JP2014509868A - 癌の予後のための遺伝子発現予測因子 - Google Patents

Abstract

本明細書で開示されるのは、前立腺癌を有する被験体の予後を予測するための方法である。上記方法は、ＺＷＩＬＣＨ、ＤＥＰＤＣ１、ＴＰＸ２、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、ＭＹＣ、ＣＤＣ２０、および／もしくはＫＩＦ１１のうちの１種以上の遺伝子産物の発現レベルを決定する工程を包含する。発現の閾値レベルを上回る上記遺伝子産物の発現は、再発の可能性のような好ましくない予後を示す。一実施形態において、前立腺癌を有する被験体が再発するか否かを予測するための方法が提供され、この方法は、該被験体からサンプルを得る工程であって、ここで該生物学的サンプルは、前立腺癌細胞を含む、工程；該サンプル中の配列番号１、配列番号３、配列番号４、配列番号５、配列番号７、配列番号１１、配列番号１７、および配列番号２０から選択されるヌクレオチドの遺伝子産物の発現のレベルを決定する工程などを包含する。

Description

分野
この開示は、癌の分野、および特に、腫瘍を有する患者を診断し、そしてその患者の予後を決定するための方法に関する。

政府の支援についての承認
この発明は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈによって付与された助成金番号ＫＬ２ ＲＲ０２４１４１およびＰａｃｉｆｉｃ Ｎｏｒｔｈｗｅｓｔ Ｐｒｏｓｔａｔｅ Ｃａｎｃｅｒ ＳＰＯＲＥ ２ Ｐ５０ ＣＡ０９７１８６の下、政府の支援を受けてなされた。政府は、本発明に一定の権利を有する。

優先権主張
この出願は、２０１１年３月２６日に出願された米国特許出願第６１／４６７，９９９号（これは、その全体が参考として本明細書に援用される）の利益を主張する。

（背景）
前立腺の癌は、男性において最も一般的に診断される癌であり、癌による死因の二番目に一般的なものである（非特許文献１（本明細書に参考として援用される））。初期段階で検出されれば、前立腺癌は、潜在的には治癒可能である。しかし、症例の大部分は、原発性腫瘍の転移が既に起こってしまった、より後期の段階において診断される（非特許文献２（本明細書に参考として援用される））。

より早期の診断ですら問題になる。なぜなら、これらスクリーニングにおいて陽性と試験された個体の全てが癌を発症させるわけではないからである。さらに、多くの前立腺癌患者は、アンドロゲン除去療法（ＡＤＴ）にも拘わらず進行する、致命的な転移性去勢抵抗性前立腺癌（ＣＲＰＣ）を発症させるようになっている。アンドロゲンおよびアンドロゲンレセプター（ＡＲ）によって調節されるアンドロゲン依存性シグナル伝達経路は、ＡＤＴにも拘わらずいくつかのＣＲＰＣ細胞に存続することは今や公知である（非特許文献３および非特許文献４（これらはともに、本明細書に参考として援用される））。しかし、これら経路は、すべてのＣＲＰＣ細胞の増殖の主な原因ではない可能性がある。より新たなかつより強力な形態のＡＤＴは、ＣＲＰＣを有する一部の患者に利益を与えるものの、その効果は持続せず、一部の患者においては、全く利益がない（Ｓｃｈｅｒら、Ｌａｎｃｅｔ ３７５， １４３７−１４４６ （２０１０）。

Ｊｅｍａｌら、ＣＡ Ｃａｎｃｅｒ Ｊ Ｃｌｉｎ（２００９）５９、２２５〜２４９ Ｗａｎｇら、Ｍｅｔｈ Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ（１９８２）１９、１７９ Ｍｏｈｌｅｒら、Ｃｌｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ（２００４）２５ １０、４４０〜４４８ Ｍｏｓｔａｇｈｅｌら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ（２００７）６７、５０３３〜５０４１

（要旨）
前立腺癌の結果を予測する有効なマーカーは、利用できない。本明細書で開示されるのは、腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）を有する被験体の予後を決定するための方法である。いくつかの実施形態において、上記方法は、ＴＰＸ２、微小管関連ホモログ（ｍｉｃｒｏｔｕｂｕｌｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｈｏｍｏｌｏｇ）（ＴＰＸ２）；キネシンファミリーメンバー（ｋｉｎｅｓｉｎ ｆａｍｉｌｙ ｍｅｍｂｅｒ）１１（ＫＩＦ１１）；Ｚｗｉｌｃｈ，動原体関連ホモログ（ｋｉｎｅｔｏｃｈｏｒｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ， ｈｏｍｏｌｏｇ）（ＺＷＩＬＣＨ）；ｖ−ｍｙｃ骨髄球腫症ウイルス癌遺伝子ホモログ（ｖ−ｍｙｃ ｍｙｅｌｏｃｙｔｏｍａｔｏｓｉｓ ｖｉｒａｌ ｏｎｃｏｇｅｎｅ ｈｏｍｏｌｏｇ）（ＭＹＣ）；ＤＥＰドメイン含有（ＤＥＰ ｄｏｍａｉｎ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）１（ＤＥＰＤＣ１）；細胞***周期関連（ｃｅｌｌ ｄｉｖｉｓｉｏｎ ｃｙｃｌｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ）３（ＣＤＣＡ３）；高移動度遺伝子ボックス（ｈｉｇｈ−ｍｏｂｉｌｉｔｙ ｇｒｏｕｐ ｂｏｘ）２（ＨＭＧＢ２）；細胞***周期２０ホモログ（ｃｅｌｌ ｄｉｖｉｓｉｏｎ ｃｙｃｌｅ ２０ ｈｏｍｏｌｏｇ）（ＣＤＣ２０）；およびこれらのうちのいずれか２つ以上の組み合わせからなる群より選択される遺伝子の発現を、上記被験体に由来するサンプルにおいて検出する工程；ならびに上記サンプル中の上記遺伝子の発現を、コントロールサンプルと比較する工程を包含し、ここで上記コントロールと比較して、上記遺伝子のうちの少なくとも１つの発現における増加は、上記被験体が好ましくない（ｐｏｏｒ）予後を有することを示す。例において、上記方法は、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの少なくとも２つ（例えば、少なくとも３つ、４つ、５つ、６つ、７つ、もしくは全て）の発現を、上記被験体に由来するサンプルにおいて検出する工程を包含する。他の例において、上記方法は、表１に列挙される少なくとも１つの遺伝子の発現を検出する工程、および上記サンプル中の上記遺伝子の発現を、コントロールサンプルと比較する工程を包含し、ここで上記コントロールと比較して、上記遺伝子の発現における増大は、上記被験体が、好ましくない予後を有することを示す。

いくつかの実施形態において、好ましくない予後としては、低下した生存確率（例えば、低下した全生存、低下した転移なしの生存、もしくは低下した再発なしの生存）が挙げられる。別の実施形態において、好ましくない予後としては、治療（例えば、ＡＤＴのようなホルモン療法）に対する耐性もしくは耐性を発生させる可能性が挙げられる。遺伝子発現における変化は、当該分野で公知の方法を使用して測定され得、本開示は、特定の方法に限定されない。例えば、発現は、核酸レベルにおいて（例えば、定量的逆転写ポリメラーゼ連鎖反応もしくはマイクロアレイ分析によって）またはタンパク質レベルにおいて（例えば、ウェスタンブロットもしくは他のイムノアッセイ分析によって）測定され得る。

開示されるのはまた、癌（例えば、前立腺癌）を有する被験体の予後を決定するためのアレイである。いくつかの実施形態において、上記アレイは、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０の核酸もしくはタンパク質のうちの１つ以上（例えば、１つ、２つ、３つ、４つ、５つ、６つ、７つ、もしくは全て）を特異的に検出し得る複数の因子（例えば、プローブおよび／もしくは抗体）を含む固体支持体である。他の実施形態において、上記アレイは、表１における遺伝子のうちの１つ以上を特異的に検出し得る複数の因子（例えば、プローブおよび／もしくは抗体）を含む固体支持体である。アレイはまた、他の分子（例えば、陽性コントロール（ハウスキーピング遺伝子が挙げられる）および陰性コントロール、ならびに他の癌予後関連分子を含み得る。

本開示の前述のおよび他の特徴は、添付の図面を参照しながら進められる以下の詳細な説明からより明らかになる。

図１は、ＬＮＣａＰ細胞およびＡｂｌ細胞における註釈のついた転写開始部位の５０ｋｂ以内のアンドロゲンレセプター（ＡＲ）結合部位を有するプローブセットのヒートマップである。発現データは、倍数変化がコントロールに対して計算される前に処理されるエラー強さのある（ｒｏｂｕｓｔ）マイクロアレイ平均であった。上記ヒートマップは、Ｒ統計計算環境の一部としてｇｐｌｏｔｓパッケージを使用して作成した。ＤＨＴは、ジヒドロテストステロンの略語である；ＲＮＡｉＡＲ、上記ＡＲを標的とするｓｉＲＮＡでトランスフェクトした細胞。 図２は、個々のアンドロゲン非依存性ＡＲ標的遺伝子のＲＮＡｉ媒介性抑制後、９６時間にわたって通常血清中で増殖させたＬＮＣａＰ細胞における細胞生存度を示す棒グラフである。全てのＲＮＡｉサンプルについてのメジアン細胞生存度は、水平線で示される。抑制がメジアンを下回る１標準偏差より大きい生存度の低下をもたらした遺伝子が、示される。他のものは、灰色棒として示される。ＮＴＣＩ／ＮＴＣ２は、非標的化コントロールＲＮＡｉサンプルの略語である；ＡＲは、ＡＲ ＲＮＡｉ陽性コントロールサンプルを示す。 図３は、定量的リアルタイムＰＣＲによって検出された、ＡＲを標的とするｓｉＲＮＡ（ＲＮＡｉＡＲ）または非標的化コントロール（ＮＴＣ）でトランスフェクトしたＬＮＣａＰ細胞もしくはＡｂｌ細胞における示された遺伝子の発現を示す棒グラフである。 図４Ａは、一次治療で処置した１３１名の限局性前立腺癌患者についてのログランク検定で計算した、前立腺癌の無再発生存を示すプロットである。上記プロットは、ＴＰＸ２の発現のレベルに関する上位十分位数（ＴＰＸ２変化）における患者と、残りのサンプル（ＴＰＸ２変化なし）とを比較する。ログランク検定については、ｐ＜１０^−７。 図４Ｂは、一次治療で処置した１３１名の限局性前立腺癌患者についてのログランク検定で計算した、ｐなしの生存（ｐ−ｆｒｅｅ ｓｕｒｖｉｖａｌ）を示すプロットである。上記プロットは、ＫＩＦ１１の発現のレベルに関する上位十分位数（ＫＩＦ１１変化）における患者と、残りのサンプル（ＫＩＦ１１変化なし）とを比較する。

（配列表）
配列番号１は、ヒトＺＷＩＬＣＨの核酸配列である
配列番号２は、ヒトＰＴＴＧ１の核酸配列である
配列番号３は、ヒトＤＥＰＤＣ１の核酸配列である
配列番号４は、ヒトＴＰＸ２の核酸配列である
配列番号５は、ヒトＣＤＣＡ３の核酸配列である
配列番号６は、ヒトＢＣＣＩＰの核酸配列である
配列番号７は、ヒトＨＭＧＢ２の核酸配列である
配列番号８は、ヒトＡＵＲＫＢの核酸配列である
配列番号９は、ヒトＫＰＮＡ２の核酸配列である
配列番号１０は、ヒトＡＨＣＴＦ１の核酸配列である
配列番号１１は、ヒトＭＹＣの核酸配列である
配列番号１２は、ヒトＭＣＭ７の核酸配列である
配列番号１３は、ヒトＤＢＦ４の核酸配列である
配列番号１４は、ヒトＣＤＣＡ８の核酸配列である
配列番号１５は、ヒトＢＡＲＤ１の核酸配列である
配列番号１６は、ヒトＳＧＯＬ２の核酸配列である
配列番号１７は、ヒトＣＤＣ２０の核酸配列である
配列番号１８は、ヒトＢＵＢ３の核酸配列である
配列番号１９は、ヒトＤＮＭ２の核酸配列である
配列番号２０は、ヒトＫＩＦ１１の核酸配列である
配列番号２１は、ヒトアンドロゲンレセプター（ＡＲ）の核酸配列である。

（詳細な説明）
（Ｉ．略語）
ＡＤＴ アンドロゲン除去療法
ＡＲ アンドロゲンレセプター
ＣＤＣ２０ 細胞***周期２０ホモログ
ＣＤＣＡ３ 細胞***周期関連３
ＣｈＩＰ クロマチン免疫沈降
ＣＲＰＣ 去勢抵抗性前立腺癌
ＣＳＰＣ 去勢感受性前立腺癌
ＤＥＰＤＣ１ ＤＥＰドメイン含有１
ＤＨＴ ジヒドロテストステロン
ＨＭＧＢ２ 高移動度遺伝子ボックス２
ＫＩＦ １１ キネシンファミリーメンバー１１
ＭＹＣ ｖ−ｍｙｃ骨髄球腫症
ＰＳＡ 前立腺特異的抗原
ＱＲＴＰＣＲ 定量的リアルタイムポリメラーゼ連鎖反応
ＴＰＸ２ ＴＰＸ２，微小管関連ホモログ
ＺＷＩＬＣＨ Ｚｗｉｌｃｈ，動原体関連ホモログ 。

（ＩＩ．用語）
別段示されなければ、技術用語は、従来の使用法に従って使用される。分子生物学における一般用語の定義は、Ｂｅｎｊａｍｉｎ Ｌｅｗｉｎ， Ｇｅｎｅｓ Ｖ， ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｂｙ Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ， １９９４ （ＩＳＢＮ ０−１９−８５４２８７−９）；Ｋｅｎｄｒｅｗ ｅｔ ａｌ． （ｅｄｓ．）， Ｔｈｅ Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ ｏｆ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｂｙ Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｌｔｄ．， １９９４ （ＩＳＢＮ ０−６３２−０２１８２−９）；およびＲｏｂｅｒｔ Ａ． Ｍｅｙｅｒｓ （ｅｄ．）， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：ａ Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ Ｄｅｓｋ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ， ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｂｙ ＶＣＲ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ， Ｉｎｃ．， １９９５ （ＩＳＢＮ １−５６０８１−５６９−８）において見いだされ得る。

別段説明されなければ、本明細書で使用される全ての技術用語および科学用語は、本開示が属する分野の当業者によって一般に理解されているものと同じ意味を有する。単数形の用語「１つの、ある（ａ）」、「１つの、ある（ａｎ）」、および「上記、この、その（ｔｈｅ）」は、文脈が明らかに別のことを示さなければ、複数形への言及を含む。同様に、語句「もしくは、または、あるいは」は、文脈が明らかに別のことを示さなければ、「および、ならびに（ａｎｄ）」を含むものと解釈される。核酸もしくはポリペプチドについて与えられる全ての塩基サイズもしくはアミノ酸サイズ、および全ての分子量もしくは分子質量の値は、近似値であり、説明のために提供されることは、さらに理解されるべきである。本明細書に記載されるものに類似もしくは等価な方法および材料が、本開示の実施もしくは試験において使用され得るものの、適切な方法および材料が、以下に記載される。用語「含む、包含する」は、「含む、包含する（ｉｎｃｌｕｄｅ）」を意味する。

さらに、上記材料、方法、および例は、例示に過ぎず、限定するとは解釈されない。本開示の種々の実施形態の検討を容易にするために、以下の具体的用語の説明が提供される。

アンドロゲンレセプター（ＡＲ）：ＮＲ３Ｃ４、ジヒドロテストステロンレセプター、もしくはＳＢＭＡとしても公知。核レセプタースーパーファミリーのサブファミリー３Ｃのメンバー（グルココルチコイドレセプター、ミネラル・コルチコイドレセプター、およびプロゲステロンレセプターとともに）。上記ＡＲは、ＤＮＡに直接結合し、リガンド（例えば、テストステロンもしくはジヒドロテストステロン（ＤＨＴ））の結合の際に遺伝子転写を調節する。上記ＡＲはまた、直接的なタンパク質−タンパク質相互作用を介して、例えば、他の転写因子もしくはシグナル伝達タンパク質と作用して、遺伝子発現を調節する。

一例において、ＡＲは、全長野生型（もしくは天然の）配列、ならびにＡＲのうちの少なくとも１つの活性（例えば、リガンド結合もしくはＤＮＡ結合）を保持するＡＲ対立遺伝子改変体を含む。特定の例において、ＡＲは、配列番号２１に対して少なくとも８０％の配列同一性、例えば、少なくとも８５％、９０％、９５％、もしくは９８％の配列同一性を有する。

抗体：抗原（例えば、癌生存因子関連分子もしくはそのフラグメント）のエピトープを特異的に認識しかつ結合する、少なくとも軽鎖もしくは重鎖の免疫グロブリン可変領域を含むポリペプチド。抗体は、重鎖および軽鎖から構成され、その各々は、可変領域（可変重鎖領域（Ｖ_Ｈ）および可変軽鎖領域（Ｖ_Ｌ）といわれる）を有する。まとめると、上記Ｖ_Ｈ領域および上記Ｖ_Ｌ領域は、上記抗体によって認識される上記抗原の結合を担う。いくつかの例において、本開示の抗体は、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０に対して特異的であるものを含む。

