JP2019012015A - Method for measuring quantity of angiotensin peptide in sample and kit for determining quantity of angiotensin peptide - Google Patents
Method for measuring quantity of angiotensin peptide in sample and kit for determining quantity of angiotensin peptide Download PDFInfo
- Publication number
- JP2019012015A JP2019012015A JP2017128700A JP2017128700A JP2019012015A JP 2019012015 A JP2019012015 A JP 2019012015A JP 2017128700 A JP2017128700 A JP 2017128700A JP 2017128700 A JP2017128700 A JP 2017128700A JP 2019012015 A JP2019012015 A JP 2019012015A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- angiotensin
- sample
- angiotensin peptide
- peptide
- isotope
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 108010064733 Angiotensins Proteins 0.000 title claims abstract description 239
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 107
- 102000015427 Angiotensins Human genes 0.000 claims abstract description 49
- 238000004949 mass spectrometry Methods 0.000 claims abstract description 46
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims abstract description 8
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 claims description 53
- 238000011002 quantification Methods 0.000 claims description 52
- 238000004811 liquid chromatography Methods 0.000 claims description 49
- 210000002700 urine Anatomy 0.000 claims description 38
- 101800000734 Angiotensin-1 Proteins 0.000 claims description 26
- 102400000344 Angiotensin-1 Human genes 0.000 claims description 26
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 25
- 210000001124 body fluid Anatomy 0.000 claims description 21
- 239000010839 body fluid Substances 0.000 claims description 21
- UMGDCJDMYOKAJW-UHFFFAOYSA-N thiourea Chemical compound NC(N)=S UMGDCJDMYOKAJW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 18
- 238000002414 normal-phase solid-phase extraction Methods 0.000 claims description 16
- 230000007704 transition Effects 0.000 claims description 13
- VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N dithiothreitol Chemical compound SC[C@@H](O)[C@H](O)CS VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N 0.000 claims description 12
- 238000002552 multiple reaction monitoring Methods 0.000 claims description 10
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 8
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims description 8
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 8
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 8
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 claims description 7
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 claims description 7
- 239000003398 denaturant Substances 0.000 claims description 5
- CHCOFDZSJYMQMX-NOQNJSOHSA-N (2s)-2-[[(2s)-1-[(2s)-2-[[(2s,3s)-2-[[(2s)-2-[[(2s)-2-[[(2s)-2-[[(2s)-2-aminopropanoyl]amino]-5-(diaminomethylideneamino)pentanoyl]amino]-3-methylbutanoyl]amino]-3-(4-hydroxyphenyl)propanoyl]amino]-3-methylpentanoyl]amino]-3-(1h-imidazol-5-yl)propanoyl]py Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H](CC=1NC=NC=1)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(O)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CCCN=C(N)N)NC(=O)[C@H](C)N)C(C)C)C1=CC=C(O)C=C1 CHCOFDZSJYMQMX-NOQNJSOHSA-N 0.000 claims description 3
- 108010083984 angiotensin A Proteins 0.000 claims description 3
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 136
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 56
- WEVYAHXRMPXWCK-UHFFFAOYSA-N Acetonitrile Chemical compound CC#N WEVYAHXRMPXWCK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 42
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 35
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 34
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 34
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 description 31
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 30
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 30
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 30
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 29
- 101000979748 Homo sapiens Protein NDRG1 Proteins 0.000 description 28
- 102100024980 Protein NDRG1 Human genes 0.000 description 28
- DTQVDTLACAAQTR-UHFFFAOYSA-N Trifluoroacetic acid Chemical compound OC(=O)C(F)(F)F DTQVDTLACAAQTR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 28
- 102000004881 Angiotensinogen Human genes 0.000 description 25
- 108090001067 Angiotensinogen Proteins 0.000 description 25
- 102400000345 Angiotensin-2 Human genes 0.000 description 24
- 101800000733 Angiotensin-2 Proteins 0.000 description 24
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 24
- CZGUSIXMZVURDU-JZXHSEFVSA-N Ile(5)-angiotensin II Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H](CC=1NC=NC=1)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C([O-])=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CCCNC(N)=[NH2+])NC(=O)[C@@H]([NH3+])CC([O-])=O)C(C)C)C1=CC=C(O)C=C1 CZGUSIXMZVURDU-JZXHSEFVSA-N 0.000 description 21
- 101800000550 Angiotensin 1-9 Proteins 0.000 description 18
- 102400000346 Angiotensin 1-9 Human genes 0.000 description 18
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 18
- LJXGOQOPNPFXFT-JWRYNVNRSA-N angiotensin (1-9) Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H](CC=1NC=NC=1)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1NC=NC=1)C(O)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CCCN=C(N)N)NC(=O)[C@@H](N)CC(O)=O)C(C)C)C1=CC=C(O)C=C1 LJXGOQOPNPFXFT-JWRYNVNRSA-N 0.000 description 17
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 17
- 102400000347 Angiotensin 1-7 Human genes 0.000 description 16
- 108010021281 angiotensin I (1-7) Proteins 0.000 description 16
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 16
- PVHLMTREZMEJCG-GDTLVBQBSA-N Ile(5)-angiotensin II (1-7) Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H](CC=1NC=NC=1)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C([O-])=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CCCNC(N)=[NH2+])NC(=O)[C@@H]([NH3+])CC([O-])=O)C(C)C)C1=CC=C(O)C=C1 PVHLMTREZMEJCG-GDTLVBQBSA-N 0.000 description 15
- 239000000047 product Substances 0.000 description 15
- 230000036454 renin-angiotensin system Effects 0.000 description 15
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 14
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 14
- 102000001846 Low Density Lipoprotein Receptor-Related Protein-2 Human genes 0.000 description 11
- 108010015372 Low Density Lipoprotein Receptor-Related Protein-2 Proteins 0.000 description 11
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 10
- 238000005194 fractionation Methods 0.000 description 10
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 10
- 239000002243 precursor Substances 0.000 description 10
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 10
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 239000008186 active pharmaceutical agent Substances 0.000 description 9
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 9
- 238000011088 calibration curve Methods 0.000 description 8
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 8
- 238000000132 electrospray ionisation Methods 0.000 description 8
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 7
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 7
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 7
- 238000003018 immunoassay Methods 0.000 description 7
- 239000011259 mixed solution Substances 0.000 description 7
- 239000000137 peptide hydrolase inhibitor Substances 0.000 description 7
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 7
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 7
- UUUHXMGGBIUAPW-UHFFFAOYSA-N 1-[1-[2-[[5-amino-2-[[1-[5-(diaminomethylideneamino)-2-[[1-[3-(1h-indol-3-yl)-2-[(5-oxopyrrolidine-2-carbonyl)amino]propanoyl]pyrrolidine-2-carbonyl]amino]pentanoyl]pyrrolidine-2-carbonyl]amino]-5-oxopentanoyl]amino]-3-methylpentanoyl]pyrrolidine-2-carbon Chemical compound C1CCC(C(=O)N2C(CCC2)C(O)=O)N1C(=O)C(C(C)CC)NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C1CCCN1C(=O)C(CCCN=C(N)N)NC(=O)C1CCCN1C(=O)C(CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)NC(=O)C1CCC(=O)N1 UUUHXMGGBIUAPW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 6
- 102000004270 Peptidyl-Dipeptidase A Human genes 0.000 description 6
- 108090000882 Peptidyl-Dipeptidase A Proteins 0.000 description 6
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 6
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 6
- BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-N methanoic acid Natural products OC=O BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 230000008569 process Effects 0.000 description 6
- 102100028255 Renin Human genes 0.000 description 5
- 108090000783 Renin Proteins 0.000 description 5
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 5
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 5
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 5
- 238000011813 knockout mouse model Methods 0.000 description 5
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 5
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229940124158 Protease/peptidase inhibitor Drugs 0.000 description 4
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 4
- 125000000539 amino acid group Chemical group 0.000 description 4
- 150000001413 amino acids Chemical group 0.000 description 4
- 238000001360 collision-induced dissociation Methods 0.000 description 4
- 238000010612 desalination reaction Methods 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 4
- 238000000816 matrix-assisted laser desorption--ionisation Methods 0.000 description 4
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 4
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 4
- 239000012086 standard solution Substances 0.000 description 4
- OSWFIVFLDKOXQC-UHFFFAOYSA-N 4-(3-methoxyphenyl)aniline Chemical compound COC1=CC=CC(C=2C=CC(N)=CC=2)=C1 OSWFIVFLDKOXQC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- ORWYRWWVDCYOMK-HBZPZAIKSA-N angiotensin I Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H](CC=1NC=NC=1)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1NC=NC=1)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(O)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CCCN=C(N)N)NC(=O)[C@@H](N)CC(O)=O)C(C)C)C1=CC=C(O)C=C1 ORWYRWWVDCYOMK-HBZPZAIKSA-N 0.000 description 3
- 239000012472 biological sample Substances 0.000 description 3
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 3
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 3
- 238000011033 desalting Methods 0.000 description 3
- 229940042399 direct acting antivirals protease inhibitors Drugs 0.000 description 3
- 235000019253 formic acid Nutrition 0.000 description 3
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 3
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 description 3
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 3
- 238000003127 radioimmunoassay Methods 0.000 description 3
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 3
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 3
- CUKWUWBLQQDQAC-VEQWQPCFSA-N (3s)-3-amino-4-[[(2s)-1-[[(2s)-1-[[(2s)-1-[[(2s,3s)-1-[[(2s)-1-[(2s)-2-[[(1s)-1-carboxyethyl]carbamoyl]pyrrolidin-1-yl]-3-(1h-imidazol-5-yl)-1-oxopropan-2-yl]amino]-3-methyl-1-oxopentan-2-yl]amino]-3-(4-hydroxyphenyl)-1-oxopropan-2-yl]amino]-3-methyl-1-ox Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H](CC=1NC=NC=1)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](C)C(O)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CCCN=C(N)N)NC(=O)[C@@H](N)CC(O)=O)C(C)C)C1=CC=C(O)C=C1 CUKWUWBLQQDQAC-VEQWQPCFSA-N 0.000 description 2
- UXOWGYHJODZGMF-QORCZRPOSA-N Aliskiren Chemical compound COCCCOC1=CC(C[C@@H](C[C@H](N)[C@@H](O)C[C@@H](C(C)C)C(=O)NCC(C)(C)C(N)=O)C(C)C)=CC=C1OC UXOWGYHJODZGMF-QORCZRPOSA-N 0.000 description 2
- XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N Argon Chemical compound [Ar] XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 2
- 230000005526 G1 to G0 transition Effects 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 2
- 108700027649 Mitogen-Activated Protein Kinase 3 Proteins 0.000 description 2
- 102100024192 Mitogen-activated protein kinase 3 Human genes 0.000 description 2
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 2
- 210000000593 adipose tissue white Anatomy 0.000 description 2
- 229960004601 aliskiren Drugs 0.000 description 2
- 125000000637 arginyl group Chemical group N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)* 0.000 description 2
- 238000000065 atmospheric pressure chemical ionisation Methods 0.000 description 2
- 210000000941 bile Anatomy 0.000 description 2
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 2
- 229960000830 captopril Drugs 0.000 description 2
- FAKRSMQSSFJEIM-RQJHMYQMSA-N captopril Chemical compound SC[C@@H](C)C(=O)N1CCC[C@H]1C(O)=O FAKRSMQSSFJEIM-RQJHMYQMSA-N 0.000 description 2
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 2
- 125000004432 carbon atom Chemical group C* 0.000 description 2
- 210000001175 cerebrospinal fluid Anatomy 0.000 description 2
- 230000008859 change Effects 0.000 description 2
- 208000018459 dissociative disease Diseases 0.000 description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 238000011067 equilibration Methods 0.000 description 2
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 2
- 238000013467 fragmentation Methods 0.000 description 2
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 2
- IXCSERBJSXMMFS-UHFFFAOYSA-N hcl hcl Chemical compound Cl.Cl IXCSERBJSXMMFS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000000752 ionisation method Methods 0.000 description 2
- 238000002372 labelling Methods 0.000 description 2
- 238000011068 loading method Methods 0.000 description 2
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 2
- 239000003607 modifier Substances 0.000 description 2
- 125000004433 nitrogen atom Chemical group N* 0.000 description 2
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 2
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 2
- 239000012264 purified product Substances 0.000 description 2
- 239000013062 quality control Sample Substances 0.000 description 2
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 2
- 230000004044 response Effects 0.000 description 2
- 238000004366 reverse phase liquid chromatography Methods 0.000 description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 2
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 2
- 238000000672 surface-enhanced laser desorption--ionisation Methods 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 2
- FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 4-amino-1-[(2r)-6-amino-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-amino-3-phenylpropanoyl]amino]-3-phenylpropanoyl]amino]-4-methylpentanoyl]amino]hexanoyl]piperidine-4-carboxylic acid Chemical compound C([C@H](C(=O)N[C@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H](CCCCN)C(=O)N1CCC(N)(CC1)C(O)=O)NC(=O)[C@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C1=CC=CC=C1 FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 0.000 description 1
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 1
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 1
- 102100022704 Amyloid-beta precursor protein Human genes 0.000 description 1
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 1
- 102400000348 Angiotensin-3 Human genes 0.000 description 1
- 101800000738 Angiotensin-3 Proteins 0.000 description 1
- 102400000349 Angiotensin-4 Human genes 0.000 description 1
- 101800000737 Angiotensin-4 Proteins 0.000 description 1
- 239000004475 Arginine Substances 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 description 1
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 description 1
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 101000823051 Homo sapiens Amyloid-beta precursor protein Proteins 0.000 description 1
- PIWKPBJCKXDKJR-UHFFFAOYSA-N Isoflurane Chemical compound FC(F)OC(Cl)C(F)(F)F PIWKPBJCKXDKJR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ONIBWKKTOPOVIA-BYPYZUCNSA-N L-Proline Chemical compound OC(=O)[C@@H]1CCCN1 ONIBWKKTOPOVIA-BYPYZUCNSA-N 0.000 description 1
- ODKSFYDXXFIFQN-BYPYZUCNSA-P L-argininium(2+) Chemical compound NC(=[NH2+])NCCC[C@H]([NH3+])C(O)=O ODKSFYDXXFIFQN-BYPYZUCNSA-P 0.000 description 1
- AGPKZVBTJJNPAG-WHFBIAKZSA-N L-isoleucine Chemical compound CC[C@H](C)[C@H](N)C(O)=O AGPKZVBTJJNPAG-WHFBIAKZSA-N 0.000 description 1
- ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N L-leucine Chemical compound CC(C)C[C@H](N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N 0.000 description 1
- KDXKERNSBIXSRK-YFKPBYRVSA-N L-lysine Chemical compound NCCCC[C@H](N)C(O)=O KDXKERNSBIXSRK-YFKPBYRVSA-N 0.000 description 1
- COLNVLDHVKWLRT-QMMMGPOBSA-N L-phenylalanine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC1=CC=CC=C1 COLNVLDHVKWLRT-QMMMGPOBSA-N 0.000 description 1
- KZSNJWFQEVHDMF-BYPYZUCNSA-N L-valine Chemical compound CC(C)[C@H](N)C(O)=O KZSNJWFQEVHDMF-BYPYZUCNSA-N 0.000 description 1
- ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N Leucine Natural products CC(C)CC(N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010007859 Lisinopril Proteins 0.000 description 1
- KDXKERNSBIXSRK-UHFFFAOYSA-N Lysine Natural products NCCCCC(N)C(O)=O KDXKERNSBIXSRK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004472 Lysine Substances 0.000 description 1
- 241000699660 Mus musculus Species 0.000 description 1
- 101150032346 NDRG1 gene Proteins 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 1
- 206010036790 Productive cough Diseases 0.000 description 1
- ONIBWKKTOPOVIA-UHFFFAOYSA-N Proline Natural products OC(=O)C1CCCN1 ONIBWKKTOPOVIA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 1
- 102100037486 Reverse transcriptase/ribonuclease H Human genes 0.000 description 1
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 1
- KZSNJWFQEVHDMF-UHFFFAOYSA-N Valine Natural products CC(C)C(N)C(O)=O KZSNJWFQEVHDMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 229940024606 amino acid Drugs 0.000 description 1
- DZHSAHHDTRWUTF-SIQRNXPUSA-N amyloid-beta polypeptide 42 Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@H](C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CO)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCSC)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)NCC(=O)NCC(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H](C)C(O)=O)[C@@H](C)CC)C(C)C)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC=CC=1)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CCCCN)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CC=1N=CNC=1)NC(=O)[C@H](CC=1N=CNC=1)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)NC(=O)CNC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CC=1N=CNC=1)NC(=O)[C@H](CCCNC(N)=N)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC=CC=1)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@@H](N)CC(O)=O)C(C)C)C(C)C)C1=CC=CC=C1 DZHSAHHDTRWUTF-SIQRNXPUSA-N 0.000 description 1
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 1
- 239000012491 analyte Substances 0.000 description 1
- 239000002416 angiotensin derivative Substances 0.000 description 1
- ODKSFYDXXFIFQN-UHFFFAOYSA-N arginine Natural products OC(=O)C(N)CCCNC(N)=N ODKSFYDXXFIFQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052786 argon Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000012131 assay buffer Substances 0.000 description 1
- 125000004429 atom Chemical group 0.000 description 1
- 210000003445 biliary tract Anatomy 0.000 description 1
- 239000000090 biomarker Substances 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 1
- 239000002775 capsule Substances 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 1
- 210000003850 cellular structure Anatomy 0.000 description 1
- 238000000451 chemical ionisation Methods 0.000 description 1
- 238000001311 chemical methods and process Methods 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 230000037029 cross reaction Effects 0.000 description 1
- 238000007405 data analysis Methods 0.000 description 1
- 239000007857 degradation product Substances 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000003111 delayed effect Effects 0.000 description 1
- 238000003795 desorption Methods 0.000 description 1
- 238000002224 dissection Methods 0.000 description 1
- 238000010494 dissociation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000005593 dissociations Effects 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 1
- 210000003989 endothelium vascular Anatomy 0.000 description 1
- 230000007515 enzymatic degradation Effects 0.000 description 1
- 238000010265 fast atom bombardment Methods 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 239000010419 fine particle Substances 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 1
- 239000005556 hormone Substances 0.000 description 1
- 229940088597 hormone Drugs 0.000 description 1
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 238000009616 inductively coupled plasma Methods 0.000 description 1
- 239000011261 inert gas Substances 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 230000002452 interceptive effect Effects 0.000 description 1
- 238000005040 ion trap Methods 0.000 description 1
- 229960002725 isoflurane Drugs 0.000 description 1
- AGPKZVBTJJNPAG-UHFFFAOYSA-N isoleucine Natural products CCC(C)C(N)C(O)=O AGPKZVBTJJNPAG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960000310 isoleucine Drugs 0.000 description 1
- 238000004895 liquid chromatography mass spectrometry Methods 0.000 description 1
- 229960002394 lisinopril Drugs 0.000 description 1
- RLAWWYSOJDYHDC-BZSNNMDCSA-N lisinopril Chemical compound C([C@H](N[C@@H](CCCCN)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(O)=O)C(O)=O)CC1=CC=CC=C1 RLAWWYSOJDYHDC-BZSNNMDCSA-N 0.000 description 1
- 238000000464 low-speed centrifugation Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 238000000691 measurement method Methods 0.000 description 1
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 1
- 210000003097 mucus Anatomy 0.000 description 1
- 238000012856 packing Methods 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 230000001991 pathophysiological effect Effects 0.000 description 1
- 239000012466 permeate Substances 0.000 description 1
- COLNVLDHVKWLRT-UHFFFAOYSA-N phenylalanine Natural products OC(=O)C(N)CC1=CC=CC=C1 COLNVLDHVKWLRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 238000003672 processing method Methods 0.000 description 1
- 230000029865 regulation of blood pressure Effects 0.000 description 1
- 239000002461 renin inhibitor Substances 0.000 description 1
- 229940086526 renin-inhibitors Drugs 0.000 description 1
- 210000003296 saliva Anatomy 0.000 description 1
- 238000005464 sample preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000002098 selective ion monitoring Methods 0.000 description 1
- 239000001488 sodium phosphate Substances 0.000 description 1
- 229960003339 sodium phosphate Drugs 0.000 description 1
- 229910000162 sodium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000012064 sodium phosphate buffer Substances 0.000 description 1
- 235000011008 sodium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 238000005063 solubilization Methods 0.000 description 1
- 230000007928 solubilization Effects 0.000 description 1
- 239000011877 solvent mixture Substances 0.000 description 1
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 1
- 210000003802 sputum Anatomy 0.000 description 1
- 208000024794 sputum Diseases 0.000 description 1
- 210000004243 sweat Anatomy 0.000 description 1
- 210000001138 tear Anatomy 0.000 description 1
- 238000011830 transgenic mouse model Methods 0.000 description 1
- RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K trisodium phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[O-]P([O-])([O-])=O RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 229910021642 ultra pure water Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000012498 ultrapure water Substances 0.000 description 1
- 210000003932 urinary bladder Anatomy 0.000 description 1
- 230000002485 urinary effect Effects 0.000 description 1
- 239000004474 valine Substances 0.000 description 1
- 210000001631 vena cava inferior Anatomy 0.000 description 1
- 238000012795 verification Methods 0.000 description 1
Images
Abstract
Description
本発明は、試料中のアンジオテンシンペプチドの量を測定するための方法及びアンジオテンシンペプチドの定量キットに関する。 The present invention relates to a method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample and an angiotensin peptide quantification kit.
