１０である。

他の実施形態では、補体因子Ｉをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１０、８または２、好ましくは配列番号１０の５５～１７５２位に対して少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有する。好ましくは、ヌクレオチド配列によってコードされるタンパク質は、配列番号１または９によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、補体因子Ｉをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１０、８または２、好ましくは配列番号１０の５５位～１７５２位である。

他の実施形態では、補体因子Ｉをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１または９に対し、少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有するアミノ酸配列をコードする。好ましくは、アミノ酸配列は、配列番号１または９によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、補体因子Ｉをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１または９のアミノ酸配列をコードする。

他の実施形態では、補体因子Ｉをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１または９の１９位～５８３位に対し、少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％の同一性を有するアミノ酸配列をコードする。好ましくは、アミノ酸配列は、配列番号１または９によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、補体因子Ｉをコードするヌクレオチド配列は、配列番号１または９の１９位～５８３位のアミノ酸配列をコードする。

本発明の利点は、補体因子Ｉを精製タンパク質の形態で調製することが特に困難であることである。したがって、本発明者らは、例えば、補体因子１をコードするヌクレオチド配列を含むＡＡＶベクターの形態で補体因子Ｉを投与することにより、例えば加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）の治療を可能にするために、補体系を調節する方法を考案した。ＡＡＶベクターは、補体因子Ｉポリペプチドのｉｎ ｓｉｔｕ翻訳を可能にするために、目的部位、例えば、眼に投与され得る。
補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子

本明細書で使用される「補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子」という用語は、Ｃ３ｂのＣＦＩ介在性切断のための補因子として作用できるタンパク質を指し得る。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）、補体因子Ｈ（ＣＦＨ）；補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片；および膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片からなる群から選択される。
いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ
（ＣＦＨ）である。いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片である。いくつかの実施形態では、補体因子Ｉ
（ＣＦＩ）補因子は、膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片である。

好ましい実施形態では、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子は、補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）である。
補体因子Ｈ（ＣＦＨ）

補体因子Ｈ（因子Ｈ、ＣＦＨ）は、補体制御タンパク質である。

補体因子Ｈは、典型的な濃度２００～３００μｇ／ｍＬでヒト血漿中に存在する、大きな（１５５ｋＤａ）可溶性糖タンパク質である（Ｈａｋｏｂｙａｎら、（２００８年）４９（５）：１９８３－９０）。補体因子Ｈの主要機能は、補体系の代替経路を調節することである。

補体因子Ｈは、補体因子１介在性Ｃ３ｂの切断のための補因子活性を提供する。補体因子Ｈはまた、Ｃ３ｂＢｂ複合体（Ｃ３転換酵素）および（Ｃ３ｂ）ＮＢｂ複合体（Ｃ５転換酵素）の解離速度を増加させ、それによって代替的補体経路の活性を低下させる。

補体因子Ｈは、２０の補体制御タンパク質（ＣＣＰ）モジュール（ショートコンセンサスリピートまたはスシドメインとも呼ばれる）で構成され、短いリンカー（３～８のアミノ酸残基）により相互に接続され、拡張ヘッドからテール様式で配置される。ＣＣＰモジュールの各々は、１～３ ２～４の配置で結合した４つのシステイン残基ジスルフィドを有する約６０のアミノ酸と、ほぼ不変のトリプトファン残基の周りに構築される疎水性コアで構成される。ＣＣＰモジュールは、１～２０の番号が付けられる（タンパク質のＮ末端から）。ＣＣＰ１～４およびＣＣＰ１９～２０はＣ３ｂと結合し、ＣＣＰ６～８およびＣＣＰ１９～２０はＧＡＧおよびシアル酸に結合する（Ｓｃｈｍｉｄｔら、（２００８年）Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ１８１：２６１０－２６１９）。

補体因子Ｈを使用した遺伝子治療は、マウスにおいて誘発されたＡＭＤ様病状を改善できることが示されている（Ｃａｓｈｍａｎら、（２０１５年）Ｊ．Ｇｅｎｅ Ｍｅｄ．１７：２２９－２４３）。マウスに網膜下に以下を同時注射した：（ｉ）ヒトＡＭＤの多くの病理学的特徴を繰り返すことが以前に示された、補体成分Ｃ３を発現するアデノウイルスベクター；および（ｉｉ）補体因子Ｈを発現するアデノウイルスベクター。補体因子Ｈの代わりにＧＦＰを受ける対照動物と比較して、補体因子Ｈを形質導入したマウスは、内皮細胞増殖の９１％の減少、およびＲＰＥ萎縮の６９％の減弱を示した。網膜電図検査は、補体因子Ｈを投与されたマウスにおいて、網膜機能の改善を示し、ロドプシンおよびＲＰＥ６５の免疫細胞化学は、そのような動物の光受容体およびＲＰＥのレスキューと一致していた。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｈポリペプチドまたはその断片または誘導体は、補体因子１介在性Ｃ３ｂの切断の補因子として作用できる。いくつかの実施形態では、補体因子Ｈポリペプチドまたはその断片または誘導体は、Ｃ３転換酵素およびＣ５転換酵素の解離速度を上げることができる。

好ましい実施形態では、補体因子Ｈポリペプチドまたはその断片または誘導体は、補体因子１介在性Ｃ３ｂの切断の補因子として作用でき、かつＣ３転換酵素およびＣ５転換酵素の解離速度を上げることができる。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｈは、ヒト補体因子Ｈである。

ヒト補体因子Ｈタンパク質の例は、ＵｎｉＰｒｏｔＫＢアクセッション番号Ｐ０８６０３を有するヒト補体因子Ｈタンパク質である。この例示的配列は、長さが１２３１アミノ酸（配列番号３として開示される）であり、そのアミノ酸１～１８は、シグナル配列を形成する。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｈのアミノ酸配列は、配列番号３である。他の実施形態では、補体因子Ｈのアミノ酸配列は、配列番号３の１９～１２３１位である。

補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列の例は、ＮＣＢＩアクセッション番号ＮＭ＿０００１８６を有するヌクレオチド配列である。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列は、配列番号４である。

いくつかの実施形態では、補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列は、配列番号４に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有する。好ましくは、ヌクレオチド配列によってコードされるタンパク質は、配列番号３によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列は、配列番号４である。

他の実施形態では、補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列は、配列番号４の５５～３６９６位に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有する。好ましくは、ヌクレオチド配列によってコードされるタンパク質は、配列番号３によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列は、配列番号４の５５～３６９６位である。

他の実施形態では、補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列は、配列番号３に対し、少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有するアミノ酸配列をコードする。好ましくは、アミノ酸配列は、配列番号３によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列は、配列番号３のアミノ酸配列をコードする。

他の実施形態では、補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列は、配列番号３の１９～１２３１位に対し、少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％の同一性を有するアミノ酸配列をコードする。好ましくは、アミノ酸配列は、配列番号３によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、補体因子Ｈをコードするヌクレオチド配列は、配列番号３の１９～１２３１位のアミノ酸配列をコードする。
補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）

補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）は、補体因子Ｈの最初の７つのＣＣＰと、それに続く４つのアミノ酸のカルボキシ末端テールを含む補体因子Ｈのスプライスバリアントである（Ｃｌａｒｋ，Ｓ．Ｊ．ら、（２０１５年）Ｊ Ｃｌｉｎ Ｍｅｄ ４：１８－３１）。

いくつかの実施形態では、ＦＨＬ１は、ヒトＦＨＬ１である。

いくつかの実施形態では、ＦＨＬ１のアミノ酸配列は、配列番号１１である。

ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列の例は、以下である。

本発明で使用されるＦＨＬ１のヌクレオチド配列は、好ましくはコドン最適化される。

ＦＨＬ１をコードする好ましいヌクレオチド配列は、配列番号１２である。

いくつかの実施形態では、ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号１２または１６、好ましくは配列番号１２に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有する。好ましくは、ヌクレオチド配列によってコードされるタンパク質は、配列番号１１によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号１２または１６であり、好ましくは配列番号１２である。
補体受容体１（ＣＲ１）

ＣＤ３５としても公知である補体受容体１（ＣＲ１）は、補体活性（ＲＣＡ）ファミリーの調節因子に属するＩ型膜結合糖タンパク質である。ＣＲ１は、赤血球、好酸球、単球、マクロファージ、Ｂ－リンパ球、ＣＤ４＋Ｔ細胞の亜集団、樹状細胞、皮膚のランゲルハンス細胞、糸球体有足細胞の原形質膜で見られ得る。

ＣＲ１は、－２００ｋＤａの単鎖糖タンパク質であり、その細胞外部分は
３０の補体制御タンパク質リピート（ＣＣＰ）または短いコンセンサスリピートを含む。非膜結合可溶型ＣＲ１（ｓＣＲ１）が、血漿中に見られる。これは、ＣＲ１の表面形態の切断による白血球からの放出により生成され得る。ＣＲ１およびｓＣＲ１の構造については、例えば、Ｌｉｕ，Ｄ．ら、（２００９年）Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ ３１：５２４－５３５に記載されている。

いくつかの実施形態では、ＣＲ１またはその断片は、ヒトＣＲ１またはその断片である。

ＣＲ１配列の例は、以下である。

ＣＲ１をコードするヌクレオチド配列の例は、以下である。

いくつかの実施形態では、ＣＲ１またはその断片は、可溶性ＣＲ１（ｓＣＲ１）である。

ＣＲ１断片は、好ましくは、ＣＦＩ介在性Ｃ３ｂの切断のための補因子として作用できる。当業者であれば、例えば本明細書に開示されるような当技術分野において公知である任意の好適な方法を使用して、そのようなＣＦＩ活性を容易に決定できるであろう。

ＣＲ１は、Ｃ３ｂの２つの既知の結合部位を含む（Ｌｉｕ，Ｄ．ら、（２００９年）Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ３１：５２４－５３５を参照されたい）。好ましい実施形態では、ＣＲ１断片は、１つまたは２つのＣ３ｂ結合部位を含む。

好ましくは、ＣＲ１の断片は、例えば、全長ＣＲ１から膜貫通ドメインおよび細胞質ドメインを除去することにより、かつ／または特定のＣＣＰを含むかまたは特定のＣＣＰからなるＣＲ１短縮型を選択することにより生成される、ＣＲ１の可溶性断片である。

ＣＲ１断片の例は、当技術分野において公知である（例えば、国際公開第２０１９１３８１３７号を参照されたい）。例えば、ＣＲ１断片は、ＣＣＰ８～１０（例えば、配列番号２４のアミノ酸４９１～６８４に対応する）および／またはＣＣＰ１５～１７（例えば、配列番号２４のアミノ酸９４１～１１３４に対応する）を含むか、またはそれらからなり得る。

いくつかの実施形態では、ＣＲ１断片は、ＣＣＰ８～１０を含む。いくつかの実施形態では、ＣＲ１断片は、ＣＣＰ１５～１７を含む。いくつかの実施形態では、ＣＲ１断片は、ＣＣＰ８～１０およびＣＣＰ１５～１７を含む。

他の実施形態では、ＣＲ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号２４に対し、少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有するアミノ酸配列をコードする。好ましくは、アミノ酸配列は、配列番号２４によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、ＣＲ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号２４のアミノ酸配列をコードする。

他の実施形態では、ＣＲ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号２４の４９１～６８４位に対し、少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％の同一性を有するアミノ酸配列をコードする。好ましくは、アミノ酸配列は、配列番号２４によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、ＣＲ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号２４の４９１～６８４位のアミノ酸配列をコードする。

他の実施形態では、ＣＲ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号２４の９４１～１１３４位に対し、少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％の同一性を有するアミノ酸配列をコードする。好ましくは、アミノ酸配列は、配列番号２４によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、ＣＲ１をコードするヌクレオチド配列は、配列番号２４の９４１～１１３４位のアミノ酸配列をコードする。
膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）

ＣＤ４６としても公知である膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）は、補体系の調節部分として機能し、ＣＦＩの補因子として作用するＩ型膜タンパク質である。

ＭＣＰの細胞外領域は、４つの短いコンセンサスリピート（ＳＣＲ）を含む。

いくつかの実施形態では、ＭＣＰまたはその断片は、ヒトＭＣＰまたはその断片である。

ＭＣＰ配列の例は、以下である。

ＭＣＰをコードするヌクレオチド配列の例は、以下である。

いくつかの実施形態では、ＭＣＰまたはその断片は可溶性ＭＣＰである。

ＭＣＰ断片は、好ましくは、ＣＦＩ介在性Ｃ３ｂの切断のための補因子として作用できる。当業者であれば、例えば本明細書に開示されるような当技術分野において公知である任意の好適な方法を使用して、そのようなＣＦＩ活性を容易に決定できるであろう。

好ましくは、ＭＣＰの断片は、例えば全長ＭＣＰ断片から膜貫通ドメインを除去することにより、かつ／または特定のＳＣＲを含むかそれらからなるＭＣＰ短縮型を選択することにより生成される、ＭＣＰの可溶性断片である。

好ましくは、ＭＣＰの断片は、例えば、全長ＭＣＰから膜貫通ドメインを除去することによって、かつ／または特定のＳＣＲを含むかまたは特定のＳＣＲからなるＭＣＰ短縮型を選択することによって生成される、ＭＣＰの可溶性断片である。いくつかの実施形態では、ＭＣＰ断片は、ＳＣＲ２および３を含む。いくつかの実施形態では、ＭＣＰ断片は、ＳＣＲ２、３および４を含む。

他の実施形態では、ＭＣＰをコードするヌクレオチド配列は、配列番号２６に対し、少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有するアミノ酸配列をコードする。好ましくは、アミノ酸配列は、配列番号２６によって表されるタンパク質の機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、ＭＣＰをコードするヌクレオチド配列は、配列番号２６のアミノ酸配列をコードする。
リンカー

好ましい実施形態では、（ｉ）をコードするヌクレオチド配列は、（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の上流である。他の実施形態では、（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列は、（ｉ）をコードするヌクレオチド配列の上流である。

いくつかの実施形態では、（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列は、リンカーによって作動可能に連結される。いくつかの実施形態では、リンカーは、フューリン切断部位、ＧＳＧ、１１ａ１ＤおよびＦ２Ａ配列を含むか、またはそれらによって画定される配列などの、自己切断２Ａペプチド配列を含む。

いくつかの実施形態では、リンカーは配列番号１７である。

他の実施形態では、リンカーは、配列番号１７に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有する。好ましくは、リンカーは、配列番号１７の機能的活性を実質的に保持する。

「作動可能に連結される」とは、個々の成分が、実質的に妨げられることなくそれらの機能を実行することを可能にする様式で一緒に連結されることを理解されたい。
生成物

本発明の生成物は、混合物中、例えば、（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、またはそれをコードするヌクレオチド配列を含む組成物（例えば、医薬組成物）であり得る。あるいは、生成物は、例えば、（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列の調製物、ならびに任意により、それを必要とする対象へ調製物を同時に、順次または個別に投与するための指示書を含むキットであり得る。

