JP2020012797A - Method and kit for detecting zika virus antigen and anti-zika virus antibody - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、ジカウイルス抗原および抗ジカウイルス抗体を同一反応系で検出するための免疫学的方法、および、当該検出を利用してジカウイルス感染症の診断を補助する方法に関する。また、本発明は、これら方法に用いられるキットに関する。 The present invention relates to an immunological method for detecting a Zika virus antigen and an anti-Zika virus antibody in the same reaction system, and a method of using the detection to assist diagnosis of a Zika virus infection. The present invention also relates to kits used in these methods.
ジカウイルスはフラビウイルス科に属する１本鎖ＲＮＡの球形ウイルスであり、２つの遺伝子型（アフリカ型とアジア型）が存在する。ヒトは、ネッタイシマカやヒトスジシマカといった媒介蚊に刺されることにより感染する。臨床的特徴は、２〜１２日間の潜伏期の後に、全身の不快感、倦怠感といった前駆的症状にはじまり、突然の発熱、頭痛、全身の筋肉痛などが出現する。時にギランバレー症候群を引き起こす可能性や、妊婦への感染では小頭症児の発生が指摘されている。このため、ジカウイルスの流行地域からの入国者や帰国者については、本症の感染の疑いがある場合には、ジカウイルス感染の診断を行う必要がある。 Zika virus is a single-stranded RNA spherical virus belonging to the Flaviviridae family, and has two genotypes (African and Asian). Humans are transmitted by bites of vector mosquitoes such as Aedes aegypti and Aedes albopictus. The clinical features include, after an incubation period of 2 to 12 days, precursor symptoms such as general discomfort and malaise, and sudden fever, headache, and general muscle pain. It has been pointed out that it may cause Guillain-Barre syndrome at times and that microcephaly occurs in pregnant women. Therefore, it is necessary to make a diagnosis of Zika virus infection for those who enter or return from the Zika virus endemic area if there is a suspicion of infection with this disease.
ジカウイルスの診断においては、遺伝子増幅法（ＲＴ−ＰＣＲ）によるウイルス遺伝子の検査やウイルスの分離が行われているが、前者は、特別な設備が必要であり、後者は、多くの時間と手間を要する。 In the diagnosis of Zika virus, virus gene inspection and virus isolation are performed by the gene amplification method (RT-PCR). The former requires special equipment, and the latter requires much time and labor. Cost.
一方、血清中の抗体（ＩｇＭやＩｇＧ）を検出する血清学的検査も行われているが、フラビウイルス科に属する他のウイルスとの交差反応性（偽陽性）の問題が指摘されている。また、血清学的検査は、直接ジカウイルスを検出するものではなく、例えば、ジカウイルスに対する抗体が生じていない感染初期には適用できないという本質的問題を避けることができない。 On the other hand, serologic tests for detecting antibodies (IgM and IgG) in serum have been performed, but a problem of cross-reactivity (false positive) with other viruses belonging to the Flaviviridae family has been pointed out. In addition, serologic tests do not directly detect Zika virus and cannot avoid the essential problem that it cannot be applied, for example, in the early stage of infection when antibodies against Zika virus have not been generated.
最近になり、ジカウイルスＮＳ１タンパク質を利用することで、交差反応性の問題を低減させることが可能であることが報告され（非特許文献１）、ジカウイルスのＮＳ１タンパク質に対する抗体を利用した免疫クロマトグラフィーによる検出法が開発された（特許文献１）。 Recently, it has been reported that the use of the Zika virus NS1 protein can reduce the problem of cross-reactivity (Non-Patent Document 1), and immunochromatography using an antibody against the Zika virus NS1 protein has been reported. A photographic detection method has been developed (Patent Document 1).
しかしながら、従来法では、ジカウイルス抗原とそれに対する抗体の双方を検出したい場合、別々に免疫学的測定を実施する必要があり、これには多くの検体量と、時間および手間を要するという問題があった。 However, in the conventional method, when it is desired to detect both a Zika virus antigen and an antibody thereto, it is necessary to carry out separate immunological measurements, which requires a large amount of a sample and requires time and labor. there were.
本発明は、このような状況に鑑みてなされたものであり、その目的は、ジカウイルス抗原および抗ジカウイルス抗体を同一の反応系で検出するための免疫学的方法を提供することにある。さらなる本発明の目的は、これら免疫学的手法に用いられるキットを提供することにある。 The present invention has been made in view of such a situation, and an object of the present invention is to provide an immunological method for detecting a Zika virus antigen and an anti-Zika virus antibody in the same reaction system. It is a further object of the present invention to provide kits used for these immunological techniques.
本発明者らは、前記課題を解決すべく鋭意検討を行った結果、まず、組換えジカウイルスＮＳ１タンパク質を免疫原として多くのハイブリドーマを作製し、その中から、当該ジカウイルスＮＳ１タンパク質に対して高い反応性を示すモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを選抜することにより、３つのハイブリドーマを取得することに成功した。 The present inventors have conducted intensive studies to solve the above-described problems. As a result, first, a number of hybridomas were produced using the recombinant Zika virus NS1 protein as an immunogen. By selecting hybridomas producing a monoclonal antibody showing high reactivity, three hybridomas were successfully obtained.
次いで、取得したハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体のエピトープ解析を行ったところ、２つのモノクローナル抗体は、共通して、ジカウイルスＮＳ１タンパク質の２６０−３５２番目のペプチド断片に結合し、他の一つのモノクローナル抗体は、ジカウイルスＮＳ１タンパク質の１−１７６番目のペプチド断片に結合することが判明した。 Next, the epitope analysis of the monoclonal antibody produced by the obtained hybridoma was performed. As a result, the two monoclonal antibodies commonly bound to the 260-352nd peptide fragment of the Zika virus NS1 protein, and the other monoclonal antibody Was found to bind to peptide fragment 1-176 of the Zika virus NS1 protein.
これらモノクローナル抗体の組み合わせを、ジカウイルスＮＳ１タンパク質の検出系として用い、一方、ジカウイルスＥＮＶ抗原と抗ＩｇＭ抗体の組み合わせをＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体の検出系として用い、両検出系を組み合わせて同一反応系にて検体との反応性を評価したところ、各検出系を単独で用いた場合と比較して、顕著に高い感度で検体中の目的分子を検出しうることを見出した。さらに、本発明者は、コンボ検出系の反応液の塩濃度を向上させることにより、また、反応液に界面活性剤を添加することにより、非特異的反応を低減させ、抗原抗体反応の検出特異性を向上させることができることを見出し、本発明を完成するに至った。 The combination of these monoclonal antibodies was used as a detection system for the Zika virus NS1 protein, while the combination of the Zika virus ENV antigen and an anti-IgM antibody was used as a detection system for an IgM-type anti-Zika virus antibody. When the reactivity with the sample was evaluated by the system, it was found that the target molecule in the sample could be detected with remarkably high sensitivity as compared with the case where each detection system was used alone. Furthermore, the present inventor has found that by improving the salt concentration of the reaction solution of the combo detection system and by adding a surfactant to the reaction solution, the non-specific reaction can be reduced, and the detection specificity of the antigen-antibody reaction can be reduced. It has been found that the properties can be improved, and the present invention has been completed.
すなわち、本発明は、ジカウイルス抗原および抗ジカウイルス抗体を同一の反応系で検出するための免疫学的方法、当該検出を利用してジカウイルス感染症の診断を補助する方法、および、これら方法に用いられるキットに関し、より詳しくは、以下を提供するものである。 That is, the present invention provides an immunological method for detecting a Zika virus antigen and an anti-Zika virus antibody in the same reaction system, a method for assisting the diagnosis of Zika virus infection using the detection, and these methods. More specifically, the present invention provides the following.
［１］検体中に存在するジカウイルス抗原およびＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出する方法であって、同一の反応系内で、前記検体を
（１）ジカウイルス抗原を捕捉するための第１の捕捉用分子、および
（２）ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を捕捉するための第２の捕捉用分子
に接触させ、
各捕捉用分子に捕捉されたジカウイルス抗原およびＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出する工程を含む方法。
[1] A method for detecting a Zika virus antigen and an IgM anti-Zika virus antibody present in a sample, the method comprising: (1) a first method for capturing the Zika virus antigen in the same reaction system; Contacting a capture molecule and (2) a second capture molecule for capturing an IgM anti-Zika virus antibody;
A method comprising detecting a Zika virus antigen and an IgM anti-Zika virus antibody captured by each capture molecule.
［２］検体と第１の捕捉用分子および第２の捕捉用分子とを、２００〜２０００ｍＭの無機塩の存在下で接触させる、［１］に記載の方法。 [2] The method according to [1], wherein the sample is brought into contact with the first capturing molecule and the second capturing molecule in the presence of 200 to 2000 mM of an inorganic salt.
［３］前記第１の捕捉用分子が抗ジカウイルスＮＳ１抗体であり、前記第２の捕捉用分子がジカウイルスＥＮＶ抗原である、［１］または［２］に記載の方法。 [3] The method according to [1] or [2], wherein the first capturing molecule is an anti-Zika virus NS1 antibody, and the second capturing molecule is a Zika virus ENV antigen.
［４］前記第１の捕捉用分子が抗ジカウイルスＮＳ１モノクローナル抗体であり、前記第２の捕捉用分子がジカウイルスＮＳ１抗原断片であり、前記抗ジカウイルスＮＳ１モノクローナル抗体が前記ジカウイルスＮＳ１抗原断片に実質的に結合しない、［１］または［２］に記載の方法。 [4] The first capture molecule is an anti-Zika virus NS1 monoclonal antibody, the second capture molecule is a Zika virus NS1 antigen fragment, and the anti-Zika virus NS1 monoclonal antibody is the Zika virus NS1 antigen fragment. The method according to [1] or [2], wherein the method does not substantially bind to.
［５］検体と第１の捕捉用分子および第２の捕捉用分子とを、０．０１〜２％の界面活性剤の存在下で接触させる、［１］〜［４］のいずれか１項に記載の方法。 [5] The sample according to any one of [1] to [4], wherein the sample is brought into contact with the first capturing molecule and the second capturing molecule in the presence of 0.01 to 2% of a surfactant. The method described in.
［６］前記界面活性剤が、非イオン性界面活性剤、両イオン性界面活性剤、および陰イオン性界面活性剤から選択される少なくとも１種の界面活性剤である、［１］〜［５］のいずれか１項に記載の方法。 [6] The surfactant according to [1] to [5], wherein the surfactant is at least one surfactant selected from a nonionic surfactant, an amphoteric surfactant, and an anionic surfactant. ] The method according to any one of the above.
［７］検体中に存在するジカウイルス抗原およびＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出するためのキットであって、少なくとも
（１）ジカウイルス抗原を検出するための第１の捕捉用分子、および
（２）ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出するための第２の捕捉用分子
を含むキット
[7] A kit for detecting a Zika virus antigen and an IgM-type anti-Zika virus antibody present in a sample, comprising at least (1) a first capture molecule for detecting a Zika virus antigen, and (2) A) kit comprising a second capture molecule for detecting anti-Zika virus IgM antibodies
ジカウイルス感染症の診断においては、その検査対象としてＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を用いる場合には、感染直後の早い段階では検出できない、という欠点がある反面、ＮＳ１タンパク質を用いる場合には、血中に中和抗体が生成されると、ＮＳ１タンパク質と中和抗体とが免疫複合体を形成し、検出用の抗体との反応性が低下してしまい、充分な検出感度が得られない、という欠点がある。従って、本発明の方法によって、両者を検出することにより、感染後長期に渡ってジカウイルスの存在または痕跡を評価することがきる。また、同一反応系で検出を行うため、別々に検出する場合と比較して、より少ない検体量で検査を行うことができ、時間および手間も節約することができる。 In the diagnosis of Zika virus infection, when an IgM type anti-Zika virus antibody is used as a test object, it cannot be detected at an early stage immediately after infection. When a neutralizing antibody is generated, the NS1 protein and the neutralizing antibody form an immune complex, and the reactivity with the antibody for detection is reduced, resulting in insufficient detection sensitivity. There is. Therefore, by detecting both by the method of the present invention, the presence or trace of the Zika virus can be evaluated over a long period of time after infection. In addition, since the detection is performed in the same reaction system, the test can be performed with a smaller amount of the sample as compared with the case where the detection is performed separately, and time and labor can be saved.
