JP2011030737A

JP2011030737A - 消臭剤

Info

Publication number: JP2011030737A
Application number: JP2009179349A
Authority: JP
Inventors: Masashi Asagai; 昌史浅貝; Atsushi Kijino; 敦来住野
Original assignee: Hodogaya Chemical Co Ltd
Current assignee: Hodogaya Chemical Co Ltd
Priority date: 2009-07-31
Filing date: 2009-07-31
Publication date: 2011-02-17

Abstract

【課題】乳酸菌Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉから、臭気成分を効果的かつ持続的に分解する有用な消臭剤を提供すること。
【解決手段】Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉ菌体を培養し、培地を除いたあと、該菌体を破砕して調製される酵素（群）を消臭剤として用いる。該消臭剤は、代表的な臭気成分であるトリメチルアミン、硫化水素に対し、高い分解活性を有し、また１２０℃×２０分の処理でも消臭活性を失わなかった。
【選択図】なし

Description

本発明は、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉの菌体を破砕して得た酵素を含む消臭剤に関するものである。

一般的かつ日常的な人間の活動空間において、塵芥や腐敗物、汗、糞尿、家畜・家禽・ペット、汚水・汚泥などに起因する不快な臭気を抑える努力がなされてきたが、多くは天然物由来の、または人工合成された強い芳香により、不快な臭気を感じにくくするものであった。また、活性炭や高分子ゲル剤など固形物により臭気を吸着させる方法も使われている。あるいは、微生物を利用した悪臭低減方法も提案されており、バチルス属やエンテロバクター属等の微生物を用いた生ゴミや活性汚泥等に対する消臭剤（例えば特許文献１、２、３、４）、ラクトバチルス・ファーメンタムおよびピキア・クルイベリの醗酵産物を用いた糞尿、厨房排水、生ゴミ等に対する消臭剤（特許文献５）、キャンディダ属、イサチェンキア属またはピヒア属の微生物を用いた生ゴミ等の悪臭低減方法（特許文献６）、家畜の尿を原料として有用微生物群およびその代謝産物をトイレなどの消臭液（特許文献７）、ラクトバチルスパラカゼイｖｉｒｏ−０１を用いた消臭剤（特許文献８）などが見られる。

また、酵素の利用技術に関しては、パパインやペプシンなど天然物から抽出された酵素の活性を利用し、ペプチド合成に活用するなど、実用的な利用方法が開示されている（非特許文献１〜３）。

特開平７−２２２７８９号公報特開平７−２２２７９０号公報特開平７−２２２７９１号公報特開平８−５９４１８号公報特開平１１−１０４２２２号公報特開平１１−３４６７６１号公報特開２００１−１８７１２６号公報特表２００５−５１２５９１号公報

有機合成化学協会誌、ｖｏｌ３６、ｐ１９５（１９７８）蛋白質核酸酵素、ｖｏｌ２６、ｐ１９７９（１９８１）発酵と工業、ｖｏｌ４１、ｐ６５６（１９８３）

しかし、強い芳香により不快な臭気を抑える方法では、臭気はそのまま存在するので根本的な解決とは言えず、また香りに関する嗜好の個人差もあるため、強い芳香そのものが不快感を与えかねないという欠点がある。また、市販の消臭剤でよく見られる活性炭や高分子ゲル剤、あるいはマイクロカプセル技術の応用に関しても、臭気をトラップするだけであり、臭気の分解除去ではないため、その効果の程度・持続性にはどうしても限度がある。また、微生物を用いる消臭効果については、臭気の原因分子を微生物が有する酵素活性により分解していると思われるが、微生物をそのまま、あるいは培養した後の培地、あるいはその両方を用いる方法がほとんどであり、そうした状態では微生物の産生する酵素の大部分は菌体内に保持されたまま通常不安定な酵素活性の維持には有効かもしれないが、基質である該原因分子との効率的な接触が制限されるため、そうした酵素により十分な効果が発揮されているとはいいがたい。さらには、生ゴミを含む塵芥集積・処理場や家畜・家禽の屎尿など臭気のことさら強いものに対しては、有効かつ持続性のある消臭剤が見出されていないのが現状である。