レニンアンジオテンシン系（ｒｅｎｉｎ−ａｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ ｓｙｓｔｅｍ；ＲＡＳ）は生体の血圧調節で重要な役割を担い、中でも、アンジオテンシンペプチドはこの系の中心的役割を果たしているホルモンである。アンジオテンシンペプチドは、肝臓で主に産生されるアンジオテンシノーゲン（Ａｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎｏｇｅｎ；ＡＧＴ）から、レニン（Ｒｅｎｉｎ）、アンジオテンシン変換酵素（Ａｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ−ｃｏｎｖｅｒｔｉｎｇ ｅｎｚｙｍｅ；ＡＣＥ）等の酵素によって生成される。心臓、腎臓等の臓器の局所及び組織のＲＡＳは、全身のＲＡＳとは異なる機序で制御されていることが指摘されているが、未だ不明な点が多い。特に、腎臓のＲＡＳに関しては、アンジオテンシンペプチドの産生場所及び産生機序に関していくつか仮説があり、生理的な意義に関しても議論がなされている。よって、腎臓等の臓器、及び、血液、尿等の生体試料中のアンジオテンシンペプチドを正確に定量することは、組織のＲＡＳの病態への関与の解明に役立つと期待される。 The renin-angiotensin system (RAS) plays an important role in the blood pressure regulation of the living body, and among them, the angiotensin peptide is a hormone that plays a central role in this system. Angiotensin peptides are produced from angiotensinogen (AGT) mainly produced in the liver by enzymes such as renin and angiotensin-converting enzyme (ACE). It has been pointed out that local and tissue RAS of organs such as the heart and kidneys are controlled by a mechanism different from that of whole body RAS, but there are still many unclear points. In particular, regarding the RAS of the kidney, there are several hypotheses regarding the production location and production mechanism of the angiotensin peptide, and the physiological significance is also discussed. Thus, accurate quantification of angiotensin peptides in organs such as kidneys and biological samples such as blood and urine is expected to help elucidate the involvement of tissues in the pathology of RAS.
現在、アンジオテンシンペプチドは、放射免疫測定法（Ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ；ＲＩＡ）（例えば、非特許文献１参照）、酵素免疫測定法（Ｅｎｚｙｍｅ−Ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ；ＥＬＩＳＡ）等、抗体を使用する免疫測定法で定量されていることが多い。 At present, angiotensin peptides are quantified by immunoassays using antibodies such as radioimmunoassay (RIA) (see, for example, Non-Patent Document 1) and enzyme immunoassays (Enzyme-Linked immunosorbent assay; ELISA). There are many.
また、その他の定量方法としては、液体クロマトグラフィー（ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ；ＬＣ）及び質量分析法（ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ；ＭＳ）（以下、「ＬＣ／ＭＳ」と称する場合がある。）を組み合わせた測定法を用いて、腎臓、尿、血漿又は白色脂肪組織中のアンジオテンシンペプチドを定量した値が報告されている（例えば、非特許文献２参照）。 In addition, as another quantitative method, a measurement method combining liquid chromatography (LC) and mass spectrometry (MS) (hereinafter sometimes referred to as “LC / MS”) is used. In addition, a value obtained by quantifying angiotensin peptide in kidney, urine, plasma, or white adipose tissue has been reported (for example, see Non-Patent Document 2).
また、特許文献１には、ＬＣ／ＭＳを用いて、血漿中のアンジオテンシンペプチドの量を測定することでレニン活性を測定する方法が開示されている。
さらに、特許文献２には、ＬＣ／ＭＳを用いて、血漿中の、ＲＡＳのアンジオテンシンペプチドの生成及び分解カスケードが平衡状態に達した際のアンジオテンシンペプチドの量を定量する方法が開示されている。
Furthermore, Patent Document 2 discloses a method for quantifying the amount of angiotensin peptide in plasma when the RAS angiotensin peptide production and degradation cascade reaches equilibrium in LC / MS.
抗体を使用する免疫測定法によるアンジオテンシンペプチドの定量法では、定量値が報告によって異なる。抗体は特定のアミノ酸配列を認識するが、各アンジオテンシンペプチドはアミノ酸配列の相同性が高いため、抗体の交差反応により正確な定量が困難である可能性が指摘されている。また、免疫測定法によるアンジオテンシンペプチドの定量法では、同時に複数種のアンジオテンシンペプチドを定量することが困難である。
また、ＬＣ／ＭＳを用いてアンジオテンシンペプチドを定量したこれまでの報告には、相対定量も含まれており、報告によって定量値が異なる。特に、試料として腎臓、尿、血漿又は白色脂肪組織を用い、ＬＣ／ＭＳを用いて、腎臓中のアンジオテンシンペプチドを定量したのは非特許文献２のみである。しかしながら、その定量値は、これまでの免疫測定法による定量値の約１０００倍であり、大きくかけ離れている。
さらに、特許文献１及び２では、ＬＣ／ＭＳを用いてアンジオテンシンペプチドの定量を行っているが、血漿のレニン活性の測定を目的としたもの、又は、少なくとも１５分以上インキュベーションした結果生じたアンジオテンシンペプチドの定量を目的としている。そのため、いずれも生体内の生理的及び病態生理学的なアンジオテンシンペプチドの定量法ではなく、定量法としての検証も不十分である。
In the quantification method of angiotensin peptide by immunoassay using an antibody, the quantitative value varies depending on the report. Although the antibody recognizes a specific amino acid sequence, it has been pointed out that each angiotensin peptide has high amino acid sequence homology, so that accurate quantification may be difficult due to cross-reaction of antibodies. In addition, it is difficult to quantify a plurality of types of angiotensin peptides at the same time by the quantification method of angiotensin peptides by immunoassay.
Moreover, the relative quantification is also included in the previous reports for quantifying the angiotensin peptide using LC / MS, and the quantification value varies depending on the report. In particular, only non-patent document 2 quantifies angiotensin peptides in the kidney using LC / MS using kidney, urine, plasma or white adipose tissue as a sample. However, the quantitative value is about 1000 times the quantitative value obtained by the conventional immunoassay, which is far from the same.
Furthermore, in
本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであって、アンジオテンシンペプチドを正確に定量可能な試料中のアンジオテンシンペプチドの量を測定するための方法及びアンジオテンシンペプチドの定量キットを提供する。 The present invention has been made in view of the above circumstances, and provides a method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample capable of accurately quantifying angiotensin peptide and an angiotensin peptide quantification kit.
すなわち、本発明は、以下の態様を含む。
本発明の第１態様に係る試料中のアンジオテンシンペプチドの量を測定するための方法は、試料中のアンジオテンシンペプチドの量を測定するための方法であって、前記試料に同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合した後、前記試料から内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを精製する工程１と、前記精製された前記内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを、質量分析法を用いて検出し、定量する工程２と、を備える方法であり、アンジオテンシンペプチドの定量限界が０．１ｆｍｏｌ／μＬ以下である。
前記アンジオテンシンペプチドがアンジオテンシン１、２、３、４、１−７、１−９、１−１２、アンジオテンシンＡ及びアラマンディンからなる群のうち少なくとも一つであってもよい。
上記第１態様に係る方法において、２種類以上のアンジオテンシンペプチドの量を同時に測定してもよい。
前記工程２において、三連四重極質量分析計を用いて、多重反応モニタリングを使用して検出してもよい。
上記第１態様に係る方法において、前記多重反応モニタリングで２つ以上の質量遷移を検出し、定量してもよい。
前記工程１において、前記試料から前記内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを液体クロマトグラフィーにより分離精製してもよい。
前記工程１において、前記試料から前記内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを固相抽出法により分離精製してもよい。
前記工程１において、前記試料が体液であり、前記試料に変性剤を添加し、前記試料中のタンパク質を変性させて沈殿させ、前記沈殿物のうち、前記内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを再可溶化させて分離精製してもよい。
前記試料が腎臓由来の組織抽出液又は尿であってもよい。
That is, the present invention includes the following aspects.
A method for measuring the amount of an angiotensin peptide in a sample according to the first aspect of the present invention is a method for measuring the amount of an angiotensin peptide in a sample, wherein the sample is mixed with an isotope-labeled angiotensin peptide Then, the
The angiotensin peptide may be at least one selected from the group consisting of
In the method according to the first aspect, the amounts of two or more types of angiotensin peptides may be measured simultaneously.
In step 2, detection may be performed using multiple reaction monitoring using a triple quadrupole mass spectrometer.
In the method according to the first aspect, two or more mass transitions may be detected and quantified by the multiple reaction monitoring.
In the
In the
In the
The sample may be a kidney-derived tissue extract or urine.
本発明の第２態様に係るアンジオテンシンペプチドの定量キットは、同位体標識アンジオテンシンペプチドと、変性剤と、を備える。
前記変性剤が、尿素、チオ尿素及びジチオスレイトールからなる群の少なくとも１つであってもよい。
上記第２態様に係るアンジオテンシンペプチドの定量キットは、さらに固相抽出カラムを備えてもよい。
上記第２態様に係るアンジオテンシンペプチドの定量キットは、２種類以上の同位体標識アンジオテンシンペプチドを備えてもよい。
The angiotensin peptide quantification kit according to the second aspect of the present invention comprises an isotope-labeled angiotensin peptide and a denaturing agent.
The denaturing agent may be at least one of the group consisting of urea, thiourea and dithiothreitol.
The angiotensin peptide quantification kit according to the second aspect may further include a solid phase extraction column.
The angiotensin peptide quantification kit according to the second aspect may include two or more isotope-labeled angiotensin peptides.
上記態様によれば、アンジオテンシンペプチドを正確に定量可能な試料中のアンジオテンシンペプチドの量を測定するための方法及びアンジオテンシンペプチドの定量キットを提供することができる。 According to the said aspect, the method for measuring the quantity of an angiotensin peptide in the sample which can quantify an angiotensin peptide correctly, and the quantification kit of an angiotensin peptide can be provided.
≪試料中のアンジオテンシンペプチドの量を測定するための方法≫
本発明の一実施形態に係る試料中のアンジオテンシンペプチドの量を測定するための方法は、試料中のアンジオテンシンペプチドの量を測定するための方法であって、前記試料に同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合した後、前記試料から内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを精製する工程１と、前記精製された前記内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを、質量分析法を用いて検出し、定量する工程２と、を備える方法であり、アンジオテンシンペプチドの定量限界が０．１ｆｍｏｌ／μＬ以下である。
≪Method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample≫
A method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample according to an embodiment of the present invention is a method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample, wherein the sample is mixed with an isotope-labeled angiotensin peptide Then, the
本実施形態の方法によれば、アンジオテンシンペプチドを正確に定量することができる。 According to the method of this embodiment, an angiotensin peptide can be accurately quantified.
本実施形態の方法において、分析対象となるアンジオテンシンペプチドとしては、アンジオテンシノーゲンの酵素分解産物であればよく、特別な限定はない。アンジオテンシンペプチドとして具体的には、例えば、アンジオテンシン１、アンジオテンシン２、アンジオテンシン１−９、アンジオテンシン１−７、アンジオテンシン１−１２、アンジオテンシン３、アンジオテンシン４、アンジオテンシンＡ、アラマンディン等が挙げられ、これらに限定されない。
中でも、本実施形態の方法において、分析対象となるアンジオテンシンペプチドとしては、アンジオテンシン１、アンジオテンシン２、アンジオテンシン１−９、及びアンジオテンシン１−７からなる群のうち少なくとも一つであることが好ましい。
In the method of the present embodiment, the angiotensin peptide to be analyzed is not particularly limited as long as it is an enzymatic degradation product of angiotensinogen. Specific examples of the angiotensin peptide include
Among these, in the method of the present embodiment, the angiotensin peptide to be analyzed is preferably at least one of the group consisting of
アンジオテンシン１、アンジオテンシン２、アンジオテンシン１−９、及びアンジオテンシン１−７のアミノ酸配列は以下に示すとおりである。
アンジオテンシン１：ＤＲＶＹＩＨＰＦＨＬ（配列番号１）
アンジオテンシン２：ＤＲＶＹＩＨＰＦ（配列番号２）
アンジオテンシン１−９：ＤＲＶＹＩＨＰＦＨ（配列番号３）
アンジオテンシン１−７：ＤＲＶＹＩＨＰ（配列番号４）
The amino acid sequences of
Angiotensin 1: DRVYIHPFHL (SEQ ID NO: 1)
Angiotensin 2: DRVYIHPF (SEQ ID NO: 2)
Angiotensin 1-9: DRVYIHPPFH (SEQ ID NO: 3)
Angiotensin 1-7: DRVYIHP (SEQ ID NO: 4)
上記アミノ酸配列が示すように各アンジオテンシンペプチドはアミノ酸の相同性が高い。そのため、従来の抗体を用いた免疫測定法では、抗体の交差反応により、正確な定量が困難であった。また、従来の抗体を用いた免疫測定法では、同時に複数種のアンジオテンシンペプチドを定量することは困難であった。これに対し、本実施形態の方法では、質量分析により定量を行うため、質量の差により、これらの各アンジオテンシンペプチドを識別して、正確に定量することができる。さらに、同時に複数種のアンジオテンシンペプチドを定量することも可能である。 As the amino acid sequence shows, each angiotensin peptide has high amino acid homology. Therefore, in conventional immunoassay methods using antibodies, accurate quantification has been difficult due to cross-reaction of antibodies. In addition, in conventional immunoassay methods using antibodies, it has been difficult to quantify multiple types of angiotensin peptides simultaneously. In contrast, in the method of the present embodiment, since quantification is performed by mass spectrometry, each of these angiotensin peptides can be identified and accurately quantified by the difference in mass. Furthermore, it is also possible to quantify a plurality of types of angiotensin peptides at the same time.