本発明は、検体中に存在するジカウイルス抗原およびＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出する方法であって、同一の反応系内で、前記検体を（１）ジカウイルス抗原を捕捉するための第１の捕捉用分子、および（２）ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を捕捉するための第２の捕捉用分子に接触させ、各捕捉用分子に捕捉されたジカウイルス抗原およびＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出する工程を含む方法、を提供する。また、当該検出によりジカウイルス感染症の診断を補助する方法を提供する。 The present invention relates to a method for detecting a Zika virus antigen and an IgM type anti-Zika virus antibody present in a sample, wherein the sample comprises: (1) a first method for capturing a Zika virus antigen in the same reaction system; And (2) a second capturing molecule for capturing the IgM anti-Zika virus antibody, and the Zika virus antigen and the IgM anti-Zika virus antibody captured by each capturing molecule are detected. A method comprising the steps of: Further, the present invention provides a method for assisting diagnosis of a Zika virus infection by the detection.
本発明において「ジカウイルス」とは、フラビウイルス科に属する＋鎖のＲＮＡウイルスの１種であり、ジカウイルス感染症（ジカ熱）の原因となるウイルスを意味する。 In the present invention, “Zika virus” is a kind of + strand RNA virus belonging to the Flaviviridae family, and means a virus that causes Zika virus infection (Zika fever).
本発明に用いられる「検体」としては、ジカウイルスが存在し得る試料である限り特に制限はない。ジカウイルス感染症の診断の補助を目的とする場合においては、一般的には、血液検体または尿が用いられる。血液検体は、好ましくは血清または血漿である。 The “specimen” used in the present invention is not particularly limited as long as it is a sample in which a Zika virus can exist. For the purpose of assisting the diagnosis of Zika virus infection, a blood sample or urine is generally used. The blood sample is preferably serum or plasma.
本発明において検出の対象とする「ジカウイルス抗原」とは、ジカウイルスを構成する分子であって、ジカウイルスが感染した際に体内で抗ジカウイルス抗体を生じさせることができる分子を意味する。ジカウイルス抗原となるタンパク質としては、例えば、ＮＳ１タンパク質やＥＮＶタンパク質が挙げられる。「ＮＳ１タンパク質」は、ジカウイルスの非構造タンパク質の１つであり、典型的には、配列番号１に記載のアミノ酸配列を有するものである。また、「ＥＮＶタンパク質」は、ジカウイルスの外殻タンパク質の１つであり、典型的には、配列番号２に記載のアミノ酸配列を有するものである。抗ジカウイルス抗体のうち、「ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体」は、通常、ジカウイルスの感染初期に体内に出現し、その後、数カ月で陰性化するという特徴を有する。 The "Zika virus antigen" to be detected in the present invention means a molecule constituting the Zika virus, which can generate an anti-Zika virus antibody in the body when infected with the Zika virus. Examples of the protein serving as a Zika virus antigen include NS1 protein and ENV protein. “NS1 protein” is one of the non-structural proteins of Zika virus and typically has the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 1. The “ENV protein” is one of the Zika virus coat proteins and typically has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2. Among the anti-Zika virus antibodies, the “IgM-type anti-Zika virus antibody” is characterized in that it usually appears in the body at an early stage of infection with Zika virus, and then becomes negative in a few months.
本発明においては、ジカウイルス抗原の検出系（以下、「第１の検出系」と称する）とＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体の検出系（以下、「第２の検出系」と称する）を組み合わせて、同一の反応系で検出を行う検出系（以下、「コンボ検出系」と称する）が用いられる。 In the present invention, a Zika virus antigen detection system (hereinafter, referred to as “first detection system”) and an IgM anti-Zika virus antibody detection system (hereinafter, referred to as “second detection system”) are combined. A detection system that performs detection with the same reaction system (hereinafter, referred to as a “combo detection system”) is used.
−第１の検出系−
本発明の第１の検出系に用いる捕捉用分子（以下、「第１の捕捉用分子」と称する）としては、ジカウイルス抗原に特異的に結合する分子であれば特に制限はないが、典型例には、抗ジカウイルス抗原抗体又はその抗原結合性断片である。第１の捕捉用分子は、そのような分子を１種類だけ使用してもよいし、複数種類を組み合わせて使用してもよい。第１の捕捉用分子として抗体を用いる場合、ポリクロ―ナル抗体でもモノクローナル抗体でもよいが、免疫測定の再現性等の観点からはモノクローナル抗体が好ましい。
-First detection system-
The capture molecule (hereinafter, referred to as “first capture molecule”) used in the first detection system of the present invention is not particularly limited as long as it specifically binds to a Zika virus antigen. Examples are anti-Zika virus antigen antibodies or antigen-binding fragments thereof. As the first capturing molecule, one such molecule may be used alone, or a plurality of types may be used in combination. When an antibody is used as the first capturing molecule, a polyclonal antibody or a monoclonal antibody may be used, but a monoclonal antibody is preferred from the viewpoint of reproducibility of immunoassay and the like.
モノクローナル抗体は、完全な抗体のみならず、抗体断片であってもよい。抗体断片としては、例えば、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｖ、単鎖抗体、ダイアボディーが挙げられるが、これらに制限されない。 The monoclonal antibody may be not only a complete antibody but also an antibody fragment. Antibody fragments include, but are not limited to, F (ab ') 2, Fab', Fab, Fv, single chain antibodies, diabodies.
特に好ましいモノクローナル抗体は、以下の（ａ）または（ｂ）の特徴を有するものであり、ジカウイルスと同じフラビウイルス科に属するデングウイルスには反応しないため高い特異性を有する。 Particularly preferred monoclonal antibodies have the following characteristics (a) or (b), and have high specificity because they do not react with dengue virus belonging to the same flaviviridae as zika virus.
（ａ）配列番号１の１−１７６番目のアミノ酸配列からなるペプチド断片に結合する（以下、「特徴（ａ）モノクローナル抗体」と称する）。 (A) binds to a peptide fragment consisting of the amino acid sequence at positions 1-176 of SEQ ID NO: 1 (hereinafter, referred to as “feature (a) monoclonal antibody”);
（ｂ）配列番号１の２６０−３５２番目のアミノ酸配列からなるペプチド断片に結合する（以下、「特徴（ｂ）モノクローナル抗体」と称する）。 (B) binds to a peptide fragment consisting of the amino acid sequence at positions 260 to 352 of SEQ ID NO: 1 (hereinafter, referred to as “feature (b) monoclonal antibody”).
本発明の「特徴（ａ）モノクローナル抗体」の好ましい態様は、さらに、配列番号１の８３−１４１番目のアミノ酸配列からなるペプチド断片および８９−２６４番目のアミノ酸配列からなるペプチド断片に結合するという特徴を有する。このようなモノクローナル抗体としては、本実施例に記載の抗体Ａが挙げられる（表１）
本発明の「特徴（ｂ）モノクローナル抗体」の好ましい態様は、さらに、２８０−３５２番目のアミノ酸配列から成るペプチド断片に結合し、かつ、２６０−３１０番目のアミノ酸配列からなるペプチド断片と３００−３５２番目のアミノ酸配列からなるペプチド断片には結合しないという特徴を有する。このようなモノクローナル抗体としては、本実施例に記載の抗体ＢおよびＣが挙げられる（表１）。その結合特性から、抗体ＢおよびＣに代表されるこれら抗体は、ジカウイルスＮＳ１タンパク質のコンフォメーションエピトープを認識する抗体であると考えられる（表２）。
In a preferred embodiment of the “feature (a) monoclonal antibody” of the present invention, the antibody further binds to a peptide fragment consisting of the amino acid sequence of positions 83 to 141 of SEQ ID NO: 1 and a peptide fragment consisting of the amino acid sequence of positions 89 to 264. Having. Examples of such a monoclonal antibody include the antibody A described in this example (Table 1).
A preferred embodiment of the "feature (b) monoclonal antibody" of the present invention further comprises a peptide fragment comprising the amino acid sequence at positions 280 to 352 and a peptide fragment comprising the amino acid sequence at positions 260 to 310 and 300 to 352. It is characterized in that it does not bind to the peptide fragment consisting of the amino acid sequence at the position. Such monoclonal antibodies include antibodies B and C described in this example (Table 1). From their binding properties, these antibodies, represented by antibodies B and C, are considered to be antibodies that recognize the conformational epitope of the Zika virus NS1 protein (Table 2).
本発明のモノクローナル抗体の作製においては、本実施例に記載のように、まず、組換えジカウイルスＮＳ１タンパク質を免疫原としてハイブリドーマを作製し、その中から、当該ジカウイルスＮＳ１タンパク質に対して高い反応性を示すモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを選抜し、さらに、選抜したハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体のエピトープ解析を行って、上記特徴（ａ）または（ｂ）を有するモノクローナル抗体を産生するクローンを同定すればよい。 In the preparation of the monoclonal antibody of the present invention, as described in this Example, first, a hybridoma was prepared using the recombinant Zika virus NS1 protein as an immunogen, and a high reaction was made from the hybridoma to the Zika virus NS1 protein. A hybridoma producing a monoclonal antibody exhibiting a specificity is selected, and the epitope of the monoclonal antibody produced by the selected hybridoma is analyzed to identify a clone producing the monoclonal antibody having the above-mentioned characteristic (a) or (b). I just need.
ハイブリドーマ法としては、代表的には、ケーラーよびミルスタインの方法（Ｋｏｈｌｅｒ＆Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ，２５６：４９５（１９７５））が挙げられる。この方法における細胞融合工程に使用される抗体産生細胞は、抗原（標的タンパク質、その部分ペプチド、またはこれらを発現する細胞など）で免疫された動物（例えば、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、サル、ヤギ、ヒツジ、ロバ、ラクダ、アルパカ、ニワトリ）の脾臓細胞、リンパ節細胞、末梢血白血球などである。免疫されていない動物から予め単離された上記の細胞またはリンパ球などに対して、抗原を培地中で作用させることによって得られた抗体産生細胞も使用することが可能である。ミエローマ細胞としては公知の種々の細胞株を使用することが可能である。抗体産生細胞およびミエローマ細胞は、それらが融合可能であれば、異なる動物種起源のものでもよいが、好ましくは、同一の動物種起源のものである。ハイブリドーマは、例えば、抗原で免疫されたマウスから得られた脾臓細胞と、マウスミエローマ細胞との間の細胞融合により産生され、その後のスクリーニングにより、抗原に特異的なモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを得ることができる。抗原に対するモノクローナル抗体は、ハイブリドーマを培養することにより、また、ハイブリドーマを投与した哺乳動物の腹水から、取得することができる。 Representative examples of the hybridoma method include the method of Kohler and Milstein (Kohler & Milstein, Nature, 256: 495 (1975)). The antibody-producing cells used in the cell fusion step in this method include an animal (eg, mouse, rat, hamster, rabbit, monkey, monkey) immunized with an antigen (such as a target protein, a partial peptide thereof, or a cell expressing the same). Goat, sheep, donkey, camel, alpaca, chicken) spleen cells, lymph node cells, peripheral blood leukocytes and the like. It is also possible to use antibody-producing cells obtained by allowing an antigen to act on the above cells or lymphocytes previously isolated from non-immunized animals in a medium. Various known cell lines can be used as the myeloma cells. The antibody-producing cells and myeloma cells may be of different animal species as long as they can be fused, but are preferably of the same animal species. Hybridomas are produced, for example, by cell fusion between spleen cells obtained from a mouse immunized with an antigen and mouse myeloma cells, and subsequent screening yields a hybridoma that produces a monoclonal antibody specific for the antigen. be able to. A monoclonal antibody against the antigen can be obtained by culturing the hybridoma or from ascites of a mammal to which the hybridoma has been administered.