本発明は、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉ菌体を破砕して得られる酵素（群）を用いて、臭気成分を効果的かつ持続的に分解する消臭剤を提供することを目的としている。

本発明の消臭剤は、乳酸菌の一種であるＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉを培養し、その菌体を破砕して得られる酵素（群）を用いた消臭剤である。すなわち、本発明は次の構成を有する。

［１］
Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉの菌体を破砕して得られる酵素を含有することを特徴とする消臭剤。

［２］
前記酵素が、硫化水素の分解活性を有する酵素を含むことを特徴とする［１］に記載の消臭剤。

［３］
前記酵素が、トリメチルアミンの分解活性を有する酵素を含むことを特徴とする［１］に記載の消臭剤。

［４］
前記Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉの菌体が、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉ種菌を、酵素または酸またはアルカリによるタンパク質の加水分解物、糖類および酵母エキスを含む液体培地で、２５℃〜４０℃の温度条件下で培養することによって得られることを特徴とする［１］〜［３］いずれかの項に記載の消臭剤。

［５］
前記Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉの菌体が、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉ種菌を、脱脂粉乳および酢酸を含む液体培地で、２５℃〜４０℃の温度条件下で培養することによって得られることを特徴とする［１］〜［３］いずれかの項に記載の消臭剤。

［６］
前記液体培地が、ｐＨ５．０〜６．５に調整されていることを特徴とする［４］または［５］に記載の消臭剤。

［７］
前記培養を、培養液中での菌体増殖が静止期となるまで行うことを特徴とする［４］〜［６］いずれかの項に記載の消臭剤。

［８］
菌体と培地を分離し、該菌体を破砕することを特徴とする［１］〜［７］いずれかの項に記載の消臭剤。

［９］
前記した菌体の破砕が、高圧乳化装置を用いて行われることを特徴とする［８］に記載の消臭剤。

［１０］
前記消臭剤が、ｐＨ４．５〜５．５に調整されていることを特徴とする［１］〜［９］いずれかの項に記載の消臭剤。

［１１］
前記菌体を破砕して得られる酵素が、酵素（群）液であることを特徴とする［１］〜［１０］いずれかの項に記載の消臭剤。

［１２］
前記Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉが、ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉＨＡＫ−Ｎｉｏｔｗｏ（ＦＥＲＭＡＰ−２１４７４）であることを特徴とする［１］〜［１１］いずれかの項に記載の消臭剤。

以下、本発明について説明する。本発明で用いられる微生物菌体は、乳酸菌の一種である、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉであれば、特に限定されない。該菌種において、入手・取り扱い等が容易な菌株を選択し、本発明に用いれば問題ないが、特に好ましいものは、ＬａｃｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉＨＡＫ−Ｎｉｏｔｗｏ（ＦＥＲＭＡＰ−２１４７４）である。菌株の取得は、当業者が通常行う単離方法によって天然のものを得るほかに、ＡＴＣＣや独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターなどから所定の手続を経て入手しても良い。なお、同じＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉに属する菌株であれば、混合培養してもよい。また、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉの増殖が阻害されない範囲において、酵母等の他微生物と混合培養したものを、本発明に用いることもできる。