本発明の生成物は、混合物中、例えば、（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列を含む組成物（例えば、医薬組成物）であり得る。あるいは、生成物は、例えば、（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列の調製物、ならびに任意により、それを必要とする対象へ調製物を同時に、順次または個別に投与するための指示書を含むキットであり得る。
タンパク質の形質導入

細胞へのポリヌクレオチドの送達の代替として、本発明の生成物および剤は、タンパク質形質導入により細胞に送達され得る。

タンパク質の形質導入は、ベクター送達を介してよい（Ｃａｉ，Ｙ．ら、（２０１４年）Ｅｌｉｆｅ ３：ｅ０１９１１；Ｍａｅｔｚｉｇ，Ｔ．ら、（２０１２年）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．１２：３８９－４０９）。ベクター送達は、細胞に送達されるタンパク質を含むようにウイルス粒子（例えば、レンチウイルス粒子）を操作することを含む。したがって、操作されたウイルス粒子がそれらの自然のライフサイクルの一部として細胞に入るとき、粒子に含まれるタンパク質が細胞内に運ばれる。

タンパク質の形質導入は、タンパク質の送達を介してよい（Ｇａｊ，Ｔ．ら、（２０１２年）Ｎａｔ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ９：８０５－７）。タンパク質送達は、例えば、ビヒクル（例えば、リポソーム）を利用することにより、またはタンパク質自体を細胞に直接投与することによっても達成され得る。
ポリヌクレオチド

本発明のポリヌクレオチドは、ＤＮＡまたはＲＮＡ、好ましくはＤＮＡを含み得る。それらは、一本鎖または二本鎖であり得る。当業者であれば、遺伝暗号の縮重の結果として、多数の異なるポリヌクレオチドが同じポリペプチドをコードし得ることが理解されるであろう。さらに、当業者は、慣習的技術を使用して、本発明のポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチド配列に影響を及ぼさないヌクレオチド置換を行って、本発明のポリペプチドが発現される任意の特定の宿主生物のコドン使用頻度を反映させる得ることが理解されよう。

本明細書に開示される本発明のヌクレオチド配列は、例えば、バイシストロン性ベクターにおけるそれらの位置に応じて、それらの３’末端に終止コドンを含むか、または欠いてよい。したがって、本開示は、終止コドンが存在するかまたは存在しない、本明細書に開示される配列番号を包含する。

ポリヌクレオチドは、当技術分野において利用可能な任意の方法により修飾され得る。そのような修飾は、本発明のポリヌクレオチドのｉｎ ｖｉｖｏ活性の増強または寿命の延長のために実施され得る。

ＤＮＡポリヌクレオチドなどのポリヌクレオチドは、組換えにより、合成により、または当業者が利用できる任意の手段により生成され得る。それらはまた、標準的手法によりクローン化されてよい。

より長いポリヌクレオチドは一般に、組換え手段を使用して、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）クローニング技術を使用して生成されるであろう。これは、クローン化が望まれる標的配列に隣接するプライマーの対（例えば、約１５～３０ヌクレオチド）を作成すること、プライマーを動物またはヒト細胞から得られたｍＲＮＡまたはｃＤＮＡと接触させること、所望の領域の増幅をもたらす条件下でポリメラーゼ連鎖反応を行うこと、増幅断片を単離すること（例えば、反応混合物をアガロースゲルで精製することにより）、および増幅ＤＮＡを回収することを伴う。プライマーは、増幅されたＤＮＡが好適なベクターにクローン化され得るように、好適な制限酵素認識部位を含むように設計され得る。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号２２のヌクレオチド配列、または配列番号２２に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含むか、またはそれらからなる。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号２３のヌクレオチド配列、または配列番号２３に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含むか、またはそれらからなる。

眼の構造

本明細書に開示される薬剤は、加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）などの眼疾患の治療または予防に関連して、哺乳動物、好ましくはヒトの眼に送達され得る。

眼の疾患の治療における当業者であれば、眼の構造を詳細にかつ完全に理解するであろう。しかし、本発明に特に関連する以下の構造を記載する。
網膜

網膜は多層膜であり、それは眼の後眼房の内側を覆い、視神経を介して脳に伝達される視覚世界の画像を感知する。眼の内側から外側に向かう順に、網膜は、神経感覚網膜および網膜色素上皮の層を含み、脈絡膜は、網膜色素上皮の外側にある。
神経感覚網膜および光受容体細胞

神経感覚網膜は、光を直接感知する光受容体細胞を保持する。神経感覚網膜は、次の層を含む：内境界膜（ＩＬＭ）；神経線維層；神経節細胞層；内網状層；内顆粒層；外網状層；外顆粒層（光受容体の核）；外境界膜（ＥＬＭ）；および光受容体（桿体および錐体の内側および外側のセグメント）。

当業者は、光受容体細胞の詳細な理解を有するであろう。簡潔に言えば、光受容体細胞は、光を生物学的信号に変換する網膜内に位置する特殊なニューロンである。

光受容体細胞は、桿体細胞および錐体細胞を含み、網膜全体に異なって分布する。

桿体細胞は、主に網膜の外側に分布する。それらの細胞は非常に感度が高く、低い光レベルで視力を提供する。正常なヒト網膜には、平均して約１億２５００万個の桿体細胞が存在する。

錐体細胞は網膜全体に見られるが、中心窩、すなわち中心の高解像度視力を担う神経感覚網膜のくぼみに特に集中している。錐体細胞は、桿体細胞よりも感度が低い。正常なヒト網膜には、平均して６００～７００万個の錐体細胞が存在する。
網膜色素上皮
網膜色素上皮（ＲＰＥ）は、神経感覚網膜のすぐ外側に位置する細胞の色素層である。ＲＰＥは、光受容体細胞への栄養素および他の物質の輸送、および視力を改善するための散乱光の吸収を含む、複数の機能を実行する。
脈絡膜

脈絡膜は、ＲＰＥと眼の外強膜の間にある血管層である。脈絡膜の血管系は、網膜への酸素および栄養素の供給を可能にする。
加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）

加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）の臨床的進行は、黄斑の変化に応じた段階で特徴づけられる。初期のＡＭＤの特徴は、ドルーゼンの出現であり、ドルーゼンは、網膜の下の細胞外破片の蓄積であり、臨床検査中におよび眼底写真で網膜における黄色い斑点として現れる。ドルーゼンは、サイズによって小（＜６３μｍ）、中（６３～１２４μｍ）、および大（＞１２４μｍ）に分類される。それらはまた、眼科検査でのそれらの縁の外観に応じて、ハードまたはソフトと見なされる。ハードドルーゼンは明確に定義された縁を有するが、ソフトドルーゼンにはそれほど定義されていない流動的な縁を有する。加齢性眼疾患研究（ＡＲＥＤＳ）眼底写真の重症度スケールは、この状態に使用される主要な分類システムの１つである。

ＡＭＤは、「乾性」および「湿性」（滲出性または新生血管）の形態に分類される。乾性ＡＭＤは湿性ＡＭＤよりも一般的であるが、乾性型は湿性型に進行する可能性があり、２つはかなりの数の場合に同時に発生する。乾性ＡＭＤは典型的には、ＲＰＥ層中の細胞、その上にある光受容体細胞、および多くの場合脈絡膜毛細血管層の基礎となる細胞の進行性アポトーシスを特徴とする。重なる光受容体萎縮を伴うＲＰＥ細胞死のコンフルエント領域は、地図状萎縮（ＧＡ）と呼ばれる。このＡＭＤ形態の患者は、中心視力においてゆっくりとした進行性の悪化を経験する。

湿性ＡＭＤは、ＲＰＥおよび黄斑の下の脈絡膜血管（脈絡毛細管板）から成長した異常な血管からの出血および／または体液の漏出を特徴とし、これらは、突然の視力喪失の原因であり得る。患者が経験する視力喪失の多くは、そのような脈絡膜血管新生（ＣＮＶ）およびその二次的合併症によるものと推定されている。

本明細書に記載のＡＭＤの治療または予防は、上記のＡＭＤ表現型の出現を低減するかまたは予防し得る。好ましくは、ＡＭＤの治療は、視覚機能の維持または改善を可能にする。

いくつかの実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、地図状萎縮の形成の予防または減少をもたらす。他の実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、地図状萎縮の進行を遅らせる。例えば、それは、同じ期間の未治療の眼と比較して、対象の治療された眼への投与後１２ヶ月間にわたりＧＡ領域の増加の少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％または９０％の減少をもたらす。他の実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、地図状萎縮の治療、例えば、地図状萎縮の量の減少をもたらす。

いくつかの実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、ドルーゼンの形成の予防または減少をもたらす。他の実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、既存のドルーゼンの減少、例えば、既存のドルーゼンのサイズおよび／または数の減少をもたらす。

いくつかの実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、補体沈着の予防または減少をもたらす。他の実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、既存の補体沈着の減少をもたらす。

いくつかの実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、視覚または視力の改善または回復をもたらす。他の実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、視覚または視力の喪失を軽減する。

いくつかの実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、対象の読み取り速度の改善または回復をもたらす。他の実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、対象の読み取り速度の低下の軽減をもたらす。

いくつかの実施形態では、ＡＭＤの治療または予防は、光受容体および／または網膜色素上皮（ＲＰＥ）の喪失の減少または予防をもたらす。
糖尿病網膜症

糖尿病網膜症は、糖尿病に関連する高血糖値によって引き起こされる網膜の血管の損傷を特徴とする状態である。未治療のままでは、糖尿病網膜症は、失明を引き起し得る。

軽度の糖尿病網膜症の対象は良好な視覚を有し得るが、特定の型の糖尿病網膜症、すなわち糖尿病黄斑浮腫（ＤＭＯ）および増殖糖尿病網膜症（ＰＤＲ）は、対象の視力を脅かし得る。

糖尿病黄斑浮腫は、眼の後ろの損傷血管から体液が漏出することを特徴とする。漏出した液体は黄斑に蓄積し、それは膨張および霧視（ｂｌｕｒｒｅｄ ｖｉｓｉｏｎ）をもたらす。これは最終的に中心視覚の低下をもたらし、読書または運転が不可能になり得る。側方の視覚は通常、正常なままである。

増殖糖尿病網膜症は、網膜血管の閉鎖を特徴とし、これは、網膜の表面での異常で破壊しやすい血管の成長をもたらす。これは、眼内への出血、瘢痕化、および網膜剥離により、視覚の永久喪失をもたらし得る。非増殖網膜症は、糖尿病網膜症の初期段階であり、未治療のままでは、増殖網膜症をもたらし得る。したがって、治療は、すべての段階およびタイプの糖尿病網膜症に対して企図される。
ベクター

ベクターは、ある環境から別の環境へのエンティティの移送を可能にするまたは容易にするツールである。
アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター

一態様では、本発明は、本発明のポリヌクレオチドを含むＡＡＶベクターを提供する。

好ましくは、ＡＡＶベクターは、ＡＡＶベクター粒子の形態である。

ＡＡＶに由来するものなどの、ウイルスベクターおよびウイルスベクター粒子を調製し、改変する方法は、当技術分野において周知である。

ＡＡＶベクターは、ＡＡＶゲノムまたはその断片または誘導体を含み得る。

ＡＡＶは、最大で５．２ｋｂのサイズのゲノムをパッケージ化できることが知られている（Ｄｏｎｇ，Ｊ．－Ｙ．ら、（１９９６年）Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ７：２１０１－２１１２）。

ＡＡＶゲノムは、ポリヌクレオチド配列であり、それはＡＡＶ粒子の生成に必要な機能をコードし得る。これらの機能としては、ＡＡＶゲノムのＡＡＶ粒子へのキャプシド形成を含む、宿主細胞におけるＡＡＶの複製およびパッケージ化サイクルにおいて操作される機能が挙げられる。自然に発生するＡＡＶは、複製欠損であり、複製およびパッケージ化サイクルを完了するために、トランスでのヘルパー機能の提供に依存する。したがって、本発明のＡＡＶベクターのＡＡＶゲノムは、典型的には複製欠損である。

ＡＡＶゲノムは、ポジティブセンスまたはネガティブセンスのいずれかの一本鎖形態、あるいは二本鎖形態であり得る。二本鎖形態の使用は、標的細胞中でのＤＮＡ複製ステップをバイパスでき、そのため導入遺伝子の発現を促進できる。

ＡＡＶゲノムは、ＡＡＶの任意の天然由来の血清型、分離株、またはクレードに由来し得る。したがって、ＡＡＶゲノムは自然に発生するＡＡＶの全ゲノムであり得る。当業者に公知であるとおり、自然界で発生するＡＡＶは、様々な生物学的系に従って分類され得る。

一般に、ＡＡＶは、それらの血清型の観点から称される。血清型はＡＡＶのバリアント亜種に対応しており、それは、キャプシド表面抗原の発現プロファイルにより、他のバリアント亜種と区別するために使用できる独特の反応性を有する。典型的には、特定のＡＡＶ血清型を有するウイルスは、任意の他のＡＡＶ血清型に特異的な中和抗体と効率的に交差反応しない。

ＡＡＶ血清型は、ＡＡＶ１、ＡＡＶ２、ＡＡＶ３、ＡＡＶ４、ＡＡＶ５、ＡＡＶ６、ＡＡＶ７、ＡＡＶ８、ＡＡＶ９、ＡＡＶ１０およびＡＡＶ１１、ならびに霊長類の脳から近年同定された、Ｒｅｃ２およびＲｅｃ３などの組換え血清型を含む。これらのＡＡＶ血清型のいずれかを本発明で使用できる。

いくつかの実施形態では、ＡＡＶベクター粒子は、ＡＡＶ１、ＡＡＶ２、ＡＡＶ３、ＡＡＶ４、ＡＡＶ５、ＡＡＶ６、ＡＡＶ７、ＡＡＶ８、ＡＡＶ９、ＡＡＶ１０、ＡＡＶ１１、Ｒｅｃ２またはＲｅｃ３ＡＡＶベクター粒子である。

いくつかの実施形態では、ＡＡＶは、ＡＡＶ１、ＡＡＶ２、ＡＡＶ５、ＡＡＶ７、またはＡＡＶ８血清型であってよい。

いくつかの実施形態では、ＡＡＶは、ＡＡＶ２またはＡＡＶ８血清型であってよい。

いくつかの実施形態では、ＡＡＶは、ＡＡＶ２血清型であってよい。他の実施形態では、ＡＡＶは、ＡＡＶ８血清型であってよい。

キャプシドタンパク質は、参照により本明細書に組み込まれる、国際公開第２００８／１２４７２４号に開示されるような突然変異キャプシドタンパク質であり得る。

いくつかの実施形態では、ＡＡＶベクターは、Ｙ７３３Ｆ突然変異を有するＡＡＶ８キャプシドを含む。

ＡＡＶ血清型のレビューは、Ｃｈｏｉら（２００５年）Ｃｕｒｒ．Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．５：２９９－３１０およびＷｕら（２００６年）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙ １４：３１６－２７に見出される。本発明において使用するためのＡＡＶゲノムの配列、またはＩＴＲ配列、ｒｅｐ遺伝子もしくはｃａｐ遺伝子などのＡＡＶゲノムのエレメントの配列は、ＡＡＶ全ゲノム配列についての以下のアクセッション番号から誘導され得る：アデノ随伴ウイルス１ ＮＣ＿００２０７７、ＡＦ０６３４９７；アデノ随伴ウイルス２ ＮＣ＿００１４０１；アデノ随伴ウイルス３ ＮＣ＿００１７２９；アデノ随伴ウイルス３Ｂ ＮＣ＿００１８６３；アデノ随伴ウイルス４ ＮＣ＿００１８２９；アデノ随伴ウイルス５ Ｙ１８０６５、ＡＦ０８５７１６；アデノ随伴ウイルス６ ＮＣ＿００１８６２；トリＡＡＶ ＡＴＣＣ ＶＲ－８６５ ＡＹ１８６１９８、ＡＹ６２９５８３、ＮＣ＿００４８２８；トリＡＡＶ株ＤＡ－１ ＮＣ＿００６２６３、ＡＹ６２９５８３；ウシＡＡＶ ＮＣ＿００５８８９、ＡＹ３８８６１７。