本発明のモノクローナル抗体は、当該抗体をコードするＤＮＡが取得できれば、組換えＤＮＡ法によって作製することができる。この方法は、上記抗体をコードするＤＮＡをハイブリドーマやＢ細胞などからクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主細胞（例えば哺乳類細胞株、大腸菌、酵母細胞、昆虫細胞、植物細胞など）に導入し、組換え抗体として産生させる手法である（例えば、Ｐ．Ｊ．Ｄｅｌｖｅｓ，Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ：Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１９９７ ＷＩＬＥＹ、Ｐ．Ｓｈｅｐｈｅｒｄ ａｎｄ Ｃ．Ｄｅａｎ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，２０００ ＯＸＦＯＲＤ ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ ＰＲＥＳＳ、Ｖａｎｄａｍｍｅ Ａ．Ｍ． ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９２：７６７−７７５（１９９０））。抗体をコードするＤＮＡの発現においては、重鎖または軽鎖をコードするＤＮＡを別々に発現ベクターに組み込んで宿主細胞を形質転換してもよく、重鎖および軽鎖をコードするＤＮＡを単一の発現ベクターに組み込んで宿主細胞を形質転換してもよい（ＷＯ９４／１１５２３号公報参照）。組換え抗体は、上記宿主細胞を培養し、宿主細胞内または培養液から分離・精製し、実質的に純粋で均一な形態で取得することができる。抗体の分離・精製は、通常のポリペプチドの精製で使用されている方法を使用することができる。トランスジェニック動物作製技術を用いて、抗体遺伝子が組み込まれたトランスジェニック動物（ウシ、ヤギ、ヒツジまたはブタなど）を作製すれば、そのトランスジェニック動物のミルクから、抗体遺伝子に由来するモノクローナル抗体を大量に取得することも可能である。 The monoclonal antibody of the present invention can be produced by a recombinant DNA method as long as DNA encoding the antibody can be obtained. In this method, a DNA encoding the above antibody is cloned from a hybridoma or a B cell, inserted into an appropriate vector, and then inserted into a host cell (eg, a mammalian cell strain, Escherichia coli, yeast cell, insect cell, plant cell, etc.). (For example, PJ Delves, Antibody Production: Essential Technologies, 1997 WILEY; et al., Eur. J. Biochem. 192: 767-775 (1990)). In expression of the DNA encoding the antibody, the host cell may be transformed by separately incorporating the DNA encoding the heavy or light chain into an expression vector, and the DNA encoding the heavy and light chains can be transformed into a single DNA. The host cell may be transformed by incorporating it into an expression vector (see WO 94/11523). Recombinant antibodies can be obtained in substantially pure and uniform form by culturing the above host cells, separating and purifying the host cells or from the culture medium. For the separation and purification of the antibody, a method used in ordinary purification of a polypeptide can be used. When transgenic animals (such as cows, goats, sheep or pigs) containing antibody genes are produced using transgenic animal production technology, a large amount of monoclonal antibodies derived from the antibody genes can be produced from the milk of the transgenic animals. It is also possible to obtain.
本発明の第１の検出系においては、第１の捕捉用分子に結合したジカウイルス抗原の検出を行うが、当該抗原を検出するための分子（以下、「第１の検出用分子」）としては、ジカウイルス抗原に特異的に結合する分子であれば特に制限はない。典型例には、抗ジカウイルス抗原抗体又はその抗原結合性断片である。第１の検出用分子は、ジカウイルス抗原への結合に関して、第１の捕捉用分子と競合しないものであることが好ましい。 In the first detection system of the present invention, a Zika virus antigen bound to a first capture molecule is detected, and the molecule is used as a molecule for detecting the antigen (hereinafter, “first detection molecule”). Is not particularly limited as long as it specifically binds to a Zika virus antigen. A typical example is an anti-Zika virus antigen antibody or an antigen-binding fragment thereof. Preferably, the first detection molecule does not compete with the first capture molecule for binding to a Zika virus antigen.
本発明のモノクローナル抗体が検出用分子の場合、標識物質を結合させた抗体を使用することができる。標識物質としては、抗体に結合させて検出できるものであれば特に制限はないが、例えば、アルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）、ホースラディッシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、βガラクトシダーゼ（β−ｇａｌ）などの酵素、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）やローダミンイソチオシアネート（ＲＩＴＣ）などの蛍光色素、アロフィコシアニン（ＡＰＣ）やフィコエリスリン（Ｒ−ＰＥ）などの蛍光タンパク質、１２５Ｉなどの放射性同位元素、金属粒子、アビジン、ビオチン、ラテックスが挙げられる。 When the monoclonal antibody of the present invention is a molecule for detection, an antibody bound with a labeling substance can be used. The labeling substance is not particularly limited as long as it can be detected by binding to the antibody. For example, enzymes such as alkaline phosphatase (ALP), horseradish peroxidase (HRP), β-galactosidase (β-gal), and fluorescein isoform Fluorescent dyes such as thiocyanate (FITC) and rhodamine isothiocyanate (RITC), fluorescent proteins such as allophycocyanin (APC) and phycoerythrin (R-PE), radioisotopes such as 125 I, metal particles, avidin, biotin, Latex is mentioned.
標識物質として酵素を用いた場合には、基質として、発色基質、蛍光基質、あるいは化学発光基質などを添加することにより、基質に応じて種々の検出を行うことができる。 When an enzyme is used as the labeling substance, various detections can be performed depending on the substrate by adding a chromogenic substrate, a fluorescent substrate, a chemiluminescent substrate, or the like as the substrate.
標識物質を結合させたモノクローナル抗体を用いてジカウイルス抗原を直接的に検出する方法以外に、本発明のモノクローナル抗体には標識物質を結合せず、標識物質が結合した二次抗体などを利用して間接的に検出する方法を利用することもできる。ここで「二次抗体」とは、本発明のモノクローナル抗体に対して反応性を示す抗体である。例えば、本発明のモノクローナル抗体をマウス抗体として調製した場合には、二次抗体として抗マウスＩｇＧ抗体を使用することができる。ウサギ、ヤギ、マウスなどの様々な生物種に由来する抗体に対して、使用可能な標識二次抗体が市販されており、本発明のモノクローナル抗体の由来する生物種に応じて、適切な二次抗体を選択して使用することができる。二次抗体に代えて、標識物質を結合させたプロテインＧやプロテインＡなどを用いることも可能である。 In addition to the method of directly detecting a Zika virus antigen using a monoclonal antibody to which a labeled substance has been bound, the monoclonal antibody of the present invention does not bind to the labeled substance, but utilizes a secondary antibody bound to the labeled substance. Alternatively, a method of indirect detection may be used. Here, the “secondary antibody” is an antibody that shows reactivity with the monoclonal antibody of the present invention. For example, when the monoclonal antibody of the present invention is prepared as a mouse antibody, an anti-mouse IgG antibody can be used as a secondary antibody. Labeled secondary antibodies that can be used for antibodies derived from various species such as rabbits, goats, and mice are commercially available, and appropriate secondary antibodies are used depending on the species from which the monoclonal antibody of the present invention is derived. Antibodies can be selected and used. Instead of the secondary antibody, it is also possible to use protein G or protein A to which a labeling substance is bound.
モノクローナル抗体と標識物質との結合には、ビオチン−アビジン系を利用することもできる。この方法においては、例えば、モノクローナル抗体をビオチン化し、これに、アビジン化した標識物質を作用させ、ビオチンとアビジンの相互作用を利用して、モノクローナル抗体に標識物質を結合させる。 A biotin-avidin system can also be used for binding between the monoclonal antibody and the labeling substance. In this method, for example, a monoclonal antibody is biotinylated, an avidin-labeled substance is allowed to act on the biotin, and the labeling substance is bound to the monoclonal antibody by utilizing the interaction between biotin and avidin.
本発明においてイムノアッセイを検出原理として利用する場合には、高感度な検出システムを構築することができる点で、サンドイッチ法が好適である。サンドイッチ法においては、固相化した捕捉用分子で検出対象物質を捕捉し、それを標識物質が結合した検出用分子に認識させ、洗浄後、標識物質の種類に応じた検出を行う。固相としては、例えば、磁性粒子やラテックス粒子などの粒子、プラスチックプレートなどのプレート、ニトロセルロースなどの繊維状物質を用いることができる。 When the immunoassay is used as a detection principle in the present invention, a sandwich method is preferable because a highly sensitive detection system can be constructed. In the sandwich method, a target substance to be detected is captured by a capturing molecule immobilized on a solid phase, and the detected substance is recognized by a detection molecule to which a labeling substance is bound. After washing, detection according to the type of the labeling substance is performed. As the solid phase, for example, particles such as magnetic particles and latex particles, plates such as plastic plates, and fibrous substances such as nitrocellulose can be used.
捕捉用分子は固相に直接固定してもよいが、間接的に固定してもよい。例えば、捕捉用分子に結合する物質を固相に固定し、当該物質に捕捉用分子を結合させることにより、補足用分子を固相に間接的に固定することができる。捕捉用分子が抗体である場合、捕捉用分子に結合する物質としては、例えば、上記の二次抗体、プロテインＧ、プロテインＡが挙げられるが、これらに制限されない。また、捕捉用抗体がビオチン化されている場合には、アビジン化した固相を利用することができる。 The capture molecule may be fixed directly to the solid phase, or may be fixed indirectly. For example, by immobilizing a substance that binds to a capture molecule on a solid phase and binding the capture molecule to the substance, the capture molecule can be indirectly immobilized on the solid phase. When the capturing molecule is an antibody, examples of the substance that binds to the capturing molecule include the above-described secondary antibody, protein G, and protein A, but are not limited thereto. When the capture antibody is biotinylated, an avidinized solid phase can be used.
サンドイッチ法においては、捕捉用分子および検出用分子の少なくとも一方に、上記本発明のモノクローナル抗体（特徴（ａ）モノクローナル抗体、特徴（ｂ）モノクローナル抗体）を用いることができる。この場合、他の一方の抗体は、ジカウイルス抗原に結合し得る限り、本発明のモノクローナル抗体以外の抗体を用いることができる。 In the sandwich method, the monoclonal antibody (characteristic (a) monoclonal antibody, characteristic (b) monoclonal antibody) of the present invention can be used as at least one of the capture molecule and the detection molecule. In this case, as the other one antibody, an antibody other than the monoclonal antibody of the present invention can be used as long as it can bind to the Zika virus antigen.
好ましい態様においては、捕捉用分子および検出用分子の双方が、ジカウイルス抗原に同時に結合可能な本発明のモノクローナル抗体である。これにより感度および特異性に特に優れた検出系を構築することができる。このようなモノクローナル抗体は、本発明の「特徴（ａ）モノクローナル抗体」の組み合わせであっても、本発明の「特徴（ｂ）モノクローナル抗体」の組み合わせであってもよく、本発明の「特徴（ａ）モノクローナル抗体」と本発明の「特徴（ｂ）モノクローナル抗体」の組み合わせであってもよい。 In a preferred embodiment, both the capture molecule and the detection molecule are monoclonal antibodies of the invention capable of binding simultaneously to a Zika virus antigen. This makes it possible to construct a detection system that is particularly excellent in sensitivity and specificity. Such a monoclonal antibody may be a combination of the “feature (a) monoclonal antibody” of the present invention or a combination of the “feature (b) monoclonal antibody” of the present invention. It may be a combination of “a) monoclonal antibody” and “feature (b) monoclonal antibody” of the present invention.
また、捕捉用分子または検出用分子の一方に、２種以上の本発明のモノクローナル抗体を混合したものを用いてもよく、抗原捕捉用分子および検出用分子の双方に、２種以上の本発明のモノクローナル抗体を混合したものを用いてもよい。これにより検出感度を向上させ得る。例えば、本発明の「特徴（ａ）モノクローナル抗体」と本発明の「特徴（ｂ）モノクローナル抗体」とを組み合わせる場合、好ましい組み合わせの例としては、捕捉用抗体としての抗体ＡおよびＢと検出用抗体としての抗体Ｃの組み合わせが挙げられる。 Further, a mixture of two or more of the monoclonal antibodies of the present invention may be used as one of the capturing molecule or the detecting molecule, and two or more of the present invention may be used as both the antigen capturing molecule and the detecting molecule. A mixture of the above monoclonal antibodies may be used. This can improve the detection sensitivity. For example, when the "feature (a) monoclonal antibody" of the present invention is combined with the "feature (b) monoclonal antibody" of the present invention, examples of preferable combinations include antibodies A and B as capture antibodies and an antibody for detection. Of the antibody C as an example.
−第２の検出系−
本発明の第２の検出系に用いる捕捉用分子（以下、「第２の捕捉用分子」と称する）は、ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体が特異的に結合する分子（以下、「第２の捕捉用分子（態様１）」と称する）あるいはＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体に特異的に結合する分子（以下、「第２の捕捉用分子（態様２）」と称する）であれば、特に制限はない。
-Second detection system-
The capture molecule used in the second detection system of the present invention (hereinafter, referred to as “second capture molecule”) is a molecule to which an IgM anti-Zika virus antibody specifically binds (hereinafter, “second capture molecule”). Molecule (hereinafter referred to as “second capture molecule (aspect 2)”) or a molecule that specifically binds to an IgM anti-Zika virus antibody (hereinafter referred to as “second capture molecule (aspect 2)”). .