本発明において、前記のＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉ菌体を培養するための培地は、該菌体が増殖するものであれば、特に限定されない。該菌体の良好な増殖のために、培地成分として含有することが好ましいものとして、酵素または酸またはアルカリによるタンパク質の加水分解物（ペプトン・ポリペプトン・トリプトンなど）、肉エキス、ブドウ糖・蔗糖・果糖・麦芽糖などから選択される１種または２種以上の糖類、酵母エキス、クエン酸ナトリウム・クエン酸アンモニウム・酢酸ナトリウム・硫酸マグネシウム・硫酸マンガン・リン酸一カリウム・リン酸二カリウム、硫酸第一鉄などから適宜選択される塩類を挙げることができる。Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉを含む乳酸菌の培地例としては、ＧＹＰ培地、ＭＲＳ培地、ＧＡＭ培地、Ｒｏｇｏｓａ培地、ＬＢＳ培地、ブルセラ培地、ＲＡＫＡ−ＲＡＹ培地などが一般的に知られており、これらの培地をそのまま、あるいは改良して用いてもよい。

以下に、ＧＹＰ培地、ＭＲＳ培地、ＧＡＭ培地の各組成を例示する。
ＧＹＰ培地；ブドウ糖１０ｇ、酵母エキス１０ｇ、ポリペプトン５ｇ、酢酸ナトリウム三水和物２ｇ、硫酸マグネシウム七水和物０．０２ｇ、硫酸マンガン四水和物０．００１ｇ、硫酸鉄七水和物０．００１ｇ、塩化ナトリウム０．００１ｇ、Ｔｗｅｅｎ８００．０５ｇを精製水または蒸留水１Ｌに溶かす。
ＭＲＳ培地；ブドウ糖２０ｇ、酵母エキス４ｇ、ペプトン１０ｇ、肉エキス８ｇ、リン酸水素二カリウム２ｇ、酢酸ナトリウム三水和物５ｇ、クエン酸三アンモニウム２ｇ、硫酸マグネシウム七水和物０．２ｇ、硫酸マンガン四水和物０．０５ｇ、Ｔｗｅｅｎ８０１ｇを精製水または蒸留水１Ｌに溶かす。
ＧＡＭ培地；ブドウ糖３ｇ、酵母エキス５ｇ、ペプトン１０ｇ、ダイズペプトン３ｇ、プロテオースペプトン１０ｇ、肉エキス２．２ｇ、消化血清末１３．５ｇ、肝臓エキス１．２ｇ、リン酸二水素カリウム２．５ｇ、塩化ナトリウム６ｇ、可溶性デンプン５ｇ、Ｌ−システイン塩酸塩０．３ｇ、チオグリコール酸ナトリウム０．３ｇを精製水または蒸留水１Ｌに溶かす。

または、脱脂粉乳（スキムミルク）および酢酸からなる培地を用いてもよい。該培地に、酢酸ナトリウム、クエン酸アンモニウム、酵母エキスを加えてもよい。脱脂粉乳は、牛や羊、山羊、ヒトなど各種哺乳動物から得られた乳を原材料としたものであれば、特に制約されないが、牛の乳を原材料としたものが入手し易く、量・品質も安定している。

以下に、脱脂粉乳培地の組成を例示する。
脱脂粉乳培地；脱脂粉乳７０ｇ、酢酸ナトリウム三水和物１５ｇ、クエン酸三アンモニウム２ｇ、氷酢酸１．３２ｍＬを精製水または蒸留水１Ｌに溶かす。

培地の形態は、菌体が増殖するものであれば、液体培地、あるいは寒天等を用いた固形培地・半流動培地などに特に限定されないが、該菌体の増殖効率や菌体回収などの処理の面から、液体培地が好ましい。また、雑菌の混入増殖の抑制のため、培地に、酢酸タリウム、ソルビン酸、酢酸、亜硝酸ナトリウム、シクロヘキシミドおよびポリミキシン等から適宜選択したものを適量培地に加えてもよい。

培地のｐＨは、選択した培地組成において該菌体が増殖可能なｐＨであれば特に限定されないが、該菌体にとって好適で、かつ雑菌等の混入増殖が抑制されるｐＨ５．０〜６．５が好ましく、ｐＨ５．５〜６．０が特に好ましい。