ＡＡＶは、クレードまたはクローンの観点からも参照され得る。これは、天然由来のＡＡＶの系統発生関係を指し、典型的には、共通の祖先にまでさかのぼることができ、そのすべての子孫を含むＡＡＶの系統発生グループを指す。さらに、ＡＡＶは、特定の分離株、すなわち自然界に見られる特定のＡＡＶの遺伝子分離株の観点から参照され得る。遺伝的分離株という用語は、他の自然発生ＡＡＶとの制限された遺伝的混合を受けたＡＡＶの集団を表し、それにより遺伝子レベルで認識できるように異なる集団を定義する。

当業者であれば、一般的な知識に基づき、本発明で使用するためのＡＡＶの適切な血清型、クレード、クローンまたは分離株を選択できる。例えば、ＡＡＶ５キャプシドは、遺伝性色覚異常の矯正に成功したことからも明らかなように、霊長類の錐体光受容体を効率よく形質導入することが示されている（Ｍａｎｃｕｓｏら、（２００９年）Ｎａｔｕｒｅ ４６１：７８４－７）。

ＡＡＶ血清型は、ＡＡＶの感染（または向性）の組織特異性を決定する。したがって、本発明に従って患者に投与されるＡＡＶで使用するための好ましいＡＡＶ血清型は、眼内の標的細胞の感染に対し自然な向性または高効率を有するものである。いくつかの実施形態では、本発明で使用するためのＡＡＶ血清型は、神経感覚網膜、網膜色素上皮および／または脈絡膜の細胞を形質導入するものである。

典型的には、ＡＡＶの天然由来の血清型、分離株、またはクレードのＡＡＶゲノムは、少なくとも１つの逆方向末端反復配列（ＩＴＲ）を含む。ＩＴＲ配列は、シスで作用して複製の機能的起点を提供し、細胞のゲノムからのベクターの組み込みおよび切除を可能にする。好ましい実施形態では、１つ以上のＩＴＲ配列が、補体因子Ｉ、および／または補体因子ＨまたはＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列に隣接する。ＡＡＶゲノムはまた典型的には、ＡＡＶ粒子のパッケージング機能をコードするｒｅｐ遺伝子および／またはｃａｐ遺伝子などのパッケージング遺伝子も含む。Ｒｅｐ遺伝子は、タンパク質Ｒｅｐ７８、Ｒｅｐ６８、Ｒｅｐ５２、およびＲｅｐ４０またはそれらのバリアントの１つ以上をコードする。ｃａｐ遺伝子は、ＶＰ１、ＶＰ２、およびＶＰ３またはそれらのバリアントなどの１つ以上のキャプシドタンパク質をコードする。これらのタンパク質は、ＡＡＶ粒子のキャプシドを構成する。キャプシドバリアントについては、以下で説明する。

プロモーターは、パッケージング遺伝子のそれぞれに作動可能に連結される。このようなプロモーターの具体例としては、ｐ５、ｐ１９、およびｐ４０プロモーターが挙げられる（Ｌａｕｇｈｌｉｎら、（１９７９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７６：５５６７－５５７１）。例えば、ｐ５およびｐ１９プロモーターは一般に、ｒｅｐ遺伝子を発現するために使用され、ｐ４０プロモーターは一般に、ｃａｐ遺伝子を発現するために使用される。

上記のとおり、本発明のＡＡＶベクターで使用されるＡＡＶゲノムはしたがって、自然に発生するＡＡＶの完全なゲノムであり得る。例えば、完全なＡＡＶゲノムを含むベクターを使用して、ｉｎ ｖｉｔｒｏでＡＡＶベクターまたはベクター粒子を調製してもよい。しかし、そのようなベクターは原則として患者に投与できるが、これが実際に行われることはめったにないであろう。好ましくは、ＡＡＶゲノムは、患者へ投与する目的のために誘導体化されるであろう。そのような誘導体化は当技術分野で標準的であり、本発明は、ＡＡＶゲノムの任意の既知の誘導体、および当技術分野において公知である技術を適用することにより生成され得る誘導体の使用を包含する。ＡＡＶゲノムおよびＡＡＶキャプシドの誘導体化は、Ｃｏｕｒａ ａｎｄ Ｎａｒｄｉ（２００７年）Ｖｉｒｏｌｏｇｙ Ｊｏｕｒｎａｌ ４：９９およびＣｈｏｉら、およびＷｕら（上記参照）において概説されている。

ＡＡＶゲノムの誘導体は、ｉｎ ｖｉｖｏで本発明のＡＡＶベクターからの導入遺伝子の発現を可能にする、ＡＡＶゲノムの任意の短縮型または改変型を含む。典型的には、最小限のウイルス配列を含みさらに上記の機能を保持するようにＡＡＶゲノムを大幅に短縮できる。これは、安全上の理由から、野生型ウイルスとのベクターの組換えのリスクを低減し、標的細胞内のウイルス遺伝子タンパク質の存在による細胞性免疫応答の誘発を回避するために好ましい。

典型的には、誘導体は、少なくとも１つの逆方向末端反復配列（ＩＴＲ）、好ましくは２つ以上のＩＴＲ、例えば２つ以上のＩＴＲを含むであろう。ＩＴＲの１つ以上は、異なる血清型を有するＡＡＶゲノムに由来し得るか、またはキメラもしくは突然変異ＩＴＲであり得る。好ましい突然変異ＩＴＲは、ｔｒｓ（末端分解部位）の欠失を有するものである。この欠失は、ゲノムの継続的な複製を可能にして、コーディング配列および相補的配列の両方を含む一本鎖ゲノム、すなわち自己相補的ＡＡＶゲノムを生成する。これは、標的細胞中でのＤＮＡ複製のバイパスを可能にし、このため、導入遺伝子の発現を促進する。

１つ以上のＩＴＲは好ましくは、いずれかの末端で補体因子Ｉ、および／または補体因子ＨまたはＦＨＬ１（例えば補体因子ＨまたはＦＨＬ１）をコードするヌクレオチド配列に隣接する。１つ以上のＩＴＲの含有は、例えば宿主細胞ＤＮＡポリメラーゼの作用による二本鎖ＤＮＡへの１本鎖ベクターＤＮＡの変換後に、宿主細胞の核中での本発明のベクターのコンカテマーの形成を支援するのに好ましい。

１つ以上のＩＴＲは、好ましくは、いずれかの末端で、補体因子Ｉおよび／またはＣＦＩ補因子（例えば、補体因子ＨまたはＦＨＬ１）をコードするヌクレオチド配列に隣接する。１つ以上のＩＴＲを含めることは、例えば、宿主細胞ＤＮＡポリメラーゼの作用による一本鎖ベクターＤＮＡの二本鎖ＤＮＡへの変換後に、宿主細胞の核において本発明のベクターのコンカテマー形成を助けるために好ましい。そのようなエピソームコンカテマーの形成は、宿主細胞の寿命の間、ベクターコンストラクトを保護し、それにより、ｉｎ ｖｉｖｏでの導入遺伝子の長期発現を可能にする。

好ましい実施形態では、ＩＴＲエレメントは、誘導体中の天然ＡＡＶゲノムから保持される唯一の配列である。したがって、誘導体は好ましくは、ネイティブゲノムのｒｅｐ遺伝子および／またはｃａｐ遺伝子ならびにネイティブゲノムの任意の他の配列を含まない。これは、上記の理由から、またベクターが宿主細胞ゲノムに組み込まれる可能性を減少させるためにも好ましい。さらに、ＡＡＶゲノムのサイズを減少させることは、導入遺伝子に加えて、ベクター内に他の配列エレメント（調節エレメントなど）を組み込む際の柔軟性を高めることを可能にする。

したがって、以下の部分は、本発明の誘導体において除去され得る：１つの逆方向末端反復（ＩＴＲ）配列、複製（ｒｅｐ）遺伝子およびキャプシド（ｃａｐ）遺伝子。しかし、いくつかの実施形態では、誘導体は、ＡＡＶゲノムの１つ以上のｒｅｐ遺伝子および／もしくはｃａｐ遺伝子または他のウイルス配列をさらに含み得る。自然に発生するＡＡＶは、ヒト１９番染色体の特定の部位で高頻度で統合され、ごくわずかなランダムな統合頻度を示し、そのため、ベクター中での統合能力の保持は、治療環境において許容され得る。

誘導体がキャプシドタンパク質、すなわちＶＰ１、ＶＰ２および／またはＶＰ３を含む場合、誘導体は、１つ以上の自然に発生するＡＡＶのキメラ、シャッフル、またはキャプシド修飾誘導体であり得る。特に、本発明は、同じベクター（すなわち、疑似型ベクター）内のＡＡＶの異なる血清型、クレード、クローン、または分離株からのキャプシドタンパク質配列の提供を包含する。

キメラ、シャッフル、またはキャプシド修飾誘導体は典型的には、ＡＡＶベクターに１つ以上の所望の機能を提供するために選択される。したがって、これらの誘導体は、ＡＡＶ２などの、自然に発生するＡＡＶゲノムを含むＡＡＶベクターと比較して、遺伝子送達の効率の向上、免疫原性の低下（体液性または細胞性）、向性範囲の変化、および／または特定の細胞型の標的化の改善を示し得る。遺伝子送達の効率の向上は、細胞表面での受容体または共受容体の結合の改善、内在化の改善、細胞内でのおよび核への輸送の改善、ウイルス粒子の脱コーティングの改善、および一本鎖ゲノムの二本鎖形態への変換の改善により影響され得る。効率の向上はまた、特定の細胞集団の向性範囲または標的化の変化に関連している可能性があり、これにより、ベクター用量は、必要とされない組織への投与により希釈されない。

キメラキャプシドタンパク質は、自然に発生するＡＡＶ血清型の２つ以上のキャプシドコード配列間の組換えにより生成されたものを含む。これは、例えば、ある血清型の非感染性キャプシド配列を異なる血清型のキャプシド配列と同時トランスフェクトする、マーカーレスキューアプローチにより実施されてよく、指示された選択を使用して、所望の特性を有するキャプシド配列を選択する。異なる血清型のキャプシド配列は、細胞内で相同組換えによって変更されて、新規キメラキャプシドタンパク質を生成できる。

キメラキャプシドタンパク質はまた、キャプシドタンパク質配列を操作して、特定のキャプシドタンパク質ドメイン、表面ループ、または特定のアミノ酸残基を２つ以上のキャプシドタンパク質間で、例えば、異なる血清型の２つ以上のキャプシドタンパク質間で移送することにより生成されるものを含む。

シャッフルされたまたはキメラのキャプシドタンパク質もまた、ＤＮＡシャッフリングによりまたはエラープローンＰＣＲにより生成され得る。ハイブリッドＡＡＶキャプシド遺伝子は、関連するＡＡＶ遺伝子の配列、例えば複数の異なる血清型のキャプシドタンパク質をコードするものをランダムに断片化すること、およびその後、自己プライミングポリメラーゼ反応で断片を再構築することにより作成でき、これはまた、配列相同性の領域でクロスオーバーを発生し得る。いくつかの血清型のキャプシド遺伝子をシャッフルすることによるこのように作成されたハイブリッドＡＡＶ遺伝子のライブラリーをスクリーニングして、所望の機能を有するウイルスクローンを同定できる。同様に、エラープローンＰＣＲを使用して、ＡＡＶキャプシド遺伝子をランダムに変異させて、バリアントの多様なライブラリーを作成し、それを所望の特性に合わせて選択できる。

キャプシド遺伝子の配列はまた、天然の野生型配列に関して特定の欠失、置換または挿入を導入するために遺伝子改変されてもよい。特に、キャプシド遺伝子は、キャプシドコード配列のオープンリーディングフレーム内に、またはキャプシドコード配列のＮ末端および／またはＣ末端で、関係のないタンパク質またはペプチドの配列を挿入することにより改変されてよい。

関係のないタンパク質またはペプチドは有利には、特定の細胞型のリガンドとして作用し、それにより標的細胞への改善された結合をもたらすか、または特定の細胞集団へのベクターの標的化の特異性を改善するものであり得る。例としては、網膜色素上皮での取り込みをブロックしそれにより周囲の網膜組織の導入を促進するＲＧＤペプチドの使用を挙げることができる（Ｃｒｏｎｉｎら、（２００８年）ＡＲＶＯ Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｄ１０４８）。関係のないタンパク質はまた、産生プロセスの一部としてウイルス粒子の精製を支援するもの、すなわち、エピトープまたは親和性タグであってもよい。挿入部位は典型的には、ウイルス粒子の他の機能（ウイルス粒子の内在化、輸送など）を妨害しないように選択される。当業者であれば、一般的な知識に基づいて、挿入に好適な部位を特定できる。特定の部位は、上で参照したＣｈｏｉらに開示される。

本発明はさらに、ネイティブＡＡＶゲノムのものとは異なる順序および構成でＡＡＶゲノムの配列を提供することを包含する。本発明はまた、１つ以上のＡＡＶ配列または遺伝子を、別のウイルスからの配列または２つ以上のウイルスからの配列から構成されるキメラ遺伝子で置き換えることを包含する。そのようなキメラ遺伝子は、異なるウイルス種の２つ以上の関連するウイルスタンパク質からの配列から構成され得る。

本発明のＡＡＶベクターは、ＡＡＶゲノムまたはその誘導体、ならびに補体因子Ｉ、および／または補体因子ＨまたはＦＨＬ１導入遺伝子またはその誘導体をコードする配列を含むヌクレオチド配列の形態をとってよい。

本発明のＡＡＶ粒子は、ある血清型のＩＴＲを有するＡＡＶゲノムまたは誘導体が異なる血清型のキャプシドにパッケージされるトランスキャプシド形態を含む。本発明のＡＡＶ粒子はまた、２つ以上の異なる血清型からの未修飾キャプシドタンパク質の混合物がウイルスキャプシドを構成するモザイク形態を含む。ＡＡＶ粒子はまた、キャプシド表面に吸着されたリガンドを担持する化学的に修飾された形態を含む。例えば、そのようなリガンドは、特定の細胞表面受容体を標的にするための抗体を含み得る。