第２の捕捉用分子（態様１）は、典型的には、ジカウイルス抗原またはその断片である。ジカウイルス抗原としては、例えば，ジカウイルスＥＮＶ抗原やジカウイルスＮＳ１抗原を用いることができる。第２の捕捉用分子（態様１）がジカウイルス抗原またはその断片である場合、検体中にＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体に加えて、他の型の抗ジカウイルス抗体（例えば、ＩｇＧ型抗ジカウイルス抗体）が存在すると、当該他の型の抗ジカウイルス抗体も第２の捕捉用分子（態様１）に捕捉されてしまう。従って、ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を特異的に検出したい場合には、第２の検出系における検出のための分子（以下、「第２の検出用分子」と称する）として、当該ＩｇＭ型の抗体に特異的に結合する分子（他の型の抗体に結合しない分子）を用いる必要がある。このような分子の典型例としては、抗ＩｇＭ抗体が挙げられる。抗ＩｇＭ抗体は、モノクローナル抗体でもポリクローナル抗体でもよい。ＩｇＭに加えて、ＩｇＧをも検出する場合には、第２の検出用分子として、ジカウイルスＮＳ１抗原またはその断片を用いることができる。 The second capture molecule (Aspect 1) is typically a Zika virus antigen or a fragment thereof. As the Zika virus antigen, for example, Zika virus ENV antigen and Zika virus NS1 antigen can be used. When the second capture molecule (aspect 1) is a Zika virus antigen or a fragment thereof, in addition to the IgM anti-Zika virus antibody in the sample, other types of anti-Zika virus antibodies (eg, IgG-type anti-Zika virus) The presence of the antibody) also causes the other type of anti-Zika virus antibody to be captured by the second capture molecule (aspect 1). Therefore, when it is desired to specifically detect an IgM-type anti-Zika virus antibody, the IgM-type antibody is used as a molecule for detection in the second detection system (hereinafter, referred to as a “second detection molecule”). It is necessary to use a molecule that specifically binds to a molecule (a molecule that does not bind to other types of antibodies). A typical example of such a molecule includes an anti-IgM antibody. The anti-IgM antibody may be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody. When detecting IgG in addition to IgM, the Zika virus NS1 antigen or a fragment thereof can be used as the second detection molecule.
第２の捕捉用分子（態様２）は、典型的には、上記の抗ＩｇＭ抗体である。この場合、抗ＩｇＭ抗体に捕捉されたＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出するためには、検出用分子（以下、「第２の検出用分子（態様２）」と称する）として、ジカウイルスＮＳ１抗原またはその断片を用いることができる。 The second capture molecule (aspect 2) is typically an anti-IgM antibody as described above. In this case, in order to detect the IgM-type anti-Zika virus antibody captured by the anti-IgM antibody, the Zika virus NS1 antigen is used as a detection molecule (hereinafter, referred to as a “second detection molecule (aspect 2)”). Alternatively, fragments thereof can be used.
本発明では、第２の捕捉用分子として、上記した態様１および態様２のいずれかを用いてもよく、また、双方を用いてもよい。また、各態様について、１種類の分子のみを用いてもよいし、複数種の分子を組み合わせて用いてもよい。 In the present invention, any one of the above-described embodiments 1 and 2 may be used as the second capturing molecule, or both may be used. In each embodiment, only one kind of molecule may be used, or a plurality of kinds of molecules may be used in combination.
本発明における第２の検出用分子も、第１の検出用分子と同様に、標識物質を結合させた分子を使用することができる。検出システムとしてサンドイッチ法が採用される場合は、第１の捕捉用分子と同様に、第２の捕捉用分子を固相化して用いることができる。 As the second detection molecule in the present invention, similarly to the first detection molecule, a molecule bound with a labeling substance can be used. When the sandwich method is adopted as the detection system, the second capturing molecule can be immobilized and used like the first capturing molecule.
−コンボ検出系−
本発明のコンボ検出系において「同一の反応系内で」検出するとは、同一の検体を、同一の場で第１の捕捉用分子および第２の捕捉用分子と接触させて、検出を行うことを意味する。「同一の場」としては特に制限はなく、例えば、同一のマトリクス上、同一のウェル内、同一の反応セル内などが挙げられる。同一の場であれば、検体中のジカウイルス抗原とＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体の検出のタイミングが異なっていてもよい。
−Combo detection system−
To detect in the same reaction system in the combo detection system of the present invention means that the same sample is brought into contact with the first capturing molecule and the second capturing molecule in the same place to perform detection. Means The “same field” is not particularly limited, and includes, for example, the same matrix, the same well, the same reaction cell, and the like. In the same field, the detection timing of the Zika virus antigen and the IgM anti-Zika virus antibody in the sample may be different.
例えば、後述するように検出法としてイムノクロマトグラフィーを採用する場合には、ジカウイルス抗原とＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体をそれぞれ検出するための２つの検出ゾーン６ａと６ｂが設けられていてもよく、この場合、もし双方が検体中に存在する場合、検出ゾーン６ａにて一方が先に検出され、検出ゾーン６ｂにて他方が後に検出されることになる。このように検出のタイミングが異なるが、同一の場（同一のマトリクス上）で同一の検体に対して反応を行うから、本発明における「同一の反応系内で」に該当する。 For example, when immunochromatography is employed as a detection method as described below, two detection zones 6a and 6b for detecting a Zika virus antigen and an IgM anti-Zika virus antibody, respectively, may be provided. If both are present in the sample, one will be detected first in the detection zone 6a and the other will be detected later in the detection zone 6b. Although the detection timing is different as described above, the reaction is performed on the same sample in the same place (on the same matrix), and thus corresponds to “within the same reaction system” in the present invention.
本発明のコンボ検出系については、第１の検出系と第２の検出系の間で交差反応をしないよう留意する必要がある。例えば、第１の捕捉用分子および第１の検出用分子がジカウイルスＮＳ１モノクローナル抗体であり、第２の捕捉用分子（態様１）がジカウイルス抗原またはその断片である場合には、第１の捕捉用分子および第１の検出用分子が第２の捕捉用分子（態様１）に結合するおそれがある。従って、第２の捕捉用分子（態様１）としては、第１の捕捉用分子および第１の検出用分子に結合しないものを利用することが好ましい。このような第２の捕捉用分子（態様１）としては、例えば、第１の捕捉用分子または第１の検出用分子が認識するエピトープ領域以外の領域のジカウイルスＮＳ１抗原断片、あるいは第１の捕捉用分子および第１の検出用分子が認識しないように改変されたジカウイルスＮＳ１抗原（例えば、エピトープ領域の変異体）が挙げられる。 With regard to the combo detection system of the present invention, care must be taken to avoid cross-reaction between the first detection system and the second detection system. For example, if the first capture molecule and the first detection molecule are a Zika virus NS1 monoclonal antibody and the second capture molecule (Aspect 1) is a Zika virus antigen or a fragment thereof, the first The capture molecule and the first detection molecule may bind to the second capture molecule (aspect 1). Therefore, it is preferable to use a molecule that does not bind to the first capture molecule and the first detection molecule as the second capture molecule (aspect 1). Such a second capture molecule (aspect 1) includes, for example, a Zika virus NS1 antigen fragment in a region other than the epitope region recognized by the first capture molecule or the first detection molecule, or the first capture molecule. Zika virus NS1 antigen (for example, a mutant of an epitope region) modified so that the capture molecule and the first detection molecule are not recognized.
また、第１の捕捉用分子および第１の検出用分子がジカウイルスＮＳ１モノクローナル抗体であり、第２の検出用分子がジカウイルス抗原またはその断片である場合には、第１の捕捉用分子および第１の検出用分子が第２の検出用分子に結合するおそれがある。従って、第２の検出用分子としては、第１の捕捉用分子および第１の検出用分子に結合しないものを利用することが好ましい。このような第２の検出用分子としては、上記第２の捕捉用分子（態様１）の場合と同様に、例えば、第１の捕捉用分子および第１の検出用分子が認識するエピトープ領域以外の領域のジカウイルスＮＳ１抗原断片、あるいは第１の捕捉用分子および第１の検出用分子が認識しないように改変されたジカウイルスＮＳ１抗原（例えば、エピトープ領域の変異体）が挙げられる。 When the first capture molecule and the first detection molecule are a Zika virus NS1 monoclonal antibody, and the second detection molecule is a Zika virus antigen or a fragment thereof, the first capture molecule and the first detection molecule are The first detection molecule may bind to the second detection molecule. Therefore, it is preferable to use, as the second detection molecule, a molecule that does not bind to the first capture molecule and the first detection molecule. Such a second detection molecule is, for example, other than the epitope region recognized by the first capture molecule and the first detection molecule, as in the case of the second capture molecule (aspect 1). Or a Zika virus NS1 antigen fragment (for example, a mutant of the epitope region) modified so that the first capture molecule and the first detection molecule do not recognize the Zika virus NS1 antigen fragment.
ジカウイルス抗原およびＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を同一の反応系内で検出する場合、全体の検出感度は高まるものの、非特異的反応も生じやすくなる。このような非特異的反応を抑制するため、本発明のコンボ検出系においては、反応液中の塩濃度を向上させることが好ましい。反応液に添加する無機塩としては、非特異的反応を抑制する効果がある限り特に制限はなく、例えば、塩化ナトリウム、塩化リチウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム、塩化アンモニウム、臭化リチウム、臭化ナトリウム、臭化カリウム、臭化カルシウム、臭化マグネシウム、臭化アンモニウム等が挙げられる。反応系における無機塩の濃度は、通常、１００〜２０００ｍＭ、好ましくは２００〜１０００ｍＭ（例えば、２００〜７５０ｍＭ、２５０〜５００ｍＭ）である。塩濃度が低すぎると非特異的反応の抑制効果が低下する傾向があり、逆に高すぎると反応性が低くなる場合がある。 When a Zika virus antigen and an IgM anti-Zika virus antibody are detected in the same reaction system, the overall detection sensitivity is increased, but nonspecific reactions are also likely to occur. In order to suppress such non-specific reactions, in the combo detection system of the present invention, it is preferable to improve the salt concentration in the reaction solution. The inorganic salt to be added to the reaction solution is not particularly limited as long as it has an effect of suppressing a non-specific reaction.For example, sodium chloride, lithium chloride, potassium chloride, calcium chloride, magnesium chloride, ammonium chloride, lithium bromide, Examples thereof include sodium bromide, potassium bromide, calcium bromide, magnesium bromide, and ammonium bromide. The concentration of the inorganic salt in the reaction system is usually 100 to 2000 mM, preferably 200 to 1000 mM (for example, 200 to 750 mM, 250 to 500 mM). If the salt concentration is too low, the effect of suppressing the nonspecific reaction tends to decrease, and if it is too high, the reactivity may decrease.
また、本発明においては、反応液中に、上記無機塩とともに、または単独で、界面活性剤を添加することが好ましい。「界面活性剤」は、水溶液中で表面張力を低下させる化合物であり、分子内に親水性部分と疎水性部分をもつ。反応系に添加する界面活性剤としては、非特異的反応を抑制する効果がある限り特に制限はないが、非イオン性界面活性剤、両イオン性界面活性剤、または陰イオン性界面活性剤が好ましい。 In the present invention, it is preferable to add a surfactant to the reaction solution together with the inorganic salt or alone. “Surfactant” is a compound that lowers the surface tension in an aqueous solution and has a hydrophilic portion and a hydrophobic portion in the molecule. The surfactant to be added to the reaction system is not particularly limited as long as it has an effect of suppressing a nonspecific reaction, but a nonionic surfactant, an amphoteric surfactant, or an anionic surfactant is used. preferable.