培地は、高圧蒸気滅菌、あるいはフィルター滅菌など通常用いられる滅菌方法を用いて滅菌し、菌体培養に用いればよい。培養容器は、フラスコ、シャーレ、ジャーファメンター、大型培養槽など、選択した培地の組成・形態や、培養する規模に応じて適宜選択して用いればよい。

培養条件は、選択した培地において前記菌体が好適に増殖する条件であれば、特に限定されないが、培養温度としては２５〜４０℃が好ましく、３０〜３７℃が特に好ましい。また、乳酸菌は一般的に微好気性だが、菌株によっても程度が異なるので、使用する菌株が好適に増殖できる通気条件を適宜選択するのが好ましい。また、培養方法は、培養容器・培養規模などに合わせて静置培養、振盪培養、攪拌培養などの培養方法を適宜選択することができる。

培地に種菌を接種し、培養を行う。培養は、任意の菌体数・密度に達するまで行えばよいが、効率的な菌体取得に好適な菌体密度は、培養条件によって異なるが、培養液中で菌体増殖が静止期となるおよそ１０^５〜１０^９ｃｆｕ／ｍＬである。前記ＭＲＳ培地を用い、３７℃で液体静置培養を行った場合、通常２０〜４８時間で好適な菌体密度に達する。好適な菌体密度に達した後、死滅期に入る恐れがあるので、培養終了後は、速やかに増殖した菌体を回収し処理するほうが好ましい。

菌体の回収方法としては、遠心分離、フィルター濾過など、微生物菌体を回収するために当業者が通常行う方法を用いることができる。遠心分離で回収を行う場合、３０００Ｇ〜４５００Ｇの遠心力で１０〜３０分間遠心を行い、遠心後上澄を静かに捨て、遠沈した菌体を回収する。得られた菌体は、緩衝液（ｐＨ５．０〜５．５）に懸濁するのが好ましい。緩衝液の組成としてはクエン酸とクエン酸ソーダからなる緩衝液を例示することができる。必要に応じて、該菌体の遠沈と生理食塩水による懸濁を複数回繰り返し、最終的に該緩衝液に懸濁してもよい。

次に、得られた菌体を破砕し、消臭効果を有する酵素（群）を調製する。破砕方法は、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉ菌体が破砕できる方法であれば、特に限定されないが、菌体粉砕の機器として、（１）湿式粉砕器、たとえばサンドグラインダー（五十嵐機械製造（株））、ダイノミル（（株）シンマルエンタープライゼス）、マイクロス（（株）奈良機械製作所）、ＳＨＡＫＥＭＡＳＴＥＲ（（株）バイオメディカルサイエンス）、（２）凍結粉砕装置、たとえば凍結粉砕器（（株）マイクロテック・ニチオン）、（３）高圧乳化装置、たとえば、ｎａｎｏ３０００（（株）美粒）、ナノマイザー（吉田機械興業（株））、などを用いることができる。このうち、高圧乳化装置を用いると、粉砕効率が高く好ましい。

上記の破砕機器を用いて破砕する場合、菌体密度が１×１０^１０ｃｆｕ／ｍＬ程度になるよう上記緩衝液に懸濁し、破砕機器で処理するほうが、作業効率の点などで好ましい。破砕の程度が十分か否かは、たとえば光学顕微鏡による確認、あるいは後述するポリアクリルアミドゲル電気泳動法などによるタンパク質量の測定などで判断することができる。

菌体の破砕により酵素（群）液を調製し、該酵素（群）液を消臭剤として用いる。該酵素（群）液は、そのままで消臭剤として用いてもよく、あるいは水もしくは上記緩衝液等で希釈して消臭剤として用いてもよい。希釈は、１０万倍までの範囲で行うのが好ましく、より好ましくは１万倍までの範囲である。ｐＨは、特に制限はないが、雑菌等の混入・増殖を抑制するうえでｐＨ４．５〜５．５に調製することが好ましい。また、破砕後に、不溶物を、濾紙等で濾し分けたり、遠心により沈殿させ除いて、用いてもよい。該消臭剤の消臭効果は、臭気を含む空気中に噴霧し、または臭気源に直接噴霧あるいは散布すれば発揮させることができる。消臭効果を阻害しない範囲で、制菌剤や防カビ剤など種々の機能性化合物や芳香性化合物などと併用してもよい。