したがって、例えば、本発明のＡＡＶ粒子としては、ＡＡＶ２ゲノムおよびＡＡＶ２キャプシドタンパク質を有するもの（ＡＡＶ２／２）、ＡＡＶ２ゲノムおよびＡＡＶ５キャプシドタンパク質を有するもの（ＡＡＶ２／５）、およびＡＡＶ２ゲノムおよびＡＡＶ８キャプシドタンパク質を有するもの（ＡＡＶ２／８）、ならびにＡＡＶ２ゲノムおよび複数の血清型のキャプシドタンパク質を有するものが挙げられる。

ＡＡＶベクターは、本明細書で言及されるヌクレオチド配列の複数のコピー（例えば、２、３など）を含み得る。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、１つ以上のＡＡＶ ＩＴＲをさらに含む。好ましい実施形態では、ポリヌクレオチドは２つのＡＡＶ ＩＴＲをさらに含む。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、その５’末端にＡＡＶ ＩＴＲおよびその３’末端にＡＡＶ ＩＴＲを含む。いくつかの実施形態では、ＡＡＶ ＩＴＲは、ＡＡＶ２またはＡＡＶ８ ＩＴＲである。好ましい実施形態では、ＡＡＶ ＩＴＲは、ＡＡＶ２ ＩＴＲである。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号１８のヌクレオチド配列、または配列番号１８に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を有する５’ＡＡＶ ＩＴＲを含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号２０のヌクレオチド配列、または５’ＩＴＲの３’末端に直接隣接して、少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、または９９％の配列同一性を有するヌクレオチド配列をさらに含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号１９のヌクレオチド配列、または配列番号１９に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を有する３’ＡＡＶ ＩＴＲを含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号２１のヌクレオチド配列、または３’ＩＴＲの５’末端に直接隣接して、少なくとも７５％、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、または９９％の配列同一性を有するヌクレオチド配列をさらに含む。

プロモーターおよび調節配列

本発明のポリヌクレオチドまたはベクターはまた、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏで補体因子Ｈおよび／またはＦＨＬ１導入遺伝子などの補体因子ＩおよびＣＦＩ補因子の発現を可能にするエレメントを含み得る。これらは、発現制御配列とも呼ばれ得る。したがって、ポリヌクレオチドまたはベクターは典型的には、導入遺伝子をコードするヌクレオチド配列に作動可能に連結された発現制御配列（例えば、プロモーター配列）を含む。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、以下をコードするヌクレオチド配列を含む：（ａ）任意により補体因子Ｉおよび／もしくは補体因子Ｈおよび／もしくはＦＨＬ１などの補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子をコードするヌクレオチド配列の上流にある、ＣＭＶプロモーター；（ｂ）任意により補体因子Ｉおよび／もしくは補体因子Ｈおよび／もしくはＦＨＬ１などの補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子をコードするヌクレオチド配列の下流にある、ＷＰＲＥ調節エレメント；ならびに／または（ｃ）任意により補体因子Ｉおよび／または補体因子Ｈおよび／またはＦＨＬ１などの補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子をコードするヌクレオチド配列の下流にある、ウシ成長ホルモンポリＡシグナルなどのポリＡシグナル。

好ましい実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、以下を含む：
（ａ）５’ＡＡＶ ＩＴＲ；
（ｂ）ＣＭＶプロモーター；
（ｃ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、好ましくはＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列；
（ｄ）任意によりフューリン切断部位、ＧＳＧ、１１ａ１ＤおよびＦ２Ａ配列によって画定される、リンカー；
（ｅ）ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列；
（ｆ）好ましくはＷＰＲＥ３調節エレメントである、ＷＰＲＥ調節エレメント；
（ｇ）ウシ成長ホルモンポリＡシグナル；および
（ｈ）３’ＡＡＶ ＩＴＲ。

任意の好適なプロモーターを使用でき、その選択は当業者が容易に行い得る。プロモーター配列は、構成的に活性である（すなわち、任意の宿主細胞バックグラウンドにおいて作動可能である）、あるいは特定の宿主細胞環境でのみ活性であり得、したがって特定の細胞型（例えば、組織特異的プロモーター）における導入遺伝子の標的発現を可能にする。プロモーターは、別の因子、例えば宿主細胞に存在する因子の存在に応答して誘導性発現を示し得る。いずれの事象においても、ベクターが治療のために投与される場合、プロモーターは標的細胞のバックグラウンドにおいて機能的であることが好ましい。

いくつかの実施形態では、プロモーターは、導入遺伝子が網膜細胞集団でのみ発現され得るようにするために、網膜細胞特異的発現を示すことが好ましい。したがって、プロモーターからの発現は、網膜細胞特異的であり得、例えば、神経感覚網膜および網膜色素上皮の細胞のみに限定され得る。

網膜細胞特異的ではない、好ましいプロモーターとしては、任意によりサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）エンハンサーエレメントと組み合わせた、ニワトリベータアクチン（ＣＢＡ）プロモーターが挙げられる。本発明で使用するための例示的なプロモーターは、ＣＡＧプロモーター、例えば、ｒＡＶＥ発現カセットで使用されるプロモーターである（ＧｅｎｅＤｅｔｅｃｔ．ｃｏｍ）。

好ましい実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、ＣＭＶプロモーターを含む。

ＣＭＶプロモーター配列の例は、次のとおりである：

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、配列番号１３に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有するヌクレオチド配列を有するプロモーターを含む。好ましくは、ヌクレオチド配列は、配列番号１３によって表されるプロモーターの機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、配列番号１３のヌクレオチド配列を有するプロモーターを含む。

さらなるプロモーター配列の例は、次のとおりである：

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、配列番号５に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有するヌクレオチド配列を有するプロモーターを含む。好ましくは、ヌクレオチド配列は、配列番号５によって表されるプロモーターの機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、配列番号５のヌクレオチド配列を有するプロモーターを含む。

網膜特異的遺伝子発現を誘導するヒト配列に基づくプロモーターの例としては、桿体および錐体のロドプシンキナーゼ（Ａｌｌｏｃｃａら、（２００７年）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．８１：１１３７２－８０）、錐体のみのＰＲ２．１（Ｍａｎｃｕｓｏら、（２００９年）Ｎａｔｕｒｅ４６１：７８４－７）および／または網膜色素上皮のＲＰＥ６５（Ｂａｉｎｂｒｉｄｇｅら、（２００８年）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３５８：２２３１－９）またはＶＭＤ２（Ｅｓｕｍｉら、（２００４年）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７９：１９０６４－７３）が挙げられる。

本発明のポリヌクレオチドまたはベクターはまた、転写前または転写後に作用し得る１つ以上の追加の調節配列を含み得る。調節配列は、天然の導入遺伝子遺伝子座の一部であり得るか、または異種の調節配列であり得る。本発明のポリヌクレオチドまたはベクターは、天然の導入遺伝子転写物からの５’－ＵＴＲまたは３’－ＵＴＲの一部を含み得る。

調節配列は、導入遺伝子の発現を容易にする、すなわち、転写物の発現を増加させる、ｍＲＮＡの核外輸送を改善する、またはその安定性を向上させるように作用する、任意の配列である。そのような調節配列としては、例えば、エンハンサーエレメント、転写後調節エレメント、およびポリアデニル化部位が挙げられる。

好ましいポリアデニル化部位は、ウシ成長ホルモンポリＡ（ｂＧＨポリＡ）シグナルである。

ウシ成長ホルモンポリＡ（ｂＧＨポリＡ）シグナルの例は次のとおりである：

ウシ成長ホルモンポリＡ（ｂＧＨポリＡ）シグナルのさらなる例は次のとおりである：

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、配列番号１４または６、好ましくは配列番号１４に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有するヌクレオチド配列を有するポリアデニル化シグナルを含む。好ましくは、ヌクレオチド配列は、配列番号１４または６によって表されるポリアデニル化シグナルの機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、配列番号１４または６、好ましくは配列番号１４のヌクレオチド配列を有するポリアデニル化シグナルを含む。

本発明のポリヌクレオチドまたはベクターの文脈において、そのような調節配列はシス作用性である。しかし、本発明はまた、追加の遺伝子コンストラクト上に位置するトランス作用性調節配列の使用を包含する。

本発明のＡＡＶベクターで使用するための好ましい転写後調節エレメントは、ウッドチャック肝炎転写後調節エレメント（ＷＰＲＥ）またはそのバリアントである。

ＷＰＲＥの例は、次のとおりである：

ＷＰＲＥは、ガンマ、アルファ、ベータエレメントを所与の順序で含む、三部からなるエレメントである。最小限のガンマエレメントおよびアルファエレメントのみを含む、ＷＰＲＥの短縮型（ＷＰＲＥ３とも称される；Ｃｈｏｉ，Ｊ．－Ｈ．ら、（２０１４年）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｒａｉｎ７：１７）が、本発明において使用されてもよい。

ＷＰＲＥ３配列の例は以下のとおりである：

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、配列番号１５または７、好ましくは配列番号１５に対し少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の同一性を有するヌクレオチド配列を有する転写後調節エレメントを含む。好ましくは、ヌクレオチド配列は、配列番号１５または７によって表される転写後調節エレメントの機能的活性を実質的に保持する。

他の実施形態では、ポリヌクレオチドまたはベクターは、配列番号１５または７、好ましくは配列番号１５のヌクレオチド配列を有する転写後調節エレメントを含む。

本発明のポリヌクレオチドまたはベクターで使用され得る別の調節配列は、足場付着領域（ＳＡＲ）である。追加の調節配列は、当業者によって容易に選択され得る。
投与方法

本発明の生成物、ポリヌクレオチドまたはベクターは、全身に（例えば、末梢静脈注入により）投与され得、かつ局所的（ｌｏｃａｌｌｙ）または局所的（ｒｅｇｉｏｎａｌｌｙ）に（例えば、髄腔内注射によりＣＮＳ系に）投与され得る。好ましい実施形態では、生成物、ポリヌクレオチドまたはベクターは、眼内に投与される。

「眼内」という用語は、眼の内部を指し、したがって眼内投与は、対象の眼の内部への投与に関連する。

いくつかの実施形態では、生成物、ポリヌクレオチドまたはベクターは、網膜下、直接網膜、脈絡膜上または硝子体内注射により対象の眼に投与される。いくつかの実施形態では、上記の投与は、ロボットにより実行される。

注射される薬剤組成物の容量は、例えば、約１０～５００μＬ、例えば、約５０～５００、１００～５００、２００～５００、３００～５００、４００～５００、５０～２５０、１００～２５０、２００～２５０または５０～１５０μＬであってよい。容量は、例えば、約１０、５０、１００、１５０、２００、２５０、３００、３５０、４００、４５０または５００μＬであり得る。好ましくは、注射される薬剤組成物の容量は、１００μＬである。

当業者は、個々の網膜下、直接網膜、脈絡膜上または硝子体内注射に精通しており、それらを十分に実行できるであろう。

好ましくは、生成物、ポリヌクレオチドまたはベクターは、網膜下注射により投与される。いくつかの実施形態では、それを含む生成物、ポリヌクレオチド、ベクターまたは医薬組成物は、対象の生涯の間に、１回以下、または２回以下で投与される。
網膜下注射

網膜下注射は、網膜下腔、すなわち神経感覚網膜の下への注射である。網膜下注射の間、注射される材料は、光受容体細胞および網膜色素上皮（ＲＰＥ）層に向けられ、それらの間に空間を作り出す。

小さい網膜切開術により注射が行われる場合、網膜剥離が生じ得る。注射された材料により生成される網膜の剥離した***層は、「ブレブ」と呼ばれる。

網膜下注射により作り出される穴は、注射された溶液が投与後に硝子体腔に著しく逆流して戻らないように十分に小さくなければならない。このような逆流は、薬剤の効果が標的区域から離れる方向に向けられるため、薬剤が注射されるときに特に問題であるであろう。好ましくは、注射は、神経感覚網膜に自己密封式入口点を作り出す。すなわち、注射針が取り外されると、針により作成された穴は、注射された材料が穴から放出されることがほとんどまたは実質的にないように再密封される。

このプロセスを容易にするために、専門の網膜下注射針が市販されている（例えば、ＤＯＲＣ ４１Ｇ Ｔｅｆｌｏｎ網膜下注射針、Ｄｕｔｃｈ Ｏｐｈｔｈａｌｍｉｃ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ＢＶ，Ｚｕｉｄｌａｎｄ，Ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）。これらは網膜下注射を実行するために設計された針である。

注射中に網膜への損傷が発生しない限り、および十分に小さい針が使用される限り、実質的にすべての注射された材料は、網膜剥離の局在部位で剥離した神経感覚網膜とＲＰＥの間に局在したままである（すなわち、硝子体腔に逆流しない）。実際に、短い時間枠にわたるブレブの典型的な持続は、注射された材料の硝子体への逃げが通常ほとんどないことを示す。ブレブは、注射された材料が吸収されると、より長い時間枠で消散し得る。

眼、特に網膜、の可視化は、例えば光コヒーレンストモグラフィーを使用して、術前に行うことができる。

注射される薬剤組成物の容量は、例えば、約１０～５００μＬ、例えば、約５０～５００、１００～５００、２００～５００、３００～５００、４００～５００、５０～２５０、１００～２５０、２００～２５０または５０～１５０μＬであってよい。容量は、例えば、約１０、５０、１００、１５０、２００、２５０、３００、３５０、４００、４５０または５００μＬであり得る。好ましくは、注射される薬剤組成物の容量は、１００μＬである。より大きな容量は、網膜が伸長するリスクを増加し得るが、より小さな容量は、見えづらいであろう。
２段階網膜下注射

本発明の生成物、ポリヌクレオチドまたはベクターは、第１の溶液の網膜下注射により局在的な網膜剥離を生じさせる２段階の方法を使用することにより、精度および安全性を高めて送達され得る。第１の溶液は、生成物、ポリヌクレオチド、またはベクターを含まない。第２の網膜下注射を次に使用して、生成物、ポリヌクレオチド、またはベクターを含む薬剤を、第１の網膜下注射により作られたブレブの網膜下液に送達する。薬剤を送達する注射は網膜を剥離するために使用されないので、特定の容量の溶液が、この第２のステップにおいて注射され得る。

いくつかの実施形態では、ベクターの網膜下注射は、
（ａ）網膜を少なくとも部分的に剥離して網膜下ブレブを形成するのに有効な量で網膜下注射により対象に溶液を投与するステップであって、溶液は、生成物、ポリヌクレオチド、またはベクターを含まない、投与するステップと、
（ｂ）ステップ（ａ）により形成されたブレブ中へ網膜下注射により薬剤組成物を投与するステップであって、薬剤は、生成物、ポリヌクレオチド、またはベクターを含む、投与するステップ、
を含む。

網膜を少なくとも部分的に剥離するためにステップ（ａ）において注射される溶液の容量は、例えば、約１０～１０００μＬ、例えば、約５０～１０００、１００～１０００、２５０～１０００、５００～１０００、１０～５００、５０～５００、１００～５００、２５０～５００μＬであってよい。容量は、例えば、約１０、５０、１００、２００、３００、４００、５００、６００、７００、８００、９００または１０００μＬであってよい。

