JP2012110283A - Photoprotein, calcium-responsive coelenterazine-binding protein, and method for research using the same - Google Patents
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本発明は、発光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質並びにこれらを用いた研究方法に関する。 The present invention relates to a photoprotein, a calcium-responsive coelenterazine-binding protein, and a research method using these.
生物発光を用いた細胞内カルシウムイオン濃度の測定およびイメージング観察のために、エクオリンおよびオベリン等の発光タンパク質が用いられている。エクオリンは、アポエクオリンというカルシウム結合タンパク質とセレンテラジンという発光基質とから構成されている。これにカルシウムが結合すると発光反応を生じて、極大波長４６０ｎｍの光を発する。発光タンパク質のこのような性質を利用して、カルシウム測定およびイメージングが行われている。 Photoproteins such as aequorin and oberin are used for measurement of intracellular calcium ion concentration using bioluminescence and imaging observation. Aequorin is composed of a calcium-binding protein called apoaequorin and a luminescent substrate called coelenterazine. When calcium binds to this, a luminescence reaction occurs, and light having a maximum wavelength of 460 nm is emitted. Calcium measurement and imaging are performed using such properties of photoproteins.
特許文献１には、発光タンパク質を用いてカルシウム濃度を測定する方法が記載されている。この方法では、カルシウムイオン濃度に依存して発光するよう発光標識された細胞を作製し、当該細胞に細胞外から所定の刺激を所定のタイミングで与えながらその細胞の発光画像を繰り返し撮像する。撮像した複数の発光画像に基づいて、細胞から発せられる発光の強度を経時的に測定する。
特許文献２には、候補化合物がタンパク質の作動薬または阻害剤であることを、カルシウム感受性リポーターを含む細胞を用いて決定する方法が記載される。この方法では、エクオリン等のカルシウム感受性リポーターを含む細胞を作製し、細胞内への２価陽イオン（特に、カルシウム）の流入を定量化する。
しかしながら、従来の技術では、刺激に応じたカルシウム変動の測定のための発光観察と、刺激後の伝達経路の解析のための蛍光観察とを同時に実施したい場合であっても、発光観察に用いる発光基質に起因した蛍光が、蛍光観察の際のバックグラウンドとして検出され、これらの観察を同時または連続的に行うことができないという問題がある。 However, in the conventional technique, even if it is desired to simultaneously perform luminescence observation for measurement of calcium fluctuation in response to stimulation and fluorescence observation for analysis of the transmission pathway after stimulation, the luminescence used for luminescence observation There is a problem that fluorescence caused by the substrate is detected as a background during fluorescence observation, and these observations cannot be performed simultaneously or continuously.
本発明の目的は、新規の有用なタンパク質およびそれを利用した優れた研究手法を提供することにある。 An object of the present invention is to provide a novel useful protein and an excellent research technique using the same.
本発明の実施態様によれば、刺胞動物門ウミエラ目ウミサボテン科カベルヌラリア属に属する生物に由来する発光タンパク質が提供される。
本発明の別の実施態様によれば、刺胞動物門ウミエラ目ウミサボテン科カベルヌラリア属に属する生物に由来するカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質が提供される。
According to an embodiment of the present invention, there is provided a photoprotein derived from an organism belonging to the genus Cavernouraria belonging to the order Cleopterous genus Uridae.
According to another embodiment of the present invention, there is provided a calcium-responsive coelenterazine-binding protein derived from an organism belonging to the genus Caenouraria spp.
本発明によれば、新規の有用なタンパク質を利用して、優れた研究手法を行うことができる。 According to the present invention, an excellent research technique can be performed using a novel useful protein.
［発光タンパク質］
本発明の一態様は、刺胞動物門ウミエラ目ウミサボテン科カベルヌラリア属に属する生物に由来する発光タンパク質である。
[Photoprotein]
One embodiment of the present invention is a photoprotein derived from an organism belonging to the genus Cabernularia belonging to the genus Coleoptera Uridae.
特に、当該発光タンパク質は、カベルヌラリア・オベサ（Ｃａｖｅｒｎｕｌａｒｉａ ｏｂｅｓａ）（和名：ウミサボテン）に由来する発光タンパク質であってよい。また、未だ分類されていない生物または未発見の生物であっても、それが後に刺胞動物門花虫綱ウミエラ目ウミサボテン科に属すとされ、且つ、それから得られる発光タンパク質が本願にて説明する性質を持てば、本発明に含まれる。本願において「由来する」という表現は、その生物から取得された野生型のタンパク質だけでなく、当該野生型タンパク質を改変して得られたものも含むことを意味する。 In particular, the photoprotein may be a photoprotein derived from Cavernularia obesa (Japanese name: sea cactus). Moreover, even if it is an organism that has not been classified yet or has not yet been discovered, it is later considered that it belongs to the cnidarian genus Coleoptera Umiellae, and the photoprotein obtained therefrom is described in the present application. Any property is included in the present invention. In the present application, the expression “derived from” means not only a wild-type protein obtained from the organism but also a protein obtained by modifying the wild-type protein.
発光タンパク質とは、化学発光を生じるタンパク質を意味する。特に、化学発光は、他の化合物との反応に起因して生じる。ここにいう他の化合物とは、特に発光基質を意味し、具体的にはルシフェリンであり、さらに具体的にはセレンテラジンおよびその誘導体である。なお、本願において「セレンテラジン」という語句を使用する場合、特別に説明しない限り、当該語句にはセレンテラジンの誘導体を含むものとする。 A photoprotein means a protein that produces chemiluminescence. In particular, chemiluminescence occurs due to reactions with other compounds. The other compound herein means a luminescent substrate, specifically luciferin, and more specifically coelenterazine and its derivatives. Note that when the term “coelenterazine” is used in the present application, the term includes a coelenterazine derivative unless specifically described.
本発明に係る発光タンパク質は、発光スペクトルを測定した場合、可視域に最大発光波長を有する。図１には、本発明に係る発光タンパク質の１つについての発光スペクトルが示される。図１から、この発光タンパク質が、４５０ｎｍから５５０ｎｍの範囲内に最大発光波長を有することがわかる。特に、この発光タンパク質は、４８８ｎｍ付近に最大発光波長を有する。 The photoprotein according to the present invention has a maximum emission wavelength in the visible range when the emission spectrum is measured. FIG. 1 shows an emission spectrum for one of the photoproteins according to the present invention. From FIG. 1, it can be seen that this photoprotein has a maximum emission wavelength in the range of 450 nm to 550 nm. In particular, this photoprotein has a maximum emission wavelength near 488 nm.
本発明に係る発光タンパク質は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法による分子量を測定した場合、２５ｋＤａから３５ｋＤａの範囲内の分子量を有する。後述する配列番号１または３にアミノ酸配列が示される発光タンパク質は、約２８ｋＤａの分子量を有する。なお、ここにいう分子量とは、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法を実際に行って測定した実測値のみならず、アミノ酸配列から予測される予測値を含む。 The photoprotein according to the present invention has a molecular weight in the range of 25 kDa to 35 kDa when the molecular weight is measured by SDS-PAGE. The photoprotein whose amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 1 or 3 described later has a molecular weight of about 28 kDa. In addition, the molecular weight here includes not only an actual value measured by actually performing the SDS-PAGE method but also a predicted value predicted from the amino acid sequence.
本発明に係る発光タンパク質の具体的な例は、配列番号１または３に示されたアミノ酸配列を含む発光タンパク質である。 A specific example of the photoprotein according to the present invention is a photoprotein comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 3.
配列番号１にアミノ酸配列が示される発光タンパク質は、ウミサボテンから取得された野生型発光タンパク質である。このタンパク質は２９８個のアミノ酸から成る。また、セレンテラジンを発光基質として発光反応を行うことができ、その結果、図１に示されるような発光スペクトルを示す。図１によれば、この発光タンパク質は、４８８ｎｍ付近に最大発光波長を有する。さらに、発光反応と各金属イオンの濃度との関係について、図３に示されるような傾向を示す。既知のタンパク質データベース検索によれば、配列番号１に係る発光タンパク質と８０％以上の相同性を示すタンパク質は登録されていない。 The photoprotein whose amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 1 is a wild-type photoprotein obtained from sea cactus. This protein consists of 298 amino acids. Moreover, a luminescence reaction can be performed using coelenterazine as a luminescent substrate, and as a result, an emission spectrum as shown in FIG. 1 is shown. According to FIG. 1, this photoprotein has a maximum emission wavelength around 488 nm. Further, the relationship between the luminescence reaction and the concentration of each metal ion shows a tendency as shown in FIG. According to a known protein database search, a protein showing 80% or more homology with the photoprotein according to SEQ ID NO: 1 is not registered.
配列番号３にアミノ酸配列が示される発光タンパク質は、配列番号１による発光タンパク質に対して複数のアミノ酸の置換を行うことで得られる、ウミサボテン由来の変異型発光タンパク質である。具体的には、図３に示されるように、野生型タンパク質における４７番目のセリンをスレオニンに、２１８番目のリジンをアスパラギンに、２４４番目のメチオニンをロイシンに、２５９番目のアスパラギン酸をグルタミン酸におよび２９８番目のリジンをグルタミン酸に置換することで得られる。この変異型発光タンパク質は、配列番号１による野生型発光タンパク質よりも高い発光強度を示す。図４には、配列番号１による野生型発光タンパク質（右）と配列番号３による変異型発光タンパク質（左）とを、同一の条件にて発光させたときの発光量の比較が示される。この図から、変異型発光タンパク質は、野生型発光タンパク質と比較して格段に高い強度で発光することがわかる。具体的には、約３８倍高い強度で発光する。 The photoprotein whose amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 3 is a mutant photoprotein derived from sea cactus obtained by substituting a plurality of amino acids for the photoprotein of SEQ ID NO: 1. Specifically, as shown in FIG. 3, the 47th serine in the wild type protein is threonine, the 218th lysine is asparagine, the 244th methionine is leucine, the 259th aspartic acid is glutamic acid, and the like. It is obtained by substituting 298th lysine with glutamic acid. This mutant photoprotein exhibits higher luminescence intensity than the wild-type photoprotein according to SEQ ID NO: 1. FIG. 4 shows a comparison of the amount of luminescence when the wild type photoprotein according to SEQ ID NO: 1 (right) and the mutant photoprotein according to SEQ ID NO: 3 (left) are allowed to emit light under the same conditions. From this figure, it can be seen that the mutant photoprotein emits light with much higher intensity than the wild type photoprotein. Specifically, it emits light with an intensity about 38 times higher.
本発明に係る発光タンパク質は、配列番号３に係る発光タンパク質のように、生物から直接取得さられた野生型タンパク質を適宜改変させたものであってよい。ここにおいて、変異型タンパク質とは、野生型タンパク質のアミノ酸配列に変異（例えば、アミノ酸の置換、欠失および／または付加等）が生じたタンパク質を指す。この変異とは、野生型タンパク質のアミノ酸配列の１以上のアミノ酸の変異であり、好ましくは、野生型タンパク質のアミノ酸配列の１から２０のアミノ酸の変異、１から１５のアミノ酸の変異、１から１０のアミノ酸の変異または１から５のアミノ酸の変異である。好ましくは、当該変異型タンパク質のアミノ酸配列は、野生型タンパク質のアミノ酸配列との間で７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上または９９％以上の相同性を有する。 The photoprotein according to the present invention may be an appropriately modified wild-type protein obtained directly from an organism, such as the photoprotein according to SEQ ID NO: 3. Here, the mutant protein refers to a protein in which a mutation (for example, amino acid substitution, deletion and / or addition, etc.) has occurred in the amino acid sequence of the wild-type protein. This mutation is a mutation of one or more amino acids in the amino acid sequence of the wild-type protein, preferably a mutation of 1 to 20 amino acids in the amino acid sequence of the wild-type protein, a mutation of 1 to 15 amino acids, 1 to 10 Or 1 to 5 amino acid mutations. Preferably, the amino acid sequence of the mutant protein is 75% or more, 80% or more, 85% or more, 90% or more, 95% or more, 96% or more, 97% or more with respect to the amino acid sequence of the wild-type protein, It has 98% or more or 99% or more homology.
また、本発明の蛍光タンパク質は、発光反応により発光を生じるという特徴以外について変化させた変異型タンパク質を含む。特に、そのような変異は、発光タンパク質としての操作性を向上させる変異であることが好ましい。例えば、配列番号３による変異型タンパク質のように、野生型よりも強度の高い発光を発することができる変異型タンパク質が好ましい。この変異体は、感度の低い測定システムを使用する場合や、タンパク質の発現が弱い細胞にて測定する場合においても、十分な発光強度を提供することができる。このような変異体は、当該分野の従来の方法を使用して取得することができ、例えば、野生型発光タンパク質をコードする核酸にランダムに変異を導入した後、それを大腸菌等に発現させ、励起光を照射し、野生型発光タンパク質を発現する株よりも強い発光を発する株を選択することで取得できる。 In addition, the fluorescent protein of the present invention includes a mutant protein that has been changed except for the characteristic that light emission is caused by a luminescent reaction. In particular, such a mutation is preferably a mutation that improves operability as a photoprotein. For example, a mutant protein that can emit light having higher intensity than the wild type, such as the mutant protein according to SEQ ID NO: 3, is preferable. This mutant can provide sufficient luminescence intensity even when a measurement system with low sensitivity is used or when measurement is performed on cells with weak protein expression. Such a mutant can be obtained using a conventional method in the art, for example, after randomly introducing a mutation into a nucleic acid encoding a wild-type photoprotein, it is expressed in E. coli and the like, It can be obtained by irradiating excitation light and selecting a strain that emits stronger light than a strain that expresses a wild-type photoprotein.
本発明に係る発光タンパク質は、発光反応のために機能する要素だけでなく、その他の機能ための要素を含んでよい。ここにいう「要素を含む」とは、アミノ酸配列が付加または挿入された場合だけでなく、化学基によって修飾される場合、担体に固定される場合等を含む。また「その他の機能」とは、本発明に係る発光タンパク質の精製を容易にする機能、本発明に係る発光タンパク質の細胞内における輸送を調節する機能等を含む。具体的な「その他の機能のための要素」とは、精製のためのペプチド配列、および細胞外分泌もしくは細胞内器官への移行のためのシグナルペプチド配列である。そのような要素は、発光タンパク質中に複数含まれていてもよい。 The photoprotein according to the present invention may include not only elements that function for a luminescent reaction but also elements for other functions. The term “including an element” as used herein includes not only the case where an amino acid sequence is added or inserted, but also the case where it is modified with a chemical group or immobilized on a carrier. The “other functions” include a function for facilitating purification of the photoprotein according to the present invention, a function for regulating transport of the photoprotein according to the present invention in cells, and the like. Specific "elements for other functions" are peptide sequences for purification and signal peptide sequences for extracellular secretion or translocation into intracellular organs. A plurality of such elements may be contained in the photoprotein.