用語抗体は、インタクトな免疫グロブリン、ならびにその改変体および一部（例えば、Ｆａｂ’フラグメント、Ｆ（ａｂ）’_２フラグメント、一本鎖Ｆｖタンパク質（「ｓｃＦｖ」）、およびジスルフィド安定化Ｆｖタンパク質（「ｄｓＦｖ」）を含む。ｓｃＦｖタンパク質は、免疫グロブリンの軽鎖可変領域および免疫グロブリンの重鎖可変領域が、リンカーによって結合されている融合タンパク質であるのに対して、ｄｓＦｖにおいては、上記鎖は、上記鎖の会合を安定化させるためにジスルフィド結合を導入するように変異されている。上記用語はまた、遺伝子操作された形態（例えば、キメラ抗体、ヘテロ結合体抗体（例えば、二重特異的抗体）を含む。また、Ｐｉｅｒｃｅ Ｃａｔａｌｏｇ ａｎｄ Ｈａｎｄｂｏｏｋ， １９９４−１９９５ （Ｐｉｅｒｃｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．， Ｒｏｃｋｆｏｒｄ， ＩＬ）； Ｋｕｂｙ， Ｊ．， Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ， ３ｒｄ Ｅｄ．， Ｗ．Ｈ． Ｆｒｅｅｍａｎ ＆ Ｃｏ．， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９９７もまた参照のこと。

アレイ：分子（例えば、生物学的高分子（例えば、ペプチド、抗体、もしくは核酸分子）または生物学的サンプル（例えば、組織切片）の、基材（ｓｕｂｓｔｒａｔｅ）上もしくは基材中のアドレス指定可能な場所での配置。「マイクロアレイ」とは、評価もしくは分析のために検鏡を必要とするかまたはそれに補助されるように最小化されているアレイである。アレイは、ときおり、チップもしくはバイオチップといわれる。

分子のアレイ（「特徴」）は、一度に１つのサンプルで多数の分析を行うことを可能にする。特定の例示的アレイにおいて、１種以上の分子（例えば、オリゴヌクレオチドプローブ）は、例えば、内部コントロールを提供するために、上記アレイに複数回（例えば、２回もしくは３回）存在する。上記アレイ上のアドレス指定可能な場所の数は、例えば、少なくとも１から少なくとも２まで、少なくとも５まで、少なくとも１０まで、少なくとも２０まで、少なくとも３０まで、少なくとも５０まで、少なくとも７５まで、少なくとも１００まで、少なくとも１５０まで、少なくとも２００まで、少なくとも３００まで、少なくとも５００まで、少なくとも５５０まで、少なくとも６００まで、少なくとも８００まで、少なくとも１０００まで、少なくとも１０，０００まで、もしくはこれ以上まで変動し得る。詳細な例において、アレイは、核酸分子（例えば、少なくとも１５ヌクレオチドの長さ（例えば、約１５〜４０ヌクレオチドの長さ）であるオリゴヌクレオチド配列）を含む。詳細な例において、アレイは、本明細書で開示される遺伝子（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０）を検出するために使用され得る少なくとも１種（例えば、１種、２種、３種、４種、５種、６種、７種、もしくは８種）のオリゴヌクレオチドプローブもしくはプライマーを含む。

タンパク質ベースのアレイは、タンパク質（例えば、抗体）であるかまたはタンパク質を含むプローブ分子を含むか、あるいは標的分子がタンパク質であるかもしくはタンパク質を含む場合、タンパク質が結合される核酸を含むアレイを含む（または逆もまた然り）。いくつかの例において、アレイは、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの１つに特異的な１種以上（例えば、１種、２種、３種、４種、５種、６種、７種、もしくは８種）の抗体を含む。

アレイ内で、各アレイにされたサンプルは、その場所が上記アレイの少なくとも２つの寸法内で信頼性高くかつ一貫して決定され得るという点で、アドレス指定可能である。アレイ上の特徴適用場所（ｆｅａｔｕｒｅ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｌｏｃａｔｉｏｎ）は、異なる形状を想定し得る。例えば、上記アレイは、規則的（例えば、一様な行および列に配置されている）もしくは不規則であり得る。従って、規則正しいアレイにおいて、各サンプルの場所は、上記アレイに適用される時点で上記サンプルに対して割り当てられ、キーが、各場所と適切な標的もしくは特徴位置とを相関させるために提供され得る。しばしば、規則正しいアレイは、対称性のグリッドパターンにおいて配置されるが、サンプルは、他のパターン（例えば、放射線状に置かれた線、らせん状の線、もしくは規則正しいクラスタにおいて）において配置され得る。アドレス指定可能なアレイは、コンピューターが上記アレイ上の特定のアドレスと、その場所での上記サンプルについての情報（例えば、ハイブリダイゼーションもしくは結合データ（例えば、シグナル強度についてを含む））とを相関させるためにプログラムされ得るという点において、通常、コンピューター読み取り可能である。コンピューター読み取り可能な形式のいくつかの例において、上記アレイにおける個々の特徴は、例えば、直交グリッドパターン（これは、コンピューターによって情報をアドレス指定するために相関させられ得る）において規則的に配置される。

いくつかの例において、上記アレイは、陽性コントロール、陰性コントロール、もしくは両方（例えば、β−アクチン、１８Ｓ ＲＮＡ、β−ミクログロブリン、グリセルアルデヒド−３−ホスフェート−デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰＤＨ）、および他のハウスキーピング遺伝子を検出するために特異的な分子）を含む。一例において、上記アレイは、１〜２０種のコントロール（例えば、１〜１０種もしくは１〜５種のコントロール）を含む。

結合もしくは安定な結合：２種の物質もしくは分子の間の会合（例えば、抗体とポリペプチド（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のポリペプチド）との会合、または核酸の、別の核酸への会合（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のＲＮＡ、またはＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のｃＤＮＡに対するオリゴヌクレオチドプローブの結合）。結合は、当業者に公知の任意の手順によって検出され得る。

核酸分子の相補鎖の結合を検出するための物理的方法としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない：ＤＮａｓｅ Ｉもしくはケミカルフットプリンティング、ゲルシフトおよびアフィニティー切断アッセイ、ノーザンブロッティング、ドットブロッティングおよび光吸収検出手順のような方法。例えば、１つの方法は、温度がゆっくりと上昇するにつれて、オリゴヌクレオチド（もしくはアナログ）および標的核酸を含む溶液の光吸収の変化を、２２０〜３００ｎｍにおいて検出する工程を包含する。上記オリゴヌクレオチドもしくはアナログがその標的に結合した場合、上記オリゴヌクレオチド（もしくはアナログ）および標的が互いに解離するか、もしくは融解するにつれて、特徴的な温度において吸収が増大する。別の例において、上記方法は、一方もしくは両方の核酸分子（または適切な場合、抗体もしくはタンパク質）に存在するシグナル（例えば、検出可能な標的）を検出する工程を包含する。

オリゴマーとその標的核酸との間の結合は、頻繁に、上記オリゴマーのうちの５０％がその標的から融解する温度（Ｔ_ｍ）によって特徴付けられる。より高い（Ｔ_ｍ）は、より低い（Ｔ_ｍ）を有する複合体と比較して、より強いかもしくはより安定な複合体を意味する。

バイオマーカー：生理学的状態もしくは細胞状態を特徴付け、かつ疾患進行を検出するかもしくは定義する、または治療の応答を予測もしくは定量するために客観的に測定され得る、分子属性、生物学的属性もしくは物理的属性。バイオマーカーは、通常の生物プロセス、病的プロセス、もしくは治療介入に対する薬理学的応答のインジケーターとして客観的に測定され評価される特徴である。バイオマーカーは、細胞もしくは生物によって生成される任意の分子構造であり得る。バイオマーカーは、任意の細胞もしくは組織内部で発現され得るか；組織もしくは細胞の表面上で接近可能であり得るか；細胞もしくは組織に構造的に固有である（例えば、細胞もしくは組織によって分泌され、壊死、アポトーシスなどのようなプロセスを介して細胞もしくは組織の破壊によって生成され得る構造成分）か；またはこれらの任意の組み合わせであり得る。バイオマーカーは、任意のタンパク質、炭水化物、脂肪、核酸、触媒部位、またはこれらの任意の組み合わせ（例えば、酵素、糖タンパク質、細胞膜、ウイルス、細胞、器官、オルガネラ、または任意の単分子構造もしくは多分子構造、あるいは単独であろうと組み合わせであろうと、今公知であるかもしくは既に開示されている任意の他のこのような構造であり得る。

バイオマーカーは、バイオマーカーが得られ得る核酸の配列もしくは任意の他の化学構造によって表され得る。このような核酸の例としては、ｍｉＲＮＡ、ｔＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、ｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ、もしくはゲノムＤＮＡ配列（これらの任意の相補的配列を含む）が挙げられる。

バイオマーカーの一例は、遺伝子産物（例えば、特定のＤＮＡ配列によってコードされるタンパク質もしくはＲＮＡ分子）である。前立腺癌細胞を含むサンプル中での上記遺伝子産物の発現は、上記前立腺癌に由来する特定の結果を示す。１つのさらなる例は、上記ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０の遺伝子の任意の発現産物である。

癌：分化の喪失、増大した増殖速度、周辺組織への侵襲、および転移する能力を伴う特徴的な脱分化を受けた悪性新生物。例えば、前立腺癌は、前立腺組織において生じるかもしくは上記組織から生じる悪性新生物である。

残存癌は、癌を縮小もしくは根絶するために被験体に与えられる処置の任意の形態の後に、上記被験体に残っている癌である。転移性癌は、元の（原発性）癌（これに上記転移性癌が由来する）の元の部位以外の、身体中の１以上の部位における癌である。局所再発は、上記元の癌と同じ部位（例えば、同じ組織内）におけるかもしくは上記部位付近の癌の再発である。

ｃＤＮＡ（相補的ＤＮＡ）：内部の非コードセグメント（イントロン）および転写を決定する調節配列を欠いているＤＮＡの片。ｃＤＮＡは、細胞から抽出されたメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）からの逆転写によって合成され得る（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のｃＤＮＡは、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のｍＲＮＡから逆転写される）。ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のｍＲＮＡから逆転写されたＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のｃＤＮＡの量は、生物学的サンプル中に存在するＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のｍＲＮＡの量、従って、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０の発現の量を決定するために使用され得る。

細胞***周期２０ホモログ（ＣＤＣ２０）：細胞***の調節に関与するタンパク質。ＣＤＣ２０の１つの機能は、後期促進複合体の活性化であり、上記活性化から、染色分体分離が開始され、後期へと入る。ＣＤＣ２０はまた、紡錘体アセンブリチェックポイントの一部であり、全ての姉妹染色分体のセントロメアが、中期板に一列に並び、微小管に結合されるときにのみ後期が進行することを確実にする。

一例において、ＣＤＣ２０は、全長の野生型（もしくは天然の）配列、ならびに腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）において増大したレベルにおいて発現される能力を保持するＣＤＣ２０対立遺伝子改変体を含む。特定の例において、ＣＤＣ２０は、配列番号１７に対して少なくとも８０％の配列同一性（例えば、少なくとも８５％、９０％、９５％、もしくは９８％の配列同一性）を有する。

細胞***周期関連３（ＣＤＣＡ３）：有糸***開始（ｍｉｔｏｔｉｃ ｅｎｔｒｙ）１（ＴＯＭＥＩ）のトリガーとしても公知。ＣＤＣＡ３は、後期促進複合体のＧ１基質である。ＣＤＣＡ３は、Ｓｋｐ １と会合し、Ｃｄｋ１阻害性チロシンキナーゼＷｅｅ１の分解に必要とされる。ＣＤＣＡ３の核酸配列およびタンパク質配列は、公に入手可能である。

一例において、ＣＤＣＡ３は、全長の野生型（もしくは天然）の配列、ならびに腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）において増大したレベルで発現される能力を保持するＣＤＣＡ３対立遺伝子改変体を含む。特定の例において、ＣＤＣＡ３は、配列番号５に対して少なくとも８０％の配列同一性（例えば、少なくとも８５％、９０％、９５％、もしくは９８％の配列同一性）を有する。

接触：直接的な物理的に会合した状態での配置；固体、液体、および気体の会合を含む。接触は、１つの分子ともう１つの分子との間の接触を含む。接触は、単離された細胞もしくは組織とインビトロで、または被験体に投与（例えば、被験体へのアルツハイマー病のための処置の投与）することによってインビボで起こり得る。接触の概念はまた、ある分子を、固体、液体、もしくは気体状の混合物に添加することによって包含され得る。

コントロール：参照標準。コントロールは、遺伝子の基礎的な発現を示す既知の値であり得る（例えば、前立腺癌に由来する細胞において発現されるＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０の量）。試験サンプル（例えば、被験体から得られる生物学的サンプル）における発現の間の差異は、特定の疾患結果のような生物学的状態を示し得る。例えば、コントロールのものより大きい、前立腺癌サンプルにおけるＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０の発現は、上記前立腺癌サンプルが由来する上記被験体のより短い生存時間を示し得る。

実験サンプルとの比較のために、任意のサンプルもしくは標準が使用され得る。いくつかの実施形態において、上記コントロールは、健康な患者から得られたサンプルもしくは癌と診断された患者から得られた非腫瘍組織サンプル（例えば、腫瘍に隣り合う非腫瘍組織）である。いくつかの実施形態において、上記コントロールは、歴史的コントロールもしくは標準参照値もしくは値の範囲（例えば、以前に試験されたコントロールサンプル（例えば、好ましくない予後を有する癌患者の群）もしくはベースライン値もしくは正常値（例えば、非腫瘍組織における、本明細書で開示される遺伝子のうちの１つ以上のレベル）を示すサンプルの群）である。コントロールはまた、特定の疾患結果を示すバイオマーカーの発現の閾値レベルとして働き得る。

ＤＥＰドメイン含有１（ＤＥＰＤＣ１）：膀胱癌において高度に発現される遺伝子。ＤＥＰＤＣ１は、ジンクフィンガー転写因子ＺＮＦ２２４と相互作用する。ＤＥＰＤＣ１の核酸配列およびタンパク質配列は、公に入手可能である。

一例において、ＤＥＰＤＣ１は、全長の野生型（もしくは天然）の配列、ならびに腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）において増大したレベルで発現される能力を保持するＤＥＰＤＣ１対立遺伝子改変体を含む。特定の例において、ＤＥＰＤＣ１は、配列番号３に対して少なくとも８０％の配列同一性（たとえば、少なくとも８５％、９０％、９５％、もしくは９８％の配列同一性）を有する。

遺伝子の発現を検出：定性的もしくは定量的のいずれかの様式において、例えば、当該分野で公知の慣用的方法によってもしくは当該分野で既に開示されている任意の方法によって、核酸もしくはタンパク質（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０の核酸もしくはタンパク質）を検出することによる、発現のレベルの検出。

差次的発現もしくは変化した発現：メッセンジャーＲＮＡの量、ｍＲＮＡからタンパク質への変換、もしくは２つの異なるサンプル間でのそれらの両方における差異。いくつかの例において、上記差異は、発現のコントロールもしくは閾値レベル（例えば、非癌性前立腺組織における遺伝子発現の量）に対して比較される。

ＤＮＡ（デオキシリボ核酸）：大部分の生きている生物（一部のウイルスは、リボ核酸（ＲＮＡ）を含む遺伝子を有する）の遺伝物質を含む、長鎖ポリマー。ＤＮＡポリマー中の反復ユニットは、４種の異なるヌクレオチド（これらの各々は、リン酸基が結合したデオキシリボース糖に結合された４種の塩基、アデニン、グアニン、シトシンおよびチミンのうちの１種を含む）である。ＤＮＡ分子中のヌクレオチドの３つ組（コドンといわれる）は、ポリペプチドにおけるアミノ酸をコードする。用語コドンはまた、ＤＮＡ配列が転写されるｍＲＮＡ中の３種のヌクレオチドの対応する（および相補的な）配列のために使用される。

発現：遺伝子の上記コードされる情報が、細胞の活動部分、非活動部分、もしくは構造的部分に変換されるプロセス（例えば、ＲＮＡもしくはタンパク質の合成）。遺伝子発現は、外部シグナルによって影響を受け得る。例えば、ホルモンへの細胞の曝露は、ホルモン誘導性遺伝子の発現を刺激し得る。異なるタイプの細胞は、同一のシグナルに対して異なって応答し得る。遺伝子の発現はまた、ＤＮＡからＲＮＡへ、タンパク質への経路におけるいずれかの箇所で調節され得る。調節は、転写、翻訳、ＲＮＡ輸送およびプロセシングに対する制御、中間分子（例えば、ｍＲＮＡ）の分解、または中間ｓ分子が生成された後の特定のタンパク質の活性化、不活性化、区画化もしくは分解を介するものを含み得る。例において、遺伝子発現は、腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）を有する被験体の予後を決定するために（例えば、被験体の生存もしくは転移を発生させる可能性を予測するために）モニターされ得る。

試験サンプルにおける核酸分子の発現は、コントロールサンプル（例えば、通常サンプルもしくは非腫瘍サンプル）と比較して変化し得る。遺伝子発現における変化（例えば、差次的発現）としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない：（１）過剰発現；（２）過小発現；もしくは（３）発現の抑制。核酸分子の発現における変化は、その対応するタンパク質の発現における変化と関連し得、実際には、上記変化を引き起こし得る。

タンパク質発現はまた、通常（例えば、非腫瘍）の状況において上記タンパク質の発現とは異なるように、ある様式において変化し得る。これは、以下を含むが、必ずしもそれらに限定されない：（１）アミノ酸残基のうちの１もしくは数個が異なるような、上記タンパク質の変異；（２）上記タンパク質の配列への１もしくは数個（例えば、１０〜２０個以下）のアミノ酸残基の短い欠失もしくは付加；（３）タンパク質ドメイン全体もしくはサブドメインが除去もしくは付加されるような、アミノ酸残基（例えば、少なくとも２０残基）のより長い欠失もしくは付加；（４）コントロールもしくは標準の量と比較して、上記タンパク質の増大した量の発現；（５）コントロールもしくは標準の量と比較して、上記タンパク質の減少した量の発現；（６）上記タンパク質の細胞内局在もしくは標的化の変化；（７）上記タンパク質の一時的に調節された発現の変化（その結果、上記タンパク質は、通常には発現されない場合に発現されるか、または代わりに通常は発現される場合に発現されない）；（８）上記タンパク質が細胞中に位置したままである時間における増大した寿命を介したタンパク質の安定性の変化；ならびに（９）上記タンパク質の局在化した（例えば、特定の器官もしくは組織または細胞内局在）発現の変化（その結果、上記タンパク質は、通常発現される場所で発現されないか、または通常発現されない場所で発現される）（各々、コントロールもしくは標準と比較される）。