また、これまで、ＬＣ／ＭＳを用いてアンジオテンシンペプチドを定量する方法では、抗体を用いた免疫測定法と比較して、定量値が大きくかけ離れていた。これは、試料の調製段階での酵素活性が十分に抑制されていなかったこと、試料の精製が不十分であったこと、質量分析法による定量方法の精度が不十分であった可能性が挙げられる。
これに対し、本願発明では、後述に示す試料の種類に応じた調製方法及び精製方法、並びに質量分析法を用いた高精度な定量方法を用いることで、アンジオテンシンペプチドを絶対定量することができる。
本実施形態の方法の工程１、２について、以下に詳細を説明する。
Moreover, until now, in the method of quantifying angiotensin peptide using LC / MS, the quantified value is greatly different from the immunoassay method using an antibody. This is because the enzyme activity in the sample preparation stage was not sufficiently suppressed, the sample was not sufficiently purified, and the accuracy of the quantification method by mass spectrometry may be insufficient. It is done.
On the other hand, in this invention, an angiotensin peptide can be absolutely quantified by using the preparation method and purification method according to the kind of sample shown below, and the highly accurate quantification method using mass spectrometry.
Details of
＜工程１＞
［混合工程］
まず、試料に同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合する。このとき、既知の濃度の同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合することで、後述の質量分析法により、試料に含まれる内因性アンジオテンシンペプチドを絶対定量することができる。また、試料の精製前に同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合することで、試料中のアンジオテンシンペプチドの回収率を算出することができる。
本実施形態の方法に用いられる試料としては、動物、培養細胞又は培養組織から得られる生体試料であって、アンジオテンシンペプチドを含有し得るものであればよい。試料として具体的には、例えば、動物から摘出された組織若しくは培養組織由来の組織抽出液、培養細胞由来の細胞抽出液又は体液等が挙げられる。
<
[Mixing process]
First, an isotope labeled angiotensin peptide is mixed with a sample. At this time, by mixing an isotope-labeled angiotensin peptide with a known concentration, the endogenous angiotensin peptide contained in the sample can be absolute quantified by mass spectrometry described later. Moreover, the recovery rate of the angiotensin peptide in the sample can be calculated by mixing the isotope-labeled angiotensin peptide before purification of the sample.
The sample used in the method of the present embodiment may be a biological sample obtained from animals, cultured cells or cultured tissues, and may contain an angiotensin peptide. Specific examples of the sample include a tissue extract derived from an animal or a tissue derived from a cultured tissue, a cell extract derived from a cultured cell, or a body fluid.
前記組織又は培養組織としては、例えば、血管内皮、脳、肝臓、腎臓等が挙げられ、これらに限定されない。
前記培養細胞としては、例えば、上述の組織由来の細胞を株化したもの等が挙げられる。
Examples of the tissue or cultured tissue include, but are not limited to, vascular endothelium, brain, liver, kidney and the like.
Examples of the cultured cells include those obtained by establishing the above-mentioned tissue-derived cells.
前記体液としては、例えば、血液、血清、血漿、尿（例えば、原尿、蓄尿等）、バフィーコート、唾液、胆汁、脳脊髄液、涙液、痰、粘液、汗、膀胱洗浄液等が挙げられ、これらに限定されない。 Examples of the body fluid include blood, serum, plasma, urine (eg, raw urine, urine collection, etc.), buffy coat, saliva, bile, cerebrospinal fluid, tear fluid, sputum, mucus, sweat, bladder washing fluid, and the like. However, it is not limited to these.
全身のＲＡＳの解析を行う場合には、血液、血清、血漿等の全身を循環する体液を試料とすることが好ましい。
これに対し、組織のＲＡＳの解析を行う場合には、動物から摘出された組織若しくは培養組織由来の組織抽出液、培養細胞由来の細胞抽出液、又は、特定の組織に由来する体液を試料とすることが好ましい。
特定の組織に由来する体液として具体的には、例えば、腎臓のＲＡＳを解析するためには、尿（好ましくは、原尿）を用いればよい。
また、例えば、脳のＲＡＳを解析するためには、脳脊髄液を用いればよい。
また、例えば、肝・胆道系のＲＡＳを解析するためには、胆汁を用いればよい。
これまで、組織のＲＡＳの解析を行うために、組織におけるアンジオテンシンペプチドを絶対定量することが困難であった。これに対し、本実施形態の方法によれば、上述の試動物から摘出された組織若しくは培養組織由来の組織抽出液、培養細胞由来の細胞抽出液、又は、特定の組織に由来する体液を試料として用いて、それら試料の種類に応じた調製方法及び精製方法、並びに質量分析法を用いた高精度な定量方法を用いることで、組織におけるアンジオテンシンペプチドを絶対定量することができる。
When analyzing RAS of the whole body, it is preferable to use body fluid circulating throughout the body, such as blood, serum, and plasma, as a sample.
On the other hand, when analyzing RAS of a tissue, a tissue extract derived from an animal or a tissue extract derived from a cultured tissue, a cell extract derived from a cultured cell, or a body fluid derived from a specific tissue is used as a sample. It is preferable to do.
Specifically, urine (preferably, raw urine) may be used as a body fluid derived from a specific tissue, for example, in order to analyze RAS of the kidney.
For example, cerebrospinal fluid may be used to analyze RAS of the brain.
For example, in order to analyze RAS of the liver / biliary system, bile may be used.
Until now, in order to analyze RAS of tissues, it has been difficult to absolutely quantify angiotensin peptides in tissues. On the other hand, according to the method of this embodiment, a tissue extract derived from the above-mentioned test animal or a tissue extract derived from a cultured tissue, a cell extract derived from a cultured cell, or a body fluid derived from a specific tissue is sampled. And an angiotensin peptide in a tissue can be absolute quantified by using a preparation method and a purification method according to the type of the sample, and a highly accurate quantification method using mass spectrometry.
また、試料の由来となる動物としては、哺乳動物であることが好ましい。哺乳動物としては、例えば、ヒト、サル、イヌ、ネコ、ウサギ、ブタ、ウシ、マウス、ラット等が挙げられ、これらに限定されない。 The animal from which the sample is derived is preferably a mammal. Examples of mammals include, but are not limited to, humans, monkeys, dogs, cats, rabbits, pigs, cows, mice, rats, and the like.
本実施形態の方法に用いられる同位体標識アンジオテンシンペプチドとしては、１３Ｃ及び１５Ｎ同位体標識されたアミノ酸残基を有するものであればよい。１３Ｃ及び１５Ｎ同位体標識されたアミノ酸残基として具体的には、例えば、バリン、アルギニン、イソロイシン、ロイシン、リシン、フェニルアラニン、プロリン等が挙げられ、これらに限定されない。同位体標識アンジオテンシンペプチドにおいて、アミノ酸残基のうち１種が１３Ｃ及び１５Ｎ同位体標識されたアミノ酸残基に置換されていてもよく、２種以上が置換されていてもよい。
中でも、本実施形態の方法に用いられる同位体標識アンジオテンシンペプチドとしては、Ｎ末端から２番目のアルギニン残基の炭素原子が１３Ｃ同位体と置換され、窒素原子が１５Ｎ同位体と置換されたものであることが好ましい。この同位体標識アンジオテンシンペプチドは、天然アンジオテンシンペプチドと比較して約１０Ｄａの質量の増加をもたらす。
The isotope-labeled angiotensin peptide used in the method of the present embodiment may be any one having amino acid residues labeled with 13 C and 15 N isotopes. Specific examples of 13 C and 15 N isotope-labeled amino acid residues include, but are not limited to, valine, arginine, isoleucine, leucine, lysine, phenylalanine, proline, and the like. In the isotope-labeled angiotensin peptide, one type of amino acid residue may be substituted with 13 C and 15 N isotope-labeled amino acid residues, or two or more types may be substituted.
Among them, as the isotope-labeled angiotensin peptide used in the method of the present embodiment, the carbon atom of the second arginine residue from the N-terminus is substituted with a 13 C isotope, and the nitrogen atom is substituted with a 15 N isotope. It is preferable. This isotope-labeled angiotensin peptide results in a mass increase of about 10 Da compared to the native angiotensin peptide.
また、工程１において試料中には複数種の内因性アンジオテンシンペプチドが含まれている、そのため、試料中に含まれる複数種の内因性アンジオテンシンペプチドのうち特定の１種を定量する場合には、混合する同位体標識アンジオテンシンペプチドは当該定量する内因性アンジオテンシンペプチドに対応したものを１種類混合すればよい。
一方、試料中に含まれる複数種の内因性アンジオテンシンペプチドのうち２種類以上を定量する場合には、混合する同位体標識アンジオテンシンペプチドは当該定量する内因性アンジオテンシンペプチドに対応したものを２種類以上混合すればよい。試料に２種類以上の同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合することで、後述の質量分析法により、同時に２種類以上の内因性アンジオテンシンペプチドの量を定量することができる。
In
On the other hand, when quantifying two or more types of endogenous angiotensin peptides contained in a sample, two or more types of isotope-labeled angiotensin peptides corresponding to the endogenous angiotensin peptide to be quantified are mixed. do it. By mixing two or more types of isotope-labeled angiotensin peptides into the sample, the amount of two or more types of endogenous angiotensin peptides can be quantified simultaneously by mass spectrometry described later.
［試料調製工程］
また、混合工程の前に、適宜、試料の調製を行えばよい。試料の調製方法は、試料の種類等に応じて、公知の方法を用いて、適宜行えばよい。
例えば、試料が動物から摘出された組織及び培養組織由来の組織抽出液、並びに培養細胞由来の細胞抽出液である場合、公知の方法（参考文献１：Navar L G et al., “Tubular Fluid Concentrations and Kidney Contents of Angiotensins I and II in Anesthetized Rats”, J. Am. Soc. Nephrol., vol.5, p1153-1158, 1994.）に従い、調製すればよい。
具体的には、まず、採取後の組織、培養細胞、又は培養組織を直ちに予め−８０℃に保冷しておいたメタノール内でホモジナイズする。得られたホモジネートに同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合する。その後、余分なタンパク質及び細胞膜等を除去するために、遠心分離等を行い、その上清を得る。この上清にはメタノールが含まれるため、適宜加熱してメタノールを蒸発させる。得られた乾燥物はリン酸ナトリウム緩衝液等に溶解させて、試料として用いることができる。
[Sample preparation process]
Further, a sample may be appropriately prepared before the mixing step. The sample preparation method may be appropriately performed using a known method according to the type of the sample.
For example, in the case where the sample is a tissue extract derived from an animal, a tissue extract derived from a cultured tissue, and a cell extract derived from a cultured cell, a known method (Reference 1: Navar LG et al., “Tubular Fluid Concentrations and Kidney Contents of Angiotensins I and II in Anesthetized Rats ”, J. Am. Soc. Nephrol., Vol.5, p1153-1158, 1994.).
Specifically, first, the collected tissue, cultured cells, or cultured tissue are immediately homogenized in methanol that has been previously kept at -80 ° C. Isotope-labeled angiotensin peptide is mixed with the obtained homogenate. Thereafter, in order to remove excess proteins, cell membranes, and the like, centrifugation is performed to obtain the supernatant. Since this supernatant contains methanol, it is appropriately heated to evaporate the methanol. The obtained dried product can be dissolved in a sodium phosphate buffer or the like and used as a sample.
上記組織抽出液又は細胞抽出液の調製方法は、これまで、ＲＩＡによるアンジオテンシンペプチドの定量を行う際に、用いられてきた。しかしながら、本発明者らは、今回初めて、質量分析法によるアンジオテンシンペプチドの定量を行う際に、組織抽出液又は細胞抽出液（後述の実施例に示すように、特に、腎臓由来の組織抽出液）の調製方法として、当該調製方法を適用したところ、アンジオテンシンペプチドの絶対定量を行うことができた。これは、組織、培養組織、及び培養細胞を採取後、直ちに−８０℃の低温のメタノールに保持することで、ＲＡＳに関与する酵素の活性を充分に抑制することができ、生体内でのアンジオテンシンペプチドの量を正確に定量することができるためであると推察される。 The preparation method of the tissue extract or cell extract has been used so far when quantifying angiotensin peptides by RIA. However, the present inventors, for the first time, performed the quantification of angiotensin peptide by mass spectrometry for the first time. As a preparation method, when the preparation method was applied, an angiotensin peptide could be quantified absolutely. This is because the activity of enzymes involved in RAS can be sufficiently suppressed by collecting tissue, cultured tissue, and cultured cells in methanol at a low temperature of −80 ° C. immediately, and angiotensin in vivo. This is presumably because the amount of peptide can be accurately quantified.
試料がプロテアーゼ等の酵素を含む体液（例えば、血液、血清、血漿、原尿等）である場合、血液等の体液を採取後、直ちにプロテアーゼ阻害剤を添加することが好ましい。これにより、ＲＡＳに関与する酵素の活性を充分に抑制することができ、生体内でのアンジオテンシンペプチドの量を正確に定量することができる。
プロテアーゼ阻害剤として具体的には、例えば、ＥＤＴＡ等の金属プロテアーゼ阻害剤；カプトプリル、リシノプリル等のアンジオテンシン変換酵素（Ａｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ−ｃｏｎｖｅｒｔｉｎｇ ｅｎｚｙｍｅ；ＡＣＥ）阻害剤；アリスキレン等のレニン阻害剤等が挙げられ、これらに限定されない。これらのプロテアーゼ阻害剤を単独で添加してもよく、複数組み合わせて添加してもよい。中でも、ＲＡＳに関与する酵素の活性を充分に抑制するために、プロテアーゼ阻害剤を複数組み合わせて添加することが好ましい。
また、プロテアーゼ阻害剤を添加した後、血液等の体液に、同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合すればよい。試料として血清、血漿等を用いる場合、公知の方法を用いて、プロテアーゼ阻害剤の添加及び同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合後の血液から調製すればよい。
When the sample is a body fluid containing an enzyme such as protease (for example, blood, serum, plasma, raw urine, etc.), it is preferable to add a protease inhibitor immediately after collecting the body fluid such as blood. Thereby, the activity of the enzyme involved in RAS can be sufficiently suppressed, and the amount of angiotensin peptide in vivo can be accurately quantified.
Specific examples of the protease inhibitor include metal protease inhibitors such as EDTA; angiotensin-converting enzyme (ACE) inhibitors such as captopril and lisinopril; and renin inhibitors such as aliskiren. It is not limited to. These protease inhibitors may be added alone or in combination. Among them, in order to sufficiently suppress the activity of the enzyme involved in RAS, it is preferable to add a plurality of protease inhibitors in combination.
Further, after adding a protease inhibitor, an isotope-labeled angiotensin peptide may be mixed into a body fluid such as blood. When serum, plasma, or the like is used as a sample, a known method may be used to prepare protease-added and isotope-labeled angiotensin peptides from the mixed blood.
［精製工程］
次いで、同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合した試料から、試料に含まれる内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識アンジオテンシンペプチドを精製する。
精製方法は、試料の種類に応じて、公知の方法を適宜選択すればよい。
[Purification process]
Next, the endogenous angiotensin peptide and the isotope-labeled angiotensin peptide contained in the sample are purified from the sample mixed with the isotope-labeled angiotensin peptide.
As a purification method, a known method may be appropriately selected according to the type of sample.
精製方法として具体的には、例えば、液体クロマトグラフィー（ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ；ＬＣ）、固相抽出法等が挙げられ、これらに限定されない。中でも、固相抽出法及びＬＣをこの順に行い、分離精製することが好ましい。 Specific examples of the purification method include, but are not limited to, liquid chromatography (LC) and solid phase extraction. Among these, it is preferable to perform the solid phase extraction method and LC in this order for separation and purification.