ステップ（ｂ）で注射される薬剤組成物の容量は、例えば、約１０～５００μＬ、例えば、約５０～５００、１００～５００、２００～５００、３００～５００、４００～５００、５０～２５０、１００～２５０、２００～２５０または５０～１５０μＬであってよい。容量は、例えば、約１０、５０、１００、１５０、２００、２５０、３００、３５０、４００、４５０または５００μＬであってよい。好ましくは、ステップ（ｂ）で注射される薬剤組成物の容量は１００μＬである。より大きな容量は、網膜が伸長するリスクを増加し得るが、より小さな容量は、見えづらいであろう。

薬剤を含まない溶液（すなわち、ステップ（ａ）の「溶液」）は、以下に記載されるように、薬剤を含む溶液と同様に配合され得る。薬剤を含まない好ましい溶液は、平衡塩類溶液（ＢＳＳ）であるかまたは網膜下腔のｐＨおよび浸透圧に適合した同様の緩衝液である。
手術中の網膜の可視化

特定の状況下、例えば末期の網膜変性の間に、網膜を特定することは困難である。なぜなら網膜は薄く、透明でありかつ網膜が置かれている破壊された厚い色素上皮に対し見ることが難しいためである。青い硝子体色素（例えば、ＢｒｉｌｌｉａｎｔＰｅｅｌ（登録商標）、Ｇｅｕｄｅｒ；ＭｅｍｂｒａｎｅＢｌｕｅ－Ｄｕａｌ（登録商標）、Ｄｏｒｅ）の使用は、網膜剥離手順（すなわち、本発明の２段階網膜下注射法の手順（ａ））用に作られた網膜穴の同定を容易にし、その結果薬剤を、硝子体腔に逆流して戻るリスクなしに、同じ穴を通して投与できる。

青い生体色素の使用はまた、厚い内境界膜または網膜上膜が存在している網膜の任意の領域を同定する。なぜならこれらの構造のいずれかを介する注射は、網膜下腔への明瞭なアクセスを妨げるからである。さらに、手術直後の期間におけるこれらの構造のいずれかの収縮は、網膜入口穴の伸長をもたらす可能性があり、それは、硝子体腔への薬剤の逆流をもたらし得る。
脈絡膜上注射

本発明の生成物、ポリヌクレオチドまたはベクターは、マイクロカテーテルを利用するａｂ ｅｘｔｅｒｎｏアプローチを使用して脈絡膜上腔に送達され得る（例えば、Ｐｅｄｅｎら（２０１１年）ＰＬｏＳ Ｏｎｅ６（２）：ｅ１７１４０）。この方法では、角膜輪部結膜周囲切開を行って裸の強膜を露出させ、その後強膜切開を行って裸の脈絡膜を露出させる。マイクロカテーテル（（任意によりｉＬｕｍｉｎレーザーダイオードベースのマイクロ照明システム（ｉＳｃｉｅｎｃｅ Ｉｎｔｅｒｖｅｎｔｉｏｎａｌ）などの照明システムに接続された、ｉＳｃｉｅｎｃｅ ＩｎｔｅｒｖｅｎｔｉｏｎａｌのｉＴｒａｃｋ２５０Ａなど）を脈絡膜上腔に導入し、視神経乳頭に向かって後方に進める。所望の位置へのマイクロカテーテルの先端の操作後に、生成物、ポリヌクレオチド、またはベクターの注射は、網膜および脈絡膜内にブレブを形成する。

したがって、いくつかの実施形態では、生成物、ポリヌクレオチドまたはベクターは、（ｉ）脈絡膜上腔へのマイクロカテーテルの導入、（ｉｉ）先端が網膜の患部領域の近くになるまで、脈絡膜上腔内でマイクロカテーテルを前進させること、および（ｉｉｉ）マイクロカテーテルの先端から生成物、ポリヌクレオチド、またはベクターを注入してブレブを形成すること、を含む方法によって脈絡膜上に送達される。

いくつかの実施形態では、上の投与手順は、ロボットにより直接実行される。
医薬組成物および注射溶液

本発明の薬剤、例えば、生成物、ポリヌクレオチドまたはベクターは、医薬組成物に配合され得る。これらの組成物は、薬剤に加えて、薬学的に許容される担体、希釈剤、賦形剤、緩衝液、安定剤、または当技術分野で周知である他の材料を含み得る。そのような材料は無毒でなければならず、有効成分の有効性を妨げてはならない。担体または他の材料の正確な性質は、投与経路、例えば、網膜下、直接網膜、脈絡膜上または硝子体内注射などの投与経路に従って当業者によって決定され得る。

医薬組成物は典型的には、液体形態である。液体医薬組成物は一般に、水、石油、動物油または植物油、鉱油または合成油などの液体担体を含む。生理食塩水、塩化マグネシウム、デキストロースまたは他の糖類溶液、またはエチレングリコール、プロピレングリコールもしくはポリエチレングリコールなどのグリコールが含まれ得る。場合によっては、プルロン酸（ＰＦ６８）０．００１％などの界面活性剤を使用してもよい。

罹患部位での注射の場合、有効成分は、パイロジェンを含まず、かつ好適なｐＨ、等張性および安定性を有する、水溶液の形態であり得る。当業者は、例えば、塩化ナトリウム注射、リンガー注射、または乳酸リンガー注射などの等張ビヒクルを使用して、好適な溶液を十分に調製できる。必要に応じて、防腐剤、安定剤、緩衝液、酸化防止剤および／または他の添加剤を含めてもよい。

遅延放出の場合、薬剤は、当技術分野において公知である方法による生体適合性ポリマーから形成されたマイクロカプセル中にまたはリポソーム担体システムでなど、徐放用に配合された医薬組成物に含まれ得る。
治療方法

本明細書における治療へのすべての言及は、治癒的、緩和的および予防的治療を含み、本発明の文脈において、予防への言及は、より一般的には予防的治療に関連することを理解されたい。治療は、疾患の重症度の進行を阻止することも含み得る。

哺乳動物、特にヒトの治療が好ましい。しかし、ヒトの治療および動物の治療の両方が、本発明の範囲内である。

本明細書で使用される「組み合わせ」という用語、または「組み合わせて」、「組み合わせて使用される」または「組み合わせられた調製物」という用語は、同時に、順次にまたは個別に、２つ以上の剤を組み合わせ投与することを指し得る。

本明細書で使用される「同時」という用語は、剤が同時に、すなわち同じ時に投与されることを意味する。

本明細書で使用される「順次」という用語は、剤が次々に投与されることを意味する。

本明細書で使用される「個別に」という用語は、剤が互いに独立して投与されるが、剤が組み合わされた、好ましくは相乗効果を示すことを可能にする時間間隔内に投与されることを意味する。したがって、「個別に」投与することは、１つの剤を、例えば、他の剤から１分、５分、または１０分以内に投与することを可能にし得る。
バリアント、誘導体、類似体、相同体および断片

本明細書で言及される特定のタンパク質およびヌクレオチドに加えて、本発明はまた、それらのバリアント、誘導体、類似体、相同体および断片の使用を包含する。

本発明の文脈において、任意の所与の配列のバリアントは、問題のポリペプチドまたはポリヌクレオチドがその機能を実質的に保持するように、残基の特定の配列（アミノ酸または核酸残基であるかどうか）が修飾された配列である。バリアント配列は、自然に発生するタンパク質に存在する少なくとも１つの残基の付加、欠失、置換、修飾、置換、および／または変化によって得ることができる。

本発明のタンパク質またはポリペプチドに関して本明細書で使用される「誘導体」という用語は、得られたタンパク質またはポリペプチドがその内因性機能の少なくとも１つを実質的に保持することを条件として、その配列からまたはその配列への１つ（または複数）のアミノ酸残基の置換、改変、修飾、置換、欠失および／または付加のいずれかを含む。

ポリペプチドまたはポリヌクレオチドに関して本明細書で使用される「類似体」という用語は、任意の模倣物、すなわち、模倣するポリペプチドまたはポリヌクレオチドの内因性機能の少なくとも１つを保有する化合物を含む。

典型的には、アミノ酸置換は、改変された配列が必要な活性または能力を実質的に保持するという条件で、例えば、１、２または３～１０または２０の置換を行うことができる。アミノ酸置換は、自然に発生しない類似体の使用を含み得る。本発明で使用されるタンパク質はまた、サイレント変化を生じ、かつ機能的に同等のタンパク質をもたらす、アミノ酸残基の欠失、挿入または置換を有し得る。内因性機能が保持される限り、残基の極性、電荷、溶解性、疎水性、親水性、および／または両親媒性の性質の類似性に基づいて、意図的なアミノ酸置換を行うことができる。例えば、負に帯電したアミノ酸としては、アスパラギン酸およびグルタミン酸が挙げられ、正に帯電したアミノ酸としては、リジンおよびアルギニンが挙げられ、同様の親水性値を有する非荷電極性頭部基を有するアミノ酸としては、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、およびチロシンが挙げられる。

保存的置換は、例えば、以下の表に従って行われてよい。第２の列の同じブロック、好ましくは第３の列の同じ行のアミノ酸が互いに置換され得る：

本明細書で使用される「相同体」という用語は、野生型アミノ酸配列および野生型ヌクレオチド配列と特定の相同性を有するエンティティを意味する。「相同性」という用語は、「同一性」と同等であってよい。

相同配列は、対象配列に対し少なくとも５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％または９０％同一である、好ましくは少なくとも９５％または９７％または９９％同一であり得るアミノ酸配列を含み得る。典型的には、相同体は、対象のアミノ酸配列と同じ活性部位などを含むであろう。相同性は、類似性（すなわち、類似の化学的性質／機能を有するアミノ酸残基）の観点からも考慮できるが、本発明の文脈において、配列同一性の観点から相同性を表すことが好ましい。

相同配列は、対象配列に対し少なくとも５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％または９０％同一である、好ましくは少なくとも９５％または９７％または９９％同一であり得るヌクレオチド配列を含み得る。相同性は、類似性の観点からも考慮できるが、本発明の文脈において、配列同一性の観点から相同性を表すことが好ましい。好ましくは、本明細書に詳述される配列番号のいずれか１つに対しパーセント同一性を有する配列への言及は、言及される配列番号の全長にわたり記載されたパーセント同一性を有する配列を指す。

相同性の比較は、眼で、またはより一般的には、すぐに利用できる配列比較プログラムの助けを借りて行うことができる。これらの市販のコンピュータプログラムは、２つ以上の配列間の相同性または同一性のパーセンテージを計算できる。

相同性のパーセンテージは、隣接する配列にわたり計算され得る。すなわち、一方の配列を他方の配列と整列し、一度に１残基ずつ、一方の配列内の各アミノ酸を他方の配列中の対応するアミノ酸と直接比較する。これは「非ギャップ」アラインメントと呼ばれる。典型的には、このような非ギャップアラインメントは、比較的短い数の残基に対してのみ行われる。

これは非常に単純でかつ一貫性のある方法であるが、例えば、他の点では同一の配列ペアでは、ヌクレオチド配列中の１つの挿入または欠失により、次のコドンがアライメントから外れ得ることを考慮に入れていない。このため、グローバルアラインメントを実施したときに、パーセント相同性が大きく低下する可能性がある。その結果、ほとんどの配列比較方法は、全体的な相同性スコアに過度のペナルティを課すことなく、可能な挿入および欠失を考慮した最適なアラインメントを生成するように設計されている。これは、配列アラインメントに「ギャップ」を挿入して、局所的な相同性を最大化しようとすることにより達成される。

しかし、これらのより複雑な方法は、アラインメントで発生する各ギャップに対し「ギャップペナルティ」を割り当て、そのため、同数の同一アミノ酸について、２つの比較された配列間のより高い関連性を反映する、可能な限りギャップが少ない配列アラインメントは、多くのギャップを有するものよりも高いスコアを達成する。「アフィンギャップコスト」は典型的には、ギャップの存在に対し比較的高いコストを課し、かつギャップ中の後続の各残基に対しより小さなペナルティを課すために使用される。これは、最も一般的に使用されるギャップスコアリングシステムである。高いギャップペナルティは当然、ギャップの少ない最適化されたアライメントを生じる。ほとんどのアライメントプログラムは、ギャップペナルティが変更されることを認める。しかし、このようなソフトウェアをシーケンス比較に使用する場合は、デフォルト値を使用することが好ましい。例えば、ＧＣＧウィスコンシンベストフィットパッケージを使用する場合、アミノ酸配列のデフォルトのギャップペナルティは、ギャップに対し－１２、各エクステンションに対し－４である。

最大パーセンテージ相同性の計算はしたがって最初に、ギャップペナルティを考慮する、最適なアラインメントの作成を必要とする。このようなアライメントを実行するための好適なコンピュータプログラムは、ＧＣＧウィスコンシンベストフィットパッケージである（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ，Ｕ．Ｓ．Ａ．；Ｄｅｖｅｒｅｕｘら（１９８４年）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１２：３８７）。シーケンス比較を実施できる他のソフトウェアの例としては、これに限定されないが、ＢＬＡＳＴパッケージ（Ａｕｓｕｂｅｌら、（１９９９年）同上－第１８章）、ＦＡＳＴＡ（Ａｔｓｃｈｕｌら、（１９９０年）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．４０３－４１０）および比較ツールのＧＥＮＥＷＯＲＫＳ ｓｕｉｔｅが挙げられる。ＢＬＡＳＴおよびＦＡＳＴＡは、いずれもオフラインおよびオンライン検索に利用できる（Ａｕｓｕｂｅｌら、（１９９９年）同上、ページ７－５８～７－６０を参照されたい）。しかし、一部のアプリケーションでは、ＧＣＧ Ｂｅｓｔｆｉｔプログラムを使用することが好ましい。ＢＬＡＳＴ２配列と呼ばれる別のツールも、タンパク質とヌクレオチド配列を比較するために利用できる（ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｌｅｔｔ．（１９９９年）１７４：２４７－５０；ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｌｅｔｔ．（１９９９年）１７７：１８７－８を参照されたい）。

最終パーセント相同性は、同一性の観点から測定できるが、アラインメントプロセス自体は典型的には、ａｌｌ－ｏｒ－ｎｏｔｈｉｎｇペアの比較に基づかない。代わりに、化学的類似性または進化距離に基づいて各ペアワイズ比較にスコアを割り当てる、スケーリングされた類似性スコアマトリックスが一般的に使用される。一般的に使用されるこのようなマトリックスの例は、ＢＬＯＳＵＭ６２マトリックスであり、これはＢＬＡＳＴ一連のプログラムのデフォルトマトリックスである。ＧＣＧウィスコンシンプログラムは通常、パブリックデフォルト値または提供されるならばカスタムシンボル比較表のいずれかを使用する（詳細については、ユーザーマニュアルを参照のこと）。いくつかのアプリケーションでは、ＧＣＧパッケージのパブリックデフォルト値を使用するか、他のソフトウェアの場合は、ＢＬＯＳＵＭ６２などのデフォルトマトリックスを使用することが好ましい。

ソフトウェアが最適なアラインメントを生成すると、パーセント相同性、好ましくはパーセント配列同一性を計算できる。ソフトウェアは典型的には、シーケンス比較の一部としてこれを実行し、数値結果を生成する。

全長補体因子Ｉまたは補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子（補体因子ＨまたはＦＨＬ１など）の「断片」もバリアントであり、この用語は典型的には、機能的に、または例えば、アッセイにおいて目的のポリペプチドまたはポリヌクレオチドの選択された領域を指す。「断片」はしたがって、完全長のポリペプチドまたはポリヌクレオチドの一部であるアミノ酸または核酸配列を指す。

このようなバリアントは、部位特異的変異導入などの標準的な組換えＤＮＡ技術を使用して調製され得る。挿入が行われる場合、挿入部位のいずれかの側の自然に発生する配列に対応する５’および３’隣接領域と共に挿入をコードする合成ＤＮＡを作製できる。隣接領域は、自然に発生する配列中の部位に対応する簡便な制限部位を含み、その結果、配列は、適切な酵素（複数可）により切断され、その切断部に合成ＤＮＡが連結され得る。次に、ＤＮＡを本発明に従い発現させて、コードされたタンパク質を作製する。これらの方法は、ＤＮＡ配列を操作するための当技術分野において公知である多数の標準技術を例示にすぎず、他の既知の技術が使用されてもよい。

当業者であれば、開示された本発明の範囲から逸脱することなく、本明細書に開示された本発明のすべての特徴を組み合わせてよいことを理解するであろう。

本発明の好ましい特徴および実施形態をここで、非限定的な例として記載する。

本発明の実施は、他に示されない限り、当業者の能力の範囲内である、化学、生化学、分子生物学、微生物学および免疫学の従来の技術を使用する。そのような技術は文献において説明されている。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．，Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｅ．Ｆ．ａｎｄ Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｔ．（１９８９年）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｆ．Ｍ．ら（１９９５年および定期的補足）Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、第９章、第１３章および第１６章、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ；Ｒｏｅ，Ｂ．，Ｃｒａｂｔｒｅｅ，Ｊ．ａｎｄ Ｋａｈｎ，Ａ．（１９９６年）ＤＮＡ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ：Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ；Ｐｏｌａｋ，Ｊ．Ｍ．ａｎｄ ＭｃＧｅｅ，Ｊ．Ｏ’Ｄ．（１９９０年）Ｉｎ Ｓｉｔｕ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ，Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ；Ｇａｉｔ，Ｍ．Ｊ．（１９８４年）Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ，ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ；およびＬｉｌｌｅｙ，Ｄ．Ｍ．ａｎｄ Ｄａｈｌｂｅｒｇ，Ｊ．Ｅ．（１９９２年）Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ：ＤＮＡ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ Ｐａｒｔ Ａ：Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ Ｐｈｙｓｉｃａｌ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ＤＮＡ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓを参照のこと。これらの一般的なテキストのそれぞれは、参照により本明細書に組み込まれる。
実施例
実施例１
補因子アッセイ

組換え補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、補因子（補体因子Ｈ（ＣＦＨ）または補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１））およびＣ３ｂを、３７℃で２０分間一緒にインキュベートした。

ＣＦＩおよびＣ３ｂの濃度を固定し、ＣＦＨまたはＦＨＬ１を指定の比率で滴定した。

Ｃ３ｂのｉＣ３ｂへの切断を、ＥＬＩＳＡにより定量化した。

これらの研究の結果を図２Ａに示す。

これらの結果から、最小機能ＣＦＩ：ＣＦＨ／ＦＨＬ１モル比は１：２であると結論付けられ得る。
正常な血清ＣＦｋ補因子比の測定

補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、および補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）の濃度を、ＥＬＩＳＡを使用して正常なヒト血清中で測定した。

正常血清中のＣＦｋ補因子のモル比は１：８．３であることがわかった。
血漿と眼液のＣＦＩ：補因子比の比較

その後、血漿および眼液の両方でＣＦＩおよびＣＦＨのレベルを比較した。データは、補因子がＣＦＩ酵素に対し数倍モル過剰で存在する血漿とは対照的に、この比が、硝子体および房水において逆転することを示した（図７）。
リポ多糖（ＬＰＳ）の補体沈着アッセイ

マイクロタイタープレートを、１μｇ／ウェルのＬＰＳでコーティングし、４℃で一晩インキュベートした。

プレートを次に、洗浄し、異なる量の組換え補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、または補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）を添加した通常のヒト血清と共に３７℃で１時間インキュベートした。続いてプレートを徹底的に洗浄し、補体沈着を、マウス抗Ｃ３ｄ抗体（Ａｂｅａｍ）および二次抗体として使用したロバ抗マウス（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ）で測定した。

図２Ｂは、ＬＰＳへの補体沈着に対するＣＦＩ、ＣＦＨ、およびＦＨＬ１補充の効果を示す。

ｘ軸は、補体因子Ｉ（ＣＦＩ）対補体因子Ｈ＋補体因子Ｈ様１の比を示す（ＣＦＨおよびＦＨＬ１、「補因子」）。比率の変化は、組換えＣＦＩ、ＣＦＨ、またはＦＨＬ１の追加によってのみ達成された。

１：８．３の開始モル比（正常血清の自然比）は、酵素と比較して過剰な補因子をすでに有するが、補体沈着の減少のさらなる利点、およびしたがって活性化が、比率をさらに上げたときに達成される。この追加の利点は、ＣＦＨおよびＦＨＬ１の追加機能（崩壊促進活性、ＤＡＡ）に関連し得る。ＣＦＨおよびＦＨＬ１はいずれも、Ｃ３ｂ結合について補体因子Ｂ（ＦＢ）と競合し、ＦＢをＣ３ｂから移動させ、それにより代替経路転換酵素を「崩壊」させるという点でＤＡＡを有する。

これらの実験から、最小ＣＦＩ：ＣＦＨ／ＦＨＬ１モル比１：２未満で、補因子が制限的になると結論付けてよい。
実施例２
バイシストロン性プラスミドの生成

組換えＡＡＶ導入遺伝子プラスミド（ＲＣ２０４、ＲＣ２０６～２１０およびＲＣ２１２～２１８と呼ばれる）を、表１に記載されるカセットに隣接するＡＡＶ２ ５’および３’逆方向末端反復（ＩＴＲ）を含んで構築した。

使用した５’ＩＴＲ隣接配列は、配列番号２０であった。

使用したＣＭＶプロモーター配列は、配列番号１３であった。

使用したＦＨＬ１配列は、配列番号１６であった。使用されたコドン最適化ＦＨＬ１（ＦＨＬ１－ＣＯ）配列は、配列番号１２であった。

使用したフューリン－Ｆ２Ａリンカー配列は、配列番号１７であった。

使用したＣＦＩ配列は、配列番号２であった。使用したコドン最適化ＣＦＩ（ＣＦＩ－ＣＯ）配列は、配列番号１０であった。

使用したＷＰＲＥ３配列は、配列番号１５であった。

使用したウシ成長ホルモンポリＡ（ＢＧＨｐＡ）配列は、配列番号１４であった。

使用した３’ＩＴＲ隣接配列は、配列番号２１であった。

ＲＣ２１２およびＲＣ２１８の全体的な配列は、それぞれ配列番号２２および２３である。
形質導入によるベクターの比較
付着性ＨＥＫ２９３でのベクターの産生

１２個のプラスミド（ＲＣ２０４、ＲＣ２０６～２１０、およびＲＣ２１２～２１７）での個別のトランスフェクションＨＥＫ２９３細胞を、次のプロトコルを使用して実行した。
１日目：ＨＥＫ２９３細胞を分離し、ＶｉＣｅｌｌを使用してカウントした。細胞を、プレートあたり１０ｍＬＤＭＥＭ／Ｇｌｕｔａｍａｘ＋１０％ＦＢＳ中６ｘ１０^５細胞／ｃｍ^２で１０ｃｍプレートに播種した。
２日目：コンフルエンシーを確認し、７０～８０％であることを見出した。

ＦＢＳ培地を、ＤＭＥＭ／Ｇｌｕｔａｍａｘ＋５％ＦＢＳに置き換えた。

４時間後に、細胞を、二連でＤＮＡ：ＰＥＩ比１：３でＰＥＩを使用して、プレートあたり５μｇのトータルプラスミドＤＮＡ（１．２５μｇコンストラクトＤＮＡ、１．２５μｇ ＲｅｐＣａｐプラスミド、２．５μｇヘルパープラスミド）でトランスフェクトした。
１．２ｘ５μｇＤＮＡを、２ｘ１ｍＬ ＰＢＳで希釈した。
２．２ｘ１５μＬ ＰＥＩを添加し、２０分間インキュベートした。
３．１ｍＬのＤＮＡ／ＰＥＩを、細胞に滴下した。
３日目：１５ｍＭの酪酸ナトリウムを、添加した。
５日目：培地を、複製物をプールすることにより採取し、１０００ｒｐｍで１０分間遠心分離して細胞破片を除去した。

上清を、新しいチューブに移し、ＡＡＶａｎｃｅｄ（ＡＡＶ１１０Ａ－１、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を、容量の１／５で添加した。

混合物を、４℃で７２時間インキュベートした。

５日目：混合物を、１０００ｒｐｍで３０分間４℃で遠心分離した。その後、上清を廃棄し、ペレットを、５００μＬのＰＢＳに再懸濁した。ペレットを、１５００ｇで３分間遠心分離し、その後、上清を再度廃棄した。ペレットを、元の上清量の１／１００に再懸濁し、滴定まで－８０℃で保存した。
ベクターを用いるＨＥＫ２９３細胞の形質導入

１２個のウイルスベクター（ＲＣ２０４、ＲＣ２０６～２１０およびＲＣ２１２～２１７）でのＨＥＫ２９３細胞の個別の形質導入を、以下のプロトコルを使用して実施した。
１日目：ＨＥＫ２９３細胞を分離し、ＶｉＣｅｌｌを使用してカウントした。細胞を、ウェルあたり４００μＬ ＤＭＥＭ／Ｇｌｕｔａｍａｘ＋１０％ＦＢＳ中の１ｘ１０^５細胞で２４ウェルプレートに播種した。
２日目：必要な量のウイルスベクターを添加して２ｘ１０^２の感染多重度（ＭＯＩ）を達成した。
３日目：培地を除去し、３００μＬの無血清ＤＭＥＭ／Ｇｌｕｔａｍａｘと交換した。
５日目：上清を回収し、４℃、１４０００ｒｐｍで遠心分離した。清澄化した上清を、新しいチューブに移し、分析の準備をした。
ウエスタンブロット

形質導入からの上清を、ウエスタンブロットにより分析した（ＣＦＩおよびＦＨＬ－１に対する一次抗体；およびＥＣＬプライムウエスタンブロッティング検出試薬を使用した）。

ウエスタンブロット分析結果を、図３に示す。
ＣＦＩ ＥＬＩＳＡ

形質導入からの上清を、以下の手順を使用して、ＣＦＩ ＥＬＩＳＡによって分析した：
１日目：ＥＬＩＳＡプレートを、１ｘコーティングバッファーで４０００分の１に希釈した１ウェルあたり５０μＬのヒツジ抗ＣＦＩポリクローナル抗体でコートした。プレートを、４℃で一晩保存した。
２日目：プレートを、ウェルあたり２００μＬのＰＢＳ－Ｔｗｅｅｎ（０．０５％）で３回洗浄し、ティッシュにブロットした。

２００μＬのＰＢＳ－Ｔｗｅｅｎ（０．０５％）中の１％ＢＳＡ画分Ｖを、各ウェルに適用し、室温で２時間ブロックした。

サンプルおよび検量線を、ブロッキングインキュベーション中に作成した。検量線を、ＤＭＥＭ ２％ＦＢＳで希釈した精製ＣＦＩタンパク質（Ｓｉｇｍａ Ｃ５９３８－１ＭＧ）を使用して作成した。サンプルを、ＤＭＥＭ２％ＦＢＳで１：５および１：１０に希釈した。

２時間のブロッキング後に、プレートを上記のとおり３回洗浄し、次に５０μＬのサンプルまたは標準を各ウェルにロードし、室温で１時間インキュベートした。

１時間後に、プレートを上記のように洗浄し、次に抗ＣＦＩ（０ｘ２１）抗体を、ＤＭＥＭ ５％ＦＢＳで２０００分の１に希釈し、このうちの５０μＬを、各ウェルに適用し、室温で１時間インキュベートした。

１時間後に、プレートを上記のように洗浄し、次にロバ抗マウス－ＨＲＰ抗体をＤＭＥＭ ５％ＦＢＳで５０００分の１に希釈し、このうちの５０μＬを、各ウェルに適用し、室温で１時間インキュベートした。

１時間後に、プレートを上記のように洗浄し、次に１００μＬのＴＭＢ試薬を、各ウェルに適用し、室温で暗所にて約１５分間インキュベートした。十分な青色が得られたら、１００μＬの１Ｍ硫酸を、各ウェルに添加して反応を停止させた。

Ａ４５０を次に記録し、データを、処理し、分析のためにＭｉｃｒｏｓｏｆｔＥｘｃｅｌに転送した。
ＦＨＬ１ ＥＬＩＳＡ

形質導入からの上清を、以下の手順を使用して、ＦＨＬ１用のＥＬＩＳＡにより分析した：
１日目：ＥＬＩＳＡプレートを、ウェルあたり５０μＬ、１００ｍＭ炭酸塩／重炭酸塩バッファー、ｐＨ９．６中の３μｇ／ｍＬ抗ＦＨＬ－１抗体（Ｂｉｏｒａｄ、ＡｂＤ３３５９４．１）でコートした。プレートを、４℃で一晩保存した。
２日目：プレートを、ウェルあたり２００μＬのＴＢＳ－Ｔｗｅｅｎ（０．０５％）で３回洗浄し、ティッシュにブロットした。

２００μＬのＰＢＳ－Ｔｗｅｅｎ（０．０５％）中の１％ＢＳＡ画分Ｖを、各ウェルに適用し、室温で２時間ブロックした。

サンプルおよび検量線を、ブロッキングインキュベーション中に作成した。検量線を、ＤＭＥＭ ２％ＦＢＳで希釈したＦＨＬ１精製タンパク質を使用して作成した。サンプルを、ブロッキングバッファーで１：５および１：１０に希釈した。

２時間のブロッキング後に、プレートを上記のとおり３回洗浄し、次に５０μＬのサンプルまたは標準を、各ウェルにロードし、室温で１時間インキュベートした。

１時間後に、プレートを上記のように洗浄し、次に抗ＣＦＨ抗体（０ｘ２４、Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、ｓｃ－５３０６７）を、ブロッキングバッファー中０．３３μｇ／ｍＬで添加し、このうちの５０μＬを、各ウェルに適用し、室温で１時間インキュベートした。

１時間後に、プレートを上記のように洗浄し、次にロバ抗マウスＨＲＰ抗体を、ブロッキングバッファー中に０．２μｇ／ｍＬで添加し、このうちの５０μＬを、各ウェルに適用し、室温で１時間インキュベートした。

１時間後に、プレートを上記のように洗浄し、次に１００μＬのＴＭＢ試薬を、各ウェルに適用し、室温で暗所にて約１５分間インキュベートした。十分な青色が得られたら、５０μＬの１Ｍ硫酸を、各ウェルに添加して反応を停止させた。

Ａ４５０を次に記録し、データを、処理し、分析のためにＭｉｃｒｏｓｏｆｔＥｘｃｅｌに転送した。
結論

ウエスタンブロットおよびＥＬＩＳＡ研究の結果を、それぞれ図３および図４に示す。

ウエスタンブロットおよびＥＬＩＳＡ分析から、次のように結論付けられ得る。
すべての候補は、形質導入後にＣＦＩおよびＦＨＬ１の両方を生成する。
ＣＦＩおよびＦＨＬ１コドンの最適化は、タンパク質レベルを増加させる。
ＲＣ２０６およびＲＣ２１２は、ＣＦＩの発現に最適であるが、ＲＣ２１２は、最適なＣＦＬ ＦＨＬ１モル比（＞１：２）を達成する。
ＲＣ２１２は、ＣＦＩ／ＦＨＬ１発現に基づく最適な候補である。
ベクターパッケージング
アルカリゲル分析

２４μＬの各未希釈サンプルとＳＲＭ対照（２．４５ｘ１０^１１ｖｇ／ｍＬ；ＳＲＭ＃１６－０４８）を、０．８％アルカリゲルにロードし、これを、アルカリランニングバッファー（４０ｍｌ ５０ｘアルカリバッファー＋１９６０ｍＬ ＭｉｌｌｉＱ水）中、冷蔵室において２０Ｖで１９時間泳動した。

ゲルを次に、室温で１時間３ゲル容量の０．１Ｍ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０中でインキュベートし、次に室温で２時間４ｘＳＹＢＲＧｏｌｄ核酸染色液を含む１ゲル容量の０．１Ｍ ＮａＣｌ中でインキュベートし（露光から保護）、次いでＭｉｌｌｉＱ水で２回すすいだ。

ゲルを次に、１０秒の露光時間でＣｈｅｍｉｄｏｃにセットしたＳＹＢＲＧｏｌｄＵＶトランスイルミネーターを使用して可視化した。

結果を、図５（上部パネル）に示す。
Ｆｕｌｌ：ｅｍｐｔｙ粒子の比

Ｆｕｌｌウイルス粒子対ｅｍｐｔｙウイルス粒子の比率を、ｑＰＣＲ（ＤＮＡ力価）およびキャプシドＥＬＩＳＡから計算される力価を比較することにより分析した。

結果を、図５（下部パネル）に示す。
結論

これらの分析から、次のように結論付けられ得る：
効率的なパッケージングは、ＲＣ２１２のみである。
４．７ｋｂを超えるゲノムのパッケージングは、不完全であると考えられる。
ＲＣ２１２のＦｕｌｌ－ｅｍｐｔｙ粒子比は、対照モノシストロン性ベクターに匹敵する。
ＲＣ２１２は、パッケージ分析に基づく最適な候補である。
Ｃ３ｂ切断アッセイ

Ｃ３ｂ切断アッセイでは、１ｍｇの血漿精製Ｃ３ｂを、形質導入されたＨＥＫ２９３上清サンプルと３７℃で１時間インキュベートする。

分析を、ＥＬＩＳＡまたはウエスタンブロット分析（以下に記載）を使用して実施した。ｐ－メルカプトエタノールを含む４ｘＬａｅｍｍｌｉバッファーを添加して、反応を停止させた。サンプルを、希釈し、１０％プレキャストポリアクリルアミドＳＤＳ ＰＡＧＥゲル（Ｂｉｏ－Ｒａｄ）にロードした。ＰＶＤＦメンブレン（Ｂｉｏ－Ｒａｄ）への転写およびブロッキングバッファー（１ｘＴＢＳ ｐＨ８［Ｓｉｇｍａ］／０．０５％Ｔｗｅｅｎ－２０および５％乾燥脱脂粉乳［Ｍａｒｖｅｌ］）中のブロッキング後に、Ｃ３ｂ切断を、ヤギ抗ヒトＣ３抗体（Ｂｉｏｒａｄ）を使用して検出した。

結果を、図６に示す。これより、ＲＣ２１２が最も強力であることを結論付けることができる。
実施例３－複数の補体調節因子の追加に関する追加の補体ダウンレギュレーション
方法

補体調節因子の機能的活性を測定するために、ＬＰＳ沈着アッセイを実施した。Ｎｕｎｃ Ｍａｘｉｓｏｒｐプレートを、希釈したＥＬＩＳＡコーティングバッファー（Ｂｉｏ Ｒａｄ、ＢＵＦ０３０Ｂ）中の１μｇ／ｍＬ ＬＰＳ（Ｓｉｇｍａ、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ Ｏ２６：Ｂ６）で４℃にて一晩コーティングした。プレートを、ＰＢＳ－０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０で洗浄した。代替経路バッファー（ＰＢＳ、２ｍＭ ＭｇＣｌ２および１０ｍＭ ＥＧＴＡ、ｐＨ７．２）中の２５％血清を調製し、補体調節因子を補充した。希釈液をＬＰＳコーティングプレートに加え、３７℃で１時間インキュベートした。１０ｍＭ ＥＤＴＡを、補体の活性化を防ぐために、血清を含む別のチューブに添加し、このサンプルを使用してアッセイ中のバックグラウンドシグナルを測定した。プレートを前と同じように洗浄し、補体活性化を、プレート上のＣ３沈着を検出することにより測定した（ヤギ抗Ｃ３ｄ Ａｂｅａｍ、ａｂ１７４５３；１：２０，０００）。周囲温度で１時間インキュベートした後、プレートを洗浄し、ロバ抗マウスＨＲＰ結合抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ、７１５－０３５－１５０；１：１，０００）さらに１時間インキュベートした。４回洗浄後に、プレートを、１－Ｓｔｅｐ Ｕｌｔｒａ ＴＭＢ－ＥＬＩＳＡ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）とインキュベートし、反応を、１ＭＨ_２ＳＯ_４でクエンチした。４５０ｎｍでのＯＤを、Ｖａｒｉｏｓｋａｎプレートリーダー（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ）を使用して測定し、ＩＣ５０を、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍを使用して４ＰＬフィット曲線から決定した。補体保存された女性のヒト血清を、これらの実験に使用した。
結果

補体調節因子タンパク質、補体因子Ｉ、可溶性補体受容体１、補体因子Ｈまたは因子Ｈ様１のＩＣ５０濃度を、同じアッセイプラットフォームを使用する別の実験で決定した。ここで、これらの結果は、調節因子タンパク質のＩＣ５０濃度が追加されたときに、代替経路（Ｃ３沈着の減少により測定される）がクエンチされることを示す（影付きのカラム）（図８）。補体因子Ｉにその補因子の１つ（可溶性補体受容体１、補体因子Ｈまたは因子Ｈ様１）が同時補充される場合、追加のクエンチが観察され（白いカラム）、２つの補体調節因子の濃度を増加させることは、いずれか一方のみを添加することよりも優れていることを示す。これらの結果は、過剰反応性補体系により引き起こされる状態が、複数の補体調節因子の二重投与から利益を得る可能性があることを示している。

個々の調節因子のＩＣ５０濃度は、試験した調節因子間で大きく異なり（ｓＣＲ１は、ＦＨＬ１の約１０倍強力であり、ＣＦＨおよびＣＦＩよりも約５０倍強力である）、分子量も異なる（ｓＣＲ１＝２１３ｋＤａ、ＣＦＩ＝８８ｋＤａ、ＣＦＨ＝１５５ｋＤａ、およびＦＨＬ１＝４９ｋＤａ）が、モル濃度を、この直接比較に使用した。タンパク質の内因性レベルも、観察された効力差に寄与し、因子Ｈは、ＦＨＬ１またはｓＣＲ１よりもはるかに高い血漿濃度を有する。代替経路をクエンチするためのＩＣ５０濃度での調節因子の能力を比較することにより、ｓＣＲ１が最も強力な調節因子であることが実証された。なぜなら、これは、ＩＣ５０を達成するために最低モル濃度を必要とするからである。ＣＲ１は、赤血球上の膜結合受容体であり、それは血液中で豊富であるが、血清／血漿では豊富でなく、かつ微量の液体ＣＲ１（すなわち、ｓＣＲ１）のみが血清または血漿中に存在するため、これは、ｓＣＲ１が、赤血球が脈絡膜腔、ブルッフ膜網膜下腔、および糸球体などの、血漿から分離されている部位において、非常に強力な補体調節因子およびＣＦＩ補因子であることを暗示する。
実施例４－ｉｎ ｖｉｔｒｏ発現での補体因子Ｉおよび因子Ｈ様１の発現
方法

ＨＥＫ－２９３細胞に、次のｒＡＡＶベクターの１つを形質導入した：ＣＦＩを発現するＡＡＶ（ＧＴ００５）、ＦＨＬ１を発現するＡＡＶ（ＲＣ００１）、またはＣＦＩおよびＦＨＬ１を発現するＡＡＶ（ＧＴ００７）。上清を、非還元ウエスタンブロットにより分析して、タンパク質の相対的発現を決定した。ヤギ抗ヒトＣＦＩ（Ｃｏｍｐｔｅｃｈ）およびヤギ抗ヒトＦＨ（Ｑｕｉｄｅｌ、Ａ３１２）を、一次抗体として使用してＣＦＩおよびＦＨＬ１タンパク質を検出した。
結果

ウエスタンブロット分析は、ＣＦＩおよびＦＨＬ１タンパク質が発現され、３つのコンストラクトすべてから培地に分泌されることを示した（図９Ａおよび図９Ｂ）。この発現パターンを確認するために、上清をイムノブロッティングにより分析して、ＣＦＩタンパク質を可視化して、上清中の正確なプロセシングおよび分泌を決定した。図９Ｂに示すように、重鎖および軽鎖ＣＦＩおよびプロＣＦＩが、ＧＴ００７による形質導入後にＨＥＫ－２９３細胞から分泌され、ＣＦＩタンパク質が翻訳されたこと、およびタンパク質分解プロセシングが生じたことを確証する。ＣＦＩ ｃＤＮＡをコードするプラスミドでトランスフェクトされた哺乳動物細胞では、組換えプロＣＦＩタンパク質のすべてが切断を受けるわけではなく、プロＣＦＩ（８８ｋＤａ）、および５０ｋＤａの重鎖および３８ｋＤａの軽鎖からなるプロセシング済みの成熟ＣＦＩの分泌をもたらす。
実施例５－ｉｎ ｖｉｔｒｏ発現での補体因子Ｉおよび因子Ｈ様１の機能性
方法

形質導入された細胞から分泌されたＣＦＩおよびＦＨＬ１の機能的活性を分析するために、ＣＦＩのみを発現するＡＡＶ（ＧＴ００５）、ＦＨＬ１のみを発現するＡＡＶ２（ＲＣ００１）：で形質導入された；ＧＴ００５およびＲＣ００１の両方で同時形質導入された；またはＣＦＩおよびＦＨＬ１発現ＡＡＶ（ＧＴ００７）で形質導入されたＨＥＫ－２９３細胞からの馴化した上清を、Ｃ３ｂ切断アッセイで試験した（図１０）。このアッセイでは、Ｃ３ｂを、ＣＦＩおよびＦＨＬ１の供給源と混合し、３７℃で４時間インキュベートする。このインキュベーション時間を、形質導入された細胞から発現された導入遺伝子の濃度に対し最適化した。このアッセイの原理は、ＦＨＬ１の存在下でＣ３ｂをｉＣ３ｂおよびＣ３ｆに切断するＣＦＩの能力に基づく。アッセイを、Ｃ３ｂ切断産物を染色する、Ｃ３ｂウエスタンブロットにより、およびＣ３ｂ分解産物ｉＣ３ｂの量を定量化するｉＣ３ｂＥＬＩＳＡにより分析する。
結果

Ｃ３ウエスタンブロットおよびｉＣ３ｂ ＥＬＩＳＡの結果は両方とも、ｉｎ ｖｉｔｒｏで発現されたＣＦＩおよびＦＨＬ１の機能的活性を相関させ示す。Ｃ３ｂウエスタンブロット（図１０Ａ）では、レーン１は、Ｃ３ｂのみを示し、レーン２は、ＣＦＩおよびＦＨＬ１と混合されたＣ３ｂを示し（陽性対照）、レーン３は、非形質導入細胞からの馴化上清と混合されたＣ３ｂを示す（ＵＴＤ、陰性対照）。レーン４は、ＧＴ００５（ＣＦＩ）およびＲＣ００１（ＦＨＬ１）で同時形質導入された細胞の馴化上清でのＣ３ｂ分解を示す。レーン５は、ＧＴ００７（ＣＦＩおよびＦＨＬ１を発現）で形質導入された細胞の馴化上清を示す。このアッセイは、ＧＴ００７形質導入細胞の馴化上清が、Ｃ３ｂをｉＣ３ｂに分解する活性ＣＦＩおよびＦＨＬ１を含むことを確認する。

ｉＣ３ｂ ＥＬＩＳＡ（図１０Ｂ）を、Ｃ３ｂウエスタンブロットに使用した同じ上清を使用して実行し、ｉＣ３ｂの量を、タンパク質機能の直接関数として定量化した。前のとおり、ＣＦＩおよびＦＨＬ１とインキュベートしたＣ３ｂは、ＧＴ００５およびＲＣ００１の同時形質導入細胞の馴化上清と同様に陽性対照として作用する。GＴ００７形質導入細胞の上清は、Ｃ３ｂ切断活性を示し、活性ＣＦＩおよびＦＨＬ１の存在を確認する。
実施例６－脈絡膜血管新生（ＣＮＶ）のマウスモデルにおけるｉｎ ｖｉｖｏ有効性
方法

レーザー誘発脈絡膜血管新生モデルを、マウスで実施した。マウス（ｎ＝１２～１４／群）は、ＣＮＶ誘発の４週間前にＡＡＶベクターの片側網膜下注射、またはＣＮＶ誘発直後にアフリベルセプト（陽性対照）の投与を受けた。反対側の眼は、対照として機能した。マウスを、４日目および７日目に、ｉｎ ｖｉｖｏ撮像、フルオレセイン血管造影（ＦＡ）、スペクトル領域光コヒーレンストモグラフィー（ＳＤ－ＯＣＴ）を使用して追跡した。ＣＮＶ誘発後のフォローアップ７日目の研究期間終了時に、マウスを、麻酔の過剰摂取により屠殺し、血清を収集し、眼を除核した。神経網膜を、切除し、液体窒素中で新鮮凍結した。脈絡膜を後固定し、脈絡膜フラットマウントを調製した。脈絡膜フラットマウントからの組織学的分析を使用して、ＣＮＶ病変におけるイソレクチンＢ４染色の領域を定量化した。
結果

アフリベルセプト群は、ＣＮＶ誘発後４日でヌルベクター対照群と比較してＣＮＶ漏出の程度に有意に影響を及ぼした（他のすべての群と比較してＰ＜０．０００１）が、これは、おそらく経時的な薬物ウォッシュアウトのため、７日目までに失われた。ＣＮＶ漏出領域は、４日目（すべての群比較でＰ＜０．０００１）および７日目（Ｐ＝０．０１９対ヌルベクター群）の両方で、アフリベルセプト治療眼で有意に減少した。

脈絡膜フラットマウントを、フルオレセイン標識イソレクチンで共染色した。イソレクチンＢ４は、内皮細胞を染色し、ＣＮＶ病変を可視化するために使用される。データは、コルモゴロフ－スミルノフ検定（Ｐ＜０．０５）により評価されるとおり、非正規分布であったため、観察された差異の統計的有意性を、一般化線形モデル（ＧＬＭ）分析を使用して決定した。すべての治療群は、ヌル治療群と比較して、イソレクチンＢ４染色領域の統計的に有意な減少を示した（ＧＬＭ、すべてについてＰ＜０．０５）。ＣＦＩ発現ベクターおよびＦＨＬ１発現ベクター（ＧＴ００５：ＲＣ００１）の同時投与は、最も有意な減少をもたらした。

上記の明細書に記載されているすべての刊行物は、参照により本明細書に組み込まれる。本発明の開示された剤、組成物、使用および方法の様々な改変および変形は、本発明の範囲および趣旨から逸脱することなく、当業者に明らかであろう。本発明は、特定の好ましい実施形態に関連して開示されているが、特許請求される本発明は、そのような特定の実施形態に過度に限定されるべきではないことを理解されたい。実際、当業者に明らかである、本発明を実施するための開示された態様の様々な改変は、以下の特許請求の範囲内にあることが意図されている。

本発明は、以下の番号が付けられた段落によりさらに説明される：
［項目１］治療において同時に、個別にまたは順次使用するための組み合わせ調製物として、（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、またはそれをコードするヌクレオチド配列、を含む生成物。
［項目２］眼の補体介在性障害を治療するかまたは予防する際に、同時に、個別にまたは順次使用するための組み合わせ調製物として、（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列、を含む生成物。
［項目３］補体介在性障害が、加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）または糖尿病網膜症、好ましくはＡＭＤである、項目２に記載の使用のための生成物。
［項目４］ＡＭＤが、乾性ＡＭＤである、項目３に記載の使用のための生成物。
［項目５］生成物が、少なくとも２：１、好ましくは少なくとも３：１、より好ましくは少なくとも８：１、より好ましくは少なくとも１５：１の（ｉ）：（ｉｉ）モル比で対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する、項目１～４のいずれか一項に記載の使用のための生成物。
［項目６］２：１～１２：１、好ましくは３：１～１０：１の（ｉ）：（ｉｉ）モル比で対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する、項目１～Ｘのいずれか一項に記載の使用のための生成物。
［項目７］（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）および（ｉｉ）補因子Ｉ（ＣＦＩ）をコードするヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチド。
［項目８］項目７に記載の単離されたポリヌクレオチドであって、
（ａ）任意により（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の上流にある、ＣＭＶプロモーター、ならびに
（ｂ）任意により（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の下流にある、ＷＰＲＥ調節エレメント、ならびに／または
（ｃ）任意により（ｉ）および（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の下流にある、ポリＡシグナル、任意によりウシ成長ホルモンポリＡシグナル
をコードするヌクレオチド配列をさらに含む、ポリヌクレオチド。
［項目９］（ｉ）をコードするヌクレオチド配列が、（ｉｉ）をコードするヌクレオチド配列の上流にある、項目７または項目８に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１０］１つ以上のアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）逆方向末端反復（ＩＴＲ）をさらに含む、項目７～９のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１１］その５’末端にＡＡ ＶＩＴＲおよびその３’末端にＡＡＶ ＩＴＲを含む、項目７～１０のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１２］
（ａ）５’ＡＡＶ ＩＴＲ；
（ｂ）ＣＭＶプロモーター；
（ｃ）ＦＨＬ１またはＣＦＨ、好ましくはＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列；
（ｄ）任意によりフューリン切断部位、ＧＳＧ、１１ａａ１Ｄ配列およびＦ２Ａ配列を含むか、これらにより画定される、リンカー；
（ｅ）ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列；
（ｆ）任意によりＷＰＲＥ３調節エレメントである、ＷＰＲＥ調節エレメント；
（ｇ）ウシ成長ホルモンポリＡシグナル；および
（ｈ）３’ＡＡＶ ＩＴＲ、
を含む、項目７～１１のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１３］ＡＡＶ ＩＴＲが、ＡＡＶ２またはＡＡＶ８ ＩＴＲである、項目７～１２のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１４］ＦＨＬ１またはＣＦＨおよびＣＦＩをコードするヌクレオチド配列が、コドン最適化される、項目７～１３のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１５］（ａ）ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列が、配列番号１２に対し少なくとも７５％の配列同一性を有し；かつ／または（ｂ）ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列が、配列番号１０に対し少なくとも７５％の配列同一性を有する、項目７～１４のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１６］（ａ）ＦＨＬ１をコードするヌクレオチド配列が、配列番号１２であり、かつ／または（ｂ）ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列が、配列番号１０である、項目７～１５のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１７］配列番号２２または２３のヌクレオチド配列、または配列番号２２または２３に対し少なくとも７５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む、項目７～１６のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１８］４．７ｋｂ以下である、項目７～１７のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
［項目１９］項目７～１８のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
［項目２０］アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクターである、項目１９に記載のベクター。
［項目２１］ウイルスベクター粒子の形態である、項目１９または２０に記載のベクター。
［項目２２］ＡＡＶベクター粒子が、ＡＡＶ２またはＡＡＶ８ゲノム、およびＡＡＶ２またはＡＡＶ８キャプシドタンパク質を含む、項目２１に記載のベクター。
［項目２３］項目７～１８のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含む細胞。
［項目２４］項目１９～２２のいずれか一項に記載のベクターにより形質導入された細胞。
［項目２５］薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤と組み合わせて項目７～２４のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を含む医薬組成物。
［項目２６］治療で使用するための項目７～２４のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目２７］眼の補体介在性障害を治療するかまたは予防する際に使用するための、項目７～２４のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目２８］補体介在性障害が、加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）または糖尿病網膜症、好ましくはＡＭＤである、項目２７に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目２９］ＡＭＤが、乾性ＡＭＤである、項目２８に記載の使用ためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目３０］地図状萎縮の形成が、防止されるかもしくは低減される、かつ／または地図状萎縮の量が、低減される、項目２６～２９のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目３１］地図状萎縮の進行が、減速される、項目２６～３０のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目３２］同じ期間の未治療の眼と比較して、対象の治療された眼への投与後１２ヶ月にわたり地図状萎縮領域の増加が少なくとも１０％減少する、項目２６～３１のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目３３］ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞の投与が、対象内または対象の眼内（網膜色素上皮（ＲＰＥ）など）のＣ３ｂ不活性化およびｉＣ３ｂ分解活性のレベルを、任意により対象、またはその眼またはそのＲＰＥの正常レベルを超えるレベルに、増加させる、項目２６～３２のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目３４］ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞が、眼内に投与される、項目２６～３３のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目３５］ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞が、網膜下、直接網膜、脈絡膜上または硝子体内注射により対象の眼に投与される、項目２６～３４のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目３６］ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞が、網膜下注射により対象の眼に投与される、項目２６～３５のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
［項目３７］それを必要とする対象に項目７～２４のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を投与することを含む、補体介在性の眼の障害を治療するかまたは予防する方法。
［項目３８］対象に（ｉ）補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）または補体因子Ｈ（ＣＦＨ）、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）を提供する方法であって、対象の眼に項目７～２４のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を送達することを含む、方法。

Claims (40)

1. 治療における同時の、個別のまたは順次の使用のための組み合わされた調製物として、（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）、またはそれをコードするヌクレオチド配列を含む生成物。
2. 補体介在性障害、好ましくは眼の補体介在性障害を治療するまたは予防することにおける同時の、個別のまたは順次の使用のための組み合わされた調製物として、（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）またはそれをコードするヌクレオチド配列を含む生成物。
3. 前記補体介在性障害が、加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）または糖尿病網膜症、好ましくはＡＭＤである、請求項２に記載の使用のための生成物。
4. 前記ＡＭＤが、乾性ＡＭＤである、請求項３に記載の使用のための生成物。
5. 前記補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子が、補体因子Ｈ様タンパク質１（ＦＨＬ１）、補体因子Ｈ（ＣＦＨ）；補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片；および膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片からなる群から選択される、請求項１～４のいずれか一項に記載の使用のための生成物。
6. 
   少なくとも２：１、好ましくは少なくとも３：１、より好ましくは少なくとも８：１、より好ましくは少なくとも１５：１の（ｉ）：（ｉｉ）モル比で対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する、請求項１～５のいずれか一項に記載の使用のための生成物。
7. ２：１～１２：１、好ましくは３：１～１０：１の（ｉ）：（ｉｉ）モル比で対象に（ｉ）および（ｉｉ）を提供する、請求項１～６のいずれか一項に記載の使用のための生成物。
8. （ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子；および（ｉｉ）補因子Ｉ（ＣＦＩ）をコードするヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチド。
9. 
   （ａ）任意により前記（ｉ）および（ｉｉ）をコードする前記ヌクレオチド配列の上流にある、ＣＭＶプロモーター、ならびに
   （ｂ）任意により前記（ｉ）および（ｉｉ）をコードする前記ヌクレオチド配列の下流にある、ＷＰＲＥ調節エレメント、ならびに／または
   （ｃ）任意により前記（ｉ）および（ｉｉ）をコードする前記ヌクレオチド配列の下流にある、ポリＡシグナル、任意によりウシ成長ホルモンポリＡシグナル
   をコードするヌクレオチド配列をさらに含む、請求項８に記載の単離されたポリヌクレオチド。
10. （ｉ）をコードする前記ヌクレオチド配列が、（ｉｉ）をコードする前記ヌクレオチド配列の上流にある、請求項８または９に記載の単離されたポリヌクレオチド。
11. 前記ポリヌクレオチドが、１つ以上のアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）逆方向末端反復（ＩＴＲ）をさらに含む、請求項８～１０のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
12. 前記ポリヌクレオチドが、その５’末端にＡＡＶ ＩＴＲおよびその３’末端にＡＡＶ ＩＴＲを含む、請求項８～１１のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
13. 
    （ａ）５’ＡＡＶ ＩＴＲ；
    （ｂ）ＣＭＶプロモーター；
    （ｃ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子をコードするヌクレオチド配列；
    （ｄ）任意によりフューリン切断部位、ＧＳＧ、１１ａａ１Ｄ配列およびＦ２Ａ配列であるかこれらにより画定される、リンカー；
    （ｅ）ＣＦＩをコードするヌクレオチド配列；
    （ｆ）任意によりＷＰＲＥ３調節エレメントである、ＷＰＲＥ調節エレメント；
    （ｇ）ウシ成長ホルモンポリＡシグナル；および
    （ｈ）３’ＡＡＶ ＩＴＲ、
    を含む、請求項８～１２のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
14. 前記補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子が、補体因子Ｈ様タンパク質（ＦＨＬ１）；補体因子Ｈ（ＣＦＨ）；補体受容体１（ＣＲ１）またはその断片；および膜補因子タンパク質（ＭＣＰ）またはその断片からなる群から選択される、請求項８～１３のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
15. 前記ＡＡＶ ＩＴＲが、ＡＡＶ２またはＡＡＶ８ ＩＴＲである、請求項８～１４のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
16. 前記ＣＦＩ補因子、およびＣＦＩをコードする前記ヌクレオチド配列が、コドン最適化される、請求項８～１５のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
17. （ａ）ＦＨＬ１をコードする前記ヌクレオチド配列が、配列番号１２に対し少なくとも７５％の配列同一性を有し；かつ／または（ｂ）ＣＦＩをコードする前記ヌクレオチド配列が、配列番号１０に対し少なくとも７５％の配列同一性を有する、請求項８～１６のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
18. （ａ）ＦＨＬ１をコードする前記ヌクレオチド配列が、配列番号１２であり；かつ／または（ｂ）ＣＦＩをコードする前記ヌクレオチド配列が、配列番号１０である、請求項８～１７のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
19. 前記ポリヌクレオチドが、配列番号２２または２３の前記ヌクレオチド配列、または配列番号２２または２３に対し少なくとも７５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む、請求項８～１８のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
20. 前記ポリヌクレオチドが、４．７ｋｂ以下である、請求項８～１９のいずれか一項に記載の単離されたポリヌクレオチド。
21. 請求項８～２０のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
22. アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクターである、請求項２１に記載のベクター。
23. ウイルスベクター粒子の形態である、請求項２１または２２に記載のベクター。
24. 前記ＡＡＶベクター粒子が、ＡＡＶ２またはＡＡＶ８ゲノム、およびＡＡＶ２またはＡＡＶ８キャプシドタンパク質を含む、請求項２３に記載のベクター。
25. 請求項８～２０のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含む細胞。
26. 請求項２１～２４のいずれか一項に記載のベクターにより形質導入された細胞。
27. 薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤と組み合わせて請求項８～２６のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を含む医薬組成物。
28. 治療における使用のための請求項８～２６のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
29. 補体介在性障害、好ましくは眼の補体介在性障害を治療するまたは予防することにおける使用のための、請求項８～２６のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
30. 前記補体介在性障害が、加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）または糖尿病網膜症、好ましくはＡＭＤである、請求項２９に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
31. 前記ＡＭＤが、乾性ＡＭＤである、請求項３０に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
32. 地図状萎縮の形成が、防止されるかもしくは低減される、かつ／または地図状萎縮の量が、低減される、請求項２８～３１のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
33. 前記地図状萎縮の進行が、減速される、請求項２８～３２のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
34. 同じ期間にわたる未治療の眼と比較して、対象の治療された眼への投与後１２ヶ月にわたり地図状萎縮領域での増加における少なくとも１０％の減少がある、請求項２８～３３のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
35. ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞の投与が、任意により対象、またはその眼またはそのＲＰＥでの正常レベルを超えるレベルに、対象での、または対象の眼での（網膜色素上皮（ＲＰＥ）でなど）Ｃ３ｂを不活性化するおよびｉＣ３ｂ分解の活性のレベルを増加させる、請求項２８～３４のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
36. 前記ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞が、眼内に投与される、請求項２８～３５のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
37. 前記ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞が、網膜下、直接網膜、脈絡膜上または硝子体内注射により対象の眼に投与される、請求項２８～３６のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
38. 前記ポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞が、網膜下注射により対象の眼に投与される、請求項２８～３７のいずれか一項に記載の使用のためのポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞。
39. それを必要とする対象に請求項８～２６のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を投与することを含む補体介在性障害、好ましくは眼の補体介在性障害を治療するまたは予防する方法。
40. 対象に（ｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）補因子、および（ｉｉ）補体因子Ｉ（ＣＦＩ）を提供する方法であって、前記対象に、好ましくは前記対象の眼に請求項８～２６のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、ベクターまたは細胞を送達することを含む、方法。
    
    

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