非イオン性界面活性剤としては、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル系界面活性剤やグルカミン系界面活性剤が挙げられる。ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル系界面活性剤としては、ポリ（オキシエチレン）オクチルフェニルエーテルが好ましく、例えば、ＴｒｉｔｏｎＸ（ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、ＴｒｉｔｏｎＸ−３０５、ＴｒｉｔｏｎＸ−４０５など）が挙げられる。また、グルカミン系界面活性剤としては、ｎ−アルカノイル−Ｎ−メチル−Ｄ−グルカミンが好ましく、例えば、ｎ−デカノイル−Ｎ−メチル−Ｄ−グルカミン（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−ノナノイル−Ｎ−メチル−Ｄ−グルカミン（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−オクタノイル−Ｎ−メチル−Ｄ−グルカミン（ＭＥＧＡ−８）が挙げられる。 Examples of the nonionic surfactant include a polyoxyethylene alkylphenyl ether-based surfactant and a glucamine-based surfactant. As the polyoxyethylene alkylphenyl ether-based surfactant, poly (oxyethylene) octylphenyl ether is preferable, and for example, TritonX (TritonX-100, TritonX-305, TritonX-405, etc.) can be mentioned. As the glucamine-based surfactant, n-alkanoyl-N-methyl-D-glucamine is preferable. For example, n-decanoyl-N-methyl-D-glucamine (MEGA-10), n-nonanoyl-N-methyl -D-glucamine (MEGA-9) and n-octanoyl-N-methyl-D-glucamine (MEGA-8).
両イオン性界面活性剤としては、疎水性のアルキル基と、第四級アンモニウムを含む親水性部分とを有する両性界面活性剤が挙げられる。疎水性のアルキル基は、直鎖アルキル基が好ましく、典型的には、ＣＨ３−（ＣＨ２）ｎ−Ｎ＋（ＣＨ３）２−［（ＣＨ２）３−ＳＯ３−］（ｎは自然数）の構造を有する。直鎖アルキル基を有する両性界面活性剤の具体例としては、例えば、Ｎ−デシル−Ｎ，Ｎ−ジメチル−３−アンモニオ−１−プロパンスルホネート（Ｃ１０ＡＰＳ）、Ｎ−ドデシル−Ｎ，Ｎ−ジメチル−３−アンモニオ−１−プロパンスルホネート（Ｃ１２ＡＰＳ）、Ｎ−テトラデシル−Ｎ，Ｎ−ジメチル−３−アンモニオ−１−プロパンスルホネート（Ｃ１４ＡＰＳ）が挙げられる。 Examples of the amphoteric surfactant include an amphoteric surfactant having a hydrophobic alkyl group and a hydrophilic portion containing a quaternary ammonium. The hydrophobic alkyl group is preferably a straight-chain alkyl group, and typically has a structure of CH3- (CH2) n-N + (CH3) 2-[(CH2) 3-SO3-] (n is a natural number). . Specific examples of the amphoteric surfactant having a linear alkyl group include, for example, N-decyl-N, N-dimethyl-3-ammonio-1-propanesulfonate (C10APS), N-dodecyl-N, N-dimethyl- Examples thereof include 3-ammonio-1-propanesulfonate (C12APS) and N-tetradecyl-N, N-dimethyl-3-ammonio-1-propanesulfonate (C14APS).
陰イオン性界面活性剤の好ましい例としては、分子内に炭素原子９個以上のアルキル基を有する陰イオン性界面活性剤が挙げられる。アルキル基は、好ましくは直鎖アルキル基である。炭素原子９個以上のアルキル基を有する陰イオン性界面活性剤としては、例えば、Ｎ−デカノイルサルコシンナトリウム（ＮＤＳ）が挙げられる。 Preferred examples of the anionic surfactant include an anionic surfactant having an alkyl group having 9 or more carbon atoms in the molecule. The alkyl group is preferably a straight-chain alkyl group. Examples of the anionic surfactant having an alkyl group having 9 or more carbon atoms include N-decanoyl sarcosine sodium (NDS).
反応系における界面活性剤の濃度は、通常、０．０１〜２％、好ましくは０．０５〜１％（例えば、０．１〜０．７％）である。界面活性剤濃度が低すぎると非特異的反応の抑制効果が低下する傾向があり、逆に高すぎると抗体と抗原の反応性が低下する場合がある。 The concentration of the surfactant in the reaction system is usually 0.01 to 2%, preferably 0.05 to 1% (for example, 0.1 to 0.7%). If the concentration of the surfactant is too low, the effect of suppressing the nonspecific reaction tends to decrease, and if it is too high, the reactivity between the antibody and the antigen may decrease.
試料中のジカウイルスの存在または痕跡を高感度で検出する場合には、ＣＬＥＩＡやＥＬＩＳＡ等、上記の粒子やプレートを固相とするサンドイッチ法が好ましい。磁性粒子などの粒子を固相として用いる場合、第１の捕捉用分子および第２の捕捉用分子は、同一の固相（同一の粒子）に固定化されてもよく、あるいは、異なる固相（異なる粒子）にそれぞれの固相化した後、粒子を混合して用いてもよい。固相としてプレートを用いる場合は、通常、当該プレートのウェルに２つの捕捉用分子を固相化する。 When detecting the presence or trace of a Zika virus in a sample with high sensitivity, a sandwich method using the above particles or plates as a solid phase, such as CLEIA or ELISA, is preferable. When a particle such as a magnetic particle is used as a solid phase, the first capturing molecule and the second capturing molecule may be immobilized on the same solid phase (the same particle), or different solid phase ( The particles may be mixed and used after solidifying them on different particles). When a plate is used as a solid phase, two capture molecules are usually immobilized on wells of the plate.
本発明のコンボ検出系においては、例えば、このように固相化された捕捉用分子に検体を接触させて、所定時間の反応（一次反応）を行い、洗浄後に、固相に捕捉された検出対象分子に標識された検出用分子を接触させて、所定時間の反応（二次反応）を行う。そして、洗浄後に、標識の種類に応じたシグナルを検出する。一方、先に、検出対象分子を標識された検出用分子に接触させてから、固相上の捕捉用分子に接触させてもよい。 In the combo detection system of the present invention, for example, the sample is brought into contact with the capturing molecule immobilized in this manner, a reaction is performed for a predetermined time (primary reaction), and after washing, the detection captured in the solid phase is performed. The target molecule is brought into contact with the labeled detection molecule, and a reaction (secondary reaction) is performed for a predetermined time. After washing, a signal corresponding to the type of label is detected. On the other hand, the detection target molecule may be first contacted with the labeled detection molecule, and then contacted with the capture molecule on the solid phase.
陰性対象（例えば、陰性検体）から得られた測定値を基にカットオフ値（例えば、陰性検体における平均値＋３ＳＤ）を設定した場合、検体から得られた値がそれを上回れば、試料中にジカウイルスが存在するか、または存在した痕跡があると評価することができる。 When a cut-off value (for example, the average of negative samples + 3SD) is set based on the measurement value obtained from a negative target (for example, a negative sample), if the value obtained from the sample exceeds that value, The presence or traces of the Zika virus can be assessed.
なお、本発明のコンボ検出系において、標識物質として第１の検出用分子と第２の検出用分子で異なるものを使用すれば、第１の検出用分子からのシグナルと第２の検出用分子からのシグナルを区別でき、結果としてジカウイルス抗原とＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体の存在を分けて評価することが可能となる。 In the combo detection system of the present invention, if different labeling substances are used for the first detection molecule and the second detection molecule, the signal from the first detection molecule and the second detection molecule are used. Can be distinguished, and as a result, it is possible to separately evaluate the presence of the Zika virus antigen and the IgM-type anti-Zika virus antibody.
本発明のコンボ検出系において、簡便かつ迅速にジカウイルスの存在または痕跡を検出するには、イムノクロマトグラフィーが好適である。図１〜３は、イムノクロマトグラフィーのデバイス（検出器具）の一例の概略図である。イムノクロマトグラフィーのデバイスの一態様について説明すると、当該デバイス１は、ニトロセルロース膜のような多孔性素材からなるマトリクス２上に、第一の捕捉用分子をライン状に固相化した検出ゾーン６ａと第二の捕捉用分子をライン状に固相化した検出ゾーン６ｂと、その上流側に、標識した第一の検出用分子および／または標識した第二の検出用分子（以下、「標識した検出用分子」と称する）を担持した標識試薬ゾーン４を含む。通常、標識試薬ゾーンは、標識した検出用分子を担持した多孔性のパッドにより構成される。マトリクス２の上流端には、展開液を貯蔵した展開液槽１１が設けられている。さらに、通常、上記検出ゾーン６ａ／６ｂの下流に、標識した検出用分子の展開を確認するために抗標識抗体をライン状に固相化した展開確認部１０と、さらにその下流に、展開液を吸収するための多孔性の吸収パッドが設けられた展開液吸収ゾーン５が設けられている。さらに、標識が酵素標識である場合には、標識試薬ゾーン４よりも上流に、標識酵素の基質を担持した基質ゾーン７が設けられる。 In the combo detection system of the present invention, immunochromatography is suitable for simply and quickly detecting the presence or trace of Zika virus. 1 to 3 are schematic diagrams of an example of a device (detection instrument) for immunochromatography. To explain one embodiment of the device of the immunochromatography, the device 1 comprises a detection zone 6a in which a first capture molecule is solid-phased on a matrix 2 made of a porous material such as a nitrocellulose membrane. A detection zone 6b in which a second capture molecule is immobilized in a linear form and a labeled first detection molecule and / or a labeled second detection molecule (hereinafter referred to as “labeled detection molecule”) And a labeled reagent zone 4 carrying the same. Usually, the labeling reagent zone is constituted by a porous pad carrying a labeled detection molecule. At the upstream end of the matrix 2, a developing liquid tank 11 storing a developing liquid is provided. Further, usually, downstream of the detection zones 6a / 6b, a development confirmation unit 10 in which an anti-labeled antibody is immobilized in a line to confirm the development of the labeled detection molecule, and further downstream, a development liquid Is provided with a developing liquid absorption zone 5 provided with a porous absorption pad for absorbing the water. Further, when the label is an enzyme label, a substrate zone 7 supporting a substrate of the labeling enzyme is provided upstream of the labeling reagent zone 4.
使用時には、検体９を標識試薬ゾーン４中の検体ゾーン８に添加し、押し込み部１２を加圧して突起部１３を移動させることにより、展開液パッド３を展開液槽１１に挿入し、展開液パッド３を通じて展開液をマトリクス２に供給する。展開液が基質ゾーン７を通過する際に基質が展開液中に溶出され、基質を含む展開液が流動する。展開液が標識試薬ゾーン４を通過する際に、標識した検出用分子と検体とが展開液中に溶出され、基質、標識した検出用分子および検体を含む展開液が流動する。検体中に検出対象分子（ジカウイルス抗原および／またはＩｇＧ型抗ジカウイルス抗体）が含まれる場合には、該検出対象分子と標識した検出用分子とが結合し、これらが検出ゾーン６ａに到達すると、検出ゾーン６ａにおいて、固相化した第一の捕捉用分子とジカウイルス抗原とが結合する。その結果、ジカウイルス抗原を介して標識した第一の検出用分子が検出ゾーン６ａに固定される。また、検体中にＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体が含まれる場合には、該抗体と標識した検出用分子とが結合し、これらが検出ゾーン６ｂに到達すると、検出ゾーン６ｂにおいて、固相化した第２の捕捉用分子とＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体とが結合する。その結果、ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を介して標識した第２の検出用分子が検出ゾーン６ｂに固定される。こうして検出ゾーン６ａと６ｂにおける標識を測定することにより、検出対象分子が検出されることになる。 At the time of use, the developing solution pad 3 is inserted into the developing solution tank 11 by adding the sample 9 to the sample zone 8 in the labeling reagent zone 4 and pressing the push-in portion 12 to move the projecting portion 13. The developing solution is supplied to the matrix 2 through the pad 3. When the developing solution passes through the substrate zone 7, the substrate is eluted in the developing solution, and the developing solution containing the substrate flows. When the developing solution passes through the labeling reagent zone 4, the labeled detection molecule and the sample are eluted into the developing solution, and the developing solution containing the substrate, the labeled detection molecule, and the sample flows. When the detection target molecule (Zika virus antigen and / or IgG type anti-Zika virus antibody) is contained in the sample, the detection target molecule and the labeled detection molecule bind, and when these reach the detection zone 6a. In the detection zone 6a, the first immobilized capture molecule binds to the Zika virus antigen. As a result, the first detection molecule labeled via the Zika virus antigen is immobilized in the detection zone 6a. When an IgM-type anti-Zika virus antibody is contained in the sample, the antibody binds to the labeled detection molecule, and when these reach the detection zone 6b, the immobilized second phase is detected in the detection zone 6b. The capture molecule of No. 2 and the IgM anti-Zika virus antibody bind. As a result, the second detection molecule labeled via the IgM-type anti-Zika virus antibody is immobilized on the detection zone 6b. By measuring the labels in the detection zones 6a and 6b in this way, the molecules to be detected are detected.