例えば、試料が体液である場合、固相抽出及びＬＣによる分離精製の前に、試料中のタンパク質を低減させるために、ペプチド抽出法による分離精製することが好ましい。
ペプチド抽出法としては、例えば、アルブミン除去処理法、アセトニトリル沈殿法、限外濾過法、ＤＳ法（Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ Ｓｏｌｕｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ）等が挙げられる。中でも、ペプチド抽出法としては、ＤＳ法を用いることが好ましい。
これまで、ＤＳ法は、血漿等の体液を試料として、ＬＣ／ＭＳによるバイオマーカー（アンジオテンシンペプチドは除く）の探索や定量を行う際に、用いられてきた。しかしながら、本発明者らは、今回初めて、質量分析法によるアンジオテンシンペプチドの定量を行う際に、血漿、尿等の体液の分離精製方法として、ＤＳ法を適用したところ、数十μＬ等の微量の試料に含まれるアンジオテンシンペプチドの絶対定量を行うことができた。これは、ＤＳ法を用いることにより、試料中からアンジオテンシンペプチドをより高い回収率で得られたためであると推察される。
特に、血漿よりもタンパク質含有量が少ない体液試料（例えば、後述の実施例に示すように、尿）に対し、分離精製を行う場合には、限外濾過法を適用することが一般的である。これに対し、尿等のタンパク質をほとんど含まない体液試料に対し、ＤＳ法を用いて分離精製を行うことで、高い回収率を達成できることは、本発明者らにより、今回初めて見出されたものである。
すなわち、本実施形態の方法において、試料が体液である場合、ＤＳ法、固相抽出法、及びＬＣをこの順に行い、分離精製することが好ましい。
For example, when the sample is a body fluid, it is preferable to perform separation and purification by a peptide extraction method in order to reduce proteins in the sample before solid phase extraction and separation and purification by LC.
Examples of the peptide extraction method include albumin removal treatment method, acetonitrile precipitation method, ultrafiltration method, DS method (Differential Solubilization method) and the like. Of these, the DS method is preferably used as the peptide extraction method.
Until now, the DS method has been used when searching and quantifying biomarkers (excluding angiotensin peptides) by LC / MS using a body fluid such as plasma as a sample. However, the present inventors have applied the DS method as a method for separating and purifying body fluids such as plasma and urine when quantifying angiotensin peptides by mass spectrometry for the first time this time. The absolute quantification of the angiotensin peptide contained in the sample could be performed. This is presumably because the angiotensin peptide was obtained at a higher recovery rate from the sample by using the DS method.
In particular, when performing separation and purification on a body fluid sample (for example, urine as shown in the examples described later), the ultrafiltration method is generally applied. . In contrast, the present inventors have found for the first time that a high recovery rate can be achieved by separating and purifying a body fluid sample containing almost no protein such as urine using the DS method. It is.
That is, in the method of this embodiment, when the sample is a body fluid, it is preferable to perform separation, purification by performing the DS method, the solid phase extraction method, and the LC in this order.
ＤＳ法を用いた試料の処理方法として具体的には、以下に示す手順で行えばよい。
まず、体液に変性剤を添加する。
変性剤としては、例えば、尿素、チオ尿素、ジチオスレイトール（ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ；ＤＴＴ）等が挙げられ、これらに限定されない。これら変性剤を単独で用いてもよく、２種類以上組み合わせて用いてもよい。中でも、より効果的にタンパク質を変性できることから、尿素、チオ尿素、及びＤＴＴを組み合わせて用いることが好ましい。
Specifically, the sample processing method using the DS method may be performed according to the following procedure.
First, a denaturing agent is added to the body fluid.
Examples of the denaturing agent include, but are not limited to, urea, thiourea, dithiothreitol (DTT), and the like. These modifiers may be used alone or in combination of two or more. Of these, urea, thiourea, and DTT are preferably used in combination because they can denature proteins more effectively.
次いで、変性剤を添加した体液を４℃程度に冷却したアセトン等の有機溶媒中にゆっくりと滴下する。滴下後、４℃程度で３０分以上３時間以下程度の時間をかけて混和し、試料中のタンパク質を変性させて沈殿させる。次いで、遠心分離等により分離し、上清を除去して沈殿物を得る。得られた沈殿物を、塩酸等の強酸及びアセトニトリル等の有機溶媒に懸濁する。懸濁後、４℃程度で、３０分以上３時間以下程度の時間をかけて混和し、変性されたタンパク質のうち、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識アンジオテンシンペプチドを再可溶化させる。次いで、遠心分離等により分離し、上清を得ることで、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識アンジオテンシンペプチドを分離精製することができる。このとき、上清には、アセトニトリルが含まれるため、必要に応じて乾燥によりアセトニトリルを蒸発させる。得られた乾燥物を適当な緩衝液に溶解させて、固相抽出又はＬＣによる分離精製に用いられる試料とすることができる。 Next, the body fluid to which the modifier is added is slowly dropped into an organic solvent such as acetone cooled to about 4 ° C. After dropping, the mixture is mixed at about 4 ° C. for about 30 minutes to 3 hours to denature and precipitate the protein in the sample. Subsequently, it isolate | separates by centrifugation etc., A supernatant is removed and a precipitate is obtained. The obtained precipitate is suspended in a strong acid such as hydrochloric acid and an organic solvent such as acetonitrile. After suspension, the mixture is mixed at about 4 ° C. for about 30 minutes to 3 hours to resolubilize the endogenous angiotensin peptide and isotope-labeled angiotensin peptide among the denatured proteins. Subsequently, separation is performed by centrifugation or the like, and the supernatant is obtained, whereby the endogenous angiotensin peptide and the isotope-labeled angiotensin peptide can be separated and purified. At this time, since the supernatant contains acetonitrile, the acetonitrile is evaporated by drying as necessary. The obtained dried product can be dissolved in an appropriate buffer to obtain a sample used for solid phase extraction or separation and purification by LC.
（液体クロマトグラフィー（ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ；ＬＣ））
なお、本明細書における「液体クロマトグラフィー（ＬＣ）」とは、流体が微粉化物質のカラム又は毛細管路を通して、均一に浸透するのに従い、流体溶液のうちの１つ以上の成分が選択的に遅延するプロセスを意味する。この遅延は、流体が固定相に対して移動するにしたがって、１つ以上の固定相とバルク流体（すなわち、移動相）との間に混合物の成分が分布する結果として生じる。
液体クロマトグラフィーとして具体的には、例えば、逆相液体クロマトグラフィー（ＲＰＬＣ）、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）（高乱流液体クロマトグラフィー（ＨＴＬＣ）又は高スループット液体クロマトグラフィーとも称される）等が挙げられる。
(Liquid Chromatography (LC))
As used herein, “liquid chromatography (LC)” refers to selective selection of one or more components of a fluid solution as the fluid uniformly permeates through the column or capillary channel of the micronized material. Means a delayed process. This delay results from the distribution of the components of the mixture between one or more stationary phases and the bulk fluid (ie, mobile phase) as the fluid moves relative to the stationary phase.
Specific examples of liquid chromatography include, for example, reverse phase liquid chromatography (RPLC), high performance liquid chromatography (HPLC), turbulent liquid chromatography (TFLC) (high turbulent liquid chromatography (HTLC) or high throughput. (Also called liquid chromatography).
液体クロマトグラフィー（ＬＣ）による分離精製において、アンジオテンシンペプチドの種類に応じて、公知のＬＣ装置及びカラムを適宜選択することができる。クロマトグラフィーカラムは、典型的には、媒体（すなわち、充填成分）を含み、化学部分の分離（すなわち、分画）を促進する。媒体は、微粒子を含んでいてもよい。
ＬＣによる分離精製方法として具体的には、例えば、試料（又は、予め精製された試料）は、流入ポートからカラムに導入される。次いで、溶媒又は溶媒混合物を用いて溶離され、流出ポートから排出され、生成された試料を得ることができる。
また、アンジオテンシンペプチドを溶離するために、異なる溶離モードが選択されてもよい。液体クロマトグラフィーの溶離モードとしては、例えば、勾配モード、等張モード、又は多型（すなわち、混合）モード等が挙げられる。
クロマトグラフィーの際、成分（本実施形態においては、アンジオテンシンペプチド）の分離は、溶離剤（「移動相」とも称される）、溶離モード、勾配条件、温度等の各種条件によって行われる。
In separation and purification by liquid chromatography (LC), a known LC device and column can be appropriately selected according to the type of angiotensin peptide. Chromatographic columns typically include a medium (ie, a packing component) to facilitate separation (ie, fractionation) of chemical moieties. The medium may contain fine particles.
Specifically, as a separation and purification method by LC, for example, a sample (or a sample purified in advance) is introduced into a column from an inflow port. It can then be eluted with a solvent or solvent mixture and discharged from the outflow port to obtain the produced sample.
Different elution modes may also be selected to elute the angiotensin peptide. Examples of the elution mode of liquid chromatography include a gradient mode, an isotonic mode, a polymorphic (ie, mixed) mode, and the like.
During chromatography, components (in this embodiment, angiotensin peptide) are separated according to various conditions such as eluent (also referred to as “mobile phase”), elution mode, gradient conditions, and temperature.
（固相抽出法）
本明細書において、固相抽出（Ｓｏｌｉｄ ｐｈａｓｅ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ；ＳＰＥ）とは、分析化学手法の一つであって、溶液又は懸濁液中の目的とする化合物と不純物とを物理又は化学的性質に基づいて分離する方法を意味する。例えば、移動相が固体相を通して、又は、その周囲を通過するに従い、移動相の望ましくない成分は、固相によって滞留され、移動相中の目的とする化合物が精製される。また、例えば、試料中の目的とする化合物は固体相によって滞留され、移動相の望ましくない成分を、固体相を通して又はその周囲を通過させてもよい。この場合、次いで、第２の移動相を使用して、さらなる処理又は分析のために、滞留された目的とする化合物を固相から溶離させればよい。
固相抽出カラムとしては、市販のものを用いてもよく、例えば、Ｍｏｎｏ Ｓｐｉｎ（登録商標）シリーズ（ＧＬサイエンス製）等が挙げられる。
(Solid phase extraction method)
In the present specification, solid phase extraction (SPE) is one of analytical chemistry methods, and a target compound and impurities in a solution or suspension are based on physical or chemical properties. Means to separate. For example, as the mobile phase passes through or around the solid phase, undesirable components of the mobile phase are retained by the solid phase and the desired compound in the mobile phase is purified. Also, for example, the desired compound in the sample may be retained by the solid phase, and undesirable components of the mobile phase may be passed through or around the solid phase. In this case, the second mobile phase can then be used to elute the retained target compound from the solid phase for further processing or analysis.
A commercially available column may be used as the solid phase extraction column, and examples thereof include the Mono Spin (registered trademark) series (manufactured by GL Sciences).
＜工程２＞
次いで、分離精製後の質量分析計に導入し、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識アンジオテンシンペプチドを検出及び定量する。
<Process 2>
Subsequently, it is introduced into a mass spectrometer after separation and purification, and endogenous angiotensin peptide and isotope-labeled angiotensin peptide are detected and quantified.
本明細書において、「質量分析法（Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ；ＭＳ）」とは、分子をイオン化し、その質量によって化合物を同定する分析技術を意味する。
質量分析法として、具体的には、以下に示すように、分子の質量対電荷比（ｍ／ｚ）に基づいて、イオン化工程、検出工程、及び定量工程をこの順に行う。
In the present specification, “mass spectrometry (MS)” means an analysis technique in which a molecule is ionized and a compound is identified by its mass.
Specifically, as shown below, based on the mass-to-charge ratio (m / z) of the molecule, the ionization step, the detection step, and the quantification step are performed in this order.
［イオン化工程］
本実施形態の方法において、質量分析計で分析対象はイオン化されている必要がある。このため、分離精製後の試料に含まれる、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識アンジオテンシンペプチドは、質量分析計に導入する前にイオン化される。
[Ionization process]
In the method of the present embodiment, the analysis target needs to be ionized by the mass spectrometer. For this reason, the endogenous angiotensin peptide and isotope-labeled angiotensin peptide contained in the sample after separation and purification are ionized before being introduced into the mass spectrometer.
内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識アンジオテンシンペプチドをイオン化させる方法としては、例えば、電子イオン化、化学イオン化、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）、光子イオン化、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）、光イオン化、大気圧光イオン化（ＡＰＰＩ）、高速原子衝撃（ＦＡＢ）、液体二次イオン化（ＬＳＩ）、マトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）、電界イオン化、電界脱離、サーモスプレー／プラズマスプレーイオン化、表面増強レーザー脱離イオン化（ＳＥＬＤＩ）、誘導結合プラズマ（ＩＣＰ）、粒子ビームイオン化等が挙げられる。
イオン化方法は、アンジオテンシンペプチドの種類、試料の種類、検出器の種類、正対負モードの選択等に基づいて、適宜選択することができる。
Examples of methods for ionizing endogenous angiotensin peptides and isotope-labeled angiotensin peptides include electron ionization, chemical ionization, electrospray ionization (ESI), photon ionization, atmospheric pressure chemical ionization (APCI), photoionization, and atmospheric pressure photoionization. (APPI), fast atom bombardment (FAB), liquid secondary ionization (LSI), matrix-assisted laser desorption ionization (MALDI), field ionization, field desorption, thermospray / plasma spray ionization, surface enhanced laser desorption ionization ( SELDI), inductively coupled plasma (ICP), particle beam ionization, and the like.
The ionization method can be appropriately selected based on the type of angiotensin peptide, the type of sample, the type of detector, the selection of positive / negative mode, and the like.
中でも、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識アンジオテンシンペプチドをイオン化させる方法としては、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）又はマトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）を用いることが好ましく、正モードにおいて、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）を用いることがより好ましい。 Among them, as a method for ionizing endogenous angiotensin peptide and isotope-labeled angiotensin peptide, electrospray ionization (ESI) or matrix-assisted laser desorption ionization (MALDI) is preferably used, and in the positive mode, electrospray ionization (ESI) is used. ) Is more preferable.
［検出工程］
次いで、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識アンジオテンシンペプチドのイオンの量を、検出する。
具体的には、試料がイオン化された後、それによって生成された正荷電又は負荷電イオンを分析し、質量対電荷比を決定することができる。質量対電荷比を決定するための分析器としては、例えば、三連四重極質量分析器、四重極質量分析器、イオントラップ分析器、フーリエ変換分析器、オービトラップ分析器、飛行時間分析器等が挙げられる。
イオンは、いくつかの検出モードを使用して検出することができる。具体的には、例えば、イオンは、高選択性反応モニタリング（Ｈ−ＳＲＭ）、多重反応モニタリング（ＭＲＭ）、選択的反応モニタリング（ＳＲＭ）、選択的イオンモニタリングモード（ＳＩＭ）等を使用して検出されてもよい。
[Detection process]
The amount of endogenous angiotensin peptide and isotope-labeled angiotensin peptide ions are then detected.
Specifically, after the sample is ionized, the positively charged or negatively charged ions produced thereby can be analyzed to determine the mass to charge ratio. Examples of analyzers for determining the mass-to-charge ratio include triple quadrupole mass analyzers, quadrupole mass analyzers, ion trap analyzers, Fourier transform analyzers, orbitrap analyzers, and time-of-flight analysis. For example.
Ions can be detected using several detection modes. Specifically, for example, ions are detected using highly selective reaction monitoring (H-SRM), multiple reaction monitoring (MRM), selective reaction monitoring (SRM), selective ion monitoring mode (SIM), etc. May be.
中でも、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識アンジオテンシンペプチドのイオンの質量対電荷比は、三連四重極質量分析器を用いて、多重反応モニタリングを使用して検出されることが好ましい。
さらに、より正確に定量できることから、多重反応モニタリングを使用した際に、２つ以上の質量遷移を検出することが好ましい。
これにより、後述の定量工程に示すように、２つ以上の質量遷移から得られる質量プロットから２つ以上のピーク下面積を得て、さらに２つ以上のピーク下面積から２つ以上の定量値を計算し、それら定量値の平均値を算出することで、より高精度のアンジオテンシンペプチドの定量値を得ることができる。
Among these, the mass-to-charge ratio of ions of endogenous angiotensin peptide and isotope-labeled angiotensin peptide is preferably detected using multiple reaction monitoring using a triple quadrupole mass spectrometer.
Furthermore, it is preferable to detect two or more mass transitions when multiple reaction monitoring is used because it allows more accurate quantification.
Thereby, as shown in the below-mentioned quantitative process, two or more areas under the peak are obtained from a mass plot obtained from two or more mass transitions, and two or more quantitative values are obtained from two or more areas under the peak. By calculating the average value of these quantitative values, a more accurate quantitative value of the angiotensin peptide can be obtained.
また、三連四重極質量分析器は「タンデム質量分析器（ＭＳ／ＭＳ）」とも呼ばれ、ＭＳ技術の選択性を向上させることができる。この技術では、着目分子から生成される前駆体イオン（親イオンとも呼ばれる）は、ＭＳ装置内で濾過され、続いて前駆体イオンは断片化されて１つ以上の生成物イオン（娘イオンまたは断片イオンとも呼ばれる）を生じ、次にこれは第２のＭＳ手順において分析される。前駆体イオンを選択することで、特定の分子（本実施形態ではアンジオテンシンペプチド）によって生成されるイオンのみが分画チャンバを通過し、ここで不活性ガスの原子との衝突によって生成物イオンが生成する。前駆体及び生成物イオンの両方とも、所与の一連のイオン化／断片化条件下で、再現可能なように生成される。そのため、ＭＳ／ＭＳ技術は、非常に強力な分析ツールである。例えば、濾過／分画の組み合わせを使用して、干渉物質を排除することができ、生物学的試料等の複雑な試料において特に有用である。 Triple quadrupole mass analyzers are also called “tandem mass analyzers (MS / MS)” and can improve the selectivity of MS technology. In this technique, precursor ions (also referred to as parent ions) generated from the molecule of interest are filtered in an MS device, and then the precursor ions are fragmented to produce one or more product ions (daughter ions or fragments). This is also analyzed in a second MS procedure. By selecting a precursor ion, only ions generated by a specific molecule (in this embodiment an angiotensin peptide) pass through the fractionation chamber, where product ions are generated by collision with inert gas atoms. To do. Both precursor and product ions are produced reproducibly under a given set of ionization / fragmentation conditions. Therefore, MS / MS technology is a very powerful analytical tool. For example, a combination of filtration / fractionation can be used to eliminate interfering substances and is particularly useful in complex samples such as biological samples.