前記の消臭剤を、臭気を含む空気中や、あるいは臭気源に噴霧する場合、噴霧の方法は特に限定されず、一般的な方法であれば支障なく用いることができる。容器としても、一般的なスプレー容器、あるいはトリガー式などの噴霧器に充填して用いてもよく、大気中に直接噴霧し、あるいは臭気源に直接撒布することもできる。また、布・スポンジ等に含ませて、臭気物が付着した箇所をふき取ると同時に消臭してもよい。ある程度の規模で臭気を含む空気を処理する方法として、該消臭剤液中に該空気をバブリングし、あるいは該空気を、消臭剤液をシャワー状に散布させる処理装置中を通過させるなどして、効率的に消臭剤液と接触させて処理しても良い。

または、設備・装置的な使用方法として、前記酵素（群）液をゼオライト・不織布等に吸着させ、あるいは含水ゲルに吸収させて該酵素（群）を担持し、それと臭気を含む空気を接触させて臭気を処理することもできる。また、該酵素（群）をシリカ粒子の表面に結合させ、該シリカ粒子を液相または気相中で臭気（物質）に接触させ、消臭用途に使用することもできる。

本発明の消臭剤は、長期間にわたって消臭効果が安定しており、また、１２０℃×２０分間の熱処理でも失活しないことから、長く常温で保存することが可能であるが、冷蔵保存、もしくは冷暗所にて保管するのが好ましい。また、タンパク質分解酵素等の影響も受けるので、そうした酵素や、あるいはそうした酵素を産生・分泌するバクテリア・カビなどの微生物のコンタミを避けて保管することが望ましい。

本発明の消臭剤は、強力な臭気分解能を有するため、広範囲な目的に使用可能である。トイレ、冷蔵庫、自動車の車内といった比較的狭くかつ密閉的な空間だけでなく、開放空間における臭気除去にも効果を発揮する。また、本発明の消臭剤は、各種の臭気、たとえば人、動物、タバコ等による臭気、トイレ、家庭の生ゴミなど塵芥汚物からの臭気、ペットや養豚・養鶏などの家畜の***物による臭気などに有効である。さらに、本発明の消臭剤は、たとえば臭気源に噴霧または散布すると、短時間で消臭効果を示すだけでなく、その効果が持続するという特徴を有する。また、本発明の消臭剤に含まれる酵素（群）は、臭気原因となる化学物質の少なくとも二つ、硫化水素とトリメチルアミンに対し、それらの分解活性を有する。なお、本発明の消臭剤は、人体、ペット、家畜、植物に接触し、あるいは摂取されても、毒性を示さない。

以下、実施例をもって本発明を説明するが、これらは本発明の実施の形態をなんら限定するものではない。

［培養例１］標準培地法
酵母エキス０．２５ｇ、トリプトン０．５ｇ、グルコース１．０ｇを蒸留水１００ｍＬに溶解して標準培地を調製し、３００ｍＬ三角フラスコに入れ、オートクレーブで１２０℃×２０分の滅菌処理を行った。次に、室温まで冷却し、ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉＨＡＫ−Ｎｉｏｔｗｏ（ＦＥＲＭＡＰ−２１４７４）の凍結乾燥菌体粉末（種菌）１０ｍｇをクリーンベンチ内にて加え、３７±１℃のインキュベーターに入れて２４時間静置培養した。培養後、その培養液から１ｍＬをとり、段階的に滅菌水で希釈し、ＢＣＰ加プレートカウント寒天培地（ＢＣＰ加プレートカウント寒天培地（商品名、栄研化学（株）製）２４．６ｇを蒸留水１Ｌに溶解し、オートクレーブで１２０℃×２０分処理し、５０℃まで冷却した後、１００ｐｐｍとなるようシクロへキシミドを加えてシャーレに分注し、固化させたもの）に、各希釈段階の液それぞれ１００μＬをコランジ棒で塗布し、３７℃×７２時間培養して菌数を確認した。結果、標準培地法により、３．０×１０^５ｃｆｕ／ｍＬの当該菌体を得た。