検体中に検出対象分子が含まれていない場合には、標識抗体は検出ゾーン６ａおよび６ｂに固定されず、さらに下流に移動するため、検出ゾーン６ａおよび６ｂにおいて標識は検出されない。なお、検出ゾーンの下流の展開液確認部には、抗標識抗体が固相化されているため、標識した検出用分子は展開液確認部１０に固定されることになる。よって、展開液確認部１０に標識が検出された場合、展開液が正しく展開されたことを意味する。展開液は、最終的に、その下流の吸収パッドに吸収される。 When the detection target molecule is not contained in the sample, the labeled antibody is not fixed to the detection zones 6a and 6b and moves further downstream, so that no label is detected in the detection zones 6a and 6b. Since the anti-labeled antibody is immobilized in the developing solution confirmation section downstream of the detection zone, the labeled detection molecule is fixed to the developing solution confirmation section 10. Therefore, when a label is detected in the developing solution confirmation unit 10, it means that the developing solution has been correctly developed. The developing liquid is eventually absorbed by the absorbent pad downstream thereof.
なお、以上の操作において、第２の捕捉用分子を６ａに固相化し、第１の捕捉用分子を６ｂに固相化することもできる。この場合、もし検体中に検出対象分子が存在する場合には、ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体が先に検出され、ジカウイルスＮＳ１タンパク質が後に検出されることになる。 In the above operation, the second capturing molecule can be immobilized on 6a and the first capturing molecule can be immobilized on 6b. In this case, if the molecule to be detected is present in the sample, the IgM anti-Zika virus antibody is detected first, and the Zika virus NS1 protein is detected later.
また、本発明は、上記本発明のコンボ検出系に用いるためのキットを提供する。本発明のキットは、（１）ジカウイルス抗原を検出するための第１の捕捉用分子、および（２）ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出するための第２の捕捉用分子、を少なくとも備える。さらに、対照試薬、標準検体試薬（各濃度）、各種希釈液（希釈対象；検体、標識した検出用分子、各捕捉用分子、または基質）、希釈用カートリッジ、洗浄液などを組み合わせることができる。酵素標識を利用した場合には、標識の検出に必要な基質や反応停止液などを含めることができる。検出用抗体を標識しない場合には、例えば、当該検出用抗体に結合する物質を標識したものをキットに含めることができる。 The present invention also provides a kit for use in the above-described combo detection system of the present invention. The kit of the present invention comprises at least (1) a first capture molecule for detecting a Zika virus antigen, and (2) a second capture molecule for detecting an IgM-type anti-Zika virus antibody. Furthermore, a control reagent, a standard sample reagent (each concentration), various diluents (diluents: sample, labeled detection molecule, each capture molecule, or substrate), a dilution cartridge, a washing solution, and the like can be combined. When an enzyme label is used, a substrate or a reaction stop solution necessary for detection of the label can be included. When the detection antibody is not labeled, for example, a substance that binds to a substance that binds to the detection antibody can be included in the kit.
非特異的反応を抑制するために無機塩および界面活性剤を含む希釈液を用いる場合には、その濃度は、反応液中の濃度が上記の濃度となるように、適宜調整される。通常、上記の濃度と同等か、その１．１倍〜５倍（例えば、１．３倍〜３倍、１．５倍〜２．５倍）である。 When a diluent containing an inorganic salt and a surfactant is used to suppress a non-specific reaction, its concentration is appropriately adjusted so that the concentration in the reaction solution becomes the above-mentioned concentration. Usually, it is equivalent to the above concentration or 1.1 to 5 times (for example, 1.3 to 3 times, 1.5 to 2.5 times).
サンドイッチ法として、イムノクロマトグラフィーを採用する場合には、捕捉用抗体が検出ゾーンに固定化された膜担体と標識された検出用抗体を担持しているパッドとを備えたデバイスをキットに含めることができる。当該デバイスは、展開液パッドや吸収パッドなど、イムノクロマトグラフィーに適したその他の構成要素を備えることができる。 When immunochromatography is adopted as the sandwich method, the kit may include a device having a membrane carrier having a capture antibody immobilized in a detection zone and a pad carrying a labeled detection antibody. it can. The device can include other components suitable for immunochromatography, such as a developing solution pad and an absorption pad.
本発明のキットには、さらに、当該キットの使用説明書を含めることができる。 The kit of the present invention can further include instructions for using the kit.
以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。本実施例において、「％」の表示は、特に記載のない場合は、重量／容量（ｗ／ｖ）パーセントを示す。 Hereinafter, the present invention will be described more specifically based on examples, but the present invention is not limited to the following examples. In this example, the indication of “%” indicates weight / volume (w / v) percent unless otherwise specified.
［実施例１］抗ジカウイルスＮＳ１タンパク質モノクローナル抗体の作製
免疫源としては、組換えジカウイルス（アフリカ株）ＮＳ１タンパク質（＃ＺＩＫＶ−ＮＳ１、Ｔｈｅ Ｎａｔｉｖｅ Ａｎｔｉｇｅｎ Ｃｏｍｐａｎｙ製）を１％ＳＤＳの存在下で９６℃１０分間加熱して変性させた、変性ジカウイルスＮＳ１タンパク質（以下、「変性抗原」とも称する）を使用した。変性抗原をマウスに免疫し（腹腔内投与、投与量１０μｇ／匹、免疫回数３〜５回）、常法のハイブリドーマ法により、免疫原に対する抗体を産生するハイブリドーマを作製した。
[Example 1] Preparation of anti-Zika virus NS1 protein monoclonal antibody As an immunogen, recombinant Zika virus (African strain) NS1 protein (# ZIKV-NS1, manufactured by The Native Antigen Company) was used in the presence of 1% SDS for 96 hours. Denatured Zika virus NS1 protein (hereinafter also referred to as "denatured antigen") denatured by heating at 10 ° C for 10 minutes was used. Mice were immunized with the denatured antigen (intraperitoneal administration, dose: 10 μg / animal, immunization frequency: 3 to 5 times), and hybridomas producing antibodies to the immunogen were prepared by a conventional hybridoma method.
［実施例２］抗体スクリーニング
抗体スクリーニングは、ＥＬＩＳＡを用いて実施した。前記の変性抗原をＰＢＳで希釈し、０．１〜０．２μｇ／ｍＬの溶液を調製した。これを９６穴マイクロウェルプレートに５０μＬずつ分注し、３７℃で１時間、または４℃で一晩コーティングさせた。１％スキムミルク・ＰＢＳ、または２％ＢＳＡ・ＰＢＳでブロッキングした後、１〜１０倍希釈したハイブリドーマ培養上清を各５０μＬ／ウェル分注し、３７℃で１時間反応させた。ＰＢＳＴで洗浄後、ＰＯＤ標識抗マウスＩｇＧ抗体を５０μＬ／ウェル分注し、３７℃で３０分〜１時間反応させた。ＰＢＳＴで洗浄後、ＴＭＢ基質系で発色を行い、マイクロプレートリーダーにて４５０ｎｍの吸光度を測定した。複数のハイブリドーマについて前記のスクリーニングを２回実施し、特に高い吸光度を示す３種のハイブリドーマＡ〜Ｃを選出した。
[Example 2] Antibody screening Antibody screening was performed using ELISA. The denatured antigen was diluted with PBS to prepare a 0.1 to 0.2 μg / mL solution. This was dispensed into a 96-well microwell plate in an amount of 50 μL, and coated at 37 ° C. for 1 hour or at 4 ° C. overnight. After blocking with 1% skim milk / PBS or 2% BSA / PBS, 50 μL / well of each hybridoma culture supernatant diluted 1 to 10 times was dispensed and reacted at 37 ° C. for 1 hour. After washing with PBST, 50 μL / well of a POD-labeled anti-mouse IgG antibody was dispensed and reacted at 37 ° C. for 30 minutes to 1 hour. After washing with PBST, color was developed using a TMB substrate system, and the absorbance at 450 nm was measured with a microplate reader. The above screening was carried out twice for a plurality of hybridomas, and three hybridomas A to C showing particularly high absorbance were selected.
［実施例３］モノクローナル抗体のエピトープ解析（ＥＬＩＳＡ）
ジカウイルスＮＳ１タンパク質のリコンビナント抗原を調製し、前記３種のハイブリドーマＡ〜Ｃより産生される３種のモノクローナル抗体（抗体Ａ〜抗体Ｃ）について、ＥＬＩＳＡを用いて各ペプチドとの親和性を調査した。リコンビナント抗原は、次の方法で調製した。３５２アミノ酸からなるジカウイルスＮＳ１（配列番号１、ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．：ＫＵ３６５７８０）の全長ｃＤＮＡを人工合成し、ＰＣＲ法により所望のＤＮＡ断片を増幅した。全長ｃＤＮＡおよび各ＤＮＡ断片を公知の発現ベクターに組込んで大腸菌に導入し、発現したリコンビナント抗原をカラムにて回収・精製した。この方法により、配列番号１の１−１７６番目、８３−１４１番目、８９−２６４番目、２６０−３５２番目、２６０−３１０番目、２８０−３５２番目および３００−３５２番目のアミノ酸配列からなるリコンビナントペプチド断片、および配列番号１の全長からなるリコンビナントＮＳ１タンパク質を調製した。
[Example 3] Epitope analysis of monoclonal antibody (ELISA)
A recombinant antigen of the Zika virus NS1 protein was prepared, and the affinity of each of the three monoclonal antibodies (antibody A to antibody C) produced from the three hybridomas A to C with each peptide was examined using ELISA. . The recombinant antigen was prepared by the following method. A full-length cDNA of Zika virus NS1 (SEQ ID NO: 1, GenBank Accession No .: KU365780) consisting of 352 amino acids was artificially synthesized, and a desired DNA fragment was amplified by PCR. The full-length cDNA and each DNA fragment were incorporated into a known expression vector, introduced into Escherichia coli, and the expressed recombinant antigen was recovered and purified using a column. According to this method, a recombinant peptide fragment comprising the amino acid sequence of positions 1-176, 83-141, 89-264, 260-352, 260-310, 280-352 and 300-352 of SEQ ID NO: 1 , And a recombinant NS1 protein consisting of the full length of SEQ ID NO: 1.
各ペプチド断片およびリコンビナント抗原について、ＰＢＳで希釈して２μｇ／ｍＬの溶液を調製し、９６穴マイクロウェルプレートに５０μＬずつ分注した。３７℃で１時間コーティングさせた後、２％ＢＳＡ／ＰＢＳを１５０μＬ／ウェル加え、４℃で一晩ブロッキングした。ＰＢＳＴで洗浄し、次いで、抗体Ａ〜Ｄを希釈液Ａ（５％牛血清、１％ＢＳＡ、０．１％カゼインナトリウム、１００μｇ／ｍＬマウスイムノグロブリンを含むＰＢＳ）で２．５μｇ／ｍＬに調製し、各５０μＬ／ウェル分注し、３７℃で１時間反応させた。ＰＢＳＴで洗浄後、アルカリホスファターゼ標識抗マウスＩｇＧ抗体を５０μＬ／ウェル分注し、３７℃で１時間反応させた。ＰＢＳＴで洗浄後、ＡＭＰＰＤ溶液（ルミパルス基質液（富士レビオ社製）を５０μＬ／ウェル分注して３７℃で５分間発光させ、マイクロプレートリーダーにて発光量を測定した。結果を表１に示す。 Each peptide fragment and the recombinant antigen were diluted with PBS to prepare a 2 μg / mL solution, which was dispensed into a 96-well microwell plate at 50 μL each. After coating at 37 ° C. for 1 hour, 150 μL / well of 2% BSA / PBS was added and blocking was performed at 4 ° C. overnight. After washing with PBST, antibodies AD are adjusted to 2.5 μg / mL with diluent A (PBS containing 5% bovine serum, 1% BSA, 0.1% sodium caseinate, 100 μg / mL mouse immunoglobulin). Then, 50 μL / well was dispensed, and reacted at 37 ° C. for 1 hour. After washing with PBST, an alkaline phosphatase-labeled anti-mouse IgG antibody was dispensed at 50 μL / well and allowed to react at 37 ° C. for 1 hour. After washing with PBST, 50 μL / well of an AMPPD solution (Lumipulse substrate solution (manufactured by Fujirebio)) was dispensed, light was emitted at 37 ° C. for 5 minutes, and the amount of light emission was measured using a microplate reader. .
Ｎ．Ｄ．：実施せず；
−：発光量＜５００００； ±：発光量５００００−１０００００
＋：発光量１０００００−２００００００； ＋＋：発光量＞２００００００
表１の結果より、抗体Ａ〜Ｃのエピトープは、配列番号１の表２に示す領域と推察された。抗体ＢおよびＣは、２８０−３５２のペプチド断片には反応するが、２６０−３１０、３００−３５２のペプチド断片には反応しないことから、コンフォメーションエピトープを認識する抗体であることが推察された。
N. D. : Not implemented;
-: Light emission <50,000; ±: light emission 50,000-100,000
+: Light emission amount 100,000-2,000,000; ++: light emission amount> 2,000,000
From the results in Table 1, the epitopes of antibodies A to C were inferred to be the regions shown in Table 2 of SEQ ID NO: 1. Antibodies B and C reacted with the peptide fragments of 280-352, but did not react with the peptide fragments of 260-310 and 300-352, suggesting that they are antibodies that recognize the conformational epitope.
［実施例４］ジカウイルスコンボアッセイ（ＣＬＥＩＡ）
以下の方法で抗体Ａ及び抗体Ｂを磁性粒子（平均粒径３μｍ）に固相化させ、抗ジカウイルスＮＳ１抗体の固相化粒子を調製した。１０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液（ｐＨ５．０）中で磁性粒子０．０１ｇ／ｍＬに、抗体Ａ及び抗体Ｂを計０．２ｍｇ／Ｌ添加し、２５℃で１時間ゆるやかに撹拌しながらインキュベートした。反応後、磁性粒子を磁石で集磁し、洗浄液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，２．０％ ＢＳＡ，ｐＨ７．０）で洗浄し、抗ジカウイルス抗体固相化粒子を得た。
Example 4 Zika Virus Combo Assay (CLEIA)
Antibody A and antibody B were immobilized on magnetic particles (average particle diameter 3 μm) by the following method to prepare immobilized particles of anti-Zika virus NS1 antibody. Antibody A and antibody B were added in a total of 0.2 mg / L to 0.01 g / mL of magnetic particles in a 10 mM MES buffer (pH 5.0), and incubated at 25 ° C. for 1 hour with gentle stirring. After the reaction, the magnetic particles were magnetized with a magnet and washed with a washing solution (50 mM Tris, 150 mM NaCl, 2.0% BSA, pH 7.0) to obtain anti-Zika virus antibody-immobilized particles.
上記粒子とは別に、以下の方法で組み換えジカウイルスエンベロープ（ＥＮＶ）抗原を磁性粒子（平均粒径３μｍ）に固相化して、ＥＮＶ抗原の固相化粒子を調製した。ＥＮＶ抗原を常法に従ってビオチンで標識し、次いで常法に従ってストレプトアビジンを感作した磁性粒子と混合し、反応させた。反応後、磁性粒子を磁石で集磁し、洗浄液で洗浄し、ＥＮＶ抗原固相化粒子を得た。 Separately from the above particles, a recombinant Zika virus envelope (ENV) antigen was immobilized on magnetic particles (average particle size: 3 μm) by the following method to prepare ENV antigen-immobilized particles. The ENV antigen was labeled with biotin according to a conventional method, and then mixed and reacted with streptavidin-sensitized magnetic particles according to a conventional method. After the reaction, the magnetic particles were magnetized with a magnet and washed with a washing solution to obtain ENV antigen-immobilized particles.
抗ジカウイルス抗体固相化粒子、ＥＮＶ抗原固相化粒子を、粒子希釈液Ａ（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ，５０ｍＭ ＮａＣｌ，１ｍＭ ＥＤＴＡ，０．５％ ＢＳＡ，０．５％ Ｔｗｅｅｎ ４０，ｐＨ８．０）でそれぞれ０．０５％、０．０２％となるように懸濁し、粒子液を調製した。 The anti-Zika virus antibody-immobilized particles and the ENV antigen-immobilized particles were mixed with particle diluent A (50 mM Tris, 50 mM NaCl, 1 mM EDTA, 0.5% BSA, 0.5% Tween 40, pH 8.0), respectively. The particles were suspended at 0.05% and 0.02% to prepare a particle liquid.
抗体Ｃを、常法に従いアルカリホスファターゼで標識し、標識抗ジカウイルスＮＳ１抗体を調製した。次いで、マウス抗ヒトＩｇＭモノクローナル抗体（富士レビオ社製、常法に従って調製）を同様にアルカリホスファターゼ標識し、標識抗ヒトＩｇＭ抗体を調製した。上記２種の標識抗体を標識体希釈液Ａ（１．０ｍＭ ＭｇＣｌ２，０．３ｍＭ ＺｎＣｌ２，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，０．５％ ＢＳＡ，０．５％ Ｔｗｅｅｎ８０， ｐＨ６．８）に、それぞれ０．７μｇ／ｍＬ、０．１μｇ／ｍＬとなるように添加し、標識体液を調製した。 Antibody C was labeled with alkaline phosphatase according to a conventional method to prepare a labeled anti-Zika virus NS1 antibody. Next, a mouse anti-human IgM monoclonal antibody (manufactured by Fujirebio Inc., prepared according to a conventional method) was similarly labeled with alkaline phosphatase to prepare a labeled anti-human IgM antibody. 0.7 μg of each of the above two types of labeled antibodies was added to labeled body diluent A (1.0 mM MgCl 2 , 0.3 mM ZnCl 2 , 150 mM NaCl, 0.5% BSA, 0.5% Tween 80, pH 6.8). / ML and 0.1 μg / mL to prepare a labeled body fluid.
ジカウイルス陽性購入検体４例（Ｐ１〜Ｐ４）および陰性検体５例（Ｎ１〜Ｎ５）について、上記の粒子液、標識体液を用いて、自動分析器ルミパルスＬ２４００(富士レビオ社製)によるジカウイルス検出を行った。検体は、ルミパルス検体希釈液（１５０ｍＭ ＮａＣｌを含む）にＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を０．５％添加した検体希釈液で２０倍希釈して使用した。各検体５０μＬを粒子液５０μＬと混合し、３７℃で８分間反応させた。粒子を集磁してルミパルス洗浄液（富士レビオ社製）で洗浄し、標識体液５０μＬを添加して懸濁させ、３７℃で８分間反応させた。再度、粒子を集磁してルミパルス洗浄液で洗浄し、未反応の標識体を除去した後、ルミパルス基質液（富士レビオ社製）を２００μＬ添加し、３７℃で４分間発光させ、発光量を測定した。 Detection of Zika virus by automatic analyzer Lumipulse L2400 (manufactured by Fuji Rebio) using the above particle solution and labeled body fluid for 4 cases of Zika virus positive purchased samples (P1 to P4) and 5 cases of negative samples (N1 to N5) Was done. The sample was diluted 20 times with a sample diluent obtained by adding 0.5% Triton X-100 to a Lumipulse sample diluent (containing 150 mM NaCl). 50 μL of each sample was mixed with 50 μL of the particle liquid, and reacted at 37 ° C. for 8 minutes. The particles were collected, washed with a Lumipulse washing solution (manufactured by Fujirebio), suspended by adding 50 μL of a labeled body fluid, and reacted at 37 ° C. for 8 minutes. The particles were collected again, washed with a Lumipulse washing solution to remove unreacted label, and then added with 200 μL of Lumipulse substrate solution (Fujirebio), allowed to emit light at 37 ° C. for 4 minutes, and the amount of light emission was measured. did.
表３に各検体の実測値(カウント)を示す（試験例１）。陰性検体の測定値の平均＋３ＳＤをカットオフとした場合、陽性検体の測定値はすべてカットオフを大幅に上回った。上記の条件で、陽性検体と陰性検体とを精度よく判別できることが示唆された。 Table 3 shows the measured values (counts) of each sample (Test Example 1). When the average of the measured values of the negative samples + 3SD was used as the cutoff, all the measured values of the positive samples significantly exceeded the cutoff. It was suggested that a positive sample and a negative sample could be accurately distinguished under the above conditions.
［実施例５］反応時塩濃度の検討
粒子希釈液のＮａＣｌ濃度を１５０ｍＭ、２７５ｍＭ、３５０ｍＭ、５００ｍＭ（それぞれ粒子希釈液Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ）とし、標識体希釈液のＮａＣｌ濃度を５００ｍＭ（標識体希釈液Ｂ）とした以外は、実施例４と同様の条件で、ジカウイルス陽性購入検体４例及び陰性検体５例について、ジカウイルス抗原及び／または抗体の検出を行った。結果を表３に示す（試験例２〜５）。
Example 5 Examination of Salt Concentration During Reaction The NaCl concentration of the particle diluent was 150 mM, 275 mM, 350 mM, and 500 mM (particle diluents B, C, D, and E, respectively), and the NaCl concentration of the labeled diluent was 500 mM ( The Zika virus antigen and / or antibody were detected in 4 cases of a Zika virus positive purchased sample and 5 cases of a negative sample under the same conditions as in Example 4 except that the labeled body diluent B) was used. The results are shown in Table 3 (Test Examples 2 to 5).
粒子希釈液の塩濃度を上げることで、全体的にシグナルが低下したが、特に粒子液の塩濃度を２７５ｍＭ以上とすると陰性検体のカウントが顕著に下がり、全体的にＳ／Ｎ比が向上する傾向が見られた。 Increasing the salt concentration of the particle diluent generally reduced the signal, but especially when the salt concentration of the particle solution was 275 mM or more, the count of negative samples was significantly reduced and the S / N ratio was improved overall. A trend was seen.
［実施例６］界面活性剤添加の検討
粒子希釈液及び標識希釈液のＮａＣｌ濃度を５００ｍＭとし、ルミパルス検体希釈液に、０．５％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００に代えて、表４に示す各界面活性剤をそれぞれ添加した以外は、実施例４と同様の方法で、ジカウイルス陽性購入検体１例（Ｐ４）及び陰性検体２例（Ｎ６、Ｎ７）について、ジカウイルス抗原及び／または抗体の検出を行った。結果を表４に示す。表中の「濃度」は、中の界面活性剤濃度を示す。
[Example 6] Examination of surfactant addition
Example 4 except that the particle diluent and the labeling diluent had a NaCl concentration of 500 mM, and each of the surfactants shown in Table 4 was added to the Lumipulse sample diluent instead of 0.5% Triton X-100. The Zika virus antigen and / or the antibody were detected in the same manner as in the above (1 case of Zika virus positive purchased sample (P4) and 2 cases of negative samples (N6, N7)). Table 4 shows the results. "Concentration" in the table indicates the concentration of the surfactant therein.
コントロール：ルミパルス検体希釈液のみ（界面活性剤未添加）
一部の界面活性剤では、陰性検体由来のバックグラウンドを下げる効果が認められたが、陽性検体のシグナルも低下させてしまうことが判明した。陽性検体の低下が限定的であり、かつ、比較的高いバックグラウンド低下効果が認められた界面活性剤は、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、ＭＥＧＡ１０、Ｃ１２ＡＰＳ及びＮＤＳ（Ｎ−デカノイルサルコシン）であった。
Control: Lumipulse sample diluent only (no surfactant added)
Some surfactants were found to have an effect of lowering the background derived from the negative sample, but also reduced the signal of the positive sample. Detergents with a limited decrease in positive samples and a relatively high background reducing effect were Triton X-100, MEGA10, C12APS and NDS (N-decanoylsarcosine).
［実施例７］単独検出系との臨床感度・特異性比較
ジカウイルスＮＳ１抗原を単独で検出する系（抗原検出系）、及びＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を単独で検出する系（抗体検出系）をそれぞれ構築し、コンボアッセイ系と臨床感度・特異性を比較した。
[Example 7] Comparison of clinical sensitivity and specificity with a single detection system A system for detecting Zika virus NS1 antigen alone (antigen detection system) and a system for detecting IgM type anti-Zika virus antibody alone (antibody detection system) Were constructed, and the clinical sensitivity and specificity were compared with the combo assay system.
抗原検出系は、抗体Ａ及び抗体Ｂを固相化した磁性粒子を、粒子希釈液Ｅに０．０５％となるように添加し調製した粒子液と、標識した抗体Ｃを標識体希釈液Ｂ（１．０ｍＭ ＭｇＣｌ２，０．３ｍＭ ＺｎＣｌ２，５００ｍＭ ＮａＣｌ，０．５％ ＢＳＡ，０．５％ Ｔｗｅｅｎ８０， ｐＨ６．８）に０．７μｇ／ｍＬとなるように添加して調製した標識体液とを用いた。一方、抗体検出系は、組み換えＥＮＶ抗原を固相化した磁性粒子を、粒子希釈液Ｅに０．０２％となるように添加し調製した粒子液と、標識抗ヒトＩｇＭ抗体を標識体希釈液Ｂで０．２μｇ／ｍＬとなるように添加して調製した標識体液とを用いた。 The antigen detection system comprises a particle liquid prepared by adding magnetic particles on which antibodies A and B are immobilized to a particle diluent E to a concentration of 0.05%; (1.0 mM MgCl 2 , 0.3 mM ZnCl 2 , 500 mM NaCl, 0.5% BSA, 0.5% Tween 80, pH 6.8) and a labeled body liquid prepared by adding 0.7 μg / mL. Was used. On the other hand, the antibody detection system comprises a particle liquid prepared by adding 0.02% of magnetic particles on which the recombinant ENV antigen has been immobilized to a particle diluent E, and a labeled diluent obtained by adding a labeled anti-human IgM antibody to the labeled diluent. A labeled body fluid prepared by adding B at 0.2 μg / mL was used.
コンボアッセイ系は、抗体Ａ及び抗体Ｂを固相化した磁性粒子、組み換えＥＮＶ抗原を固相化した粒子を、それぞれ０．０５％、０．０１％となるように粒子希釈液Ｅに添加して調製した粒子液と、標識した抗体Ｃ、標識した抗ヒトＩｇＭ抗体を、それぞれ０．７μｇ／ｍＬ、０．１μｇ／ｍＬとなるように標識体希釈液Ｂに添加して調製した標識体液を用いた。 In the combo assay system, magnetic particles on which antibodies A and B are immobilized, and particles on which a recombinant ENV antigen is immobilized are added to a particle diluent E at 0.05% and 0.01%, respectively. The labeled liquid prepared by adding the prepared particle liquid, the labeled antibody C, and the labeled anti-human IgM antibody to the labeled substance diluent B at 0.7 μg / mL and 0.1 μg / mL, respectively. Using.
ジカウイルス陽性購入検体５例（Ｐ１〜Ｐ５）及び陰性検体９例（Ｎ１〜Ｎ９）について、各粒子液、各標識体液を用いて、自動分析器ルミパルスＬ２４００(富士レビオ社製)によるアッセイを行った。各検体５０μＬを粒子液５０μＬと混合し、３７℃で８分間反応させた。粒子を集磁してルミパルス洗浄液(富士レビオ社製)で洗浄し、標識体液５０μＬを添加して懸濁させ、３７℃で８分間反応させた。再度、粒子を集磁してルミパルス洗浄液で洗浄し、未反応の標識体を除去した後、ルミパルス基質液（富士レビオ社製）を２００μＬ添加し、３７℃で４分間発光させ、発光量を測定した。
各検出系における結果を表５に示す。
Assays were performed on 5 cases of Zika virus positive purchased samples (P1 to P5) and 9 cases of negative samples (N1 to N9) using an automatic analyzer Lumipulse L2400 (manufactured by Fujirebio) using each particle solution and each labeled body fluid. Was. 50 μL of each sample was mixed with 50 μL of the particle liquid, and reacted at 37 ° C. for 8 minutes. The particles were collected, washed with a Lumipulse washing solution (manufactured by Fujirebio), suspended by adding 50 μL of a labeled body fluid, and reacted at 37 ° C. for 8 minutes. The particles were collected again, washed with a Lumipulse washing solution to remove unreacted label, and 200 μL of a Lumipulse substrate solution (manufactured by Fujirebio) was added. The mixture was allowed to emit light at 37 ° C. for 4 minutes, and the amount of light emission was measured. did.
Table 5 shows the results in each detection system.
陰性検体のカウントの平均＋３ＳＤをカットオフとした場合、抗原検出系においては、陽性検体のうち、カットオフを超えない検体が散見された。また、抗体検出系においては、陽性検体のカウントはすべてカットオフを超えたが、Ｐ１、Ｐ４などカットオフ近傍のカウント値を示す検体が散見された。一方、コンボアッセイ系は、バックグラウンドのカウントは高いものの、すべての陽性検体のカウントがカットオフを大きく上回り、抗原及び抗体の単独測定系と比して、臨床感度が高いことが示唆された。同時に、陽性検体と陰性検体のカウントの差異が大きく、特異性も高いことが示唆された。 When the average of the counts of the negative samples + 3SD was set as the cutoff, in the antigen detection system, among the positive samples, some samples did not exceed the cutoff. In addition, in the antibody detection system, the counts of all positive samples exceeded the cutoff, but samples showing count values near the cutoff, such as P1 and P4, were scattered. On the other hand, although the background count was high in the combo assay system, the counts of all positive samples greatly exceeded the cutoff, suggesting that the clinical sensitivity was higher than that of the antigen and antibody single measurement systems. At the same time, the difference between the counts of the positive and negative samples was large, suggesting that the specificity was high.
［実施例８］疑似セロコンバージョンパネルの測定
ウイルス感染患者において、感染初期のセロコンバージョンの段階では、ウイルス抗原と抗ウイルス抗体（特にＩｇＭ）とが共存し、抗原または抗体を検出するにあたり、測定系によっては一方がもう一方の検出系に干渉し、偽陰性等を引き起こすこともありうる。そこで、疑似的にセロコンバージョンパネルを調製して、コンボアッセイによる測定を行い、抗原及び抗体の他方検出系への干渉の有無を検討した。
[Example 8] Measurement of pseudo-seroconversion panel In a virus-infected patient, at the stage of seroconversion at the initial stage of infection, a virus antigen and an antiviral antibody (especially IgM) coexist. In some cases, one may interfere with the other detection system and cause a false negative or the like. Therefore, a seroconversion panel was prepared in a simulated manner and measured by a combo assay to examine the presence or absence of interference of the antigen and the antibody with the other detection system.
疑似セロコンバージョンパネルは、組み換えジカウイルスＮＳ１抗原（＃ＺＮＳ１１８−Ｒ−１００、Ａｌｐｈａ ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ社）と、抗ジカウイルスＥＮＶ抗体陽性検体Ｐ６（購入検体）とを組み合わせ、陰性検体で希釈して調製した。また、疑似セロコンバージョンパネルに加え、抗原、抗体をそれぞれ単独で陰性検体で希釈した陽性モデルパネル（抗原パネル、抗体パネル）を調製した。各パネルの濃度は表６に示す通りとした。各パネルについて、実施例７と同様に、抗原検出系、抗体検出系、コンボアッセイ系による測定を行った。 The pseudo-seroconversion panel was prepared by combining a recombinant Zika virus NS1 antigen (# ZNS118-R-100, Alpha diagnostics International) with an anti-Zika virus ENV antibody positive sample P6 (purchased sample) and diluting with a negative sample. . In addition to the pseudo-seroconversion panel, a positive model panel (antigen panel, antibody panel) was prepared by diluting the antigen and the antibody alone with a negative sample. The concentration of each panel was as shown in Table 6. For each panel, measurement was performed in the same manner as in Example 7 using an antigen detection system, an antibody detection system, and a combo assay system.
ジカウイルスの抗原及び抗体が共存する検体においても、抗原検出系、抗体検出系、コンボアッセイ系のいずれも、他方の干渉を受けることなく測定可能であることが判明した。また、コンボアッセイ系を用いることで、疑似セロコンバージョンパネルのいずれの検体も陽性判定を行うことが可能であり、当該アッセイ系がジカウイルスの感染初期の感染検出に有用であることが示唆された。 It was found that even in a sample in which an antigen and an antibody of Zika virus coexist, any of the antigen detection system, the antibody detection system, and the combo assay system can be measured without interference of the other. In addition, by using the combo assay system, any sample on the pseudo seroconversion panel can be tested positive, suggesting that the assay system is useful for detecting infection at an early stage of Zika virus infection. .
［実施例９］デングウイルス抗原／抗体との交差反応試験
実施例７のコンボアッセイ系と同じ条件で、デングウイルス陽性検体５例（Ｄ１〜Ｄ５）についてアッセイを行った。結果を表７に示す。
[Example 9] Cross-reactivity test with dengue virus antigen / antibody Five dengue virus positive samples (D1 to D5) were assayed under the same conditions as in the combo assay system of Example 7. Table 7 shows the results.
陰性検体のカウントの平均＋３ＳＤをカットオフとした場合、デングウイルス陽性検体５例のうち２例がカットオフを超え、交差反応の影響があることが示唆された。しかし、表５に示したジカウイルス陽性検体のカウントはデングウイルス陽性検体のカウントより優位に高く、ジカウイルス陽性検体のカウントは、全てデングウイルス陽性検体のカウントの平均＋３ＳＤを超える。したがって、カットオフ値を適切に設定することで、デングウイルス陽性検体がジカウイルス陽性と判定される可能性を低減させ、特異性を上げることが可能であることが判明した。 Assuming that the average of the counts of the negative samples + 3SD was the cutoff, 2 out of 5 dengue virus positive samples exceeded the cutoff, suggesting that there was an effect of cross-reactivity. However, the counts of Zika virus positive samples shown in Table 5 are significantly higher than the counts of Dengue virus positive samples, and the counts of Zika virus positive samples all exceed the average of the counts of Dengue virus positive samples + 3SD. Therefore, it has been found that by appropriately setting the cutoff value, it is possible to reduce the possibility that a dengue virus-positive sample is determined to be positive for Zika virus and to increase the specificity.
以上説明したように、本発明によれば、検体におけるジカウイルスの存在やその痕跡を高感度かつ簡便に検出することが可能となる。ジカウイルスは、ジカウイルス感染症（ジカ熱）の原因となるウイルスであることから、本発明は、研究上の利用にとどまらず、ジカウイルスによる疾患の診断においても大きく貢献しうるものである。 As described above, according to the present invention, it is possible to easily detect the presence and traces of the Zika virus in a specimen with high sensitivity. Since Zika virus is a virus that causes Zika virus infection (Zika fever), the present invention can greatly contribute not only to research use but also to diagnosis of Zika virus-related diseases.
１…検出器具、２…マトリクス、３…展開液パッド、４…標識試薬ゾーン、５…展開液吸収ゾーン、６ａ…第一の検出ゾーン、６ｂ・・・第二の検出ゾーン、７…基質ゾーン、８…検体ゾーン、９…検体、１０…展開確認部、１１…展開液槽、１２…押し込み部、１３…突起部 DESCRIPTION OF SYMBOLS 1 ... Detection instrument, 2 ... Matrix, 3 ... Development liquid pad, 4 ... Labeling reagent zone, 5 ... Development liquid absorption zone, 6a ... First detection zone, 6b ... Second detection zone, 7 ... Substrate zone , 8: Sample zone, 9: Sample, 10: Deployment confirmation part, 11: Development liquid tank, 12: Push-in part, 13: Projection
Claims (7)
（１）ジカウイルス抗原を捕捉するための第１の捕捉用分子、および
（２）ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を捕捉するための第２の捕捉用分子
に接触させ、
各捕捉用分子に捕捉されたジカウイルス抗原およびＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出する工程を含む方法。 A method for detecting a Zika virus antigen and an IgM anti-Zika virus antibody present in a sample, comprising: (1) a first capture molecule for capturing the Zika virus antigen in the same reaction system; And (2) contacting a second capture molecule for capturing an IgM anti-Zika virus antibody;
A method comprising detecting a Zika virus antigen and an IgM anti-Zika virus antibody captured by each capture molecule.
前記第２の捕捉用分子がジカウイルスＮＳ１抗原断片であり、
前記抗ジカウイルスＮＳ１モノクローナル抗体が前記ジカウイルスＮＳ１抗原断片に実質的に結合しない、請求項１または２に記載の方法。 The first capture molecule is an anti-Zika virus NS1 monoclonal antibody;
The second capture molecule is a Zika virus NS1 antigen fragment;
3. The method of claim 1 or 2, wherein the anti-Zika virus NS1 monoclonal antibody does not substantially bind to the Zika virus NS1 antigen fragment.
（１）ジカウイルス抗原を検出するための第１の捕捉用分子、および
（２）ＩｇＭ型抗ジカウイルス抗体を検出するための第２の捕捉用分子
を含むキット A kit for detecting a Zika virus antigen and an IgM-type anti-Zika virus antibody present in a sample, comprising at least (1) a first capture molecule for detecting a Zika virus antigen, and (2) an IgM-type Kit comprising a second capture molecule for detecting anti-Zika virus antibody
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