差次的発現の決定のために、サンプルと比較するためのコントロールもしくは標準は、通常である（それらが所望の特徴について変化していないという点で）と考えられるサンプル（例えば、癌（例えば、前立腺癌）を有しない被験体に由来するサンプル）、ならびにおそらくは自由裁量によって設定されているとしても、実験値（例えば、値の範囲）を含み、このような値が、実験室間で変動し得るということを心に留めておく。実験室標準および値は、既知もしくは決定された集団値に基づいて設定され得、測定され、実験的に決定された値の比較を可能にするグラフもしくは表の形式において与えられ得る。

高移動度遺伝子ボックス２（ＨＭＧＢ２）：高移動度群タンパク質（ｈｉｇｈ−ｍｏｂｉｌｉｔｙ ｇｒｏｕｐ ｐｒｏｔｅｉｎ）２（非ヒストン染色体高移動度群タンパク質ファミリーのメンバー）としても公知。これらタンパク質は、クロマチンと会合し、ＤＮＡを曲げてＤＮＡ環を形成し得る。ＨＭＧＢ２の核酸配列およびタンパク質配列は、公に入手可能である。一例において、ＨＭＧＢ２は、全長の野生型（もしくは天然）の配列、ならびに腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）において増大したレベルで発現される能力を保持するＨＭＧＢ２対立遺伝子改変体を含む。特定の例において、ＨＭＧＢ２は、配列番号７に対して少なくとも８０％の配列同一性（例えば、少なくとも８５％、９０％、９５％、もしくは９８％の配列同一性）を有する。

ハイブリダイゼーション：ＤＮＡ、ＲＮＡの２本の鎖の相補的領域の間で、またはＤＮＡとＲＮＡとの間で塩基対を形成し、それによって、例えば、二重鎖分子を形成すること。特定のストリンジェンシーの程度を生じるハイブリダイゼーション条件は、ハイブリダイゼーション法の性質、ならびにハイブリダイズしようとしている核酸配列の組成および長さに依存して変動する。一般に、ハイブリダイゼーションの温度およびハイブリダイゼーション緩衝液のイオン強度（例えば、Ｎａ＋濃度）は、ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーを決定する。特定のストリンジェンシーの程度を達成するためのハイブリダイゼーション条件に関する計算は、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（１９８９） Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ， Ｐｌａｉｎｖｉｅｗ， ＮＹ （第９章および第１１章）において考察されている。以下は、ハイブリダイゼーション条件の例示的設定であり、限定ではない：
非常に高ストリンジェンシー（少なくとも９０％の同一性を共有する配列を検出）
ハイブリダイゼーション：６５℃で１６時間にわたって５×ＳＳＣ
洗浄２回：室温（ＲＴ）で各１５分間にわたって２×ＳＳＣ
洗浄２回：６５℃で各２０分間にわたって０．５×ＳＳＣ。

高ストリンジェンシー（少なくとも８０％の同一性を共有する配列を検出）
ハイブリダイゼーション：６５℃〜７０℃で１６〜２０時間にわたって５×〜６×ＳＳＣ
洗浄２回：ＲＴで各５〜２０分間にわたって２×ＳＳＣ
洗浄２回：５５℃〜７０℃で各３０分間にわたって１×ＳＳＣ。

低ストリンジェンシー（少なくとも６０％の同一性を共有する配列を検出）
ハイブリダイゼーション：ＲＴ〜５５℃で１６〜２０時間にわたって６×ＳＳＣ
洗浄少なくとも２回：ＲＴ〜５５℃で各２０〜３０分間にわたって２×〜３×ＳＳＣ。

単離された：「単離された」生物学的成分（例えば、核酸分子、タンパク質もしくはオルガネラ）は、上記成分が天然に存在する生物の細胞中の他の生物学的成分（例えば、他の染色体および染色体外のＤＮＡおよびＲＮＡ、タンパク質およびオルガネラ）から実質的に分離されたかまたは精製されている。「単離された」核酸およびタンパク質は、標準的な精製法によって精製された核酸およびタンパク質を含む。この用語はまた、宿主細胞における組換え発現によって調製された核酸およびタンパク質、ならびに化学合成された核酸を包含する。

キネシンファミリーメンバー１１（ＫＩＦ１１）：ＴＲ相互作用タンパク質（ＴＲ−ｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ）５、キネシン様タンパク質（ｋｉｎｅｓｉｎ−ｌｉｋｅ ｐｒｏｔｅｉｎ）１、キネシン関連モータータンパク質（ｋｉｎｅｓｉｎ−ｒｅｌａｔｅｄ ｍｏｔｏｒ ｐｒｏｔｅｉｎ）Ｅｇ５、および甲状腺レセプター相互作用タンパク質（ｔｈｙｒｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ）５としても公知。ＫＩＦ１１は、紡錘体動態に関与する、キネシン様モータータンパク質のファミリーのメンバーである。ＫＩＦ１１は、染色体の位置づけ、セントロメア分離、および有糸***の間の二極性紡錘体の確立に関与する。

ＫＩＦ１１の核酸配列およびタンパク質配列は、公に入手可能である。一例において、ＫＩＦ１１は、全長の野生型（もしくは天然）の配列、ならびに腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）において増大したレベルで発現される能力を保持するＫＩＦ１１対立遺伝子改変体を含む。特定の例において、ＫＩＦ１１は、配列番号２０に対して少なくとも８０％の配列同一性（例えば、少なくとも８５％、９０％、９５％、もしくは９８％の配列同一性）を有する。

標識：直接的にもしくは間接的に別の分子に結合体化されて、その分子の検出を容易にする、検出可能な化合物もしくは組成物。標識の具体的な非限定例としては、放射性同位元素、酵素基質、補因子、リガンド、化学発光因子もしくは蛍光因子、ハプテン、および酵素が挙げられる。いくつかの例において、標識は、抗体もしくは核酸が特異的に結合する分子（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のタンパク質もしくは核酸）の検出を容易にするために、上記抗体もしくは核酸に付着される。

ｖ−ｍｙｃ骨髄球腫症ウイルス癌遺伝子ホモログ（ＭＹＣ）：細胞増殖、複製能、成長、分化、およびアポトーシスを調節する転写因子ネットワークの癌原遺伝子ＭＹＣ。ＭＹＣの核酸配列およびタンパク質配列は、公に入手可能である。一例において、ＭＹＣは、全長の野生型（もしくは天然）の配列、ならびに腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）において増大したレベルで発現される能力を保持するＭＹＣ対立遺伝子改変体を含む。特定の例において、ＭＹＣは、配列番号１１に対して少なくとも８０％の配列同一性（例えば、少なくとも８５％、９０％、９５％、もしくは９８％の配列同一性）を有する。

核酸分子：ｃＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ゲノムＤＮＡ、および合成（例えば、化学的に合成された）ＤＮＡが挙げられるが、これらに限定されないデオキシリボヌクレオチドもしくはリボヌクレオチドポリマー。上記核酸分子は、二本鎖もしくは一本鎖であり得る。一本鎖の場合、上記核酸分子は、センス鎖もしくはアンチセンス鎖であり得る。さらに、核酸分子は、環状もしくは直鎖状であり得る。核酸分子はまた、ポリヌクレオチドといわれ得、上記用語は、交換可能に使用される。

オリゴヌクレオチド：約６〜約３００ヌクレオチド長の間の、天然のホスホジエステル結合によって連結された複数の連結ヌクレオチド。オリゴヌクレオチドアナログとは、オリゴヌクレオチドに類似して機能するが、天然に存在しない部分を有する部分に言及する。例えば、オリゴヌクレオチドアナログは、天然に存在しない部分（例えば、変化した糖部分もしくは糖間連結）を含み得る（例えば、ホスホロチオエートオリゴデオキシヌクレオチド）。

特定のオリゴヌクレオチドおよびオリゴヌクレオチドアナログは、最大約２００ヌクレオチド長までの直鎖状の配列（例えば、少なくとも６ヌクレオチド、例えば、少なくとも８ヌクレオチド、少なくとも１０ヌクレオチド、少なくとも１５ヌクレオチド、少なくとも２０ヌクレオチド、少なくとも２１ヌクレオチド、少なくとも２５ヌクレオチド、少なくとも３０ヌクレオチド、少なくとも３５ヌクレオチド、少なくとも４０ヌクレオチド、少なくとも４５ヌクレオチド、少なくとも５０ヌクレオチド、少なくとも１００ヌクレオチド、もしくはさらに少なくとも２００ヌクレオチド長、または約６〜約５０ヌクレオチド、例えば、約１０〜２５ヌクレオチド（例えば、１２ヌクレオチド、１５ヌクレオチドもしくは２０ヌクレオチド）である配列（例えば、ＤＮＡもしくはＲＮＡ））を含み得る。

オリゴヌクレオチドプローブは、分子ハイブリダイゼーションによって相補的配列の存在を検出するために使用されるオリゴヌクレオチドである。詳細な例において、オリゴヌクレオチドプローブは、オリゴヌクレオチドプローブ：標的配列ハイブリダイゼーション複合体の検出を可能にする標識を含む。詳細な例において、プローブは、少なくとも１種のフルオロフォア（例えば、アクセプターフルオロフォアもしくはドナーフルオロフォア）を含む。例えば、フルオロフォアは、上記プローブの５’末端もしくは３’末端において付着され得る。具体例において、上記フルオロフォアは、上記プローブの５’末端において塩基に、その３’末端において塩基に、その５’末端においてリン酸基もしくは改変塩基（例えば、上記プローブの内部のＴ）に付着される。

オリゴヌクレオチドプライマーは、核酸増幅を刺激するために使用されるオリゴヌクレオチドである。オリゴヌクレオチドプライマーは、上記プライマーと上記標的核酸鎖との間でハイブリッドを形成するために、核酸ハイブリダイゼーションによって相補的な標的核酸分子にアニールされ得る。プライマーは、ポリメラーゼ酵素によって、上記標的核酸分子に沿って伸長し得る。従って、プライマーは、標的核酸分子を増幅するために使用され得る。

オリゴヌクレオチドプライマーの特異性は、その長さとともに増大する。従って、例えば、３０連続ヌクレオチドを含むプライマーは、１５ヌクレオチドのみの対応するプライマーより高い特異性で、標的配列にアニールする。従って、より大きな特異性を得るために、少なくとも１５連続、２０連続、２５連続、３０連続、３５連続、４０連続、４５連続、５０連続、もしくはこれ以上の連続ヌクレオチドを含むプローブおよびプライマーが、選択され得る。詳細な例において、プライマーは、少なくとも１５ヌクレオチド長（例えば、標的核酸分子に相補的な少なくとも１５連続ヌクレオチド）である。本開示の方法を実施するために（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０の全てもしくは任意の部分を増幅するために）使用され得るプライマーの特定の長さは、増幅されるべき上記標的核酸分子に相補的な少なくとも１５連続、少なくとも１６連続、少なくとも１７連続、少なくとも１８連続、少なくとも１９連続、少なくとも２０連続、少なくとも２１連続、少なくとも２２連続、少なくとも２３連続、少なくとも２４連続、少なくとも２５連続、少なくとも２６連続、少なくとも２７連続、少なくとも２８連続、少なくとも２９連続、少なくとも３０連続、少なくとも３１連続、少なくとも３２連続、少なくとも３３連続、少なくとも３４連続、少なくとも３５連続、少なくとも３６連続、少なくとも３７連続、少なくとも３８連続、少なくとも３９連続、少なくとも４０連続、少なくとも４５連続、少なくとも５０連続、もしくはこれ以上の連続ヌクレオチドを有するプライマー（例えば、１５〜５０ヌクレオチド、２０〜５０ヌクレオチド、もしくは１５〜３０ヌクレオチドのプライマー）を含む。

プライマー対は、核酸配列の増幅のために、例えば、ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、もしくは当該分野で公知の他の核酸増幅法によって、使用され得る。「上流」もしくは「順方向」プライマーは、核酸配列上の参照点に対して５’側にあるプライマーである。「下流」もしくは「逆方向」プライマーは、核酸配列上の参照点に対して３’側にあるプライマーである。一般に、少なくとも１個の順方向および１個の逆方向プライマーは、増幅反応に含められる。

核酸プローブおよび／もしくはプライマーは、本明細書で提供される核酸分子に基づいて容易に調製され得る。ＰＣＲプライマー対およびプローブは、例えば、Ｐｒｉｍｅｒ（Ｖｅｒｓｉｏｎ ０．５，（著作権）１９９１， Ｗｈｉｔｅｈｅａｄ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｆｏｒ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ， ＭＡ）もしくはＰＲＩＭＥＲ ＥＸＰＲＥＳＳ（登録商標）ソフトウェア（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ， ＡＢ， Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ， ＣＡ）のような、その目的が意図された多くのコンピュータープログラムのうちのいずれかを使用することによって、公知の配列から得られ得る。

オリゴヌクレオチドおよび他の核酸プローブおよびプライマーを調製し、使用するための方法、ならびに標識のための方法、ならびに種々の目的に適した標識の選択におけるガイダンスは、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（Ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ， ＣＳＨＬ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９８９）、Ａｕｓｕｂｅｌら（編）（Ｉｎ Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９９８）、およびＩｎｎｉｓら（ＰＣＲ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ， Ａ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｉｎｃ．， Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ， ＣＡ， １９９０）に記載される。

ポリペプチド：モノマーがアミノ酸残基（これらは、アミド結合を介して一緒に連結される）であるポリマー。アミノ酸がα−アミノ酸である場合、Ｌ−光学異性体もしくはＤ−光学異性体のいずれかが、使用され得る。用語「ポリペプチド」もしくは「タンパク質」は、本明細書で使用される場合、任意のアミノ酸配列を包含し、改変配列（例えば、糖タンパク質）を含むことが意図される。用語「ポリペプチド」は、天然に存在するタンパク質、ならびに組換えによってもしくは合成で生成されるものを網羅することが具体的に意図される。用語「残基」もしくは「アミノ酸残基」は、タンパク質、ポリペプチド、もしくはペプチドへと組み込まれるアミノ酸への言及を含む。

予後：疾患（例えば、癌（例えば、前立腺癌））の経過の予測。上記予後は、上記被験体が、攻撃的な、再発性の疾患を発症させる可能性、１回以上の転移を発生させる可能性、特定の時間量を生存する（例えば、被験体が３ヶ月間、６ヶ月間、１年間、２年間、３年間、４年間、もしくは５年間生存する可能性を決定する）可能性、特定の治療（例えば、ホルモン療法）に応答する可能性、またはこれらの組み合わせを決定することを包含し得る。

前立腺癌：前立腺の悪性腫瘍（一般には、腺起源）。いくつかの例において、前立腺癌は、腺癌、移行上皮癌、扁平上皮癌、肉腫、もしくは前立腺の小細胞癌を含む。他の例において、前立腺癌は、転移性前立腺癌（例えば、前立腺腫瘍の、別の組織もしくは器官（例えば、肺、骨、肝臓、もしくは脳）への転移）を含む。

サンプル（もしくは生物学的サンプル）：ゲノムＤＮＡ、ＲＮＡ（ｍＲＮＡを含む）、タンパク質、もしくはこれらの組み合わせを含む、被験体から得られる標本。本明細書で使用される場合、生物学的サンプルとしては、細胞、組織、および体液（例えば、血液；血液派生物および血液画分（例えば、血漿もしくは血清））；抽出された胆汁；生検されたかもしくは手術により取り出された組織（例えば、固定されていない、凍結されている、ホルマリン中で固定されている、そして／またはパラフィン中で包埋されている組織を含む）；涙液；乳汁；皮膚の切屑；表面洗浄物；尿；痰；脳脊髄液；前立腺液；膿汁；または骨髄吸引物が挙げられる。詳細な例において、サンプルは、腫瘍生検材料（例えば、前立腺腫瘍生検材料）を含む。別の例において、サンプルは、循環している腫瘍細胞（例えば、腫瘍を有する被験体の血液中に存在する腫瘍細胞）を含む。

被験体から生物学的サンプルを得ることとしては、当該分野で公知の特定のサンプルを集めるための任意の方法が挙げられるが、これらに限定されない。被験体から生物学的サンプルを得ることはまた、方法が行われる場所とは異なる場所において集められたサンプルを受容すること；上記方法を行う個体とは異なる個体によって集められたサンプルを受容すること、上記方法を行う前に、任意の期間において集めたサンプルを受容すること、上記方法を行う機器とは異なる機器を使用して集めたサンプルを受容すること、またはこれらの任意の組み合わせを包含する。被験体から生物学的サンプルを得ることはまた、上記サンプルの収集および上記方法を行うことが、同じ場所において、同じ個体によって、同時に、同じ機器を使用して、またはこれらのうちの任意の組み合わせにおいて行われる状況を包含する。

生物学的サンプルは、生物学的サンプルの任意の画分または上記生物学的サンプルから単離および／もしくは精製され得る生物学的サンプルの任意の成分を包含する。例えば：細胞が血液もしくは組織から単離される場合（バイオマーカー発現に基づいてソートされた特異的細胞タイプを含む）；または核酸もしくはタンパク質が体液もしくは組織から精製される場合；または血液が血漿、血清、軟膜のＰＢＭＣ、または遠心分離および／もしくは濾過に基づく他の細胞画分および非細胞画分のような画分へと分離される場合。生物学的サンプルは、物質の形質転換（ｔｒａｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｔｅｒ）もしくは任意の他の操作を受けた、生物学的サンプルもしくは画分またはその成分をさらに含む。例えば、生物学的サンプルから精製されたｍＲＮＡの逆転写から作製されたｃＤＮＡ分子は、生物学的サンプルといわれ得る。

感度および特異性：二項分類試験（ｂｉｎａｒｙ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｔｅｓｔ）の実施の統計的測定法。感度は、正確に同定されている実際の陽性の割合（例えば、好ましくない予後を有すると同定されている腫瘍のパーセンテージ）を評価する。特異性は、正確に同定されている陰性の割合（例えば、好ましくない予後を有しないと同定された腫瘍のパーセンテージ）を評価する。

配列同一性／類似性：２種以上の核酸配列、または２種以上のアミノ酸配列の間の同一性／類似性は、上記配列間の同一性もしくは類似性の観点で表される。配列同一性は、パーセンテージ同一性の観点において評価され得る；上記パーセンテージが高いほど、配列はより一致する。配列類似性は、パーセンテージ類似性の観点で評価され得る（これは、保存的アミノ酸置換を考慮に入れる）；上記パーセンテージが高いほど、配列はより類似している。

比較のための配列のアラインメントの方法は、当該分野で周知である。種々のプログラムおよびアラインメントアルゴリズムは、以下に記載される：Ｓｍｉｔｈ ＆ Ｗａｔｅｒｍａｎ， Ａｄｖ Ａｐｐｌ Ｍａｔｈ ２， ４８２ （１９８１）； Ｎｅｅｄｌｅｍａｎ ＆ Ｗｕｎｓｃｈ， Ｊ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ ４８， ４４３ （１９７０）； Ｐｅａｒｓｏｎ ＆ Ｌｉｐｍａｎ， Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ８５， ２４４４ （１９８８）； Ｈｉｇｇｉｎｓ ＆ Ｓｈａｒｐ， Ｇｅｎｅ ７３， ２３７−２４４ （１９８８）； Ｈｉｇｇｉｎｓ ＆ Ｓｈａｒｐ， ＣＡＢＩＯＳ ５， １５１−１５３ （１９８９）； Ｃｏｒｐｅｔら、Ｎｕｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ １６， １０８８１−１０８９０ （１９８８）； Ｈｕａｎｇら、Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ａｐｐｌｓ ｉｎ ｔｈｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ８， １５５−１６５ （１９９２）； ａｎｄ Ｐｅａｒｓｏｎら、Ｍｅｔｈ Ｍｏｌ Ｂｉｏ ２４， ３０７−３３１ （１９９４）。さらに、Ａｌｔｓｃｈｕｌら、Ｊ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ ２１５， ４０３−４１０ （１９９０）は、配列アラインメント法および相同性計算の詳細な考察を提示している。

Ｔｈｅ ＮＣＢＩ Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌ （ＢＬＡＳＴ）は、配列分析プログラムｂｌａｓｔｐ、ｂｌａｓｔｎ、ｂｌａｓｔｘ、ｔｂｌａｓｔｎおよびｔｂｌａｓｔｘとともに使用するために、いくつかの供給源から入手可能である（ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ （ＮＣＢＩ， Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｌｉｂｒａｒｙ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ， Ｂｕｉｌｄｉｎｇ ３８Ａ， Ｒｏｏｍ ８Ｎ８０５， Ｂｅｔｈｅｓｄａ， ＭＤ ２０８９４）およびインターネット上を含む）。さらなる情報は、ＮＣＢＩウェブサイトにおいて見いだされ得る。

ＢＬＡＳＴＮは、核酸配列を比較するために使用される一方で、ＢＬＡＳＴＰは、アミノ酸配列を比較するために使用される。上記２つの比較された配列が相同性を共有する場合、その示された出力ファイルは、整列された配列として相同性の領域を示す。上記２つの比較された配列が相同性を共有しない場合、その示された出力ファイルは、整列された配列を示さない。

いったん整列されると、同一のヌクレオチドもしくはアミノ酸残基が両方の配列において提示される位置数を計数することによって、マッチ数が決定される。パーセント配列同一性は、上記マッチ数を、同定された配列に示される配列の長さもしくは区切られた長さ（例えば、同定された配列に示される配列に由来する１００連続ヌクレオチドもしくはアミノ酸残基）のいずれかで除算し、続いて、得られた値に１００を乗算することによって決定される。例えば、１１５４ヌクレオチドを有する試験配列と整列される場合に１１６６マッチを有する核酸配列は、上記試験配列に対して７５．０％同一である（１１６６÷１５５４＊１００＝７５．０）。上記パーセント配列同一性値は、小数点一位へと丸め計算する。例えば、７５．１１、７５．１２、７５．１３、および７５．１４は、７５．１へと四捨五入される一方で、７５．１５、７５．１６、７５．１７、７５．１８、および７５．１９は、７５．２へと四捨五入される。長さ値は、常に整数である。別の例において、同定された配列に由来する２０連続ヌクレオチドと次のように整列する、２０ヌクレオチド領域を含む標的配列は、その同定された配列に対して７５％の配列同一性を共有する領域を含む（すなわち、１５÷２０＊１００＝７５）。

約３０アミノ酸より大きなアミノ酸配列の比較のために、デフォルトパラメーター（ギャップ存在コスト（ｇａｐ ｅｘｉｓｔｅｎｃｅ ｃｏｓｔ）１１、および残基ごとのギャップコスト（ａ ｐｅｒ ｒｅｓｉｄｕｅ ｇａｐ ｃｏｓｔ）１）に設定されたデフォルトＢＬＯＳＵＭ６２マトリクスを使用して、Ｂｌａｓｔ ２配列機能が使用される。ホモログは、代表的には、上記ＮＣＢＩ Ｂａｓｉｃ Ｂｌａｓｔ ２．０， ｇａｐｐｅｄ ｂｌａｓｔｐとｎｒもしくはｓｗｉｓｓｐｒｏｔデータベースのようなデータベースとを使用して、アミノ酸配列との全長アラインメントにわたって計数して少なくとも７０％の配列同一性を有することによって、特徴付けられる。上記ｂｌａｓｔｎプログラムで検索したクエリー（ｑｕｅｒｉｅｓ）は、ＤＵＳＴ（Ｈａｎｃｏｃｋ ａｎｄ Ａｒｍｓｔｒｏｎｇ， １９９４， Ｃｏｍｐｕｔ． Ａｐｐｌ． Ｂｉｏｓｃｉ． １０：６７−７０）でフィルタにかけられる。他のプログラムは、ＳＥＧを使用する。さらに、手動アラインメントが行われ得る。さらにより大きな類似性を有するタンパク質は、この方法によって評価される場合、ますます大きなパーセンテージ類似性（例えば、あるタンパク質に対して少なくとも約７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９８％、もしくは９９％の配列同一性）を示す。

短いペプチド（約３０アミノ酸より短い）を整列する場合、上記アラインメントは、上記Ｂｌａｓｔ ２配列機能を使用して、デフォルトパラメーター（オープンギャップ ９、エクステンションギャップ １ ペナルティー）に設定したＰＡＭ３０マトリクスを使用して、行われる。参照配列に対してさらに大きな類似性を有するタンパク質は、この方法によって評価される場合、まずます大きなパーセンテージ同一性（例えば、あるタンパク質に対して少なくとも約６０％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９８％、もしくは９９％の配列同一性）を示す。全体の配列より短い配列が配列同一性について比較される場合、ホモログは、代表的には、１０〜２０アミノ酸の短いウインドウにわたって少なくとも７５％の配列同一性を有し、上記参照配列に対するそれらの同一性に依存して、少なくとも８５％、９０％、９５％もしくは９８％の配列同一性を有し得る。このような短いウインドウにわたって配列同一性を決定するための方法は、ＮＣＢＩウェブサイトに記載されている。

２つの核酸分子がより密接に関連しているという１つのしるしは、上記のように、２つの分子がストリンジェントな条件下で互いにハイブリダイズすることである。高い程度の同一性を示さない核酸配列は、それにも拘わらず、遺伝コードの縮重に起因して、同一もしくは類似の（保存された）アミノ酸配列をコードし得る。核酸配列における変化は、実質的に同じタンパク質を全てコードする複数の核酸分子を生成するために、この縮重を使用して作製され得る。このような相同な核酸配列は、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０の核酸配列に対して、例えば、少なくとも約６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、もしくは９９％の配列同一性を有する。

特異的結合因子：規定された標的（例えば、タンパク質、酵素、ポリサッカリド、オリゴヌクレオチド、ＤＮＡ、ＲＮＡ、組換えベクターもしくは低分子）にのみ実質的にもしくは優先的に結合する因子。例において、「特異的結合因子」は、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０の遺伝子産物（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０のｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ、もしくはタンパク質）に結合し得る。従って、核酸特異的結合因子は、規定された核酸（例えば、ＲＮＡ）に、または上記核酸内の特定の領域にのみ実質的に結合する。

タンパク質特異的結合因子は、規定されたタンパク質のみ、もしくは上記タンパク質内の特定の領域に実質的に結合する。例えば、特異的結合因子は、特定されたポリペプチドに実質的に結合する抗体および他の因子を含み、例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０に特異的に結合する特異的結合因子は、抗体（例えば、モノクローナル抗体もしくはポリクローナル抗体）、またはＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０に対するリガンドであり得る。抗体は、上記ポリペプチドに対して特異的なモノクローナル抗体もしくはポリクローナル抗体、ならびにそれらの免疫学的に有効な部分（「フラグメント」）であり得る。特定の因子が特定のポリペプチドにのみ実質的に結合することの決定は、慣用的な手順を使用するかもしくは上記手順を適合させることによって、容易に行われ得る。１つの適切なインビトロアッセイは、ウェスタンブロッティング手順（多くの標準テキスト（Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ， Ｕｓｉｎｇ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ， ＣＳＨＬ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９９９が挙げられる）に記載される）を利用する。特定のバイオマーカーに結合する特異的結合因子はまた、特異的結合試薬ともいわれ得る。これら用語は、交換可能に使用され得る。

被験体：多細胞脊椎動物生物（ヒトおよび非ヒト哺乳動物を含むカテゴリー）。

生存：診断もしくは最初の処置（例えば、手術もしくは最初の処置）の日と特定された事象（例えば、特定の治療に対する抵抗性の発生、再発、転移もしくは死亡）との間の期間。全生存は、診断もしくは最初の処置の日と、死亡日もしくは最後の追跡日との間の時間間隔である。無再発生存は、診断もしくは最初の処置の日と再発（例えば、局所領域再発）が診断された日もしくは最後の追跡日との間の時間間隔である。転移なしの生存は、診断もしくは最初の処置の日と、転移が診断された日もしくは最後の追跡日との間の時間間隔である。

ＴＰＸ２，微小管関連ホモログ（Ｘｅｎｏｐｕｓ ｌａｅｖｉｓ）（ＴＰＸ２）：タンパク質ｆｌｓ３５３；肝細胞癌関連抗原（ｈｅｐａｔｏｃｅｌｌｕｌａｒ ｃａｒｃｉｎｏｍａ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ａｎｔｉｇｅｎ）５１９；制限発現増殖関連タンパク質（ｒｅｓｔｒｉｃｔｅｄ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ）１００；およびＸｋｌｐ２の標的化タンパク質としても公知。ＴＰＸ２は、紡錘体装置の成分であり、Ａｕｒｏｒａ−Ａセリン−スレオニンキナーゼと相互作用する。

ＴＰＸ２の核酸配列およびタンパク質配列は、公に入手可能である。一例において、ＴＰＸ２は、全長の野生型（もしくは天然）の配列、ならびに腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）において増大したレベルで発現される能力を保持するＴＰＸ２対立遺伝子改変体を含む。特定の例において、ＴＰＸ２は、配列番号４に対して、少なくとも８０％の配列同一性（例えば、少なくとも８５％、９０％、９５％、もしくは９８％の配列同一性）を有する。

Ｚｗｉｌｃｈ，動原体関連ホモログ （ＺＷＩＬＣＨ）：有糸***チェックポイントの成分（これは、細胞が有糸***を早まって終わらないようにする）。ＺＷＩＬＣＨは、有糸***の間に動原体へと標的化される。ＺＷＩＬＣＨの核酸配列およびタンパク質配列は、公に入手可能である。

一例において、ＺＷＩＬＣＨは、全長の野生型（もしくは天然）の配列、ならびに腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）において増大したレベルで発現される能力を保持するＺＷＩＬＣＨ対立遺伝子改変体を含む。特定の例において、ＺＷＩＬＣＨは、配列番号１に対して少なくとも８０％の配列同一性（例えば、少なくとも８５％、９０％、９５％、もしくは９８％の配列同一性）を有する。

（ＩＩＩ．癌を有する被験体の予後を決定するための方法）
本明細書で開示されるのは、癌（例えば、前立腺癌）を有する被験体における予後を決定するために使用され得る遺伝子発現プロフィールである。いくつかの例において、上記予後を決定することは、腫瘍を有する上記被験体の結果（例えば、腫瘍再発、転移、もしくは生存の可能性）を予測することを含む。他の例において、上記予後を決定することは、上記腫瘍が、治療（例えば、化学療法もしくはホルモン療法）に対して抵抗性になるかもしくは抵抗性になる可能性があるか否かを予測することを含む。従って、本明細書に提供されるのは、腫瘍（例えば、前立腺腫瘍）を有する被験体の予後決定をする（ｐｒｏｇｎｏｓｉｎｇ）ための方法である。

いくつかの実施形態において、上記方法は、上記被験体に由来するサンプル中のＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの１種以上（例えば、１種、２種、３種、４種、５種、６種、７種、もしくは全て）の遺伝子産物の発現を検出する工程、ならびに上記サンプル中の上記１種以上の遺伝子の発現と、発現の閾値レベルとを比較する工程を包含する。いくつかの例において、上記方法は、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０の遺伝子産物のうちの５種以上（例えば、５種、６種、７種、もしくは全て）の発現を検出する工程を包含する。他の例において、上記方法は、表１に開示される遺伝子のうちの１種以上（例えば、１種、２種、３種、４種、５種、６種、７種、８種、９種、１０種、１１種、１２種、１３種、１４種、１５種、１６種、１７種、１８種、１９種、もしくは全て）の生成物の発現を検出する工程を包含する。上記方法のいくつかの実施形態において、発現の閾値レベルを超える、サンプル中のＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの１種以上（例えば、１種、２種、３種、４種、５種、６種、７種、もしくは全て）の遺伝子産物の発現は、好ましくない予後（例えば、低下した生存の可能性（例えば、低下した全生存、無再発生存（ｒｅｌａｐｓｅ−ｆｒｅｅ ｓｕｒｖｉｖａｌ）、もしくは無転移生存（ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ−ｆｒｅｅ ｓｕｒｖｉｖａｌ）））または治療（例えば、ホルモン療法、例えば、前立腺癌のためのＡＤＴ）に対する抵抗性またはこの抵抗性を発生させる可能性を示す。詳細な例において、発現の閾値レベルを超える、上記サンプル中のＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの５種以上（例えば、５種、６種、７種、もしくは全て）の発現は、好ましくない予後（例えば、低下した生存の可能性（例えば、低下した全生存、無再発生存、もしくは無転移生存））または治療（例えば、ホルモン療法、例えば、前立腺癌のためのＡＤＴ）に対する抵抗性またはこの抵抗性を発生させる可能性を示す。

一例において、低下した全生存は、診断もしくは最初の処置のときから６０ヶ月以下の生存期間（例えば、５０ヶ月、４０ヶ月、３０ヶ月、２０ヶ月、１２ヶ月、６ヶ月、もしくは３ヶ月）を含む。別の例において、低下した無再発生存は、診断もしくは最初の処置のときから６０ヶ月以下の再発がない期間（例えば、５０ヶ月、４０ヶ月、３０ヶ月、２０ヶ月、１２ヶ月、６ヶ月、もしくは３ヶ月）を含む。さらなる例において、低下した無転移生存は、診断もしくは最初の処置のときから６０ヶ月以下の転移がない期間（例えば、５０ヶ月、４０ヶ月、３０ヶ月、２０ヶ月、１２ヶ月、６ヶ月、もしくは３ヶ月）を含む。

さらなる例において、治療（例えば、化学療法もしくはホルモン療法）に対する抵抗性は、最初の処置もしくはその後の処置に応答しない腫瘍を含む。最初の処置に応答しない状態は、本質的抵抗性を有するといわれる。最初の治療処置に応答するが、同じ治療でのその後の処置に応答しない状態は、獲得性の抵抗性を有するといわれる。いくつかの例において、好ましくない予後は、治療（例えば、ホルモン療法）に対する現在の腫瘍抵抗性を含む。他の例において、好ましくない予後は、診断もしくは最初の処置のときから７２ヶ月以下、６０ヶ月の期間（例えば、５０ヶ月、４０ヶ月、３０ヶ月、２４ヶ月、１８ヶ月、１２ヶ月、６ヶ月、もしくは３ヶ月）に、治療（例えば、ホルモン療法）に対する腫瘍抵抗性を発生させることを含む。いくつかの例において、上記腫瘍は、ホルモン療法（例えば、アンドロゲン除去療法；ＡＤＴ）に対する抵抗性を有するか、もしくはその抵抗性を獲得する可能性がある前立腺腫瘍である。

ＡＤＴ（もしくはアンドロゲン抑制治療）は、黄体化ホルモン放出ホルモン（ＬＨＲＨ）アゴニストもしくはアナログ（例えば、ロイプロリド、ゴセレリン、トリプトレリン、ブセレリン、もしくはヒストレリン）、ＬＨＲＨアンタゴニスト（例えば、アバレリクスもしくはデガレリクス）、抗アンドロゲン（例えば、フルタミド、ビカルタミド、もしくはニルタミド）、ケトコナゾール、もしくはこれらの２種以上の組み合わせでの処置を含み得る。詳細な例において、上記腫瘍は、ＬＨＲＨアゴニスト（例えば、ロイプロリドもしくはゴセレリン）もしくは精巣の外科的除去に対する抵抗性を獲得するものであるかもしくはその可能性のあるものである。ホルモン療法に対する抵抗性は、当業者によって、例えば、血清中のテストステロンが去勢レベルであるにも拘わらず経時的にＰＳＡレベルが増大していることを観察することによって、決定され得る。

上記開示される遺伝子の発現は、当該分野で公知のもしくは既に開示されている任意の適切な方法論を使用して、検出および／もしくは定量され得る。例えば、遺伝子発現の検出は、核酸増幅法（例えば、ＲＴ−ＰＣＲ）もしくはアレイ分析を使用して核酸分子（例えば、ＲＮＡ）を検出することによって達成され得る。遺伝子発現の検出はまた、タンパク質を検出するイムノアッセイ（例えば、ＥＬＩＳＡ、ウェスタンブロット、もしくはＲＩＡアッセイ）を使用して達成され得る。遺伝子発現を検出するためのさらなる方法は、当該分野で周知であり、以下により詳細に記載される。

一例において、上記開示される遺伝子の発現は、生物学的サンプル中で検出および／もしくは定量される。詳細な例において、上記生物学的サンプルは、腫瘍サンプル（例えば、腫瘍生検材料（例えば、前立腺腫瘍生検材料））である。いくつかの例において、腫瘍サンプルは、固定されていない、凍結されている、ホルマリン中に固定されている、および／もしくはパラフィン中に包埋されている腫瘍組織を含む。別の例において、上記サンプルは、末梢血サンプル（例えば、循環する腫瘍細胞を含むサンプル）である。他の例において、上記サンプルは、尿、唾液、脳脊髄液、前立腺液、膿汁、もしくは骨髄吸引物である。

腫瘍予後と関連する上記開示される遺伝子の変化した発現は、好ましくない予後と相関する発現の任意の量であり得る。いくつかの実施形態において、発現における増大もしくは減少は、発現の閾値レベルと比較して、少なくとも１．５倍、少なくとも２倍、少なくとも２．５倍、少なくとも３倍、少なくとも４倍、少なくとも５倍、少なくとも７倍、少なくとも１０倍、少なくとも１５倍、少なくとも２０倍、もしくはこれ以上である。

発現の閾値レベルは、特定の遺伝子もしくは遺伝子のセットの発現の定量されたレベルである。上記発現の閾値レベルを超えるかもしくは下回る、サンプル中の遺伝子もしくは遺伝子のセットの発現レベルは、特定の疾患状態もしくは結果を予測する。わずか一例において（説明の容易さのために単純化した）、発現の閾値レベルを超えるＴＰＸ２の発現は、前立腺癌を有する患者における疾患の再発を予測する。

上記発現の閾値レベルの性質および数値（あるとすれば）は、予測に使用される上記遺伝子もしくは遺伝子のセットの発現を決定するために選択される方法に基づいて変動する。本開示に鑑みれば、いずれの当業者も、特定のＲＮＡもしくはタンパク質発現を測定するための、当該分野で現在公知のもしくは既に開示されている任意の方法を使用して、前立腺癌において低下した生存を予測する患者サンプル中のＴＰＸ２発現の閾値レベルを決定し得る。

発現の閾値レベルの概念は、単一の値もしくは結果に限定されるべきではない。むしろ、発現の閾値レベルの概念は、例えば、疾患がない生存の例えば、高い、中程度、もしくは低い可能性を示し得る複数の閾値発現レベルを包含する。あるいは、上記閾値を下回る上記サンプル中のＴＰＸ２の発現は、上記被験体が良好な予後を有する可能性があることを示す低い発現の閾値、および上記閾値を上回る上記サンプル中のＴＰＸ２発現は、上記被験体が好ましくない予後を有することを示す別個の高い発現の閾値が存在し得る。上記２つの閾値の間に入る上記サンプル中の発現は、上記被験体が好ましくない予後を有するかもしくは有しないかに関して確定的でない。

被験体が、ＴＰＸ２発現を測定するための特定の方法（例えば、ＲＴＰＣＲ、ＥＬＩＳＡ、ＩＳＨ、もしくはＩＨＣ）の好ましくない結果を有することを示すＴＰＸ２発現の閾値を得るために、前立腺癌において低下した生存を有することが既知の被験体の第１のコホートから、および低下した生存を有しないことが既知の第２のコホートから得られるサンプルを使用して、ＴＰＸ２発現が決定され得る。ＴＰＸ２発現は、両方のコホート、および被験体が好ましくない予後を有することを示す所望の発現の発現プロフィールにおいて決定される。好ましくは、上記発現の閾値レベルは、被験体が好ましくない予後を有するか否かを予測する最大の能力を提供する発現のレベルであり、試験の選択性および感度の両方を最大化する。発現の閾値レベルの予知力（ｐｒｅｄｉｃｔｉｖｅ ｐｏｗｅｒ）は、当該分野で公知の多くの統計的方法のうちのいずれかによって評価され得る。当業者は、どの統計的方法が、ＴＰＸ２発現を決定するための方法および得られるデータに基づいて選択されるべきかを理解する。このような統計的方法の例としては、以下が挙げられる：
受信者動作特性曲線、もしくは「ＲＯＣ」曲線は、２つの集団の各々においてその相対的頻度に対して変数の値をプロットすることによって計算され得る。分布を使用して、閾値が選択される。上記ＲＯＣ曲線下の面積は、発現が正確に診断を示すという確率の尺度である。上記２つのコホート間のＴＰＸ２発現の分布が重なる場合、重なりの領域の中に入り、上記被験体がサンプルを提供する被験体からのＴＰＸ２発現値は、診断され得ない。例えば、Ｈａｎｌｅｙら、Ｒａｄｉｏｌｏｇｙ １４３， ２９−３６ （１９８２）（その全体において本明細書に参考として援用される）を参照のこと。その場合、低い発現の閾値および高い発現の閾値が、選択され得る。

オッズ比は、効果の大きさを評価し、２つの群間の関連の量および非依存性を説明する。オッズ比は、上記閾値を上回るＴＰＸ２発現が、ＡＤを有しないことが既知である被験体または続いてＡＤを発症させない被験体のコホートに由来するサンプル中に起こるオッズに対する、上記閾値を上回るＴＰＸ２発現が、ＡＤを有することが既知の被験体または続いてＡＤを発症させる被験体のコホートに由来するサンプル中に起こるオッズの比である。オッズ比１は、上記閾値を上回るＴＰＸ２発現が、両方のコホートにおいてひとしくありそうであることを示す。１より大きいオッズ比もしくは１より小さいオッズ比は、上記マーカーの発現が、一方のコホートもしくは他方のコホートにおいて起こる可能性がより高いことを示す。

ハザード比は、相対的リスクの推定値によって計算され得る。相対的リスクは、特定の事象が起こる可能性である。例えば：相対的リスクは、上記閾値を超えないサンプルが好ましくない予後を有しない患者に由来するという確率に対するＴＰＸ２の発現の閾値レベルを超えるサンプルが好ましくない予後を有する患者に由来するという確率の比から計算され得る。ハザード比の場合、値１は、上記相対的リスクが上記第１の群および第２の群の両方において等しいことおよび上記アッセイがほとんどもしくは全く予測値を有さないことを示し；１より大きい値もしくは１より小さい値は、上記リスクが、計算への入力に依存して、一方の群もしくは別の群においてより大きいことを示す。

発現の複数の閾値レベルは、いわゆる「三分位数」、「四分位数」、もしくは「五分位数」分析によって選択され得る。これら方法において、複数の群が、単一の集団として一緒に考慮され得、等しい個体数を有する３つ以上のビン（ｂｉｎ）に分けられる。これら「ビン」のうちの２つの間の境界は、発現の閾値レベルが考慮され得、このレベルは、上記被験体が好ましくない予後を有するかもしくは将来有するという特定のリスクレベルを示す。リスクは、どの「ビン」に試験被験体が入るかに基づいて割り当てられ得る。

上記発現の閾値レベルはまた、上記試験の目的に基づいて異なり得る。被験体が好ましくない予後を有するか有しないかを決定するための試験については、被験体の２つのコホートが試験され得る：一方の好ましくない予後を有することが既知の被験体コホート、および好ましくない予後を有しないことが既知の別の被験体コホート。ＴＰＸ２発現は、両方のコホートにおいて同じ方法によって決定され、上記コホートを区別する発現の閾値レベルが決定される。

発現の閾値レベルの１つのタイプは、１種以上のコントロールもしくは標準と比較した、発現の量もしくは評価である。発現は、上記発現の閾値レベルに等しいことが公知のコントロールを上回り得るかもしくは下回り得る。上記コントロールは、サンプル中の遺伝子の発現を比較するための、任意の適切なコントロールであり得る。いくつかの実施形態において、上記コントロールサンプルは、非腫瘍組織である。いくつかの例において、上記非腫瘍組織は、同じ被験体から得られる（例えば、上記腫瘍に隣り合っている非腫瘍組織）。他の例において、上記非腫瘍組織は、健康なコントロール被験体から得られる。他の例において、既知の発現レベルに等しいコントロールのセットは、標準曲線を公式化するために評価される。次いで、上記サンプル中の発現は、その標準曲線に基づいて定量され、次いで、上記発現の閾値レベルと比較される。

いくつかの実施形態において、上記開示される方法は、上記被験体の予後のさらなるインジケーターを決定する工程をさらに包含する。具体例において、上記腫瘍は、前立腺腫瘍であり、上記方法は、上記被験体の前立腺特異的抗原（ＰＳＡ）のレベルを測定する工程を包含する。被験体のＰＳＡレベル（例えば、上記被験体に由来するサンプル（例えば、血液サンプル）中で）を測定するための方法は、当業者に公知であり、イムノアッセイ（例えば、電気化学発光イムノアッセイ）を包含する。いくつかの場合において、上記被験体は、正常ＰＳＡレベルより高い（例えば、４ｎｇ／ｍＬより高い（例えば、約４〜５０ｎｇ／ｍＬ、約４〜１０ｎｇ／ｍＬ、もしくは約１０〜２５ｎｇ／ｍＬ））ＰＳＡレベルを有する。いくつかの例において、増大した（正常より高い）ＰＳＡレベルは、上記被験体が好ましくない予後を有することを示す。一例において、１０．０以上のＰＳＡレベルは、上記被験体が好ましくない予後を有することを示す。ＰＳＡレベルは、上記被験体の年齢および健康状態に基づいて変動し得る。当業者は、被験体における正常もしくは異常なＰＳＡレベルを決定し得る。

他の例において、上記腫瘍は、前立腺腫瘍であり、上記方法は、上記被験体に由来するサンプル中でＴＭＰＲＳＳ２−ＥＲＧ遺伝子融合物の存在を検出する工程を包含する。ＴＭＰＲＳＳ２−ＥＲＧ遺伝子融合物を検出するための方法は、当業者に公知であり、インサイチュハイブリダイゼーション（例えば、蛍光インサイチュハイブリダイゼーションもしくは比色インサイチュハイブリダイゼーション）、サザンブロット、ノーザンブロット、ポリメラーゼ連鎖反応（例えば、逆転写ＰＣＲ）、ウェスタンブロット、もしくは免疫組織化学を含む。いくつかの例において、ＴＭＰＲＳＳ２−ＥＲＧ遺伝子融合物の存在は、上記被験体が好ましくない予後を有することを示す。

開示される方法は、癌を有する被験体の予後を決定するために使用され得る。詳細な例において、癌は、前立腺癌を含む。

（ＩＶ．遺伝子発現の検出）
Ａ．核酸の検出
サンプル中の核酸の発現は、慣用的方法を使用して検出され得る。いくつかの例において、生物学的サンプル中の核酸は、単離されるか、増幅されるか、またはその両方とも行われる。いくつかの例において、発現の増幅および検出は、同時にまたはほぼ同時に起こる。例えば、核酸は、市販されるキットを使用することによって、単離および増幅され得る。例において、上記生物学的サンプルは、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、および／もしくはＣＤＣ２０のうちの少なくとも１種のｍＲＮＡの増幅を可能にするプライマーとともに、このような生成物の増幅を可能にするために十分な条件下でインキュベートされ得る。

ハイブリダイゼーション分析および／もしくは配列決定に基づいて、核酸（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、および／もしくはＣＤＣ２０をコードするｍＲＮＡ）の量を決定するための方法は、当該分野で公知である。サンプル中でのｍＲＮＡ発現の定量のための当該分野で公知の方法としては、ノーザンブロッティングおよびインサイチュハイブリダイゼーション（Ｐａｒｋｅｒ ＆ Ｂａｒｎｅｓ， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ １０６ ２４７−２８３ （１９９９）；ＲＮＡｓｅ保護アッセイ（Ｈｏｄ， Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １３， ８５２−８５４ （１９９２））；ならびにＰＣＲベースの方法（例えば、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）（Ｗｅｉｓ ｅｔ ａｌ．， Ｔｒｅｎｄｓ ｉｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ８， ２６３−２６４ （１９９２）））が挙げられる。配列決定ベースの遺伝子発現分析の代表的方法としては、遺伝子発現の連続分析（ＳＡＧＥ）、および広範囲並行シグナチャー配列決定法（ｍａｓｓｉｖｅｌｙ ｐａｒａｌｌｅｌ ｓｉｇｎａｔｕｒｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ）（ＭＰＳＳ）による遺伝子発現分析が挙げられる（Ｍａｒｄｉｓ ＥＲ， Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｇｅｎｏｍｉｃｓ Ｈｕｍ Ｇｅｎｅｔ ９， ３８７−４０２ （２００８）を参照のこと）。いくつかの実施形態において、生物学的サンプルにおいて発現されるＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、および／もしくはＣＤＣ２０の量を決定することは、上記生物学的サンプル中のＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、および／もしくはＣＤＣ２０のｍＲＮＡの量を決定することを包含する。

ｍＲＮＡを定量するための方法は、当該分野で周知である。一例において、上記方法は、逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）を利用する。一般に、ＲＴ−ＰＣＲによる遺伝子発現プロファイリングにおける第１の工程は、ＲＮＡテンプレートの、ｃＤＮＡへの逆転写、続いて、ＰＣＲ反応におけるその指数関数的増幅である。最も一般に使用される２つの逆転写酵素は、トリ骨髄芽球症ウイルス逆転写酵素（ＡＭＶ−ＲＴ）およびモロニーマウス白血病ウイルス逆転写酵素（ＭＭＬＶ−ＲＴ）であるが、ＲＮＡテンプレートからｃＤＮＡを合成し得る任意の酵素もしくはそのフラグメントが使用され得る。上記逆転写工程は、代表的には、発現プロファイリングの環境およぼ目的に依存して、特異的プライマー、ランダムヘキサマー、もしくはオリゴ−ｄＴプライマーを使用して刺激される。例えば、抽出されたＲＮＡは、ＧＥＮＥＡＭＰ（登録商標） ＲＮＡ ＰＣＲキット（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ， Ｃａｌｉｆ．， ＵＳＡ）を使用して、製造業者の指示に従って逆転写され得る。次いで、得られたｃＤＮＡは、その後のＰＣＲ反応においてテンプレートとして使用され得る。

ＰＣＲ工程は、多くの熱安定性ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼのうちのいずれかを使用し得るが、代表的には、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ（これは、５’−３’ヌクレアーゼ活性を有するが、３’−５’プルーフリーディングエンドヌクレアーゼ活性を欠いている）を使用する。従って、ＴＡＱＭＡＮ（登録商標） ＰＣＲは、代表的には、ＴａｑもしくはＴｔｈポリメラーゼの５’−ヌクレアーゼ活性を利用して、その標的アンプリコンに結合したハイブリダイゼーションプローブを加水分解するが、等価な５’ヌクレアーゼ活性を有する任意の酵素も使用され得る。２種のオリゴヌクレオチドプライマーが、ＰＣＲ反応に代表的なアンプリコンを生成するために使用される。第３のオリゴヌクレオチド、もしくはプローブは、上記２種のＰＣＲプライマーの間に位置するヌクレオチド配列を検出するために設計される。上記プローブは、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ酵素によって伸長せず、レポーター蛍光色素およびクエンチャー蛍光色素で標識される。上記レポーター色素からの任意のレーザー誘導性発光は、上記２種の色素が、それらが上記プローブ上に存在するように一緒に密接に位置する場合に、クエンチング色素によってクエンチされる。増幅反応の間に、上記Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ酵素は、テンプレート依存性様式において上記プローブを開裂する。得られたプローブフラグメントは、溶液中で解離し、上記放出されたレポーター色素からのシグナルには、第２のフルオロフォアのクエンチング効果がない。レポーター色素の一分子は、合成される各新たな分子のために遊離され、上記クエンチされていないレポーター色素の検出は、データの定量的解釈のための基礎を提供する。定量的ＰＣＲにおいて使用され得る蛍光標識の例としては、以下が挙げられるが、必ずしもこれらに限定されない：ＨＥＸ、ＴＥＴ，６−ＦＡＭ、ＪＯＥ、Ｃｙ３、Ｃｙ５、ＲＯＸ ＴＡＭＲＡ、およびテキサスレッド。定量的ＰＣＲにおいて使用され得るクエンチャーの例としては、以下が挙げられるが、これらに限定される必要はない：ＴＡＭＲＡ（これは、ＨＥＸ、ＴＥＴ、もしくは６−ＦＡＭとともにクエンチャーとして使用され得る）、ＢＨＱ１、ＢＨＱ２、もしくはＤＡＢＣＹＬ。

ＴＡＱＭＡＮ（登録商標） ＲＴ−ＰＣＲは、市販の装置（例えば、ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ ７７００（登録商標） Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ^ＴＭ（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ−Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ， Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ， Ｃａｌｉｆ．， ＵＳＡ）、もしくはＬｉｇｈｔｃｙｃｌｅｒ（Ｒｏｃｈｅ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ， Ｍａｎｎｈｅｉｍ， Ｇｅｒｍａｎｙ））を使用して行われ得る。一実施形態において、上記５’ヌクレアーゼ手順は、リアルタイム定量的ＰＣＲデバイス（例えば、ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ ７７００（登録商標） Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ）で行われる。上記システムは、サーモサイクラー、レーザー、電荷結合素子（ＣＣＤ）、カメラおよびコンピューターから構成される。上記システムは、サーモサイクラー上にある９６ウェル形式でサンプルを増幅する。増幅の間に、レーザー誘導性蛍光シグナルは、全ての９６ウェルに関して光ファイバーケーブルを通じてリアルタイムで集められ、上記ＣＣＤで検出される。上記システムは、上記機器を動かし、上記データを分析するためのソフトウェアを含む。

いくつかの例において、５’−ヌクレアーゼアッセイデータは、Ｃｔ、もしくは閾値サイクルとして最初に表現される。上記で考察されるように、蛍光値は、全てのサイクルの間に記録され、それは、増幅反応においてその点までに増幅された生成物の量を表す。上記蛍光シグナルが統計的に有意として最初に記録される点は、閾値サイクル（Ｃｔ）である。

サンプル間変動の誤差および影響を最小限にするために、ＲＴ−ＰＣＲは、内部標準を使用して行われ得る。理想的な内部標準は、異なる組織の間で一定のレベルで発現され、実験処理によって影響を受けない。遺伝子発現のパターンを正規化するために最も頻繁に使用されるＲＮＡは、ハウスキーピング遺伝子のｍＲＮＡ生成物である。

さらに、定量的ＰＣＲは、上記プライマー間の配列に結合する標識オリゴヌクレオチドプローブの使用なしに、被験体に由来するサンプルの逆転写から生じるｃＤＮＡに対して行われ得る。これら技術のうちのいくつかにおいて、ＰＣＲ増幅は、蛍光色素（例えば、ＳＹＢＲグリーン）の、上記増幅反応の間に二本鎖ＰＣＲ生成物への結合によって追跡される。ＳＹＢＲグリーンは、二本鎖ＤＮＡに結合するが、一本鎖ＤＮＡには結合しない。さらに、ＳＹＢＲグリーンは、二本鎖ＤＮＡに結合した場合に波長４９７ｎｍにおいて強く蛍光を発するが、二本鎖ＤＮＡに結合されない場合には蛍光を発しない。結果として、４９７ｎｍでの蛍光の強度は、上記反応の間の任意の時点において存在する増幅生成物の量と相関し得る。増幅の速度は、続いて、最初のサンプル中に存在するテンプレート配列の量と相関し得る。一般に、Ｃｔ値は、上記ＴａｑＭａｎ（登録商標）システムを使用して計算されるものに類似して計算される。プローブは存在しないので、適切な配列の増幅は、多くの技術のうちのいずれかによってチェックされ得る。１つのこのような技術は、核酸フラグメントを分離し、定量的リアルタイムＰＣＲ反応に由来する増幅生成物と、既知のサイズのコントロールＤＮＡフラグメントとを比較するために適した、アガロースもしくは他のゲル上で上記増幅生成物を泳動させることを包含する。

サンプル内のＲＮＡ発現レベルは、ハウスキーピング遺伝子のような内部標準に対する比較において定量され得る。ハウスキーピング遺伝子発現が、例えば、ＴＰＸ２と同じサンプル中で決定される場合、ＴＰＸ２発現は、上記ハウスキーピング遺伝子の発現に対して正規化され得る。よって、上記ハウスキーピング遺伝子の発現は、存在する総ＲＮＡの観点においてサンプル間変動を説明するために働く内部正規化コントロールとして働く。ハウスキーピング遺伝子は、一定の発現レベルで、生物中の大部分もしくは全ての組織において構成的に発現される任意の遺伝子であり得る。Ｅｉｓｅｎｂｅｒｇ ａｎｄ Ｌｅｖａｎｏｎ， Ｔｒｅｎｄｓ ｉｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ １９， ３６２−３６５ （２００３．）を参照のこと。ヒトハウスキーピング遺伝子のリストは、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｏｍｐｕｇｅｎ．ｃｏ．ｉｌ／ｓｕｐｐ＿ｉｎｆｏ／Ｈｏｕｓｅｋｅｅｐｉｎｇ＿ｇｅｎｅｓ．ｈｔｍｌ（２０１２年３月０８日に最後に確認）において入手可能である。当業者は、特定の標的遺伝子のｍＲＮＡ発現を評価するための任意の方法において使用されるように１種以上の受容可能なハウスキーピング遺伝子を選択する方法を知っている。

一実施形態において、核酸サンプルが利用される（例えば、生物学的サンプルから単離された総ｍＲＮＡ）。上記生物学的サンプルは、上記目的の被験体（例えば、心血管疾患を有すると疑われる被験体）に由来する任意の生物学的組織もしくは体液に由来し得る。このようなサンプルとしては、血液、血球（例えば、白血球）もしくは脾臓組織を含む組織生検材料が挙げられるが、これらに限定されない。

核酸（例えば、ｍＲＮＡ）は、当業者に周知の多くの方法のうちのいずれかに従って、上記サンプルから単離され得る。総ｍＲＮＡを単離するための方法は、当業者に周知である。例えば、核酸の単離および精製の方法は、Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ Ｗｉｔｈ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｐｒｏｂｅｓ， Ｐａｒｔ Ｉ． Ｔｈｅｏｒｙ ａｎｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ， Ｐ． Ｔｉｊｓｓｅｎ， ｅｄ． Ｅｌｓｅｖｉｅｒ， Ｎ．Ｙ． （１９９３）の第３章、およびＬａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ Ｗｉｔｈ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｐｒｏｂｅｓ， Ｐａｒｔ Ｉ． Ｔｈｅｏｒｙ ａｎｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ， Ｐ． Ｔｉｊｓｓｅｎ， ｅｄ． Ｅｌｓｅｖｉｅｒ， Ｎ．Ｙ． （１９９３）の第３章に詳細に記載されている。一例において、上記総核酸は、所定のサンプルから、例えば、酸グアニジウム−フェノール−クロロホルム抽出法を使用して単離され、ポリＡ＋ｍＲＮＡは、オリゴｄＴカラムクロマトグラフィーによって、もしくは（ｄＴ）ｎ磁性ビーズを使用することによって単離される（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ （２ｎｄ ｅｄ．）， Ｖｏｌｓ． １−３， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ， （１９８９）、もしくはＣｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｆ． Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．， ｅｄ． Ｇｒｅｅｎｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ ａｎｄ Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ， Ｎ．Ｙ． （１９８７）を参照のこと）。別の例において、オリゴ−ｄＴ磁性ビーズは、ｍＲＮＡを精製するために使用され得る（Ｄｙｎａｌ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｉｎｃ．， Ｂｒｏｗｎ Ｄｅｅｒ， ＷＩ）。核酸は、核酸単離前に全血中の細胞を溶解することによって血液から単離され得るか、または核酸は、全血の画分（例えば、ＰＢＭＣ）から単離され得るかのいずれかである。上記核酸サンプルは、ハイブリダイゼーション前に増幅され得る。定量的結果が所望される場合、増幅された核酸の相対的頻度を維持もしくは制御する方法が利用される。「定量的」増幅のための方法は、当業者に周知である。例えば、定量的ＰＣＲは、同じプライマーを使用して、コントロール配列の既知量を同時に共増幅することを包含する。これは、ＰＣＲ反応を較正するために使用され得る内部標準を提供する。次いで、上記アレイは、上記増幅された核酸の定量のための内部標準に特異的なプローブを含み得る。

定量的ＰＣＲにおいて使用されるプライマーおよびプローブは、オリゴヌクレオチドであり得る。オリゴヌクレオチド合成は、当該分野で現在公知か、または既に開示されている任意の方法による、規定された化学構造および／もしくは核酸配列を有するオリゴヌクレオチドの化学合成である。オリゴヌクレオチド合成は、成長している鎖の５’末端にヌクレオチド残基を付加することによって行われ得る。オリゴヌクレオチド合成のエレメントは、以下を含む：脱ブロック（ｄｅ−ｂｌｏｃｋｉｎｇ）（脱トリチル化）：ＤＭＴ基は、不活性溶媒（ジクロロメタンもしくはトルエン）中の酸（例えば、ＴＣＡもしくはジクロロ酢酸（ＤＣＡ））の溶液で除去され、洗浄され、第１の塩基上の遊離５’ヒドロキシル基を生じる。カップリング：ヌクレオシドホスホルアミダイト（もしくはいくつかのホスホルアミダイトの混合物）は、酸性アゾール触媒、テトラゾール、２−エチルチオテトラゾール、２−ベンジルチオテトラゾール、４，５−ジシアノイミダゾール、もしくは多くの類似の化合物によって活性化される。この混合物は、５’−ヒドロキシル基は、入ってくるヌクレオシドホスホルアミダイトの活性化ホスホルアミダイト部分と反応して、ホスファイトトリエステル結合を形成する、出発固体支持体（第１のカップリング）もしくはオリゴヌクレオチド前駆体（カップリング後）と接触した状態にされる。上記ホスホルアミダイトカップリングは、無水アセトニトリル中で行われ得る。結合していない試薬および副生成物は、洗浄によって除去され得る。

上記固体支持体に結合した５’−ＯＨ基のうちのわずかなパーセンテージ（０．１〜１％）は、反応しないままであり、（ｎ−１）ショートマー（ｓｈｏｒｔｍｅｒ）と一般にいわれる内部塩基欠失を有するオリゴヌクレオチドの形成を防止するために、さらなる鎖伸長から永久的にブロックされるべきである。これは、無水酢酸の混合物および１−メチルイミダゾールを触媒として使用する、反応していない５’−ヒドロキシ基のアセチル化によって行われる。過剰な試薬は、洗浄によって除去される。

新たに形成される３配位（ｔｒｉｃｏｏｒｄｉｎａｔｅｄ）ホスファイトトリエステル結合は、オリゴヌクレオチド合成の条件下で制限された安定性がある。上記固体支持体に結合した物質の、弱塩基（ピリジン、ルチジン、もしくはコリジン）の存在下でのヨウ素および水での処理は、上記ホスファイトトリエステルを４配位ホスフェートトリエステル（天然に存在するホスフェートジエステルヌクレオシド間結合の保護された前駆体）へと酸化する。この工程は、オリゴヌクレオチドホスホロチオエートを得るために、硫化工程と置換され得る。後者の場合、上記硫化工程は、キャッピングの前に行われる。鎖アセンブリの完了の際に、上記生成物は、上記固相から溶液へと遊離され得、脱保護され得、集められ得る。生成物は、高純度の所望のオリゴヌクレオチドを得るために、ＨＰＬＣによって単離され得る。

一実施形態において、上記ハイブリダイズした核酸は、上記サンプル核酸に付着される１種以上の標識を検出することによって検出される。上記標識は、多くの方法のうちのいずれかによって組み込まれ得る。一例において、上記標識は、上記サンプル核酸の調製において増幅工程の間に同時に組み込まれる。従って、例えば、標識プライマーもしくは標識ヌクレオチドを用いたポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）は、標識された増幅生成物を提供する。一実施形態において、上記のように、標識ヌクレオチド（例えば、フルオレセイン標識ＵＴＰおよび／もしくはＣＴＰ）を使用する転写増幅は、標識を転写される核酸に組み込む。あるいは、標識は、元の核酸サンプル（例えば、ｍＲＮＡ、ポリＡ ｍＲＮＡ、ｃＤＮＡなど）もしくは増幅が完了した後にその増幅生成物に直接付加され得る。標識を核酸に付着させる手段は、当業者に周知であり、上記核酸のキナーゼ処理、および上記サンプル核酸を標識（例えば、フルオロフォア）に結合する核酸リンカーのその後の付着（ライゲーション）による、例えば、ニックトランスレーションもしくは末端標識（例えば、標識ＲＮＡで）を含む。使用に適した検出可能な標識は、分光的、光化学的、生化学的、免疫化学的、電気的、光学的もしくは化学的な手段によって検出可能な任意の組成を含む。有用な標識としては、標識されたストレプトアビジン結合体での染色のためのビオチン、磁性ビーズ（例えば、ＤＹＮＡＢＥＡＤＳＴＭ）、蛍光色素（例えば、フルオレセイン、テキサスレッド、ローダミン、緑色蛍光タンパク質など）、放射標識（例えば、^３Ｈ、^１２５Ｉ、^３５Ｓ、^１４Ｃ、もしくは^３２Ｐ）、酵素（例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、ＥＬＩＳＡにおいて一般に使用される他のもの）、および比色標識（例えば、コロイド金、または着色ガラスもしくはプラスチック（例えば、ポリスチレン、ポリプロピレン、ラテックスなど）ビーズ）が挙げられる。このような標識の使用を教示する特許としては、以下が挙げられる：米国特許第３，８１７，８３７号；同第３，８５０，７５２号；同第３，９３９，３５０号；同第３，９９６，３４５号；同第４，２７７，４３７号；同第４，２７５，１４９号；および同第４，３６６，２４１号。このような標識を検出するための方法もまた、周知である。従って、例えば、放射標識は、写真フィルムもしくはシンチレーションカウンターを使用して検出され得、蛍光マーカーは、発せられた光を検出するために光検出器を使用して検出され得る。酵素標識は、代表的には、上記酵素を基材に提供し、上記基材上の酵素の作用によって生成される反応生成物を検出することによって検出され、比色標識は、着色された標識を単純に可視化することによって検出される。

上記標識は、ハイブリダイゼーションの前もしくは後に、上記標的（サンプル）核酸に付加され得る。いわゆる「直接標識」は、ハイブリダイゼーション前に、上記標的（サンプル）核酸に直接結合されるかまたは組み込まれる検出可能な標識である。対照的に、いわゆる「間接」標識は、ハイブリダイゼーション後にハイブリッド二重鎖に結合される。しばしば、上記間接標識は、上記ハイブリダイゼーション前に上記標的核酸に付着された結合部分に付着される。従って、例えば、上記標的核酸は、上記ハイブリダイゼーション前にビオチン化され得る。ハイブリダイゼーション後、アビジン結合体化フルオロフォアが、ビオチンを有するハイブリッド二重鎖に結合し、容易に検出される標識を提供する（Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｖｏｌ． ２４：Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ Ｗｉｔｈ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｐｒｏｂｅｓ， Ｐ． Ｔｉｊｓｓｅｎ， ｅｄ． Ｅｌｓｅｖｉｅｒ， Ｎ．Ｙ．， １９９３を参照のこと）。

核酸ハイブリダイゼーションは、変性プローブおよび標的核酸を、上記プローブおよびその相補的な標的が相補的塩基対形成を介して安定なハイブリッド二重鎖を形成し得る条件下で提供することを包含する。次いで、ハイブリッド二重鎖を形成しない核酸は、代表的には、付着した検出可能な標識の検出を介して検出されるべきハイブリダイズした核酸を残して洗い流される。温度を上昇させるかもしくは上記核酸を含む緩衝液の塩濃度を低下させることによって、核酸が変性されることは、一般に認識される。低ストリンジェンシー条件（例えば、低温および／もしくは高い塩）下で、ハイブリッド二重鎖（例えば、ＤＮＡ：ＤＮＡ、ＲＮＡ：ＲＮＡ、もしくはＲＮＡ：ＤＮＡ）は、アニールした配列が完全に相補的でない場合すら形成する。従って、ハイブリダイゼーションの特異性は、より低いストリンジェンシーで低下する。逆に、より高いストリンジェンシー（例えば、より高温もしくはより低い塩）では、首尾良いハイブリダイゼーションは、より少ないミスマッチを要する。当業者は、ハイブリダイゼーション条件が、異なる程度のストリンジェンシーを提供するように設計され得ることを認識する。

一般に、ハイブリダイゼーション特異性（ストリンジェンシー）とシグナル強度との間には、二律背反が存在する。従って、一実施形態において、洗浄は、一貫した結果を生じ、かつバックグラウンド強度の約１０％より高いシグナル強度を与える最高のストリンジェンシーにおいて行われる。従って、上記ハイブリダイズしたアレイは、逐次的により高いストリンジェンシー溶液において洗浄され得、各洗浄の間に読み取られ得る。このように生成されるデータセットの分析から、洗浄ストリンジェンシーが明らかになり、これを上回ると、上記ハイブリダイゼーションパターンが目に見えるほどには変化せず、目的の特定のオリゴヌクレオチドプローブについての適切なシグナルを提供する。これら工程は、市販のアレイシステムについて標準化された。

上記ハイブリダイゼーション結果を評価するための方法は、使用される特異的プローブ核酸の性質、および提供されるコントロールに伴って変動する。一実施形態において、各プローブの蛍光強度の単純な定量化が決定される。これは、アレイ上の各場所（異なるプローブを表す）におけるプローブシグナル強度を測定することによって単純に達成される（例えば、上記標識は、蛍光標識であり、蛍光の量（強度）の検出は、上記アレイ上の各位置における固定された励起照度（ｆｉｘｅｄ ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ ｉｌｌｕｍｉｎａｔｉｏｎ）によって生成される場合）。「試験」サンプル（例えば、未知の予後を有する被験体由来の前立腺癌組織）に由来する核酸にハイブリダイズしたアレイの絶対強度と、「コントロール」サンプル（例えば、同じ患者由来の正常前立腺組織）によって生成される強度との比較から、上記プローブの各々にハイブリダイズする核酸の相対的発現の尺度が提供される。

Ｂ．タンパク質の検出
核酸の検出の代わりとして、もしくは核酸の検出に加えて、タンパク質は、ウェスタンブロット、免疫組織化学、ＥＬＩＳＡ、もしくは質量分析のような慣用的方法を使用して検出され得る。いくつかの例において、タンパク質は、検出前に精製される。一例において、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの少なくとも１種は、上記生物学的サンプルを、上記タンパク質に特異的に結合する抗体とインキュベートすることによって検出される。別の例において、表１に開示される遺伝子のうちの少なくとも１種は、上記生物学的サンプルを、上記タンパク質に特異的に結合する抗体とインキュベートすることによって検出される。一次抗体は、検出可能な標識を含み得る。例えば、一次抗体は、直接標識され得るか、または上記サンプルは、標識されている二次抗体（例えば、蛍光標識で）とその後にインキュベートされ得る。次いで、例えば、顕微鏡検査、ＥＬＩＳＡ、フローサイトメトリー、もしくは分光測光によって上記標識が検出され得る。別の例において、上記生物学的サンプルは、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの少なくとも１種、または表１に開示される遺伝子のうちの少なくとも１種の発現を検出するために、ウェスタンブロッティングによって分析される。

上記抗体もしくは二次抗体に適した標識としては、種々の酵素、補欠分子族、蛍光物質、発光物質、磁性因子および放射活性物質が挙げられる。適した酵素の非限定的な例としては、以下が挙げられる：西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、もしくはアセチルコリンエステラーゼ。適した補欠分子族複合体の非限定的な例としては、ストレプトアビジン：ビオチンおよびアビジン：ビオチンが挙げられる。適切な蛍光物質の非限定的な例としては、以下が挙げられる：ウンベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、ダンシルクロリドもしくはフィコエリトリン。非限定的で例示的な発光物質は、ルミノールであり；非限定的で例示的な磁性因子は、ガドリニウムであり、非限定的で例示的な放射活性標識としては、^１２５Ｉ、^１３１Ｉ、^３５Ｓもしくは^３Ｈが挙げられる。

例示的で市販される抗体としては、以下が挙げられる：ＴＰＸ２抗体（例えば、カタログ番号 ｓｃ−２６２７５、ｓｃ−２７１５７０、およびｓｃ−２６２７３（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ， ＣＡ）；カタログ番号 ａｂ３２７９５およびａｂ７１８１６（Ａｂｅａｍ， Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ， ＭＡ））、ＫＩＦ１１抗体（例えば、カタログ番号 ｓｃ−３１６４４およびｓｃ−６６８７２（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）；カタログ番号 ａｂ３７００９およびａｂ３７８１４， Ａｂｅａｍ））；ＺＷＩＬＣＨ抗体（例えば、カタログ番号 ｓｃ−６６３０２およびｓｃ−１３５６１５（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）；カタログ番号 ａｂｌ０１４０３およびａｂ５７５３３（Ａｂｅａｍ））；ＭＹＣ抗体（例えば、カタログ番号 ｓｃ−７０４６８およびｓｃ−７０４６３（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ））；ＤＥＰＤＣ１抗体（例えば、カタログ番号 ｓｃ−１６４１７０およびｓｃ−８６１１５（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）；カタログ番号 ａｂ５７５９１およびａｂ７６６４７（Ａｂｅａｍ））；ＣＤＣＡ３抗体（例えば、カタログ番号 ｓｃ−１３４６２５（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）；カタログ番号 ａｂ６９６０８およびａｂ５７７９５（Ａｂｅａｍ））；ＨＭＧＢ２抗体（例えば、カタログ番号 ｓｃ−８７５８およびｓｃ−２７１６８９（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）；カタログ番号 ａｂ６１１６９およびａｂ６４８６１（Ａｂｃａｍ））；ならびにＣＤＣ２０抗体（例えば、カタログ番号 ａｂ２６４８３、ａｂ６４８７７、およびａｂＩ８２１７（Ａｂｃａｍ））。当業者は、他の適切な抗体を同定もしくは生成し得る。

代替例において、タンパク質発現は、検出可能な物質で標識された標準および所望のタンパク質（例えば、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、もしくはＣＤＣ２０、または表１に開示される遺伝子のうちの１種）を特異的に結合する標識されていない抗体を利用する競合的イムノアッセイによって、生物学的サンプル中でアッセイされ得る。このアッセイにおいて、上記生物学的サンプル（例えば、組織生検材料、組織生検材料から単離された細胞、血液、もしくは尿）、上記標識された標準、および上記所望のタンパク質に特異的に結合する抗体が合わされ、上記標識されていない抗体に結合される標識された標準の量が決定される。上記生物学的サンプル中のタンパク質の量は、上記目的のタンパク質に特異的に結合する抗体に結合した標識標準物の量に逆比例する。

（Ｖ．アレイ）
本明細書に提供される詳細な実施形態において、アレイは、遺伝子発現を評価するために、例えば、癌（例えば、前立腺癌）を有する患者を予後決定するために使用される。表１に列挙される遺伝子のうちの１種以上に特異的なプローブもしくはプライマーから本質的になるアレイを記載する場合、このようなアレイは、これら遺伝子に特異的なプローブもしくはプライマーを含み、コントロールプローブを（例えば、インキュベーション条件が十分であることを確認するために）さらに含み得る。いくつかの例において、上記アレイは、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの１種以上に対して特異的な１種以上（例えば、１種、２種、３種、４種、５種、６種、７種、もしくは８種）のプローブもしくはプライマーを含み得るかもしくはこれらから本質的になり得、１種以上のコントロールプローブをさらに含み得る。他の例において、上記アレイは、表１に開示される遺伝子のうちの１種以上に対して特異的な１種以上のプローブもしくはプライマーを含み得るかもしくはこれらから本質的になり得、１種以上のコントロールプローブをさらに含み得る。例示的なコントロールプローブとしては、ＧＡＰＤＨ、アクチン、および１８Ｓ ＲＮＡが挙げられる。一例において、アレイは、マルチウェルプレート（例えば、９６ウェルもしくは３８４ウェルプレート）である。

一例において、上記アレイは、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０を認識し得るプローブもしくはプライマー（例えば、オリゴヌクレオチドもしくは抗体）を含むか、これらから本質的になるか、またはこれらからなる。上記プローブもしくはプライマーは、上記プローブと標的配列（例えば、本明細書で開示される遺伝子のうちの１種）との間の特異的結合の検出を可能にするために、１種以上の検出可能な標識をさらに含み得る。

上記アレイの固体支持体は、有機ポリマーから形成され得る。固体支持体に適切な物質としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない：ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリブチレン、ポリイソブチレン、ポリブタジエン、ポリイソプレン、ポリビニルピロリドン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリビニニデンジフルオリド、ポリフルオロエチレン−プロピレン、ポリエチレンビニルアルコール、ポリメチルペンテン、ポリクロロトリフルオロエチレン（ｐｏｌｙｃｈｏｌｏｒｏｔｒｉｆｌｕｏｒｏｅｔｈｙｌｅｎｅ）、ポリスルホン、ヒドロキシル化二軸配向性ポリプロピレン、アミノ化二軸配向性ポリプロピレン、チオール化二軸配向性ポリプロピレン、エチレンアクリル酸、エチレンメタクリル酸、およびこれらのコポリマーのブレンド（米国特許第５，９８５，５６７号を参照のこと）。

一般に、上記固体支持体表面を形成するために使用され得る物質の適切な特徴としては、以下が挙げられる：活性化の際に、上記支持体の表面がオリゴヌクレオチドのような生体分子と共有結合することができるように、表面活性化の影響を受けやすいこと；生体分子の「インサイチュ」合成に従いやすいこと；上記オリゴヌクレオチドもしくはタンパク質（例えば、抗体）によって占有されない上記支持体上の領域において、非特異的結合の影響を受けにくいように、または非特異的結合が起こる場合に、このような物質が、上記オリゴヌクレオチドもしくはタンパク質（例えば、抗体）を除去することなく、上記表面から容易に除去され得るように、化学的に不活性であること。

別の例において、表面活性化有機ポリマーは、上記固体支持体表面として使用される。表面活性化有機ポリマーの一例は、高周波プラズマ放電（ｒａｄｉｏ ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ ｐｌａｓｍａ ｄｉｓｃｈａｒｇｅ）を介してアミノ化されたポリプロピレン物質である。他の反応性の基もまた、使用され得る（例えば、カルボキシル化、ヒドロキシル化、チオール化、もしくは活性エステル基）。

広範な種類のアレイ形式が、本開示に従って使用され得る。一例は、オリゴヌクレオチドバンド、ペプチド、もしくは抗体の線形アレイ（一般には、当該分野でディップスティックといわれる）を含む。別の適した形式は、別個にセルの二次元パターン（例えば、６４×６４アレイでは４０９６マス）を含む。当業者によって認識されるように、スロット（矩形）および円形のアレイが挙げられるが、これらに限定されない他のアレイ形式は、使用に等しく適している（米国特許第５，９８１，１８５号を参照のこと）。いくつかの例において、上記アレイは、マルチウェルプレートである。一例において、上記アレイは、ポリマー媒体（これは、糸、膜もしくはフィルムである）上に形成される。有機ポリマー媒体の例は、約１ミル（０．００１インチ）〜約２０ミルの程度の厚みを有するポリプロピレンシートであるが、上記フィルムの厚みは重要でなく、かなり広い範囲にわたって変動し得る。上記アレイは、二軸配向性ポリプロピレン（ＢＯＰＰ）フィルムを含み得、上記フィルムは、それらの耐久性に加えて、低いバックグラウンド蛍光を示す。

本開示のアレイ形式は、種々の異なるタイプの形式において含められ得る。「形式」は、上記固体支持体が固定され得る任意の形式（例えば、マイクロタイタープレート（例えば、マルチウェルプレート）、試験管、無機シート、ディップスティックなど）を含む。例えば、上記固体支持体がポリプロピレン糸である場合、１本以上のポリプロピレン糸が、プラスチックディップスティックタイプデバイスに固定され得；ポリプロピレン膜がガラススライドに固定され得る。上記特定の形式は、それ自体重要ではない。上記固体支持体が、上記固体支持体の挙動にも、そこに吸収されるいかなるバイオポリマーの挙動にも影響を及ぼすことなく固定され得ること、および上記形式（例えば、ディップスティックもしくはスライド）が、上記デバイスが導入される任意の物質（例えば、臨床サンプルおよびハイブリダイゼーション溶液）に対して安定であることが、必要な全てである。

本開示のアレイは、種々のアプローチによって調製され得る。一例において、オリゴヌクレオチドもしくはタンパク質配列は、別個に合成され、次いで、固体支持体に付着される（米国特許第６，０１３，７８９号を参照のこと）。別の例において、所望のアレイを提供するために、上記支持体上に直接配列が合成される（米国特許第５，５５４，５０１号を参照のこと）。固体支持体にオリゴヌクレオチドおよびタンパク質を共有結合させるために、ならびに上記支持体上にオリゴヌクレオチドもしくはタンパク質を直接合成するために適した方法は、当業者に公知である；適した方法のまとめは、Ｍａｔｓｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ａｎａｌ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２１７：３０６−１０， １９９４において見いだされ得る。一例において、上記オリゴヌクレオチドは、固体支持体上にオリゴヌクレオチドを調製するための従来の化学技術（例えば、ＰＣＴ出願ＷＯ ８５／０１０５１およびＷＯ ８９／１０９７７、または米国特許第５，５５４，５０１号）を使用して、上記支持体上に合成される。

適切なアレイは、所定のパターンにおいて４種の塩基の前駆体を置くことによって、上記アレイのセルにオリゴヌクレオチドを合成するように生成され得る。簡潔には、マルチチャネル自動化化学送達システムは、上記基材にわたって、並行した行（上記送達システムにおけるチャネルの数に対応する）においてオリゴヌクレオチドプローブ集団を作製するために使用される。第１の方向においてオリゴヌクレオチド合成が完了した後、上記基材は、次いで、９０°だけ回転されて、合成して第２の行のセット内に進められ、これは、上記第１のセットに対して垂直である。このプロセスは、その交点が複数の別個のセルを生成するマルチチャネルアレイを作り出す。

上記オリゴヌクレオチドは、上記オリゴヌクレオチドの３’末端もしくは上記オリゴヌクレオチドの５’末端のいずれかによって、上記ポリプロピレン支持体に結合される。一例において、上記オリゴヌクレオチドは、３’末端によって、上記固体支持体に結合される。しかし、当業者は、上記オリゴヌクレオチドの３’末端もしくは５’末端の使用が、上記固体支持体に固定するために適しているか否かを決定し得る。一般に、３’末端および５’末端の領域におけるオリゴヌクレオチドプローブの内部相補性は、上記支持体への結合を決定する。

詳細な例において、上記アレイ上のオリゴヌクレオチドプローブは、１種以上の標識を含み、上記標識は、オリゴヌクレオチドプローブ：標的配列ハイブリダイゼーション複合体の検出を可能にする。

（ＶＩ．診断キット）
本明細書に記載される方法は、前立腺癌を有する被験体の予後を提供するために、例えば、少なくとも１種の特異的核酸プローブを含む診断キット（これは、例えば、臨床状況において便利に使用され得る）を利用することによって行われ得る。このようなキットは、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、および／もしくはＣＤＣ２０の発現を決定するにあたって使用され得る１種以上の成分を収容する、パッケージ、ボックス、バッグ、もしくは他の容器の形態において提供され得る。このようなキットはまた、標識試薬、酵素（ＰＣＲ増幅試薬（例えば、ＴａｑもしくはＰｆｕ））；逆転写酵素、ならびに上記方法の性能を促進するさらなる緩衝液および溶液を含み得る。

診断キットは、タンパク質に特異的に結合する試薬（例えば、抗体）を含み得る。このようなキットは、１種以上の特異的抗体、緩衝液、および特異的エピトープへの上記抗体の結合を検出するように構成された他の試薬を含む。上記抗体のうちの１種以上は、蛍光標識、酵素標識、磁性標識、金属標識、化学標識、または特異的に結合した抗体の存在を示しそして／もしくはその場所を突き止める他の標識で、標識され得る。上記キットはまた、他の抗体上のエピトープを特異的に認識する１種以上の二次抗体を含み得る。これら二次抗体はまた、標識され得る。二次抗体の概念はまた、別の抗体のエピトープもしくは標識を特異的に結合する非抗体リガンドを包含する。例えば、ストレプトアビジンもしくはアビジンは、別の抗体に結合体化されるビオチンに結合し得る。このようなキットはまた、上記キットに含まれる１種以上の抗体に結合体化される酵素の存在下で、色もしくは数種の他の特性を変化させる酵素基質を含み得る。

キットは、基材物質に結合される試薬として提供され得る。例えば、上記キットは、ポリスチレンプレートに結合される抗体もしくは他のタンパク質試薬を含み得る。あるいは、上記キットは、基材（ここで基材は、核酸（例えば、オリゴヌクレオチド）が、単一で、もしくはマイクロアレイ形式のいずれかにおいて、固定され得るか、付着され得るかもしくはプリントされ得る任意の固体もしくは半固体の物質であり得る）に結合される核酸（例えば、オリゴヌクレオチド）を含み得る。

診断キットはまた、上記被験体が前立腺癌において好ましくない予後を有することを示す、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、および／もしくはＣＤＣ２０の発現の閾値レベルの指標を含み得る。指標は、上記発現の閾値レベルの任意の伝達であり得る。上記指標は、上記発現の閾値レベルを上回るＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、および／もしくはＣＤＣ２０の発現が、上記被験体が好ましくない予後を有することを示すということをさらに示し得る。上記閾値レベルの指標は、上記被験体が、好ましくない予後を有するという高い、中程度もしくは低いリスクを有する、システムにおける複数の段階で提供され得る。上記指標は、任意の数の段階を含み得る。上記指標は、ＥＬＩＳＡアッセイにおける光学密度、タンパク質濃度（例えば、ｎｇ／ｍｌ）、ＣＣＲ６を発現する細胞のパーセンテージ、または陽性コントロール、陰性コントロール、もしくはハウスキーピング遺伝子と比較した発現の倍数（ｆｏｌｄ）として、上記発現の閾値を数字で示し得る。上記指標は、目でもしくは機器を介して、上記サンプルにマッチさせようと意図している陽性コントロールもしくは陰性コントロールであり得る。上記指標は、ゲル電気泳動を介して上記サンプルと比較されるべきサイズマーカーであり得る。

上記指標は、任意の具体的な表現媒体を介して伝達され得る。それは、パッケージ材料、別個の紙片、もしくは任意の他の基材にプリントされ得、上記キットとともに提供され得、上記キットとは別個に提供され得、インターネット上に投稿され得、ソフトパッケージに書かれ得る。上記指標は、特に、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、および／もしくはＣＤＣ２０の発現が、インサイチュハイブリダイゼーション、ＦＡＣＳ分析、もしくは免疫組織化学の使用を介して決定される場合、画像（例えば、ＦＡＣＳ画像、写真もしくは顕微鏡写真、またはこれらのうちの任意のコピーもしくは他の複製品）を含み得る。

上記診断手順は、核酸精製が必要ないように、血液塗抹標本上（固定および／もしくは凍結）、または組織生検材料上に直接「インサイチュ」で行われ得る。サンプルに由来するＤＮＡもしくはＲＮＡは、当業者に周知である手順を使用して単離され得る。

目的の核酸、すなわち、ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、および／もしくはＣＤＣ２０をコードする核酸に特異的である核酸試薬は、このようなインサイチュ手順のためのプローブおよび／もしくはプライマーとして使用するためにこれら遺伝子の配列を考慮して、容易に生成され得る（例えば、Ｎｕｏｖｏ， Ｇ． Ｊ．， １９９２， ＰＣＲ ｉｎ ｓｉｔｕ ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ：ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ａｎｄ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ， Ｒａｖｅｎ Ｐｒｅｓｓ， ＮＹを参照のこと）。

以下の実施例は、開示される方法の例示である。本開示に鑑みて、当業者は、これら実施例のバリエーションおよび開示される方法の他の実施例が、過度の実験なく可能であることを認識する。

（実施例１：アンドロゲン非依存性前立腺癌細胞増殖に関与する遺伝子の同定）
１）アンドロゲンなしの血清中で増殖させたが、合成アンドロゲンであるＤＨＴ（ジヒドロテストステロン）で刺激した去勢感受性前立腺癌細胞株ＬＮＣａＰおよびその去勢抵抗性前立腺癌由来細胞株（Ａｂｌ）に由来するアンドロゲンレセプターＣｈＩＰ（クロマチン免疫沈降）−チップマイクロアレイデータ； ２）アンドロゲンなしの血清中で増殖させたＬＮＣａＰ細胞およびＡｂｌ細胞におけるアンドロゲンレセプターもしくは非標的コントロールのＲＮＡｉ媒介性抑制後の遺伝子発現プロフィール； ならびに３）アンドロゲンなしの血清中で増殖させたＬＮＣａＰ細胞もしくはＡｂｌ細胞へのＤＨＴもしくはビヒクルの添加の後の遺伝子発現プロフィール（Ｗａｎｇら、Ｃｅｌｌ １３８：２４５−２５６． ２０ ２００９）、からの公開されたデータを分析した。

多くの遺伝子は、アンドロゲンレセプターのＲＮＡｉ媒介性抑制に際して差次的発現を示した。上記差次的発現のうちのいくらかは、上記ＬＮＣａＰ株もしくはＡｂｌ株のうちの一方において起こったが、他方では起こらなかった。しかし、差次的発現を示した遺伝子のうちの大部分は、両方の株において示された。

上記アンドロゲンレセプターによって制御されることが公知の遺伝子のうちの少数が、ＡＲのＲＮＡｉ抑制に伴ってより低い発現を示した。これら同じ遺伝子のうちのいくらかは、アンドロゲンの添加に伴ってより高い発現を示した（図１；レーン３およびレーン４ 対 レーン１およびレーン２）。さらに、ＡＲを、ＣｈＩＰアッセイにおいてアンドロゲンの非存在下でこれらアンドロゲン非依存性遺伝子に結合させ、ＬＮＣａＰ細胞もしくはＡｂｌ細胞へのアンドロゲンの添加は、これら遺伝子へのＡＲ結合を増大させなかった。このことは、アンドロゲン非依存性ＡＲシグナル伝達が、去勢感受性前立腺癌細胞においてすら機能し、これら経路もまた、去勢抵抗性前立腺癌細胞に関連することを実証する。

図１における分析から同定された上記アンドロゲン非依存性ＡＲ標的遺伝子の各々の発現を、前立腺癌増殖を促進する遺伝子を同定するために抑制した。これを、ＲＡＰＩＤ（ＲＮＡｉ補助タンパク質標的同定）、ハイスループット、９６ウェルプレートＲＮＡｉアッセイ（Ｔｙｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ５， ８６９５−８７００ （２００９）（本明細書に参考として援用される））を使用して達成した。目的の候補アンドロゲン非依存性ＡＲ標的遺伝子もしくは非標的コントロール（ＮＴＣ）のｓｉＲＮＡにつき３種の異なるｓｉＲＮＡを、アンドロゲンなしの血清中で増殖させたＬＮＣａＰ細胞へと導入した。細胞生存度を、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ ９６（登録商標） ＡＱｕｅｏｕｓ Ｏｎｅ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ細胞増殖アッセイ（Ｐｒｏｍｅｇａ； Ｍａｄｉｓｏｎ， ＷＩ）を使用して定量した。代表的プレートからの結果を、図２に示す。

細胞増殖において混乱を引き起こす、使用した上記３種のｓｉＲＮＡのうちの少なくとも２種を有するという基準を満たす２１個の遺伝子を、各プレートについてのメジアン細胞生存度を下回る１標準偏差超において評価した。これら遺伝子を、表１に列挙する。これらのうち、１０種の遺伝子（ＤＥＰＤＣ１、ＴＰＸ２、ＡＵＲＫＢ、ＭＹＣ、ＭＣＭ７、ＤＢＦ４、ＢＡＲＤ １、ＣＤＣ２０、ＤＮＭ２、およびＫＩＦ１１）のＲＮＡｉ抑制はまた、去勢抵抗性前立腺癌Ａｂｌ細胞の増殖を妨害した。それらの結果は、図２に示される。ＱＲＴＰＣＲから、ＬＮＣａＰ細胞およびＣＲＰＣ Ａｂｌ細胞の両方においてＡＲのＲＮＡｉ媒介性抑制は、これら遺伝子のうちの全ての発現を低下させることが確認された。上記データを、図３にまとめる。

（実施例２：アンドロゲン非依存性ＡＲ標的遺伝子の予後的影響）
診断時の前立腺腫瘍におけるＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、ＣＤＣ２０、ＡＵＲＫＢ、ＭＣＭ７、ＤＢＦ４、ＢＡＲＤ１、ＣＤＣ２０、およびＤＮＭ２の各々の発現レベルを、域外値分析を使用して、前立腺癌サンプルからの公開された遺伝子発現プロフィールにおいて分析した（Ｔａｙｌｏｒら、Ｃａｎｃｅｒ Ｃｅｌｌ １８：１１−２２， ２０１０；ｃｂｉｏｐｏｒｔａｌ．ｏｒｇ／ｃｇｘ／ｉｎｄｅｘ．ｄｏ（本明細書に参考として援用される））。変化したＴＰＸ２もしくはＫＩＦ１１を有する腫瘍は、上記のＴａｙｌｏｒら参考文献中のデータセットにおいてＴＰＸ２（図４Ａ）もしくはＫＩＦ１１（図４Ｂ）の発現の最高の十分位数を有する腫瘍である。ＴＰＸ２もしくはＫＩＦ１１の発現が変化した腫瘍を有する被験体は、発現が変化していない患者より短い無再発生存を有した。

上記閾値を上回る、腫瘍におけるＴＰＸ２の発現は、患者が少なくとも７０ヶ月以内に再発するという１００％の可能性を示した。上記閾値を上回る、上記腫瘍におけるＫＩＦ１１の発現は、患者が１２０ヶ月以内に再発するという６０％の可能性を示した。

例えば、ＴＰＸ２の発現の閾値レベルを選択する１つの方法は、前立腺癌を有する少なくとも５０名、少なくとも７５名、少なくとも１００名、少なくとも１５０名、少なくとも２００名、もしくは２００名を超える患者の腫瘍サンプルを選択して、ＴＰＸ２ ｍＲＮＡの発現を定量し、ＴＰＸ２のｍＲＮＡ発現に関してサンプルの上位１０％を選択し、そしてＴＰＸ２発現に関してサンプルの上位１０％からなる群の最低の発現レベルにおいて発現の閾値レベルを設定することである。

この実施例は、ＴＰＸ２ ｍＲＮＡの発現を定量するための任意の方法（本明細書で開示される任意のこのような方法を含む）に関して機能する。

（実施例３：前立腺癌を有する被験体の予後）
この実施例は、前立腺癌と診断された被験体の予後を決定するために使用され得る特定の代表的方法を記載する。しかし、当業者は、本明細書で提供される教示に基づいて、これら具体的方法から逸脱した方法もまた、前立腺癌を有する被験体の予後を首尾良く提供するために使用され得ることを認識する。

腫瘍サンプルは、上記被験体から得られる。約１〜１００μｇの組織を、例えば、細針吸引物を使用して、各サンプルタイプについて得た。ＲＮＡおよび／もしくはタンパク質を、慣用的方法を使用して（例えば、市販のキットを使用して）、上記腫瘍サンプルから単離する。

上記前立腺腫瘍の予後を、マイクロアレイ分析もしくはリアルタイム定量的ＰＣＲによって、被験体から得られる腫瘍サンプル中のＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの１種以上の発現レベルを検出することによって、決定する。上記腫瘍サンプル中のＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの１種以上の相対的発現レベルを、発現の閾値レベルと比較する。発現の閾値レベルの１つのタイプは、コントロールにおける発現（例えば、上記被験体の隣接する非腫瘍組織から単離されるＲＮＡ）であり得る。他の場合において、上記発現の閾値レベルは、参照値（例えば、健康な被験体もしくは癌被験体の群から得られる非腫瘍サンプル中に存在するこのような分子の相対的な量）である。好ましくは、上記発現の閾値レベルは、予後の決定において、上記試験の感度および選択性を最大化する。

ＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のうちの１以上の相対的発現を、当業者に公知の方法（例えば、タンパク質マイクロアレイ、ウェスタンブロット、もしくはイムノアッセイ技術）によって、上記タンパク質レベルで決定される。総タンパク質を、上記腫瘍サンプルから単離し、任意の適切な技術を使用して、コントロール（例えば、上記被験体の隣接する非腫瘍組織から単離されるタンパク質もしくは参照値）と比較する。

上記発現の閾値レベルを超える（約１．５倍、約２倍、約２．５倍、約３倍、約４倍、約５倍、約７倍もしくは約１０倍）上記腫瘍サンプル中のＴＰＸ２、ＫＩＦ１１、ＺＷＩＬＣＨ、ＭＹＣ、ＤＥＰＤＣ１、ＣＤＣＡ３、ＨＭＧＢ２、およびＣＤＣ２０のＲＮＡもしくはタンパク質のうちの１種以上もしくは全ての発現は、好ましくない予後（例えば、治療（例えば、ＡＤＴ）に対する抵抗性、もしくは上記治療に対する抵抗性のリスク、または再発するかもしくは転移を発生させる可能性）を示す。

上記試験の結果は、上記試験の結果についての情報を提供する認知できる出力物においてユーザー（例えば、臨床医もしくは他のヘルスケア従事者、実験室の人員、または患者）に提供される。いくつかの例において、上記出力物は、紙出力物（例えば、書面によるかもしくは印刷された出力物）、スクリーン上の表示、図表による出力物（例えば、グラフ、チャート、もしくは他の模式図）、または聞き取れる出力物であり得る。他の例において、上記出力物は、数値（例えば、上記サンプル中の１種以上の遺伝子の発現の量、またはコントロールと比較した場合、上記サンプル中の１種以上の遺伝子の相対量）である。詳細な例において、上記発現の閾値レベルを示すかもしくは提供する出力物（例えば、図表による出力物）は、上記サンプル中の１種以上の遺伝子の発現の値もしくはレベルが、上記発現の閾値レベルを上回る場合に好ましくない予後を、および上記サンプル中の１種以上の遺伝子の発現の値もしくはレベルが上記発現の閾値レベルを下回る場合に良好な予後を示す。いくつかの例において、上記出力物は、ユーザーに、例えば、物理的な、聞き取れるか、または電子通信（例えば、メール、電話、ファックスによる伝送、ｅメール、または電子媒体記録への伝送によって）を介する出力を提供することによって、伝達される。

上記出力物は、定量的情報（例えば、内部コントロール、外部コントロール、もしくは発現の閾値レベルに対する遺伝子発現の量もしくは遺伝子発現）を提供し得るか、または定性的情報（例えば、予後）を提供し得る。さらなる例において、上記出力物は、上記サンプル中の遺伝子発現の相対量に関する定性的情報を提供し得る（例えば、コントロールと比較して、１種以上のタンパク質における増大の存在を同定する）。

いくつかの例において、上記出力は、データ（例えば、予後を示す数字的限界もしくは他の限界）を解釈するためのガイドラインに付随する。上記出力における指標は、上記出力物の受容者が、予後もしくは処置プランに到達するために、上記結果を解釈するために使用し得る、例えばカットオフの正常もしくは異常な範囲を含み得る。他の例において、上記出力物は、１種以上のホルモン療法、放射線療法、化学療法、もしくはこれらの２種以上の組み合わせの選択のような、推奨される治療レジメンを（例えば、遺伝子発現の量もしくはコントロールと比較した遺伝子発現の増大の量に基づいて）提供し得る。

本開示の原理が適用され得る多くの考えられる実施形態に鑑みれば、例示される実施形態が、単なる例であることは認識されるべきであり、本発明の範囲を限定するとは理解されるべきでない。むしろ、本発明の範囲は、以下の特許請求の範囲によって定義される。

Claims (29)

1. 前立腺癌を有する被験体が再発するか否かを予測するための方法であって、該方法は、
   該被験体からサンプルを得る工程であって、ここで該生物学的サンプルは、前立腺癌細胞を含む、工程；
   該サンプル中の配列番号１、配列番号３、配列番号４、配列番号５、配列番号７、配列番号１１、配列番号１７、および配列番号２０から選択されるヌクレオチドの遺伝子産物の発現のレベルを決定する工程；ならびに
   該遺伝子産物の発現のレベルと、発現の閾値レベルとを比較する工程；
   を包含し、ここで該発現の閾値レベルを超える該遺伝子産物の発現のレベルは、該被験体が再発することを示す、方法。
2. 前記遺伝子産物は、ｍＲＮＡを含み、前記発現のレベルを決定する工程は、ノーザンブロッティング、インサイチュハイブリダイゼーション、ＲＮＡｓｅ保護アッセイ、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応、リアルタイム逆転写ポリメラーゼ連鎖反応、定量的リアルタイム逆転写ポリメラーゼ連鎖反応、遺伝子発現の連続分析（ＳＡＧＥ）、広範囲並行シグナチャー配列決定法、マイクロアレイ分析、および次世代配列決定法による定量的ＲＮＡコピー数分析から選択される方法を含む、請求項１に記載の方法。
3. 前記ヌクレオチドは、配列番号４であり、前記発現のレベルは、マイクロアレイ分析を使用して決定される、請求項２に記載の方法。
4. 前記発現の閾値レベルは、サンプルのセット中の配列番号４の発現を定量し；該サンプルのセットから、配列番号４の最高の発現を有するサンプルのサブセットを選択し；そして該発現の閾値レベルとして配列番号４の最低の発現を有する該サブセットのメンバーの発現のレベルを選択することによって、決定される、請求項３に記載の方法。
5. 前記発現の閾値レベルは、サンプルのセット中の配列番号４の発現を定量し；該サンプルのセットから、配列番号４の最高の発現を有するサンプルのサブセットを選択し；そして該発現の閾値レベルとして該サブセットのメンバーの発現のメジアンレベルを設定することによって、決定される、請求項３に記載の方法。
6. 前記サンプルのサブセットは、配列番号４の発現に関して、サンプルの上位十分位数である、請求項４および５に記載の方法。
7. 前記遺伝子産物は、タンパク質を含み、前記発現レベルを決定する工程は、バイオマーカーを、前記生物学的サンプルを含む混合物に特異的に結合させ得る試薬を添加する工程を包含する、請求項１に記載の方法。
8. 前記試薬は、抗体を含む、請求項７に記載の方法。
9. 前記試薬は、標識を含む、請求項７に記載の方法。
10. 前記発現レベルを決定する工程は、ＥＬＩＳＡ、イムノブロット、フローサイトメトリー、免疫組織化学、ラジオイムノアッセイ、ウェスタンブロット、免疫蛍光アッセイ、ポリアクリルアミドゲルシフトアッセイ、および化学発光アッセイから選択される方法を含む、請求項８または９に記載の方法。
11. 前記発現レベルを決定する工程は、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ質量分析法、ＬＣ／Ｑ−ＴＯＦ−ＥＳＩタンデム質量分析法、核磁気共鳴分光法、二次元ポリアクリルアミド・ゲル電気泳動法、およびドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミド・ゲル電気泳動法から選択される方法を含む、請求項１に記載の方法。
12. 前記サンプル中の前記遺伝子産物の発現のレベルと、同じ被験体に由来する非癌性細胞のものとを比較する工程をさらに包含する、請求項１に記載の方法。
13. 前記非癌性組織は、前記前立腺癌細胞を含む前記サンプルに由来する、請求項１２に記載の方法。
14. 予測される前記再発は、処置後７０ヶ月未満で起こる、請求項１に記載の方法。
15. 予測される前記再発は、処置後１ヶ月〜３０ヶ月の間に起こる、請求項１０に記載の方法。
16. 前記被験体は、ヒトである、請求項１に記載の方法。
17. 請求項１に記載の方法を実行するのに使用されるキットであって、該キットは、
    配列番号１、配列番号３、配列番号４、配列番号５、配列番号７、配列番号１１、配列番号１７、および配列番号２０から選択されるヌクレオチドの遺伝子産物に特異的に結合する第１の試薬；ならびに
    該遺伝子産物の発現の閾値レベルの指標であって、ここで該発現の閾値レベルを超える該遺伝子産物の発現のレベルは、被験体が再発することを示す、指標
    を含む、キット。
18. 前記遺伝子産物は、ｍＲＮＡであり、前記第１の試薬は、該遺伝子産物の全てもしくは一部に相補的である核酸を含む、請求項１７に記載のキット。
19. 前記第１の試薬は、第１のオリゴヌクレオチドを含む、請求項１８に記載のキット。
20. 前記第１のオリゴヌクレオチドは、核酸増幅における使用のために構成されたオリゴヌクレオチドプライマーである、請求項１９に記載のキット。
21. 前記第１のオリゴヌクレオチドは、定量的逆転写ポリメラーゼ連鎖反応における使用のために構成されたオリゴヌクレオチドプローブである、請求項１６に記載のキット。
22. 前記第１のオリゴヌクレオチドは、標識を含む、請求項２１に記載のキット。
23. 前記第１のオリゴヌクレオチドは、固体支持体に固定される、請求項１９に記載のキット。
24. 前記固体支持体に固定された第２のオリゴヌクレオチドをさらに含み、複数の前記オリゴヌクレオチドは、アレイを形成するように配置される、請求項２３に記載のキット。
25. 前記遺伝子産物は、タンパク質であり、前記第１の試薬は、抗体である、請求項１７に記載のキット。
26. 前記第１の試薬は、標識を含む、請求項２５に記載のキット。
27. 第２の試薬をさらに含み、該第２の試薬は、前記第１の試薬を特異的に結合する、請求項２５または２６に記載のキット。
28. 前記指標は、数値を含む、請求項１７に記載のキット。
29. 前記指標は、前記発現の閾値レベルのものに類似の結果を提供するように構成されたコントロールを含む、請求項１７に記載のキット。