［培養例２］低臭気培養法１
トリプトン０．５ｇ、グルコース１．０ｇを蒸留水１００ｍＬに溶解し、３００ｍＬ三角フラスコに入れ、オートクレーブで１２０℃×２０分の滅菌処理を行った。次に、室温まで冷却し、ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉＨＡＫ−Ｎｉｏｔｗｏ（ＦＥＲＭＡＰ−２１４７４）の凍結乾燥菌体粉末１０ｍｇをクリーンベンチ内にて加え、３７±１℃のインキュベーターに入れて２４時間静置培養した。培養後、その培養液から１ｍＬをとり、滅菌水で段階的に希釈し、ＢＣＰ加プレートカウント寒天培地に各稀釈段階の液１００μＬをコランジ棒で塗布し、３７℃×７２時間培養し、菌数を確認した。結果、低臭気培養法で１．０×１０^５ｃｆｕ／ｍＬの当該菌体を得た。

［培養例３］低臭気培養法１＋ミネラル添加法１
トリプトン０．５ｇ、グルコース１．０ｇ、硫酸マグネシウム０．１５ｇ、炭酸カルシウム０．０４ｇを蒸留水１００ｍＬに溶解し、３００ｍＬ三角フラスコに入れ、オートクレーブで１２０℃×２０分の滅菌処理を行った。次に、室温まで冷却し、ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉＨＡＫ−Ｎｉｏｔｗｏ（ＦＥＲＭＡＰ−２１４７４）の凍結乾燥菌体粉末１０ｍｇをクリーンベンチ内にて加え、３７±１℃のインキュベーターで、２４時間静置培養した。培養後、その培養液から１ｍＬをとり、滅菌水で段階的に希釈し、ＢＣＰ加プレートカウント寒天培地に各稀釈段階の液１００μＬをコランジ棒で塗布し、３７℃×７２時間培養し、菌数を確認した。結果、低臭気培養法＋ミネラル添加法で４．３×１０^７ｃｆｕ／ｍＬの当該菌体を得た。

［培養例４］低臭気培養法１＋ミネラル添加法２
トリプトン０．５ｇ、グルコース１．０ｇ、硫酸マグネシウム０．１ｇを蒸留水１００ｍＬに溶解し、３００ｍＬ三角フラスコに入れ、オートクレーブで１２０℃×２０分の滅菌処理を行った。次に、室温まで冷却し、ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉＨＡＫ−Ｎｉｏｔｗｏ（ＦＥＲＭＡＰ−２１４７４）の凍結乾燥菌体粉末１０ｍｇをクリーンベンチ内にて加えて、３７±１℃のインキュベーターで、２４時間静置培養した。培養後、その培養液から１ｍＬをとり、滅菌水で段階的に希釈し、ＢＣＰ加プレートカウント寒天培地に各稀釈段階の液１００μＬをコランジ棒で塗布し、３７℃×７２時間培養し、菌数を確認した．結果、低臭気培養法１＋ミネラル添加法２により、７．４×１０^７ｃｆｕ／ｍＬの当該菌体を得た。

［培養例５］スキムミルク培養法
スキムミルク（和光純薬（株）製）０．５ｇ、トリプトン０．５ｇ、グルコース１．０ｇを蒸留水１００ｍＬに溶解し、３００ｍＬ三角フラスコに入れ、オートクレーブで１２０℃×２０分の滅菌処理を行った。次に、室温まで冷却し、ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉＨＡＫ−Ｎｉｏｔｗｏ（ＦＥＲＭＡＰ−２１４７４）の凍結乾燥菌体粉末１０ｍｇをクリーンベンチ内にて加え、３７±１℃のインキュベーターで、３６時間静置培養した。培養後、スキムミルクの固化・沈殿したものを、水酸化ナトリウムで中和・溶解した。次に、その培養液から１ｍＬをとり、段階的に滅菌水で希釈し、ＢＣＰ加プレートカウント寒天培地に各稀釈段階の液１００μＬをコランジ棒で塗布し、３７℃×７２時間培養し、菌数を確認した。結果、スキムミルク培養法で３．０×１０^８ｃｆｕ／ｍＬの当該菌体を得た。

［培養例６］ＭＲＳ培地法
ＭＲＳ（ブイヨン）（関東化学（株）製）５０ｇを蒸留水１Ｌに溶解し、３Ｌ三角フラスコに入れ、オートクレーブで１２０℃×２０分の滅菌処理を行った。次に、室温まで冷却し、ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉＨＡＫ−Ｎｉｏｔｗｏ（ＦＥＲＭＡＰ−２１４７４）の凍結乾燥菌体粉末１００ｍｇをクリーンベンチ内にて加えた。その後、３７℃±１℃のインキュベーターに入れ、３６時間静置培養した。培養後、その培養液から１ｍＬをとり、段階的に希釈し、ＢＣＰ加プレートカウント寒天培地に各稀釈段階の液１００μＬをコランジ棒で塗布し、３７℃×７２時間培養し、菌数を確認した。結果、ＭＲＳ培地法で８．２×１０^９ｃｆｕ／ｍＬの当該菌体を得た。

［抽出例１］高圧乳化装置法１
培養例６で得られた培養液約１０００ｍＬを遠心し（遠心機；ＫＲ−２００００Ｔ（（株）久保田製作所）、ローター；ＲＡ−８、遠心管；５００ｍＬポリプロピレンボトル、４０００ｒｐｍ×２０分）、上澄みを除き、生理食塩水９００ｍＬを加えて懸濁分散し、再度遠心した。次に、上澄みを除き、クエン酸バッファー（０．１Ｍクエン酸ナトリウム水溶液に１５％クエン酸水溶液を添加し、ｐＨ５．０になるよう調製したもの）に懸濁して１００ｍＬとし、これを、ナノマイザー／衝突型ジェネレーターを用いて、２００ＭＰａ、１０ＰＡＳＳにて処理し、菌体破砕抽出液を得た。この抽出液および基準サンプルをポリアクリルアミドのゲル電気泳動にかけ、画像解析装置ＧＳ−８００（ＢＩＯＲＡＤラボラトリーズ（株）製）にてタンパク質量を比較し、本方法により基準サンプルと同等のタンパク質が抽出されたことを確認した。

なお、基準サンプルは、培養例６の培養液１０ｍＬから得た菌体ペレットを１％ＳＤＳ溶液１ｍＬに溶解し、ナノマイザー／衝突型ジェネレーターを用いて、２００ＭＰａ、１０ＰＡＳＳにて処理調製したものであり、ほぼすべての菌体が破砕溶解していると考えられた。また、ゲル電気泳動用のサンプルは、それぞれの菌体破砕液から１００μＬを取って遠心し、その上澄み２５μＬとＳＤＳＰＡＧＥ用サンプルバッファー２５μＬを混和し、９５℃×５分煮沸して調製した。

［抽出例２］高圧乳化装置法２
培養例６と同じ条件の培養で得られた培養液約１０００ｍＬを遠心し、上澄みを除き、生理食塩水を９００ｍＬ加えて懸濁分散し、再び遠心した。次に、上澄みを除き、クエン酸バッファー（ｐＨ５．０）に懸濁して１００ｍＬとし、ナノマイザー／貫通型ジェネレーターを用いて、１５０ＭＰａ、２ＰＡＳＳにて処理し、菌体破砕抽出液を得た。この抽出液および基準サンプルをポリアクリルアミドのゲル電気泳動にかけ、画像解析装置ＧＳ−８００にてタンパク質量を比較し、本方法により基準サンプルと同等のタンパク質が抽出されたことを確認した。なお、基準サンプルは、前記抽出例１に記載した基準サンプルの調製方法に準じて調製した。

［評価１］トリメチルアミン消臭力評価
抽出例２で得た菌体破砕抽出液を、クエン酸バッファー（ｐＨ５．０）で、１００倍、１０００倍、１万倍、１０万倍に希釈した液を調製した。次に、１Ｌ褐色ガラス瓶に、トリメチルアミンを７０ｐｐｍとなるよう添加したものを用意し、各希釈した抽出液をそれぞれ噴霧して、ガス検知管（検知管型番：Ｎｏ．１８０、（株）ガステック）により経時的にトリメチルアミンの濃度を測定した。結果を、表１に示す。１０万倍希釈液を噴霧したものでも、トリメチルアミンが速やかに分解された。

［評価２］硫化水素消臭力評価
抽出例２で得た菌体破砕抽出液を、クエン酸バッファー（ｐＨ５．０）で、１００倍、１０００倍、１万倍、１０万倍に希釈した液を調製した。次に、１Ｌ褐色ガラス瓶に、硫化水素を２ｐｐｍとなるよう添加したものを用意し、各希釈した抽出液をそれぞれ噴霧して、ガス検知管（検知管型番：Ｎｏ．４ＬＴ、（株）ガステック）により経時的に硫化水素の濃度を測定した。結果を、表２に示す。１０万倍希釈液を噴霧したものでも、硫化水素が速やかに分解された。

本発明のＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉ菌体粉砕物から得られる酵素（群）を用いれば、臭気成分を効果的かつ持続的に分解する消臭剤を提供することが可能である。

Claims

Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉの菌体を破砕して得られる酵素を含有することを特徴とする消臭剤。
前記酵素が、硫化水素の分解活性を有する酵素を含むことを特徴とする請求項１に記載の消臭剤。
前記酵素が、トリメチルアミンの分解活性を有する酵素を含むことを特徴とする請求項１に記載の消臭剤。
前記Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉの菌体が、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉ種菌を、酵素または酸またはアルカリによるタンパク質の加水分解物、糖類および酵母エキスを含む液体培地で、２５℃〜４０℃の温度条件下で培養することによって得られることを特徴とする請求項１〜３いずれかの項に記載の消臭剤。
前記Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉの菌体が、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉ種菌を、脱脂粉乳および酢酸を含む液体培地で、２５℃〜４０℃の温度条件下で培養することによって得られることを特徴とする請求項１〜３いずれかの項に記載の消臭剤。
前記液体培地が、ｐＨ５．０〜６．５に調整されていることを特徴とする請求項４または５に記載の消臭剤。
前記培養を、培養液中での菌体増殖が静止期となるまで行うことを特徴とする請求項４〜６いずれかの項に記載の消臭剤。
菌体と培地を分離し、該菌体を破砕することを特徴とする請求項１〜７いずれかの項に記載の消臭剤。
前記した菌体の破砕が、高圧乳化装置を用いて行われることを特徴とする請求項８に記載の消臭剤。
前記消臭剤が、ｐＨ４．５〜５．５に調整されていることを特徴とする請求項１〜９いずれかの項に記載の消臭剤。
前記菌体を破砕して得られる酵素が、酵素（群）液であることを特徴とする請求項１〜１０いずれかの項に記載の消臭剤。
前記Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉが、ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｐａｒａｃａｓｅｉＨＡＫ−Ｎｉｏｔｗｏ（ＦＥＲＭＡＰ−２１４７４）であることを特徴とする請求項１〜１１いずれかの項に記載の消臭剤。