［定量工程］
定量工程では、イオン化したターゲットペプチド（親イオン、すなわちアンジオテンシンペプチド）が解離して生じる娘イオンが検出された場合のみシグナルとして検出する。そのシグナルのピークから目的のアンジオテンシンペプチドの定量が可能になる。また、この時、定量を行うアンジオテンシンペプチドを同位体標識したペプチドを既知量加えて内部標準として用いることで、回収率及び絶対定量値を算出することが可能になる。
[Quantitative process]
In the quantification step, a signal is detected only when a daughter ion generated by dissociation of the ionized target peptide (parent ion, ie, angiotensin peptide) is detected. The target angiotensin peptide can be quantified from the peak of the signal. At this time, it is possible to calculate the recovery rate and the absolute quantification value by adding a known amount of a peptide obtained by isotopically labeling the angiotensin peptide to be quantified and using it as an internal standard.
定量方法としてより具体的には、例えば、イオンの量のデータは、コンピュータに中継され、イオン数対時間のプロットとして生成される。このプロットされた質量クロマトグラムから、内因性アンジオテンシンペプチド（例えば、アンジオテンシン１）及び同位体標識アンジオテンシンペプチド（例えば、同位体標識アンジオテンシン１）のピーク下の面積を決定することができる。これらの面積を用いて、以下の式［１］から内因性アンジオテンシンペプチドの量を算出することができる。
試料中のアンジオテンシンペプチドの濃度
＝（試料のピーク下の面積／内部標準のピーク下の面積）× 内部標準の濃度・・・［１］
More specifically, for example, the data on the amount of ions is relayed to a computer and generated as a plot of the number of ions versus time. From this plotted mass chromatogram, the area under the peak of endogenous angiotensin peptide (eg, angiotensin 1) and isotope labeled angiotensin peptide (eg, isotope labeled angiotensin 1) can be determined. Using these areas, the amount of endogenous angiotensin peptide can be calculated from the following formula [1].
Concentration of angiotensin peptide in sample = (area under sample peak / area under internal standard peak) × concentration of internal standard [1]
また、同位体標識アンジオテンシンペプチドを２種類以上混合させておくことで、同時に２種類以上のアンジオテンシンペプチドの絶対量を得ることができる。 Moreover, the absolute amount of two or more types of angiotensin peptides can be obtained simultaneously by mixing two or more types of isotope-labeled angiotensin peptides.
＜好ましい実施形態＞
［試料：組織抽出液又は細胞抽出液］
本実施形態の方法において、試料が組織抽出液又は細胞抽出液である場合、好ましい実施形態としては、以下に示すとおりである。
まず、上述の組織抽出液又は細胞抽出液の調製方法を用いて、試料を調製し、同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合する。次いで、混合物を固相カラムに通し、さらに、液体クロマトグラフィーにより分離精製する。次いで、分離精製物を三連四重極質量分析器に導入し、正モードにおいて、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）し、多重反応モニタリングを使用して、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識ペプチドの２つ以上の質量遷移を検出する。検出された内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識ペプチドの２つ以上の質量遷移から質量クロマトグラムを作成し、それぞれ２つ以上のピーク下の面積を決定する。次いで、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識ペプチドの２つ以上のピーク下の面積から上述の式［１］を用いて、２つ以上の内因性アンジオテンシンペプチドの定量値を算出する。次いで、２つ以上の質量遷移（ｔｒａｎｓｉｔｉｏｎ）から得られる定量値の平均を定量値とし、最終定量値は同一試料を２回以上測定した場合の平均値をとる。
<Preferred embodiment>
[Sample: Tissue extract or cell extract]
In the method of this embodiment, when the sample is a tissue extract or a cell extract, a preferred embodiment is as follows.
First, a sample is prepared using the above-described method for preparing a tissue extract or cell extract, and an isotope-labeled angiotensin peptide is mixed. Next, the mixture is passed through a solid phase column, and further separated and purified by liquid chromatography. The separated and purified product is then introduced into a triple quadrupole mass spectrometer, electrospray ionized (ESI) in positive mode, and multiple reaction monitoring is used to separate the endogenous angiotensin peptide and the isotope labeled peptide. The above mass transition is detected. A mass chromatogram is generated from two or more mass transitions of the detected endogenous angiotensin peptide and isotope labeled peptide, and the area under each of the two or more peaks is determined. Next, quantitative values of two or more endogenous angiotensin peptides are calculated from the areas under two or more peaks of the endogenous angiotensin peptide and the isotope-labeled peptide using the above-mentioned formula [1]. Next, an average of quantitative values obtained from two or more mass transitions is defined as a quantitative value, and a final quantitative value is an average value when the same sample is measured twice or more.
［試料：体液］
本実施形態の方法において、試料が体液である場合、好ましい実施形態としては、以下に示すとおりである。
まず、試料と同位体標識アンジオテンシンペプチドとを混合する。次いで、ＤＳ法を用いて分離精製する。次いで、混合物を固相カラムに通し、さらに、液体クロマトグラフィーにより分離精製する。次いで、分離精製物を三連四重極質量分析器に導入し、正モードにおいて、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）し、多重反応モニタリングを使用して、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識ペプチドの２つ以上の質量遷移を検出する。検出された内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識ペプチドの２つ以上の質量遷移から質量クロマトグラムを作成し、それぞれ２つ以上のピーク下の面積を決定する。次いで、内因性アンジオテンシンペプチド及び同位体標識ペプチドの２つ以上のピーク下の面積から上述の式［１］を用いて、２つ以上の内因性アンジオテンシンペプチドの定量値を算出する。次いで、２つ以上の定量値の平均値を最終定量値とする。
[Sample: Body fluid]
In the method of this embodiment, when the sample is a body fluid, a preferred embodiment is as follows.
First, a sample and an isotope labeled angiotensin peptide are mixed. Next, separation and purification are performed using the DS method. Next, the mixture is passed through a solid phase column, and further separated and purified by liquid chromatography. The separated and purified product is then introduced into a triple quadrupole mass spectrometer, electrospray ionized (ESI) in positive mode, and multiple reaction monitoring is used to separate the endogenous angiotensin peptide and the isotope labeled peptide. The above mass transition is detected. A mass chromatogram is generated from two or more mass transitions of the detected endogenous angiotensin peptide and isotope labeled peptide, and the area under each of the two or more peaks is determined. Next, quantitative values of two or more endogenous angiotensin peptides are calculated from the areas under two or more peaks of the endogenous angiotensin peptide and the isotope-labeled peptide using the above-mentioned formula [1]. Next, an average value of two or more quantitative values is set as a final quantitative value.
［定量限界］
本実施形態の方法において、アンジオテンシンペプチドの定量限界（定量下限）は、０．５ｆｍｏｌ／μＬ以下であることが好ましく、０．１ｆｍｏｌ／μＬ以下であることがより好ましい。
一方、アンジオテンシンペプチドの定量上限は、例えば、３００ｆｍｏｌ／μＬ以上である。
[Quantitative limit]
In the method of the present embodiment, the limit of quantification (lower limit of quantification) of angiotensin peptide is preferably 0.5 fmol / μL or less, and more preferably 0.1 fmol / μL or less.
On the other hand, the upper limit of quantification of angiotensin peptide is, for example, 300 fmol / μL or more.
なお、本明細書において、「定量限界（ｌｉｍｉｔ ｏｆ ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｏｎ；ＬＯＱ）」とは、測定が定量的に有意義となる点を意味する。この定量限界における検体応答は、２０％の精度及び８０〜１２０％の正確度によって、同定し、分離し、再現することができる。また、「定量上限」とは、検体応答の定量化可能な線形上限範囲を意味する。 In the present specification, “limit of quantification (LOQ)” means a point at which the measurement is quantitatively significant. The analyte response at this limit of quantification can be identified, separated and reproduced with 20% accuracy and 80-120% accuracy. The “quantitative upper limit” means a linear upper limit range in which the specimen response can be quantified.
≪アンジオテンシンペプチドの定量キット≫
本発明の一実施形態に係るアンジオテンシンペプチドの定量キットは、同位体標識アンジオテンシンペプチドと、変性剤と、を備える。
≪Angiotensin peptide quantification kit≫
An angiotensin peptide quantification kit according to an embodiment of the present invention includes an isotope-labeled angiotensin peptide and a denaturing agent.
本実施形態の定量キットによれば、アンジオテンシンペプチドを正確に定量することができる。 According to the quantification kit of this embodiment, an angiotensin peptide can be accurately quantified.
本実施形態の定量キットに含まれる同位体標識アンジオテンシンペプチドとしては、上述の工程１において例示されたものと同様のものが挙げられる。中でも、本実施形態の定量キットに含まれる同位体標識アンジオテンシンペプチドとしては、Ｎ末端から２番目のアルギニン残基の炭素原子が１３Ｃ同位体と置換され、窒素原子が１５Ｎ同位体と置換されたものであることが好ましい。この同位体標識アンジオテンシンペプチドは、天然アンジオテンシンペプチドと比較して約１０Ｄａの質量の増加をもたらす。
Examples of the isotope-labeled angiotensin peptide contained in the quantification kit of the present embodiment include the same as those exemplified in
また、本実施形態の定量キットに含まれる同位体標識アンジオテンシンペプチドは１種類であってもよく、２種類以上であってもよい。２種類以上の同位体標識アンジオテンシンペプチドを備えることで、同時に２種類以上のアンジオテンシンペプチドの量を定量することができる。 Further, the isotope-labeled angiotensin peptide contained in the quantification kit of this embodiment may be one type or two or more types. By providing two or more isotope-labeled angiotensin peptides, the amount of two or more angiotensin peptides can be quantified simultaneously.
本実施形態の定量キットに含まれる変性剤としては、上述の工程１において例示されたものと同様のものが挙げられる。中でも、本実施形態の定量キットに含まれる変性剤としては、尿素、チオ尿素、及びＤＴＴからなる群のうち少なくとも一つであることが好ましく、尿素、チオ尿素、及びＤＴＴからなる群のうち少なくとも２つであることがより好ましく、尿素、チオ尿素、及びＤＴＴであることがさらに好ましい。
Examples of the denaturing agent contained in the quantification kit of the present embodiment include those similar to those exemplified in
本実施形態の定量キットは、さらに、固相抽出カラム等を備えていてもよい。固相抽出カラムを備えることで、ＬＣによる分離精製前の試料の精製度をより向上させることができる。
固相抽出カラムとしては、上述の工程１において例示されたものと同様のものが挙げられる。
The quantitative kit of this embodiment may further include a solid phase extraction column or the like. By providing the solid phase extraction column, the degree of purification of the sample before separation and purification by LC can be further improved.
Examples of the solid phase extraction column include the same ones as exemplified in
本実施形態の定量キットは、さらに、ＬＣによる分離精製及び質量分析に用いられる溶媒、試薬、及び容器等を適宜備えていてもよい。 The quantification kit of this embodiment may further include a solvent, a reagent, a container, and the like used for separation and purification by LC and mass spectrometry as appropriate.
以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。 EXAMPLES Hereinafter, although an Example demonstrates this invention, this invention is not limited to a following example.
［実施例１］
１．試料の準備
被検体として、１２〜１５週齢の正常雄マウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ）（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌより購入）、遺伝子組み換えマウスであるメガリン完全ノックアウト（ＫＯ）マウス（Ｎｄｒｇ１Ｃｒｅ ＥＲＴ２、ｍｅｇａｌｉｎ ｌｏｘ／ｌｏｘ）（以下、「ＮＤＲＧ１マウス」と称する場合がある）及びメガリン部分ＫＯマウス（ＡｐｏＥＣｒｅ、ｍｅｇａｌｉｎ ｌｏｘ／ｌｏｘ）（以下、「ＡｐｏＥマウス」と称する場合がある）を使用した。
[Example 1]
1. Sample Preparation As subjects, normal male mice (C57BL / 6J) aged 12 to 15 weeks (purchased from Charles Rivers Laboratories International), megalin complete knockout (KO) mice that are genetically modified mice (Ndrgl Cre ERT2, megalin lox / lox) (hereinafter sometimes referred to as “NDRG1 mice”) and megalin partial KO mice (ApoE Cre , megalin lox / lox) (hereinafter sometimes referred to as “ApoE mice”).
（１）尿の採取
解剖前２４時間蓄尿した尿を試料として使用した。なお、得られた尿は、低速遠心により、細胞成分等を除去し、上清を使用した。得られた上清は、凍結し、使用するまで−８０℃で保存した。
(1) Collection of urine Urine collected for 24 hours before dissection was used as a sample. In the obtained urine, cell components and the like were removed by low speed centrifugation, and the supernatant was used. The resulting supernatant was frozen and stored at −80 ° C. until use.
（２）血液の採取
呼気麻酔イソフルランを用いて、マウスを鎮静した後に、頸椎脱臼を行い、正中切開した。次いで、下大静脈から０．８ｍＬ採血した。なお、このとき、血液１ｍＬあたり、５００ｍＭエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）５０μＬ、２ｍＭ Ｃａｐｔｏｐｒｉｌ ６．４５μＬ、合成プロテアーゼインヒビターコンプリート（Ｒｏｓｃｈｅ製１錠を２ｍＬの超純水で溶解）２５μＬ、２５ｍＭ Ａｌｉｓｋｉｒｅｎ１０μＬを予め満たした１ｍＬのシリンジに直ちに採血した。次いで、血液は室温、８００×ｇで２０分遠心し、上清の血漿を集め、液体窒素で凍結した。得られた血漿は、使用するまで−８０℃で保存した。なお、得られた血漿において、オリエンタル酵母工業株式会社に依頼してＲＩＡ２抗体法によりレニン活性が十分に抑制されていることを確認した。また、血漿にアンジオテンシン１を添加し、アンジオテンシン２への変化量を測定することで、ＡＣＥ活性が十分に抑制されていることを確認した。
(2) Blood collection After exhalation anesthesia isoflurane, the mouse was sedated, cervical dislocation was performed, and a midline incision was made. Next, 0.8 mL of blood was collected from the inferior vena cava. At this time, 50 μL of 500 mM ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), 2 mM Captopril 6.45 μL, synthetic protease inhibitor complete (1 tablet of Roche dissolved in 2 mL of ultrapure water) 25 μL, 25 mM Aliskiren 10 μL per 1 mL of blood was previously filled. Blood was collected immediately in a 1 mL syringe. The blood was then centrifuged at 800 × g for 20 minutes at room temperature, and the supernatant plasma was collected and frozen in liquid nitrogen. The resulting plasma was stored at −80 ° C. until use. In the obtained plasma, it was confirmed that renin activity was sufficiently suppressed by the RIA2 antibody method by requesting Oriental Yeast Co., Ltd. Moreover, it was confirmed that ACE activity was sufficiently suppressed by adding
（３）腎臓の摘出
採血後、右腎を摘出し、被膜を除去して１／２にカットし、直ちに液体窒素で凍結した。左腎も摘出し、同様に処理し、凍結した。得られた腎臓は、使用するまで−８０℃で保存した。
(3) Extraction of kidney After blood collection, the right kidney was extracted, the film was removed, and it was cut in half and immediately frozen in liquid nitrogen. The left kidney was also removed, processed similarly and frozen. The resulting kidney was stored at −80 ° C. until use.
