JP2013063923A - Production method of liposome preparation - Google Patents

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To produce a liposome preparation having a high drug encapsulation efficiency by an active drug encapsulation method.SOLUTION: The production method of the liposome preparation includes a liposome formation process of forming an empty liposome containing a salt of triterpene glycoside and/or its aglycone in an inner aqueous phase, and a drug encapsulation process of introducing a drug into the inner aqueous phase of the liposome after the liposome formation process.

Description

本発明は、ドラッグデリバリーシステムに有用なリポソーム製剤の製造方法に関する。   The present invention relates to a method for producing a liposome preparation useful for a drug delivery system.

微粒子を担体とするドラッグデリバリーの開発が近年盛んに行なわれている。特にリポソームは最も注目されている微粒子担体の一つであり、既に多くのリポソーム製剤が市販されている。リポソーム製剤は、薬物の選択的な標的部位への送達および非選択的な体内分布の抑制を可能とする。そのため、治療効果の向上および副作用の低減につながり、患者のＱｕａｌｉｔｙ ｏｆ Ｌｉｆｅ（ＱＯＬ）の向上に寄与している。   In recent years, drug delivery using fine particles as a carrier has been actively developed. In particular, liposomes are one of the most noticeable particulate carriers, and many liposome preparations are already on the market. Liposomal formulations allow for drug delivery to a selective target site and non-selective biodistribution. Therefore, it leads to improvement of therapeutic effect and reduction of side effects, and contributes to improvement of patient quality of life (QOL).

リポソームは、リン脂質を主な膜構成成分とし、生体膜同様に脂質二重膜構造を有する。リポソームに薬物を封入する場合、一般的に、脂質二重膜と親和性の高い脂溶性の薬物は脂質二重膜内に、水溶性の薬物は脂質二重膜内の水相（内水相）に局在する。脂質二重膜に薬物が局在する場合、薬物封入効率は、リン脂質の種類およびリポソームの粒子径に依存する。一方、内水相に薬物が局在する場合、薬物封入効率は、リポソーム膜構成成分の組成および内水相組成に影響される。これは、膜構成成分組成や内水相組成により、脂質二重膜に対する薬物の透過性が変化するためである。   Liposomes contain phospholipids as the main membrane constituents and have a lipid bilayer structure similar to biological membranes. When encapsulating a drug in a liposome, generally, a lipid-soluble drug having a high affinity with a lipid bilayer is contained in the lipid bilayer, and a water-soluble drug is an aqueous phase (inner aqueous phase) in the lipid bilayer. ). When the drug is localized in the lipid bilayer membrane, the drug encapsulation efficiency depends on the type of phospholipid and the particle size of the liposome. On the other hand, when a drug is localized in the inner aqueous phase, the drug encapsulation efficiency is affected by the composition of the liposome membrane constituent and the inner aqueous phase composition. This is because the permeability of the drug to the lipid bilayer varies depending on the membrane component composition and the inner aqueous phase composition.

リポソームへの薬物封入方法は、リポソーム形成時に薬物を封入する受動的薬物封入方法と、リポソーム形成後に薬物を封入する能動的薬物封入方法との二つの方法に大別される。一般的に、受動的薬物封入方法は脂溶性の高い薬物や膜透過性の低い薬物において採用される封入方法であり、リポソーム内水相あるいはリポソーム二重膜内への単純分配に依存する方法であるため、薬物封入効率は低い。従って、薬剤封入効率を向上させるためには能動的薬物封入方法を用いることが望まれるが、そのためには、薬物として水溶性の薬物を選択し、リポソーム形成後に外液に添加された薬物が脂質二重膜を透過し、さらに内水相に保持されることが必要である。   Methods for encapsulating drugs in liposomes can be broadly divided into two methods: a passive drug encapsulation method in which a drug is encapsulated during liposome formation, and an active drug encapsulation method in which a drug is encapsulated after liposome formation. In general, the passive drug encapsulation method is an encapsulation method used for drugs with high liposolubility and drugs with low membrane permeability, and is a method that relies on simple distribution into the aqueous phase of liposomes or the liposome bilayer membrane. Therefore, the drug encapsulation efficiency is low. Therefore, in order to improve the drug encapsulation efficiency, it is desirable to use an active drug encapsulation method. For this purpose, a water-soluble drug is selected as the drug, and the drug added to the external solution after the liposome formation is a lipid. It is necessary to permeate the double membrane and to be retained in the inner aqueous phase.

能動的薬物封入方法として、硫酸アンモニウムや硫酸マグネシウム等の水溶液を内水相溶液としてリポソームを形成し、リポソーム外液を中性緩衝液に置換することで、リポソーム内外でｐＨ勾配を形成し、ｐＨ勾配による駆動力を利用して薬物を封入させる方法がある（特許文献１）。この方法によれば、リポソーム外で膜透過形態（分子型）として存在する薬物がｐＨ勾配に従って脂質二重膜を透過し、リポソーム内に移動したとき、ｐＨの変化によって非膜透過形態（イオン型）へと変換され、イオン型へと変換された薬物は再度リポソーム外へ拡散することなく内水相に保持される。従って、高い薬物封入効率が得られるとともに、リポソーム製剤製造後においても生体外および生体内において高い薬物保持力を持つリポソーム製剤が得られる。   As an active drug encapsulation method, an aqueous solution of ammonium sulfate or magnesium sulfate is used as an inner aqueous phase solution to form liposomes, and the liposome outer solution is replaced with a neutral buffer solution to form a pH gradient inside and outside the liposome. There is a method of encapsulating a drug using the driving force of (Patent Document 1). According to this method, when a drug that exists as a membrane permeation form (molecular type) outside the liposome permeates the lipid bilayer according to the pH gradient and moves into the liposome, a non-membrane permeation form (ion type) is caused by a change in pH. ), And the drug converted into an ionic form is retained in the inner aqueous phase without diffusing out of the liposome again. Accordingly, high drug encapsulation efficiency can be obtained, and a liposome preparation having high drug retention in vitro and in vivo can be obtained even after production of the liposome preparation.

特開平２−１９６７１３号公報Japanese Patent Laid-Open No. 2-196713

能動的薬物封入方法においては、リポソームの内水相が非常に重要な役割を果たす。これまでに、上述の硫酸アンモニウム、硫酸マグネシウム等を内水相として使用する例のほかに、デキストラン硫酸およびその誘導体を用いる例が報告されている。しかしながら、能動的薬物封入方法に用いることのできる内水相の組成の報告は少ないのが現状である。そこで、本発明は、能動的薬物封入方法に用いることのできる内水相の組成について検討し、能動的薬物封入方法により高い薬物封入効率を有するリポソーム製剤を製造するための方法を提供する。   In the active drug encapsulation method, the internal aqueous phase of the liposome plays a very important role. So far, examples using dextran sulfate and its derivatives have been reported in addition to the above examples using ammonium sulfate, magnesium sulfate and the like as the inner aqueous phase. However, there are few reports on the composition of the inner aqueous phase that can be used in the active drug encapsulation method. Therefore, the present invention examines the composition of the inner aqueous phase that can be used in the active drug encapsulation method, and provides a method for producing a liposome preparation having high drug encapsulation efficiency by the active drug encapsulation method.

本発明者は、能動的薬物封入方法に用いることのできる内水相の組成について鋭意検討を重ねた結果、トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩を内水相に含むと、能動的薬物封入方法により高い薬物封入効率を有するリポソーム製剤を製造することができることを知得し、本発明を完成させた。   As a result of intensive studies on the composition of the inner aqueous phase that can be used in the active drug encapsulation method, the present inventor has found that an active drug can be obtained when a triterpene glycoside and / or aglycone salt thereof is contained in the inner aqueous phase. It was learned that a liposome preparation having high drug encapsulation efficiency can be produced by the encapsulation method, and the present invention was completed.

すなわち、本発明は以下に掲げる（１）〜（３）を提供する。
（１）トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩を内水相に含むリポソームを形成するリポソーム形成工程と、
前記リポソーム形成工程の後に、前記リポソームの内水相に薬物を導入する薬物封入工程と
を備えるリポソーム製剤の製造方法。
（２）上記薬物が、ドキソルビシン（ＤＸＲ）、ビンクリスチン（ＶＣＲ）、シプロフロキサシン（ＣＦＸ）およびビノレルビン（ＶＮＲ）からなる群から選択されるいずれか１つである、上記（１）に記載の製造方法。
（３）上記トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩が、グリチルリチン酸のアンモニウム塩またはカリウム塩である、上記（１）または（２）に記載の製造方法。 That is, the present invention provides the following (1) to (3).
(1) a liposome forming step of forming a liposome containing a triterpene glycoside and / or aglycone salt thereof in an inner aqueous phase;
A method for producing a liposome preparation, comprising a drug encapsulation step of introducing a drug into the internal aqueous phase of the liposome after the liposome formation step.
(2) The drug according to (1), wherein the drug is any one selected from the group consisting of doxorubicin (DXR), vincristine (VCR), ciprofloxacin (CFX), and vinorelbine (VNR). Production method.
(3) The production method according to (1) or (2) above, wherein the triterpene glycoside and / or its aglycone salt is an ammonium salt or potassium salt of glycyrrhizic acid.

本発明によれば、高い薬物封入効率を有し、かつ担体からの薬物放出を制御しうるリポソーム製剤を製造することができ、薬物の副作用を低減するとともに治療効果を高めることができる。   According to the present invention, a liposome preparation having high drug encapsulation efficiency and capable of controlling drug release from a carrier can be produced, and side effects of the drug can be reduced and the therapeutic effect can be enhanced.

図１は、実施例３、４および比較例５の、ラット血漿中におけるリポソーム製剤からのビンクリスチン（ＶＣＲ）放出挙動を表すグラフである。FIG. 1 is a graph showing the vincristine (VCR) release behavior from liposome formulations in rat plasma of Examples 3 and 4 and Comparative Example 5.

本発明は、トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩を内水相に含むリポソームを形成するリポソーム形成工程と、当該リポソーム形成工程の後に、当該リポソームの内水相に薬物を導入する薬物導入工程とを備えるリポソーム製剤の製造方法（以下「本発明のリポソーム製剤の製造方法」という場合がある。）を提供する。   The present invention relates to a liposome forming step for forming a liposome containing a triterpene glycoside and / or an aglycon salt thereof in an inner aqueous phase, and a drug introduction for introducing a drug into the inner aqueous phase of the liposome after the liposome forming step. A method for producing a liposome preparation comprising the steps (hereinafter sometimes referred to as “the method for producing the liposome preparation of the present invention”).

上記リポソーム形成工程により形成されるリポソームは、上記薬物封入工程により薬物を封入すると、高い薬物封入効率をもつリポソーム製剤を製造することができ、このリポソーム製剤を患者の治療に用いると、薬物の副作用を低減するとともに治療効果を高めることができる。   The liposome formed by the liposome formation step can produce a liposome preparation having high drug encapsulation efficiency when the drug is encapsulated by the drug encapsulation step. When this liposome preparation is used for treatment of a patient, the side effect of the drug Can be reduced and the therapeutic effect can be enhanced.

［リポソーム製剤］
リポソーム製剤とは、薬物が封入された状態のリポソームをいう。 [Liposome preparation]
The liposome preparation refers to a liposome in which a drug is encapsulated.

１．リポソーム
リポソームは、リン脂質二重膜で形成される閉鎖小胞であり、その小胞空間内に水相（内水相）を含む。リポソームは、通常、膜を隔てて、閉鎖小胞内の水相（内水相）と閉鎖小胞外の水相（外水相）とが存在する懸濁液の状態で存在する。リポソームの膜構造は、脂質二重膜の１枚層からなるユニラメラ小胞（Ｕｎｉｌａｍｅｌｌａｒ Ｖｅｓｉｃｌｅ）および多重ラメラ小胞（Ｍｕｌｔｉｌａｍｅｌｌａｒ Ｖｅｓｉｃｌｅ，ＭＬＶ）、またユニラメラ小胞としてＳＵＶ（Ｓｍａｌｌ Ｕｎｉｌａｍｅｌｌａｒ Ｖｅｓｉｃｌｅ）、ＬＵＶ（Ｌａｒｇｅ Ｕｎｉｌａｍｅｌｌａｒ Ｖｅｓｉｃｌｅ）などが知られている。本発明では、膜構造は特に制限されない。
本発明においては、特に断らない限り、「リポソーム」は、リン脂質二重膜および内水相のいずれにも薬物（例えば、抗がん剤、抗生物質その他の薬物をいう。）が導入されていないリポソーム、すなわち空リポソームをいうものとする。 1. Liposomes Liposomes are closed vesicles formed of a phospholipid bilayer membrane, and contain an aqueous phase (inner aqueous phase) in the vesicle space. Liposomes usually exist in the form of a suspension in which there is an aqueous phase inside the closed vesicle (inner aqueous phase) and an aqueous phase outside the closed vesicle (outer aqueous phase) across the membrane. The membrane structure of the liposome is composed of a monolayer of lipid bilayers (Unilamellar Vesicles) and multilamellar vesicles (MLV), or SUV (Small Unimolecular Cellular) or LUV (Large). Unilamellar Vecicle) is known. In the present invention, the film structure is not particularly limited.
In the present invention, unless otherwise specified, “liposomes” have drugs (for example, anticancer agents, antibiotics and other drugs) introduced into both the phospholipid bilayer membrane and the inner aqueous phase. No liposomes, ie empty liposomes.

（１）リポソーム膜構成成分
リン脂質は、一般的に、分子内に長鎖アルキル基より構成される疎水基とリン酸基等で構成される親水基を持つ両親媒性物質である。リン脂質としては、例えば、ホスファチジルコリン（レシチン）、ホスファチジルグリセロール、フォスファチジン酸、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリンおよびホスファチジルイノシトールのようなグリセロリン脂質、スフィンゴミエリンのようなスフィンゴリン脂質、カルジオリピンのような天然または合成のジホスファチジル系リン脂質およびこれらの誘導体、さらには、これらを常法に従って水素添加したもの（例えば、水素添加大豆ホスファチジルコリン（ＨＳＰＣ））等を用いることができる。これらのうちでも、ＨＳＰＣ等の水素添加されたリン脂質、スフィンゴミエリン等が好ましい。 (1) Liposome membrane constituents Phospholipids are generally amphipathic substances having a hydrophobic group composed of a long-chain alkyl group and a hydrophilic group composed of a phosphate group or the like in the molecule. Phospholipids include, for example, glycerophospholipids such as phosphatidylcholine (lecithin), phosphatidylglycerol, phosphatidic acid, phosphatidylethanolamine, phosphatidylserine and phosphatidylinositol, sphingophospholipids such as sphingomyelin, natural or cardiolipin Synthetic diphosphatidyl phospholipids and derivatives thereof, and those obtained by hydrogenating them according to a conventional method (for example, hydrogenated soybean phosphatidylcholine (HSPC)) can be used. Among these, hydrogenated phospholipids such as HSPC, sphingomyelin and the like are preferable.

リポソームは、上記リン脂質とともに、その構造を保持し得る限りにおいて、その他の膜構成成分を含むことができる。当該その他の膜構成成分としては、例えば、コレステロールや飽和・不飽和脂肪酸などのリン脂質以外の脂質およびその誘導体が挙げられる。さらには、リポソームの細胞内輸送を促進するために、標的細胞表面に存在する受容体に対して特異的に結合するための基質あるいはリガンドを含むことができる。   Liposomes can contain other membrane components together with the phospholipids as long as the structure can be maintained. Examples of the other membrane constituents include lipids other than phospholipids such as cholesterol and saturated / unsaturated fatty acids and derivatives thereof. Furthermore, in order to promote intracellular transport of liposomes, a substrate or a ligand for specifically binding to a receptor present on the surface of a target cell can be included.

リン脂質の量は、リポソームの膜を構成する脂質全体中、通常、２０〜１００ｍｏｌ％であり、好ましくは４０〜１００ｍｏｌ％である。また、その他の膜構成成分の量は、通常、０〜８０ｍｏｌ％であり、好ましくは０〜６０ｍｏｌ％である。   The amount of phospholipid is usually 20 to 100 mol%, preferably 40 to 100 mol%, in the whole lipid constituting the liposome membrane. Moreover, the quantity of another film | membrane structural component is 0-80 mol% normally, Preferably it is 0-60 mol%.

本発明において、上記成分から構成されるリポソーム膜は、親水性高分子によりリポソーム表面が修飾されることが好ましい。リポソーム表面を修飾するために用いられる親水性高分子としては、特に限定されないがポリエチレングリコール類、ポリポロピレングリコール類、ポリグリセリン類、フィコール、ポリビニルアルコール、スチレン−無水マレイン酸交互共重合体、ジビニルエーテル−無水マレイン酸交互共重合体、ポリビニルピロリドン、ポリビニルメチルエーテル、ポリビニルメチルオキサゾリン、ポリエチルオキサゾリン、ポリヒドロキシプロピルオキサゾリン、ポリヒドロキシプロピルメタアクリルアミド、ポリメタアクリルアミド、ポリジメチルアクリルアミド、ポリヒドロキシプロピルメタアクリレート、ポリヒドロキシエチルアクリレート、ヒドロキシメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ポリアスパルトアミド、合成ポリアミノ酸などが挙げられる。   In the present invention, the liposome membrane composed of the above components is preferably modified on the liposome surface with a hydrophilic polymer. The hydrophilic polymer used for modifying the liposome surface is not particularly limited, but polyethylene glycols, polypropylene glycols, polyglycerols, ficoll, polyvinyl alcohol, styrene-maleic anhydride alternating copolymer, Vinyl ether-maleic anhydride alternating copolymer, polyvinyl pyrrolidone, polyvinyl methyl ether, polyvinyl methyl oxazoline, polyethyl oxazoline, polyhydroxypropyl oxazoline, polyhydroxypropyl methacrylamide, polymethacrylamide, polydimethylacrylamide, polyhydroxypropyl methacrylate, Polyhydroxyethyl acrylate, hydroxymethylcellulose, hydroxyethylcellulose, polyaspartamide, synthetic polyamid Such as acid, and the like.

これらの中でも、リポソーム製剤の血中滞留性を改善する効果が高いものとして、ポリエチレングリコール類、ポリグリセリン類、ポリプロピレングリコール類が好ましく、中でもポリエチレングリコール（ＰＥＧ）は最も汎用されており、特に好ましい。ＰＥＧの分子量は、特に限定されないが、通常、５００〜１０，０００ダルトン、好ましくは１，０００〜７，０００ダルトン、より好ましくは２，０００〜５，０００である。なお、このような親水性高分子は、片末端がアルコキシ化（例えば、メトキシ化、エトキシ化、プロポキシ化）されているものが、保存安定性に優れることから好ましい。   Among these, polyethylene glycols, polyglycerins, and polypropylene glycols are preferred as those having a high effect of improving the retention in the blood of the liposome preparation. Among these, polyethylene glycol (PEG) is most commonly used and particularly preferred. The molecular weight of PEG is not particularly limited, but is usually 500 to 10,000 daltons, preferably 1,000 to 7,000 daltons, and more preferably 2,000 to 5,000. As such a hydrophilic polymer, one having one end alkoxylated (for example, methoxylation, ethoxylation, propoxylation) is preferable because of excellent storage stability.

親水性高分子脂質誘導体の脂質（疎水性部分）としては、たとえばリン脂質、長鎖脂肪族アルコール、ステロール、ポリオキシプロピレンアルキル、またはグリセリン脂肪酸エステル等が挙げられる。具体的に、親水性高分子がＰＥＧである場合には、ＰＥＧのリン脂質誘導体またはコレステロール誘導体が挙げられる。このリン脂質は、ホスファチジルエタノールアミンが好ましく挙げられ、そのアシル鎖は通常、Ｃ_１４−Ｃ_２０程度の飽和脂肪酸、たとえばジパルミトイル、ジステアロイルあるいはパルミトイルステアロイルなどが挙げられる。たとえばＰＥＧのジステアロイルホスファチジルエタノールアミン誘導体（ＰＥＧ-ＤＳＰＥ）などは、入手容易な汎用化合物である。
親水性高分子によるリポソーム修飾率は、膜（総脂質）に対する親水性高分子量の割合として、通常０.１〜１０ｍｏｌ％、好ましくは０.１〜５ｍｏｌ％、より好ましくは０.２〜３ｍｏｌ％である。
本発明において、上記のような外表面選択的な親水性高分子による表面修飾率は、リポソーム膜成分の脂質全量に対する比率で、通常０．１〜２０ｍｏｌ％、好ましくは０．１〜５ｍｏｌ％、より好ましくは０．５〜５ｍｏｌ％である。 Examples of the lipid (hydrophobic portion) of the hydrophilic polymer lipid derivative include phospholipid, long-chain aliphatic alcohol, sterol, polyoxypropylene alkyl, glycerin fatty acid ester, and the like. Specifically, when the hydrophilic polymer is PEG, a phospholipid derivative or cholesterol derivative of PEG is exemplified. The phospholipid is preferably phosphatidylethanolamine, and the acyl chain is usually a saturated fatty acid of about C ₁₄ -C ₂₀ , such as dipalmitoyl, distearoyl or palmitoyl stearoyl. For example, distearoylphosphatidylethanolamine derivative of PEG (PEG-DSPE) is a readily available general-purpose compound.
The liposome modification rate with the hydrophilic polymer is usually 0.1 to 10 mol%, preferably 0.1 to 5 mol%, more preferably 0.2 to 3 mol%, as a ratio of the hydrophilic polymer weight to the membrane (total lipid). It is.
In the present invention, the surface modification rate by the hydrophilic polymer selective to the outer surface as described above is a ratio of the liposome membrane component to the total amount of lipid, usually 0.1 to 20 mol%, preferably 0.1 to 5 mol%, More preferably, it is 0.5-5 mol%.

（２）内水相
上記内水相は、トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩を含む溶液（本発明において、特に断りがない場合、「溶液」は「水溶液」をいうものとする。）である。
上記溶液は、上記塩を適当な溶媒に溶解して調製することができる。
上記溶媒としては、生体に適用実績があり、所定濃度のトリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩を溶解できるものであれば特に限定されない。このような溶媒としては、具体的には、例えば、酢酸塩水溶液、リン酸塩水溶液、炭酸塩水溶液、酢酸緩衝液、生理的重炭酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水等が挙げられる。 (2) Inner aqueous phase The inner aqueous phase is a solution containing a triterpene glycoside and / or its aglycone salt (in the present invention, unless otherwise specified, “solution” refers to an “aqueous solution”). ).
The solution can be prepared by dissolving the salt in a suitable solvent.
The solvent is not particularly limited as long as it has a record of application to living bodies and can dissolve a predetermined concentration of a triterpene glycoside and / or aglycone salt thereof. Specific examples of such a solvent include an aqueous acetate solution, an aqueous phosphate solution, an aqueous carbonate solution, an acetate buffer solution, a physiological bicarbonate buffer solution, and a phosphate buffered saline solution.

上記トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩は、トリテルペン配糖体の塩およびトリテルペン配糖体のアグリコンの塩からなる群から選択される少なくとも１つであれば特に限定されない。
トリテルペン配糖体は、いわゆるサポニン、より詳細にはトリテルペンサポニンである。
トリテルペン配糖体の塩としては、具体的には、例えば、グリチルリチン酸（グリチルリチンともいう。）；ジンセノシドＲｂ１、ジンセノシドＲｂ２、ジンセノシドＲｃ、ジンセノシドＲｄ、ジンセノシドＲｅ、ジンセノシドＲｆ、ジンセノシドＲｇ１、ジンセノシドＲｇ２等のジンセノシド類；のナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩；マグネシウム塩、カルシウム塩等のアルカリ土類金属塩；アンモニウム塩、テトラメチルアンモニウム塩等の第一級〜第四級アンモニウム塩；などが挙げられる。
トリテルペン配糖体の塩としては、より具体的には、例えば、グリチルリチン酸モノナトリウム、グリチルリチン酸ジナトリウム、グリチルリチン酸モノカリウム、グリチルリチン酸ジカリウム、グリチルリチン酸モノアンモニウム、グリチルリチン酸ジアンモニウム等が挙げられる。
本発明においては、トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩として、上記したもの等から、１種類を単独で、または２種類以上を組み合わせて使用することができる。 The triterpene glycoside and / or its aglycone salt is not particularly limited as long as it is at least one selected from the group consisting of a triterpene glycoside salt and a triterpene glycoside aglycone salt.
Triterpene glycosides are so-called saponins, more specifically triterpene saponins.
Specific examples of the salt of the triterpene glycoside include glycyrrhizic acid (also referred to as glycyrrhizin); ginsenoside Rb1, ginsenoside Rb2, ginsenoside Rc, ginsenoside Rd, ginsenoside Re, ginsenoside Rf, ginsenoside Rg1, ginsenoside Rg2, and the like. Ginsenosides; alkali metal salts such as sodium salts and potassium salts; alkaline earth metal salts such as magnesium salts and calcium salts; primary to quaternary ammonium salts such as ammonium salts and tetramethylammonium salts; It is done.
More specifically, examples of the salt of the triterpene glycoside include monosodium glycyrrhizinate, disodium glycyrrhizinate, monopotassium glycyrrhizinate, dipotassium glycyrrhizinate, monoammonium glycyrrhizinate, and diammonium glycyrrhizinate.
In the present invention, as the triterpene glycoside and / or its aglycon salt, one kind can be used alone or two or more kinds can be used in combination from the above.

２．薬物
薬物は特に限定されないが、両親媒性薬物が好ましい。具体的には、例えば、ドキソルビシン（ＤＸＲ）、ビンクリスチン（ＶＣＲ）、ビノレルビン（ＶＮＲ）、ニムスチン等の抗がん剤；シプロフロキサシン（ＣＦＸ）等の抗生物質（抗がん性抗生物質を除く）；などが挙げられる。
上記薬物は、リポソームの内水相に導入され、リポソーム製剤の内水相に含まれる。 2. Drug The drug is not particularly limited, but an amphipathic drug is preferable. Specifically, for example, anticancer agents such as doxorubicin (DXR), vincristine (VCR), vinorelbine (VNR), and nimustine; antibiotics such as ciprofloxacin (CFX) (excluding anticancer antibiotics) );
The drug is introduced into the inner aqueous phase of the liposome and contained in the inner aqueous phase of the liposome preparation.

本発明に係るリポソーム製剤は、既に形成されているリポソームの内水相に、外水相からリポソーム膜を透過して薬物を導入することにより製造されるものである。   The liposome preparation according to the present invention is produced by introducing a drug from the outer aqueous phase through the liposome membrane into the inner aqueous phase of the liposome already formed.

［リポソーム製剤の製造方法］
本発明のリポソーム製剤の製造方法は、製造工程として、リポソーム形成工程と薬物封入工程とを含み、さらに、所望により、均一化工程、不要成分除去工程、無菌化工程等を含んでもよい。 [Method for producing liposome preparation]
The method for producing a liposome preparation of the present invention includes a liposome formation step and a drug encapsulation step as production steps, and may further include a homogenization step, an unnecessary component removal step, a sterilization step and the like as desired.

１．リポソーム形成工程
本発明のリポソーム製剤の製造方法におけるリポソーム形成工程は、内水相として、トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩を含む溶液を使用することを特徴とする。 1. Liposome formation step The liposome formation step in the method for producing a liposome preparation of the present invention is characterized in that a solution containing a triterpene glycoside and / or an aglycon salt thereof is used as the inner aqueous phase.

リポソーム形成工程とは、リポソーム膜構成成分に水相（内水相）を加えることにより粒子径の整っていない粗リポソームを形成すること（粗リポソーム形成工程）と、その後に、粗リポソームを所望の粒子径に制御（整粒化）すること（整粒化工程）とを含み、リポソームを形成する工程である。   The liposome forming step is to form a rough liposome with a non-uniform particle size by adding an aqueous phase (inner aqueous phase) to the liposome membrane component (crude liposome forming step), and then to obtain a desired crude liposome. And controlling the particle size (sizing) (sizing step) to form liposomes.

（１）粗リポソーム形成工程／整粒化工程
粗リポソームの一般的な形成方法としては水和法（Ｂａｎｇｈａｍ法）、超音波処理法、逆相蒸発法などを用いた方法が既に報告されている。また、工業レベルでの実用化を指向したスケールでの製造方法としては、加温法、脂質溶解法などがある。また、内水相に保持する薬物量を多くするための方法として、ＤＲＶ法（Ｄｅｈｙｄｒａｔｅｄ／Ｒｅｈｙｄｒａｔｅｄ Ｖｅｓｉｃｌｅｓ）や凍結融解法なども報告されている。 (1) Crude liposome formation process / size control process As a general formation method of a rough liposome, the method using the hydration method (Bangham method), the ultrasonic treatment method, the reverse phase evaporation method, etc. has already been reported. . In addition, as a production method on a scale directed to practical use at an industrial level, there are a heating method and a lipid dissolution method. As a method for increasing the amount of drug retained in the inner aqueous phase, a DRV method (Dehydrated / Rehydrated Vesicles), a freeze-thaw method, and the like have been reported.

粒子径制御は、膜乳化および剪断力の持続を含む様々な公知の技術を用いて行うことができる。より具体的には、フィルターを複数回強制通過させる膜乳化法、高圧吐出型乳化機により高圧吐出させる高圧乳化法などがある。
何れの製造法もＧ．Ｇｒｅｇｏｒｉａｄｉｓ編「Ｌｉｐｏｓｏｍｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｌｉｐｏｓｏｍｅ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｒｅｌａｔｅｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ」２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ， Ｖｏｌ．Ｉ−ＩＩＩ、ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓにおいて公知であり、この記載を引用して本明細書に記載されているものとする。 Particle size control can be performed using various known techniques including membrane emulsification and shear force persistence. More specifically, there are a membrane emulsification method in which a filter is forced to pass a plurality of times, a high pressure emulsification method in which high pressure discharge is performed by a high pressure discharge type emulsifier.
Both production methods are G. Gregoriadis, “Liposome Technology Preparation and Related Techniques”, 2nd edition, Vol. It is known in I-III, CRC Press, and is described herein with reference to this description.

近年、新しい製造法としては、超高圧による圧縮からの速度変換を利用し、液相下でのジェット流により剪断乳化を行う方法（ジェット流乳化）や超臨界二酸化炭素を利用したリポソーム調製技術がある。また、粒子径制御工程を簡便化する改良型エタノール注入法などが知られている。本発明においてリポソーム形成工程は特に限定されず、上記のような公知の粗リポソーム形成方法および粒子径制御方法を組み合わせて用いることができる。   In recent years, new production methods include the method of shear emulsification by jet flow under the liquid phase (jet flow emulsification) and the preparation technology of liposomes using supercritical carbon dioxide. is there. Also known is an improved ethanol injection method that simplifies the particle size control process. In the present invention, the liposome formation step is not particularly limited, and the above-mentioned known rough liposome formation method and particle size control method can be used in combination.

（２）親水性高分子修飾工程
リポソーム形成工程は、さらに、親水性高分子修飾工程を含むことができる。
親水性高分子のリポソーム表面の修飾方法には、均一化工程時に親水性高分子を膜構成脂質と均一化し、リポソーム形成工程においてリポソーム表面に親水性高分子を修飾する方法と、リポソーム形成工程におけるリポソームの粒子径制御以降のリポソームに対して親水性高分子を修飾する方法があり、いずれの方法も本願発明に用いることができる。 (2) Hydrophilic polymer modification step The liposome forming step can further include a hydrophilic polymer modification step.
In the method of modifying the liposome surface of the hydrophilic polymer, the hydrophilic polymer is homogenized with the membrane-constituting lipid during the homogenization step, the hydrophilic polymer is modified on the liposome surface in the liposome formation step, and the liposome formation step. There is a method of modifying a hydrophilic polymer for liposomes after the liposome particle size control, and any method can be used in the present invention.

粒子径が制御され、整粒化されたリポソームの表面修飾をするために親水性高分子修飾工程を行う場合には、表面修飾は、具体的には、整粒化リポソーム分散液と、表面修飾剤溶液とを混合し、リポソーム膜構成成分に含まれるリン脂質の相転移点以上の温度で混合する。整粒化リポソーム分散液と親水性高分子溶液の混合は、整粒化工程終了直後から可能であり、混合までの時間は、工程上、許容される限り短い時間であることが好ましい。   When the hydrophilic polymer modification step is performed in order to modify the surface of the sized liposome with controlled particle size, the surface modification is specifically performed by the sized liposome dispersion and the surface modification. The agent solution is mixed and mixed at a temperature equal to or higher than the phase transition point of the phospholipid contained in the liposome membrane constituent. The granulated liposome dispersion and the hydrophilic polymer solution can be mixed immediately after the granulation step is completed, and the time until the mixing is preferably as short as possible in the process.

２．薬物封入工程
薬物封入工程では、リポソーム形成後に適切な溶媒に溶解した薬物溶液をリポソーム形成工程後のリポソームの外水相に添加し、リポソームのリン脂質膜の相転移点以上に加温して薬物を封入する。本発明では、このように、既に形成されているリポソームに薬物を封入する方法を、能動的薬物封入方法という。これに対して、リポソームの形成時に薬物を封入する方法を、受動的薬物封入方法という。 2. Drug Encapsulation Process In the drug encapsulation process, a drug solution dissolved in an appropriate solvent after liposome formation is added to the external aqueous phase of the liposome after liposome formation process, and the drug is heated by heating above the phase transition point of the phospholipid membrane of the liposome. Enclose. In the present invention, such a method of encapsulating a drug in the already formed liposome is referred to as an active drug encapsulation method. On the other hand, a method of encapsulating a drug at the time of liposome formation is called a passive drug encapsulation method.

本発明では、薬物はリポソームの内水相に導入される。
リポソームに封入できる薬物量の指標である薬物封入効率は、リポソーム膜構成成分のうちリン脂質（ＨＳＰＣ等）に対する封入薬物の質量比（薬物／リン脂質）で表すことができる。この数値が大きいほど薬物封入効率が高く、より多量の薬物を封入することができる。 In the present invention, the drug is introduced into the inner aqueous phase of the liposome.
The drug encapsulation efficiency, which is an index of the amount of drug that can be encapsulated in the liposome, can be represented by the mass ratio (drug / phospholipid) of the encapsulated drug to the phospholipid (HSPC or the like) among the liposome membrane components. The larger this value, the higher the drug encapsulation efficiency, and a larger amount of drug can be encapsulated.

３．均一化工程
均一化工程は、リポソーム膜構成成分を有機溶媒などで溶解し、各成分の分散状態を均一化する工程であり、通常リポソーム形成工程の前に行われる。膜構成成分として、リン脂質に加え、コレステロールなどの他の膜構成成分を含有する場合、脂質の不均一化を避けるため均一化工程をとる。単一の脂質を用いる場合、均一化工程は必須ではないが、均一化工程をとることが望ましい。 3. Homogenization step The homogenization step is a step of dissolving the liposome membrane constituents with an organic solvent or the like to homogenize the dispersion state of each component, and is usually performed before the liposome formation step. When the membrane component contains other membrane components such as cholesterol in addition to phospholipid, a homogenization step is taken in order to avoid heterogeneity of lipid. When a single lipid is used, a homogenization step is not essential, but it is desirable to take a homogenization step.

本発明において、均一化工程で用いられる均一化方法は特に限定されない。このような均一化方法としては、クロロホルムなどの有機溶媒を用いて完全溶解させ、真空乾燥することにより均一化する薄膜法や溶解後の液を凍結乾燥することにより均一化する方法が知られている。さらに、上述とは別にメタノールやエタノールなどのアルコール類に脂質を溶解して脂質を均一化する方法が知られている。   In the present invention, the homogenization method used in the homogenization step is not particularly limited. As such a homogenization method, a thin film method in which the solution is completely dissolved using an organic solvent such as chloroform and vacuum-dried and a method in which the solution is homogenized by freeze-drying are known. Yes. In addition to the above, there is known a method for homogenizing lipids by dissolving lipids in alcohols such as methanol and ethanol.

４．不要成分除去工程
不要成分除去工程とは、リポソーム外に存在する最終的に不必要な成分を除去する工程である。不要成分としては、例えば均一化工程において用いられるアルコール類等の有機溶媒、リポソーム形成時に使用する内水相、薬物導入後にリポソーム外液に残存する薬物などが挙げられる。 4). Unnecessary component removal step The unnecessary component removal step is a step of removing unnecessary components finally present outside the liposome. Examples of unnecessary components include organic solvents such as alcohols used in the homogenization step, an inner aqueous phase used during liposome formation, and a drug remaining in the liposome external solution after drug introduction.

不要成分除去工程は、製造方法の違いにより工程が複数になる場合があるが、これら除去工程は、リポソームと不要成分の分子量や粒子の大きさの違いを利用した方法が用いられ、具体的な手段としては、透析膜、ゲルろ過、限外濾過などが広く用いられている。   There are cases where the unnecessary component removal step has a plurality of steps due to differences in the production method, but these removal steps use a method utilizing the molecular weight and particle size difference between the liposome and the unnecessary component, and are specific. As means, dialysis membranes, gel filtration, ultrafiltration and the like are widely used.

本発明において、トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩を内水相としてリポソーム形成工程を行った後、当該塩を除去するため、リポソーム形成工程後に不要成分除去工程を行うことが好ましい。   In the present invention, after performing the liposome formation step using the triterpene glycoside and / or its aglycon salt as the inner aqueous phase and then removing the salt, it is preferable to perform the unnecessary component removal step after the liposome formation step.

５．無菌化工程
無菌化工程では、リポソーム製剤の滅菌を、通常、ろ過滅菌法によって行う。この無菌化の方法は、製剤に熱をかけずに無菌化できるので、製剤を安定な状態のまま無菌化することができる。ろ過は、最終的に孔径０．２２μｍ程度のメンブレンフィルターによって行われる。ただし、ろ過滅菌法が困難である場合は、無菌的に製造を行なうか、製剤の品質に影響しないように熱をかけて、滅菌する場合もある。 5. Sterilization process In the sterilization process, the liposome preparation is usually sterilized by a filtration sterilization method. In this sterilization method, the preparation can be sterilized without applying heat, so that the preparation can be sterilized in a stable state. Filtration is finally performed with a membrane filter having a pore size of about 0.22 μm. However, when the filtration sterilization method is difficult, it may be aseptically produced or sterilized by applying heat so as not to affect the quality of the preparation.

不要成分除去工程が複数回実施される場合（例えば、リポソーム形成後に外液置換と、薬物封入工程後に未封入薬物除去とを行う場合等がある。）、あるいは、上記製造工程に凍結乾燥工程（リポソームまたはリポソーム製剤を凍結乾燥する工程をいう。）等を組み込む場合があるが、工程の重複および目的とする製剤を調製するために必要な工程追加により本発明は影響を受けるものではない。   When the unnecessary component removal step is performed a plurality of times (for example, there are cases where external liquid replacement is performed after liposome formation and unencapsulated drug removal is performed after the drug encapsulation step), or a freeze-drying step ( This refers to a step of freeze-drying liposomes or liposome preparations.), Etc., but the present invention is not affected by the duplication of steps and the addition of steps necessary to prepare the target preparation.

以下に実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。   EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.

本実施例では、リポソーム製剤を製造し（実施例１〜４、比較例１〜５）、各リポソーム製剤について薬物封入効率の評価試験を実施した。さらに、薬物封入効率が高いリポソーム製剤の一部（実施例３、４、比較例５）について、血漿中における薬物保持力の評価試験も実施した。   In this example, liposome preparations were produced (Examples 1 to 4 and Comparative Examples 1 to 5), and an evaluation test of drug encapsulation efficiency was performed for each liposome preparation. Furthermore, an evaluation test of drug retention in plasma was also performed on some of the liposome preparations with high drug encapsulation efficiency (Examples 3 and 4 and Comparative Example 5).

［リポソーム製剤の製造］
１．試薬、試液等
（１）リポソーム形成用試薬等
・リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）タブレット： Sigma-Aldrich Corporation, MO
・酢酸アンモニウム： Kanto Chemical Co., Ltd., Japan
・グリチルリチン酸ジカリウム： Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Japan
・グリチルリチン酸モノアンモニウム−ｎ水和物： Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Japan
・水素添加大豆ホスファチジルコリン（ＨＳＰＣ）： Lipoid GmbH, Germany
・コレステロール： Solvay Pharmaceuticals, B.V., Belgium
・無水エタノール： Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Japan
・ＰＥＧ５０００−ＤＳＰＥ： NOF Corporation, Japan
（２）封入薬物
・ビンクリスチン（ＶＣＲ）： Changzhou LEO Chemical Co., Ltd., China
・ドキソルビシン（ＤＸＲ）： RPG Life Sciences Ltd., India
・シプロフロキサシン（ＣＦＸ）： Zhejiang Jiashan Chengda Pharm & Chem Co., Ltd., China
・ビノレルビン（ＶＮＲ）： Shanghai Anticancer Phytochemistry Co., Ltd., China [Production of liposome preparation]
1. Reagents, test solutions, etc. (1) Reagents for liposome formation, etc. Phosphate buffered saline (PBS) tablets: Sigma-Aldrich Corporation, MO
・ Ammonium acetate: Kanto Chemical Co., Ltd., Japan
・ Dipotassium glycyrrhizinate: Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Japan
-Monoammonium glycyrrhizinate-hydrate: Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Japan
・ Hydrogenated soybean phosphatidylcholine (HSPC): Lipoid GmbH, Germany
・ Cholesterol: Solvay Pharmaceuticals, BV, Belgium
-Absolute ethanol: Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Japan
・ PEG5000-DSPE: NOF Corporation, Japan
(2) Encapsulated drug, vincristine (VCR): Changzhou LEO Chemical Co., Ltd., China
・ Doxorubicin (DXR): RPG Life Sciences Ltd., India
-Ciprofloxacin (CFX): Zhejiang Jiashan Chengda Pharm & Chem Co., Ltd., China
・ Vinolerubin (VNR): Shanghai Anticancer Phytochemistry Co., Ltd., China

２．製造方法
一般的な製造方法を以下に説明する。
本実施例では、「２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」または「２−２．受動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に記載した一般的な製造方法に従って、実施例１〜４および比較例１〜５のリポソーム製剤を製造した。
リポソームの内水相の組成、封入した薬物その他の各実施例・比較例に固有の事項については、「３．製造例」の該当箇所で説明をする。 2. Manufacturing Method A general manufacturing method will be described below.
In this example, according to the general production method described in “2-1. Production method of liposome preparation by active drug encapsulation method” or “2-2. Production method of liposome preparation by passive drug encapsulation method”, The liposome preparations of Examples 1 to 4 and Comparative Examples 1 to 5 were produced.
The composition of the internal aqueous phase of the liposome, the encapsulated drug, and other items specific to each of the examples and comparative examples will be described in the corresponding section of “3. Production Examples”.

２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法
（１）均一化工程
ＨＳＰＣおよびコレステロールを、それぞれ、０．５６ｇ、０．２３ｇ遠沈管に量りとった。この遠沈管にエタノール１ｍＬを加えて、７０℃の水浴中で加温溶解した。
（２）リポソーム形成工程
内水相９ｍＬを７０℃の水浴中で加温した。均一化工程で得られた脂質溶液に加温した内水相を加えて、７０℃の水浴中で５分以上加温した。加温後、エクストルーダー法により整粒化を行った。なお、整粒化時のフィルターはポリカーボネート製メンブランフィルター（ワットマン社製）の孔径０．１μｍおよび０．２μｍを使用し、各フィルターにおける整粒化回数は、０．２μｍでは３回、０．１μｍについては１０回とした。この得られたリポソームに６５℃の水浴中で予め加温したＰＥＧ−５０００ＤＳＰＥ溶液（０．３０ｍｇ／ｍＬの水溶液）２ｍＬを加えて、引き続き３０分間加温し、ＰＥＧ修飾リポソームを得た。
（３）不要成分除去工程１（外液置換）
本工程は、ゲルろ過法を用いて行った。ゲル（Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ^（Ｒ） ４ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ，ＧＥヘルスケア社製）をカラムに充填した後、水で洗浄した。さらに、ＰＢＳ（外水相）でゲルを洗浄した後、ＰＥＧ修飾リポソームをアプライし、ＰＢＳを溶出液として用い、リポソーム画分を回収した。
（４）薬物封入工程
薬物を水で溶解して１０ｍｇ／ｍＬに調整する。調製した薬物溶液を、上記リポソーム画分２ｍＬをとり、ＨＳＰＣに対して所定の質量比（薬物／ＨＳＰＣ）で薬物を添加し、６０℃、６０分間加温し、薬物導入リポソームを得た。
（５）不要成分除去工程２（未封入薬物除去）
本工程は、ゲルろ過法を用いて行った。ゲル（Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ^（Ｒ） ４ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ，ＧＥヘルスケア社製）をカラムに充填した後、水で洗浄した。さらに、ＰＢＳでゲルを洗浄した後、薬物導入リポソームをアプライし、ＰＢＳを溶出液として用い、リポソーム画分を回収した。 2-1. Method for producing liposome preparation by active drug encapsulation method (1) Homogenization step HSPC and cholesterol were weighed into 0.56 g and 0.23 g centrifuge tubes, respectively. 1 mL of ethanol was added to the centrifuge tube and dissolved by heating in a 70 ° C. water bath.
(2) Liposome formation step 9 mL of the inner aqueous phase was heated in a 70 ° C water bath. The heated internal aqueous phase was added to the lipid solution obtained in the homogenization step, and the mixture was heated in a 70 ° C. water bath for 5 minutes or more. After heating, the particles were sized by the extruder method. In addition, the pore size of 0.1 μm and 0.2 μm of a polycarbonate membrane filter (manufactured by Whatman) was used as a filter during granulation. About 10 times. To the obtained liposomes, 2 mL of a PEG-5000DSPE solution (0.30 mg / mL aqueous solution) pre-warmed in a water bath at 65 ° C. was added and subsequently heated for 30 minutes to obtain PEG-modified liposomes.
(3) Unnecessary component removal step 1 (external liquid replacement)
This step was performed using a gel filtration method. After the gel ^{(Sepharose (R) 4 Fast Flow} , GE Healthcare Inc.) were filled into a column and washed with water. Furthermore, after washing the gel with PBS (outer aqueous phase), PEG-modified liposomes were applied, and the liposome fraction was collected using PBS as an eluent.
(4) Drug encapsulation step The drug is dissolved in water and adjusted to 10 mg / mL. 2 mL of the above-mentioned liposome fraction was taken from the prepared drug solution, the drug was added at a predetermined mass ratio (drug / HSPC) to HSPC, and the mixture was heated at 60 ° C. for 60 minutes to obtain drug-introduced liposomes.
(5) Unnecessary component removal step 2 (unencapsulated drug removal)
This step was performed using a gel filtration method. After the gel ^{(Sepharose (R) 4 Fast Flow} , GE Healthcare Inc.) were filled into a column and washed with water. Furthermore, after the gel was washed with PBS, drug-introduced liposomes were applied, and the liposome fraction was collected using PBS as an eluent.

２−２．受動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法
（１）均一化工程
ＨＳＰＣおよびコレステロールを、それぞれ０．２８ｇ、０．１１５ｇ遠沈管に量りとった。この遠沈管にエタノール０．５ｍＬを加えて、７０℃の水浴中で加温溶解した。
（２）リポソーム形成工程
薬物を含む内水相５ｍＬを７０℃の水浴中で加温した。均一化工程で得られた脂質溶液に加温した内水相を加えて、７０℃の水浴中で５分以上加温した。加温後、Ｅｘｔｒｕｄｅｒ Ｔ１０にて整粒化を行った。なお、整粒化時のフィルターはポリカーボネート製メンブランフィルター（ワットマン社製）の孔径０．１μｍおよび０．２μｍを使用し、各フィルターにおける整粒化回数は、０．２μｍでは３回、０．１μｍについては１０回とした。この得られたリポソームに６５℃の水浴中で予め加温したＰＥＧ−５０００ＤＳＰＥ溶液（０．３０ｍｇ／ｍＬの水溶液）１ｍＬを加えて、引き続き３０分間加温し、ＰＥＧ修飾薬物導入リポソームを得た。
（３）不要成分除去工程１（未封入薬物除去）
本工程は、ゲルろ過法を用いて行った。ゲル（Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ^（Ｒ） ４ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ，ＧＥヘルスケア社製）をカラムに充填した後、水で洗浄した。さらに、外水相でゲルを洗浄した後、ＰＥＧ修飾薬物導入リポソームをアプライし、外水相を溶出液として用い、リポソーム画分を回収した。 2-2. Method for producing liposome preparation by passive drug encapsulation method (1) Homogenization step HSPC and cholesterol were weighed into 0.28 g and 0.115 g centrifuge tubes, respectively. Ethanol 0.5mL was added to this centrifuge tube, and it heated and melt | dissolved in the 70 degreeC water bath.
(2) Liposome formation step 5 mL of the inner aqueous phase containing the drug was heated in a 70 ° C water bath. The heated internal aqueous phase was added to the lipid solution obtained in the homogenization step, and the mixture was heated in a 70 ° C. water bath for 5 minutes or more. After heating, the particles were sized with an Extruder T10. In addition, the pore size of 0.1 μm and 0.2 μm of a polycarbonate membrane filter (manufactured by Whatman) was used as a filter during granulation. About 10 times. To the obtained liposome, 1 mL of a PEG-5000DSPE solution (0.30 mg / mL aqueous solution) pre-warmed in a water bath at 65 ° C. was added, followed by heating for 30 minutes to obtain a PEG-modified drug-introduced liposome.
(3) Unnecessary component removal step 1 (unencapsulated drug removal)
This step was performed using a gel filtration method. After the gel ^{(Sepharose (R) 4 Fast Flow} , GE Healthcare Inc.) were filled into a column and washed with water. Furthermore, after the gel was washed with an external aqueous phase, PEG-modified drug-introduced liposomes were applied, and the external aqueous phase was used as an eluent to collect the liposome fraction.

３．製造例
実施例１〜４、比較例１、２および５については、「２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従って、比較例３、４については、「２−２．受動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に記載した一般的な製造方法に従って、それぞれ、リポソーム製剤を製造した。
以下、リポソームの内水相の組成、封入した薬物その他の各実施例・比較例に固有の事項について説明をする。 3. Production Example For Examples 1 to 4 and Comparative Examples 1, 2 and 5, according to “2-1. Method for producing liposome preparation by active drug encapsulation method”, for Comparative Examples 3 and 4, “2-2. In accordance with the general production method described in “Method for producing liposome preparation by passive drug encapsulation method”, each liposome preparation was produced.
Hereinafter, the composition of the internal aqueous phase of the liposome, the encapsulated drug, and other items unique to each of the examples and comparative examples will be described.

〈実施例１〉
実施例１は、酢酸アンモニウム水溶液にグリチルリチン酸モノアンモニウムを溶解した水溶液（ＧＬＺＡ／ＡｃＳ）を内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法によって薬物を封入した例である。
（１）内水相溶液の調製
酢酸アンモニウム３．８６ｇをとり、水を加えて溶かし２００ｍＬとして、酢酸アンモニウム水溶液を調製した。
調製した酢酸アンモニウム水溶液５０ｍＬに、グリチルリチン酸モノアンモニウム−ｎ水和物２．１ｇを加えて溶解し、グリチルリチン酸モノアンモニウム／酢酸アンモニウム水溶液（ＧＬＺＡ／ＡｃＳ）を調製した。
（２）能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造
上記「２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従ってリポソーム製剤を製造した。
ただし、リポソーム形成工程において、内水相として、本例の（１）で調製したＧＬＺＡ／ＡｃＳを用い、薬物封入工程において、薬物として、ドキソルビシン（ＤＸＲ）、ビンクリスチン（ＶＣＲ）、シプロフロキサシン（ＣＦＸ）およびビノレルビン（ＶＮＲ）を、それぞれ単独で用い、ＨＳＰＣに対して「薬物／ＨＳＰＣ（質量比）」＝０．１０の割合で添加した。 <Example 1>
Example 1 is an example in which a drug is encapsulated by an active drug encapsulation method in a liposome having an aqueous solution (GLZA / AcS) in which monoammonium glycyrrhizinate is dissolved in an ammonium acetate aqueous solution.
(1) Preparation of inner aqueous phase solution 3.86 g of ammonium acetate was taken and dissolved by adding water to prepare 200 mL of an aqueous ammonium acetate solution.
To 50 mL of the prepared aqueous ammonium acetate solution, 2.1 g of monoammonium glycyrrhizinate-n hydrate was added and dissolved to prepare a monoammonium glycyrrhizinate / ammonium acetate aqueous solution (GLZA / AcS).
(2) Production of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method A liposome formulation was produced according to “2-1. Production Method of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method”.
However, in the liposome formation step, GLZA / AcS prepared in (1) of this example was used as the inner aqueous phase, and in the drug encapsulation step, doxorubicin (DXR), vincristine (VCR), ciprofloxacin ( CFX) and vinorelbine (VNR) were each used alone and added at a ratio of “drug / HSPC (mass ratio)” = 0.10 to HSPC.

〈実施例２〉
実施例２は、酢酸アンモニウム水溶液にグリチルリチン酸ジカリウムを溶解した水溶液（ＧＬＺＫ／ＡｃＳ）を内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法によって薬物を封入した例である。
（１）内水相溶液の調製
酢酸アンモニウム３．８６ｇをとり、水を加えて溶かし２００ｍＬとして、酢酸アンモニウム水溶液を調製した。
調製した酢酸アンモニウム水溶液５０ｍＬに、グリチルリチン酸ジカリウム２．２５ｇを加えて溶解し、グリチルリチン酸ジカリウム／酢酸アンモニウム水溶液（ＧＬＺＫ／ＡｃＳ）を調製した。
（２）能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造
上記「２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従ってリポソーム製剤を製造した。
ただし、リポソーム形成工程において、内水相として、調製したＧＬＺＫ／ＡｃＳ溶液を用い、薬物封入工程において、薬物として、ドキソルビシン（ＤＸＲ）、ビンクリスチン（ＶＣＲ）、シプロフロキサシン（ＣＦＸ）およびビノレルビン（ＶＮＲ）を、それぞれ単独で用い、ＨＳＰＣに対して「薬物／ＨＳＰＣ（質量比）」＝０．１０の割合で添加した。 <Example 2>
Example 2 is an example in which a drug is encapsulated in a liposome having an aqueous solution (GLZK / AcS) in which dipotassium glycyrrhizinate is dissolved in an aqueous ammonium acetate solution by an active drug encapsulation method.
(1) Preparation of inner aqueous phase solution 3.86 g of ammonium acetate was taken and dissolved by adding water to prepare 200 mL of an aqueous ammonium acetate solution.
To 50 mL of the prepared ammonium acetate aqueous solution, 2.25 g of dipotassium glycyrrhizinate was added and dissolved to prepare a dipotassium glycyrrhizinate / ammonium acetate aqueous solution (GLZK / AcS).
(2) Production of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method A liposome formulation was produced according to “2-1. Production Method of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method”.
However, the prepared GLZK / AcS solution was used as the inner aqueous phase in the liposome formation step, and doxorubicin (DXR), vincristine (VCR), ciprofloxacin (CFX) and vinorelbine (VNR) were used as the drug in the drug encapsulation step. ) Were used alone and added at a ratio of “drug / HSPC (mass ratio)” = 0.10 to HSPC.

〈実施例３〉
実施例３は、酢酸アンモニウム水溶液にグリチルリチン酸モノアンモニウムを溶解した水溶液（ＧＬＺＡ／ＡｃＳ）を内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法によってビンクリスチン（ＶＣＲ）を封入した例である。実施例１とは、製造スケールおよび薬物封入工程での薬物添加量（濃度）が異なる。
（１）内水相溶液の調製
酢酸アンモニウム０．９７ｇをとり、水を加えて溶かし５０ｍＬとして、酢酸アンモニウム水溶液を調製した。
調製した酢酸アンモニウム水溶液２０ｍＬに、グリチルリチン酸モノアンモニウム−ｎ水和物０．４２ｇを加えて溶解し、グリチルリチン酸モノアンモニウム／酢酸アンモニウム水溶液（ＧＬＺＡ／ＡｃＳ）を調製した。
（２）能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造
上記「２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従ってリポソーム製剤を製造した。
ただし、リポソーム形成工程において、内水相として、本例の（１）で調製したＧＬＺＡ／ＡｃＳを用い、薬物封入工程において、薬物として、ビンクリスチン（ＶＣＲ）を用い、ＨＳＰＣに対して「薬物／ＨＳＰＣ（質量比）」＝０．１５の割合で添加した。 <Example 3>
Example 3 is an example in which vincristine (VCR) was encapsulated by an active drug encapsulating method in a liposome having an aqueous solution (GLZA / AcS) in which monoammonium glycyrrhizinate was dissolved in an aqueous ammonium acetate solution. The amount of drug addition (concentration) in the production scale and the drug encapsulation process is different from that in Example 1.
(1) Preparation of inner aqueous phase solution 0.97 g of ammonium acetate was taken and dissolved by adding water to prepare 50 mL of an aqueous ammonium acetate solution.
To 20 mL of the prepared aqueous ammonium acetate solution, 0.42 g of monoammonium glycyrrhizinate-n hydrate was added and dissolved to prepare a monoammonium glycyrrhizinate / ammonium acetate aqueous solution (GLZA / AcS).
(2) Production of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method A liposome formulation was produced according to “2-1. Production Method of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method”.
However, in the liposome formation step, GLZA / AcS prepared in (1) of this example was used as the inner aqueous phase, and in the drug encapsulation step, vincristine (VCR) was used as the drug. (Mass ratio) ”was added at a ratio of 0.15.

〈実施例４〉
実施例４は、酢酸アンモニウム水溶液にグリチルリチン酸ジカリウムを溶解した水溶液（ＧＬＺＫ／ＡｃＳ）を内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法によってビンクリスチン（ＶＣＲ）を封入した例である。実施例２とは、製造スケールおよび薬物封入工程での薬物添加量（濃度）が異なる。
（１）内水相溶液の調製
酢酸アンモニウム０．９７ｇをとり、水を加えて溶かし５０ｍＬとして、酢酸アンモニウム水溶液を調製した。
調製した酢酸アンモニウム水溶液２０ｍＬに、グリチルリチン酸ジカリウム０．４５ｇを加えて溶解し、グリチルリチン酸ジカリウム／酢酸アンモニウム水溶液（ＧＬＺＫ／ＡｃＳ）を調製した。
（２）能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造
上記「２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従ってリポソーム製剤を製造した。
ただし、リポソーム形成工程において、内水相として、本例の（１）で調製したＧＬＺＫ／ＡｃＳを用い、薬物封入工程において、薬物として、ビンクリスチン（ＶＣＲ）を用い、ＨＳＰＣに対して「薬物／ＨＳＰＣ（質量比）」＝０．１５の割合で添加した。 <Example 4>
Example 4 is an example in which vincristine (VCR) was encapsulated by an active drug encapsulating method in a liposome having an aqueous solution (GLZK / AcS) in which dipotassium glycyrrhizinate was dissolved in an aqueous ammonium acetate solution. The amount of drug addition (concentration) in the production scale and the drug encapsulation process is different from that in Example 2.
(1) Preparation of inner aqueous phase solution 0.97 g of ammonium acetate was taken and dissolved by adding water to prepare 50 mL of an aqueous ammonium acetate solution.
To 20 mL of the prepared ammonium acetate aqueous solution, 0.45 g of dipotassium glycyrrhizinate was added and dissolved to prepare dipotassium glycyrrhizinate / ammonium acetate aqueous solution (GLZK / AcS).
(2) Production of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method A liposome formulation was produced according to “2-1. Production Method of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method”.
However, in the liposome formation step, GLZK / AcS prepared in (1) of this example was used as the inner aqueous phase, and in the drug encapsulation step, vincristine (VCR) was used as the drug, and HSPC was “drug / HSPC”. (Mass ratio) ”was added at a ratio of 0.15.

〈比較例１〉
比較例１は、酢酸アンモニウム水溶液（トリテルペン配糖体の塩もトリテルペン配糖体のアグリコンの塩も含まない）を内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法によって薬物を封入した例である。
（１）内水相溶液の調製
酢酸アンモニウム３．８６ｇをとり、水を加えて溶かし２００ｍＬとして、酢酸アンモニウム水溶液（ＡｃＳ）を調製した。
（２）能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造
上記「２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従ってリポソーム製剤を製造した。
ただし、リポソーム形成工程において、内水相として、本例の（１）で調製した酢酸アンモニウム水溶液（ＡｃＳ）を用い、薬物封入工程において、薬物として、ドキソルビシン（ＤＸＲ）、ビンクリスチン（ＶＣＲ）、シプロフロキサシン（ＣＦＸ）およびビノレルビン（ＶＮＲ）をそれぞれ単独で用い、ＨＳＰＣに対して「薬物／ＨＳＰＣ（質量比）」＝０．１０の割合で添加した。 <Comparative example 1>
Comparative Example 1 is an example in which a drug is encapsulated by an active drug encapsulation method in a liposome having an aqueous ammonium acetate solution (containing neither a triterpene glycoside salt nor a triterpene glycoside aglycone salt) as an inner aqueous phase. .
(1) Preparation of inner aqueous phase solution 3.86 g of ammonium acetate was taken and dissolved by adding water to 200 mL to prepare an aqueous ammonium acetate solution (AcS).
(2) Production of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method A liposome formulation was produced according to “2-1. Production Method of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method”.
However, in the liposome formation step, the aqueous ammonium acetate solution (AcS) prepared in (1) of this example was used as the inner aqueous phase, and in the drug encapsulation step, doxorubicin (DXR), vincristine (VCR), ciprofl, Loxacin (CFX) and vinorelbine (VNR) were each used alone and added at a ratio of “drug / HSPC (mass ratio)” = 0.10 to HSPC.

〈比較例２〉
比較例２は、硫酸アンモニウム水溶液（トリテルペン配糖体の塩もトリテルペン配糖体のアグリコンの塩も含まない）を内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法によって薬物を封入した例である。
（１）内水相溶液の調製
硫酸アンモニウム０．３３ｇをとり、水を加えて溶かし２０ｍＬとして、硫酸アンモニウム水溶液（ＡＳ）を調製した。
（２）能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造
上記「２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従ってリポソーム製剤を製造した。
ただし、リポソーム形成工程において、内水相として、本例の（１）で調製した酢酸アンモニウム水溶液（ＡｃＳ）を用い、薬物封入工程において、薬物として、ドキソルビシン（ＤＸＲ）、ビンクリスチン（ＶＣＲ）、シプロフロキサシン（ＣＦＸ）およびビノレルビン（ＶＮＲ）をそれぞれ単独で用い、ＨＳＰＣに対して「薬物／ＨＳＰＣ（質量比）」＝０．１０の割合で添加した。 <Comparative example 2>
Comparative Example 2 is an example in which a drug is encapsulated by an active drug encapsulation method in a liposome having an aqueous ammonium sulfate solution (containing neither a triterpene glycoside salt nor a triterpene glycoside aglycone salt) as an inner aqueous phase.
(1) Preparation of inner aqueous phase solution Ammonium sulfate aqueous solution (AS) was prepared by taking 0.33 g of ammonium sulfate and dissolving it by adding water to make 20 mL.
(2) Production of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method A liposome formulation was produced according to “2-1. Production Method of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method”.
However, in the liposome formation step, the aqueous ammonium acetate solution (AcS) prepared in (1) of this example was used as the inner aqueous phase, and in the drug encapsulation step, doxorubicin (DXR), vincristine (VCR), ciprofl, Loxacin (CFX) and vinorelbine (VNR) were each used alone and added at a ratio of “drug / HSPC (mass ratio)” = 0.10 to HSPC.

〈比較例３〉
比較例３は、酢酸アンモニウム水溶液にグリチルリチン酸モノアンモニウムを溶解した水溶液（ＧＬＺＡ／ＡｃＳ）を内水相とするリポソームに、受動的薬物封入方法によって薬物を封入した例である。
（１）内水相溶液の調製
酢酸アンモニウム３．８６ｇをとり、水を加えて溶かし２００ｍＬとして、酢酸アンモニウム水溶液を調製した。
調製した酢酸アンモニウム水溶液５０ｍＬに、グリチルリチン酸モノアンモニウム−ｎ水和物２．１ｇを加えて溶解し、グリチルリチン酸モノアンモニウム／酢酸アンモニウム水溶液（ＧＬＺＡ／ＡｃＳ）を調製した。
調製したグリチルリチン酸モノアンモニウム／酢酸アンモニウム水溶液各５ｍＬに、ドキソルビシン（ＤＸＲ）、ビンクリスチン（ＶＣＲ）、シプロフロキサシン（ＣＦＸ）またはビノレルビン（ＶＮＲ）をそれぞれ単独で２８ｍｇずつ溶解し、薬物含有ＧＬＺＡ／ＡｃＳを調製した。
（２）受動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造
上記「２−２．受動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従ってリポソーム製剤を製造した。
ただし、リポソーム形成工程において、薬物を含む内水相として、本例の（１）で調製した各ＧＬＺＡ／ＡｃＳを用い、ＨＳＰＣに対して「薬物／ＨＳＰＣ（質量比）」＝０．１０の割合であった。 <Comparative Example 3>
Comparative Example 3 is an example in which a drug is encapsulated in a liposome having an aqueous solution (GLZA / AcS) in which monoammonium glycyrrhizinate is dissolved in an ammonium acetate aqueous solution, as an inner aqueous phase.
(1) Preparation of inner aqueous phase solution 3.86 g of ammonium acetate was taken and dissolved by adding water to prepare 200 mL of an aqueous ammonium acetate solution.
To 50 mL of the prepared aqueous ammonium acetate solution, 2.1 g of monoammonium glycyrrhizinate-n hydrate was added and dissolved to prepare a monoammonium glycyrrhizinate / ammonium acetate aqueous solution (GLZA / AcS).
28 mg each of doxorubicin (DXR), vincristine (VCR), ciprofloxacin (CFX), or vinorelbine (VNR) was dissolved in 5 mL each of the prepared monoammonium glycyrrhizinate / ammonium acetate solution, and the drug-containing GLZA / AcS Was prepared.
(2) Production of Liposome Formulation by Passive Drug Encapsulation Method A liposome formulation was produced according to the above “2-2. Production method of liposome formulation by passive drug encapsulation method”.
However, in the liposome formation step, each GLZA / AcS prepared in (1) of this example was used as the internal aqueous phase containing the drug, and the ratio of “drug / HSPC (mass ratio)” = 0.10 to HSPC Met.

〈比較例４〉
比較例４は、酢酸アンモニウム水溶液にグリチルリチン酸ジカリウムを溶解した水溶液（ＧＬＺＫ／ＡｃＳ）を内水相とするリポソームに、受動的薬物封入方法によって薬物を封入した例である。
（１）内水相溶液の調製
酢酸アンモニウム３．８６ｇをとり、水を加えて溶かし２００ｍＬとして、酢酸アンモニウム水溶液を調製した。
調製した酢酸アンモニウム水溶液５０ｍＬに、グリチルリチン酸ジカリウム２．２５ｇを加えて溶解し、グリチルリチン酸ジカリウム／酢酸アンモニウム水溶液（ＧＬＺＫ／ＡｃＳ）を調製した。
調製したグリチルリチン酸ジカリウム／酢酸アンモニウム水溶液各５ｍＬに、ドキソルビシン（ＤＸＲ）、ビンクリスチン（ＶＣＲ）、シプロフロキサシン（ＣＦＸ）またはビノレルビンをそれぞれ単独で２８ｍｇずつ溶解し、薬物含有ＧＬＺＫ／ＡｃＳを調製した。
（２）受動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造
上記「２−２．受動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従ってリポソーム製剤を製造した。
ただし、リポソーム形成工程において、薬物を含む内水相として、調製した各ＧＬＺＫ／ＡｃＳを用い、ＨＳＰＣに対して「薬物／ＨＳＰＣ（質量比）」＝０．１０の割合であった。 <Comparative example 4>
Comparative Example 4 is an example in which a drug is encapsulated by a passive drug encapsulation method in a liposome having an aqueous solution (GLZK / AcS) in which dipotassium glycyrrhizinate is dissolved in an ammonium acetate aqueous solution.
(1) Preparation of inner aqueous phase solution 3.86 g of ammonium acetate was taken and dissolved by adding water to prepare 200 mL of an aqueous ammonium acetate solution.
To 50 mL of the prepared ammonium acetate aqueous solution, 2.25 g of dipotassium glycyrrhizinate was added and dissolved to prepare a dipotassium glycyrrhizinate / ammonium acetate aqueous solution (GLZK / AcS).
28 mg each of doxorubicin (DXR), vincristine (VCR), ciprofloxacin (CFX) or vinorelbine was dissolved in 5 mL each of the prepared dipotassium glycyrrhizinate / ammonium acetate solution to prepare drug-containing GLZK / AcS.
(2) Production of Liposome Formulation by Passive Drug Encapsulation Method A liposome formulation was produced according to the above “2-2. Production method of liposome formulation by passive drug encapsulation method”.
However, in the liposome formation step, each prepared GLZK / AcS was used as the internal aqueous phase containing the drug, and the ratio of “drug / HSPC (mass ratio)” = 0.10 relative to HSPC.

〈比較例５〉
比較例５は、硫酸アンモニウム水溶液（トリテルペン配糖体の塩もトリテルペン配糖体のアグリコンの塩も含まない）を内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法によってビンクリスチン（ＶＣＲ）を封入した例である。比較例２とは、薬物封入工程での薬物添加量が異なる。
（１）内水相溶液の調製
硫酸アンモニウム０．３３ｇをとり、水を加えて溶かし２０ｍＬとして、硫酸アンモニウム水溶液（ＡＳ）を調製した。
（２）能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造
上記「２−１．能動的薬物封入方法によるリポソーム製剤の製造方法」に従ってリポソーム製剤を製造した。
ただし、リポソーム形成工程において、内水相として、本例の（１）で調製した硫酸アンモニウム水溶液（ＡＳ）を用い、薬物封入工程において、薬物としてビンクリスチン（ＶＣＲ）を用い、ＨＳＰＣに対して「薬物／ＨＳＰＣ（質量比）」＝０．１５の割合で添加した。 <Comparative Example 5>
Comparative Example 5 is an example in which vincristine (VCR) is encapsulated in a liposome having an aqueous ammonium sulfate solution (containing neither a triterpene glycoside salt nor a triterpene glycoside aglycone salt) by an active drug encapsulation method. It is. The amount of drug addition in the drug encapsulation process is different from that of Comparative Example 2.
(1) Preparation of inner aqueous phase solution Ammonium sulfate aqueous solution (AS) was prepared by taking 0.33 g of ammonium sulfate and dissolving it by adding water to make 20 mL.
(2) Production of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method A liposome formulation was produced according to “2-1. Production Method of Liposome Formulation by Active Drug Encapsulation Method”.
However, in the liposome formation step, the ammonium sulfate aqueous solution (AS) prepared in (1) of this example was used as the inner aqueous phase, and in the drug encapsulation step, vincristine (VCR) was used as the drug, and HSPC was treated with “drug / HSPC (mass ratio) "= 0.15 was added.

［リポソーム製剤の薬物封入効率の評価試験］
本発明の製造方法により製造されたリポソーム製剤（実施例１〜４）およびその他のリポソーム製剤（比較例１〜５）について、薬物（ＤＸＲ、ＶＣＲ、ＣＦＸまたはＶＮＲ）の濃度およびＨＳＰＣ濃度をそれぞれ測定して薬物封入効率を算出し、比較を行った。
１．方法
（１）実施例１〜４、比較例１〜５において製造したリポソーム製剤（本評価試験において、以下「試料」という。）を準備した。
（２）全試料について、リン脂質（ＨＳＰＣ）濃度を測定した。
ＨＳＰＣ濃度（ｍｇ／ｍＬ）の測定は、リン脂質Ｃ−テストワコー（和光純薬社製）を用いて、キット添付文書に記載された使用方法に従って行った。
（３）実施例１、２、比較例１〜４に係る試料について、ドキソルビシン（ＤＸＲ）濃度を測定した。
ＤＸＲ濃度の測定は、次の方法により行った。
試料１００μＬをとり、メタノール２ｍＬを加えて試料溶液とした。
別に、ＤＸＲを水で溶解した液（濃度：０．０１〜１．０ｍｇ／ｍＬ）を１００μＬとり、メタノール２ｍＬを加えて、標準溶液を調製した。試料溶液および標準溶液につき、下記測定条件に従い、測定を行い、ＤＸＲ濃度（ｍｇ／ｍＬ）を算出した。
（測定条件）
測定機器：高速液体クロマトグラフィー
検出器：紫外吸光光度計（測定波長 ２５４ｎｍ）
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ^（Ｒ） ＯＤＳ−２（４．６×２５０ｍｍ，粒子径 ５μｍ；ジーエルサイエンス社製）
カラム温度：４０℃
流速：１ｍＬ／ｍｉｎ
移動相：ラウリル硫酸ナトリウム１．５ｇを希釈したリン酸緩衝生理食塩水（７→５，０００）５００ｍＬに溶かした液に、アセトニトリル５００ｍＬを加えた。
（４）全試料について、ビンクリスチン（ＶＣＲ）濃度を測定した。
ＶＣＲ濃度の測定は、次の方法により行った。
試料１００μＬをとり、メタノール２ｍＬを加えて試料溶液とした。
別に、ＶＣＲを水で溶解した液（ＶＣＲ濃度：０．０１〜１．０ｍｇ／ｍＬ）を１００μＬとり、メタノール２ｍＬを加えて、標準溶液とした。試料溶液および標準溶液につき、下記測定条件に従い、測定を行い、ＶＣＲ濃度（ｍｇ／ｍＬ）を算出した。
（測定条件）
測定機器：高速液体クロマトグラフィー
検出器：紫外吸光光度計（測定波長 ２９８ｎｍ）
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ^（Ｒ） Ｃ８（４．６×２５０ｍｍ，粒子径 ５μｍ；ジーエルサイエンス社製）
カラム温度：４０℃
流速：１ｍＬ／ｍｉｎ
移動相：水／ジエチルアミン混液（５９／１）にリン酸を加えてｐＨ７．５と調製した液３００ｍＬにメタノールを７００ｍＬ加える。
（５）実施例１、２、比較例１〜４に係る試料について、シプロフロキサシン（ＣＦＸ）濃度を測定した。
ＣＦＸ濃度の測定は、次の方法により行った。
試料１００μＬをとり、メタノール２ｍＬを加えて試料溶液とした。
別に、ＣＦＸを水で溶解した液（濃度：０．０１〜１．０ｍｇ／ｍＬ）を１００μＬとり、メタノール２ｍＬを加えて、標準溶液を調製した。試料溶液および標準溶液につき、下記測定条件に従い、測定を行い、ＣＦＸ濃度（ｍｇ／ｍＬ）を算出した。
（測定条件）
分析機器：高速液体クロマトグラフ
検出器：紫外吸光光度計（測定波長 ２７８ｎｍ）
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ^（Ｒ） ＯＤＳ−２（４．０×２５０ｍｍ，粒子径 ５μｍ；ジーエルサイエンス社製）
カラム温度：４０℃
流速：１．０ｍＬ／ｍｉｎ
移動相：リン酸二水素ナトリウム・二水和物 ３．１２０ ｇとり、水を加えて１０００ｍＬとし、リン酸を加えてｐＨ３．０に調整する。この液８７０ｍＬとり、アセトニトリル１３０ｍＬを加えた。
（６）実施例１、２、比較例１〜４に係る試料について、ビノレルビン（ＶＮＲ）濃度を測定した。
ＶＮＲ濃度の測定は、次の方法により行った。
試料１００μＬをとり、メタノール２ｍＬを加えて試料溶液とした。
別に、ＶＮＲを水で溶解した液（濃度：０．０５〜１．０ｍｇ／ｍＬ）を１００μＬとり、メタノール２ｍＬを加えて、標準溶液を調製した。試料溶液および標準溶液につき、下記測定条件に従い、測定を行い、ＶＮＲ濃度（ｍｇ／ｍＬ）を算出した。
（測定条件）
分析機器：高速液体クロマトグラフ
検出器：紫外吸光光度計（測定波長 ２６７ｎｍ）
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ^（Ｒ） ＯＤＳ−３（４．６×１５０ｍｍ，粒子径 ５μｍ；ジーエルサイエンス社製）
カラム温度：４０℃
流速：１．５ｍＬ／ｍｉｎ
移動相：１−デカンスルホン酸 １．２２ｇをメタノール６４０ｍＬに溶解する。この液に、リン酸二水素ナトリウム二水和物７．８ｇとり、水を加えて溶解し、ｐＨ４．２に調整し、さらに水を加えて１０００ｍＬとした液３６０ｍＬを加える。
（７）各試料について、薬物封入効率を下記式により算出した。
薬物封入効率＝薬物濃度／ＨＳＰＣ濃度 [Evaluation test of drug encapsulation efficiency of liposome preparation]
For the liposome preparations (Examples 1 to 4) and other liposome preparations (Comparative Examples 1 to 5) produced by the production method of the present invention, the drug (DXR, VCR, CFX or VNR) concentration and HSPC concentration were measured, respectively. Then, the drug encapsulation efficiency was calculated and compared.
1. Method (1) The liposome preparations produced in Examples 1 to 4 and Comparative Examples 1 to 5 (hereinafter referred to as “sample” in this evaluation test) were prepared.
(2) The phospholipid (HSPC) concentration was measured for all samples.
The HSPC concentration (mg / mL) was measured using phospholipid C-Test Wako (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) according to the method of use described in the package insert.
(3) The doxorubicin (DXR) concentration was measured for the samples according to Examples 1 and 2 and Comparative Examples 1 to 4.
The DXR concentration was measured by the following method.
100 μL of a sample was taken, and 2 mL of methanol was added to prepare a sample solution.
Separately, 100 μL of a solution (concentration: 0.01 to 1.0 mg / mL) of DXR dissolved in water was taken, and 2 mL of methanol was added to prepare a standard solution. The sample solution and the standard solution were measured according to the following measurement conditions, and the DXR concentration (mg / mL) was calculated.
(Measurement condition)
Measuring instrument: High-performance liquid chromatography Detector: Ultraviolet absorptiometer (measurement wavelength 254 nm)
^{Column: Inertsil (R) ODS-2} (4.6 × 250mm, particle size 5 [mu] m; manufactured by GL Sciences Inc.)
Column temperature: 40 ° C
Flow rate: 1 mL / min
Mobile phase: 500 mL of acetonitrile was added to a solution obtained by dissolving 1.5 g of sodium lauryl sulfate in 500 mL of diluted phosphate buffered saline (7 → 5,000).
(4) Vincristine (VCR) concentration was measured for all samples.
The VCR concentration was measured by the following method.
100 μL of a sample was taken, and 2 mL of methanol was added to prepare a sample solution.
Separately, 100 μL of a solution obtained by dissolving VCR in water (VCR concentration: 0.01 to 1.0 mg / mL) was taken, and 2 mL of methanol was added to obtain a standard solution. The sample solution and the standard solution were measured according to the following measurement conditions, and the VCR concentration (mg / mL) was calculated.
(Measurement condition)
Measuring instrument: High-performance liquid chromatography Detector: Ultraviolet absorptiometer (measurement wavelength 298 nm)
^{Column: Inertsil (R) C8 (4.6} × 250mm, particle size 5 [mu] m; manufactured by GL Sciences Inc.)
Column temperature: 40 ° C
Flow rate: 1 mL / min
Mobile phase: 700 mL of methanol is added to 300 mL of a solution prepared by adding phosphoric acid to a water / diethylamine mixture (59/1) to pH 7.5.
(5) Ciprofloxacin (CFX) concentration was measured for the samples according to Examples 1 and 2 and Comparative Examples 1 to 4.
The CFX concentration was measured by the following method.
100 μL of a sample was taken, and 2 mL of methanol was added to prepare a sample solution.
Separately, 100 μL of a solution (concentration: 0.01 to 1.0 mg / mL) in which CFX was dissolved in water was added, and 2 mL of methanol was added to prepare a standard solution. The sample solution and the standard solution were measured according to the following measurement conditions, and the CFX concentration (mg / mL) was calculated.
(Measurement condition)
Analytical instrument: High-performance liquid chromatograph Detector: Ultraviolet absorptiometer (measurement wavelength 278 nm)
^{Column: Inertsil (R) ODS-2} (4.0 × 250mm, particle size 5 [mu] m; manufactured by GL Sciences Inc.)
Column temperature: 40 ° C
Flow rate: 1.0 mL / min
Mobile phase: Take sodium dihydrogen phosphate dihydrate 3.120 g, add water to 1000 mL, and add phosphoric acid to adjust to pH 3.0. 870 mL of this solution was taken and 130 mL of acetonitrile was added.
(6) The vinorelbine (VNR) concentration was measured for the samples according to Examples 1 and 2 and Comparative Examples 1 to 4.
The VNR concentration was measured by the following method.
100 μL of a sample was taken, and 2 mL of methanol was added to prepare a sample solution.
Separately, 100 μL of a solution (concentration: 0.05 to 1.0 mg / mL) in which VNR was dissolved in water was added, and 2 mL of methanol was added to prepare a standard solution. The sample solution and the standard solution were measured according to the following measurement conditions, and the VNR concentration (mg / mL) was calculated.
(Measurement condition)
Analytical instrument: High-performance liquid chromatograph Detector: Ultraviolet absorptiometer (measurement wavelength 267 nm)
^{Column: Inertsil (R) ODS-3} (4.6 × 150mm, particle size 5 [mu] m; manufactured by GL Sciences Inc.)
Column temperature: 40 ° C
Flow rate: 1.5 mL / min
Mobile phase: 1.22 g of 1-decanesulfonic acid is dissolved in 640 mL of methanol. To this solution, 7.8 g of sodium dihydrogen phosphate dihydrate is taken, dissolved by adding water, adjusted to pH 4.2, and 360 mL of a solution made up to 1000 mL by adding water is added.
(7) For each sample, the drug encapsulation efficiency was calculated by the following formula.
Drug encapsulation efficiency = drug concentration / HSPC concentration

２．結果
表１に算出した薬物封入効率を示す。
2. Results Table 1 shows the calculated drug encapsulation efficiency.

３．まとめ
表１に示すように、グリチルリチン酸塩を含む水溶液を内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法により薬物を封入したリポソーム製剤（実施例１〜４）の薬物封入効率は、グリチルリチン酸塩の溶媒として用いた酢酸アンモニウム水溶液のみを内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法により薬物を封入したリポソーム製剤（比較例１）と比較していずれの薬物においても高い薬物封入効率をもつことが明らかとなった。 3. Summary As shown in Table 1, the drug encapsulation efficiency of the liposome preparations (Examples 1 to 4) in which a drug is encapsulated by an active drug encapsulation method in a liposome having an aqueous solution containing glycyrrhizinate as an inner aqueous phase is glycyrrhizic acid. Compared with the liposome preparation (Comparative Example 1) in which the drug is encapsulated by the active drug encapsulation method in the liposome having only the aqueous ammonium acetate solution used as the salt solvent as the inner aqueous phase, the drug encapsulation efficiency is higher in any drug. It became clear to have.

比較例２、５は、硫酸アンモニウム水溶液を内水相とするリポソームに、能動的薬物封入方法により薬物を封入したリポソーム製剤の例である。
多種類の薬物について非常に高い薬物封入効率が得られるため、硫酸アンモニウムはリポソームへの能動的薬物封入方法において汎用される内水相処方である。
硫酸アンモニウムは、リポソーム内水相内で硫酸イオンとアンモニウムイオンに解離し、さらに、解離したアンモニウムイオンはアンモニアと平衡状態にある。この平衡状態にあるアンモニアはリポソーム膜を容易に通過できるためリポソーム外へと拡散する。この反応が連続的起こるため、結果としてリポソーム内水相のｐＨは酸性にシフトする。このようにリポソーム内外で形成されたｐＨ勾配により、リポソーム外から内に取り込まれた薬物はイオン化するため、リポソーム外への再拡散が抑制されるため本実施例に示すように非常に高い薬物封入効率が達成される。 Comparative Examples 2 and 5 are examples of liposome preparations in which drugs are encapsulated in liposomes having an aqueous ammonium sulfate solution as an inner aqueous phase by an active drug encapsulation method.
Ammonium sulfate is an internal aqueous phase formulation widely used in active drug encapsulation methods in liposomes because very high drug encapsulation efficiency is obtained for many types of drugs.
Ammonium sulfate is dissociated into sulfate ions and ammonium ions in the aqueous phase in the liposome, and the dissociated ammonium ions are in equilibrium with ammonia. Since ammonia in this equilibrium state can easily pass through the liposome membrane, it diffuses out of the liposome. As this reaction occurs continuously, the pH of the aqueous phase in the liposomes is shifted to an acidic result. Due to the pH gradient formed inside and outside the liposome in this way, the drug taken in from the outside of the liposome is ionized, so that re-diffusion outside the liposome is suppressed, and as shown in this example, very high drug encapsulation Efficiency is achieved.

本発明のリポソーム製剤の製造方法により製造したリポソーム製剤（実施例１〜４）は、いずれも、高い薬物封入効率が得られるが、特に、内水相にグリチルリチン酸モノアンモニウムを含むリポソーム製剤（実施例１、３）では、比較例２で得られる薬物封入効率とほぼ同等の薬物封入効率を得ることができた。   Any of the liposome preparations (Examples 1 to 4) produced by the method for producing a liposome preparation of the present invention can achieve high drug encapsulation efficiency, and in particular, a liposome preparation containing monoammonium glycyrrhizinate in the inner aqueous phase (implementation) In Examples 1 and 3), it was possible to obtain a drug encapsulation efficiency substantially equal to the drug encapsulation efficiency obtained in Comparative Example 2.

グリチルリチン酸塩の溶媒として、実施例１〜４、比較例１では酢酸アンモニウム水溶液を用いた。酢酸アンモニウムは、内水相でその一部が酢酸イオンとアンモニウムイオンに解離し、解離したアンモニウムイオンはさらにアンモニアとプロトンに解離し、アンモニアがリポソーム外へと拡散すると考えられる。この機構は硫酸アンモニウムを内水相に含む場合と同様である。
しかし、比較例１で示したようにいずれの薬物においても薬物封入効率は、硫酸アンモニウムを内水相に有するリポソーム（比較例２、５）と比較して明らかに低い値であった。
これは、酢酸アンモニウムの電離度が硫酸アンモニウムに比べて低いことや、酢酸アンモニウムではｐＨ勾配によってリポソーム外から透過した薬物がリポソーム内で保持できない、つまり、内水相に到達した薬物がイオン化せず、分子形態のままリポソーム外に再拡散するため、高い薬物封入効率が得られないことが原因であると考えられる。 As Examples 1 to 4 and Comparative Example 1, an aqueous ammonium acetate solution was used as a solvent for glycyrrhizinate. It is considered that ammonium acetate partially dissociates into acetate ions and ammonium ions in the inner aqueous phase, and the dissociated ammonium ions further dissociate into ammonia and protons, so that ammonia diffuses outside the liposome. This mechanism is the same as when ammonium sulfate is included in the inner aqueous phase.
However, as shown in Comparative Example 1, the drug encapsulation efficiency of any drug was clearly lower than that of liposomes (Comparative Examples 2 and 5) having ammonium sulfate in the inner aqueous phase.
This is because the ionization degree of ammonium acetate is lower than that of ammonium sulfate, and in ammonium acetate, the drug permeated from outside the liposome due to pH gradient cannot be retained in the liposome, that is, the drug that reached the inner aqueous phase does not ionize, It is thought that this is because high drug encapsulation efficiency cannot be obtained because it re-diffuses outside the liposome in the molecular form.

その一方で、酢酸アンモニウム溶液にグリチルリチン酸塩を溶解した内水相では酢酸アンモニウムのみと比較して高い薬物封入効率が得られることが表１の結果より明らかとなった。これは、グリチルリチン酸が内水相に存在することによって薬物が内水相内に保持できる環境が形成される、つまり、リポソーム内へ移行した薬物がグリチルリチン酸と共存することによって薬物のリポソーム外への再拡散が抑制されることを示唆している。   On the other hand, it became clear from the results in Table 1 that a higher drug encapsulation efficiency was obtained in the inner aqueous phase in which glycyrrhizinate was dissolved in an ammonium acetate solution as compared with ammonium acetate alone. This is because the presence of glycyrrhizic acid in the inner aqueous phase creates an environment in which the drug can be retained in the inner aqueous phase, that is, the drug that has migrated into the liposome coexists with glycyrrhizic acid to move the drug out of the liposome. This suggests that the re-diffusion of selenium is suppressed.

本実施例の比較例３および４は、受動的薬物封入方法、すなわちグリチルリチン酸塩および薬物をリポソーム形成時に添加してリポソーム製剤を製造したものである。その結果、受動的薬物封入効率である比較例３および４の薬物封入効率は、能動的薬物封入方法である実施例１〜４のどれよりも低く、酢酸アンモニウム水溶液（溶媒）のみを内水相とした比較例１とほぼ同等であった。   Comparative Examples 3 and 4 in this example are passive drug encapsulation methods, that is, liposome preparations prepared by adding glycyrrhizinate and a drug at the time of liposome formation. As a result, the drug encapsulation efficiency of Comparative Examples 3 and 4 which are passive drug encapsulation efficiency is lower than that of any of Examples 1 to 4 which is an active drug encapsulation method, and only an aqueous ammonium acetate solution (solvent) is used in the inner aqueous phase. It was almost equivalent to the comparative example 1.

［血漿中における薬物保持力の評価試験］
１．方法
（１）実施例３、４および比較例５において製造した、ビンクリスチン（ＶＣＲ）を封入したリポソーム製剤（本評価試験において、以下「血漿中ＶＣＲ放出検討用製剤」という場合がある。）を準備した。
（２）各血漿中ＶＣＲ放出検討用製剤について、平均粒子径、ＶＣＲ濃度およびＨＳＰＣ濃度の測定を行った。
２．１）平均粒子径の測定
平均粒子径（ｎｍ）の測定は、Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ^（Ｒ） Ｎａｎｏ ＺＳ９０（マルバーン社製）を用いて行った。平均粒子径は動的光散乱法による測定値である。
２．２）ＶＣＲ濃度の測定方法
各血漿中ＶＣＲ放出検討用製剤から１００μＬずつとり、それぞれにメタノール２ｍＬを加えて試料溶液とした。
別に、ＶＣＲを水で溶解した液（ＶＣＲ濃度：０．０１〜１．０ｍｇ／ｍＬ）を１００μＬとり、メタノール２ｍＬを加えて、標準溶液とした。試料溶液および標準溶液につき、下記測定条件に従い、測定を行い、ＶＣＲ濃度（ｍｇ／ｍＬ）を算出した。
（測定条件）
測定機器：高速液体クロマトグラフィー
検出器：紫外吸光光度計（測定波長 ２９８ｎｍ）
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ^（Ｒ） Ｃ８（４．６×２５０ｍｍ，粒子径 ５μｍ；ジーエルサイエンス社製）
カラム温度：４０℃
流速：１ｍＬ／ｍｉｎ
移動相：水／ジエチルアミン混液（５９／１）にリン酸を加えてｐＨ７．５と調製した液３００ｍＬにメタノールを７００ｍＬ加える。
２．３）ＨＳＰＣ濃度の測定方法
ＨＳＰＣ濃度（ｍｇ／ｍＬ）の測定は、リン脂質Ｃ−テストワコー（和光純薬社製）を用いて、キット添付文書に記載された使用方法に従って行った。
（３）ラット血漿（凍結品，コスモバイオ社製）を融解した後、２００μＬをとり、血漿中ＶＣＲ放出検討用製剤２０μＬを加え、試料とした。
（４）この試料を３７℃の恒温槽中で加温した。
（５）加温開始後、１時間、２時間および４時間の時点で試料を取り出し、ＶＣＲ濃度（ｍｇ／ｍＬ）の測定を次の方法に従って行った。
５．１）リン酸二水素ナトリウム・二水和物３．１２ｇを１０００ｍＬとなるように水を加えて溶解し、さらに、リン酸を加えてｐＨ３．０に調整し、リン酸緩衝液を調製した。
５．２）試料２００μＬにこのリン酸緩衝液２ｍＬを加えて、超遠心分離（２９，４００ｒｐｍ×１２０分、１０℃）を行った。
５．３）超遠心分離後の上清１ｍＬをとり、メタノール１ｍＬを加えた。この液を遠心分離（３，０００ｒｐｍ×１０分、１０℃）し、上清を試料溶液とした。
５．４）別に、ＶＣＲを水で溶解した液（濃度：０．００１〜０．１ｍｇ／ｍＬ）１００μＬをとり、リン酸緩衝液１ｍＬを加えた。この液１ｍＬをとり、メタノール１ｍＬを加えて検量線用の標準溶液を作成した。
５．５）試料溶液および標準溶液につき、下記測定条件に従い、測定を行い、ＶＣＲ濃度を算出した。
（測定条件）
測定機器：高速液体クロマトグラフィー
検出器：紫外吸光光度計（測定波長 ２９８ｎｍ）
カラム：Ｉｎｅｒｔｓｉｌ^（Ｒ） Ｃ８（４．６×２５０ｍｍ，粒子径５μｍ；ジーエルサイエンス社製）
カラム温度：４０℃
流速：１ｍＬ／ｍｉｎ
注入量：２０μＬ
移動相：水／ジエチルアミン混液（５９／１）にリン酸緩衝生理食塩水を加えてｐＨ７．５と調製した液３００ｍＬにメタノールを７００ｍＬ加えた。
（６）血漿中ＶＣＲ濃度を算出した後、下記式に従い、血漿中ＶＣＲ放出率（％）を算出した。
血漿中ＶＣＲ放出率（％）＝（血漿中ＶＣＲ量／１００％ＶＣＲ放出量）×１００
（７）試料ごとに、時間（ｈｒ）を横軸に、血漿中ＶＣＲ放出率（％）を縦軸にとってプロットした（○：実施例３、△：実施例４、□：比較例５）。 [Evaluation test of drug retention in plasma]
1. Method (1) A liposome preparation encapsulating vincristine (VCR) produced in Examples 3 and 4 and Comparative Example 5 (hereinafter sometimes referred to as “preparation for studying VCR release in plasma” in this evaluation test) is prepared. did.
(2) For each preparation for examining VCR release in plasma, the average particle size, VCR concentration and HSPC concentration were measured.
2.1) Measurement of average particle diameter The average particle diameter (nm) was measured using Zetasizer ^(R) Nano ZS90 (Malvern). The average particle diameter is a value measured by a dynamic light scattering method.
2.2) Measuring method of VCR concentration 100 μL of each preparation for examining VCR release in plasma was taken, and 2 mL of methanol was added to each to prepare a sample solution.
Separately, 100 μL of a solution obtained by dissolving VCR in water (VCR concentration: 0.01 to 1.0 mg / mL) was taken, and 2 mL of methanol was added to obtain a standard solution. The sample solution and the standard solution were measured according to the following measurement conditions, and the VCR concentration (mg / mL) was calculated.
(Measurement condition)
Measuring instrument: High-performance liquid chromatography Detector: Ultraviolet absorptiometer (measurement wavelength 298 nm)
^{Column: Inertsil (R) C8 (4.6} × 250mm, particle size 5 [mu] m; manufactured by GL Sciences Inc.)
Column temperature: 40 ° C
Flow rate: 1 mL / min
Mobile phase: 700 mL of methanol is added to 300 mL of a solution prepared by adding phosphoric acid to a water / diethylamine mixture (59/1) to pH 7.5.
2.3) Measuring method of HSPC concentration HSPC concentration (mg / mL) was measured using phospholipid C-Test Wako (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) according to the method of use described in the package insert.
(3) After thawing rat plasma (frozen product, manufactured by Cosmo Bio), 200 μL was taken, and 20 μL of a preparation for examining VCR release in plasma was added to prepare a sample.
(4) This sample was heated in a 37 ° C. constant temperature bath.
(5) After starting heating, samples were taken out at 1 hour, 2 hours and 4 hours, and the VCR concentration (mg / mL) was measured according to the following method.
5.1) Dissolve 3.12 g of sodium dihydrogen phosphate dihydrate by adding water to 1000 mL and adjust to pH 3.0 by adding phosphoric acid to prepare a phosphate buffer. did.
5.2) 2 mL of this phosphate buffer was added to 200 μL of the sample, and ultracentrifugation (29,400 rpm × 120 minutes, 10 ° C.) was performed.
5.3) 1 mL of the supernatant after ultracentrifugation was taken and 1 mL of methanol was added. This liquid was centrifuged (3,000 rpm × 10 minutes, 10 ° C.), and the supernatant was used as a sample solution.
5.4) Separately, 100 μL of VCR dissolved in water (concentration: 0.001 to 0.1 mg / mL) was added, and 1 mL of phosphate buffer was added. 1 mL of this solution was taken and 1 mL of methanol was added to prepare a standard solution for a calibration curve.
5.5) The sample solution and the standard solution were measured according to the following measurement conditions, and the VCR concentration was calculated.
(Measurement condition)
Measuring instrument: High-performance liquid chromatography Detector: Ultraviolet absorptiometer (measurement wavelength 298 nm)
^{Column: Inertsil (R) C8 (4.6} × 250mm, particle size 5 [mu] m; manufactured by GL Sciences Inc.)
Column temperature: 40 ° C
Flow rate: 1 mL / min
Injection volume: 20 μL
Mobile phase: 700 mL of methanol was added to 300 mL of a solution prepared by adding phosphate buffered saline to a water / diethylamine mixture (59/1) to pH 7.5.
(6) After calculating the plasma VCR concentration, the plasma VCR release rate (%) was calculated according to the following formula.
Plasma VCR release rate (%) = (VCR amount in plasma / 100% VCR release amount) × 100
(7) For each sample, the time (hr) was plotted on the horizontal axis and the VCR release rate (%) in plasma was plotted on the vertical axis (◯: Example 3, Δ: Example 4, □: Comparative Example 5).

２．結果
２−１．血漿中ＶＣＲ放出検討用製剤の平均粒子径、ＶＣＲ濃度およびＨＳＰＣ濃度を表２に示す。
2. Result 2-1. Table 2 shows the average particle size, VCR concentration, and HSPC concentration of the preparation for studying VCR release in plasma.

２−２．血漿中におけるリポソーム製剤からの薬物放出挙動
プロットを図１に示す（○：実施例３、△：実施例４、□：比較例５）。 2-2. The drug release behavior from the liposome preparation in plasma is shown in FIG. 1 (◯: Example 3, Δ: Example 4, □: Comparative Example 5).

３．まとめ
内水相にグリチルリチン酸の塩を含む実施例３、４のリポソーム製剤は、硫酸アンモニウム水溶液を内水相として製造した比較例５のリポソーム製剤と比較して、薬物放出がより強く抑制されることが示唆された。また、放出の抑制は、内水相にグリチルリチン酸のアンモニウム塩を含む実施例３で、内水相にグリチルリチン酸のカリウム塩を含む実施例４よりも強く見られた（図１参照、○：実施例３、△：実施例４、□：比較例５）。 3. Summary The liposome preparations of Examples 3 and 4 containing a salt of glycyrrhizic acid in the inner aqueous phase are more strongly suppressed in drug release than the liposome preparation of Comparative Example 5 produced using an aqueous ammonium sulfate solution as the inner aqueous phase. Was suggested. Moreover, the suppression of release was observed more strongly in Example 3 in which the inner aqueous phase contained an ammonium salt of glycyrrhizic acid and in Example 3 in which the inner aqueous phase contained a potassium salt of glycyrrhizic acid (see FIG. 1, ◯: Example 3, Δ: Example 4, □: Comparative Example 5).

ラット血漿におけるリポソーム製剤からの薬物の放出には、血漿タンパクによる膜不安定化ならびにリポソーム内水相特性の変化が影響しているものと考えられる。本実施例で調製したリポソーム膜構成成分は同一であることため、血漿タンパクが惹起するリポソーム膜不安定化による薬物透過性はほぼ同等であることから、本結果で認められた薬物放出性の違いは、薬物の保持力によるものと推測される。つまり、本発明の製造方法によって製造されたリポソーム製剤は、生体内においても薬物保持力が高いことが示唆された。   It is considered that the release of drugs from liposome preparations in rat plasma is influenced by plasma protein membrane destabilization and changes in liposome aqueous phase characteristics. Since the liposome membrane components prepared in this example are the same, drug permeability due to liposome membrane destabilization caused by plasma proteins is almost the same, so the difference in drug release observed in this result Is presumed to be due to drug retention. That is, it was suggested that the liposome preparation produced by the production method of the present invention has high drug retention even in vivo.

Claims (3)

トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩を内水相に含むリポソームを形成するリポソーム形成工程と、
前記リポソーム形成工程の後に、前記リポソームの内水相に薬物を導入する薬物封入工程と
を備えるリポソーム製剤の製造方法。 A liposome forming step of forming a liposome containing a triterpene glycoside and / or aglycone salt thereof in an inner aqueous phase;
A method for producing a liposome preparation, comprising a drug encapsulation step of introducing a drug into the internal aqueous phase of the liposome after the liposome formation step. 前記薬物が、ドキソルビシン（ＤＸＲ）、ビンクリスチン（ＶＣＲ）、シプロフロキサシン（ＣＦＸ）およびビノレルビン（ＶＮＲ）からなる群から選択されるいずれか１つである、請求項１に記載の製造方法。   The production method according to claim 1, wherein the drug is any one selected from the group consisting of doxorubicin (DXR), vincristine (VCR), ciprofloxacin (CFX) and vinorelbine (VNR). 前記トリテルペン配糖体および／またはそのアグリコンの塩が、グリチルリチン酸のアンモニウム塩またはカリウム塩である、請求項１または２に記載の製造方法。   The production method according to claim 1 or 2, wherein the triterpene glycoside and / or aglycone salt thereof is an ammonium salt or potassium salt of glycyrrhizic acid.