本発明は、本発明に係る発光タンパク質をコードする塩基配列を含む核酸に関する。このような塩基配列は、刺胞動物門花虫綱ウミエラ目ウミサボテン科に属す生物に由来する塩基配列であってよい。ここにおける「由来する」とは、刺胞動物門花虫綱ウミエラ目ウミサボテン科に属す生物が本来有する野生型の塩基配列に変異が生じた塩基配列を含むことを意味する。また、ここにおける変異とは、塩基配列中の特定の塩基の置換、欠失および／または付加等を指す。塩基配列の変異には、コードされるアミノ酸配列に変化を生じさせない変異をも含む。また、核酸とは、特に、ＤＮＡまたはＲＮＡを指す。 The present invention relates to a nucleic acid comprising a base sequence encoding the photoprotein according to the present invention. Such a base sequence may be a base sequence derived from an organism belonging to the family Cnidaria genus Coleoptera Umiellae. “Derived” as used herein means to include a base sequence in which a mutation has occurred in a wild-type base sequence originally possessed by an organism belonging to the genus Coleoptera Uridae. The mutation herein refers to substitution, deletion and / or addition of a specific base in the base sequence. The nucleotide sequence mutation includes a mutation that does not cause a change in the encoded amino acid sequence. The nucleic acid particularly refers to DNA or RNA.
特に、本発明に係る核酸は、（ａ）配列番号２または４に示された塩基配列、（ｂ）前記（ａ）に示された塩基配列を含む核酸に対して緊縮的な条件下でハイブリダイズする核酸が有する塩基配列であって、発光タンパク質をコードする塩基配列、および（ｃ）前記（ａ）または（ｂ）に示された塩基配列に相補的な塩基配列から成る群から選択される塩基配列を含んでよい。配列番号２に示される塩基配列は、配列番号１に係る発光タンパク質をコードする塩基配列である。また、配列番号４に示される塩基配列は、配列番号３に係る発光タンパク質をコードする塩基配列である。 In particular, the nucleic acid according to the present invention is hybridized under stringent conditions to (a) the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 or 4, and (b) the nucleic acid containing the base sequence shown in (a) above. A nucleotide sequence possessed by a nucleic acid for soybean, which is selected from the group consisting of a nucleotide sequence encoding a photoprotein, and (c) a nucleotide sequence complementary to the nucleotide sequence shown in (a) or (b) above. A base sequence may be included. The base sequence shown in SEQ ID NO: 2 is a base sequence encoding the photoprotein according to SEQ ID NO: 1. The base sequence shown in SEQ ID NO: 4 is a base sequence encoding the photoprotein according to SEQ ID NO: 3.
「緊縮的な条件」としては、核酸を扱う研究分野にて一般的な条件を使用することができる。一般的に、緊縮条件は、定義されたイオン強度及びｐＨで、特定の配列のための熱溶融点（Ｔｍ）よりも約５℃低くなるよう選択される。Ｔｍは、標的配列の５０％が好ましく適合されたプローブにハイブリダイズする温度（定義されたイオン強度及びｐＨ下で）である。 As “stringent conditions”, conditions that are common in the field of research dealing with nucleic acids can be used. Generally, stringent conditions are selected to be about 5 ° C. lower than the thermal melting point (Tm) for the specific sequence at a defined ionic strength and pH. Tm is the temperature (under defined ionic strength and pH) at which 50% of the target sequence will hybridize to a suitably matched probe.
１対の核酸分子、例えばＤＮＡ−ＤＮＡ、ＲＮＡ−ＲＮＡ及びＤＮＡ−ＲＮＡは、ヌクレオチド配列がいくらかの程度の相補性を有する場合、ハイブリダイズすることができる。ハイブリッド二重ヘリックスにおけるミスマッチ塩基対を許容できるが、しかしハイブリッドの安定性はミスマッチの程度により影響される。ミスマッチハイブリッドのＴｍは、１〜１．５％の塩基対ミスマッチごとに１℃低下する。ハイブリダイゼーション条件の緊縮性の変更は、ハイブリッドに存在するであろうミスマッチの程度に対する制御を可能にする。緊縮性の程度は、ハイブリダイゼーション温度が上昇し、そしてハイブリダイゼーション緩衝液のイオン強度が低下するにつれて、上昇する。 A pair of nucleic acid molecules, such as DNA-DNA, RNA-RNA and DNA-RNA, can hybridize if the nucleotide sequences have some degree of complementarity. Mismatch base pairs in the hybrid double helix can be tolerated, but the stability of the hybrid is affected by the degree of mismatch. The Tm of the mismatch hybrid decreases by 1 ° C. for every 1-1.5% base pair mismatch. Changing the stringency of the hybridization conditions allows control over the degree of mismatch that may be present in the hybrid. The degree of stringency increases as the hybridization temperature increases and the ionic strength of the hybridization buffer decreases.
特定のポリヌクレオチドハイブリッドとの使用のためのそれらの条件を適合することは、当業者の能力内である。特定標的配列のためのＴｍは、標的配列の５０％が完全に適合されたプローブ配列にハイブリダイズするであろう温度（定義された条件下で）である。Ｔｍに影響を及ぼすそれらの条件は、ポリヌクレオチドプローブのサイズ及び塩基対含有率、ハイブリダイゼーション溶液のイオン強度、及びハイブリダイゼーション溶液における不安定化剤の存在を包含する。 It is within the abilities of those skilled in the art to adapt those conditions for use with a particular polynucleotide hybrid. The Tm for a particular target sequence is the temperature (under defined conditions) at which 50% of the target sequence will hybridize to a fully matched probe sequence. Those conditions that affect Tm include the size and base pair content of the polynucleotide probe, the ionic strength of the hybridization solution, and the presence of destabilizing agents in the hybridization solution.
Ｔｍを計算するための多くの等式は、当業界において知られており、そしてＤＮＡ、ＲＮＡ及びＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド、及び種々の長さのポリヌクレオチドプローブに対して特異的である（例えば、Sambrookなど., Molecular Cloing: A Lavoratory Manual, Second Edition (Cold Spring Harbor Press 1989); Ausubel など., (eds.), Current Protocols in Molecular Biology (John Wiley and Sons, Inc. 1987); Berger and Kimmel (eds.), Guide to Molecular Cloning Techniques, (Academic Press, Inc. 1987); 及びWetmur, Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 26: 227 (1990) を参照のこと）。 Many equations for calculating Tm are known in the art and are specific for DNA, RNA and DNA-RNA hybrids, and polynucleotide probes of various lengths (eg, Sambrook). Molecular Cloing: A Lavoratory Manual, Second Edition (Cold Spring Harbor Press 1989); Ausubel et al., (Eds.), Current Protocols in Molecular Biology (John Wiley and Sons, Inc. 1987); Berger and Kimmel (eds .), Guide to Molecular Cloning Techniques, (Academic Press, Inc. 1987); and Wetmur, Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 26: 227 (1990)).
また、本発明に係る核酸において、「緊縮的な条件」にてハイブリダイズする核酸の塩基配列同士は、少なくとも６０％以上、６５％以上、７０％以上、７５％以上、８０％以上、８５％以上または９０％以上の相同性を有してよい。 In the nucleic acid according to the present invention, the base sequences of nucleic acids that hybridize under “stringent conditions” are at least 60% or more, 65% or more, 70% or more, 75% or more, 80% or more, 85%. It may have homology of 90% or more.
［カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質］
本発明の別の態様は、刺胞動物門ウミエラ目ウミサボテン科カベルヌラリア属に属する生物に由来するカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質である。
[Calcium-responsive coelenterazine-binding protein]
Another embodiment of the present invention is a calcium-responsive coelenterazine-binding protein derived from an organism belonging to the genus Cavernouraria belonging to the genus Coleoptera Uridae.
特に、カベルヌラリア・オベサ（Ｃａｖｅｒｎｕｌａｒｉａ ｏｂｅｓａ）（和名：ウミサボテン）に由来する発光タンパク質であってよい。また、未だ分類されていない生物または未発見の生物であっても、それが後に刺胞動物門花虫綱ウミエラ目ウミサボテン科に属すとされ、且つ、それから得られるカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質が本願にて説明する性質を持てば、本発明に含まれる。本願において「由来する」という表現は、その生物から取得された野生型のタンパク質だけでなく、当該野生型タンパク質を改変して得られたものも含むことを意味する。 In particular, it may be a photoprotein derived from Cavernularia obesa (Japanese name: Cactus). In addition, even if the organism has not yet been classified or has not yet been discovered, it is later considered that it belongs to the cnidarian genus Coleoptera Uridae, and the calcium-responsive coelenterazine-binding protein obtained therefrom is If it has the property demonstrated in (1), it is included in this invention. In the present application, the expression “derived from” means not only a wild-type protein obtained from the organism but also a protein obtained by modifying the wild-type protein.
本発明においてカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質とは、カルシウムの存在および非存在に応じてセレンテラジンまたはその誘導体との結合が制御されるタンパク質のことを意味する。なお、本願では、カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質（Ｃａ２＋−ｔｒｉｇｇｅｒｅｄ ｃｏｅｌｅｎｔｅｒａｚｉｎｅ− ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ）を「ＣＢＰ」という略称を用いて表現する場合がある。 In the present invention, the calcium-responsive coelenterazine-binding protein means a protein whose binding to coelenterazine or a derivative thereof is controlled depending on the presence or absence of calcium. In the present application, the calcium-responsive coelenterazine-binding protein (Ca 2+ -triggered coelenterazine-binding protein) may be expressed using the abbreviation “CBP”.
カルシウムに応じたセレンテラジンとの結合の制御とは、例えば、カルシウムが存在しないときにセレンテラジンと結合し、カルシウムが存在するときにセレンテラジンと結合という性質である。 Control of the binding with coelenterazine according to calcium is, for example, the property of binding with coelenterazine when calcium is not present and binding with coelenterazine when calcium is present.
本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法による分子量を測定した場合、２５ｋＤａから３５ｋＤａの範囲内の分子量を有する。後述する配列番号５、７、９または１１にアミノ酸配列が示されるカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質は、約２０ｋＤａの分子量を有する。なお、ここにいう分子量とは、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法を実際に行って測定した実測値のみならず、アミノ酸配列から予測される予測値をも含む。 The calcium-responsive coelenterazine-binding protein according to the present invention has a molecular weight in the range of 25 kDa to 35 kDa when the molecular weight is measured by SDS-PAGE method. The calcium-responsive coelenterazine-binding protein whose amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 5, 7, 9 or 11 described later has a molecular weight of about 20 kDa. The molecular weight referred to here includes not only actual values measured by actually performing the SDS-PAGE method but also predicted values predicted from amino acid sequences.
本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の具体的な例は、配列番号５、７、９または１１に示されたアミノ酸配列を含むタンパク質である。 A specific example of the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention is a protein comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 5, 7, 9 or 11.
配列番号５にアミノ酸配列が示されるタンパク質は、ウミサボテンから取得された野生型カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質であり、カルシウムが存在しないときにセレンテラジンと結合し、カルシウムが存在するときにセレンテラジンと結合しないという性質を有する。このタンパク質は１８６個のアミノ酸から成る。既知のタンパク質データベース検索によれば、配列番号５に係るタンパク質と８３％以上の相同性を示すタンパク質は登録されていない。なお、配列番号５に係るタンパク質を「ＣＢＰ１＿１」と称する。 The protein whose amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 5 is a wild-type calcium-responsive coelenterazine-binding protein obtained from sea cactus, and binds to coelenterazine when calcium is not present and does not bind to coelenterazine when calcium is present. Has properties. This protein consists of 186 amino acids. According to a known protein database search, a protein showing 83% or more homology with the protein according to SEQ ID NO: 5 is not registered. The protein according to SEQ ID NO: 5 is referred to as “CBP1_1”.
配列番号７または９にアミノ酸配列が示されるタンパク質は、ＣＢＰ１＿１（配列番号５）と同様に、ウミサボテンから取得された野生型カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質であり、カルシウムが存在しないときにセレンテラジンと結合し、カルシウムが存在するときにセレンテラジンと結合しないという性質を有する。なお、配列番号７に係るタンパク質を「ＣＢＰ１＿２」と称し、配列番号９に係るタンパク質を「ＣＢＰ１＿３」と称する。ＣＢＰ１＿１、ＣＢＰ１＿２およびＣＢＰ１＿３は、互いに相同体ということができる。すなわち、これらのタンパク質同士では、わずかにアミノ酸置換が生じている。具体的には、ＣＢＰ１＿１のアミノ酸配列とＣＢＰ１＿２のアミノ酸配列との間では７残基のアミノ酸の違いがあり、ＣＢＰ１＿１のアミノ酸配列とＣＢＰ１＿３のアミノ酸配列との間では４残基のアミノ酸の違いがあり、ＣＢＰ１＿２のアミノ酸配列とＣＢＰ１＿３のアミノ酸配列との間では３残基のアミノ酸の違いがある。 Similar to CBP1_1 (SEQ ID NO: 5), the protein whose amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 7 or 9 is a wild-type calcium-responsive coelenterazine-binding protein obtained from sea cactus, and binds to coelenterazine when calcium is not present. It has the property of not binding to coelenterazine when calcium is present. The protein according to SEQ ID NO: 7 is referred to as “CBP1_2”, and the protein according to SEQ ID NO: 9 is referred to as “CBP1_3”. CBP1_1, CBP1_2, and CBP1_3 can be referred to as homologues. That is, there are slight amino acid substitutions between these proteins. Specifically, there is a difference of 7 amino acids between the amino acid sequence of CBP1_1 and the amino acid sequence of CBP1_2, and there is a difference of 4 amino acids between the amino acid sequence of CBP1_1 and the amino acid sequence of CBP1_3. There is a difference in the amino acid sequence of 3 residues between the amino acid sequence of CBP1_2 and the amino acid sequence of CBP1_3.
配列番号１１にアミノ酸配列が示されるタンパク質は、ＣＢＰ１＿１からＣＢＰ１＿３と同様に、ウミサボテンから取得された野生型カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質であり、カルシウムが存在しないときにセレンテラジンと結合し、カルシウムが存在するときにセレンテラジンと結合しないという性質を有する。なお、配列番号１１にアミノ酸配列が示されるタンパク質を「ＣＢＰ２」と称する。ＣＢＰ２は、アミノ酸配列がＣＢＰ１＿２と同一である。但し、後述するように、それらをコードする塩基配列は互いに異なる。 The protein whose amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 11 is a wild-type calcium-responsive coelenterazine-binding protein obtained from cacti, similar to CBP1_1 to CBP1_3, and binds to coelenterazine when calcium is not present, and calcium is present. Sometimes it has the property of not binding to coelenterazine. The protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11 is referred to as “CBP2”. CBP2 has the same amino acid sequence as CBP1_2. However, as described later, the base sequences encoding them are different from each other.
本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質は、生物から直接取得された野生型タンパク質を適宜改変させたものであってよい。ここにおいて、変異型タンパク質とは、野生型タンパク質のアミノ酸配列に変異（例えば、アミノ酸の置換、欠失および／または付加等）が生じたタンパク質を指す。この変異とは、野生型タンパク質のアミノ酸配列の１以上のアミノ酸の変異であり、好ましくは、野生型タンパク質のアミノ酸配列の１から２０のアミノ酸の変異、１から１５のアミノ酸の変異、１から１０のアミノ酸の変異または１から５のアミノ酸の変異である。好ましくは、当該変異型タンパク質のアミノ酸配列は、野生型タンパク質のアミノ酸配列との間で７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上または９９％以上の相同性を有する。 The calcium-responsive coelenterazine-binding protein according to the present invention may be obtained by appropriately modifying a wild-type protein obtained directly from an organism. Here, the mutant protein refers to a protein in which a mutation (for example, amino acid substitution, deletion and / or addition, etc.) has occurred in the amino acid sequence of the wild-type protein. This mutation is a mutation of one or more amino acids in the amino acid sequence of the wild-type protein, preferably a mutation of 1 to 20 amino acids in the amino acid sequence of the wild-type protein, a mutation of 1 to 15 amino acids, 1 to 10 Or 1 to 5 amino acid mutations. Preferably, the amino acid sequence of the mutant protein is 75% or more, 80% or more, 85% or more, 90% or more, 95% or more, 96% or more, 97% or more with respect to the amino acid sequence of the wild-type protein, It has 98% or more or 99% or more homology.
また、本発明のカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質は、カルシウムに応じてセレンテラジンとの結合が制御されるという特徴以外について変化させた変異型タンパク質を含む。特に、そのような変異は、カルシウム感受性に関する感度を向上させる変異であることが好ましい。この変異型タンパク質は、カルシウムの放出が少ない細胞を対象として測定する場合に、十分なカルシウム感受性を提供することができるため有用である。 Moreover, the calcium-responsive coelenterazine-binding protein of the present invention includes a mutant protein that has been altered except for the feature that binding to coelenterazine is controlled according to calcium. In particular, such a mutation is preferably a mutation that improves sensitivity related to calcium sensitivity. This mutant protein is useful because it can provide sufficient calcium sensitivity when measured on cells with low calcium release.
本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質は、セレンテラジンとの結合のために機能する要素だけでなく、その他の機能ための要素を含んでよい。ここにいう「要素を含む」とは、アミノ酸配列が付加または挿入された場合だけでなく、化学基によって修飾される場合、担体に固定される場合等を含む。また「その他の機能」とは、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の精製を容易にする機能、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の細胞内における輸送を調節する機能等を含む。具体的な「その他の機能のための要素」とは、精製のためのペプチド配列、および細胞外分泌もしくは細胞内器官への移行のためのシグナルペプチド配列である。そのような要素は、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質に複数含まれていてもよい。 The calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention may include not only elements that function for binding to coelenterazine but also elements for other functions. The term “including an element” as used herein includes not only the case where an amino acid sequence is added or inserted, but also the case where it is modified with a chemical group or immobilized on a carrier. The “other functions” include a function that facilitates purification of the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention, a function that regulates intracellular transport of the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention, and the like. Specific "elements for other functions" are peptide sequences for purification and signal peptide sequences for extracellular secretion or translocation into intracellular organs. A plurality of such elements may be contained in the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention.
本発明は、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質をコードする塩基配列を含む核酸に関する。このような塩基配列は、刺胞動物門花虫綱ウミエラ目ウミサボテン科に属す生物に由来する塩基配列であってよい。ここにおける「由来する」とは、刺胞動物門花虫綱ウミエラ目ウミサボテン科に属す生物が本来有する野生型の塩基配列に変異が生じた塩基配列を含むことを意味する。また、ここにおける変異とは、塩基配列中の特定の塩基の置換、欠失および／または付加等を指す。塩基配列の変異には、コードされるアミノ酸配列に変化を生じさせない変異をも含む。また、核酸とは、特に、ＤＮＡまたはＲＮＡを指す。 The present invention relates to a nucleic acid comprising a base sequence encoding the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention. Such a base sequence may be a base sequence derived from an organism belonging to the family Cnidaria genus Coleoptera Umiellae. “Derived” as used herein means to include a base sequence in which a mutation has occurred in a wild-type base sequence originally possessed by an organism belonging to the genus Coleoptera Uridae. The mutation herein refers to substitution, deletion and / or addition of a specific base in the base sequence. The nucleotide sequence mutation includes a mutation that does not cause a change in the encoded amino acid sequence. The nucleic acid particularly refers to DNA or RNA.
特に、本発明に係る核酸は、（１）配列番号６、８、１０または１２に示された塩基配列、（２）前記（１）に示された塩基配列を含む核酸に対して緊縮的な条件下でハイブリダイズする核酸が有する塩基配列であって、カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質をコードする塩基配列、および（３）前記（１）または（２）に示された塩基配列に相補的な塩基配列から成る群から選択される塩基配列を含んでよい。配列番号６、８、１０および１２に示される塩基配列は、それぞれ配列番号５、７、９および１１に係るタンパク質をコードする塩基配列である。すなわち、配列番号６、８、１０および１２に示される塩基配列は、それぞれＣＢＰ１＿１、ＣＢＰ１＿２、ＣＢＰ１＿３およびＣＢＰ２をコードする塩基配列である。なお、配列番号６に係る塩基配列および配列番号１２に係る塩基配列は、塩基配列としては異なるものの、何れも同一のアミノ酸配列を有するタンパク質（すなわち、ＣＢＰ１＿２およびＣＢＰ２）コードする。ここで、「緊縮的な条件」としては、発光タンパク質に係る核酸について記載したのと同様に、核酸を扱う研究分野にて一般的な条件を使用することができる。また、「緊縮的な条件」にてハイブリダイズする核酸の塩基配列同士は、少なくとも６０％以上、６５％以上、７０％以上、７５％以上、８０％以上、８５％以上または９０％以上の相同性を有してよい。 In particular, the nucleic acid according to the present invention is stringent to (1) a nucleic acid sequence comprising the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 6, 8, 10 or 12, and (2) a nucleic acid comprising the nucleotide sequence shown in (1) above. A nucleotide sequence possessed by a nucleic acid that hybridizes under conditions, a nucleotide sequence encoding a calcium-responsive coelenterazine binding protein, and (3) a base complementary to the nucleotide sequence shown in (1) or (2) above A base sequence selected from the group consisting of sequences may be included. The base sequences shown in SEQ ID NOs: 6, 8, 10 and 12 are base sequences encoding the proteins according to SEQ ID NOs: 5, 7, 9 and 11, respectively. That is, the base sequences shown in SEQ ID NOs: 6, 8, 10 and 12 are base sequences encoding CBP1_1, CBP1_2, CBP1_3 and CBP2, respectively. The base sequence according to SEQ ID NO: 6 and the base sequence according to SEQ ID NO: 12 encode proteins having the same amino acid sequence (that is, CBP1_2 and CBP2), although the base sequences are different. Here, as the “stringent conditions”, general conditions in the field of research dealing with nucleic acids can be used, as described for nucleic acids related to photoproteins. In addition, the base sequences of nucleic acids that hybridize under “stringent conditions” are at least 60% or more, 65% or more, 70% or more, 75% or more, 80% or more, 85% or more, or 90% or more homology. May have sex.
［タンパク質の特性］
本発明に係る発光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の特性について以下に説明する。
[Characteristics of protein]
The characteristics of the photoprotein and calcium-responsive coelenterazine-binding protein according to the present invention will be described below.
本発明に係る発光タンパク質は、発光基質と相互作用することで発光する。特に、セレンテラジンと結合することで発光する。一方、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質は、カルシウムイオンが無い環境でセレンテラジンと結合し、カルシウムイオンが存在する環境では、カルシウムイオン３分子と結合し、代わりにセレンテラジンとの結合を解き、セレンテラジンを放出する。 The photoprotein according to the present invention emits light by interacting with a luminescent substrate. In particular, it emits light when combined with coelenterazine. On the other hand, the calcium-responsive coelenterazine-binding protein according to the present invention binds to coelenterazine in an environment without calcium ions, and in an environment in which calcium ions are present, binds to three calcium ion molecules, and unlinks coelenterazine instead. Releases coelenterazine.
このような性質を有する２つのタンパク質を組み合わせることで、図６に示すような反応を生じさせることができる。図６には、細胞１００において、カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質１、発光タンパク質２、セレンテラジン３およびカルシウムイオン４によって行われる反応の一例が示される。
By combining two proteins having such properties, a reaction as shown in FIG. 6 can be generated. FIG. 6 shows an example of a reaction performed by the calcium-responsive coelenterazine-binding
図６（ａ）に示されるように、まず遊離したセレンテラジン３はカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質１に結合する。次に、図６（ｂ）に示されるように、細胞を刺激することで、または細胞若しくは培地にカルシウムイオンを直接添加することで、細胞内のカルシウム濃度を上昇させると、３分子のカルシウムイオン４がカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質１に結合する。これにより、図６（ｃ）に示されるように、カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質１はセレンテラジン３を放出し、さらに放出されたセレンテラジン３は発光タンパク質２に結合する。その結果、発光タンパク質２が発光する。このような反応は、細胞内に限らず、溶液といった細胞外の環境でも生じさせることができる。
As shown in FIG. 6 (a), the
［発現ベクターおよび宿主細胞］
本発明は、本発明に係る核酸を含むベクターに関する。特に、本発明は、本発明に係る核酸とこの核酸に作動的に連結されたプロモーターとを含む発現ベクターに関する。「作動的に連結」とは、本発明に係るタンパク質の発現をプロモーターによって制御できるように、プロモーターと核酸とが連結していることを意味する。発現ベクターには、発光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の何れか一方が含まれてよく、またはそれら両方が含まれてよい。発現ベクターには、プロモーターの他の要素を含んでよく、例えばマーカー遺伝子の配列、発現ベクターの複製を制御するための配列等を含んでよい。
[Expression vectors and host cells]
The present invention relates to a vector comprising the nucleic acid according to the present invention. In particular, the present invention relates to an expression vector comprising a nucleic acid according to the present invention and a promoter operably linked to the nucleic acid. “Operatively linked” means that the promoter and the nucleic acid are linked so that the expression of the protein of the present invention can be controlled by the promoter. The expression vector may include either one of a photoprotein and a calcium-responsive coelenterazine binding protein, or both. The expression vector may contain other elements of the promoter, for example, a marker gene sequence, a sequence for controlling the replication of the expression vector, and the like.
本発明は、本発明に係る発現ベクターで形質転換された宿主細胞に関する。このような宿主細胞は、発現ベクターが導入された後、本発明に係る核酸を、染色体に組み込む形で維持し、またはプラスミド等の染色体外の核酸として維持する。このような宿主細胞は、本発明に係るタンパク質を発現することが可能となる。宿主細胞は、細胞生物学、分子生物学および生化学等の分野において一般的に使用される細胞であってよい。例えば、宿主細胞は、動物培養細胞または微生物細胞であってよい。動物培養細胞は、ヒト、サル、マウス、ラット等に由来する細胞であってよく、微生物細胞は、酵母菌、カビ、細菌等に由来する細胞であってよい。 The present invention relates to a host cell transformed with the expression vector according to the present invention. In such a host cell, after the expression vector is introduced, the nucleic acid according to the present invention is maintained in the form of being incorporated into a chromosome, or maintained as an extrachromosomal nucleic acid such as a plasmid. Such a host cell can express the protein of the present invention. The host cell may be a cell generally used in fields such as cell biology, molecular biology and biochemistry. For example, the host cell can be a cultured animal cell or a microbial cell. Animal cultured cells may be cells derived from humans, monkeys, mice, rats and the like, and microbial cells may be cells derived from yeasts, molds, bacteria and the like.
［製造方法］
本発明は、本発明に係るタンパク質を製造する方法に関する。そのような方法は、例えば、本発明に係る宿主細胞にて発現する、本発明に係るタンパク質を単離することを含む。これは生化学の分野で一般的に用いられる手法によって行うことができる。すなわち、上述した発現ベクターを細胞に導入し、当該細胞を発現に適した条件下で培養してタンパク質を発現させた後、細胞抽出液を作製して、その中から本発明に係るタンパク質をその他の物質（夾雑物）から分離することで単離することができる。夾雑物からの本発明に係るタンパク質の分離は、例えば、本発明に係るタンパク質に予め精製用のタグを付与しておき、当該タグに選択的に結合する物質を固定した担体等を用いて行うことができる。例えば、生物学的親和性の高い２つのタンパク質の一方をタグとして用い、その他方を担体に固定する物質として用いることができる。そのような典型的な例は、ＧＳＴタグとグルタチオンである。
[Production method]
The present invention relates to a method for producing a protein according to the present invention. Such a method comprises, for example, isolating a protein according to the invention that is expressed in a host cell according to the invention. This can be done by techniques commonly used in the field of biochemistry. That is, after introducing the expression vector described above into a cell and culturing the cell under conditions suitable for expression to express the protein, a cell extract is prepared, from which the protein according to the present invention is added. It can be isolated by separating from the substance (contaminant). Separation of the protein according to the present invention from contaminants is performed, for example, using a carrier or the like to which a purification tag is previously attached to the protein according to the present invention and a substance that selectively binds to the tag is immobilized. be able to. For example, one of two proteins having high biological affinity can be used as a tag, and the other can be used as a substance that is immobilized on a carrier. Typical examples of such are GST tags and glutathione.
本発明は、本発明に係るタンパク質を発現する動物を製造する方法に関する。この方法は、本発明に係るタンパク質の遺伝子を動物に導入することを含む。例えば、動物（ドナー）から採取した受精卵前核に対してマイクロインジェクション法を用いて本発明に係る核酸を注入した後、その受精卵を動物（レシピエント）の卵管内に移植し、自然分娩させて、本発明に係るタンパク質を発現する動物を得ることができる。ここで、動物とは、このような研究手法にて一般的に使用される実験動物であってよく、例えばマウス、ラット、線虫、ショウジョウバエまたはゼブラフィッシュである。 The present invention relates to a method for producing an animal that expresses a protein according to the present invention. This method comprises introducing a gene of a protein according to the present invention into an animal. For example, after injecting the nucleic acid according to the present invention to the pronucleus pronuclei collected from an animal (donor) using the microinjection method, the fertilized egg is transplanted into the oviduct of the animal (recipient) and spontaneous delivery Thus, an animal expressing the protein according to the present invention can be obtained. Here, the animal may be an experimental animal generally used in such a research technique, for example, mouse, rat, nematode, drosophila or zebrafish.
［研究方法］
（カルシウム濃度の測定方法）
本発明は、細胞内または細胞外のカルシウム濃度を測定する方法に関する。当該方法は、本発明に係る発光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を利用する。すなわち、当該方法は、セレンテラジンと結合した本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を用意する工程、および本発明に係る発光タンパク質からの発光を検出する工程を含む。
[research method]
(Calculation method of calcium concentration)
The present invention relates to a method for measuring intracellular or extracellular calcium concentration. The method utilizes a photoprotein and a calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention. That is, the method includes a step of preparing a calcium-responsive coelenterazine-binding protein according to the present invention bound to coelenterazine, and a step of detecting luminescence from the photoprotein according to the present invention.
当該方法では、本発明に係る発光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の性質を利用する。すなわち、カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の有する、カルシウムイオンと結合することでセレンテラジンを放出するという性質、および発光タンパク質の有する、セレンテラジンを基質として発光反応を生じるという性質を利用する。すなわち、カルシウムイオン濃度の増大が、カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質から放出されるセレンテラジン濃度の増大をもたらし、それによって発光タンパク質がセレンテラジンと結合して発光する。したがって、カルシウムの増減を、生じる発光の量の増減として検出することができる。発光タンパク質による発光は定量的に検出することが可能であるため、カルシウム濃度の測定も定量的に行うことができる。 This method utilizes the properties of the photoprotein and calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention. That is, it utilizes the property of the calcium-responsive coelenterazine-binding protein that coelenterazine is released by binding to calcium ions, and the property of the photoprotein that causes a luminescent reaction using coelenterazine as a substrate. That is, an increase in the calcium ion concentration results in an increase in the coelenterazine concentration released from the calcium-responsive coelenterazine binding protein, whereby the photoprotein binds to the coelenterazine and emits light. Therefore, an increase or decrease in calcium can be detected as an increase or decrease in the amount of luminescence produced. Since luminescence by the photoprotein can be detected quantitatively, the calcium concentration can also be measured quantitatively.
測定対象は、細胞内または細胞外の環境であってよい。細胞外の環境とは、例えば溶液中である。「用意する工程」とは、予めセレンテラジンに結合したカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を測定対象に導入すること、またはセレンテラジンおよびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を測定対象に別々に導入した後、それらを測定対象内で結合させることを含む。細胞へのタンパク質の導入は、例えば、発現ベクターで形質転換した後に、細胞内で発現させる方法、マイクロインジェクション法によりタンパク質を直接注入する方法等を使用できる。発光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質は、測定対象に対して独立に導入してよく、またはそれらを直接繋いだもしくはリンカーを介して繋いだ融合タンパク質として導入してもよい。リンカーを用いる場合の長さや配列について、特に限定はなく適宜設定できる。このような融合タンパク質を用いることで、カルシウムの検出と発光の発生が同所で行われるため、細胞内の局所的な研究等を行うことができる。しかしながら、２つのタンパク質を独立に導入する場合であっても、それらを同所的に導入することで、そのような局所的な研究を行うことができる。必要に応じて、「用意する工程」の後に、過剰のセレンテラジンを除去する工程を行ってもよい。 The measurement target may be an intracellular or extracellular environment. The extracellular environment is, for example, in a solution. “Preparing step” means introducing calcium-responsive coelenterazine-binding protein bound to coelenterazine in advance to the measurement object, or separately introducing coelenterazine and calcium-responsive coelenterazine-binding protein into the measurement object, and then measuring them. Including bonding within. For the introduction of the protein into the cell, for example, a method of expressing in the cell after transformation with an expression vector, a method of directly injecting the protein by the microinjection method, or the like can be used. The photoprotein and the calcium-responsive coelenterazine-binding protein may be introduced independently to the measurement target, or may be introduced as a fusion protein in which they are directly connected or connected via a linker. There is no particular limitation on the length and sequence when a linker is used, and it can be set as appropriate. By using such a fusion protein, the detection of calcium and the generation of luminescence are carried out at the same place, so that a local intracellular study or the like can be performed. However, even when two proteins are introduced independently, such local studies can be performed by introducing them sympatrically. If necessary, a step of removing excess coelenterazine may be performed after the “preparing step”.
発光を検出する工程は、発光の検出が可能な分光器、フローサイトメーター、蛍光顕微鏡といった装置を用いて行うことができる。測定対象が細胞である場合には、フローサイトメーターまたは蛍光顕微鏡を用いることで、細胞ごとに検出することができる。さらに、蛍光顕微鏡を用いることで、細胞内の特定の部位における検出も可能となる。このときの顕微鏡は、発光の波長に対応したフィルターセットの蛍光キューブおよび撮像のためのＣＣＤカメラ等を含んでよい。これにより、最適な発光ピークによる画像を撮影できる。 The step of detecting luminescence can be performed using an apparatus such as a spectroscope capable of detecting luminescence, a flow cytometer, or a fluorescence microscope. When the measurement target is a cell, it can be detected for each cell by using a flow cytometer or a fluorescence microscope. Furthermore, the detection in the specific site | part in a cell is also attained by using a fluorescence microscope. The microscope at this time may include a fluorescent cube of a filter set corresponding to the emission wavelength, a CCD camera for imaging, and the like. Thereby, the image by the optimal light emission peak can be image | photographed.
細胞内の測定を行う場合の一例としては、発光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の遺伝子を当該細胞にて発現させ、培地にセレンテラジンを添加してカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質と結合させ、培地を交換して余分なセレンテラジンを除去し、その後、細胞を刺激し、それにより細胞から放出される発光を蛍光顕微鏡により検出して、カルシウム濃度が増加したか否かを判断する。細胞外の測定、例えば溶液中の測定を行う場合の一例としては、精製したカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質とセレンテラジンとを予め結合させ、その結合後のタンパク質を再度精製し、それを、発光タンパク質を含んだ測定対象となる溶液に添加し、生じる発光を検出する。細胞内および細胞外のいずれの測定においても、濃度が既知の対象を同時に測定することで定量性を高めることができる。 As an example of performing intracellular measurement, a photoprotein and a calcium-responsive coelenterazine-binding protein gene are expressed in the cell, and coelenterazine is added to the medium to bind to the calcium-responsive coelenterazine-binding protein. Exchange to remove excess coelenterazine, and then stimulate the cells, thereby detecting the luminescence emitted from the cells with a fluorescence microscope to determine whether the calcium concentration has increased. As an example of performing extracellular measurement, for example, measurement in solution, purified calcium-responsive coelenterazine-binding protein and coelenterazine are bound in advance, the protein after the binding is purified again, and the photoprotein is It is added to the solution to be measured and the resulting luminescence is detected. In both intracellular and extracellular measurements, quantitativeness can be enhanced by simultaneously measuring objects with known concentrations.
（カルシウム濃度測定および蛍光イメージングの方法）
本発明は、細胞内のカルシウム濃度測定および蛍光イメージングを同時または連続的に行う方法に関する。当該方法は、本発明に係る発光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を利用する。すなわち、当該方法は、セレンテラジンと結合した本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を用意する工程、過剰なセレンテラジンを除去する工程、本発明に係る発光タンパク質からの発光を検出する工程、および細胞内に発現させた蛍光タンパク質からの蛍光を検出する工程を含む。
(Calcium concentration measurement and fluorescence imaging methods)
The present invention relates to a method for performing intracellular calcium concentration measurement and fluorescence imaging simultaneously or sequentially. The method utilizes a photoprotein and a calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention. That is, the method comprises a step of preparing a calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention bound to coelenterazine, a step of removing excess coelenterazine, a step of detecting luminescence from the photoprotein according to the present invention, and intracellular Detecting the fluorescence from the fluorescent protein expressed in the method.
当該方法は、上述したカルシウム濃度を測定する方法と同様に、本発明に係る発光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の性質を利用して、カルシウム濃度を測定するが、さらに、そのような性質を利用して、蛍光タグを利用して特定のタンパク質のイメージングを行うことができる。 The method measures the calcium concentration by utilizing the properties of the photoprotein and calcium-responsive coelenterazine-binding protein according to the present invention, as in the method for measuring the calcium concentration described above. Utilizing it, imaging of a specific protein can be performed using a fluorescent tag.
当該方法の例が図７に示される。図７（ａ）によれば、細胞１００を含む培地２００に対しセレンテラジン３が添加される。細胞１００には、カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質が発現しており、添加したセレンテラジン３と結合する。その後、図７（ｂ）に示されるように、培地の交換や洗浄を行うことにより、余分なセレンテラジンを除去する。次に、図７（ｃ）に示されるように、細胞に適当な刺激を与えて、それに応じてカルシウム濃度が変化するか否かを発光タンパク質の発光を発光検出器３００にて測定する。その後またはそれと同時に、図７（ｄ）に示されるように、細胞中に発現する蛍光タンパク質からの蛍光を蛍光検出器４００にて測定する。図７（ｅ）には、そのようにして測定した蛍光および発光の結果が示される。この結果によれば、発光の発生と蛍光の発生とが時間的にずれているが、このような時間的な計測によって、細胞に与えた刺激と、それに応じて生じる特定のタンパク質の発現との関係を調べることができる。例えば、カルシウム濃度が変化した後の遺伝子発現の調節または細胞の分化を研究することができる。また、図７（ｅ）にはスペクトルのデータが示されているが、スペクトルデータに代えて、またはスペクトルデータに加えて、イメージングのデータを取得することができる。
An example of the method is shown in FIG. According to FIG. 7A,
本発明による方法では、蛍光を検出する工程（図７ｄ）の前に過剰なセレンテラジンを除去する工程を設けることで、蛍光検出の際のセレンテラジンによる非特異的な蛍光の発生を抑制することができる。これにより、蛍光タグを付したタンパク質のイメージング等を、バックグラウンドの蛍光の影響を受けずに行うことができる。カルシウムの濃度測定のために従来用いられているエクオリンまたはオベリンの場合、発光反応の進行に伴ってセレンテラジンを放出するため、培地の交換等によりセレンテラジンを除去しない限り、蛍光イメージングを有効に行うことができない。これに対し、本発明に係る方法によれば、発光タンパク質がセレンテラジンと結合することで発光を生じるため、細胞内または培地中に余分なセレンテラジンが生じることがなく、そのまま蛍光イメージングを行うことができる。すなわち、カルシウム濃度の測定と蛍光イメージングとを同時または連続的に行うことができ、カルシウム濃度を測定するときの細胞の状態と蛍光イメージングのときの細胞の状態とをほぼ一定に維持できる。結果として、カルシウム濃度と蛍光タグを付したタンパク質の挙動との関係を正確に研究することができる。 In the method according to the present invention, by providing a step of removing excess coelenterazine prior to the step of detecting fluorescence (FIG. 7d), generation of non-specific fluorescence by coelenterazine during fluorescence detection can be suppressed. . Thereby, imaging of a protein with a fluorescent tag can be performed without being affected by background fluorescence. In the case of aequorin or oberin, which is conventionally used for measuring calcium concentration, coelenterazine is released as the luminescent reaction progresses, so fluorescence imaging can be performed effectively unless coelenterazine is removed by changing the medium. Can not. On the other hand, according to the method of the present invention, since the photoprotein is combined with coelenterazine to generate luminescence, no extra coelenterazine is generated in the cell or in the medium, and fluorescence imaging can be performed as it is. . That is, the measurement of the calcium concentration and the fluorescence imaging can be performed simultaneously or continuously, and the cell state when the calcium concentration is measured and the cell state during the fluorescence imaging can be maintained almost constant. As a result, it is possible to accurately study the relationship between calcium concentration and the behavior of proteins with fluorescent tags.
「蛍光タンパク質」は、ＧＦＰ等の蛍光タンパク質単体として細胞に発現させてもよく、または蛍光タンパク質と特定のタンパク質との融合タンパク質として発現させてもよい。発光タンパク質からの発光の波長と蛍光タンパク質からの蛍光の波長とは異なることが好ましい。特に、カルシウム濃度測定と蛍光イメージングとを同時に行う場合、二色の光を用いて行われる。また、「過剰なセレンテラジンを除去する工程」は、過剰なセレンテラジンが生じていない場合には省略することができる。例えば、セレンテラジンがカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質に対して適切な量で供給されている場合、または予めセレンテラジンと結合したカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を細胞に導入した場合には、当該工程を省略することができる。対象となる細胞は、培養細胞のように単独で存在する細胞に限られず、組織片の一部を構成する細胞であってもよい。細胞へのタンパク質の導入は、発現ベクターによる形質転換を用いた方法、マイクロインジェクション法等により細胞内に直接注入する方法等によって行うことができる。 The “fluorescent protein” may be expressed in cells as a single fluorescent protein such as GFP, or may be expressed as a fusion protein of a fluorescent protein and a specific protein. It is preferable that the wavelength of light emitted from the photoprotein is different from the wavelength of fluorescence from the fluorescent protein. In particular, when the calcium concentration measurement and the fluorescence imaging are performed simultaneously, it is performed using two colors of light. Further, the “step of removing excess coelenterazine” can be omitted when excess coelenterazine is not generated. For example, when coelenterazine is supplied in an appropriate amount with respect to calcium-responsive coelenterazine-binding protein, or when calcium-responsive coelenterazine-binding protein previously bound to coelenterazine is introduced into cells, this step is omitted. Can do. The target cell is not limited to a single cell such as a cultured cell, but may be a cell constituting a part of a tissue piece. The protein can be introduced into the cell by a method using transformation with an expression vector, a method of directly injecting into the cell by a microinjection method, or the like.
（セレンテラジンの供給方法）
本発明は、セレンテラジンを供給する方に関する。当該方法は、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を利用する。すなわち、当該方法は、セレンテラジンと結合した本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を用意する工程、およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質に対してカルシウムを供給する工程を含む。
(Supplying coelenterazine)
The present invention relates to a method of supplying coelenterazine. The method utilizes the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention. That is, the method includes the steps of preparing a calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention bound to coelenterazine, and supplying calcium to the calcium-responsive coelenterazine binding protein.
当該方法は、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の有する、セレンテラジンとの結合をカルシウム濃度によって制御できるという性質を利用する。供給は、溶液といった細胞外に対して、または細胞内に対して行うことができる。具体的な例としては、予めセレンテラジンを結合させたカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を溶液に添加しまたは細胞内に注入し、特定の段階で溶液中または細胞中のカルシウム濃度を増大させてセレンテラジンの放出を誘導する。また、既にセレンテラジンを含む溶液または細胞にカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を導入にし、遊離していたセレンテラジンを一旦結合させた後、特定の段階で再び放出させることもできる。このような方法は、例えば、セレンテラジンを発光基質として利用する発光タンパク質に対してセレンテラジンを供給する場合に有用となる。この方法により、セレンテラジンの分解およびセレンテラジンの意図しない反応を抑制することができる。 This method utilizes the property of the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention that the binding to coelenterazine can be controlled by the calcium concentration. The supply can be performed extracellularly, such as a solution, or intracellularly. As a specific example, coelenterazine-binding calcium-responsive coelenterazine-binding protein is added to a solution or injected into a cell, and the concentration of calcium in the solution or cell is increased at a specific stage to release coelenterazine. To induce. Alternatively, a calcium-responsive coelenterazine-binding protein can be introduced into a solution or cells that already contain coelenterazine, and the released coelenterazine is once bound and then released again at a specific stage. Such a method is useful, for example, when coelenterazine is supplied to a photoprotein that uses coelenterazine as a luminescent substrate. By this method, decomposition of coelenterazine and unintended reaction of coelenterazine can be suppressed.
（セレンテラジンの精製方法）
本発明は、セレンテラジンの精製方法に関する。当該方法は、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を利用する。すなわち、当該方法は、カルシウムイオンを添加しない条件下で、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質が固定された担体と、セレンテラジンを含む溶液とを接触させる第１の工程、およびカルシウムイオンを添加した溶出液を前記担体に接触させ、セレンテラジンを含む精製液を得る第２の工程を含む。
(Method for purifying coelenterazine)
The present invention relates to a method for purifying coelenterazine. The method utilizes the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to the present invention. That is, in the method, the first step of contacting the carrier on which the calcium-responsive coelenterazine-binding protein according to the present invention is immobilized with the solution containing coelenterazine under the condition where calcium ions are not added, and adding calcium ions A second step of bringing the eluted solution into contact with the carrier to obtain a purified solution containing coelenterazine.
当該方法は、本発明に係るカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質の有する、セレンテラジンに特異的に結合する性質およびそのような結合をカルシウム濃度によって制御できるという性質を利用する。すなわち、カルシウムを添加しない条件下でセレンテラジンを結合させて、セレンテラジンと夾雑物とを分離し、カルシウムを添加する条件下でセレンテラジンのみを溶出させる。 The method utilizes the property of the calcium-responsive coelenterazine-binding protein according to the present invention that specifically binds to coelenterazine and that such binding can be controlled by the calcium concentration. That is, coelenterazine is bound under conditions where calcium is not added to separate coelenterazine and impurities, and only coelenterazine is eluted under conditions where calcium is added.
「担体」とは、生化学等の分野において一般的なものを使用でき、例えばデキストランまたはアガロースによるゲル状物質を使用することができる。そのような担体に対してカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質を固定したものを、カラム等に充填して使用する。このようなカラムに、セレンテラジンおよび夾雑物を含む溶液を流して、セレンテラジンとカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質とを接触させる。当該溶液にはカルシウムを添加しないか、またはカルシウムに対するキレート剤等を添加することで、当該溶液中のカルシウム濃度を低くする必要がある。その後、必要に応じて、担体を洗浄してもよいが、このときに使用する溶液もカルシウム濃度が低い必要がある。一方、セレンテラジンを溶出する際に使用する溶出液はカルシウム濃度が高い必要がある。このような溶出を行うことで、担体に非特異的に結合した夾雑物とセレンテラジンとを更に分離することができる。必要に応じて、得られた精製液について、その他のクロマトグラフィー等といった更なる精製を行うことで、カルシウムイオンといった精製液中の成分とセレンテラジンとを分離してもよい。 As the “carrier”, those generally used in the field of biochemistry and the like can be used, and for example, a gel-like substance by dextran or agarose can be used. A column in which a calcium-responsive coelenterazine-binding protein is immobilized on such a carrier is packed in a column or the like. A solution containing coelenterazine and contaminants is allowed to flow through such a column to contact the coelenterazine and the calcium-responsive coelenterazine-binding protein. It is necessary to reduce the calcium concentration in the solution by adding no calcium to the solution or adding a chelating agent for calcium. Thereafter, the carrier may be washed as necessary, but the solution used at this time also needs to have a low calcium concentration. On the other hand, the eluate used when eluting coelenterazine needs to have a high calcium concentration. By performing such elution, it is possible to further separate the contaminants non-specifically bound to the carrier and coelenterazine. If necessary, the purified solution obtained may be further purified by other chromatography or the like to separate components such as calcium ions from the coelenterazine.
本発明に係るセレンテラジンの精製方法には、さらに、精製液に本発明に係る発光タンパク質を添加し、前記発光タンパク質からの発光を検出することでセレンテラジンの濃度を定量する第３の工程を含めることができる。 The method of purifying coelenterazine according to the present invention further includes a third step of adding the photoprotein according to the present invention to the purified solution and quantifying the concentration of coelenterazine by detecting luminescence from the photoprotein. Can do.
当該方法は、本発明に係る発光タンパク質の有する、セレンテラジンに応じた発光反応の定量性の高さをさらに利用する。すなわち、精製液に対して発光タンパク質を添加して、それによって生じる発光量を定量することで濃度を特定することができる。この場合、セレンテラジン濃度が既知の標準液についても同様に発光タンパク質を添加し、発光量を定量することで、より正確に濃度を特定することができる。また、精製前の溶液について同様に発光を検出し、精製液との比較を行うことで、セレンテラジンの精製度または濃縮率を特定することもできる。 This method further utilizes the high quantitativeness of the luminescent reaction according to coelenterazine, which the photoprotein according to the present invention has. That is, the concentration can be specified by adding a photoprotein to the purified solution and quantifying the amount of luminescence produced thereby. In this case, it is possible to specify the concentration more accurately by adding a photoprotein to a standard solution with a known coelenterazine concentration and quantifying the amount of luminescence. In addition, the degree of purification or concentration rate of coelenterazine can also be specified by detecting luminescence in the solution before purification and comparing it with the purified solution.
［実施例１］
ウミサボテンから発光タンパク質遺伝子をクローニングした。すなわち、ウミサボテンから抽出したｔｏｔａｌ ＲＮＡをもとにｃＤＮＡライブラリーを作製し、これを鋳型とするＰＣＲ法によって行った。詳細を以下に述べる。
[Example 1]
The photoprotein gene was cloned from sea cactus. That is, a cDNA library was prepared based on total RNA extracted from sea cactus, and PCR was performed using this as a template. Details are described below.
１）ウミサボテンのｃＤＮＡライブラリーの作製
ウミサボテンからｍＲＮＡを抽出し、これをもとにｃＤＮＡライブラリーを作製した。２００８年１月１１日に−８０℃で凍結保存した２gのウミサボテンを液体窒素中で破砕した。この破砕したウミサボテンに、２０ｍｌのＲＮＡ抽出用試薬ＴＲＩｚｏｌ（インビトロジェン）を加え、ホモジナイザーを用いてさらに細かく破砕してＲＮＡを抽出した。抽出したＲＮＡの精製をＲＮＡ抽出用試薬ＴＲＩｚｏｌのマニュアルに従って行い、ウミサボテンのｔｏｔａｌ ＲＮＡ（１４８８μｇ）を得た。さらに、Ｍｉｃｒｏ−Ｆａｓｔ Ｔｒａｃｋ ２．０ ｋｉｔ（インビトロジェン）を用いて、このｔｏｔａｌ ＲＮＡからｍＲＮＡ（１９．５２μｇ）を抽出精製した。得られたｍＲＮＡ（５．０μｇ）をもとに、完全長ｃＤＮＡ合成試薬ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ Ｋｉｔ（ストラタジーン）を用いて完全長ｃＤＮＡの合成を行った。ｃＤＮＡ合成はマニュアルに従って行った。これらの操作によって得られたｃＤＮＡを、制限酵素ＸｈｏＩおよびＥｃｏＲＩで処理したｐＲＳＥＴ（Ｂ）ベクターへ導入した。このｐＲＳＥＴ（Ｂ）ベクターのマルチクローニングサイトはプロモーター側からＥｃｏＲＩ、ＸｈｏＩとなるように改変している。これによって、ウミサボテン完全長ｃＤＮＡライブラリーを取得し、以後の遺伝子実験に用いた。
1) Preparation of cDNA library of sea cactus mRNA was extracted from sea cactus, and a cDNA library was prepared based on the extracted mRNA. On January 11, 2008, 2 g of cactus frozen at −80 ° C. was crushed in liquid nitrogen. To this crushed cactus, 20 ml of RNA extraction reagent TRIzol (Invitrogen) was added, and RNA was extracted by further finely crushing using a homogenizer. The extracted RNA was purified in accordance with the manual for RNA extraction reagent TRIzol to obtain total RNA (1488 μg) of sea cactus. Furthermore, mRNA (19.52 μg) was extracted and purified from this total RNA using Micro-Fast Track 2.0 kit (Invitrogen). Based on the obtained mRNA (5.0 μg), a full-length cDNA was synthesized using a full-length cDNA synthesis reagent cDNA Synthesis Kit (Stratagene). cDNA synthesis was performed according to the manual. The cDNA obtained by these operations was introduced into a pRSET (B) vector treated with restriction enzymes XhoI and EcoRI. The multicloning site of this pRSET (B) vector is modified from the promoter side to become EcoRI and XhoI. Thus, a full-length cactus cDNA library was obtained and used for subsequent gene experiments.
２）発光タンパク質遺伝子の５’末端側クローニング
ウミエラ類などで報告されているルシフェラーゼのアミノ酸配列を参考に、よく保存されているアミノ酸領域「ＰＤＬＩＧＭＧ」に着目してプライマーを作製した。プライマーの配列は次の通りである：ＲＬｔｙｐｅ−ｍｉｘＦ１−Ａ（５’−ＣＣＮ ＧＡＹ ＹＴＮ ＡＴＨ ＧＧＡ ＡＴＧ ＧＧ−３’）（配列番号１３）、ＲＬｔｙｐｅ−ｍｉｘＦ１−Ｔ（５’−ＣＣＮ ＧＡＹ ＹＴＮ ＡＴＨ ＧＧＴ ＡＴＧ ＧＧ−３’）（配列番号１４）、ＲＬｔｙｐｅ−ｍｉｘＦ１−Ｇ（５’−ＣＣＮ ＧＡＹ ＹＴＮ ＡＴＨ ＧＧＧ ＡＴＧ ＧＧ−３’）（配列番号１５）、ＲＬｔｙｐｅ−ｍｉｘＦ１−Ｃ（５’−ＣＣＮ ＧＡＹ ＹＴＮ ＡＴＨ ＧＧＣ ＡＴＧ ＧＧ−３’）（配列番号１６）。プライマー中のＹ、ＨおよびＮは混合塩基を示す。上記ウミサボテン由来のｃＤＮＡライブラリーを鋳型とし、アミノ酸配列から予測して作製した４種類の特異的混合プライマーおよび３’末端側のベクター特異的プライマーであるＴ７ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｐｒｉｍｅｒ（５’−ＣＴＡ ＧＴＴ ＡＴＴ ＧＣＴ ＣＡＧ ＣＧＧ ＴＧＧ−３’）（配列番号１７）を用いてＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはポリメラーゼＥｘ−Ｔａｑ（タカラバイオ株式会社）を、マニュアルに従って用いた。
2) Cloning of
２０μｌのＰＣＲ反応溶液として、１０×Ｅｘ Ｔａｑ Ｂｕｆｆｅｒ（２０ｍＭ Ｍｇ２＋ ｐｌｕｓ）（最終濃度が等倍）、ｄＮＴＰ Ｍｉｘｔｕｒｅ（各２．５ｍＭ）（最終濃度が各０．２ｍＭ）、ＴａＫａＲａ Ｅｘ Ｔａｑ（５Ｕ／μｌ）（最終濃度が０．０５Ｕ／μｌ）、４種類のルシフェラーゼ特異的プライマー（各反応溶液にそれぞれ最終濃度が１．０μＭ）、Ｔ７ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｐｒｉｍｅｒ（最終濃度が０．２μＭ）を含むように調整し、さらに０．５μｌのウミサボテンｃＤＮＡライブラリー溶液を加えた。ＰＣＲ反応条件は、９４℃２分間の熱変性後、９４℃２０秒および６８℃６０秒を５サイクル、９４℃２０秒、６０℃３０秒および７２℃１分を５サイクル、９４℃２０秒、５５℃３０秒および７２℃１分を２０サイクル、最後に７２℃５分間の伸長反応で行った。ＰＣＲ反応後、１μｌのＰＣＲ反応溶液を、１％トリス酢酸緩衝液（以下ＴＡＥと略す）アガロースゲルを用いて電気泳動し、エチジウムブロマイド染色後、紫外線照射下で増幅遺伝子のバンドを観察した。ＲＬｔｙｐｅ−ｍｉｘＦ１−ＣとＴ７ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｐｒｉｍｅｒとの組み合わせで実施したＰＣＲの産物に顕著な遺伝子増幅が認められたため、フラグメントの遺伝子配列を読み取った。その結果、ウミサボテン発光タンパク質遺伝子の３’末端側のポリＡ配列を含む８３９塩基の配列を確認できた（配列番号１８）。得られた配列をもとに、５’Ｒａｃｅ ＰＣＲに用いる遺伝子特異的プライマーを作製した。プライマーの配列は次の通りである：ＣｏＬｕｃ−Ｒ１（５’−ＣＣＡ ＴＣＴ ＣＧＴ ＣＡＣ ＣＡＧ ＣＴＴ ＣＣＧ ＡＣＴ Ｔ−３’）（配列番号１９）、ＣｏＬｕｃ−Ｒ２（５’−ＣＡＡ ＴＴＴ ＣＡＧ ＧＣＣ ＡＣＧ ＣＡＴ ＣＣＣ ＡＣＧ Ａ−３’）（配列番号２０）。
As a 20 μl PCR reaction solution, 10 × Ex Taq Buffer (20
３）ウミサボテンの完全長ｃＤＮＡライブラリーの作製
ウミサボテンからｍＲＮＡを抽出し、これをもとにｃＤＮＡライブラリーを作製した。２００８年１月１１日に−８０℃で凍結保存した１ｇのウミサボテンを液体窒素中で破砕した。この破砕したウミサボテンに１０ｍｌのＲＮＡ抽出用試薬ＩＳＯＧＥＮ（株式会社ニッポンジーン）を加え、ホモジナイザーを用いてさらに細かく破砕してＲＮＡを抽出した。抽出したＲＮＡの精製をＲＮＡ抽出用試薬ＩＳＯＧＥＮのマニュアルに従って行い、ウミサボテンのｔｏｔａｌ ＲＮＡを得た。ＯｌｉｇｏｔｅｘＴＭ−ｄＴ３０＜Ｓｕｐｅｒ＞ ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｆｒｏｍ Ｔｏｔａｌ ＲＮＡ）（タカラバイオ株式会社）を用いて、このｔｏｔａｌ ＲＮＡからｍＲＮＡを抽出精製した（ｍＲＮＡ濃度は収量が微量であるため未測定）。得られたｍＲＮＡ溶液１５０μｌを、エタノール沈殿法を用いて沈殿濃縮し、完全長ｃＤＮＡ合成試薬ＧｅｎｅＲａｃｅｒ（インビトロジェン）を用いて完全長ｃＤＮＡの合成を行った。ｃＤＮＡ合成はマニュアルに従って行った。これらの操作によって得られたｃＤＮＡ溶液２０μｌをウミサボテン完全長ｃＤＮＡライブラリーとしてその後の遺伝子実験に用いた。
3) Preparation of full-length cDNA library of sea cactus mRNA was extracted from sea cactus, and a cDNA library was prepared based on the extracted mRNA. On January 11, 2008, 1 g of cactus frozen at −80 ° C. was crushed in liquid nitrogen. To this crushed cactus, 10 ml of RNA extraction reagent ISOGEN (Nippon Gene Co., Ltd.) was added, and RNA was extracted by further crushing using a homogenizer. The extracted RNA was purified in accordance with the manual for RNA extraction reagent ISOGEN to obtain a cactus total RNA. Oligotex ™ -dT30 <Super> mRNA Purification Kit (From Total RNA) (Takara Bio Inc.) was used to extract and purify mRNA from this total RNA (mRNA concentration was not measured because the yield was very small). 150 μl of the obtained mRNA solution was precipitated and concentrated using an ethanol precipitation method, and a full-length cDNA was synthesized using a full-length cDNA synthesis reagent GeneRacer (Invitrogen). cDNA synthesis was performed according to the manual. 20 μl of the cDNA solution obtained by these operations was used as a cactus full-length cDNA library for subsequent gene experiments.
４）発光タンパク質遺伝子の５’末端側クローニング
発光タンパク質遺伝子の５’末端側のクローニングを以下の要領で実施した。完全長ｃＤＮＡ合成試薬ＧｅｎｅＲａｃｅｒ（インビトロジェン）を用いて作製したウミサボテン完全長ｃＤＮＡライブラリーを鋳型とし、ウミサボテン発光タンパク質特異的プライマーＣｏＬｕｃ−Ｒ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｐｒｉｍｅｒ（５’−ＣＧＡ ＣＴＧ ＧＡＧ ＣＡＣ ＧＡＧ ＧＡＣ ＡＣＴ ＧＡ−３’）（配列番号２１）とを用いて５’−ＲＡＣＥ ＰＣＲを行った。５’−ＲＡＣＥ ＰＣＲによって効果的に発光タンパク質遺伝子を増幅させるため、ＣｏＬｕｃ−Ｒ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｐｒｉｍｅｒとの組み合わせで増幅した遺伝子を鋳型にし、内側のプライマー対でさらに特異的に遺伝子増幅させるｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを行った。このｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲは、ＣｏＬｕｃ−Ｒ２とＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｎｅｓｔｅｄ Ｐｒｉｍｅｒ（５’−ＧＧＡ ＣＡＣ ＴＧＡ ＣＡＴ ＧＧＡ ＣＴＧ ＡＡＧ ＧＡＧ ＴＡ−３’）（配列番号２２）とのプライマー対で実施した。ポリメラーゼＥｘ−Ｔａｑ（タカラバイオ株式会社）をマニュアルに従って用いた。
4) Cloning of photoprotein gene 5 'end side Cloning of the photoprotein gene 5' end side was performed as follows. Using the full-length cDNA library prepared using the full-length cDNA synthesis reagent GeneRacer (Invitrogen) as a template, the cactus photoprotein-specific primer CoLuc-R1 and GeneRacer 5 'Primer (5'-CGA CTG GAG CAC GAG GAC ACT GA- 5′-RACE PCR was performed using 3 ′) (SEQ ID NO: 21). In order to effectively amplify a photoprotein gene by 5′-RACE PCR, nested PCR is performed in which a gene amplified by a combination of CoLuc-R1 and
５’Ｒａｃｅ ＰＣＲを以下の要領で実施した。２０μｌのＰＣＲ反応溶液として、１０×Ｅｘ Ｔａｑ Ｂｕｆｆｅｒ（２０ｍＭ Ｍｇ２＋ ｐｌｕｓ）（最終濃度が等倍）、ｄＮＴＰ Ｍｉｘｔｕｒｅ（各２．５ｍＭ）（最終濃度が各０．２ｍＭ）、ＴａＫａＲａ Ｅｘ Ｔａｑ（５Ｕ／μｌ）（最終濃度が０．０５Ｕ／μｌ）、ＣｏＬｕｃ−Ｒ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｐｒｉｍｅｒとのプライマー対（それぞれ最終濃度が０．２μＭ）を含むように調整し、２．０μｌのウミサボテンの完全長ｃＤＮＡライブラリー溶液を加えた。ＰＣＲ反応条件は、９４℃２分間の熱変性後、９４℃３０秒、５５℃３０秒および７２℃１分を３０サイクル、最後に７２℃５分間の伸長反応とした。ＰＣＲ反応後、１μｌのＰＣＲ反応溶液を、１％ＴＡＥアガロースゲルを用いて電気泳動し、エチジウムブロマイド染色後、紫外線照射下で増幅遺伝子のバンドを観察した。ＣｏＬｕｃ−Ｒ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｐｒｉｍｅｒとのプライマーの組み合わせで実施したＰＣＲでは顕著な遺伝子増幅は認められなかった。このＰＣＲ産物を鋳型として５’ｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを実施した。
5 'Race PCR was performed as follows. As a 20 μl PCR reaction solution, 10 × Ex Taq Buffer (20
ｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを以下の要領で実施した。２０μｌのＰＣＲ反応溶液は、１０×Ｅｘ Ｔａｑ Ｂｕｆｆｅｒ（２０ｍＭ Ｍｇ２＋ ｐｌｕｓ）（最終濃度が等倍）、ｄＮＴＰ Ｍｉｘｔｕｒｅ（各２．５ｍＭ）（最終濃度が各０．２ｍＭ）、ＴａＫａＲａ Ｅｘ Ｔａｑ（５Ｕ／μｌ）（最終濃度が０．０５Ｕ／μｌ）、ＣｏＬｕｃ−Ｒ２とＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｎｅｓｔｅｄ Ｐｒｉｍｅｒとのプライマー対（それぞれ最終濃度が０．２μＭ）となるよう調整し、１０倍希釈した５’Ｒａｃｅ ＰＣＲ反応溶液を鋳型として１．０μｌを加えた。ＰＣＲ反応条件は、９４℃２分間の熱変性後、９４℃３０秒、５５℃３０秒および７２℃１分を３０サイクル、最後に７２℃５分間の伸長反応とした。ＰＣＲ反応後、１μｌのＰＣＲ反応溶液を、１％ＴＡＥアガロースゲルを用いて電気泳動し、エチジウムブロマイド染色後、紫外線照射下で増幅遺伝子のバンドを観察した。ＣｏＬｕｃ−Ｒ２とＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｎｅｓｔｅｄ Ｐｒｉｍｅｒとのプライマーの組み合わせで実施したＰＣＲにおいて顕著な遺伝子増幅が認められたため、フラグメントの遺伝子配列を読み取った。その結果、ウミサボテン発光タンパク質遺伝子の５’末端側の４９５塩基の配列を確認できた（配列番号２３）。得られた配列を基に発光タンパク質遺伝子の完全長配列を増幅するためのＰＣＲに用いる遺伝子特異的プライマーを作成した。プライマーの配列は次の通りである：ＣｏＬｕｃ−Ｆｕｌｌ−Ｆ１（５’−ＧＣＡ ＣＴＴ ＣＡＡ ＴＣＡ ＧＴＧ ＧＴＡ ＡＣＧ ＧＡＡ ＧＧ−３’）（配列番号２４）、ＣｏＬｕｃ−Ｆｕｌｌ−Ｆ２（５’−ＧＣＡ ＣＴＴ ＣＡＡ ＴＣ ＡＧＴ ＧＧＴ ＡＡＣ ＧＧＡ ＡＧＧ ＣＧＡ ＡＣ−３’）（配列番号２５）。
Nested PCR was performed as follows. 20 μl of the PCR reaction solution was 10 × Ex Taq Buffer (20
５）発光タンパク質遺伝子の完全長配列のクローニング
発光タンパク質遺伝子の完全長配列のクローニングを以下の要領で実施した。完全長ｃＤＮＡ合成試薬ＧｅｎｅＲａｃｅｒ（インビトロジェン）を用いて作成したウミサボテン完全長ｃＤＮＡライブラリーを鋳型とし、ウミサボテン発光タンパク質特異的プライマーＣｏＬｕｃ−Ｆｕｌｌ−Ｆ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｐｒｉｍｅｒ（５’−ＧＣＴ ＧＴＣ ＡＡＣ ＧＡＴ ＡＣＧ ＣＴＡ ＣＧＴ ＡＡＣ Ｇ−３’）（配列番号２６）とを用いて３’−ＲＡＣＥ ＰＣＲを行った。３’−ＲＡＣＥ ＰＣＲによって効果的に発光タンパク質遺伝子を増幅させるため、ＣｏＬｕｃ−Ｆｕｌｌ−Ｆ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｐｒｉｍｅｒとの組み合わせで増幅した遺伝子を鋳型にし、内側のプライマー対でさらに特異的に遺伝子増幅させるｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを行った。このｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲは、ＣｏＬｕｃ−Ｆｕｌｌ−Ｆ２とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｎｅｓｔｅｄ Ｐｒｉｍｅｒ（５’−ＣＧＣ ＴＡＣ ＧＴＡ ＡＣＧ ＧＣＡ ＴＧＡ ＣＡＧ ＴＧ−３’）（配列番号２７）とのプライマー対で実施した。ポリメラーゼＥｘ−Ｔａｑ（タカラバイオ株式会社）をマニュアルに従って用いた。
5) Cloning of the full length sequence of the photoprotein gene Cloning of the full length sequence of the photoprotein gene was performed as follows. Using the full-length cDNA library prepared using the full-length cDNA synthesis reagent GeneRacer (Invitrogen) as a template, the cactus photoprotein specific primer CoLuc-Full-F1 and GeneRacer 3 'Primer (5'-GCT GTC AAC GAT ACG
３’Ｒａｃｅ ＰＣＲを以下の要領で実施した。２０μｌのＰＣＲ反応溶液として、１０×Ｅｘ Ｔａｑ Ｂｕｆｆｅｒ（２０ｍＭ Ｍｇ２＋ ｐｌｕｓ）（最終濃度が等倍）、ｄＮＴＰ Ｍｉｘｔｕｒｅ（各２．５ｍＭ）（最終濃度が各０．２ｍＭ）、ＴａＫａＲａ Ｅｘ Ｔａｑ（５Ｕ／μｌ）（最終濃度が０．０５Ｕ／μｌ）、ＣｏＬｕｃ−Ｆｕｌｌ−Ｆ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｐｒｉｍｅｒとのプライマー対（それぞれ最終濃度が０．２μＭ）となるように調整し、０．５μｌのウミサボテンの完全長ｃＤＮＡライブラリー溶液を加えた。ＰＣＲ反応条件は、９４℃２分間の熱変性後、９４℃３０秒、５０℃３０秒および７２℃１分３０秒を３０サイクル、最後に７２℃５分間の伸長反応とした。ＰＣＲ反応後、１μｌのＰＣＲ反応溶液を、１％ＴＡＥアガロースゲルを用いて電気泳動し、エチジウムブロマイド染色後、紫外線照射下で増幅遺伝子のバンドを観察した。ＣｏＬｕｃ−Ｆｕｌｌ−Ｆ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｐｒｉｍｅｒとの組み合わせで実施したＰＣＲでは顕著な遺伝子増幅は認められなかった。このＰＣＲ産物を鋳型として３’ｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを実施した。
3 'Race PCR was performed as follows. As a 20 μl PCR reaction solution, 10 × Ex Taq Buffer (20
ｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを以下の要領で実施した。２０μｌのＰＣＲ反応溶液は、１０×Ｅｘ Ｔａｑ Ｂｕｆｆｅｒ（２０ｍＭ Ｍｇ２＋ ｐｌｕｓ）（最終濃度が等倍）、ｄＮＴＰ Ｍｉｘｔｕｒｅ（各２．５ｍＭ）（最終濃度が各０．２ｍＭ）、ＴａＫａＲａ Ｅｘ Ｔａｑ（５Ｕ／μｌ）（最終濃度が０．０５Ｕ／μｌ）、ＣｏＬｕｃ−Ｆｕｌｌ−Ｆ２とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｎｅｓｔｅｄ Ｐｒｉｍｅｒとのプライマー対（それぞれ最終濃度が０．２μＭ）となるように調整し、１０倍希釈した５’Ｒａｃｅ ＰＣＲ反応溶液を鋳型として１．０μｌ加えた。ＰＣＲ反応条件は、９４℃２分間の熱変性後、９４℃３０秒、５０℃３０秒および７２℃１分３０秒を３０サイクル、最後に７２℃５分間の伸長反応とした。ＰＣＲ反応後、１μｌのＰＣＲ反応溶液を、１％ＴＡＥアガロースゲルを用いて電気泳動し、エチジウムブロマイド染色後、紫外線照射下で増幅遺伝子のバンドを観察した。ＣｏＬｕｃ−Ｆｕｌｌ−Ｆ２とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｎｅｓｔｅｄ Ｐｒｉｍｅｒとの組み合わせで実施したＰＣＲにおいて顕著な遺伝子増幅が認められたため、フラグメントの遺伝子配列を読み取った。その結果、ウミサボテン発光タンパク質遺伝子のポリＡを含む完全長配列を確認できた（配列番号２８）。得られた完全長ウミサボテン発光タンパク質遺伝子の塩基配列から、配列情報解析ソフトウェアＤＮＡＳＩＳ Ｐｒｏを用いて、予想される発光タンパク質遺伝子のＯｐｅｎ Ｒｅａｄｉｎｇ Ｆｒａｍｅ塩基配列（配列番号２）およびそれを翻訳したアミノ酸配列（配列番号１）を得た。
Nested PCR was performed as follows. 20 μl of the PCR reaction solution was 10 × Ex Taq Buffer (20
このＯｐｅｎ Ｒｅａｄｉｎｇ Ｆｒａｍｅ領域を遺伝子発現用ベクターｐＲＳＥＴ（Ｂ）（プロメガ）に導入し、それを大腸菌株ＪＭ１０９（ＤＥ３）（プロメガ）に形質転換し、Ｈｉｓタグを用いたタンパク質精製の手法を用いてウミサボテン発光タンパク質を精製した。このタンパク質について、Ｌｕｍｉｆｌｓｐｅｃｔｒｏｃａｐｔｕｒｅ（アトー）を用いて発光スペクトルを測定した。３μｌのウミサボテン発光タンパク質を含む溶液（濃度不明）、９７μｌのバッファー（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，２０ｍＭ ＮａＣｌ）および１μｌのセレンテラジンを含む溶液（４．７２ｍＭ：プロメガ）を混ぜ合わせて発光を検出した。その発光スペクトルを図１に示す。図１から、当該タンパク質が、セレンテラジンを発光基質として発光反応を行うこと、且つその最大発光波長は４８８ｎｍ付近であることがわかった。また、上記溶液に対して、各種金属の塩化物を添加し、発光強度に対するその影響を調べた。その結果を図２に示す。さらに、ウミサボテン由来の発光タンパク質のｐＨ感受性を調べた。図８（ａ）には、ｐＨ３．０からｐＨ１１．０の範囲でｐＨを変えた環境下での発光強度が示される。図８（ｂ）には、ｐＨ７．０からｐＨ９．０の範囲で、さらに細かくｐＨを変えた環境下での発光強度が示される。図８（ａ）および（ｂ）の結果から、ｐＨ８．０付近、特にｐＨ７．８付近の環境下において最も強度が高いことがわかる。さらに図８（ｃ）には、ｐＨ７．０からｐＨ８．０の範囲でｐＨを変えて測定した発光スペクトルが示される。図８（ｃ）の結果から、ｐＨ７．０からｐＨ８．０の間では最大発光波長は変化しないことがわかる。 This Open Reading Frame region was introduced into a gene expression vector pRSET (B) (Promega), transformed into Escherichia coli strain JM109 (DE3) (Promega), and purified using a His tag to purify the cactus. The photoprotein was purified. About this protein, the emission spectrum was measured using Lumiflspectrocapture (Ato). Luminescence was detected by mixing 3 μl of the cactus photoprotein (concentration unknown), 97 μl of buffer (20 mM Tris-HCl, 20 mM NaCl) and 1 μl of coelenterazine (4.72 mM: Promega). The emission spectrum is shown in FIG. From FIG. 1, it was found that the protein performs a luminescence reaction using coelenterazine as a luminescent substrate, and its maximum emission wavelength is around 488 nm. Further, various metal chlorides were added to the solution, and the influence on the emission intensity was examined. The result is shown in FIG. Furthermore, the pH sensitivity of the photoprotein derived from sea cactus was examined. FIG. 8A shows the luminescence intensity under an environment where the pH is changed in the range of pH 3.0 to pH 11.0. FIG. 8B shows the luminescence intensity in an environment in which the pH is changed more finely in the range of pH 7.0 to pH 9.0. From the results of FIGS. 8 (a) and 8 (b), it can be seen that the strength is highest in an environment around pH 8.0, particularly around pH 7.8. Further, FIG. 8 (c) shows an emission spectrum measured by changing the pH in the range of pH 7.0 to pH 8.0. From the result of FIG. 8C, it can be seen that the maximum emission wavelength does not change between pH 7.0 and pH 8.0.
［実施例２］
ウミサボテンからカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質（ＣＢＰ）遺伝子をクローニングした。すなわち、ウミサボテンから抽出したｔｏｔａｌ ＲＮＡをもとにｃＤＮＡライブラリーを作製し、これを鋳型とするＰＣＲ法によって行った。詳細を以下に述べる。
[Example 2]
A calcium-responsive coelenterazine binding protein (CBP) gene was cloned from sea cactus. That is, a cDNA library was prepared based on total RNA extracted from sea cactus, and PCR was performed using this as a template. Details are described below.
１）ＣＢＰ遺伝子の５’末端側クローニング
ＣＢＰ遺伝子の５’末端側のクローニングを以下の要領で実施した。既知の文献（Titushin, MS. et al. (2008) Coelenterazine-binding protein of Renilla muelleri: cDNA cloning, overexpression, and characterization as a substrate of luciferase., Photochem Photobiol Sci., 7(2):189-196.）を参考に、よく保存されているアミノ酸領域「ＤＦＮＫＮＧＱＩ」および「ＤＴＤＫＤＧＹＶ」に着目してプライマーを作製した。「ＤＦＮＫＮＧＱＩ」を参考に作製したプライマーの配列は、ＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ１−Ａ（５’−ＡＴＹ ＴＧＮ ＣＣＲ ＴＴＹ ＴＴＲ ＴＴＲ ＡＡａ ＴＣ−３’）（配列番号２９）およびＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ１−Ｒ（５’−ＡＴＹ ＴＧＮ ＣＣＲ ＴＴＹ ＴＴＲ ＴＴＲ ＡＡｇ ＴＣ−３’）（配列番号３０）、「ＤＴＤＫＤＧＹＶ」を参考に作製したプライマーの配列は、ＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ２−Ａ（５’−ＡＣＲ ＴＡＮ ＣＣＲ ＴＣＹ ＴＴＲ ＴＣＮ ＧＴａ ＴＣ−３’）（配列番号３１）およびＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ２−Ｒ（５’−ＡＣＲ ＴＡＮ ＣＣＲ ＴＣＹ ＴＴＲ ＴＣＮ ＧＴｇ ＴＣ−３’）（配列番号３２）である。プライマー中のＹ、ＲおよびＮは混合塩基を示す。完全長ｃＤＮＡ合成試薬ＧｅｎｅＲａｃｅｒ（インビトロジェン）を用いて作製したウミサボテン完全長ｃＤＮＡライブラリーを鋳型とし、ウミサボテン発光タンパク質特異的プライマーＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ１−ＡまたはＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ１−ＲとＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｐｒｉｍｅｒ（５’−ＣＧＡ ＣＴＧ ＧＡＧ ＣＡＣ ＧＡＧ ＧＡＣ ＡＣＴ ＧＡ−３’）（配列番号２１）とを用いて５’−ＲＡＣＥ ＰＣＲを行った。効果的にＣＢＰ遺伝子を増幅させるため、５’−ＲＡＣＥ ＰＣＲで増幅した遺伝子を鋳型にし、内側のプライマー対でさらに特異的に遺伝子増幅させるｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを行った。このｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲにはＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ２−ＡまたはＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ２−ＲとＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｎｅｓｔｅｄ Ｐｒｉｍｅｒ（５’−ＧＧＡ ＣＡＣ ＴＧＡ ＣＡＴ ＧＧＡ ＣＴＧ ＡＡＧ ＧＡＧ ＴＡ−３’）（配列番号２２）とのプライマー対で実施した。ポリメラーゼＥｘ−Ｔａｑ（タカラバイオ株式会社）をマニュアルに従って用いた。
1) 5 'terminal cloning of the CBP gene Cloning of the 5' terminal of the CBP gene was performed as follows. Known literature (Titushin, MS. Et al. (2008) Coelenterazine-binding protein of Renilla muelleri: cDNA cloning, overexpression, and characterization as a substrate of luciferase., Photochem Photobiol Sci., 7 (2): 189-196. ) With reference to the well-conserved amino acid regions “DFNKNGQI” and “DTDKDGYV”, primers were prepared. Primer sequences prepared with reference to “DFNKNGQI” include LBP-Cloning-R1-A (5′-ATY TGN CCR TTY TTR TTR AAAa TC-3 ′) (SEQ ID NO: 29) and LBP-Cloning-R1-R ( 5′-ATY TGN CCR TTY TTR TTR ATR TC-3 ′) (SEQ ID NO: 30) and the primer sequence prepared with reference to “DTDKDGYV” are LBP-Cloning-R2-A (5′-ACR TAN CCR TCY TTR). TCN GTa TC-3 ′) (SEQ ID NO: 31) and LBP-Cloning-R2-R (5′-ACR TAN CCR TCY TTR TCN GTg TC-3 ′) (SEQ ID NO: 32). Y, R and N in the primer represent mixed bases. Using the full-length cDNA library prepared using the full-length cDNA synthesis reagent GeneRacer (Invitrogen) as a template, the cactus photoprotein-specific primer LBP-Cloning-R1-A or LBP-Cloning-R1-R and
５’Ｒａｃｅ ＰＣＲを以下の要領で実施した。１０μｌのＰＣＲ反応溶液として、１０×Ｅｘ Ｔａｑ Ｂｕｆｆｅｒ（２０ｍＭ Ｍｇ２＋ ｐｌｕｓ）（最終濃度が等倍）、ｄＮＴＰ Ｍｉｘｔｕｒｅ（各２．５ｍＭ）（最終濃度が各０．２ｍＭ）、ＴａＫａＲａ Ｅｘ Ｔａｑ（５Ｕ／μｌ）（最終濃度が０．０５Ｕ／μｌ）、ＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ１−ＡまたはＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ１−Ｒ（それぞれ最終濃度が２．０μＭ）、ＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｐｒｉｍｅｒ（最終濃度が０．３μＭ）となるように調整し、ウミサボテンの完全長ｃＤＮＡライブラリー溶液を０．３μｌ加えた。ＰＣＲ反応条件は、９４℃２分間の熱変性後、９４℃３０秒、５０℃３０秒および７２℃４分を３０サイクル、最後に７２℃５分間の伸長反応とした。ＰＣＲ反応後、１μｌのＰＣＲ反応溶液を、１％ＴＡＥアガロースゲルを用いて電気泳動し、エチジウムブロマイド染色後、紫外線照射下で増幅遺伝子のバンドを観察した。ＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ１−ＡまたはＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ１−ＲとＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｐｒｉｍｅｒとのプライマーの組み合わせで実施したＰＣＲでは顕著な遺伝子増幅は認められなかった。このＰＣＲ産物を鋳型として５’ｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを実施した。
5 'Race PCR was performed as follows. As a PCR reaction solution of 10 μl, 10 × Ex Taq Buffer (20
ｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを以下の要領で実施した。３０μｌのＰＣＲ反応溶液として、１０×Ｅｘ Ｔａｑ Ｂｕｆｆｅｒ（２０ｍＭ Ｍｇ２＋ ｐｌｕｓ）（最終濃度が等倍）、ｄＮＴＰ Ｍｉｘｔｕｒｅ（各２．５ｍＭ）（最終濃度が各０．２ｍＭ）、ＴａＫａＲａ Ｅｘ Ｔａｑ（５Ｕ／μｌ）（最終濃度が０．０５Ｕ／μｌ）、ＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ２−ＡまたはＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ２−Ｒはそれぞれ最終濃度が２．０μＭ、ＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｎｅｓｔｅｄ Ｐｒｉｍｅｒは最終濃度が０．３μＭに調整し、１０倍希釈した５’Ｒａｃｅ ＰＣＲ反応溶液を鋳型として３．０μｌを加えた。ＰＣＲ反応条件は、９４℃２分間の熱変性後、９４℃３０秒、５０℃３０秒および７２℃４分を３０サイクル、最後に７２℃５分間の伸長反応とした。ＰＣＲ反応後、１μｌのＰＣＲ反応溶液を、１％ＴＡＥアガロースゲルを用いて電気泳動し、エチジウムブロマイド染色後、紫外線照射下で増幅遺伝子のバンドを観察した。ＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ１−ＡとＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’Ｐｒｉｍｅｒとの組み合わせで実施した５’Ｒａｃｅ ＰＣＲ反応溶液を鋳型とし、ＬＢＰ−Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ｒ２−ＡとＧｅｎｅＲａｃｅｒ５’ Ｎｅｓｔｅｄ Ｐｒｉｍｅｒとのプライマーの組み合わせで実施したＰＣＲにおいて顕著な遺伝子増幅が認められたため、フラグメントの遺伝子配列を読み取った。その結果、２つＣＢＰの５’末端側の配列を確認した（配列番号３３および配列番号３４）。得られた配列を基にＣＢＰ遺伝子の完全長配列を増幅するためのＰＣＲに用いる遺伝子特異的プライマーを作製した。プライマーの配列は次の通りである：ＣｏＣＢＰ−１−Ｆｕｌｌ−Ｆ１（５’−ＡＴＡ ＣＡＡ ＡＣＡ ＡＡＣ ＡＧＴ ＡＴＴ ＡＧＡ ＡＴＡ Ａ−３’）（配列番号３５）、ＣｏＣＢＰ−２−Ｆｕｌｌ−Ｆ１（５’−ＴＣＡ ＴＣＡ ＴＡＡ ＣＡＡ ＡＣＴ ＡＣＴ ＡＡＣ ＴＧＴ Ｔ−３’）（配列番号３６）。 Nested PCR was performed as follows. As a PCR reaction solution of 30 μl, 10 × Ex Taq Buffer (20 mM Mg2 + plus) (final concentration is 1 ×), dNTP Mixture (each 2.5 mM) (final concentration is 0.2 mM each), TaKaRa Ex Taq (5 U / μl) ) (Final concentration is 0.05 U / μl), LBP-Cloning-R2-A or LBP-Cloning-R2-R is adjusted to a final concentration of 2.0 μM, and GeneRacer5 ′ Nested Primer is adjusted to a final concentration of 0.3 μM. 3.0 μl was added using 10-fold diluted 5 ′ Race PCR reaction solution as a template. The PCR reaction conditions were heat denaturation at 94 ° C. for 2 minutes, 30 cycles of 94 ° C. for 30 seconds, 50 ° C. for 30 seconds and 72 ° C. for 4 minutes, and finally an extension reaction at 72 ° C. for 5 minutes. After the PCR reaction, 1 μl of the PCR reaction solution was electrophoresed using a 1% TAE agarose gel. After ethidium bromide staining, the amplified gene band was observed under ultraviolet irradiation. Remarkable in PCR performed using a 5 'Race PCR reaction solution performed in combination with LBP-Cloning-R1-A and GeneRacer 5' Primer as a template and a primer combination of LBP-Cloning-R2-A and GeneRacer 5 'Nested Primer Since gene amplification was observed, the gene sequence of the fragment was read. As a result, the sequences on the 5 'end side of two CBPs were confirmed (SEQ ID NO: 33 and SEQ ID NO: 34). Gene-specific primers used in PCR for amplifying the full-length sequence of the CBP gene were prepared based on the obtained sequence. The primer sequences are as follows: CoCBP-1-Full-F1 (5′-ATA CAA ACA AAC AGT ATT AGA ATA A-3 ′) (SEQ ID NO: 35), CoCBP-2-Full-F1 (5 ′ -TCA TCA TAA CAA ACT ACT AAC TGT T-3 ') (SEQ ID NO: 36).
２）ＣＢＰ遺伝子の完全長配列のクローニング
ＣＢＰ遺伝子の完全長配列のクローニングを以下の要領で実施した。完全長ｃＤＮＡ合成試薬ＧｅｎｅＲａｃｅｒ（インビトロジェン）を用いて作製したウミサボテン完全長ｃＤＮＡライブラリーを鋳型とし、遺伝子特異的プライマーＣｏＣＢＰ−１−Ｆｕｌｌ−Ｆ１またはＣｏＣＢＰ−２−Ｆｕｌｌ−Ｆ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｐｒｉｍｅｒ（５’−ＧＣＴ ＧＴＣ ＡＡＣ ＧＡＴ ＡＣＧ ＣＴＡ ＣＧＴ ＡＡＣ Ｇ−３’）（配列番号２６）とを用いて３’−ＲＡＣＥ ＰＣＲを行った。ポリメラーゼはＫＯＤ−ＦＸ（ＴＯＹＯＢＯ）をマニュアルに従って用いた。
2) Cloning of full-length sequence of CBP gene Cloning of the full-length sequence of CBP gene was performed as follows. Gene-specific primers CoCBP-1-Full-F1 or CoCBP-2-Full-F1 and
３’Ｒａｃｅ ＰＣＲを以下の要領で実施した。１０μｌのＰＣＲ反応溶液として、２×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ（最終濃度が等倍）、ｄＮＴＰ Ｍｉｘｔｕｒｅ（各２．０ｍＭ）（最終濃度が各０．４ｍＭ）、ＫＯＤ ＦＸ（５Ｕ／μｌ）（最終濃度が０．１Ｕ／μｌ）、ＣｏＣＢＰ−１−Ｆｕｌｌ−Ｆ１またはＣｏＣＢＰ−２−Ｆｕｌｌ−Ｆ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｐｒｉｍｅｒとのプライマー対（それぞれ最終濃度が０．３μＭ）となるように調整し、ウミサボテンの完全長ｃＤＮＡライブラリー溶液を０．２μｌ加えた。ＰＣＲ反応条件は、９４℃２分間の熱変性後、９４℃３０秒、５０℃３０秒および６８℃１分を３５サイクル、最後に７２℃５分間の伸長反応とした。ＰＣＲ反応後、１μｌのＰＣＲ反応溶液を、１％ＴＡＥアガロースゲルを用いて電気泳動し、エチジウムブロマイド染色後、紫外線照射下で増幅遺伝子のバンドを観察した。ＣｏＣＢＰ−１−Ｆｕｌｌ−Ｆ１またはＣｏＣＢＰ−２−Ｆｕｌｌ−Ｆ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｐｒｉｍｅｒとの組み合わせで実施したＰＣＲにおいて顕著な遺伝子増幅が認められたため、フラグメントの遺伝子配列を読み取った。ＣｏＣＢＰ−１−Ｆｕｌｌ−Ｆ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｐｒｉｍｅｒとの組み合わせで実施したＰＣＲから３つの配列を確認できた（ＣＢＰ１＿１：配列番号３７、ＣＢＰ１＿２：配列番号３８およびＣＢＰ１＿３：配列番号３９）。また、ＣｏＣＢＰ−２−Ｆｕｌｌ−Ｆ１とＧｅｎｅＲａｃｅｒ３’ Ｐｒｉｍｅｒとの組み合わせで実施したＰＣＲから１つの配列を確認できた（ＣＢＰ２：配列番号４０）。得られた完全長ＣＢＰ遺伝子の塩基配列から配列情報解析ソフトウェア ＤＮＡＳＩＳ Ｐｒｏを用いて、予想されるＣＢＰ遺伝子のＯｐｅｎ Ｒｅａｄｉｎｇ Ｆｒａｍｅ塩基配列およびそれを翻訳したアミノ酸配列を得た（ＣＢＰ１＿１：配列番号３７から配列番号６および配列番号５、ＣＢＰ１＿２：配列番号３８から配列番号８および配列番号７、ＣＢＰ１＿３：配列番号３９から配列番号１０および配列番号９、およびＣＢＰ２：配列番号４０から配列番号１２および配列番号１１）。なお、ＣＢＰ１＿２とＣＢＰ２とは、完全長塩基配列同士は５’ＵＴＲおよび３’ＵＴＲにおいて大きく異なるものの、アミノ酸に翻訳すると開始コドンから終始コドンまでのアミノ酸配列が一致した。
3 'Race PCR was performed as follows. As a 10 μl PCR reaction solution, 2 × PCR Buffer (final concentration is equal to 1 ×), dNTP Mixture (each 2.0 mM) (final concentration is 0.4 mM each), KOD FX (5 U / μl) (final concentration is 0. 1). 1U / μl), CoCBP-1-Full-F1 or CoCBP-2-Full-F1 and
このＯｐｅｎ Ｒｅａｄｉｎｇ Ｆｒａｍｅ領域を遺伝子発現用ベクターｐＲＳＥＴ（Ｂ）（プロメガ）に導入し、大腸菌株ＪＭ１０９（ＤＥ３）（プロメガ）に形質転換し、Ｈｉｓタグを用いたタンパク質精製の手法を用いてＣＢＰを精製した。精製したタンパク質について、カルシウムに対する応答性を調べた。すなわち、ＣＢＰにセレンテラジンを結合させた後、カルシウム溶液を添加して、ウミシイタケルシフェラーゼによってセレンテラジンの放出を検出した。ウミシイタケルシフェラーゼはセレンテラジンと結合すると発光することがわかっている。 This Open Reading Frame region is introduced into a gene expression vector pRSET (B) (Promega), transformed into E. coli strain JM109 (DE3) (Promega), and CBP is purified using a protein purification technique using a His tag. did. The purified protein was examined for responsiveness to calcium. That is, after coelenterazine was bound to CBP, a calcium solution was added, and the release of coelenterazine was detected by Renilla luciferase. Renilla luciferase is known to emit light when bound to coelenterazine.
ルシフェリン溶液を、５ｍＬの緩衝液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、２０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ）に対し、５ｍＭでセレンテラジンを含む溶液を５μＬ添加することで作製した。ルシフェラーゼ溶液を、５ｍＬの緩衝液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、２０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ）に対し、４．１８ｍｇ／ｍＬでｈＲＬｕｃを含む溶液を５μＬ添加することで作製した。２００ｍＭカルシウム溶液を、４．５ｍＬの緩衝液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、２０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ）に対し、２ＭのＣａＣｌ２溶液を５００μＬ添加することで作製した。 A luciferin solution was prepared by adding 5 μL of a solution containing coelenterazine at 5 mM to 5 mL of a buffer solution (20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 20 mM NaCl, 1 mM EDTA). The luciferase solution was prepared by adding 5 μL of a solution containing hRLuc at 4.18 mg / mL to 5 mL of buffer solution (20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 20 mM NaCl, 1 mM EDTA). A 200 mM calcium solution was prepared by adding 500 μL of a 2M CaCl 2 solution to 4.5 mL of a buffer solution (20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 20 mM NaCl, 1 mM EDTA).
最初に、精製したＣＢＰ１＿１を含むＣＢＰ溶液５μｌに対し、ルシフェリン溶液４５μｌを添加し、ＣＢＰ１＿１とセレンテラジンとを結合させた。その後、そこへルシフェラーゼ溶液５０μｌを添加し、一定時間発光量を測定した。測定にはＬｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓｏｒ（アトー）を用いた。さらに、２００ｍＭカルシウム溶液５０μｌを添加し、発光量を測定した。なお、２００ｍＭカルシウム溶液の添加により、溶液中の塩化カルシウム濃度は６６．７ｍＭとなる。ＣＢＰ溶液の測定と並行して、ＣＢＰ溶液の代わりにカルシウムを含まない５０μｌの緩衝液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、２０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ）についても同様に測定し、比較対象とした。 First, 45 μl of luciferin solution was added to 5 μl of CBP solution containing purified CBP1_1 to bind CBP1_1 and coelenterazine. Thereafter, 50 μl of a luciferase solution was added thereto, and the amount of luminescence was measured for a certain time. Luminescence (Ato) was used for the measurement. Further, 50 μl of 200 mM calcium solution was added, and the amount of luminescence was measured. In addition, the calcium chloride concentration in a solution will be 66.7 mM by addition of a 200 mM calcium solution. In parallel with the measurement of the CBP solution, a 50 μl buffer solution (20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 20 mM NaCl, 1 mM EDTA) containing no calcium instead of the CBP solution was similarly measured and used as a comparison target. .
図５に、測定結果を示す。図５に示されるグラフにおいて、横軸は時間（分）、縦軸は発光強度を示す。比較対象とした緩衝液では、添加の前後においてほぼ一定の低い発光強度を示した。一方、ＣＢＰ溶液では、添加の前では、緩衝液と同様にほぼ一定の低い発光強度を示したものの、添加後、非常に高い発光強度を示した。このことから、ＣＢＰ１＿１は、カルシウムイオンの添加によってセレンテラジンを放出することがわかる。 FIG. 5 shows the measurement results. In the graph shown in FIG. 5, the horizontal axis represents time (minutes) and the vertical axis represents emission intensity. The buffer solution to be compared showed a substantially constant low emission intensity before and after addition. On the other hand, the CBP solution showed an almost constant low emission intensity as in the buffer solution before the addition, but showed a very high emission intensity after the addition. This shows that CBP1_1 releases coelenterazine by the addition of calcium ions.
ＣＢＰ１＿２、ＣＢＰ１＿３およびＣＢＰ２についても実験を行い、同様の結果が得られた。 Experiments were also performed on CBP1_2, CBP1_3, and CBP2, and similar results were obtained.
［実施例３］
図７に沿って、カルシウム濃度測定および蛍光イメージングを同時または連続的に行う方法の例を示す。
図７（ａ）に示すように、本発明に係る蛍光タンパク質およびカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質が発現する細胞１００に対してセレンテラジン３を添加する。このとき、ほぼ全てのカルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質がセレンテラジン３と結合できるように、十分量のセレンテラジン３を添加する。
[Example 3]
FIG. 7 shows an example of a method for performing calcium concentration measurement and fluorescence imaging simultaneously or sequentially.
As shown in FIG. 7 (a),
次に、図７（ｂ）に示すように、余分なセレンテラジン３を培地２００から除去する。これは、培地２００を交換することで行う。
Next, as shown in FIG. 7B,
その後、図７（ｃ）に示すように、細胞１００を薬剤にて刺激し、それによって生じる細胞内カルシウム濃度の上昇を、発光タンパク質の発光観察により検出する。検出は、発光検出器３００として蛍光顕微鏡を用いて行う。
Thereafter, as shown in FIG. 7 (c), the
続いて、図７（ｄ）に示すように、カルシウム濃度上昇以降の細胞内の状態を蛍光観察する。細胞１００は、蛍光タンパク質と細胞内タンパク質との融合タンパク質の遺伝子が導入されており、刺激によって当該遺伝子の発現が生じることを、蛍光の発生として検出する。この検出は、蛍光検出器４００として蛍光顕微鏡を用いて行う。
Subsequently, as shown in FIG. 7D, the intracellular state after the increase in the calcium concentration is observed with fluorescence. In the
図７（ｅ）には、発光の検出および蛍光の検出の結果が示される。この結果によれば、発光が生じた後、一定時間後蛍光が生じている。刺激後、細胞内カルシウム濃度が上昇し、その一定時間後にタンパク質の発現が生じたことがわかる。すなわち、刺激とタンパク質の発現との関係にカルシウムによる情報伝達が関与することがわかる。 FIG. 7 (e) shows the results of luminescence detection and fluorescence detection. According to this result, fluorescence is generated after a certain time after light emission. It can be seen that intracellular calcium concentration increased after stimulation, and protein expression occurred after a certain period of time. That is, it is understood that calcium-related information transmission is involved in the relationship between stimulation and protein expression.
本発明による方法を用いれば、例えば神経細胞において、外部からの薬剤刺激によって細胞内のカルシウム濃度が上昇する様子と、その後の伝達経路などの解析とを同時または連続的に行うことができる。 By using the method according to the present invention, for example, in nerve cells, the state in which the intracellular calcium concentration increases due to external drug stimulation and the subsequent analysis of the transmission pathway can be performed simultaneously or continuously.
１…カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質、２…発光タンパク質、３…セレンテラジン、４…カルシウムイオン、１００…細胞、２００…培地、３００…発光検出器、４００…蛍光検出器。
DESCRIPTION OF
Claims (24)
（ａ）配列番号２または４に示された塩基配列、
（ｂ）前記（ａ）に示された塩基配列を含む核酸に対して緊縮的な条件下でハイブリダイズする核酸が有する塩基配列であって、発光タンパク質をコードする塩基配列、および
（ｃ）前記（ａ）または（ｂ）に示された塩基配列に相補的な塩基配列
から成る群から選択される塩基配列である請求項６に記載の核酸。 The base sequence is
(A) the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 or 4,
(B) a base sequence possessed by a nucleic acid that hybridizes under stringent conditions to a nucleic acid comprising the base sequence shown in (a) above, the base sequence encoding a photoprotein, and (c) the above The nucleic acid according to claim 6, which is a base sequence selected from the group consisting of base sequences complementary to the base sequences shown in (a) or (b).
（１）配列番号６、８、１０または１２に示された塩基配列、
（２）前記（１）に示された塩基配列を含む核酸に対して緊縮的な条件下でハイブリダイズする核酸が有する塩基配列であって、カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質をコードする塩基配列、および
（３）前記（２）または（３）に示された塩基配列に相補的な塩基配列
から成る群から選択される塩基配列である請求項１３に記載の核酸。 The base sequence is
(1) the base sequence shown in SEQ ID NO: 6, 8, 10 or 12,
(2) a base sequence possessed by a nucleic acid that hybridizes under stringent conditions to a nucleic acid comprising the base sequence shown in (1) above, the base sequence encoding a calcium-responsive coelenterazine binding protein; and (3) The nucleic acid according to claim 13, which is a base sequence selected from the group consisting of base sequences complementary to the base sequence shown in (2) or (3).
請求項１から５の何れか１項に記載の発光タンパク質からの発光を検出する工程
を含む細胞内または細胞外のカルシウム濃度を測定する方法。 A step of preparing the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to any one of claims 8 to 12 bound to coelenterazine, and detecting luminescence from the photoprotein according to any one of claims 1 to 5. A method for measuring intracellular or extracellular calcium concentration comprising a step.
過剰なセレンテラジンを除去する工程、
請求項１から５の何れか１項に記載の発光タンパク質からの発光を検出する工程、および
細胞内に発現させた蛍光タンパク質からの蛍光を検出する工程
を含む細胞内のカルシウム濃度測定および蛍光イメージングを同時または連続的に行う方法。 Preparing a calcium-responsive coelenterazine binding protein according to any one of claims 8 to 12 bound to coelenterazine;
Removing excess coelenterazine,
Cellular calcium concentration measurement and fluorescence imaging comprising the steps of detecting luminescence from the photoprotein according to any one of claims 1 to 5, and detecting fluorescence from a fluorescent protein expressed in the cell. A method of performing these simultaneously or sequentially.
前記カルシウム応答性セレンテラジン結合タンパク質に対してカルシウムを供給する工程
を含むセレンテラジンを供給する方法。 A coelenterazine comprising: a step of preparing the calcium-responsive coelenterazine binding protein according to any one of claims 8 to 12 bound to coelenterazine; and a step of supplying calcium to the calcium-responsive coelenterazine binding protein. Method.
カルシウムイオンを添加した溶出液を前記担体に接触させ、セレンテラジンを含む精製液を得る第２の工程
を含むセレンテラジンの精製方法。 A first step of contacting a carrier on which the calcium-responsive coelenterazine-binding protein according to any one of claims 8 to 12 is immobilized with a solution containing coelenterazine under a condition where calcium ions are not added, and calcium A method for purifying coelenterazine, comprising a second step of bringing an eluate added with ions into contact with the carrier to obtain a purified solution containing coelenterazine.
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| JP2009148270A (en) * | 1998-03-27 | 2009-07-09 | Prolume Ltd | Luciferase, fluorescent protein, nucleic acid encoding luciferase and fluorescent protein and use thereof in diagnosis, high throughput screening and new item |
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Non-Patent Citations (2)
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| JPN6015000784; Ｃｏｍｐ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｐｈｙｓｉｏｌ． ６４Ｂ, 1979, ｐ．１０５-１０７ * |
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