２．工程１：アンジオテンシンペプチドの精製
（１）各試料からのアンジオテンシンペプチドの分離
・尿試料からのアンジオテンシンペプチドの分離
まず、４０μＬの尿に安定同位体標識のアンジオテンシンペプチド（１、２、１−９及び１−７）（アンジオテンシンペプチド１、２はＧｒａｉｎｅｒ ｂｉｏ−ｏｎｅ製、アンジオテンシンペプチド１−９及び１−７はＳｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ製）をそれぞれ１００ｆｍｏｌずつ添加した。なお、各アンジオテンシンペプチドのアミノ酸配列は配列番号１〜４に示すとおりである。次いで、サンプルの倍量の変性剤（７Ｍ尿素、２Ｍチオウレア、及び２０ｍＭ ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ（ＤＴＴ））を添加した。次いで、混合液を４℃に冷やした２ｍＬのアセトンの中に、ゲルローディング用の細いチップを用いて一滴ずつゆっくりと添加した。添加後すぐに４℃で１時間混和した。次いで、４℃、１９０００×ｇで１５分遠心し、上清を捨てた。次いで、１ｍＬの１２ｍＭ塩酸（ＨＣｌ）及び８０％アセトニトリル（ＡＣＮ）の混合溶液を用いて、沈殿を再懸濁した。次いで、４℃で、２時間混和した。次いで、４℃、１９０００×ｇで１５分遠心し、上清を回収した。次いで、回収した上清を遠心乾燥機で乾燥させて、乾燥物を得た。得られた乾燥物を１ｍＬの０．２％トリフルオロ酢酸（ｔｒｉｆｌｕｏｒｏａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ；ＴＦＡ）で再懸濁した。
2. Step 1: Purification of angiotensin peptide (1) Separation of angiotensin peptide from each sample and separation of angiotensin peptide from urine sample First, stable isotope-labeled angiotensin peptide (1, 2, 1-9 and 1) in 40 μL of urine. -7) (
・血漿試料からのアンジオテンシンペプチドの分離
まず、２０μＬの血漿に安定同位体標識のアンジオテンシンペプチド（１、２、１−７及び１−９、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ製）をそれぞれ１００ｆｍｏｌずつ添加した。次いで、サンプルの倍量の変性剤（７Ｍ尿素、２Ｍチオウレア、及び２０ｍＭ ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ（ＤＴＴ））を添加した。次いで、混合液を４℃に冷やした２ｍＬのアセトンの中に、ゲルローディング用の細いチップを用いて一滴ずつゆっくりと添加した。添加後すぐに４℃で１時間混和した。次いで、４℃、１９０００×ｇで１５分遠心し、上清を捨てた。次いで、８００μＬの１２ｍＭ塩酸（ＨＣｌ）及び８０％アセトニトリル（ＡＣＮ）の混合溶液を用いて、沈殿を再懸濁した。次いで、４℃で、１時間混和した。次いで、４℃、１９０００×ｇで１５分遠心し、上清を回収した。次いで、回収した上清を遠心乾燥機で乾燥させて、乾燥物を得た。得られた乾燥物を１ｍＬの０．２％ＴＦＡで再懸濁した。
-Separation of Angiotensin Peptide from Plasma Sample First, 100 fmol each of stable isotope-labeled angiotensin peptides (1, 2, 1-7 and 1-9, manufactured by Sigma-Aldrich) was added to 20 μL of plasma. Samples twice the amount of denaturant (7M urea, 2M thiourea, and 20 mM dithiothreitol (DTT)) were then added. Next, the mixture was slowly added dropwise to 2 mL of acetone cooled to 4 ° C. using a thin tip for gel loading. Immediately after the addition, the mixture was mixed at 4 ° C. for 1 hour. Next, the mixture was centrifuged at 19000 × g for 15 minutes at 4 ° C., and the supernatant was discarded. The precipitate was then resuspended with 800 μL of a mixed solution of 12 mM hydrochloric acid (HCl) and 80% acetonitrile (ACN). Subsequently, it mixed at 4 degreeC for 1 hour. Next, the mixture was centrifuged at 19000 × g for 15 minutes at 4 ° C., and the supernatant was collected. Next, the collected supernatant was dried with a centrifugal dryer to obtain a dried product. The resulting dried product was resuspended with 1 mL of 0.2% TFA.
・腎臓試料からのアンジオテンシンペプチドの分離
まず、腎臓の湿重量を計測後、１／２にカットした右腎を２．５ｍＬのメタノール（−８０℃で予め冷やしたもの）内でホモジナイズした（条件：ＩＫＡホモジナイザー、３０秒）。なお、得られた腎臓のホモジネートにおいて、オリエンタル酵母工業株式会社に依頼してＲＩＡ２抗体法によりレニン活性が十分に抑制されていることを確認した。また、得られた腎臓のホモジネートにアンジオテンシン１を添加し、アンジオテンシン２への変化量を測定することで、ＡＣＥ活性が十分に抑制されていることを確認した。
次いで、得られたホモジネートに、内部標準として安定同位体標識アンジオテンシンペプチド（１、２、１−７及び１−９、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ製）をそれぞれ５００ｆｍｏｌずつ添加した。次いで、４℃、１４００×ｇで１５分遠心し、上清を１５ｍＬの耐熱ガラス試験管に採取した。次いで、８５℃に熱したヒートブロックで上清を含む試験管を加熱し、メタノールを蒸発させた。乾燥後、５００μＬのＡｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ ａｓｓａｙ ｂｕｆｆｅｒ（５０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ−ｐｈｏｓｐｈａｔｅ及び１ｍＭ ＥＤＴＡ含有、ｐＨ７．４)で再懸濁した。次いで、４℃、２１０００×ｇで２０分遠心し、上清を回収した。次いで、回収した上清に５００μＬの０．２％ＴＦＡを加え、合計約１ｍＬとした。
-Separation of angiotensin peptide from kidney sample First, after measuring the wet weight of the kidney, the right kidney cut in half was homogenized in 2.5 mL of methanol (pre-cooled at -80 ° C) (conditions: IKA homogenizer, 30 seconds). In the obtained kidney homogenate, it was confirmed that the renin activity was sufficiently suppressed by the RIA2 antibody method by requesting Oriental Yeast Co., Ltd. Moreover, it was confirmed that the ACE activity was sufficiently suppressed by adding
Next, 500 fmol each of stable isotope-labeled angiotensin peptides (1, 2, 1-7 and 1-9, manufactured by Sigma-Aldrich) was added to the obtained homogenate as an internal standard. Next, the mixture was centrifuged at 1400 × g for 15 minutes at 4 ° C., and the supernatant was collected in a 15 mL heat-resistant glass test tube. Next, the test tube containing the supernatant was heated with a heat block heated to 85 ° C. to evaporate the methanol. After drying, it was resuspended in 500 μL of Angiotensin assay buffer (containing 50 mM sodium-phosphate and 1 mM EDTA, pH 7.4). Subsequently, it centrifuged at 4 degreeC and 21000 xg for 20 minutes, and collect | recovered supernatants. Subsequently, 500 μL of 0.2% TFA was added to the collected supernatant to make a total of about 1 mL.
（２）各試料の脱塩及びペプチド分画
・尿試料及び腎臓試料の脱塩及びペプチド分画
次いで、（１）で得られた尿及び腎臓由来の再懸濁液をＭｏｎｏ Ｓｐｉｎ（登録商標） Ｃ１８（ＧＬサイエンス製）を用いて脱塩及びペプチド分画した。具体的な手順は以下に示すとおりである。
まず、Ｍｏｎｏ Ｓｐｉｎ（登録商標） Ｃ１８（ＧＬサイエンス製）に、溶媒又はサンプルを滴下し、４℃、１０００×ｇで１分間遠心した。溶媒及び試料の滴下した順番は以下に示すとおりである。
（カラムの平衡化）
５ｍＬ メタノール
→５ｍＬ ０．２％ＴＦＡ及び８０％ＡＣＮ混合液
→５ｍＬ ０．２％ＴＦＡ
（試料の滴下）
→１ｍＬの（１）で得られた再懸濁液
（洗浄）
→５ｍＬ ０．２％ＴＦＡ
（溶出）
→２ｍＬ ０．２％ＴＦＡ及び３０％ＡＣＮ混合液
(2) Desalination of each sample and peptide fractionation / desalting and peptide fractionation of urine sample and kidney sample Next, the urine and kidney-derived resuspension obtained in (1) were subjected to Mono Spin (registered trademark). Desalting and peptide fractionation were performed using C18 (manufactured by GL Science). The specific procedure is as follows.
First, a solvent or a sample was dropped into Mono Spin (registered trademark) C18 (manufactured by GL Science), and centrifuged at 4 ° C. and 1000 × g for 1 minute. The order of dropping the solvent and the sample is as shown below.
(Column equilibration)
5 mL methanol → 5 mL 0.2% TFA and 80% ACN mixed solution → 5 mL 0.2% TFA
(Sample dripping)
→ Resuspension (washing) obtained with 1 mL of (1)
→ 5mL 0.2% TFA
(Elution)
→ 2 mL 0.2% TFA and 30% ACN mixed solution
・血漿試料の脱塩及びペプチド分画
次いで、（１）で得られた血漿由来の再懸濁液をＭｏｎｏ Ｓｐｉｎ（登録商標） Ｃ１８（ＧＬサイエンス製）を用いて脱塩及びペプチド分画した。具体的な手順は以下に示すとおりである。
まず、Ｍｏｎｏ Ｓｐｉｎ（登録商標） Ｃ１８（ＧＬサイエンス製）に、溶媒又はサンプルを滴下し、４℃、１０００×ｇで１分間遠心した。溶媒及び試料の滴下した順番は以下に示すとおりである。
（カラムの平衡化）
５ｍＬ メタノール
→５ｍＬ ０．２％ＴＦＡ及び８０％ＡＣＮ混合液
→５ｍＬ ０．２％ＴＦＡ
（試料の滴下）
→１ｍＬの（１）で得られた再懸濁液
（洗浄）
→５ｍＬ ０．２％ＴＦＡ
→５ｍＬ ０．２％ＴＦＡ及び１５％ＡＣＮ混合液
（溶出）
→２ｍＬ ０．２％ＴＦＡ及び３０％ＡＣＮ混合液
-Desalting of plasma sample and peptide fractionation Next, the plasma-derived resuspension obtained in (1) was desalted and peptide fractionated using Mono Spin (registered trademark) C18 (manufactured by GL Sciences). The specific procedure is as follows.
First, a solvent or a sample was dropped into Mono Spin (registered trademark) C18 (manufactured by GL Science), and centrifuged at 4 ° C. and 1000 × g for 1 minute. The order of dropping the solvent and the sample is as shown below.
(Column equilibration)
5 mL methanol → 5 mL 0.2% TFA and 80% ACN mixed solution → 5 mL 0.2% TFA
(Sample dripping)
→ Resuspension obtained with 1 mL (1) (washing)
→ 5mL 0.2% TFA
→ 5mL 0.2% TFA and 15% ACN mixture (elution)
→ 2 mL 0.2% TFA and 30% ACN mixed solution
（３）試料の最終調製
上述のＭｏｎｏ Ｓｐｉｎ Ｃ１８の処理で得られたアンジオテンシンペプチドを含んだ各溶出物を、遠心乾燥機で乾燥させた。次いで、腎臓試料は１００μＬ、尿及び血液試料はそれぞれ２０μＬの０．２％ＴＦＡで再懸濁し、液体クロマトグラフィーに使用する試料とした。
(3) Final preparation of sample Each eluate containing the angiotensin peptide obtained by the above-mentioned treatment of Mono Spin C18 was dried with a centrifugal dryer. Next, the kidney sample was resuspended in 100 μL, and the urine and blood samples were each resuspended in 20 μL of 0.2% TFA to obtain samples used for liquid chromatography.
（４）液体クロマトグラフィーによる分離精製
・尿試料及び腎臓試料の液体クロマトグラフィーによる分離精製
液体クロマトグラフィー（Ｌｉｑｕｉｄ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ；ＬＣ）システムとしては、Ｅｋｓｉｇｅｎｔ（登録商標） Ｅｘｓｐｅｒｔ ｎａｎｏ ＬＣ ４００、Ｅｋｓｉｇｅｎｔ（登録商標） Ｅｘｓｐｅｒｔ ｃＨｉＰＬＣ（登録商標）を用いた。カラム温度は３０℃に設定し、Ｔｒａｐ ａｎｄ ｅｌｕｔｅ ｍｏｄｅで使用した。
(4) Separation and Purification by Liquid Chromatography / Separation and Purification by Liquid Chromatography of Urine Sample and Kidney Sample Liquid chromatography (Liquid Chromatography; LC) systems include Eksigent (registered trademark)
また、使用したカラム、移動相及び流速は以下に示すとおりである。
（カラム）
Ｔｒａｐ ｃｏｌｕｍｎ：Ｎａｎｏ ｃＨｉＰＬＣ（登録商標） Ｔｒａｐ ｃｏｌｕｍｎ ２００μｍ×０．５ｍｍ ＣｈｒｏｍＸＰ Ｃ１８−ＣＬ ３μｍ １２０Å（８０４−００００６）
Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ ｃｏｌｕｍｎ：Ｎａｎｏ ｃＨｉＰＬＣ（登録商標） ｃｏｌｕｍｎ ７５μｍ×１５ｃｍ ＣｈｒｏｍＸＰ Ｃ１８−ＣＬ ３μｍ １２０Å（８０４−００００１）
（移動相）
Ａ溶媒：０．１％ギ酸（ｆｏｒｍｉｃ ａｃｉｄ；ＦＡ）
Ｂ溶媒：０．１％ＦＡ及び１００％ＡＣＮ混合液
（流速）
３００ｎＬ／ｍｉｎ
The columns, mobile phase and flow rate used are as shown below.
(column)
Trap column: Nano cHiPLC (registered trademark)
Analytical column: Nano cHiPLC (registered trademark) column 75 μm × 15 cm ChromXP C18-CL 3 μm 120 mm (804-00001)
(Mobile phase)
Solvent A: 0.1% formic acid (FA)
B solvent: 0.1% FA and 100% ACN mixed solution (flow rate)
300nL / min
ＬＣによる分離精製の手順としては、以下に示すとおりである。
Ａ溶媒９８％、Ｂ溶媒２％で平衡化したＡｎａｌｙｔｉｃａｌ ｃｏｌｕｍｎへの（３）で最終調製された試料を導入した時間を０分とした。まず、Ｂ溶媒を３０分で３２％まで直線的に上昇させ、測定対象物であるアンジオテンシンペプチドを分離溶出した。次いで、そこから５分間でＢ溶媒を９０％まで上昇させた。次いで、５分間、Ａ溶媒１０％、Ｂ溶媒９０％を保ち、カラムを洗った。次いで、そこから０．１分間でＡ溶媒９８％、Ｂ溶媒２％まで戻し、６０分まで初期状態のＡ溶媒９８％、Ｂ溶媒２％で平衡化した。
The procedure for separation and purification by LC is as follows.
The time for introducing the sample finally prepared in (3) into the analytical column equilibrated with 98% of the A solvent and 2% of the B solvent was 0 minute. First, the solvent B was linearly increased to 32% in 30 minutes, and the angiotensin peptide as the measurement object was separated and eluted. Subsequently, the B solvent was raised to 90% in 5 minutes. Next, the column was washed while maintaining 10% of solvent A and 90% of solvent B for 5 minutes. Subsequently, the solvent was returned to 98% of the A solvent and 2% of the B solvent in 0.1 minutes, and equilibrated with 98% of the A solvent and 2% of the B solvent in the initial state until 60 minutes.
・血漿試料の液体クロマトグラフィーによる分離精製
使用したＬＣシステム、カラム、移動相及び流速は、尿試料及び腎臓試料の液体クロマトグラフィーによる分離精製と同様である。
ＬＣによる分離精製の手順としては、以下に示すとおりである。
Ａ溶媒９０％、Ｂ溶媒１０％で平衡化したＡｎａｌｙｔｉｃａｌ ｃｏｌｕｍｎへの（３）で最終調製された試料を導入した時間を０分とした。まず、Ｂ溶媒を３０分で２８％まで直線的に上昇させ、測定対象物であるアンジオテンシンペプチドを分離溶出した。次いで、そこから５分間でＢ溶媒を９０％まで上昇させた。次いで、５分間、Ａ溶媒１０％、Ｂ溶媒９０％を保ち、カラムを洗った。次いで、そこから０．１分間でＡ溶媒９８％、Ｂ溶媒２％まで戻し、７０分までＡ溶媒９８％、Ｂ溶媒２％で平衡化した。
-Separation and purification of plasma samples by liquid chromatography The LC system, column, mobile phase and flow rate used were the same as those for separation and purification of urine samples and kidney samples by liquid chromatography.
The procedure for separation and purification by LC is as follows.
The time when the sample finally prepared in (3) was introduced into the Analytical column equilibrated with 90% of the A solvent and 10% of the B solvent was set to 0 minute. First, the solvent B was linearly increased to 28% in 30 minutes, and the angiotensin peptide as the measurement object was separated and eluted. Subsequently, the B solvent was raised to 90% in 5 minutes. Next, the column was washed while maintaining 10% of solvent A and 90% of solvent B for 5 minutes. Subsequently, the solvent was returned to 98% of the A solvent and 2% of the B solvent in 0.1 minutes, and equilibrated with 98% of the A solvent and 2% of the B solvent until 70 minutes.
３．工程２：質量分析（アンジオテンシンペプチドのイオン化、検出及び定量）
質量分析計は、Ｓｃｉｅｘ社製のＴｒｉｐｌｅ ＴＯＦ（登録商標） ５６００＋をＰｏｓｉｔｉｖｅ ｉｏｎ ｍｏｄｅで使用した。
3. Step 2: Mass spectrometry (ionization, detection and quantification of angiotensin peptide)
As the mass spectrometer, Triple TOF (registered trademark) 5600+ manufactured by Sciex was used in a positive ion mode.
・尿試料の解析方法
尿試料を用いたＡｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ Ｉ、ＩＩ、１−９及び１−７の質量分析は以下の条件にて行った。
（質量分析の条件）
ＴＯＦ ＭＳ質量範囲：２００〜１２００Ｄａ
Ｄｅｃｌｕｓｔｅｒｉｎｇ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ（ＤＰ）：８０Ｖ
Ｃｏｌｌｉｓｉｏｎ ｅｎｅｒｇｙ（ＣＥ）:１０Ｖ
ＴＯＦ−ＭＳ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ：０．２５秒
Ｐｒｏｄｕｃｔ ｉｏｎ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ：０．１９９秒
Ｃｙｃｌｅ ｔｉｍｅ：１．８９秒
合計１８９５サイクル
なお、衝突誘起解離反応の条件は、各アンジオテンシンペプチドの標準品を用いて最適化を行った。
また、各アンジオテンシンペプチドのＭＳ／ＭＳスペクトルの取得条件は以下の表１に示すとおりである。
-Analysis method of urine sample The mass spectrometry of Angiotensin I, II, 1-9, and 1-7 using the urine sample was performed under the following conditions.
(Conditions for mass spectrometry)
TOF MS mass range: 200-1200 Da
Decapsulating potential (DP): 80V
Collision energy (CE): 10V
TOF-MS accumulation time: 0.25 seconds Production accumulation time: 0.199 seconds Cycle time: 1.89 seconds Total 1895 cycles The conditions for the collision-induced dissociation reaction were optimized using the standard products of each angiotensin peptide. Went.
Moreover, the acquisition conditions of the MS / MS spectrum of each angiotensin peptide are as shown in Table 1 below.
・血漿試料及び腎臓試料の解析方法
血漿試料及び腎臓試料を用いたＡｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ Ｉ及びＩＩの質量分析は以下の条件にて行った。
（質量分析の条件）
ＴＯＦ ＭＳ質量範囲：４００〜１２５０Ｄａ
Ｄｅｃｌｕｓｔｅｒｉｎｇ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ（ＤＰ）：８０Ｖ
Ｃｏｌｌｉｓｉｏｎ ｅｎｅｒｇｙ（ＣＥ）:１０Ｖ
ＴＯＦ−ＭＳ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ：０．２５秒
Ｐｒｏｄｕｃｔ ｉｏｎ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ：０．２０秒
Ｃｙｃｌｅ ｔｉｍｅ：１．１秒
合計３２７２サイクル
なお、衝突誘起解離反応の条件は、各アンジオテンシンペプチドの標準品を用いて最適化を行った。
また、各アンジオテンシンペプチドのＭＳ／ＭＳスペクトルの取得条件は以下の表２に示すとおりである。
-Analysis method of plasma sample and kidney sample The mass spectrometry of Angiotensin I and II using the plasma sample and the kidney sample was performed under the following conditions.
(Conditions for mass spectrometry)
TOF MS mass range: 400-1250 Da
Decapsulating potential (DP): 80V
Collision energy (CE): 10V
TOF-MS accumulation time: 0.25 seconds Production accumulation time: 0.20 seconds Cycle time: 1.1 seconds Total 3272 cycles The conditions for the collision-induced dissociation reaction were optimized using the standard products of each angiotensin peptide. Went.
Moreover, the acquisition conditions of the MS / MS spectrum of each angiotensin peptide are as shown in Table 2 below.
各試料について、生成されたイオンのうち、質量対電荷比が表３に示す値である前駆体イオン（Ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ ｉｏｎ）を選択するように設定された第１の四重極（Ｑ１）を通過させた。次いで、第２の四重極に流入するイオンをアルゴンガスと衝突させて、イオン画分を生成させた。次いで、Ｑ２で得られた各イオン画分のうち、質量対電荷比が表３に示す値である生成物イオン（Ｐｒｏｄｕｃｔ ｉｏｎ）を選択するように設定された第３の四重極（Ｑ３）を通過させた。また、表３に示すように、前駆体イオン及び生成物イオンの組み合わせである質量遷移（ｔｒａｎｓｉｔｉｏｎ）として、アンジオテンシン１、１−９及び１−７は３つの質量遷移を組み、アンジオテンシン２は２つの質量遷移を組んだ。なお、各試料におけるアンジオテンシンペプチドの定量値は、この２つ又は３つの質量遷移から得られる定量値の平均値を用いた。
また、同時に、内部標準である安定同位体標識アンジオテンシンペプチドについても、質量対電荷比が表３に示す値である前駆体イオン及び生成物イオンを選択するようにして、同様に三連四重極質量分析を行った。
なお、表３中、「ｌｉｇｈｔ」が標識なしのアンジオテンシンペプチドを示し、「ｈｅａｖｙ」が安定同位体標識アンジオテンシンペプチドを示す。
For each sample, the first quadrupole (Q1) set so as to select a precursor ion having a mass-to-charge ratio as shown in Table 3 among the generated ions is passed through. It was. Next, ions flowing into the second quadrupole collided with the argon gas to generate an ion fraction. Next, among each ion fraction obtained in Q2, a third quadrupole (Q3) set to select a product ion (Production) whose mass-to-charge ratio is the value shown in Table 3 Was passed. Moreover, as shown in Table 3, as mass transition which is a combination of precursor ions and product ions,
At the same time, for the stable isotope-labeled angiotensin peptide that is an internal standard, the precursor ion and the product ion whose mass-to-charge ratio is the value shown in Table 3 are selected, and the triple quadrupole is similarly used. Mass spectrometry was performed.
In Table 3, “light” indicates an angiotensin peptide without labeling, and “heavy” indicates a stable isotope labeled angiotensin peptide.
また、各試料のＬＣ−ＭＳ／ＭＳのデータ取得及び解析ソフトウェアはＡｎａｌｙｓｔ（登録商標） ＴＦ１．６（ＡＢ ＳＣＩＥＸ製）を使用した。さらに、ＭＲＭ−ＨＲ（登録商標）法における定量メソッドの構築及びｐｅａｋ ａｒｅａ値の算出のためのソフトウェアとしてＳｋｙｌｉｎｅ（ＭａｃＣｏｓｓ Ｌａｂ Ｓｏｆｔｗａｒｅ、Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ）を用いた。
なお、「ＭＲＭ−ＨＲ（登録商標）法」とは、選択的反応モニタリング（ＳＲＭ）とほぼ同一の原理である方法である。具体的には、ＭＲＭ−ＨＲ（登録商標）法では、まず、あらかじめ定量したいペプチド（ターゲットペプチド）のイオンをＰｒｅｃｕｒｓｏｒ ｉｏｎとして選択し、その選択したＰｒｅｃｕｒｓｏｒ ｉｏｎのみに衝突誘起解離法（ＣＩＤ）と呼ばれる方法で、主にペプチド結合で開裂（ｆｒａｇｍｅｎｔａｔｉｏｎ）を起こし、そのＰｒｅｃｕｒｓｏｒ ｉｏｎに由来するＰｒｏｄｕｃｔ ｉｏｎを選択的に検出するという方法である。
具体的なデータ解析としては、まず、イオン数対時間のプロットを生成した。ピーク下の面積を測定し、内部標準である安定化同位体標識アンジオテンシンペプチド）の濃度（尿、血漿、腎臓試料いずれも２５ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎ（５μＬ））を元に、以下の式［１］を用いて、試料の濃度を定量化した。
試料中のアンジオテンシンペプチドの濃度［fmol］
＝（試料のピーク下の面積／内部標準のピーク下の面積）× 内部標準の濃度・・・［１］
Further, Analyst (registered trademark) TF1.6 (manufactured by AB SCIEX) was used as LC-MS / MS data acquisition and analysis software for each sample. Furthermore, Skyline (MacCoss Lab Software, University of Washington) was used as software for constructing a quantitative method in the MRM-HR (registered trademark) method and calculating a peak area value.
The “MRM-HR (registered trademark) method” is a method that is based on almost the same principle as selective reaction monitoring (SRM). Specifically, in the MRM-HR (registered trademark) method, first, a peptide (target peptide) ion to be quantified is selected as a precursor ion in advance, and only the selected precursor ion is called a collision-induced dissociation method (CID). In this method, fragmentation is mainly caused by peptide bonds, and a product ion derived from the precursor ion is selectively detected.
As specific data analysis, first, a plot of the number of ions versus time was generated. The area under the peak was measured, and the following formula [1] was calculated based on the concentration of the internal standard stabilized isotope-labeled angiotensin peptide (25 fmol / on column (5 μL for all urine, plasma, and kidney samples)). Used to quantify the concentration of the sample.
Concentration of angiotensin peptide in the sample [fmol]
= (Area under the peak of the sample / Area under the peak of the internal standard) × Concentration of the internal standard ... [1]
また、検量線を以下の方法を用いて作成し、内因性のアンジオテンシンペプチドが含まれているため、直線の傾きのみを定量値の算出に使用した。
まず、安定同位体標識アンジオテンシンペプチドを含まないｍａｔｒｉｘを作成し、内部標準として安定同位体標識アンジオテンシンペプチド（ｈｅａｖｙ ｐｅｐｔｉｄｅｓ）を一定量添加し、さらに濃度を振った標識なしのアンジオテンシンペプチド （ｌｉｇｈｔ ｐｅｐｔｉｄｅｓ）を添加して標準溶液を作成した。なお、標識なしの各アンジオテンシンペプチド（１、２、１−９及び１−７）はＳｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社製を用いた。ｈｅａｖｙ ｐｅｐｔｉｄｅｓは、２５ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎとなるように添加した。なお、「ｏｎ ｃｏｌｕｍｎ」とは、導入量を意味し、この場合は５μＬである。また、ｌｉｇｈｔ ｐｅｐｔｉｄｅｓは、０、１、２．５、１０、５０、７５、及び１００ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎとなるように添加した。
次いで、ｌｉｇｈｔ ｐｅｐｔｉｄｅｓのｐｅａｋ ａｒｅａ値、ｈｅａｖｙ ｐｅｐｔｉｄｅｓのｐｅａｋ ａｒｅａ値の比をとり（ｌｉｇｈｔ／ｈｅａｖｙ）、横軸をｌｉｇｈｔ ｐｅｐｔｉｄｅｓの濃度、縦軸をｐｅａｋ ａｒｅａ比（ｌｉｇｈｔ／ｈｅａｖｙ）として検量線を作成した。なお、各濃度標準溶液につき３回測定を行った。また、検量線は小二乗法を用いて作成し、検量線の直線性を評価した。
In addition, a calibration curve was created using the following method, and since endogenous angiotensin peptide was included, only the slope of the straight line was used for calculation of the quantitative value.
First, a matrix that does not contain a stable isotope-labeled angiotensin peptide is prepared, a fixed amount of stable isotope-labeled angiotensin peptide (heavy peptides) is added as an internal standard, and an unlabeled angiotensin peptide (light peptides) with a further concentration is added. A standard solution was prepared by addition. The unlabeled angiotensin peptides (1, 2, 1-9 and 1-7) were manufactured by Sigma-Aldrich. Heavy peptides were added so that it might become 25 fmol / on column. Note that “on column” means the amount introduced, in this
Next, the ratio of the peak area value of light peptides and the peak area value of heavy peptides was taken (light / heavy), the horizontal axis was the concentration of light peptides, and the vertical axis was the peak area ratio (light amount). . The measurement was performed three times for each concentration standard solution. Moreover, the calibration curve was created using the method of small squares, and the linearity of the calibration curve was evaluated.
さらに、３回の測定のＳｔａｎｄａｒｄ ｄｅｖｉａｔｉｏｎ（ＳＤ）、精度（ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ）及び真度（ａｃｃｕｒａｃｙ）を算出し、ＬＬＯＱ（ｌｏｗｅｒ ｌｉｍｉｔ ｏｆ ｑｕａｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ）を評価した。ＬＬＯＱの評価項目としては、「ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ≦２０％及びａｃｃｕｒａｃｙ≦２０％を満たすこと」とした。
また、Ｑｕａｌｉｔｙ ｃｏｎｔｒｏｌ ｓａｍｐｌｅとして、低濃度（２．５ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎ）、中等濃度（５０ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎ）、高濃度（７５ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎ）の標準溶液を各５回ずつ測定し、ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ及びａｃｃｕｒａｃｙを評価した。評価項目としては、「ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ≦１５％及びａｃｃｕｒａｃｙ≦１５％を満たすこと」とした。
血漿試料でのアンジオテンシン１及び２の検量線を図１Ａ（アンジオテンシン１）及び図１Ｂ（アンジオテンシン２）に示す。なお、図１Ａ及び図１Ｂにおいて、「１ｓｔ」とは１回目の測定値、「２ｎｄ」とは２回目の測定値、「３ｒｄ」とは３回目の測定値を意味する。
Furthermore, the standard deviation (SD), accuracy (precision), and accuracy (accuracy) of three measurements were calculated, and LLOQ (lower limit of quantification) was evaluated. The evaluation item of LLOQ is “to satisfy precision ≦ 20% and accuracy ≦ 20%”.
In addition, as a quality control sample, a standard solution having a low concentration (2.5 fmol / on column), a medium concentration (50 fmol / on column), and a high concentration (75 fmol / on column) was measured 5 times each, and the precision and accuracy were measured. evaluated. The evaluation item was “to satisfy the precision ≦ 15% and accuracy ≦ 15%”.
Calibration curves for
図１Ａ（アンジオテンシン１）及び図１Ｂ（アンジオテンシン２）から、ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ≦２０％及びａｃｃｕｒａｃｙ≦２０％を満たすＬＬＯＱは、アンジオテンシン１（ＡｎｇＩ）では、０．５ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎ、アンジオテンシン２（ＡｎｇＩＩ）では ０．５ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎであった。
またＱｕａｌｉｔｙ ｃｏｎｔｒｏｌ ｓａｍｐｌｅとして、低濃度（２．５ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎ）、中等濃度（５０ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎ）、高濃度（７５ｆｍｏｌ／ｏｎ ｃｏｌｕｍｎ）の標準溶液を各５回ずつ測定した結果、ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ≦１５％及びａｃｃｕｒａｃｙ≦１５％を満たすことが確認できた。
From FIG. 1A (angiotensin 1) and FIG. 1B (angiotensin 2), LLOQ satisfying precision ≦ 20% and accuracy ≦ 20% is 0.5 fmol / on column for angiotensin 1 (AngI) and 0 for angiotensin 2 (AngII). It was 5 fmol / on column.
Further, as a quality control sample, a standard solution having a low concentration (2.5 fmol / on column), a medium concentration (50 fmol / on column), and a high concentration (75 fmol / on column) was measured five times, and precision ≦ 15% And accuracy ≦ 15% was confirmed.
各試料に含まれるアンジオテンシンペプチドの定量結果を以下の表４に示す。また、正常マウス、メガリン完全ノックアウトマウス（ＮＤＲＧ１マウス）及びメガリン部分ノックアウトマウス（ＡｐｏＥマウス）間の各試料に含まれるアンジオテンシンペプチドを比較した結果を図２Ａ（尿中のアンジオテンシン１）、図２Ｂ（尿中のアンジオテンシン２）、図２Ｃ（尿中のアンジオテンシン１−９）、図２Ｄ（尿中のアンジオテンシン１−７）、図３（血漿中のアンジオテンシン１）、図４Ａ（腎臓中のアンジオテンシン１）及び図４Ｂ（腎臓中のアンジオテンシン２）に示す。なお、尿及び血漿中のアンジオテンシンペプチドの濃度は、ｆｍｏｌ／ｍＬで示し、腎臓中のアンジオテンシンペプチドの濃度は、ｆｍｏｌ／ｇで示した。また、表及び各図において、「ＮＤＲＧ１」はＮＤＲＧ１マウスの測定結果、「ＣｏｎＮ」はＮＤＲＧ１マウスの対照としたコントロール（正常）マウスの測定結果、「ＡｐｏＥ」はＡｐｏＥマウスの測定結果、「ＣｏｎＥ」はＡｐｏＥマウスの対照としたコントロール（正常）マウスの測定結果を示す。
The quantitative results of the angiotensin peptide contained in each sample are shown in Table 4 below. In addition, FIG. 2A (urinary angiotensin 1) and FIG. 2B (urine) show comparison results of angiotensin peptides contained in each sample between normal mice, megalin complete knockout mice (NDRG1 mice) and megalin partial knockout mice (ApoE mice). Angiotensin 2), FIG. 2C (Angiotensin 1-9 in urine), FIG. 2D (Angiotensin 1-7 in urine), FIG. 3 (
表４及び図２Ａ〜図２Ｄから、尿試料からはアンジオテンシン１、２、１−９及び１−７の全てを検出することができた。また、正常マウスと比較して、ＮＤＲＧ１マウス及びＡｐｏＥマウス（特に、ＮＤＲＧ１マウス）のほうが各アンジオテンシンペプチドの含有量が多いことが明らかとなった。
また、血漿試料では、アンジオテンシンペプチド１、１−９及び１−７は定量下限未満であったが、アンジオテンシン２について検出することができた。また、正常マウス、ＮＤＲＧ１マウス及びＡｐｏＥマウスとでアンジオテンシン２の含有量に大きな差がないことが明らかとなった。
また、腎臓試料では、アンジオテンシンペプチド１−９及び１−７は定量下限未満であったが、アンジオテンシン１及び２について検出することができた。また、正常マウス、ＮＤＲＧ１マウス及びＡｐｏＥマウスとでアンジオテンシン２の含有量に大きな差がないことが明らかとなった。
From Table 4 and FIGS. 2A to 2D, all of
In the plasma sample,
In the kidney sample, angiotensin peptides 1-9 and 1-7 were below the lower limit of quantification, but
［実施例２］
１．試料の準備
被検体として、１２〜１５週齢の正常雄マウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ）（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌより購入）、遺伝子組み換えマウスであるメガリン完全ＫＯマウス（ＮＤＲＧ１マウス）及びメガリン部分ＫＯマウス（ＡｐｏＥマウス）を使用した。
[Example 2]
1. Sample Preparation As subjects, normal male mice (C57BL / 6J) 12-15 weeks old (purchased from Charles Rivers Laboratories International), megalin-complete KO mice (NDRG1 mice) and megalin-particulate KO mice (ApoE) that are transgenic mice. Mouse).
（１）腎臓の摘出
正常マウス（対照）、ＮＤＲＧ１マウス及びＡｐｏＥマウスの一部に、５ｍｇ／ｍＬのマウス組換えアンジオテンシノーゲン（ＡＧＴ）を２００μＬ（すなわち、１ｍｇのＡＧＴ含有）腹腔内注射した。３０分後に頸椎脱臼を行い、正中切開した。
次いで、右腎を摘出し、被膜を除去して１／２にカットし、直ちに液体窒素で凍結した。左腎も摘出し、同様に処理し、凍結した。得られた腎臓は、使用するまで−８０℃で保存した。
(1) Kidney extraction A part of normal mice (control), NDRG1 mice and ApoE mice were injected intraperitoneally with 200 μL of 5 mg / mL mouse recombinant angiotensinogen (AGT) (ie, containing 1 mg of AGT). After 30 minutes, cervical dislocation was performed and a midline incision was made.
The right kidney was then removed, the capsule removed, cut in half, and immediately frozen in liquid nitrogen. The left kidney was also removed, processed similarly and frozen. The resulting kidney was stored at −80 ° C. until use.
２．工程１：アンジオテンシンペプチドの精製
（１）腎臓試料からのアンジオテンシンペプチドの分離
内部標準として安定同位体標識アンジオテンシン１−９及び１−７のみを用いた以外は、実施例１の（１）の「腎臓試料からのアンジオテンシンペプチドの分離」と同様の方法を用いて、アンジオテンシンペプチドを分離した。
2. Step 1: Purification of angiotensin peptide (1) Separation of angiotensin peptide from kidney sample “Kidney” in Example 1 (1) except that only stable isotope-labeled angiotensin 1-9 and 1-7 were used as an internal standard. The angiotensin peptide was separated using a method similar to “Separation of angiotensin peptide from sample”.
（２）腎臓試料の脱塩及びペプチド分画
実施例１の（１）の「尿試料及び腎臓試料の脱塩及びペプチド分画」と同様の方法を用いて、脱塩及びペプチド分画した。
(2) Desalination and Peptide Fractionation of Kidney Sample Desalination and peptide fractionation were performed using the same method as “Desalination and Peptide Fractionation of Urine Sample and Kidney Sample” in Example 1 (1).
（３）腎臓試料のＬＣによる分離精製
実施例１の（３）の「尿試料及び腎臓試料の液体クロマトグラフィーによる分離精製」と同様の方法を用いて、アンジオテンシンペプチドを分離溶出した。
(3) Separation and purification of kidney sample by LC The angiotensin peptide was separated and eluted using the same method as “Separation and purification of urine sample and kidney sample by liquid chromatography” in Example 1 (3).
３．工程２：質量分析（アンジオテンシンペプチドのイオン化、検出及び定量）
実施例１の「３．工程２〜４：質量分析（アンジオテンシンペプチドのイオン化、検出及び定量）」の「尿試料の解析方法」の条件を参照しながら、同様の方法を用いて、各マウスの腎臓試料に含まれるＡｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ １−９及び１−７を質量分析し、定量した。結果を以下の表５及び表６に示す。また、正常マウス、メガリン完全ノックアウトマウス（ＮＤＲＧ１マウス）及びメガリン部分ノックアウトマウス（ＡｐｏＥマウス）間の腎臓試料に含まれるアンジオテンシンペプチドを比較した結果を図５Ａ（正常マウス及びＮＤＲＧ１マウスのアンジオテンシン１−９）、図５Ｂ（正常マウス及びＮＤＲＧ１マウスのアンジオテンシン１−７）、図６Ａ（正常マウス及びＡｐｏＥマウスのアンジオテンシン１−９）及び図６Ｂ（正常マウス及びＡｐｏＥマウスのアンジオテンシン１−９）に示す。
なお、表５、図５Ａ及び図５Ｂにおいて、「ｃｏｎ（ｄｉｓ）」とはＡＧＴ非投与の正常マウスでの測定結果を示し、「ｃｏｎ ＡＧＴ＋（ｄｉｓ）」とはＡＧＴ投与した正常マウスでの測定結果を示し、「ＮＤＲＧ１（ｄｉｓ）」とはＡＧＴ非投与のＮＤＲＧ１マウスでの測定結果を示し、「ＮＤＲＧ１ ＡＧＴ＋（ｄｉｓ）」とはＡＧＴ投与したＮＤＲＧ１マウスでの測定結果を示す。
また、表６、図６Ａ及び図６Ｂにおいて、「ｃｏｎ（ｄｉｓ）」とはＡＧＴ非投与の正常マウスでの測定結果を示し、「ｃｏｎ ＡＧＴ＋（ｄｉｓ）」とはＡＧＴ投与した正常マウスでの測定結果を示し、「ＡｐｏＥ（ｄｉｓ）」とはＡＧＴ非投与のＡｐｏＥマウスでの測定結果を示し、「ＡｐｏＥ ＡＧＴ＋（ｄｉｓ）」とはＡＧＴ投与したＡｐｏＥマウスでの測定結果を示す。
3. Step 2: Mass spectrometry (ionization, detection and quantification of angiotensin peptide)
While referring to the conditions of “Method for analyzing urine sample” in “3. Steps 2 to 4: Mass spectrometry (ionization, detection and quantification of angiotensin peptide)” in Example 1, using the same method, Angiotensin 1-9 and 1-7 contained in the kidney sample were subjected to mass spectrometry and quantified. The results are shown in Tables 5 and 6 below. In addition, FIG. 5A (angiotensin 1-9 of normal mice and NDRG1 mice) shows the results of comparison of angiotensin peptides contained in kidney samples between normal mice, complete megalin knockout mice (NDRG1 mice) and megalin partial knockout mice (ApoE mice). FIG. 5B (angiotensin 1-7 of normal mouse and NDRG1 mouse), FIG. 6A (angiotensin 1-9 of normal mouse and ApoE mouse) and FIG. 6B (angiotensin 1-9 of normal mouse and ApoE mouse).
In Table 5, FIG. 5A and FIG. 5B, “con (dis)” indicates the measurement result in normal mice not administered with AGT, and “con AGT + (dis)” indicates measurement in normal mice administered with AGT. A result is shown, "NDRG1 (dis)" shows the measurement result in the NDRG1 mouse | mouth which does not administer AGT, and "NDRG1 AGT + (dis)" shows the measurement result in the NDRG1 mouse | mouth administered AGT.
In Table 6, FIG. 6A and FIG. 6B, “con (dis)” indicates the measurement result in normal mice not administered with AGT, and “con AGT + (dis)” indicates measurement in normal mice administered with AGT. A result is shown, "ApoE (dis)" shows the measurement result in the ApoE mouse | mouth which does not administer AGT, and "ApoE AGT + (dis)" shows the measurement result in the ApoE mouse | mouth which administered AGT.
表５、図５Ａ及び図５Ｂから、ＡＧＴを投与することで、正常マウス及びＮＤＲＧ１マウスのいずれにおいても、腎臓試料のアンジオテンシン１−９及び１−７の値が上昇することが確かめられた。
また、表６、図６Ａ及び図６Ｂから、ＡＧＴを投与することで、正常マウス及びＡｐｏＥマウスのいずれにおいても、腎臓試料のアンジオテンシン１−９及び１−７の値が上昇することが確かめられた。一方、ＡＧＴの非投与の正常マウス及びＡｐｏＥマウスでは、アンジオテンシン１−９及び１−７は定量下限未満であった。
From Table 5, FIG. 5A, and FIG. 5B, it was confirmed that administration of AGT increased the values of angiotensin 1-9 and 1-7 in the kidney sample in both normal mice and NDRG1 mice.
Moreover, from Table 6, FIG. 6A, and FIG. 6B, it was confirmed by administration of AGT that the value of angiotensin 1-9 and 1-7 of the kidney sample increases in both normal mice and ApoE mice. . On the other hand, in normal mice and ApoE mice not administered with AGT, angiotensin 1-9 and 1-7 were below the lower limit of quantification.
本実施形態の方法及び定量キットによれば、アンジオテンシンペプチドを正確に定量することができる。 According to the method and quantification kit of this embodiment, an angiotensin peptide can be accurately quantified.
Claims (13)
前記試料に同位体標識アンジオテンシンペプチドを混合した後、前記試料から内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを精製する工程１と、
前記精製された前記内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを、質量分析法を用いて検出し、定量する工程２と、
を備え、
アンジオテンシンペプチドの定量限界が０．１ｆｍｏｌ／μＬ以下であることを特徴とする方法。 A method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample, comprising:
After mixing the sample with an isotope-labeled angiotensin peptide, purifying the endogenous angiotensin peptide and the isotope-labeled angiotensin peptide from the sample; and
Detecting and quantifying the purified endogenous angiotensin peptide and the isotope-labeled angiotensin peptide using mass spectrometry;
With
A method, wherein the limit of quantification of angiotensin peptide is 0.1 fmol / μL or less.
前記試料に変性剤を添加し、前記試料中のタンパク質を変性させて沈殿させ、前記沈殿物のうち、前記内因性アンジオテンシンペプチド及び前記同位体標識アンジオテンシンペプチドを再可溶化させて分離精製する請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。 In step 1, the sample is a body fluid,
A denaturant is added to the sample, the protein in the sample is denatured and precipitated, and the endogenous angiotensin peptide and the isotope-labeled angiotensin peptide are resolubilized and separated and purified from the precipitate. The method as described in any one of 1-7.
変性剤と、
を備えることを特徴とするアンジオテンシンペプチドの定量キット。 An isotope-labeled angiotensin peptide;
A denaturant,
An angiotensin peptide quantification kit comprising:
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2017128700A JP7067758B2 (en) | 2017-06-30 | 2017-06-30 | A method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample and an angiotensin peptide quantification kit. |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2017128700A JP7067758B2 (en) | 2017-06-30 | 2017-06-30 | A method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample and an angiotensin peptide quantification kit. |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2019012015A true JP2019012015A (en) | 2019-01-24 |
| JP7067758B2 JP7067758B2 (en) | 2022-05-16 |
Family
ID=65227906
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2017128700A Active JP7067758B2 (en) | 2017-06-30 | 2017-06-30 | A method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample and an angiotensin peptide quantification kit. |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP7067758B2 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN111624293A (en) * | 2020-07-10 | 2020-09-04 | 武汉伯瑞恒医药科技有限公司 | Method for measuring captopril concentration in human plasma |
Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20090090856A1 (en) * | 2007-06-01 | 2009-04-09 | Russell Philip Grant | Methods and systems for quantification of peptides and other analytes |
| WO2013014853A1 (en) * | 2011-07-22 | 2013-01-31 | 国立大学法人東北大学 | Method for fabricating stable-isotope-labeled target peptide fragment in mass spectrometry |
| JP2014238338A (en) * | 2013-06-07 | 2014-12-18 | 株式会社Ｌｓｉメディエンス | Protein measuring method in biological material using mass spectrometer |
| JP2016075698A (en) * | 2008-08-08 | 2016-05-12 | クエスト ダイアグノスティックス インヴェストメンツ インコーポレイテッド | Mass spectrometry for plasma-renin |
| JP2016536585A (en) * | 2013-11-05 | 2016-11-24 | エージェンシー フォー サイエンス， テクノロジー アンド リサーチ | Bladder cancer biomarker |
| JP2017500538A (en) * | 2013-10-18 | 2017-01-05 | アトークアント・ダイアグノスティクス・ゲゼルシャフト・ミット・ベシュレンクテル・ハフツングＡｔｔｏｑｕａｎｔ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ Ｇｍｂｈ | Diagnostic method for primary hyperaldosteronism |
-
2017
- 2017-06-30 JP JP2017128700A patent/JP7067758B2/en active Active
Patent Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20090090856A1 (en) * | 2007-06-01 | 2009-04-09 | Russell Philip Grant | Methods and systems for quantification of peptides and other analytes |
| JP2016075698A (en) * | 2008-08-08 | 2016-05-12 | クエスト ダイアグノスティックス インヴェストメンツ インコーポレイテッド | Mass spectrometry for plasma-renin |
| WO2013014853A1 (en) * | 2011-07-22 | 2013-01-31 | 国立大学法人東北大学 | Method for fabricating stable-isotope-labeled target peptide fragment in mass spectrometry |
| JP2014238338A (en) * | 2013-06-07 | 2014-12-18 | 株式会社Ｌｓｉメディエンス | Protein measuring method in biological material using mass spectrometer |
| JP2017500538A (en) * | 2013-10-18 | 2017-01-05 | アトークアント・ダイアグノスティクス・ゲゼルシャフト・ミット・ベシュレンクテル・ハフツングＡｔｔｏｑｕａｎｔ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ Ｇｍｂｈ | Diagnostic method for primary hyperaldosteronism |
| JP2016536585A (en) * | 2013-11-05 | 2016-11-24 | エージェンシー フォー サイエンス， テクノロジー アンド リサーチ | Bladder cancer biomarker |
Non-Patent Citations (8)
| Title |
|---|
| CHEN, G. ET AL.: "Urinary proteomics analysis for renal injury in hypertensive disorders of pregnancy with iTRAQ label", PROTEOMICS CLIN., vol. 5, JPN6021037598, 4 March 2011 (2011-03-04), pages 300 - 310, ISSN: 0004600508 * |
| GURLEY, S.B. ET AL.: "Altered blood pressure responses and normal cardiac phenotype in ACE2-null mice", J. CLIN. INVEST., vol. 116, JPN6021037594, 1 August 2006 (2006-08-01), pages 2218 - 2225, ISSN: 0004600510 * |
| KAWASHIMA, Y. ET AL.: "High-Yield Peptide-Extraction Method for the Discovery of Subnanomolar Biomarkers from Small Serum S", J. PROTEOME RES., vol. 9, JPN6021037592, 24 February 2010 (2010-02-24), pages 1694 - 1705, ISSN: 0004600512 * |
| LAI, X. ET AL.: "Issues and Applications in Label-Free Quantitative Mass Spectrometry", INTERNATIONAL JOURNAL OF PROTEOMICS, JPN6021005936, 2013, ISSN: 0004600513 * |
| NAKORCHEVSKY, A. ET AL.: "Molecular Mechanisms of Chronic Kidney Transplant Rejection via Large-Scale Proteogenomic Analysis o", J. AM. SOC. NEPHROL., vol. 21, JPN6021005937, 2010, pages 362 - 373, ISSN: 0004600514 * |
| OLSZOWY, P. AND BUSZEWSKI, B.: "Urine sample preparation for proteomic analysis", J. SEP. SCI., vol. 37, JPN6021037593, 4 August 2014 (2014-08-04), pages 2920 - 2928, ISSN: 0004600511 * |
| PEREZ, J. D. ET AL.: "Proteomic Analyses of Contrast Media - Treated Mesangial Cell", THE OPEN PROTEOMICS JOURNAL, vol. 2, JPN6021005938, 2009, pages 1 - 7, ISSN: 0004600515 * |
| YE, B. ET AL.: "Proteomic-Based Discovery and Characterization of Glycosylated Eosinophil-Derived Neurotoxin and COO", CLIN. CANCER RES., vol. 12, JPN6021037596, 20 January 2006 (2006-01-20), pages 432 - 441, ISSN: 0004600509 * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN111624293A (en) * | 2020-07-10 | 2020-09-04 | 武汉伯瑞恒医药科技有限公司 | Method for measuring captopril concentration in human plasma |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP7067758B2 (en) | 2022-05-16 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Guerrera et al. | Application of mass spectrometry in proteomics | |
| JP7154887B2 (en) | Mass spectrometry of plasma renin | |
| EP3256858B1 (en) | Histone h4 peptide as a biomarker | |
| JP6979401B2 (en) | Detection of amyloid beta by mass spectrometry | |
| JP5276993B2 (en) | Sensitive quantification of low molecular weight peptides | |
| JP2023022282A (en) | Method for absolutely quantifying low present amount of polypeptide using mass analysis | |
| JP7067758B2 (en) | A method for measuring the amount of angiotensin peptide in a sample and an angiotensin peptide quantification kit. | |
| Fu et al. | Highly selective and sensitive LC-MS/MS quantification of a therapeutic protein in human serum using immunoaffinity capture enrichment | |
| EP3929589A1 (en) | Method for measuring amyloid-beta peptide and use of reagent composition in the method | |
| US20130214151A1 (en) | Mass Spectrometric Methods for Quantifying NPY 1-36 and NPY 3-36 | |
| Paoletti et al. | Quantitation in proteomic experiments utilizing mass spectrometry | |
| US20230258651A1 (en) | Methods for quantification of amyloid beta peptides in plasma by mass spectrometry | |
| US11378580B2 (en) | Protein detection method using mass spectrometry | |
| JP7419340B2 (en) | Use of LC-MS/MS to quantify protein biomarkers | |
| JP2021518566A (en) | Method for detecting chromogranin A by mass spectrometry | |
| Barbour et al. | 4.1 A Practical Guideline to Electrospray Ionization Mass Spectrometry for Proteomics Application |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20180516 |
|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20200401 |
|
| A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20210210 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20210224 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20210421 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20210421 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20210928 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20211116 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20211116 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20220412 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20220421 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 7067758 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |